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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Inhibidores de proteasas en papas resistentes y susceptibles a la mosca minadora Liriomyza huidobrensis (Diptera: Agromyzidae)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Abstract Biochemical differences were studied among five potato clones: four resistant (220LM87B, 662LM86B, 136LM86B and cultivar María Tambeña) and one susceptible (cultivar Revolución) to attack of the leafminer fly Liriomyza huidobrensis (Diptera, Agromyzidae) through a comparison of the degree of inhibition of the proteolytic activity of synthetic trypsin and extracts of leafminer larvae by action of total proteins extracted from the leaves of the different potato clones before damage. The proteolytic activity, in relative units, of the clones 662LM86B, 136LM86B, 220LM87B, María Tambeña, and Revolution on trypsin activity were 1.7, 2.5, 1.8, 1.3, and 2.4, and on larval extracts were 0.24, 0.4, 0.6, 0.1 and 0.5, respectively. In contrast, when inhibition of the proteolytic activity of trypsin from proteins of the cultivars María Tambeña and Revolución was quantified, there was an inhibition of 93% and 77%, respectively. Finally, using zymography, two bands of protease inhibitors were identified, one 105 kDa and the other 63 kDa; the degree of intensity of these bands was greater in the resistant clones than the susceptible. The 105 kDa band showed an intensity up to 4.2 times higher in the cultivar María Tambeña than the cultivar Revolución. The results demonstrate differences in the proteolytic activity and the presence of the 105 kDa band between the clones resistant and susceptible to the leafminer fly, which suggests that protease inhibitors are important factors in the resistance of these clones to the leafminer fly.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="verdana">     <p align="right"><b>Secci&oacute;n Agr&iacute;cola</b></p></font>      <p align="CENTER">&nbsp;</p>     <p align="CENTER"><font size="4" face="verdana"><b>Inhibidores de proteasas en    papas resistentes y susceptibles a la mosca minadora Liriomyza huidobrensis    (Diptera: Agromyzidae)</b></font></p>     <p align="CENTER"><font size="3" face="verdana"><b>Protease inhibitors in potatoes    resistant and susceptible to leaf the miner fly Liriomyza huidobrensis (Diptera:  Agromyzidae)</b></font></p> <font size="2" face="verdana">     <p>&nbsp;</p>     <p><b>JOS&Eacute; OLIVERA<sup>1</sup>, MAR&Iacute;A PALACIOS<sup>2</sup>, JORGE  TENORIO<sup>3</sup>, &Aacute;LVARO MARCELO<sup>4</sup>, AL&Iacute; GOLMIRZAIE<sup>5</sup></b></p>     <p><sup>1</sup> Bi&oacute;logo, M. Sc. Centro de Investigaci&oacute;n de Bioqu&iacute;mica y Nutrici&oacute;n (CIBN), Apto 1546 Lima-Per&uacute;. E-mail: <a href="mailto:joliverag@unmsm.edu.pe">joliverag@unmsm.edu.pe</a></p>     <p><sup> 2</sup> Bi&oacute;loga, M. Sc. Consultora Asociada, Agroconsult Internacional. E. Mail: <a href="mailto:mariapalacioslazo@viabcp.com">mariapalacioslazo@viabcp.com</a></p>     <p><sup>3</sup> Bi&oacute;logo, M. Sc. Centro Internacional de la Papa (CIP), Apto. 1558 Lima-Per&uacute;. E-mail: <a href="mailto:j.tenorio@cgiar.org">j.tenorio@cgiar.org</a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><sup>4</sup> Ph. D. Facultad de Ciencias Biol&oacute;gicas, Universidad Nacional Mayor de San Marcos. Lima-Per&uacute;. E-mail: <a href="mailto:amarcelor@unmsm.edu.pe">amarcelor@unmsm.edu.pe</a></p>     <p><sup>5</sup> Ph. D. Dept. of horticulture Fayetteville Arkansas, 72701 USA.E-mail: <a href="mailto:ali_golmirzaie@mtnsystems.com">ali_golmirzaie@mtnsystems.com</a></p> <hr size="1"> </font>     <p><font size="3" face="verdana"><b>Resumen</b>:</font><font size="2" face="verdana"> Se estudiaron las diferencias bioqu&iacute;micas entre cuatro clones de papa resistentes (220LM87B, 662LM86B,   136LM86B y cultivar Mar&iacute;a Tambe&ntilde;a) y uno susceptible (cultivar Revoluci&oacute;n) a la mosca minadora Liriomyza huidobrensis   mediante comparaci&oacute;n del grado de inhibici&oacute;n de la actividad proteol&iacute;tica de la tripsina sint&eacute;tica y de los extractos de   larvas de la mosca por acci&oacute;n de las prote&iacute;nas totales extra&iacute;das de hojas da&ntilde;adas de los clones. La actividad proteol&iacute;tica,   en unidades relativas, por efecto de los clones 662LM86B, 136LM86B, 220LM87B, Mar&iacute;a Tambe&ntilde;a, y Revoluci&oacute;n   sobre la actividad de la tripsina fue 1,7; 2,5; 1,8; 1,3 y 2,4 y sobre la actividad de los extractos de larvas fue 0,24; 0,4; 0.6;   0,1 y 0,5 respectivamente. Por otro lado, la inhibici&oacute;n de la actividad proteol&iacute;tica de la tripsina por las prote&iacute;nas de los   cultivares Mar&iacute;a Tambe&ntilde;a y Revoluci&oacute;n fue del 93% y 77% respectivamente. Finalmente, usando la t&eacute;cnica de zimograf&iacute;a   se identific&oacute; una banda de inhibidores de proteasas de 105 KDa y otra de 63 KDa; el grado de intensidad de esas bandas fue mayor en los clones resistentes. </font></p> <font size="2" face="verdana">     <p>La banda de 105 kDa mostr&oacute; una intensidad de hasta 4,2 veces en el cultivar Maria   Tambe&ntilde;a con respecto a Revoluci&oacute;n. Los resultados demuestran diferencias en la inhibici&oacute;n de la actividad proteol&iacute;tica   y en la presencia de la banda de 105 kDa entre los clones resistentes y susceptibles a la mosca minadora lo cual sugiere a los inhibidores de proteasas como factores importantes en la resistencia de estos clones a la mosca minadora.</p> </font>     <p>  <font size="3" face="verdana"><b>Palabras clave</b>:</font> <font size="2" face="verdana"><i>Solanum tuberosum</i>. Defensa vegetal. Inhibidores de proteasas. Actividad proteol&iacute;tica.</font></p> <font size="2" face="verdana"> <hr size="1"> </font>     <p>   <font size="3" face="verdana"><b>Abstract</b>:</font><font size="2" face="verdana"> Abstract Biochemical differences were studied among five potato clones: four resistant (220LM87B, 662LM86B,     136LM86B and cultivar Mar&iacute;a Tambe&ntilde;a) and one susceptible (cultivar Revoluci&oacute;n) to attack of the leafminer fly Liriomyza     huidobrensis (Diptera, Agromyzidae) through a comparison of the degree of inhibition of the proteolytic activity of     synthetic trypsin and extracts of leafminer larvae by action of total proteins extracted from the leaves of the different     potato clones before damage. The proteolytic activity, in relative units, of the clones 662LM86B, 136LM86B, 220LM87B,     Mar&iacute;a Tambe&ntilde;a, and Revolution on trypsin activity were 1.7, 2.5, 1.8, 1.3, and 2.4, and on larval extracts were 0.24, 0.4,     0.6, 0.1 and 0.5, respectively. In contrast, when inhibition of the proteolytic activity of trypsin from proteins of the     cultivars Mar&iacute;a Tambe&ntilde;a and Revoluci&oacute;n was quantified, there was an inhibition of 93% and 77%, respectively. Finally,     using zymography, two bands of protease inhibitors were identified, one 105 kDa and the other 63 kDa; the degree of     intensity of these bands was greater in the resistant clones than the susceptible. The 105 kDa band showed an intensity up   to 4.2 times higher in the cultivar Mar&iacute;a Tambe&ntilde;a than the cultivar Revoluci&oacute;n. </font></p> <font size="2" face="verdana">     <p>The results demonstrate differences in the     proteolytic activity and the presence of the 105 kDa band between the clones resistant and susceptible to the leafminer fly,     which suggests that protease inhibitors are important factors in the resistance of these clones to the leafminer fly.</p> </font>     <p>  <font size="3" face="verdana"><b>Key words</b>:</font> <font size="2" face="verdana"><i>Solanum tuberosum</i>. Plant defense. Protease inhibitor. Proteolytic activity.</font></p> <font size="2" face="verdana"> <hr size="1">     <p><b><font size="3">Introducci&oacute;n</font></b></p>     <p>En la costa central de Per&uacute;, la mosca minadora <i>Liriomyza   huidobrensis</i> Blanchard, 1926 es plaga clave del cultivo de la   papa (Herrera 1963; Ch&aacute;vez y Raman 1987; Lizarraga 1990;   Palacios y Raman 1993; Cisneros 1995). Al igual que en otras   partes del mundo, como Argentina, Brasil, Chile, Costa Rica,   Guatemala, M&eacute;xico, Panam&aacute;, Israel, Indonesia y Egipto donde   est&aacute; reportada (CIP 1998), la mosca minadora se ha constituido   en problema central como consecuencia del uso intensivo de   plaguicidas para controlar otras plagas en este cultivo, por lo   que ha desarrollado niveles de resistencia significativos a los   insecticidas m&aacute;s com&uacute;nmente usados (CIP 1998). La plaga   da&ntilde;a exclusivamente el follaje de las plantas: las hembras   adultas pican las hojas para alimentarse y para depositar sus   huevos, las larvas durante su desarrollo realizan minas   serpenteantes en los foliolos, afectando de esta manera la   capacidad fotosint&eacute;tica y el rendimiento (Palacios y Raman 1993). El da&ntilde;o en plantas j&oacute;venes puede ocasionar mortalidad   temprana (Morales et al. 1994). En el Valle de Ca&ntilde;ete, la   principal zona de producci&oacute;n de papa en la Costa Central del   Per&uacute;, se han registrado p&eacute;rdidas del rendimiento entre el 40 y   50 % cuando no se utilizaron m&eacute;todos de control (Ewell et al. 1990; Palacios y Raman 1993).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Entre los factores que favorecen el incremento de las   poblaciones de la mosca minadora en el Per&uacute; destacan el uso   de variedades susceptibles y el excesivo uso de insecticidas   (Palacios y Raman 1993). En la b&uacute;squeda de alternativas para   el manejo de plagas en papa, el Centro Internacional de la Papa (CIP) desarroll&oacute; un programa de mejoramiento para obtener materiales resistentes a las principales plagas del cultivo: polilla de la papa (<i>Phthorimaea operculella</i> Zeller, 1873), mosca minadora (<i>Liriomyza huidobrensis</i> Blanchard, 1926) y gorgojo de los Andes (Premnotrypes spp) (Raman <i>et al</i>. 1994). Para la selecci&oacute;n de plantas resistentes a mosca minadora se desarroll&oacute; un m&eacute;todo de tamizado en campo, el cual, permiti&oacute; identificar doce clones con altos niveles de resistencia a esta plaga y buenas caracter&iacute;sticas agron&oacute;micas (Tenorio <i>et al</i>. 1993). Posteriormente estos clones se evaluaron bajo condiciones de infestaci&oacute;n controlada en laboratorio e invernadero, concluy&eacute;ndose que el principal mecanismo de resistencia era el de antibiosis (Tenorio et al. 1993). Los clones 386768.10 (282LM86B) (actualmente es el cultivar &ldquo;Mar&iacute;a Tambe&ntilde;a&rdquo;), 220LM87B, 386766.43 (136LM86B) y 386767.21 (662LM86B) destacaron por su mayor nivel de resistencia (Tenorio et al. 1995).</p>     <p>Para defenderse de m&uacute;ltiples agresores, las plantas   presentan complejas estrategias, como el uso generalizado de   sustancias qu&iacute;micas (Fraenkel 1959). Estas sustancias pueden   encontrarse en forma constitutiva en los tejidos, como por   ejemplo, los gluc&oacute;sidos de cian&oacute;geno, terpenoides, alcaloides   y sustancias fen&oacute;licas. Otras solo aparecen como respuesta a   un est&iacute;mulo primario por lo que son conocidas como sustancias   inducidas, como por ejemplo las fitoalexinas y prote&iacute;nas de   defensa (Chrispeels y Sadava 1994). Entre las prote&iacute;nas de   defensa se mencionan a los inhibidores de proteasas, prote&iacute;nas   relacionadas con la patog&eacute;nesis y lectinas (Bowles 1990; Dixon   y Harrison 1994; Smirnoff 1998). El factor bi&oacute;tico m&aacute;s com&uacute;n   en la aparici&oacute;n de sustancias inducidas es el estr&eacute;s por herida,   este es el caso del da&ntilde;o producido por las larvas y los adultos   de la mosca minadora sobre las plantas de papa al causar en   las hojas innumerables heridas externas e internas. Se arguye   que el estr&eacute;s por herida desencadena en la planta la activaci&oacute;n   coordinada de sus genes, no solo para la defensa de la planta   sino tambi&eacute;n para la regeneraci&oacute;n del tejido da&ntilde;ado (S&aacute;nchez-   Serrano et al. 1993). En plantas de papa y de tomate, se ha   observado que el da&ntilde;o en el follaje por herida induce en unas   horas la acumulaci&oacute;n de una serie de prote&iacute;nas colectivamente   denominadas Prote&iacute;nas de Respuesta Sist&eacute;mica a la Herida   (PRSHs) (Bergey et al. 1996). Trabajos con plantas   previamente heridas y utilizadas despu&eacute;s como alimento para   insectos han determinado alteraciones del comportamiento en   estos insectos (Hodge et al. 1999). Cabe se&ntilde;alar que desde   hace mucho tiempo los inhibidores de proteasas, dado que   afectan la viabilidad de los insectos, son considerados factores   importantes de resistencia (Broadway et al. 1986; Ryan 1990;   Dymock et al. 1992; Barker et al. 1995). Adem&aacute;s, se han   aislado genes de diferentes fuentes biol&oacute;gicas con la intenci&oacute;n   de introducirlos en plantas para conferirles resistencia (Wolfson   y Murdock 1995).  </p> </font>     <p><font size="2" face="verdana">La inducci&oacute;n de las prote&iacute;nas inhibidoras de proteasas por   efecto de la herida ha sido estudiada m&aacute;s profundamente (Ryan   1990) y se ha propuesto que, en la ruta de se&ntilde;alizaci&oacute;n para   producir estos componentes, la herida activa una fosfolip&oacute;lisis   espec&iacute;fica en la membrana plasm&aacute;tica, liberando al citoplasma   los &aacute;cidos linoleico y linol&eacute;nico, poniendo en marcha la ruta   del &aacute;cido jasm&oacute;nico que ha de conducir a la activaci&oacute;n y s&iacute;ntesis   de dichos inhibidores (Farmer y Ryan 1992). En estudios donde   se han medido los niveles de inhibidores de proteasas en el   tejido de plantas resistentes a insectos, se ha encontrado una   correlaci&oacute;n entre la resistencia, la muerte o disuasi&oacute;n de los   insectos y la presencia de los inhibidores de proteasas   (Broadway et al. 1986; Ryan 1990). Se considera que el mecanismo de acci&oacute;n de estas prote&iacute;nas inhibidoras de   proteasas sobre los insectos se inicia en el intestino, con la   activaci&oacute;n de un sistema de retroalimentaci&oacute;n que provoca la   hipersecreci&oacute;n de enzimas digestivas y la disminuci&oacute;n   consecuente del apetito, produci&eacute;ndose en el tiempo una   p&eacute;rdida de amino&aacute;cidos esenciales que ocasionan finalmente   una deficiencia proteica (Broadway et al. 1986). Se ha   observado que el nivel y la rapidez con que pueden presentarse   los productos inducidos en las plantas, parecen marcar una   diferencia caracter&iacute;stica en la resistencia de las mismas (Bowles   1990). Es decir, cuando se comparan cultivares resistentes y   susceptibles, se observa en los resistentes la r&aacute;pida acumulaci&oacute;n   de diferentes mol&eacute;culas relacionadas con la defensa (Bowles   1990).</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">La finalidad entonces del presente estudio fue identificar     diferencias en el nivel de inhibici&oacute;n de la actividad proteol&iacute;tica     e inhibidores de proteasas entre los clones de papa 220LM87B,     662LM86B, 136LM86B, la variedad Mar&iacute;a Tambe&ntilde;a y la     variedad Revoluci&oacute;n.</font></p> <font size="2" face="verdana">     <p><font size="3"><b>Materiales y M&eacute;todos</b></font></p>     <p><b>Material vegetal</b>. Los clones de papa resistentes a mosca   minadora utilizados fueron 220LM87B, 136LM86B,   662LM86B, y 282LM87B (actualmente el cultivar Mar&iacute;a   Tambe&ntilde;a). El clon susceptible a la plaga fue el cultivar   Revoluci&oacute;n. Todos ellos se desarrollaron en condiciones de   invernadero entre los meses de abril y julio, con un intervalo   de temperatura de 16-22&deg;C. Los tub&eacute;rculos se sembraron en   macetas de pl&aacute;stico de 21 cm de di&aacute;metro con una mezcla de 1:1:2 de arena, tierra y musgo.</p>     <p><b>Extracci&oacute;n de prote&iacute;nas solubles</b></p>     <p><b><i>De las hojas de papa</i></b>. Antes de la extracci&oacute;n, plantas de 20   d&iacute;as de edad se da&ntilde;aron con un estilete hiriendo de tres a cuatro   hojas de la parte inferior media y superior del follaje de la   planta (da&ntilde;o mec&aacute;nico). 24 horas despu&eacute;s, se colectaron, se   fijaron inmediatamente con nitr&oacute;geno l&iacute;quido y se guardaron   a &ndash;20&deg;C en bolsas de pl&aacute;stico. En el laboratorio, estas hojas se   pesaron y luego se molieron con nitr&oacute;geno l&iacute;quido en un   mortero, obteni&eacute;ndose as&iacute; un polvo el cual fue homogenizado   con b&uacute;ffer fosfato (25 mM fosfato de sodio, pH 5,0,   conteniendo 5% glicerol, 10 mM metabisulfito de sodio, y 2   mM &szlig;-mercaptoetanol) en una proporci&oacute;n 1:7 (p/v). El   homogenizado se centrifug&oacute; a 16,000 r.p.m. por 20 minutos y   el sobrenadante se trat&oacute; con acetona fr&iacute;a (1:1 v/v) para   precipitar las prote&iacute;nas. Todo el tratamiento se realiz&oacute; en ba&ntilde;o de hielo. El precipitado de prote&iacute;nas se separ&oacute; por centrifugaci&oacute;n   y se sec&oacute; bajo presi&oacute;n reducida (Speed Vac).</p>     <p><b><i>De las larvas de mosca minadora</i></b>. Se utilizaron larvas de   mosca minadora del tercer estadio que miden en promedio 2,5   mm obtenidas de hojas de lechuga infestadas en campo. Las   larvas se extrajeron cuidadosamente con un estilete y se   almacenaron a &ndash; 20&deg;C en tubos de microcentrifuga de 1,5 ml.   Para la extracci&oacute;n de prote&iacute;nas solubles se maceraron grupos   de 20 larvas con 250 &micro;l de b&uacute;ffer Tris (50 mM, pH 7 a 4&deg;C) en   ba&ntilde;o de hielo, luego el homogenizado se centrifug&oacute; a 4,000   r.p.m. por 2 min y el sobrenadante se us&oacute; inmediatamente en   las pruebas enzim&aacute;ticas. La concentraci&oacute;n de las prote&iacute;nas se   midi&oacute; utilizando alb&uacute;mina bovino (BSA) como prote&iacute;na est&aacute;ndar siguiendo el m&eacute;todo de Bradford (1976).</p>     <p><b>Ensayos Enzim&aacute;ticos</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><i>Actividad proteol&iacute;tica</i></b>. Para determinar la actividad proteol&iacute;tica   de la tripsina sint&eacute;tica y de los extractos de larva se sigui&oacute; el   m&eacute;todo enzim&aacute;tico de Fry et al. (1994) que utiliza gelatina   como substrato de proteasas. Para esto se mezclaron 0,25 ml   de gelatina al 1% (diluido en 50 mM de Tris-HCl, pH 8) y   0,25 ml de una soluci&oacute;n enzim&aacute;tica: tripsina (20 mg/ml) o   extracto de larvas (20 larvas con 250 ml de 50 mM Tris-Cl,   pH 7,0 &ndash; 4 a 5 ug/ul). Posteriormente la mezcla se incub&oacute; a   30&deg;C en tres tiempos: tres, cuatro y cinco horas. Al cabo del   tiempo la reacci&oacute;n se detuvo con 0,75 ml de &aacute;cido   tricloroac&eacute;tico (TCA) al 20%. Se dej&oacute; reposar por 15 min a   temperatura ambiente y se centrifug&oacute; a 10.000 r.p.m. por 5   min. El sobrenadante se centrifug&oacute; nuevamente a la misma   velocidad. La lectura en el espectrofot&oacute;metro se realiz&oacute; a 280   nm y se utiliz&oacute; como blanco la soluci&oacute;n de gelatina combinado   con tripsina, o con extracto de larva, respectivamente, pero   incubados por separado y mezclados justo antes de la fijaci&oacute;n   con TCA. Una unidad de actividad proteol&iacute;tica (U) se defini&oacute;   como el incremento de la absorbancia en 0,01 a 280 nm (Fry   et al. 1994). Estos valores fueron considerados como el 100% de actividad proteol&iacute;tica para los ensayos de inhibici&oacute;n.</p>     <p><b><i>Inhibici&oacute;n de la actividad proteol&iacute;tica</i></b>. Para los ensayos de   inhibici&oacute;n de la actividad proteol&iacute;tica de tripsina y de los   extractos de larva, por efecto de las prote&iacute;nas solubles de hojas   de papa de los diferentes clones, se utiliz&oacute; el m&eacute;todo de Fry et   al. (1994) descrito anteriormente. Previo al ensayo las   soluciones enzim&aacute;ticas se preincubaron con los extractos de   prote&iacute;nas de las hojas de papa (1 mg/ml diluidos en 25 mM de   fosfato de sodio a pH 5) por 15 min a temperatura ambiente. En   el caso de la mezcla de tripsina (20 ug/ml) con las prote&iacute;nas de   hojas de papa, &eacute;sta tuvo una proporci&oacute;n de 1:5 (v/v) y en el caso   de los extractos de larva y prote&iacute;nas de hoja, la proporci&oacute;n fue   de 1:1 (v/v). Una unidad de actividad relativa (UR) se defini&oacute;   como el incremento de la absorbancia en 0,01 a 280 nm de la   mezcla de enzima y prote&iacute;nas de hoja sobre el incremento de la   absorbancia en 0,01 a 280 nm de enzima sola.</p>     <p>Finalmente para comparar la inhibici&oacute;n proteol&iacute;tica de la   tripsina entre los cultivares M. Tambe&ntilde;a y Revoluci&oacute;n se realiz&oacute;   un ensayo utilizando el substrato sint&eacute;tico TAME (Na-p-tosil-   L-arginina-metil-ester) para la determinaci&oacute;n de prote&iacute;nas   semejantes a tripsina seg&uacute;n un m&eacute;todo descrito en el Manual   Whortington (1988) utilizando una concentraci&oacute;n final de 4 ug/ml de tripsina y 10 mM de TAME. Para el c&aacute;lculo de las   unidades de actividad de tripsina se us&oacute; la f&oacute;rmula Umg-1 =   (5,55)(rA<sub>247/min</sub>)(mg<sup>-1</sup> tripsina) (Wortington 1988).  </p>     <p><b>Geles de poliacrilamida (Zimograf&iacute;a)</b>. Para detectar   inhibidores de proteasas se prepararon geles de poliacrilamida   (PAGE) al 8% copolimerizado con gelatina (1 mg/ml) (Hanspal   et al. 1983). Se utiliz&oacute; una unidad de electroforesis vertical   (MINIPROTEAN II, Bio-rad) con espaciadores de 0,75 mm.   Se pesaron 6 mg de prote&iacute;nas de hojas por muestra las cuales se   diluyeron en b&uacute;ffer muestra de electroforesis 2X (0,125 M tris-   Cl, pH 6,8, conteniendo 20% glicerol, 4% de SDS (Lauryl   sulfato), 1% de &szlig;-mercaptoetanol y 0,002% de azul de   bromofenol). Para el revelado los geles se ti&ntilde;eron con una   soluci&oacute;n de azul de Coomassie R-250 (0,01%) disuelto en &aacute;cido   ac&eacute;tico:metanol:TCA:agua (24:24:2:10), y se desti&ntilde;eron con   metanol:&aacute;cido ac&eacute;tico:agua (2:10:2). Simult&aacute;neamente se   corrieron est&aacute;ndares de prote&iacute;nas SDS-PAGE (Fosforilasa b,   97.400; Alb&uacute;mina bovino, 66.000; Alb&uacute;mina de huevo, 45.000;   Anhidrasa Carb&oacute;nica, 29.000, alfa-Lactoalbumina, 14.200), en   otro gel con las mismas condiciones.</p>     <p><b>An&aacute;lisis de geles y c&aacute;lculos</b>. Los geles se fijaron en membranas   de celof&aacute;n utilizando el b&uacute;ffer de decoloraci&oacute;n de electroforesis   como soluci&oacute;n de fijaci&oacute;n. Luego, se colocaron bajo un   densit&oacute;metro (Hoefer) que estuvo conectado a una   computadora PC IBM compatible desde el cual se registraron   las bandas, y se analizaron mediante el programa   GS365W.EXE (Hoefer Software). Las im&aacute;genes con bandas   claras en fondo oscuro se invirtieron. Por otro lado, los datos   obtenidos por los ensayos enzim&aacute;ticos, a partir de tres   repeticiones cada uno, se linearizaron mediante rectas de regresi&oacute;n con el programa Excel (Microsoft Inc.).</p>     <p><font size="3"><b>Resultados y Discusi&oacute;n</b></font></p>     <p> En este trabajo se asumi&oacute; que las plantas responden de forma   similar al ataque del insecto y al da&ntilde;o mec&aacute;nico produciendo   diferentes v&iacute;as para iniciar la defensa (Farmer y Ryan 1992).   Por lo tanto, se presume que algunos genes inducidos por   herida, producen sustancias como los inhibidores de proteasas,   que act&uacute;an en la defensa del hospedero contra el ataque del   insecto.</p>     <p><b>Actividad proteol&iacute;tica de la tripsina y de los extractos de   larvas</b>. La actividad proteol&iacute;tica de la tripsina sobre gelatina fue de 1,8 unidades (U) y de los extractos de larva fue de 0,5 U. Cuando la tripsina se incub&oacute; con los diferentes extractos de papa, la actividad proteol&iacute;tica aument&oacute; en todos los casos produci&eacute;ndose el mayor aumento con el extracto de 136LM86B (4,5 U) y menor con M. Tambe&ntilde;a (2,35 U) (<a href="img/revistas/rcen/v33n2/v33n2a03tab1.gif">Tabla 1</a>). Este   aumento de la actividad enzim&aacute;tica se interpret&oacute; como un   sinergismo proteol&iacute;tico, es decir, los valores son superiores al   valor de la actividad proteol&iacute;tica de la tripsina actuando sola   (1,8 U). La mezcla de prote&iacute;nas obtenidas de hojas   indudablemente contiene muchas enzimas con actividad   endopeptidasas sobre la gelatina, que es un sustrato muy   utilizado para aislar proteasas de diferentes fuentes vegetales   (Santaurius y Ryan 1977; Santarius y Belitz 1978) dado que   los sustratos sint&eacute;ticos son menos sensibles. Se puede notar   que los clones resistentes presentan mayor actividad   proteol&iacute;tica. Giri et al. (1998) por ejemplo, encuentra   diferencias entre dos cultivares de garbanzo resistentes y   susceptibles a Fusarium oxysporum Schltdl. midiendo las   unidades de actividad proteasa. En la interacci&oacute;n con los   pat&oacute;genos es conocida la respuesta hipersensible en la cual se   inducen tempranamente y con rapidez varias enzimas   hidrol&iacute;ticas (Dixon y Harrison 1994). Dado que las larvas de   la mosca minadora producen t&uacute;neles dentro de las hojas, y por   tanto las heridas que ocasiona pueden llegar a ser severas, la   mayor s&iacute;ntesis de endopeptidasas podr&iacute;a estar dirigida a curar   r&aacute;pidamente las heridas producidas (Bowles 1990) o producir   prote&iacute;nas t&oacute;xicas como los inhibidores de prote&iacute;nas (Bergey et al. 1996; Reymond et al. 2000).</p>        <p><b>Inhibici&oacute;n de la actividad proteol&iacute;tica de tripsina y   extractos de larvas</b>. Al calcular la inhibici&oacute;n de la actividad   enzim&aacute;tica de tripsina expresados en unidades relativas, en el   cual los valores m&aacute;s cercanos a cero son considerados como   de menor actividad proteol&iacute;tica o de mayor inhibici&oacute;n   proteol&iacute;tica, se observ&oacute; que Mar&iacute;a Tambe&ntilde;a y el clon   662LM86B tienen mayor inhibici&oacute;n con respecto al cultivar   Revoluci&oacute;n (1,3 UR y 1,7 UR respectivamente), mientras que   el clon 136LM86B fue similar con el cultivar Revoluci&oacute;n   (<a href="img/revistas/rcen/v33n2/v33n2a03tab1.gif">Tabla 1</a>). Dado que el sinergismo proteol&iacute;tico de las hojas y   la tripsina producen niveles elevados de absorbencia en forma   diferente con los resultados de los extractos de larvas, se prefiri&oacute;   utilizar las unidades relativas para hacer una comparaci&oacute;n del   porcentaje de inhibici&oacute;n o reducci&oacute;n de la actividad proteol&iacute;tica (<a href="img/revistas/rcen/v33n2/v33n2a03tab1.gif">Tabla 1</a>). De esta forma es M. Tambe&ntilde;a la que presenta la   mayor inhibici&oacute;n. Los inhibidores de proteasas inducidos por   herida y por ataque de insectos que m&aacute;s se han estudiado son   de la familia serina proteinasa (Ryan 1990; Bowles 1990;   Sanchez-Serrano 1993). En este trabajo las hojas de papa   fueron previamente da&ntilde;adas con estilete y luego fijados con   nitr&oacute;geno l&iacute;quido para extraer las prote&iacute;nas. Se conoce que   por este efecto se sintetizan una serie de prote&iacute;nas denominadas   colectivamente prote&iacute;nas de respuesta sist&eacute;mica a la herida   (Bergey et al. 1996) entre las cuales est&aacute;n los inhibidores de   serina proteinasas. Actualmente se sabe que esta inducci&oacute;n   puede ser modulada sist&eacute;micamente por un p&eacute;ptido de 18   amino&aacute;cidos llamado sistemina (Ryan 1998; Shaller 1999). Al   parecer, M Tambe&ntilde;a contiene muchos de esos inhibidores que contrarrestan la actividad de tripsina (una serina preoteinasa).</p>     <p>La inhibici&oacute;n proteolitica de Mar&iacute;a Tambe&ntilde;a y Revoluci&oacute;n   se corrobor&oacute; en el ensayo realizado con TAME. El ensayo de   tripsina y TAME presenta una actividad de 363,88 unidades   por miligramo, pero cuando la tripsina se combina con las   prote&iacute;nas de hojas de M. Tambe&ntilde;a y Revoluci&oacute;n esta actividad disminuy&oacute; en 93% y 77% respectivamente (<a href="#(tab2)">Tabla 2</a>). En   t&eacute;rminos generales los clones resistentes presentan mayor   inhibici&oacute;n de la actividad proteol&iacute;tica de los extractos de larvas   de mosca minadora y de tripsina en comparaci&oacute;n con el cultivar   susceptible Revoluci&oacute;n. Siendo M. Tambe&ntilde;a la que produce las mayores inhibiciones.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center>     <a name="(tab2)"></a> <font size="2" face="verdana"><img src="img/revistas/rcen/v33n2/v33n2a03tab2.gif"></font> </center></p>     <p><b>Inhibidores de proteasas mediante zimograf&iacute;a</b>. Los geles   de electroforesis para ver actividad de prote&iacute;nas con base en   su funci&oacute;n (zimograf&iacute;a) son t&eacute;cnicas ampliamente utilizadas   para estudiar extractos crudos de diverso origen, como los   inhibidores de proteasas (Hansal 1983; Michaud 1993). Estos   m&eacute;todos se basan en la capacidad de la prote&iacute;na de perder su   actividad cuando se expone a alta concentraci&oacute;n de SDS pero   lo recupera una vez que el detergente es removido de la soluci&oacute;n. En nuestro caso usamos el m&eacute;todo de Hanspal (1983)   donde se encontr&oacute; una banda de aproximadamente 105 KDa   que se expresa en diferentes intensidades entre los clones   resistentes, siendo de menor intensidad en el material   susceptible Revoluci&oacute;n (<a href="#(fig1)">Fig. 1</a>). Otra banda menos definida,   de aproximadamente 63 KDa se muestra tambi&eacute;n en estos geles   (<a href="#(fig2)">Fig. 2</a>). El grado de intensidad de la banda de 105 KDa que es   la de mayor tinci&oacute;n, se midi&oacute; por densitometr&iacute;a registr&aacute;ndose   en cada uno de los genotipos picos mayores que en Revoluci&oacute;n.   En M Tambe&ntilde;a el nivel de expresi&oacute;n es de 4.2 a uno en   comparaci&oacute;n con Revoluci&oacute;n (<a href="#(fig3)">Fig. 3</a>). Es interesante que la   intensidad de la banda de 105 kDa este correlacionada con los   clones de papa resistentes a la mosca minadora. A pesar que   tambi&eacute;n Revoluci&oacute;n presenta la banda de este inhibidor, no   alcanza la mayor producci&oacute;n presentada en los clones resistentes. Estos resultados nos inducen a considerar que la   identificaci&oacute;n de la naturaleza molecular de la banda de 105   KDa para el desarrollo de marcadores bioqu&iacute;micos de   resistencia podr&iacute;a utilizarse para facilitar la identificaci&oacute;n de materiales que expresen esta cualidad.</p>       <p>    <center><a name="(fig1)"></a><img src="img/revistas/rcen/v33n2/v33n2a03fig1.gif"></center></p>       <p>    <center><a name="(fig2)"></a><img src="img/revistas/rcen/v33n2/v33n2a03fig2.gif"></center></p>       <p>    <center><a name="(fig3)"></a><img src="img/revistas/rcen/v33n2/v33n2a03fig3.gif"></center></p>     <p>Se asume que las plantas perciben la depredaci&oacute;n el insecto   en forma similar a como perciben la herida, y por tanto utilizan   las mismas se&ntilde;ales de traducci&oacute;n en cascada, o v&iacute;as similares   para iniciar la respuesta de la defensa (Farmer y Ryan 1992; Hodge et al. 1999), por tanto, se presume que algunos genesinducibles por herida, como los que codifican inhibidores de serina proteinasas, probablemente funcionan en la defensa vegetal contra la depredaci&oacute;n del insecto. Este resultado junto   con la observaci&oacute;n del incremento de mayores proteasas   detectadas en los materiales resistentes, en especial M. tambe&ntilde;a,   podr&iacute;an revelarnos el origen de la resistencia. Sin embargo, no   hay antecedentes que los insectos puedan inducir inhibidores   de proteasas debido a la depredaci&oacute;n (Ryan 1990). Pero si hay   reportes de enzimas como bromelaina (Boller 1986), leucina   aminopeptidasa (Pautot et al. 1993), proteinasas semejantes a   subtilisina (Jorda et al. 1999), carboxipeptidasa (Schaller y   Ryan 1996) y cisteina proteinasa (Linthorst et al. 1993) que se   acumulan en respuesta al ataque de un insecto, del mismo modo   que produce una herida. La inducci&oacute;n de inhibidores de   proteasas y el conjunto de proteasas si es reportado como una   respuesta al da&ntilde;o mec&aacute;nico en plantas (Farmer 1992; Reymond   2000).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3"><b>Conclusiones</b></font></p>     <p>Tomando en conjunto los resultados se puede postular que los   clones de papa resistentes a la mosca minadora, en especial el cultivar Maria Tambe&ntilde;a y el clon 662LM86B sintetizan o   activan en corto tiempo los niveles de sus prote&iacute;nas frente al   da&ntilde;o provocado por el ataque de la mosca minadora en sus   hojas, entre los cuales est&aacute;n los inhibidores de proteasas. Esta   inducci&oacute;n diferencia en t&eacute;rminos generales los clones   resistentes del susceptible al ataque de mosca minadora y podr&iacute;a ser el factor principal de la resistencia.</p>     <p><font size="3"><b>Literatura Citada</b></font></p>     <!-- ref --><p>BARKER, A. M.; WRATTEN, S.D.; EDWARDS, P. J. 1995. Woundinduced   changes in tomato leaves and their effects on the feeding patterns of larval Lepidoptera. Oecologia 101: 251-257.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000056&pid=S0120-0488200700020000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  BERGEY, D. R.; HOWE, G. A.; RYAN, C. A. 1996. Polypeptide   signaling for plant defensive genes exhibits analogies to defense   signaling in animals. Proceedings National Academy of Sciences   (USA). 93: 12053-12058.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000057&pid=S0120-0488200700020000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  BOLLER, T. 1986. Roles of proteolytic enzymes in interactions of   plants with other organism. Vol, 2, M.J. Dalling, ed (Boca Raton,   FL; CRC Press), pp 67-95. En: Plant Proteolytic Enzymes.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000058&pid=S0120-0488200700020000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  BOWLES, D. J. 1990. Defense-Related Proteins in Higher Plants.   Annual Review of Biochemistry 59: 873-907.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0120-0488200700020000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  BRADFORD, M. M. 1976. A rapid and sensitive method for the   quantification of microgram quantities of protein using the   principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry 72: 248-   254.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000060&pid=S0120-0488200700020000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  BROADWAY, R. M.; DUFFEY, S. S.; PEARCE, G.; RYAN, C. A.   1986. Plant Proteinase Inhibitors: A defense against herbivorous   insects?. Entomologia Experimentalis et Applicata 41: 33-38.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0120-0488200700020000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  CIP. 1998. Biotechnology-Assisted breeding to reduce pesticide sse   in potatoes. 1993-1997 (GLO-91-016). Final Report. International   Potato Center and United Nations Development Program Division   of Global and Interregional Projects. Lima, Per&uacute;. 48 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S0120-0488200700020000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  CISNEROS, F. H. 1995. Control de Plagas Agr&iacute;colas. AGLIS   Electronics. Lima, Per&uacute;. 313 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0120-0488200700020000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  CHAVEZ, G. L.; RAMAN, K. V. 1987. Evaluation of trapping and   trap types to reduce damage to potatoes by the leafminer,   <i>Liriomyza huidobrensis</i> (Diptera, Agromyzidae). Insect Science   and its Application 6: 265-270.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0120-0488200700020000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  CHRISPEELS, M. J.; SADAVA, D.E. 1994. Plants, genes and   agriculture. Jones and Bartlett Publishers Inc. Boston, USA. 562   p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0120-0488200700020000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  DIXON, R. A.; HARRISON, M. J. 1994. Early Events in the   Activation of Plant Defense Responses. Annual Review of   Phytopathology 32: 479-501.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0120-0488200700020000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  DYMOCK, J. J.; LAING, W. A.; SHAW, B. D.; GATEHOUSE, A.   M. R.; CHRISTELLER, J. T. 1992. Behavioral and physiological   responses of grass grub larvae (<i>Costelytra zealandica</i>) feeding   on protease inhibitors. New Zealand Journal of Zoology 19: 123- 131.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0120-0488200700020000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>EWELL, P. T.; FANO, H.; RAMAN, K. V.; ALCAZAR, J.;   PALACIOS, M.; CARHUAMACA, J. 1990. Farmer Management   of Potato Insect Pest in Peru. Food Systems Research Series No. 6. International Potato Center (CIP). Lima, Per&uacute;. 77 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0120-0488200700020000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  FARMER, E. E.; RYAN, C. A. 1992. Octadecanoid precursors of   jasmonic acid active the synthesis of wound-inducible proteinase   inhibitors. The Plant Cell 4: 129-134.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-0488200700020000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  FRAENKEL, G. 1959. The raison d'&ecirc;tre of secondary plant   substances. Science 129: 1466-1470.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-0488200700020000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  FRY, S. M.; HUANG, J. S.; MILHOLLAND, R. D. 1994. Isolation   and preliminary characterization of extracellular protease   produced by strains of <i>Xylella fastidiosa</i> from grapevines.   Phytopathology 84: 357-363.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-0488200700020000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  HANSPAL, J. S.; BUSHELL, G. R.; GHOSH, P. 1983. Detection of   Protease Inhibitors Using Substrate-Containing Sodium Dodecyl   Sulfate-Polyacrylamide Gel Electrophoresis. Analytical   Biochemistry 132: 288-293.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-0488200700020000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  HERRERA, A. J. 1963. Problemas insectiles del cultivo de la papa   en el Valle de Ca&ntilde;ete. Revista Peruana de Entomolog&iacute;a 6 (1): 1-   9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-0488200700020000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  HODGE, S.; WRATTEN, S.; SMIYH, J.; THOMAS, M.;   FRAMPTON, C. 1999. The role of leaf wounding and epigeal   predator on caterpillar damage to tomato plants. Annals of Applied   Biology 134: 137-141.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-0488200700020000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  JORDA, L.; COEGO, A.; CONEJERO, V.; VERA, P. 1999. A   genomic cluster containing four differentially regulated subtilisinlike   processing protease genes is in tomato plants. Journal of   Biological Chemistry 274: 2360-2365.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-0488200700020000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  LINTHORST, H. J. M., VAN DER DOES, C. BREDERODE, F. T.;   BOL, J. F. 1993. Circadian expression and induction by wounding   of tobacco genes for cysteine proteinase. Plant Molecular Biology   21: 685-694.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0120-0488200700020000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  LIZARRAGA, A. D. 1990. Biolog&iacute;a de la Mosca Minadora <i>Liriomyza   huidobrensis</i>, Blanchard (Diptera, Agromyzidae). Revista   Latinoamericana de la Papa 3: 30-40.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-0488200700020000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  METHA, R. A.; WARMBART, R. D. MATTO, A. K. 1996. Tomato   fruit carboxypeptidase: Properties, induction upon wounding, and   immunocytochemical localization. Plant Physiology 110: 883-   892.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-0488200700020000300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  MICHAUD, D.; FAYE, L.; YELLE, S. 1993. Electrophoretic analysis   of plant cysteine and serine proteinases using gelatin-containing   polyacrylamide gels and class-specific proteinase inhibitors.   Electrophoresis 14: 94-98.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-0488200700020000300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  MORALES, R. A.; ATENCIO, F. A.; LARA, J. A.; MU&Ntilde;OZ, J. A.   1994. La mosquita minadora (Liriomyza spp. ) en Panam&aacute;. Volcan,   Chiriqui (Panam&aacute;). Programa Regional Cooperativo de Papa   (PRECODEPA) Instituto de Investigaci&oacute;n Agropecuaria de   Panam&aacute; (IDIAP). Monograf&iacute;a No. 1. Panam&aacute;. 21 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-0488200700020000300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  PALACIOS, M.; RAMAN, K. V. 1993. Control integrado de la mosca   minadora <i>Liriomyza huidobrensis</i> Blanchard. Memorias. Taller   de manejo Integrado de Plagas. p. 48-55. Balcarce.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-0488200700020000300026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  PAUTOT, V.; HOLZER, F. M. REISCH, B., WAILLING, L. L. 1993.   Leucine aminopeptidase: An inducible component of the defense   response in <i>Lycopersicon esculetum</i> (tomato). Proceedings of the   National Academy of Sciences USA 90: 9906-9910.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-0488200700020000300027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  RAMAN, K. V.; GOLMIRZAIE, A. M.; PALACIOS, M.; TENORIO,   J. 1994. Inheritance of Resistance to Insects and Mites. pp. 447-   463. En: Brashaw, J. E. and Mackay G. R. (eds.). Potato Genetics.   CAB International. Wallingford, UK. 552 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-0488200700020000300028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  REYMOND, P.; WEBER, H., DAMOND, M.; FARMER, E. 2000.   Differential gene expression in response to mechanical wounding   and insect feeding in Arabidopsis. The plant Cell 12: 707-719.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-0488200700020000300029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  RYAN, C. A. 1990. Protease inhibitors in plants: genes for improving   defenses against insects and pathogens. Annual Review of   Phytopathology 28: 425-449.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-0488200700020000300030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  SANCHEZ-SERRANO, J. J.; ANATI, S.; DAMMANN, C.; ENETH,   M.; HERBERS, K.; HILDMAN, T.; LORORTH, R.; PRATT, S.;   WILLNITZRE, L. 1993. Proteinase Inhibitors in the potato   response to wounding, pp. 157-173. En: Chet, I. (ed.).   Biotechnology in plant disease control. Wiley-Liss. New York,   USA.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-0488200700020000300031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  SANTARIUS K.; RYAN, C. 1977. Radial diffusion as a sensitive   method for screening endopeptidase activity in plant extracts.   Analytical Biochemistry 77: 1-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-0488200700020000300032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  SANTARIUS K.: BELITZ, H. D. 1978. Proteinase activity in potato   plants. Planta 141: 145-153.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-0488200700020000300033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  SCHALLER, A. RYAN, C. A. 1996. Molecular cloning of a tomato   leaf cDNA encoding an aspartate protease, a systemic wound   response protein. Plant Molecular Biology 31: 1073-1077.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-0488200700020000300034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  SMIRNOFF, N. 1998. Plant resistance to environmental stress.   Current Opinions in Biotechnology 9: 214-219&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-0488200700020000300035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  TENORIO, J.; PALACIOS, M.; GOLMIRZAIE, A. M.; CISNEROS,   F.; ORTIZ, O. 1993. Evaluaci&oacute;n preliminar de clones resistentes   a <i>Liriomyza huidobrensis</i> en el Valle del Tambo, Arequipa.   Res&uacute;menes. XXXV Convenci&oacute;n Nacional de Entomolog&iacute;a, p.18.   Arequipa, Per&uacute;.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-0488200700020000300036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> TENORIO, J.; PALACIOS, M.; CA&Ntilde;EDO, V.; GOLMIRZAIE, A.M.; VELARDE, H.    1995. &quot;Mar&iacute;a Tambe&ntilde;a-INIA&quot; una variedad resistente a    mosca minadora <i>Liriomyza huidobrensis</i>. Res&uacute;menes. XXXVIII Convenci&oacute;n    Nacional de Entomolog&iacute;a, p.15. Chincha, Per&uacute;.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-0488200700020000300037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  WOLFSON, J. L.; MURDOCK, L. L. 1995. Potential use of protease   inhibitor for host plant resistance: A test case. Environmental   Entomology 24: 52-57.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-0488200700020000300038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  WORTHINGTON, C. C. 1988. Manual Worthington. Worthington   Biochemical Corporation. New Jersey, USA. 346 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-0488200700020000300039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p>Recibido: 13-jun-2006 - Aceptado: 9-ago-2007</p> </font>      ]]></body><back>
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