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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Genotipificación del Virus del Papiloma Humano(VPH) en muestras de cepillados cervicales de pacientes de diferentes hospitales de Bogotá y evaluación de la concordancia de dos métodos basados en PCR]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Genotyping the human papilloma virus (HPV) in Cytobrush samples taken from patients attending different hospitals in Bogotá (Colombia) and evaluating agreement between two PCR-based methods]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Objective: genotyping HPV in samples taken from patients having different histopathological degrees of cervical injury. Materials and methods: this was a cross-sectional study of cervical scrape samples taken from females having different degrees of histopathological cervical injury in Bogotá during 2009. Luminex® xMAP® was used, which is a highly sensitive, reproducible and automated technique, as well as reverse line blot (RLB). Results: infections caused by HPV types 16 and 18 were the most frequently found types of pathology of the cervix. Mixed infections predominated (78.04%); amongst cases having negative pathology, 85.7% was found for cervical intraepithelial neoplasia (CIN) I, 81.25% for CIN II, 78.78% for CIN III and 71.42% for cervical cancer. Agreement between both methods was 67%. Conclusion: infection by VPH types 16 and 18 predominated in the population being studied.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2"> <font size="4" face="verdana">    <center><b>Genotipificaci&oacute;n del Virus del Papiloma Humano(VPH) en muestras de cepillados    cervicales de pacientes de diferentes hospitales de Bogot&aacute; y evaluaci&oacute;n    de la concordancia de dos m&eacute;todos basados en PCR</b></center></font>    <p></p>     <p>    <center>    <p>Dabeiba A. Garc&iacute;a, M.Sc.*, Markus Schmitt, Ph.D.**, &Aacute;ngel Cid-Arregui, Ph.D.***, Marcos Castillo, M.D.****, Ignacio Brice&ntilde;o, Ph.D.*****,   Fabio A. Aristiz&aacute;bal, Ph.D.******</p></center></p>     <p>    <center>    <p>Recibido: abril 30/10 - Aceptado: noviembre 12/10 </p></center></p>     <p>* Centro de Investigaciones Odontol&oacute;gicas, Pontificia Universidad Javeriana.    Bogot&aacute; (Colombia). </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>** Research Program Infection and Cancer, German Cancer Research Center    (DKFZ). Heidelberg (Alemania). </p>     <p>*** Translationale Immunologie, German Cancer Research Center (DKFZ). Heidelberg    (Alemania). </p>     <p>**** Facultad de Medicina, Universidad de La Sabana. Din&aacute;mica-IPS. Bogot&aacute;    (Colombia). </p>     <p>***** Din&aacute;mica-IPS. Bogot&aacute; (Colombia). </p>     <p>****** Departamento de Farmacia, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional    de Colombia. Bogot&aacute; (Colombia). Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:faaristizabalg@unal.edu.co">faaristizabalg@unal.edu.co</a></p>     <p><b>RESUMEN </b></p>     <p><b>Objetivo: </b>genotipificar el VPH en muestras de pacientes con diferentes    grados histopatol&oacute;gicos de lesi&oacute;n cervical.</p>     <p><b>Materiales y m&eacute;todos: </b>estudio de corte transversal en muestras    de cepillado cervical de mujeres con diferentes grados de lesiones cervicales    histopatol&oacute;gicas en la ciudad de Bogot&aacute; en el a&ntilde;o 2009.    Se utiliz&oacute; Luminex<sup>&reg;</sup> xMAP<sup>&reg;    </sup>una t&eacute;cnica altamente sensible, reproducible y automatizada, y <i>Reverse Line Blot </i>(RLB).  </p>     <p><b>Resultados: </b>las infecciones por los tipos de VPH de 16 y 18 fueron las    m&aacute;s frecuentes en todos los tipos de patolog&iacute;a del c&eacute;rvix.    Las infecciones mixtas predominaron con un 78,04% de los casos con patolog&iacute;a    negativa, 85,7% NIC I, 81,25% NIC II, 78,78% NIC III y 71,42% c&aacute;ncer    cervical. La concordancia entre los dos m&eacute;todos    fue del 67%.</p>     <p><b>Conclusi&oacute;n: </b>las infecciones por los tipos de VPH 16 y 18 predominan    en la poblaci&oacute;n estudiada. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Palabras clave: </b>papilomavirus, displasia cervical, patolog&iacute;a, biolog&iacute;a    molecular. </p> <font size="4" face="verdana">    <center><b>Genotyping the human papilloma virus (HPV) in Cytobrush samples taken from    patients attending different hospitals in Bogot&aacute; (Colombia) and evaluating    agreement between two PCR-based methods</b></center></font>    <p></p>      <p><b>SUMMARY </b>      <p><b>Objective: </b>genotyping HPV in samples taken from patients having different histopathological degrees of    cervical injury.</p>     <p><b>Materials and methods: </b>this was a cross-sectional study of cervical scrape samples taken from females having different degrees    of histopathological cervical injury in Bogot&aacute; during 2009. Luminex<sup>&reg;    </sup>xMAP<sup>&reg; </sup>was used, which is a highly sensitive, reproducible    and automated technique, as well as reverse line blot (RLB). </p>     <p><b>Results: </b>infections caused by HPV types 16 and 18 were the most frequently    found types of pathology of the cervix. Mixed infections predominated (78.04%);    amongst cases having negative pathology, 85.7% was found for cervical intraepithelial    neoplasia (CIN) I, 81.25% for CIN II, 78.78% for CIN III and 71.42% for cervical    cancer. Agreement between both methods was 67%. </p>     <p><b>Conclusion: </b>infection by VPH types 16 and 18 predominated in the population    being studied. </p>     <p><b>Key words: </b>papilloma virus, cervical dysplasia, pathology, molecular    biology. </p>       <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N </b>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b></b>El c&aacute;ncer cervical es un problema de salud p&uacute;blica a nivel    mundial, especialmente en pa&iacute;ses en v&iacute;as de desarrollo, y es una    de las principales causas de morbilidad y mortalidad en mujeres.<sup>1,2 </sup>Hay    500.000 casos nuevos de c&aacute;ncer cervical por a&ntilde;o en el mundo y    es la primera causa de muerte en mujeres en pa&iacute;ses en v&iacute;as de    desarrollo y la segunda en el mundo. No obstante, se trata de una patolog&iacute;a    altamente curable si se detecta a tiempo.<sup>3,4 </sup>El c&aacute;ncer de    cuello est&aacute; precedido por una serie de lesiones precursoras que generalmente    se desarrollan de modo lento precediendo al c&aacute;ncer invasivo, t&iacute;picamente    durante un per&iacute;odo mayor a 10 a&ntilde;os.<sup>5 </sup>Estas lesiones    precursoras son las anteriormente llamadas displasias o neoplasias intraepiteliales    cervicales (NIC) y la actualmente denominada lesi&oacute;n escamosa intraepitelial    (LEI).<sup>6 </sup>Estas lesiones son detectables mediante m&eacute;todos de    tamizaje, tales como la citolog&iacute;a cervical o por medio de la detecci&oacute;n    de agentes asociados al desarrollo de estas lesiones precancerosas como el Virus    del Papiloma Humano (VPH).<sup>7 </sup> </p>      <p>El VPH es un virus ADN que desempe&ntilde;a un papel importante en el desarrollo    del c&aacute;ncer cervical.<sup>8,9 </sup>Hoy en d&iacute;a, se considera que    la infecci&oacute;n por VPH es una causa necesaria, pero no suficiente, para    el desarrollo de esta neoplasia.<sup>10 </sup>Alrededor del 99% de mujeres con    c&aacute;ncer cervical presentan esta infecci&oacute;n.<sup>10,11 </sup>Igualmente,    se ha descrito su presencia en las lesiones precancerosas antes descritas. El    virus actuar&iacute;a conjuntamente con otros factores, no totalmente conocidos    para el desarrollo final de la lesi&oacute;n invasora.<sup>4,12 </sup></p>     <p>La transmisi&oacute;n sexual es el mecanismo dominante para adquirir VPH, aunque    la mayor&iacute;a de las infecciones son transitorias y se eliminan a trav&eacute;s    del sistema inmune.<sup>5 </sup>Alrededor de 118 tipos del Virus del Papiloma    han sido definidos completamente, 40 de estos han sido identificados en el tracto    genital y se subdividen en: grupos de alto riesgo, riesgo indeterminado y bajo    riesgo. Existen 15 tipos de VPH de alto riesgo (16, 18, 31, 33, 35, 39, 45,    51, 52, 56, 58, 59, 68, 73, 82)<sup>13 </sup>que son frecuentemente asociados    con el c&aacute;ncer cervical invasivo.<sup>13 </sup>El descubrimiento de que    los VPH est&aacute;n etiol&oacute;gicamente ligados con el c&aacute;ncer cervical    ha estimulado los esfuerzos para aplicar este conocimiento con el fin de prevenir    su infecci&oacute;n mediante la vacunaci&oacute;n y el desarrollo de t&eacute;cnicas    que faciliten su detecci&oacute;n.<sup>5 </sup></p>     <p>La detecci&oacute;n temprana del virus podr&iacute;a revelar pacientes con    lesiones precursoras. En este sentido, la PCR es el m&eacute;todo m&aacute;s    sensible para la detecci&oacute;n de secuencias del ADN del VPH en muestras    cl&iacute;nicas.<sup>14-16 </sup>Una de las t&eacute;cnicas basadas en la PCR    m&aacute;s utilizadas para genotipificar el VPH es el <i>Reverse Line Blot </i>(RLB).    Esta t&eacute;cnica utiliza los iniciadores denominados GP5+/GP6+, que amplifican    la regi&oacute;n L1 de 37 tipos del VPH. La t&eacute;cnica se basa en la hibridaci&oacute;n    de sondas para cada tipo viral sobre una membrana con los productos de PCR marcados    con biotina que, a su vez, son conjugados con estreptavidina-peroxidasa y, finalmente,    revelados con ECL en una pel&iacute;cula de autoradiograf&iacute;a.<sup>17 </sup>En    los &uacute;ltimos a&ntilde;os, se ha descrito una t&eacute;cnica automatizada    basada en arreglos con perlas denominada xMAP<sup>&reg; </sup>de Luminex<sup>&reg;</sup>,    la cual tiene un principio similar al RLB. Con respecto a los iniciadores, estos    fueron mejorados incluyendo 8 iniciadores sentido adicionales y 2 antisentido,    denominados BSGP5+/BIO-BSGP6+, adem&aacute;s de 1 juego de iniciadores para    &beta;-globina denominados MS<Sub>3</Sub>/MS<Sub>10 </Sub>con el fin de detectar    11 tipos virales m&aacute;s, adem&aacute;s de incluir un control de calidad    de la muestra. La hibridaci&oacute;n no se lleva a cabo en fase s&oacute;lida,    sino en fase l&iacute;quida mediante el uso de perlas carboxiladas. Finalmente,    la detecci&oacute;n se lleva a cabo mediante un sistema automatizado, evitando    de esta forma errores en la interpretaci&oacute;n de los resultados.<sup>13    </sup></p>     <p>A la fecha, son pocos los estudios que genotipifican el VPH en muestras de    mujeres en nuestra poblaci&oacute;n por t&eacute;cnicas altamente sensibles    como el Luminex<sup>&reg; </sup>xMAP<sup>&reg;</sup>, m&eacute;todo que detecta    48 tipos virales de una manera automatizada, con lo cual se evitan errores en    su interpretaci&oacute;n desde un diagn&oacute;stico histopatol&oacute;gico    negativo hasta diferentes grados de NIC y c&aacute;ncer cervical. </p>     <p>Por lo tanto, este estudio busca determinar la prevalencia del VPH mediante    genotipificaci&oacute;n en muestras de pacientes con diferentes grados histopatol&oacute;gicos    de lesi&oacute;n escamosa intraepitelial y evaluar la concordancia de los m&eacute;todos    RLB y xMAP<sup>&reg;</sup> en la poblaci&oacute;n objeto de estudio. </p>     <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS </b>      <p><b>Dise&ntilde;o </b></p>     <p>Se hizo un estudio de corte transversal en mujeres que asistieron a consulta    de colposcopia durante un per&iacute;odo de ocho meses a las siguientes instituciones:    Hospital San Ignacio, Fundaci&oacute;n Santaf&eacute; o Cl&iacute;nica Telet&oacute;n    (hospitales universitarios privados de referencia que atienden poblaci&oacute;n    con aseguramiento contributivo), el Hospital de Engativ&aacute; (hospital p&uacute;blico    de mediana complejidad que atiende pacientes del aseguramiento subsidiado) y    Din&aacute;mica-IPS (centro privado de diagn&oacute;stico), todos ubicados en    la ciudad de Bogot&aacute;. Las pacientes aceptaron participar voluntariamente    en el estudio por medio de la firma de un consentimiento informado. No se incluyeron    pacientes en estado de embarazo, que hayan recibido tratamiento para la neoplasia    cervical y/o infecci&oacute;n por VPH, con antecedentes de terapia antineopl&aacute;sica    o inmunomoduladora. El ingreso fue independiente de que presentaran o no lesiones    intraepiteliales del cuello uterino. El tama&ntilde;o muestral fue por el n&uacute;mero    de mujeres estudiadas durante un per&iacute;odo de 12 meses. Asimismo, se realiz&oacute;    un muestreo secuencial consecutivo por conveniencia. </p>     <p><b>Adquisici&oacute;n y procesamiento de las muestras </b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b></b>A cada paciente se le tom&oacute; una muestra de cepillado cervical    para las pruebas moleculares y biopsia para el diagn&oacute;stico histopatol&oacute;gico.    Los citocepillos se colocaron inmediatamente en <i>buffer </i>fosfato salino    1X y timerosal al 0,05%, posteriormente fueron digeridas con una soluci&oacute;n    de 20 mg/ml de proteinasa K (Bioline<sup>&reg;</sup>) e incubadas a 37&ordm;C    durante toda la noche. Transcurrido el tiempo de incubaci&oacute;n, se inactivaron    las muestras a 95&ordm;C por 5 minutos. Subsiguientemente, fueron centrifugadas    a 10.000 rpm por 5 minutos y almacenadas a -20&deg;C. </p>     <p>La calidad del ADN fue confirmada por PCR con los iniciadores PC03/PC04, los    cuales amplifican un fragmento de 110 pb del gen constitutivo de &beta;-globina.<sup>18    </sup>La mezcla de la reacci&oacute;n conten&iacute;a <i>buffer </i>de PCR 1X,    MgCI<Sub>2 </Sub>3,5mM,mezcladedNTPs200&micro;Mdecadauno, PC03 1 &micro;M, PC04    1 &micro;M, 1,25 U de Taq polimerasa (Promega<sup>&reg;</sup>) y agua destilada    est&eacute;ril hasta completar un volumen de reacci&oacute;n de 25 &micro;l.    Las reacciones fueron corridas en el equipo My Cycler<sup>TM </sup>Termal Cycler    (Biorad<sup>&reg;</sup>) con las siguientes condiciones: 4 minutos a 94&ordm;C,    seguidos por 40 ciclos de amplificaci&oacute;n de 94&ordm;C por 1 minuto, 55&ordm;C    por 1 minuto y 72&ordm;C por 1 minuto, y una extensi&oacute;n final a 72&ordm;C    por 4 minutos. Como control positivo, se us&oacute; ADN linfocitario y como    control negativo agua destilada. El producto de la PCR se visualiz&oacute; mediante    una electroforesis en gel de agarosa al 1% te&ntilde;ido con bromuro de etidio    identificando la banda amplificada de 110 pb. Esta electroforesis se corri&oacute;    durante una hora a 100 voltios en <i>buffer </i>TBE1X utilizando el equipo Biorad<sup>&reg;    </sup>Power PAC 3000 y visualizado con un digitalizador de geles con el software    Quantity One de Biorad<sup>&reg;</sup>. </p>     <p><b>Genotipificaci&oacute;n de VPH mediante RLB </b></p>     <p><b></b>A todas las muestras positivas para el gen de &szlig;-globina, se les    realiz&oacute; una PCR, utilizando los iniciadores de la regi&oacute;n L1 del    VPH GP5+/BioGP6+.<sup>17 </sup>La mezcla de la reacci&oacute;n conten&iacute;a    10 &micro;l de muestra, <i>buffer </i>de PCR 1X, MgCI<Sub>2 </Sub>3,5 mM, mezcla    de dNTPs 800 mM (200 mM de cada uno), GP5+ 1 &micro;M, Bio-GP6+ 1 &micro;M,    1,25 U de Taq polimerasa (Promega<sup>&reg;</sup>) y agua destilada est&eacute;ril    hasta completar un volumen de reacci&oacute;n de 50 &micro;L. Cada reacci&oacute;n    se llev&oacute; a cabo en un termociclador My Cycler<sup>TM </sup>(Biorad<sup>&reg;</sup>)    y las condiciones de PCR fueron: un paso de denaturaci&oacute;n a 94&ordm;C    por 4 minutos, seguido de 40 ciclos de amplificaci&oacute;n y cada ciclo inclu&iacute;a    un paso de denaturaci&oacute;n a 94&ordm;C por 1 minuto, un paso de anillamiento    a 40&ordm;C por 2 minutos y un paso de elongaci&oacute;n a 72&ordm;C por 1&frac12;    minuto. La elongaci&oacute;n final fue prolongada por 4 minutos. Como control    positivo se utilizaron los ADN extra&iacute;dos de las l&iacute;neas celulares    de c&aacute;ncer cervical, HeLa y SiHa, pertenecientes al Banco de L&iacute;neas    Celulares, del grupo de farmacogen&eacute;tica de la Universidad Nacional de    Colombia. </p>     <p>En un sistema Minibloter<sup>&reg; </sup>45 de Immunetics<sup>&reg;</sup>,    se unen covalentemente oligosondas que presentan grupos amino a una membrana    que presenta grupos carboxilo, la cual es activada con EDAC 16% (P/V) (1-etil-3-(3-dimetilaminopropil)    carbodiimida), las oligosondas acopladas detectan 37 tipos virales de VPH, las    cuales fueron las reportadas por Van den Brule.<sup>17 </sup>Posteriormente,    la membrana se gira 90 grados para realizar la hibridizaci&oacute;n de los productos    denaturados de la PCR a 42&ordm;C por 45 minutos y seguido por dos lavados por    10 minutos a 52&ordm;C con 2X SSPE (1X SSPE contiene 0,18M NaCl, 10 mM NaH<Sub>2</Sub>PO<Sub>4    </Sub>y 1 mM EDTA pH 7,4; Invitrogen&trade;) y 0,5% de SDS. Luego se incuba    la membrana con el conjugado estreptividina peroxidasa (Roche<sup>&reg;</sup>)    por 45 minutos a 42&ordm;C (diluci&oacute;n 1:4.000), seguido por dos lavados    en 2X SSPE y 0,5% SDS por 10 minutos a 42&ordm;C y dos lavados con 2X SSPE por    5 minutos a temperatura ambiente. La detecci&oacute;n fue realizada usando detecci&oacute;n    con ECL<sup>TM </sup>(GE<sup>&reg;</sup> Healthcare UK, Amersham<sup>TM</sup>)    seguido por la exposici&oacute;n de la pel&iacute;cula toda la noche (Amersham    Hyperfilm&trade; ECL&trade;). La pel&iacute;cula fue revelada en el equipo Medical    Film Procesador Modelo SRX-101 A Konica Minolta Medical &amp; Graphic, Inc.  </p>     <p><b>Genotipificaci&oacute;n mediante Luminex<sup>&reg;</sup> xMAP<sup>&reg;    </sup></b></p> <b></b>      <p><b></b>Inicialmente, se realiz&oacute; una PCR multiplex con los iniciadores    reportados por Markus y sus colegas en el 2008,<sup>15 </sup>denominados BSGP5+/GP6+,    que constan de 9 iniciadores sentido 200nM BSGP5+ y 3 iniciadores antisentido    400nM BIO-BSGP6+, adem&aacute;s de un par de iniciadores adicionales que amplifican    el gen de &beta;-globina 300 nM (MS3/ MS10).<sup>13 </sup>Las sondas con un    grupo amino en el extremo 5&rsquo; para cada uno de los 48 tipos virales que    se detectan son acopladas a las perlas carboxiladas mediante el procedimiento    de carbodiimida, descrito por Dunbar y colaboradores en el 2003.<sup>19 </sup>Para    cada combinaci&oacute;n de sonda y perla, se tomaron 2,5 millones de perlas    carboxiladas en 25 &micro;L de 0,1 M &aacute;cido 2-(N-morfolino)-etanosulf&oacute;nico,    pH 4,5 (MES), con 400 pmol de sonda y 200 &micro;g de N-(3-dimetilaminopropil)-N-etilcarbodiimida    (EDC), se realiz&oacute; la mezcla y se mantuvo en oscuridad bajo agitaci&oacute;n    por 30 minutos, se repiti&oacute; el paso de la adici&oacute;n del EDC y la    incubaci&oacute;n. Posteriormente, se lav&oacute; con 0,5 ml de 0,2 g/l de Tween-20    y una vez con 0,5 ml de 1,0 g/l de SDS. Finalmente, se almacen&oacute; a 4&deg;C    en soluci&oacute;n de TE. La hibridaci&oacute;n se realiz&oacute; en placas    de 96 pozos con 10 &micro;l del producto de la PCR con 33 &micro;l de soluci&oacute;n    de hibridaci&oacute;n 0,15 M TMAC (75 mM Tris-HCl, 6 mM EDTA, 1,5 g/l Sarkosyl,    pH 8,0) y 2000 perlas acopladas a las sondas. Esta mezcla fue incubada a 95&deg;C    durante 10 minutos e inmediatamente colocada en hielo por 2 minutos, posteriormente    se coloc&oacute; a 41&deg;C durante 30 minutos en agitaci&oacute;n; luego se    transfirieron las muestras a una placa de lavado (Millipore<sup>&reg;</sup>,    Bedford, MA) preequilibradas con soluci&oacute;n de bloqueo (PBS&ndash;0,2 g/l    Tween 20-2,0 M cloruro de tetrametilamonio), y se realiz&oacute; un lavado con    soluci&oacute;n de bloqueo. Luego se adicionaron 75 &micro;L de estreptavidina-R-ficoeritrina    (sondas moleculares) 1:1.600 en 2.0 M TMAC y se incub&oacute; 20 minutos a temperatura    ambiente en agitaci&oacute;n, se lav&oacute; 3 veces con soluci&oacute;n de    bloqueo y, finalmente, se resuspendi&oacute; en 100 &micro;L de esta misma soluci&oacute;n.    La lectura se realiz&oacute; en Luminex<sup>&reg; </sup>100 Analyzer, en donde    se detecta el color interno de cadaperla ylafluorescenciadel reportero que en    este caso fue la ficoeritrina, la media de la intensidad de fluorescencia (MIF)    fue calculada para 100 perlas en cada muestra.<sup>13,20 </sup></p>     <p>De cada una de las pacientes incluidas en el estudio, se indagaron datos sociodemogr&aacute;ficos    tales como edad, estrato socioecon&oacute;mico y factores de riesgo tales como    edad de la primera relaci&oacute;n sexual, n&uacute;mero de compa&ntilde;eros    sexuales, n&uacute;mero de embarazos, edad del primer parto, uso de anticonceptivos,    infecciones vaginales, enfermedades de transmisi&oacute;n sexual y antecedentes    familiares de c&aacute;ncer. Adem&aacute;s, se determin&oacute; el tipo de VPH    en los diferentes tipos de lesi&oacute;n escamosa intraepitelial o c&aacute;ncer    invasor. </p>     <p><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico </b></p>     <p><b></b>Los datos sociodemogr&aacute;ficos de la poblaci&oacute;n se analizaron    mediante el software Statistix 9, con el cual se hallaron porcentajes, correlaci&oacute;n    de Pearson y chi-cuadrado. La significancia se determin&oacute; a un valor de    p menor a 0,05. Los resultados de genotipificaci&oacute;n fueron analizados    hallando porcentajes mediante Excel<sup>&reg;</sup>. Finalmente, para comparar    los dos m&eacute;todos de genotipificaci&oacute;n de VPH y ver su concordancia    se utiliz&oacute; un estad&iacute;stico kappa.<sup>21 </sup></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>RESULTADOS </b>      <p><b></b>Durante el per&iacute;odo de estudio, se incluyeron 160 mujeres con    una edad promedio de 35&plusmn;12 a&ntilde;os. La media de la edad a la que    se present&oacute; la primera relaci&oacute;n sexual fue de 17&plusmn;2 a&ntilde;os    y un primer parto a una edad del promedio de 20&plusmn;3 a&ntilde;os. Los otros    resultados sociodemogr&aacute;ficos se muestran en la <a href="#Tabla1">tabla 1</a>. </p>     <p>    <center><a name="Tabla1"></a><img src="img/revistas/rcog/v61n4/a04t1.jpg"></center></p>     <p>Los diagn&oacute;sticos histopatol&oacute;gicos encontrados fueron: negativa    para lesiones intraepiteliales cervicales en 41 mujeres (25,6%); 56 pacientes    (35%) ten&iacute;an NIC I, 16 pacientes (10%) NIC II, 33 (20,6%) NIC III y 14    pacientes (8,8%) ten&iacute;an c&aacute;ncer cervical. En todos los casos estudiados    se detect&oacute; VPH. La frecuencia de los diferentes tipos de VPH por tipo    de diagn&oacute;stico histol&oacute;gico se presenta en la <a href="#Figura1">Figura 1</a>. Se    observa un predominio de los tipos virales 16 y 18 en todos los grados histopatol&oacute;gicos.    Los siguientes tipos virales m&aacute;s frecuentes fueron: VPH 56 (con una frecuencia    del 16,8%) y VPH 52 y 66 (con una frecuencia del 10,6%). Por otra parte, las    infecciones m&uacute;ltiples fueron m&aacute;s frecuentes que las infecciones    simples. En los casos de histopatolog&iacute;a negativa, las infecciones m&uacute;ltiples    se observaron en el 78,04%, as&iacute; como en el 85,7% de NIC I, 81,25% de    NIC II, 78,78% de NIC III y 71,42% de c&aacute;ncer cervical. </p>     <p>    <center><a name="Figura1"></a><img src="img/revistas/rcog/v61n4/a04f1.jpg"></center></p>     <p>Se genotipific&oacute; el VPH por xMAP<sup>&reg; </sup>en las 160 pacientes    incluidas en el estudio. Sin embargo, 35 pacientes no se incluyeron para genotipificaci&oacute;n    paralela por <i>Reverse Line Blot</i>, ya que estas muestras no revelaron una    banda clara y bien definida en el gel de agarosa para el gen de &beta;-globina    y no cumplieron con los requerimientos para su procesamiento por dicha t&eacute;cnica.    La concordancia de las dos metodolog&iacute;as xMAP<sup>&reg; </sup>y RLB mostr&oacute;    un valor del estad&iacute;stico Kappa de 0,672. Adem&aacute;s de las muestras    positivas por las dos metodolog&iacute;as, el 67,2% coincidieron en el tipo    viral detectado. </p>     <p><b>DISCUSI&Oacute;N </b>      <p><b></b>El presente trabajo muestra que los tipos virales m&aacute;s frecuentes    en la poblaci&oacute;n de estudio fueron VPH 16, seguido por VPH 18. Estos resultados    son similares a lo reportado por Mu&ntilde;oz y colaboradores en el 2003.<sup>22    </sup>Las frecuencias de aislamiento de los tipos VPH 56, VPH 52 y VPH 66 son    superiores a las reportadas por Clifford y colaboradores en el 2005, que fueron    del 7,1%, 5,3% y 4,1%, respectivamente.<sup>23 </sup>Con respecto a la detecci&oacute;n    de infecciones simples y m&uacute;ltiples, en este estudio se obtuvieron frecuencias    de 19,4% para infecciones simples y de 80,6% para infecciones m&uacute;ltiples,    mientras que Mu&ntilde;oz y colaboradores encontraron frecuencias de 91,9% para    infecciones simples y 8,1% para infecciones m&uacute;ltiples.<sup>22 </sup>Esta    diferencia puede deberse a la distinta sensibilidad de las t&eacute;cnicas empleadas    y a que la t&eacute;cnica utilizada en este estudio evaluaba 48 tipos virales,    en comparaci&oacute;n con 37 tipos virales detectados por los estudios citados.  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La detecci&oacute;n del VPH se ha convertido en una ayuda pr&aacute;ctica para    el diagn&oacute;stico en el cribado, la detecci&oacute;n y el seguimiento de    neoplasias cervicales, tal como en estudios epidemiol&oacute;gicos de la infecci&oacute;n.<sup>24,25    </sup>No obstante, el VPH se ha divido en grupos de alto riesgo (AR), posiblemente    de alto riesgo (pAR) y de bajo riesgo (BR), por lo que se hace necesario no    s&oacute;lo detectar el virus sino tambi&eacute;n genotipificarlo, con lo cual    el pron&oacute;stico de la paciente es m&aacute;s cercano.<sup>22 </sup></p>     <p>Con respecto a la calidad, todas las muestras cumplieron los requerimientos    por Luminex<sup>&reg; </sup>xMAP<sup>&reg;</sup>, la cual muestra una alta sensibilidad    con los iniciadores MS<Sub>3</Sub>/MS<Sub>10 </Sub>del gen de &beta;-globina,    ya que detecta menos de 10 ng de ADN gen&oacute;mico.<sup>15 </sup>Sin embargo,    para el RLB fue necesario evaluar las muestras por PCR convencional con geles    de agarosa, la cual presenta una sensibilidad de m&aacute;s de 10 ng.<sup>26    </sup>Por esta raz&oacute;n, sugerimos que la exclusi&oacute;n que se debi&oacute;    hacer de las 35 muestras para el an&aacute;lisis por RLB se explica por la baja    sensibilidad de PCR visualizada con electroforesis en agarosa para &beta;-globina.  </p>     <p>Finalmente, nuestro estudio mostr&oacute; que la concordancia fue buena entre    los dos m&eacute;todos evaluados, con un &iacute;ndice kappa de 0,672. No obstante,    son pocos los estudios en lo que se comparan estas dos t&eacute;cnicas. En uno    de ellos, hecho por Schmitt y colaboradores,<sup>20 </sup>en 94 muestras se    observ&oacute; una concordancia muy buena entre estas dos t&eacute;cnicas, con    un &iacute;ndice kappa de 0,92. En otro estudio, llevado a cabo por Geraets    y colaboradores en 2009,<sup>27 </sup>el &iacute;ndice kappa para dicha concordancia    fue de 0,88. Por su parte, en 2009 Feng y sus colegas<sup>28 </sup>encontraron    un &iacute;ndice kappa de 0,85, aunque el xMAP<sup>&reg; </sup>se basaba en    otro conjunto de iniciadores. </p>     <p><b>CONCLUSI&Oacute;N </b>      <p><b></b>Los tipos virales 16 y 18 son los m&aacute;s frecuentemente detectados    en pacientes que acuden a las cl&iacute;nicas de patolog&iacute;a cervical y    colposcopia. La concordancia entre las dos metodolog&iacute;as evaluadas es    buena. Sin embargo, la t&eacute;cnica de Luminex<sup>&reg; </sup>xMAP<sup>&reg;    </sup>surge como una nueva alternativa, aunque se necesitan nuevos estudios    para corroborar estos hallazgos. </p>     <p><b>AGRADECIMIENTOS </b>      <p><b></b>A los departamentos de Ginecolog&iacute;a y Obstetricia y de Patolog&iacute;a    de Din&aacute;mica-IPS, Hospital San Ignacio, Fundaci&oacute;n Santaf&eacute;,    Hospital de Engativ&aacute; y Cl&iacute;nica Telet&oacute;n. Finalmente, a la    Facultad de Medicina de la Universidad de La Sabana por su apoyo en la financiaci&oacute;n.  </p>     <p><b>REFERENCIAS </b>      <!-- ref --><p>1. American Cancer Society. Cancer facts and figures. Washington, DC.:    American Cancer Society; 1997. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0034-7434201000040000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Saslow D, Castle PE, Cox JT, Davey DD, Einstein MH, Ferris DG, et al. American    Cancer Society Guideline for human papillomavirus (HPV) vaccine use to prevent    cervical cancer and its precursors. CA Cancer J Clin 2007;57:7-28. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0034-7434201000040000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. World Health Organization. State of the art of new vaccines research and development.    Initiative for Vaccine Research. Geneva, Switzerland: World Health Organization;    2003. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0034-7434201000040000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Thompson J, Thomas LK, Shroyer KR. Human papillomavirus: molecular and cytologic/histologic    aspects related to cervical intraepithelial neoplasia and carcinoma. Hum Pathol    2008;9:154-66. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0034-7434201000040000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Unger ER, Barr E. Human papillomavirus and cervical cancer. Emerg Infect Dis    2004;10:2031-2. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0034-7434201000040000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Crum CP. Symposium part 1: Should the Bethesda System terminology be used in    diagnostic surgical pathology?: Point. Int J Gynecol Pathol 2003;22:5-12. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0034-7434201000040000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Leinonen M, Nieminen P, Kotaniemi-Talonen L, Malila N, Tarkkanen J, Laurila    P, et al. Age-specific evaluation of primary human papillomavirus screening    vs. conventional cytology in a randomized setting. J Natl Cancer Inst 2009;101:1612-23.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0034-7434201000040000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Kisseljov FL, Kisseljova NP, Kobzeva VK, Gritsko TM, Semenova LA, Pavlova LS,    et al. State of Human Papilloma Virus ADN in Cervical Carcinomas<b>. </b>Molecular    Biology 2001;35:399-404. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0034-7434201000040000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Wolf JK, Ramirez PT. The molecular biology of cervical cancer. Cancer Invest    2001;19:621-9. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0034-7434201000040000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Bosch FX, de Sanjos&eacute; S. Chapter 1: Human papillomavirus and cervical cancer:    burden and assessment of causality. J Natl Cancer Inst Monogr 2003;31:3-13.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0034-7434201000040000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Walboomers JM, Jacobs MV, Manos MM, Bosch FX, Kummer JA, Shah KV, et al. Human    papillomavirus is a necessary cause of invasive cervical cancer worldwide. J    Pathol 1999;189:12-9. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0034-7434201000040000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Reeves WC, Brinton LA, Garc&iacute;a M, Brenes MM, Herrero R, Gaitan E, et    al. Human papillomavirus infection and cervical cancer in Latin America. N Engl    J Med 1989;320:1437-41. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0034-7434201000040000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Schmitt M, Dondog B, Waterboer T, Pawlita M. Homogeneous amplification of genital    human alpha papillomaviruses by PCR using novel broadspectrum Gp5+ and Gp6+    primers. J Clin Microbiol 2008;46:1050-9. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0034-7434201000040000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Gravitt P, Hakenewerth A, Stoerker J. A direct comparison of methods proposed    for use in widespread screening of human papillomavirus infection. Mol Cell    Probes 1991;5<b>:</b>65-72. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0034-7434201000040000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Schiffman MH, Bauer HM, Lorincz AT, Manos MM, Byrne JC, Glass AG, et al. Comparison    of Southern blot hybridization and polymerase chain reaction methods for the    detection of human papillomavirus DNA. J Clin Microbiol 1991;29<b>:</b>573-7.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0034-7434201000040000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. Cope JU, Hildesheim A, Schiffman MH, Manos MM, Lorincz AT, Burk RD, et al.    Comparison of the hybrid capture tube test and PCR for detection of human papillomavirus    DNA in cervical specimens. J Clin Microbiol 1997;35<b>:</b>2262-5. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0034-7434201000040000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. van den Brule AJ, Pol R, Fransen-Daalmeijer N, Schouls L, Meijer C, Snijders    PJ. GP5+/6+ PCR followed by reverse line blot analysis enables rapid and high-throughput    identification of human papillomavirus genotypes. J Clin Microbiol 2002;40:779-87.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0034-7434201000040000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. Arias YR, Carrillo EF, Aristiz&aacute;bal FA. Plasma DNA restoration for PCR    applications. J Clin Pathol 2007;60:952-4. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0034-7434201000040000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Dunbar SA, Vander Zee CA, Oliver KG, Karem KL, Jacobson JW. Quantitative, multiplexed    detection of bacterial pathogens: DNA and protein applications of the Luminex    LabMAP system. J Microbiol Methods 2003;53:245-52. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0034-7434201000040000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. Schmitt M, Bravo IG, Snijders PJ, Ghissann L, Pawlita M, Waterboer T. Bead-based    multiplex genotyping of human papillomaviruses. J Clin Microbiology 2006;44:504-12.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0034-7434201000040000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. Cort&eacute;s-Reyes E, Rubio-Romero JA, Gait&aacute;n-Duarte H. M&eacute;todos    estad&iacute;sticos de evaluaci&oacute;n de la concordancia y la reproducibilidad    de pruebas diagn&oacute;sticas. 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