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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[EXTRACCIÓN DE PLAGUICIDAS EN SUELO EMPLEANDO DIÓXIDO DE CARBONO SUPERCRÍTICO-COSOLVENTES]]></article-title>
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<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[EXTRACÇÃO DE PRAGUICIDAS EM SOLO UTILIZANDO DIÓXIDO DE CARBONO SUPERCRITICA- CO-SOLVENTE]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In this study, three organic solvents (ethyl acetate, methanol and acetone) were used as cosolvent in supercritical fluid extraction (SFE) of a mixture of pesticides with different physical and chemical properties present in soil. These pesticides were determined by gas chromatography with electronic microcapture detector (µECD) and nitrogen-phosphorus detector (NPD), coupled in parallel. The extractions were performed on spiked soil samples using supercritical carbon dioxide (CO2SC) as the extracting phase to 35 °C and 14 MPa, using 10 mL of each cosolvent and it was found that methanol offers the greatest efficiency in the extraction process obtaining recovery values between 51.24 and 123.50%.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[No estudo se avaliou três solventes orgânicos (acetato de etila, metanol e acetona), como cosolvente em a extração com fluido supercrítico (EFS) de uma mixtura de praguicidas com diferentes propiedades física e química (organoclorados, or-ganofosforados, organonitrogenados e piretróides) presentes no solo, determinadas por cromatografia gaseosa com in-jecção pulsed splitless e detecção simultânea por µECD e nitrogênio-fósforo (NPD) acoplados em paralelo, as extrações foram realizadas em amostras de solo fortificadas, usando dióxido de carbono (CO2), como a fase de extração a 35 °C 14 MPa, com 10 mL de cada solvente e constatamos que o metanol oferece a maior eficiência da remoção de todos os pragui-cidas e obter recuperação valores entre 51,24 e 123,50%.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p align="center"><font size="4"><b>EXTRACCI&Oacute;N DE PLAGUICIDAS EN SUELO EMPLEANDO   DI&Oacute;XIDO DE CARBONO SUPERCR&Iacute;TICO-COSOLVENTES</b></font></p>     <p align="center"><b><font size="3">EXTRACTION OF PESTICIDES IN SOIL USING   SUPERCRITICAL CARBON DIOXIDE -CO-SOLVENTS</font></b></p>     <p align="center"><font size="3"><b>EXTRAC&Ccedil;&Atilde;O DE PRAGUICIDAS EM SOLO UTILIZANDO   DI&Oacute;XIDO DE CARBONO SUPERCRITICA- CO-SOLVENTE</b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p><i>Jos&eacute; R. Forero, Henry I. Castro, Jairo A. Guerrero<sup>1 </sup></i></p>     <p>1 Departamento de Qu&iacute;mica, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de   Colombia, sede Bogot&aacute;, Bogot&aacute;, Colombia. <a href="mailto:jaguerrerod@unal.edu.co">jaguerrerod@unal.edu.co</a></p>     <p>Recibido: 18/09/09 - Aceptado: 15/12/09</p> <hr>     <p><b>RESUMEN</b></p>     <p>En este estudio se evalu&oacute; la eficiencia de tres solventes org&aacute;nicos (acetato   de etilo, metanol y acetona) empleados como cosolventes en la extracci&oacute;n con   fluidos supercr&iacute;ticos (EFS) de una mezcla de plaguicidas con diferentes   caracter&iacute;sticas fisicoqu&iacute;micas. Los an&aacute;lisis se realizaron por medio de   cromatograf&iacute;a de gases con detecci&oacute;n simult&aacute;nea por microcaptura electr&oacute;nica   (&micro;ECD) y nitr&oacute;geno-f&oacute;sforo (NPD) acoplados en paralelo. Se hicieron extracciones   a muestras de suelo fortificadas con los plaguicidas empleando di&oacute;xido de   carbono supercr&iacute;tico (CO<sub>2</sub>SC) como fase extractante a 35 &deg;C y 14 MPa   adicionando 10 mL de cada cosolvente. Se encontr&oacute; que el metanol ofrece la mayor   eficiencia en el proceso de extracci&oacute;n obteniendo valores de recuperaci&oacute;n entre   51,24 y 123,50%.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Palabras clave: </b>plaguicidas, suelo, extracci&oacute;n, cosolventes, fluidos   supercr&iacute;ticos.</p> <hr>     <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p>In this study, three organic solvents (ethyl acetate, methanol and acetone)   were used as cosolvent in supercritical fluid extraction (SFE) of a mixture of   pesticides with different physical and chemical properties present in soil.   These pesticides were determined by gas chromatography with electronic   microcapture detector (&micro;ECD) and nitrogen-phosphorus detector (NPD), coupled in   parallel. The extractions were performed on spiked soil samples using   supercritical carbon dioxide (CO<sub>2</sub>SC) as the extracting phase to 35 &deg;C   and 14 MPa, using 10 mL of each cosolvent and it was found that methanol offers   the greatest efficiency in the extraction process obtaining recovery values   between 51.24 and 123.50%.</p>     <p><b>Key words: </b>pesticides, soil, extraction, cosolvent, supercritical   fluid.</p> <hr>     <p><b>RESUMO</b></p>     <p>No estudo se avaliou tr&ecirc;s solventes org&acirc;nicos (acetato de etila, metanol e   acetona), como cosolvente em a extra&ccedil;&atilde;o com fluido supercr&iacute;tico (EFS) de uma   mixtura de praguicidas com diferentes propiedades f&iacute;sica e qu&iacute;mica   (organoclorados, or-ganofosforados, organonitrogenados e piretr&oacute;ides) presentes   no solo, determinadas por cromatografia gaseosa com in-jec&ccedil;&atilde;o pulsed splitless e   detec&ccedil;&atilde;o simult&acirc;nea por &micro;<i>ECD </i>e nitrog&ecirc;nio-f&oacute;sforo (NPD) acoplados em   paralelo, as extra&ccedil;&otilde;es foram realizadas em amostras de solo fortificadas, usando   di&oacute;xido de carbono (CO<sub>2</sub>), como a fase de extra&ccedil;&atilde;o a 35 &deg;C 14 MPa, com   10 mL de cada solvente e constatamos que o metanol oferece a maior efici&ecirc;ncia da   remo&ccedil;&atilde;o de todos os pragui-cidas e obter recupera&ccedil;&atilde;o valores entre 51,24 e   123,50%.</p>     <p><b>Palavras-chave: </b>praguicidas, solo, extra&ccedil;&atilde;o, cosolvente.</p> <hr>     <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>     <p>El suelo es un cuerpo din&aacute;mico natural y complejo que ocupa gran parte de la   superficie terrestre; se encuentra compuesto principalmente por materia   org&aacute;nica, minerales y organismos, y sirve de sustrato para el crecimiento de las   plantas. Las caracter&iacute;sticas del suelo var&iacute;an constantemente en funci&oacute;n del   clima, el material parental, la topograf&iacute;a, los organismos vivos y el manejo que   se le d&eacute; en los cultivos.</p>     <p>Dado que el suelo es la base de la vida vegetal y animal, es importante   estudiar la presencia en el suelo de agentes qu&iacute;micos ex&oacute;genos tales como   fertilizantes, plaguicidas, coadyuvantes, entre otros (1, 2). La presencia de   plaguicidas en el suelo se puede dar por distintas causas teniendo en cuenta que   este recibe la mayor parte de los plaguicidas que se emplean en la protecci&oacute;n de   cultivos, llegando a &eacute;l por distintas v&iacute;as como tratamientos directos,   tratamientos a&eacute;reos o por residuos vegetales presentes despu&eacute;s de la cosecha.   Debido a lo anterior surge la necesidad de desarrollar e implementar   metodolog&iacute;as confiables, r&aacute;pidas y de bajo impacto ambiental para el an&aacute;lisis de   residuos de plaguicidas presentes en el suelo (1).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Dado que el suelo es una matriz compleja y variable, una de las etapas de   mayor relevancia en el proceso de an&aacute;lisis de residuos de plaguicidas es el tipo   de extracci&oacute;n empleado, ya que esta es una de las etapas que m&aacute;s influye sobre   los resultados obtenidos, toda vez que recibe el efecto de las caracter&iacute;sticas   propias del suelo, tales como contenido de materia org&aacute;nica, textura, humedad y   pH, y otros factores independientes del suelo, como el tiempo transcurrido desde   la aplicaci&oacute;n y las propiedades intr&iacute;nsecas del plaguicida (1, 3-5).</p>     <p>Actualmente, para efectos del an&aacute;lisis de plaguicidas en suelos, existe una   gran variedad de m&eacute;todos de extracci&oacute;n que incluyen tanto el uso de solventes   como el empleo de t&eacute;cnicas novedosas, como la microextracci&oacute;n en fase s&oacute;lida.   Cada uno de estos procedimientos tiene ventajas y desventajas, varias de ellas   relacionadas con costos, rapidez, selectividad e impacto ambiental, etc.   (6-9).</p>     <p>La extracci&oacute;n con fluidos supercr&iacute;ticos (EFS) comenz&oacute; a emplearse en la   d&eacute;cada de 1980, con el prop&oacute;sito de analizar residuos de plaguicidas presentes   en suelos, aprovechando algunas de las propiedades que presentan estos fluidos,   tales como poder de solvataci&oacute;n, alta difusividad, baja viscosidad y tensi&oacute;n   superficial nula (10). En este sentido, el di&oacute;xido de carbono supercr&iacute;tico   (CO<sub>2</sub> SC) es uno de los solventes m&aacute;s usados en la EFS debido a que   posee caracter&iacute;sticas consideradas ideales: baja toxicidad, baja inflamabilidad,   condiciones cr&iacute;ticas bajas (7,38 MPay 31 &deg;C), entre otras (8, 11, 12); sin   embargo, el uso de CO<sub>2</sub> SC puro en la extracci&oacute;n de residuos de   plaguicidas es limitado debido a su baja polaridad. No obstante, distintos   investigadores (5, 13-15) han evaluado el efecto de la adici&oacute;n de peque&ntilde;as   cantidades de solventes org&aacute;nicos, empleados como modificadores, en la   extracci&oacute;n de numerosos compuestos presentes en diferentes matrices. En este   trabajo se evalu&oacute; la eficiencia de tres cosolventes, acetato de etilo (AcOEt),   acetona (Me<sub>2</sub>CO) y metanol (MeOH) en la extracci&oacute;n de plaguicidas en   suelo empleando CO<sub>2</sub> SC.</p>     <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></p>     <p><b>Muestra y preparaci&oacute;n de suelo blanco</b></p>     <p>La muestra de suelo blanco, libre de plaguicidas, se tom&oacute; del horizonte   superficial a una profundidad de 0-20 cm, en las inmediaciones de la Universidad   Nacional de Colombia, sede Bogot&aacute;, el cual no tiene historia de aplicaci&oacute;n de   plaguicidas, se sec&oacute; a temperatura ambiente, se eliminaron ramas, hojas y   piedras y se tamiz&oacute; por una malla No. 10 (2 mm U.S. Standard Sieve Series). El   suelo fue caracterizado como un suelo franco arcilloso (20,88% arena, 46,88%   arcilla y 32,24% limo) con un bajo contenido de materia org&aacute;nica (3,24%), con   una humedad de 4,04% y un pH en suelo saturado de 5,29.</p>     <p><b>Materiales de referencia, reactivos y soluciones</b></p>     <p>Los est&aacute;ndares de plaguicidas empleados en este trabajo se obtuvieron del Dr.   Ehrenstorfer GmbH (Augsburg, Alemania), cada uno con una pureza mayor al 95%.   Las disoluciones madre se prepararon a una concentraci&oacute;n aproximada a 500 &micro;g/mL   en acetato de etilo y se almacenaron en frascos &aacute;mbar a -20&deg;C. La mezcla de   plaguicidas se prepar&oacute; en acetato de etilo, tomando diferentes vol&uacute;menes de cada   una de las soluciones madre hasta obtener un rango de concentraciones entre 1,6   &micro;g/mL y 98,3 &micro;g/mL. La mezcla se almacen&oacute; en frasco &aacute;mbar a -20 &deg;C. Los   solventes empleados en este estudio fueron acetato de etilo, acetona (grado   an&aacute;lisis de residuos) y metanol (grado HPLC) proporcionados por J. T.   Baker&reg;(M&eacute;xico D.F., M&eacute;xico) Los gases empleados en la extracci&oacute;n y en la   determinaci&oacute;n cromatogr&aacute;fica fueron CO<sub>2</sub> anaerobio, nitr&oacute;geno   (N<sub>2</sub>) grado 5,0, hidr&oacute;geno (H<sub>2</sub>) grado 4,5 y aire sint&eacute;tico   seco; estos fueron proporcionados por Criogas Colombia (Grupo Indura).</p>     <p><b>Instrumentos, equipos y procedimientos</b></p>     <p><i>Obtenci&oacute;n de extractos</i></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las extracciones se llevaron a cabo en un equipo de extracci&oacute;n supercr&iacute;tica   dise&ntilde;ado y ensamblado en el Laboratorio de Alta Presi&oacute;n del Departamento de   Qu&iacute;mi</p>     <p>ca de la Universidad Nacional de Colombia (<a href="#f1">Figura 1</a>). Este   equipo se encuentra configurado con reservorio de CO<sub>2</sub>, una bomba   neum&aacute;tica (Haskel&reg; modelo AGT-7/30, CA. USA), un resevorio-saturador de   cosolvente de 150 mL, una celda de extracci&oacute;n de 40 mL, un separador de 50 mL,   un controlador de temperatura (WATLOW serie SD 31, MI, USA, &plusmn; 1 &deg;C) con   termocupla tipo K conectada a una resistencia de 300 watts que rodea la celda de   extracci&oacute;n y v&aacute;lvulas de paso (WHITEY series SS-1VS4 y SS-1VR4, OH, USA) y   man&oacute;metros an&aacute;logos (BOURDON HAENNI, Vend&oacute;me, Cedex, France, 700 bar). Dicho   equipo permite hacer extracciones con CO<sub>2</sub> supercr&iacute;tico adicionado con   cosolventes en modo est&aacute;tico.</p>     <p align="center"><a name="f1"><img src="img/revistas/rcq/v38n3/v38n3a07-1.jpg"></a></p>     <p>Las extracciones con cada cosolvente se dividieron en dos grupos,   extracciones de blanco de matriz (sin plaguicidas, realizadas para identificar   posibles interferentes) y extracciones de muestras blanco de suelo fortificadas   con los plaguicidas. En cada caso se emplearon porciones de 10 g de suelo   previamente tamizado. Las muestras de suelo fueron fortificadas a las   concentraciones indicadas en la <a href="#t1">Tabla 1</a> (concentraci&oacute;n final   de plaguicida en el suelo en mg/kg) empleando 512 &micro;Ldela mezcla de plaguicidas.   Dicha fortificaci&oacute;n se realiz&oacute; dividiendo la muestra de suelo en 6 partes; en el   centro de cada una se agreg&oacute;, gota a gota, la mezcla de plaguicidas y   posteriormente se homogeneiz&oacute; con una esp&aacute;tula; una vez fortificada se dej&oacute;   evaporar el solvente al aire durante 30 minutos.</p>     <p align="center"><a name="t1"><img src="img/revistas/rcq/v38n3/v38n3a07-2.jpg"></a></p>     <p>Las condiciones de extracci&oacute;n empleadas para el blanco de matriz y muestras   fortificadas fueron a 35 &deg;C, 14 MPa (en modo est&aacute;tico). En cada extracci&oacute;n se   emple&oacute; 10 mL de cada uno de los cosolventes (AcOEt, Me<sub>2</sub>CO y MeOH),   los cuales fueron ubicados en el reservorio-saturador. El CO<sub>2</sub> fue   burbujeado a trav&eacute;s de cada cosolvente con el fin de saturarlo previo a su paso   hacia la celda de extracci&oacute;n. Cada muestra fue sometida a cuatro etapas de   extracci&oacute;n cada una de quince minutos para un total de una hora de extracci&oacute;n;   en cada etapa se recolect&oacute; el extracto obtenido, y finalmente se unieron para   obtener el extracto final; este se almacen&oacute; a -20 <sup>o</sup>Chastasu posterior   an&aacute;lisis. El n&uacute;mero de r&eacute;plicas de extracci&oacute;n fueron dos para los blancos de   matriz y tres para las muestras fortificadas.</p>     <p><i>An&aacute;lisis de extractos</i></p>     <p>Los extractos obtenidos se concentraron a sequedad, cada uno por separado, se   reconstituyeron en AcOEt y se analizaron en un cromat&oacute;grafo de gases HP6890   plus, equipado con un inyector autom&aacute;tico 7683 Agilent Technologies (Palo Alto,   CA., USA) y con control electr&oacute;nico de presi&oacute;n, dotado con un inyector   (divisi&oacute;n/sin divisi&oacute;n) conectado a un divisor de flujo (Y) de borosilicato   acoplado a una columna capilar HP-5 (30 m, 0,32 mm d.i., 0,25 &micro;m), acoplada a un   detector de microcaptura electr&oacute;nica ,&micro;-ECD<sup>63 </sup>Ni y con una columna   capilar HP-50 (30 m, 0,32 mm d.i., 0,25 &micro;m), acoplada en paralelo a un detector   de nitr&oacute;geno-fosforo NPD. Las condiciones cromatogr&aacute;ficas empleadas en el   an&aacute;lisis de los plaguicidas fueron las siguientes: volumen de inyecci&oacute;n 2 ,&micro;L en   modo sin divisi&oacute;n, con un pulso de presi&oacute;n de 65 psi durante 0,8 min; tiempo de   purga de 0,6 min, flujo de purga 40 mL min<sup>-1</sup> y temperatura de   inyector de 256 &deg;C. El gas portador fue nitr&oacute;geno. El programa de temperatura en   el horno fue de 52 &deg;C (0 min), a 100 &deg;C, a una velocidad de 4 &deg;C   min<sup>-1</sup>; posteriormente la temperatura se increment&oacute; hasta 110&deg;Ca2&deg;C   min<sup>-1</sup>; a continuaci&oacute;n se llev&oacute; hasta 130 &deg;C, a una velocidad de 20   &deg;Cmin<sup>-1</sup>, luego hasta 195 &deg;Ca4 &deg;Cmin<sup>-1 </sup>y finalmente se   lleg&oacute; a 280 &deg;C a una velocidad de 5 &deg;C min<sup>-1</sup>. El tiempo total del   an&aacute;lisis fue de 64,25 min. La temperatura del detector ,&micro;-ECD fue 310 &deg;C, con un   flujo de gas auxiliar de 10 mL min<sup>-1</sup> (N<sub>2</sub>). El detector NPD   se trabaj&oacute; a 330 &deg;C con flujos de gas auxiliar de 10 mL   min<sup>-1</sup>,H<sub>2</sub> de3mLmin<sup>-1</sup> y aire de 60 mL   min<sup>-1</sup>.</p>     <p><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></p>     <p><b>Evaluaci&oacute;n de la selectividad y especificidad de la metodolog&iacute;a</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En las <a href="#f2">Figuras 2a</a> y <a href="#f2">2c</a> se muestran los   resultados obtenidos al analizar el extracto del blanco de matriz utilizando   MeOH como cosolvente. Es evidente que para ninguno de los detectores empleados   se obtuvieron se&ntilde;ales significativas de los plaguicidas objeto de estudio, por   lo cual se puede afirmar que el m&eacute;todo utilizado es espec&iacute;fico. Por otra parte,   en las <a href="#f2">Figuras 2b</a> y <a href="#f2">2d</a> se encuentran los   cromatogramas de una muestra fortificada a las concentraciones indicadas en la <a href="#t1">Tabla 1</a> y extra&iacute;da con MeOH como cosolvente. Para evaluar la   selectividad del m&eacute;todo se determin&oacute; la resoluci&oacute;n entre las se&ntilde;ales   cromatogr&aacute;ficas obtenidas para cada plaguicida, encontr&aacute;ndose valores cercanos o   superiores a 1,5; de otra parte, se comprob&oacute; que las impurezas de la matriz no   interfieren con los analitos de inter&eacute;s. Por tanto, se puede concluir que el   m&eacute;todo de an&aacute;lisis result&oacute; ser adecuado para realizar los estudios de   recuperaci&oacute;n con el uso de AcOEt, Me<sub>2</sub>CO y MeOH como cosolventes.</p>     <p align="center"><a name="f2"><img src="img/revistas/rcq/v38n3/v38n3a07-3.jpg"></a></p>     <p><b>Influencia de los cosolventes en la extracci&oacute;n</b></p>     <p>La evaluaci&oacute;n de los resultados de cada uno de los cosolventes se realiz&oacute;   determinando los porcentajes de recuperaci&oacute;n para cada uno de los plaguicidas   bajo ensayo. La <a href="#f3">Figura 3a</a> presenta un gr&aacute;fico comparativo de   los resultados encontrados con Me<sub>2</sub>CO y MeOH. En esta figura se puede   observar que ciertos compuestos como heptenofos, acefato, metamidofos,   triflumuron y monocrotofos no fueron extra&iacute;dos con Me2CO, mientras que con MeOH   se obtuvieron recuperaciones superiores al 70%; este hecho puede atribuirse a la   mayor afinidad que tiene el MeOH con estas sustancias, pues cada una de ellas se   caracteriza por presentar polaridades relativamente altas. Por otro lado, estos   resultados concuerdan con diferentes estudios en los que se emplea MeOH en el   proceso de extracci&oacute;n de mol&eacute;culas de alta polaridad (12, 15).</p>     <p align="center"><a name="f3"><img src="img/revistas/rcq/v38n3/v38n3a07-4.jpg"></a></p>     <p>En la <a href="#f3">Figura 3a</a> tambi&eacute;n se aprecia que compuestos como   dimetoato, metalaxil, fenamifos, tebuconazol y difenoconazol presentan   recuperaciones mayores al usar MeOH con respecto a Me<sub>2</sub>CO; esto pone   en evidencia que el empleo de MeOH como cosolvente mejor&oacute; la eficiencia en la   extracci&oacute;n. Este incremento en la tasa de recuperaci&oacute;n se puede atribuir   principalmente a la interacci&oacute;n que tuvo cada plaguicida con el solvente, pues   como se observa, los compuestos que presentan estructuras similares, como el   difenoconazol y el tebuconazol, manifestaron mejoras en sus porcentajes de   recuperaci&oacute;n en la misma proporci&oacute;n (12).</p>     <p>Por otro lado, en la <a href="#f3">Figura 3a</a> se observa que los   porcentajes de recuperaci&oacute;n obtenidos para los plaguicidas piretroides y   organoclorados son muy similares empleando los dos cosolventes, e inclusive la   dispersi&oacute;n de los resultados se encuentra dentro del mismo rango, a excepci&oacute;n de   permetrina y cipermetrina. Adem&aacute;s se ve que con metanol como cosolvente, los   promedios de los porcentajes de recuperaci&oacute;n son mayores en todos los casos, y   este es un hecho que indica que la eficiencia en la extracci&oacute;n no s&oacute;lo es   funci&oacute;n de la polaridad de las mol&eacute;culas sino tambi&eacute;n de muchos otros factores   (12).</p>     <p>En la <a href="#f3">Figura 3b</a>, se encuentran los porcentajes de   recuperaci&oacute;n de los plaguicidas restantes, y se puede observar que en general   los resultados hallados son similares para MeOH y Me<sub>2</sub>CO. Por otra   parte, en las <a href="#f3">Figuras 3a</a> y <a href="#f3">3b</a> se evidencia   que al emplear MeOH se presentan los mayores porcentajes de recuperaci&oacute;n con los   coeficientes de variaci&oacute;n m&aacute;s bajos (barras de error), para todos los   plaguicidas hecho que reafirma que este cosolvente ofrece los mejores resultados   en el proceso de extracci&oacute;n.</p>     <p>En cuanto a los resultados establecidos al usar AcOEt como cosolvente, se   encontr&oacute; que de los 32 plaguicidas analizados, 19 presentaron porcentajes de   recuperaci&oacute;n inferiores al 40%, mientras que los compuestos restantes arrojaron   coeficientes de variaci&oacute;n superiores al 30%. A partir de estos hechos se   concluye que el empleo del AcOEt como cosolvente no resulta conveniente en las   condiciones de trabajo empleadas para el presente estudio. La baja eficiencia en   la extracci&oacute;n de plaguicidas encontrada con AcOEt se puede atribuir a diferentes   factores como (i) baja polaridad en comparaci&oacute;n a los dem&aacute;s cosolventes, lo cual   limita la interacci&oacute;n que pueda tener la fase extractante con los analitos; (ii)   presencia de una baja cantidad de AcOEt en el fluido su-percr&iacute;tico o un bajo   grado de saturaci&oacute;n, que puede ocasionar un enmascaramiento del efecto   modificador, y (iii) una mezcla no adecuada entre el AcOEt y el CO<sub>2</sub> para la extracci&oacute;n de estos plaguicidas (16).</p>     <p>Finalmente, los resultados mostraron que a medida que la polaridad del   solvente org&aacute;nico se incrementa (MeOH &gt; Me2CO &gt; AcOET), los porcentajes de   recuperaci&oacute;n de los plaguicidas aumentan y la dispersi&oacute;n de los resultados   disminuye.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>CONCLUSIONES</b></p>     <p>De los cosolventes empleados, el acetato de etilo mostr&oacute; los porcentajes de   recuperaci&oacute;n m&aacute;s bajos para los plaguicidas en estudio, lo cual hace que el   empleo de este cosolvente en las condiciones de trabajo del presente estudio   resulte ser poco adecuado. Por otro lado, al emplear acetona como cosolvente se   hall&oacute; que cerca del 65% de los plaguicidas presentan un porcentaje de   recuperaci&oacute;n superior al 60%, y el mayor coeficiente de variaci&oacute;n correspondi&oacute;   al 34,82%.</p>     <p>Al emplear metanol, se encontr&oacute; que solo clorotalonil y diclofluanid   presentaron porcentajes de recuperaci&oacute;n inferiores al 60%, y los coeficientes de   variaci&oacute;n hallados resultaron ser los m&aacute;s bajos de los tres cosolventes   empleados. En consecuencia, el empleo de metanol como cosolvente es la mejor   alternativa para la extracci&oacute;n de los plaguicidas del presente estudio en   suelo.</p>     <p><b>AGRADECIMIENTOS</b></p>     <p>Expresamos nuestro agradecimiento al Departamento de Qu&iacute;mica de la   Universidad Nacional de Colombia, sede Bogot&aacute;, al Laboratorio de Alta Presi&oacute;n   perteneciente al grupo de investigaci&oacute;n Estudio de Cambios Qu&iacute;micos y   Bioqu&iacute;micos de Alimentos Frescos y Procesados, del Departamento de Qu&iacute;mica de la   Universidad Nacional de Colombia.</p>     <p><b>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</b></p>     <!-- ref --><p>1. Dierkmeier, G. <i>Plaguicidas, residuos, efectos y su presencia en el   medio </i>(1a. ed.). 2001, La Habana (Cuba).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0120-2804200900030000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Yanggen, D. C. y Espinosa, P. <i>Los plaguicidas: impactos en producci&oacute;n,   saludy medio ambiente en Carchi, Ecuador </i>(1. ed.). 2003, Ecuador, CIP e   INIAP, 199 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000060&pid=S0120-2804200900030000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Toledo, C. <i>Din&aacute;mica de plaguicidas sobre el suelo. Contaminaci&oacute;n de   suelos y sedimentos. </i>1999. Laboratorio Qu&iacute;mico de Monitoreo Ambiental, Laqma   Ltda.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0120-2804200900030000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Dean, J. R. Effect of soil-pesticide interations on the efficiency of   super-critical fluid extraction. <i>Journal of Chromatography A. </i>1996. <b>745</b>(1-2): 221-233.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S0120-2804200900030000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Castelo-Grande, T., Augusto, P. A., Barbosa, D. Removal of pesticides from   soil by supercritical extraction-A preliminary study. <i>Chemical Engineering   Journal. </i>2005. <b>111 </b>(2-3): 167-171.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0120-2804200900030000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6.&nbsp;Dabrowska, H., Dabrowski, L., Biziuk, M., Gaca, J., Namienik, J.   Solidphase extraction clean-up of soil and sediment extracts for the   determination of various types of pollutants in a single run. <i>Journal of   Chromatography A. </i>2003. <b>1003 </b>(1-2): 29-42.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0120-2804200900030000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Hussen, A.; Rikard Westbom, R.; Megersa, N.; Mathiasson, L.; Bjorklund, E.   Selective pressurized liquid extraction for multi-residue analysis of   organochlorine pesticides in soil. <i>Journal ofChromatography A. </i>2007. <b>1152 </b>(1-2): 247-253.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0120-2804200900030000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Lesueur, C.; Gartner, M.; Mentler, A.; Fuerhacker, M. Comparison of four   extraction methods for the analysis of 24 pesticides in soil samples with gas   chromatography-mass spectromety and liquid chromatography-ion trap-mass   spectrometry. <i>Talanta. </i>2008. <b>75 </b>(1): 284.293.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0120-2804200900030000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. P&eacute;rez, M.;Cortada,C.; Apraiz,D.; Molton, J.; Font, G. SPME of 52   pesticides and polychlorinated biphenyls. Extraction efficiencies of the spme   coatings poly (dimethylsiloxane), polyacrylate, poly (dimethylsiloxane) -   divinylbenzene, carboxenpoly (dimethylsiloxane), and carbo- waxdivinylbenzene. <i>Journal ofSeparation Science. </i>2001. <b>24</b>(1): 39-48.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0120-2804200900030000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Kreuzig, R.; Koinecke, A.; Bahadir, M. Use of supercritical fluid   extraction in the analysis of pesticides in soil. <i>Journal of Biochemical and   Biophysical Methods. </i>2000. <b>43</b> (1-3): 403-409.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0120-2804200900030000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Koinecke, A.; Kreuzig, R.; Bahadir, M. Effects of modifiers, adsorbents   and eluents in supercritical fluid extractionofselected pesticides insoil. <i>Journal of Chromatography A. </i>1997. <b>786</b>(1): 155-161.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-2804200900030000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Rissato,S.R.; Galhiane, M.S. Multiresidue analysis of pesticides in soil   by supercritical fluid extraction/gas chromatography with electron-capture   detection and confirmation by gas chromatography-mass spectromety. <i>Journal of   Agricultural and Food Chemistry. </i>2005. <b>53 </b>(1): 62-69.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-2804200900030000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Lehotay, S. J. Supercritical fluid extraction ofpesticies infoods. <i>Journal of Chromatography A. </i>1997. <b>785</b> (1-2): 289-312.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-2804200900030000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Stefani, R.; Buzzi, M.; Grazzi, R. Supercritical fluid extraction of   pesticide residues in fortified apple matrices. <i>Journal ofChromatography A. </i>1997. <b>782 </b>(1): 123-132.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-2804200900030000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Motohashi, N.: Nagashima, H.; P&aacute;rk&aacute;nyi, C. Supercritical fluid extraction   for the analysis of pesticide residues in miscellaneous samples. <i>Journal   ofBiochemical and Biophysical Methods. </i>2000 . <b>43 </b>(1-3): 313-328.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-2804200900030000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. Luque de Castro, M.; Valc&aacute;rcel, M.; Tena, M. Extracci&oacute;n con fluidos   supercr&iacute;ticos en el proceso anal&iacute;tico (1a. ed.), vol. 1, 1993, Barcelona,   Editorial Revert&eacute;, S. A., 469 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-2804200900030000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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