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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación de la prueba rápida inmunocromatográfica Binax NOW® ICT Pf/Pv para el diagnóstico del paludismo en un área endémica de Colombia]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Evaluation of ICT malaria immunochromatographic Binax NOW® ICT P.f/P.v test for rapid diagnosis of malaria in a Colombian endemic area]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction. One of the strategies to reduce malarial morbidity and mortality is to make an early diagnosis, using simple rapid tests which are highly sensitive and specific. Furthermore, the tests must be easy to perform and understand by local people in such a way that a suitable and prompt antimalarial treatment is guaranteed. Objective. The sensitivity and specificity was determined for the immuno-chromographic malaria dipstick (ICT Pf/Pv) test for the rapid diagnosis of malaria in Turbo, Antioquia. Materials and methods. The sample consisted of 171 patients distributed into two groups: the first group was 118 patients with acute febrile syndrome compatible with malaria to which ICT Pf/Pv and thick smears were applied simultaneously; a second group was 53 patients with positive diagnosis by thick smear, with follow-up on the 4th and 7th days after beginning treatment. Results. Sensitivity and specificity of the ICT Pf/Pv test for Plasmodium falciparum infections were 54.2% (95%CI: 52.0-53.4%) and 93.6% (95%CI: 93.1-94.2%), respectively. In addition, for Plasmodium vivax the sensitivity and specificity were 80% (95%CI: 77.9-82.1%) and 100% (95%CI: 99.5-100%); there was a 21.4% loss of sensitivity for P. falciparum 21.4% and a 33% loss for P. vivax malaria with parasitaemias under 500 parasites/ul. For the confirmatory test, ICT Pf/Pv showed a global sensitivity of 71.6% with 20.7% false positive and 5.6% false negative results. During follow-up, ICT showed 36% and 34% false positive results for day 4 and 7, respectively. Conclusions. The ICT Pf/Pv test has a poor sensitivity for P. falciparum malaria and its capacity to detect parasitemias under 500 parasites/ul is minimal. As a confirmatory test, the ICT Pf/Pv has a good sensitivity for P. falciparum. Its use for patient follow-up is not recommended.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <B><FONT FACE="Arial" SIZE=4>    <P ALIGN="CENTER">Evaluaci&oacute;n de la prueba r&aacute;pida inmunocromatogr&aacute;fica Binax NOW&reg; ICT <I>Pf/Pv</I> para el diagn&oacute;stico del paludismo en un &aacute;rea end&eacute;mica de Colombia</P> </B></FONT><FONT FACE="Arial">    <P ALIGN="CENTER">Adriana Pab&oacute;n, Gonzalo &Aacute;lvarez, Jorge Y&aacute;nez, Carlos C&eacute;spedes, Yensa Rodr&iacute;guez, &Aacute;ngela Restrepo, Silvia Blair</P>     <P>Grupo Malaria, Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n, Colombia</P> </FONT><FONT FACE="Arial" SIZE=1>    <P>Recibido: 05/09/06; aceptado: 06/03/07</P> </FONT><B><FONT FACE="Arial">    <P>Introducci&oacute;n. </B>Una de las estrategias para disminuir la morbimortalidad por paludismo es realizar un diagn&oacute;stico temprano mediante pruebas r&aacute;pidas de baja complejidad t&eacute;cnica, altamente sensibles y espec&iacute;ficas, que puedan ser realizadas e interpretadas por personas de la misma comunidad, garantizando un tratamiento antipal&uacute;dico adecuado y oportuno.</P> <B>    <P>Objetivo.</B> Determinar la sensibilidad y especificidad de la prueba inmunocromatogr&aacute;fica Binax NOW&reg; malaria ICT <I>P.f/P.v</I> para el diagn&oacute;stico r&aacute;pido de paludismo en Turbo, Antioquia.</P> <B>    <P>Materiales y m&eacute;todos. </B>Se incluyeron 171 pacientes distribuidos en dos grupos: el primero "pruebas simult&aacute;neas", 118 pacientes con s&iacute;ndrome febril agudo compatible con paludismo a los cuales se les aplic&oacute; ICT <I>Pf/Pv </I>y gota gruesa simult&aacute;neamente. El segundo "pruebas secuenciales", 53 pacientes con diagn&oacute;stico positivo por gota gruesa quienes se estudiaron para diagn&oacute;stico confirmatorio y seguimiento parasitol&oacute;gico los d&iacute;as 4 y 7 con ICT<I>.</P> </I><B>    <P>Resultados.</B> La sensibilidad y la especificidad de la prueba Binax NOW&reg; malaria ICT <I>Pf/Pv</I> para diagnosticar infecciones por <I>Plasmodium falciparum</I> fueron 54,2% (IC95%: 52%-53,4%) y 93,6% (IC95%: 93,1%-94,2%), respectivamente, mientras que para <I>Plasmodium vivax</I> fueron 80% (IC95%: 77,9%-82,1%) y 100% (IC95%: 99,5%-100%); hubo disminuci&oacute;n de la sensibilidad hasta 21,4% para <I>P. falciparum</I> y 33,3% para <I>P. vivax</I> con parasitemias menores de 500 par&aacute;sitos/ul. En cuanto al diagn&oacute;stico confirmatorio, la prueba ICT <I>Pf/Pv</I> present&oacute; una sensibilidad global de 71,6% con 20,7% de falsos positivos y 5,6% de falsos negativos. En el seguimiento, ICT mostr&oacute; 36% y 34% de falsos positivos para los d&iacute;as 4 y 7, respectivamente.</P> <B>    <P>Conclusiones</B>. La prueba Binax NOW&reg; malaria ICT <I>Pf/Pv</I></FONT><FONT FACE="Arial" COLOR="#ff0000"> </FONT><FONT FACE="Arial">como prueba diagn&oacute;stica mostr&oacute; una sensibilidad muy baja para infecciones por <I>P.</I> <I>falciparum </I>y su capacidad para detectar parasitemias menores de 500 par&aacute;sitos/ul es m&iacute;nima. Como diagn&oacute;stico confirmatorio, la prueba ICT<I> P.f/P.v</I>. tiene buena sensibilidad para <I>P. falciparum</I>. Su uso para seguimiento de los pacientes no se recomienda.</P> <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Palabras clave:</B> paludismo/diagn&oacute;stico, sensibilidad y especificidad,&nbsp;<I>Plasmodium falciparum</I>, <I>Plasmodium vivax</I>.</P> <B>    <P>Evaluation of ICT malaria immunochromatographic Binax NOW&reg;<I> </I>ICT <I>P.f/P.v</I> test for rapid diagnosis of malaria in a Colombian endemic area </P>     <P>Introduction. </B>One of the strategies to reduce malarial morbidity and mortality is to make an early diagnosis, using simple rapid tests which are highly sensitive and specific. Furthermore, the tests must be easy to perform and understand by local people in such a way that a suitable and prompt antimalarial treatment is guaranteed.</P> <B>    <P>Objective. </B>The sensitivity and specificity was determined for the immuno-chromographic malaria dipstick (ICT <I>Pf/Pv</I>) test for the rapid diagnosis of malaria in Turbo, Antioquia.</P> <B>    <P>Materials and methods. </B>The sample consisted of 171 patients distributed into two groups: the first group was 118 patients with acute febrile syndrome compatible with malaria to which ICT <I>Pf/Pv </I>and thick smears were applied simultaneously; a second group was 53 patients with positive diagnosis by thick smear, with follow-up on the 4th and 7th days after beginning treatment.</P> <B>    <P>Results.</B> Sensitivity and specificity of the ICT <I>Pf/Pv</I> test for <I>Plasmodium falciparum </I>infections were 54.2% (95%CI: 52.0-53.4%) and 93.6% (95%CI: 93.1-94.2%), respectively. In addition, for <I>Plasmodium vivax</I> the sensitivity and specificity were 80% (95%CI: 77.9-82.1%) and 100% (95%CI: 99.5-100%); there was a 21.4% loss of sensitivity for <I>P. falciparum</I> 21.4% and a 33% loss for <I>P. vivax</I> malaria with parasitaemias under 500 parasites/ul. For the confirmatory test, ICT <I>Pf/Pv </I>showed a global sensitivity of 71.6% with 20.7% false positive and 5.6% false negative results. During follow-up, ICT showed 36% and 34% false positive results for day 4 and 7, respectively.</P> <B>    <P>Conclusions. </B>The ICT <I>Pf/Pv</I> test has a poor sensitivity for <I>P. falciparum</I> malaria and its capacity to detect parasitemias under 500 parasites/ul is minimal. As a confirmatory test, the ICT <I>Pf/Pv</I> has a good sensitivity for <I>P. falciparum</I>. Its use for patient follow-up is not recommended.</P> <B>    <P>Key words:</B> malaria/diagnosis,<I> </I>sensitivity and specificity, <I>Plasmodium falciparum</I>, <I>Plasmodium vivax</I>. </P>     <P>En vista del fracaso de los planes de erradicaci&oacute;n del paludismo llevados a cabo entre 1958 y 1968, la Organizaci&oacute;n Mundial de Salud, OMS, ha priorizado la b&uacute;squeda de estrategias de control tales como "Hacer retroceder la malaria"; para ello ha dise&ntilde;ado objetivos a corto y largo plazo. Una de estas estrategias es realizar un diagn&oacute;stico temprano mediante pruebas r&aacute;pidas que sean pr&aacute;cticas, f&aacute;ciles de realizar, accesibles, econ&oacute;micas y muy sensibles y espec&iacute;ficas (1-4).</P>     <P>Seg&uacute;n la OMS, el paludismo es una de las principales causas de morbimortalidad en regiones tropicales y subtropicales del mundo y es una de las enfermedades infecciosas de mayor importancia en Colombia, dado que 70% de la poblaci&oacute;n est&aacute; expuesta a ella. Seg&uacute;n el Informe Epidemiol&oacute;gico Nacional, en Colombia durante el 2005 se presentaron 107.866 casos de paludismo en 22’403.000 personas expuestas, de los cuales, el 65% (70.066) fueron por <I>Plasmodium vivax,</I> 33,5% (36.190) por <I>Plasmodium falciparum</I> y 1,5% (1.610) como malaria mixta (5).</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Desde 1880, cuando se identific&oacute; el par&aacute;sito del paludismo, se ha empleado la gota gruesa para su diagn&oacute;stico, la cual permite analizar mayor concentraci&oacute;n de sangre, tiene una sensibilidad de 80% y una especificidad 100% (6), permite diferenciar las especies de <I>Plasmodium</I>, las formas del par&aacute;sito y hacer el recuento de par&aacute;sitos. Adem&aacute;s, es un m&eacute;todo econ&oacute;mico y f&aacute;cil de realizar en lugares donde se cuenta con microscopio de luz. Todas estas caracter&iacute;sticas han permitido que la gota gruesa sea el m&eacute;todo de referencia para el diagn&oacute;stico de paludismo porque permite clasificar el grado de la parasitemia y evaluar la respuesta al tratamiento durante el seguimiento.</P>     <P>Sin embargo, por ser una prueba que depende del operador, en ocasiones, la gota gruesa no detecta parasitemias bajas (entre 50-500 par&aacute;sitos/µl) (7). Estos casos de paludismo que se reportan como negativos retrasan el tratamiento, y contribuyen a la presentaci&oacute;n de complicaciones y al aumento de la mortalidad. En zonas rurales que carecen de recursos como microscopios, personal experto e infraestructura el&eacute;ctrica, se limita su uso. Por lo anterior, se han estimulado investigaciones para el desarrollo de pruebas r&aacute;pidas de diagn&oacute;stico que detecten ant&iacute;genos de <I>Plasmodium </I>spp.</P>     <P>A mediados de los a&ntilde;os 90 se desarrollaron las pruebas r&aacute;pidas de diagn&oacute;stico, que consisten en la detecci&oacute;n de ant&iacute;genos espec&iacute;ficos expresados por los par&aacute;sitos del paludismo presentes en individuos infectados, mediante la captura con anticuerpos. Algunas pruebas r&aacute;pidas pueden detectar solamente una especie (<I>P. falciparum o P. vivax</I>), otras detectan la presencia s&oacute;lo del g&eacute;nero <I>Plasmodium </I>(8-10).</P>     <P>Estos m&eacute;todos suscitaron el inter&eacute;s porque promet&iacute;an un diagn&oacute;stico r&aacute;pido, f&aacute;cil, oportuno, accesible, que potencialmente podr&iacute;a ser utilizado en regiones rurales end&eacute;micas de paludismo, carentes de servicios de salud y de infraestructura para el diagn&oacute;stico de malaria con gota gruesa.</P>     <P>La primera generaci&oacute;n de pruebas r&aacute;pidas se concentr&oacute; en dise&ntilde;ar pruebas para la detecci&oacute;n de infecciones por <I>P. falciparum</I>,<I> </I>como ParaSight-F&reg;, que se basa en la detecci&oacute;n de la prote&iacute;na rica en histidina II (HRP II). Varios estudios han reportado una sensibilidad entre 61% y 95,1% y una especificidad entre 81,1% y 100% (11,12). Esta prueba no ha sido recomendada para uso diagn&oacute;stico, puesto que no permite la detecci&oacute;n de infecciones por <I>P. vivax</I> y es in&uacute;til su aplicaci&oacute;n en zonas end&eacute;micas donde predomina esta especie parasitaria (13).</P>     <P>Posteriormente, se desarroll&oacute; la prueba ICT <I>Pf,</I> tambi&eacute;n conocida como MalaQuick&reg;, que utiliza un anticuerpo monoclonal para detectar el ant&iacute;geno HRP II y diagnosticar las infecciones por<I> P. falciparum </I>(14)<I>.</P> </I>    <P>Luego se desarrollaron las pruebas de diagn&oacute;stico r&aacute;pido de segunda generaci&oacute;n, capaces de detectar adem&aacute;s las infecciones por <I>P.</I> <I>vivax,</I> como OptiMAL&reg;, que se basa en la detecci&oacute;n de la prote&iacute;na lactato deshidrogenasa espec&iacute;fica de especie. Ella ha mostrado que su valor diagn&oacute;stico var&iacute;a, con valores de sensibilidad para <I>P. falciparum</I> entre 40,0% y 98,1% y de especificidad entre 96% y 99,7% (15-18) y para <I>P. vivax</I> sensibilidad entre 60% y 97% y la especificidad entre 89% y 100% (7,15-18), mostrando resultados contradictorios en cuanto a su posible utilizaci&oacute;n. La prueba ha mostrado una baja sensibilidad (44%) cuando la parasitemia es menor de 500 par&aacute;sitos/µl (7).</P>     <P>Una de las t&eacute;cnicas m&aacute;s recientes de diagn&oacute;stico r&aacute;pido es la prueba inmunocromatogr&aacute;fica de sangre total (ICT <I>P. falciparum/P. vivax</I>) Binax NOW&reg; malaria ICT <I>Pf/P</I>v, la cual se basa en la detecci&oacute;n de los ant&iacute;genos HRP-II y panmal&aacute;rico (15). Estos dos son capturados por anticuerpos monoclonales de tipo IgM; la HRP-II es una prote&iacute;na que se expresa en la membrana del eritrocito infectado con <I>P. falciparum </I>y se libera a partir de las formas asexuales y de los gametocitos j&oacute;venes (19) y el ant&iacute;geno panmal&aacute;rico o aldolasa espec&iacute;fica de par&aacute;sito, es producido por las cuatro especies del <I>Plasmodium</I> que infectan al hombre (<I>P. vivax, P. falciparum, P. ovale y P. malarie</I>) (20).</P>     <P>Para evaluar la capacidad diagn&oacute;stica de la prueba ICT <I>Pf/Pv</I>, se han llevado a cabo varios estudios en los que se informa una sensibilidad de 81% a 97,5% y una especificidad de 81% a 99,2% para <I>P. falciparum </I>y una sensibilidad de 44% a 100% y una especificidad de 94,8% a 100% para <I>P. vivax </I>(7,15,21,22, Mendoza NM, Garc&iacute;a M, Vela CM, Erazo R, P&eacute;rez P, Cort&eacute;s LJ. Evaluaci&oacute;n de dos pruebas r&aacute;pidas ICT Pf/Pv y OptiMal para el diagn&oacute;stico de malaria en Tumaco, Colombia. Res&uacute;menes XI Congreso Colombiano de Parasitolog&iacute;a y Medicina Tropical. Biom&eacute;dica 2003:23 (Supl.1):140). Al igual que con las otras pruebas, varios estudios han reportado que la sensibilidad disminuye acentuadamente, hasta 23%, cuando la parasitemia est&aacute; por debajo de 500/µl (7).</P>     <P>Una de las aplicaciones que se le ha atribuido a la prueba ICT<I> Pf/pv</I>, es la detecci&oacute;n de ant&iacute;genos del par&aacute;sito cuando hay un secuestro del mismo, que dificulta su diagn&oacute;stico en sangre perif&eacute;rica; por ejemplo, en el caso de secuestro de par&aacute;sitos en la placenta de mujeres embarazadas (23,24). </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Entre las desventajas de la prueba ICT <I>Pf/Pv</I> est&aacute; la incapacidad para identificar infecciones mixtas y diagnosticar paludismo por especies diferentes a <I>P. falciparum</I> y <I>P. vivax</I>, y no poder ser utilizada para seguimiento de la respuesta al tratamiento, porque sigue siendo positiva por la persistencia de los ant&iacute;genos aun despu&eacute;s de la desaparici&oacute;n de los par&aacute;sitos. Tambi&eacute;n, ha mostrado resultados falsos positivos con s&oacute;lo la presencia de gametocitos de <I>P. falciparum</I> y reacciones cruzadas con factor reumatoideo y ANAS, (26%) (25). Por tanto, estos dos aspectos deben considerarse en la interpretaci&oacute;n de resultados positivos con la prueba ICT <I>Pf/Pv</I>.</P>     <P>Por otra parte, se han reportado falsos negativos en altas parasitemias debido al fen&oacute;meno prozona por la gran antigenemia (26,27) o por la ausencia del gen que codifica para la prote&iacute;na HRP –II en un 2% a 3 % de los par&aacute;sitos de la malaria (16). </P>     <P>Teniendo en cuenta los pocos estudios en Colombia para evaluar la capacidad diagn&oacute;stica de la t&eacute;cnica Binax NOW&reg; malaria ICT <I>Pf/Pv </I>en paludismo, se determin&oacute; la sensibilidad, la especificidad y la capacidad confirmatoria de la prueba inmunocromatografica ICT <I>Pf/Pv</I> para el diagn&oacute;stico r&aacute;pido de paludismo en Turbo, Antioquia, zona end&eacute;mica para paludismo, durante un periodo no epid&eacute;mico de 2003.</P> <B>    <P>Materiales y m&eacute;todos</P> <I>    <P>Tipo de estudio</P> </B></I>    <P>Descriptivo de evaluaci&oacute;n de una prueba diagn&oacute;stica.</P> <B><I>    <P>Lugar de estudio</P> </B></I>    <P>Turbo, Antioquia, municipio localizado en la zona del Urab&aacute; antioque&ntilde;o el cual present&oacute; en el a&ntilde;o 2003, 4.057 casos de paludismo, de los cuales, 1.120 casos fueron por <I>P. falciparum</I> y 2.937 por <I>P. vivax.</I> Este municipio registr&oacute; un &iacute;ndice parasitario anual (IPA) para ese a&ntilde;o de 27,11 por 1.000 (28,29). La investigaci&oacute;n se hizo durante un periodo no epid&eacute;mico, entre los meses de junio y julio de 2003.</P> <B><I>    <P>Poblaci&oacute;n de referencia</P> </B></I>    <P>Conformada por los pacientes que asistieron por su propia iniciativa al puesto de diagn&oacute;stico de paludismo<I> </I>de los centros de salud San Jos&eacute;, El Dos y Currulao, o al hospital Francisco Valderrama. Fueron pacientes ambulatorios, sin complicaciones, de uno u otro sexo, de uno o m&aacute;s a&ntilde;os de edad, residentes en el municipio de Turbo, Antioquia, en la zona urbana o rural.</P> <B><I>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Pacientes</P> </B></I>    <P>Los pacientes incluidos se dividieron en dos grupos independientes:</P> <I>    <P>Grupo 1. Pruebas simult&aacute;neas o grupo de tamizaje</I>: conformado por pacientes que consultaron a los centros de salud por fiebre o antecedentes de fiebre en las 48 horas previas al momento de la consulta, a quienes se les realiz&oacute; el examen por gota gruesa y Binax NOW&reg; malaria ICT <I>Pf/Pv</I> de forma simult&aacute;nea para evaluar la capacidad diagn&oacute;stica de la prueba.</P> <I>    <P>Grupo 2. Pruebas en secuencia o grupo para diagn&oacute;stico confirmatorio:</I> conformado por pacientes a quienes se les aplic&oacute; un dise&ntilde;o secuencial. Tuvieron inicialmente un diagn&oacute;stico positivo para malaria por gota gruesa y se les aplic&oacute; el mismo d&iacute;a la prueba ICT <I>Pf/Pv</I>. Tambi&eacute;n se utiliz&oacute; esta prueba r&aacute;pida los d&iacute;as 4 y 7 para evaluar su utilidad en estudios de seguimiento de la respuesta terap&eacute;utica. Todos los pacientes pal&uacute;dicos fueron tratados por el personal de salud del Hospital de Turbo de acuerdo con el resultado de la gota gruesa y conforme a las disposiciones del Ministerio de Salud de Colombia.</P> <B><I>    <P>Consideraciones &eacute;ticas</P> </B></I>    <P>Los aspectos &eacute;ticos de este estudio se rigieron bajo las "Normas cient&iacute;ficas, t&eacute;cnicas y administrativas para la investigaci&oacute;n en salud", resoluci&oacute;n No. 008430 de 1993. El proyecto fue sometido a evaluaci&oacute;n y aprobado por parte del Comit&eacute; de &Eacute;tica de la Facultad de Medicina de la Universidad de Antioquia (comunicaci&oacute;n CIM, agosto 2003). A cada paciente que acept&oacute; participar se le inform&oacute; del estudio, sus objetivos, riesgos y beneficios. Una vez aceptada su participaci&oacute;n (o la de su hijo), se obtuvo la firma del consentimiento informado que cumpl&iacute;a con los requisitos establecidos por el Comit&eacute; de &Eacute;tica de la Universidad de Antioquia.</P> <B><I>    <P>Diagn&oacute;stico de paludismo</P> </B>    <P>Gota gruesa</I>: la gota gruesa fue utilizada como prueba est&aacute;ndar de referencia; &eacute;sta se obtuvo por la punci&oacute;n capilar de un dedo de la mano o del tal&oacute;n. Luego de realizar la antisepsia respectiva, se descart&oacute; la primera gota de sangre y las siguientes se utilizaron para el examen de la gota gruesa, el extendido de sangre perif&eacute;rica y la prueba ICT <I>Pf/Pv.</P> </I>    <P>La tinci&oacute;n de la gota gruesa se hizo con la coloraci&oacute;n de Field y la lectura se llev&oacute; a cabo en microscopio de luz con objetivo de de 100X. La parasitemia se calcul&oacute; con base en 200 leucocitos y un est&aacute;ndar de 8.000 leucocitos/µl y se expres&oacute; en par&aacute;sitos/µl (30). En este estudio, el examen de gota gruesa se consider&oacute; positivo si se observaron formas asexuales del par&aacute;sito acompa&ntilde;adas o no de gametocitos y se consider&oacute; como negativo cuando s&oacute;lo hab&iacute;a formas sexuales de <I>P. falciparum</I> o no se observ&oacute; ninguna forma asexual en m&iacute;nimo 200 campos microsc&oacute;picos (22,30). La lectura de la gota gruesa la realiz&oacute; un bacteri&oacute;logo experto en diagn&oacute;stico de paludismo en forma ciega, es decir, sin conocimiento de los resultados obtenidos en la prueba ICT <I>Pf/Pv.</P> </I>    <P>Binax NOW&reg; malaria<I> </I>ICT<I> Pf/Pv</I>: para la realizaci&oacute;n de la prueba r&aacute;pida se siguieron las indicaciones del fabricante. En resumen, se tomaron 15 µl de sangre capilar y se impregnaron en la almohadilla violeta de la tirilla; se aplicaron dos gotas de reactivo A en la almohadilla blanca inmediatamente por debajo del lugar de aplicaci&oacute;n de la sangre; posteriormente, se aplicaron cuatro gotas del mismo reactivo A en la almohadilla de la parte superior izquierda de la tarjeta de prueba; se esper&oacute; hasta que la sangre recorriera toda la tirilla; luego de esto, se cerr&oacute; la tarjeta de prueba y se dej&oacute; en posici&oacute;n horizontal sobre una superficie plana durante 10 minutos e inmediatamente se realiz&oacute; la lectura de la prueba. Las pruebas Binax NOW&reg; malaria ICT <I>Pf/Pv</I> proced&iacute;an del lote 011590 referencia 660000.</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>La lectura de la prueba la realiz&oacute; un bacteri&oacute;logo, quien tampoco ten&iacute;a conocimiento de los resultados obtenidos en la gota gruesa. La tarjeta de prueba se consider&oacute; como v&aacute;lida si marcaba la l&iacute;nea de control. Se consider&oacute; un resultado positivo para <I>P. falciparum</I> cuando la l&iacute;nea de lectura correspondiente a HRP-II se hizo visible sola o acompa&ntilde;ada de la l&iacute;nea correspondiente al ant&iacute;geno panmal&aacute;rico; se consider&oacute; como positiva para <I>P. vivax</I> si aparec&iacute;a la l&iacute;nea correspondiente al ant&iacute;geno panmal&aacute;rico sin la presencia de HRP-II.</P> <B><I>    <P>Interpretaci&oacute;n de resultados</P> </B></I>    <P>Para la interpretaci&oacute;n, se tuvieron en cuenta las siguientes definiciones:</P> <I>    <P>verdaderos positivos</I>, son los resultados que fueron positivos en la gota gruesa para <I>P. falciparum</I> o <I>P. vivax</I> y positivos para igual especie por ICT <I>Pf/Pv</I>; </P> <I>    <P>verdaderos negativos</I>, son los resultados negativos para paludismo por gota gruesa y con prueba ICT <I>Pf/Pv</I>, en los que s&oacute;lo se visualiz&oacute; la l&iacute;nea de control;</P> <I>    <P>falsos positivos,</I> se presentaron cuando la gota gruesa fue negativa y la prueba ICT <I>Pf/Pv</I> fue positiva para cualquier especie o cuando la gota gruesa detect&oacute; <I>P. vivax </I>y por ICT <I>Pf/Pv</I> se detect&oacute; <I>P. falciparum,</I> o viceversa;</P> <I>    <P>falsos negativos</I>, se presentaron cuando la gota gruesa fue positiva para cualquier especie y con el ICT<I> Pf/Pv </I>s&oacute;lo se visualiz&oacute; la l&iacute;nea de control.</P> <B><I>    <P>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</P> </B></I>    <P>Para el manejo de la informaci&oacute;n se utiliz&oacute; el programa EpiInfo versi&oacute;n 6.04. Se cre&oacute; una base de datos con toda la informaci&oacute;n contenida en la encuesta. Los resultados de la evaluaci&oacute;n diagn&oacute;stica (sensibilidad, especificidad, valores de predicci&oacute;n positivos y negativos) se expresaron en porcentaje y fueron calculados con el programa EPIDAT Versi&oacute;n 3.0.</P> <B><I>    <P>Comparaci&oacute;n de la prueba ICT Pf/Pv con la gota gruesa</P> </B></I>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Se compar&oacute; la parasitemia con respecto a la intensidad de la coloraci&oacute;n de la banda del ant&iacute;geno HRP-II y panmal&aacute;rico de la prueba ICT mediante an&aacute;lisis de varianza de una v&iacute;a. La intensidad de la banda se agrup&oacute; en tres categor&iacute;as, as&iacute;: 1) intensidad m&aacute;s baja que la l&iacute;nea de control, 2) intensidad similar a la l&iacute;nea de control y 3) intensidad m&aacute;s alta que la l&iacute;nea de control. Siempre se consideraron un nivel de significancia menor de 5% (p&lt;0,05) y un nivel de 95% para los intervalos de confianza.</P> <B>    <P>Resultados</P> </B>    <P>Se evaluaron 171 pacientes distribuidos en los dos grupos: 118 en el grupo de pruebas simult&aacute;neas y 53 pacientes en el estudio de pruebas secuenciales. El 51% fueron hombres, la edad promedio fue 22,7±16,5 a&ntilde;os, 75% resid&iacute;an en la zona rural y el tiempo promedio de residencia en la zona fue de 10,2±13,1 a&ntilde;os. El 31% de los pacientes presentaron, como m&iacute;nimo, un episodio de malaria en los 12 meses anteriores.</P> <I>    <P>Grupo 1. Pruebas simult&aacute;neas: </I>a 118 pacientes se les aplic&oacute; de manera simult&aacute;nea el examen de gota gruesa y la prueba ICT <I>Pf/Pv</I>. Antes de la realizaci&oacute;n del estudio, no se hizo un c&aacute;lculo del tama&ntilde;o de muestra para evaluar la prueba diagn&oacute;stica. Al calcular el tama&ntilde;o de la muestra <I>post hoc</I>, con una sensibilidad de 73,5%, una prevalencia del 41,5%, una precisi&oacute;n absoluta del 12% y un nivel de confianza del 95%, arroj&oacute; un tama&ntilde;o de muestra de 125 individuos de los cuales 73 deb&iacute;an ser sanos y 52 enfermos. Este n&uacute;mero es similar al evaluado en este estudio.</P>     <P>Los resultados de la comparaci&oacute;n de la gota gruesa e ICT <I>Pf/Pv</I> se encuentran en el </FONT><A HREF="#cuadro1"><FONT FACE="Helvetica" SIZE=2>cuadro 1</FONT></A><FONT FACE="Arial">. De los 118 pacientes, 49 (41,5%) fueron positivos por gota gruesa; de &eacute;stos, 25 (51%) fueron positivos para <I>P. vivax</I> y 24 (49%), para <I>P. falciparum</I>. La sensibilidad y la especificidad global fueron 73,5% y 95,7%, respectivamente. Para <I>P. vivax</I> la sensibilidad y la especificidad fueron 80% y 100%, respectivamente, mientras que para <I>P. falciparum</I> la sensibilidad fue 54,2% y la especificidad 93,6% (</FONT><A HREF="#cuadro2"><FONT FACE="Helvetica" SIZE=2>cuadro 2</FONT></A><FONT FACE="Arial">).</P>     <P><A NAME="cuadro1"></A></P>     <P ALIGN="CENTER"><IMG SRC="/img/revistas/bio/v27n2/2a09t1.gif"></P>     <P><A NAME="cuadro2"></A></P>     <P ALIGN="CENTER"><IMG SRC="/img/revistas/bio/v27n2/2a09t2.gif"></P>     <P>La parasitemia media en todo el grupo fue de 4.391±8.550 par&aacute;sitos/µl de sangre. Para las infecciones por <I>P. falciparum</I> el promedio de parasitemia fue de 3.476±7438 anillos/µl y para <I>P. vivax</I> de 5.270±9568 par&aacute;sitos/µl. De los 49 casos positivos detectados por gota gruesa, la prueba ICT <I>Pf/Pv</I> no detect&oacute; 13, de los cuales, dos fueron positivos <I>para P. vivax</I>, con una parasitemia de 332±28 par&aacute;sitos/µl, y 11 fueron positivos para <I>P. falciparum</I>, con una parasitemia de 60±37 anillos/µl.</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Para evaluar la sensibilidad de la prueba ICT <I>Pf/Pv</I> en funci&oacute;n de la parasitemia, los 49 casos positivos por gota gruesa se agruparon en tres grupos de acuerdo con el grado de parasitemia; cada grupo correspond&iacute;a al 33% del total de los pacientes. Se encontr&oacute; que la sensibilidad de la ICT <I>Pf/Pv</I> disminuye en forma directa con la parasitemia. Esta prueba fue positiva s&oacute;lo en 3 de los 14 (21,4%) pacientes que tuvieron gota gruesa positiva para <I>P. falciparum </I>y en 1 de 3 (33%) con gota gruesa positiva para <I>P. vivax</I> y cuyas parasitemias fueron menores de 500 par&aacute;sitos/µl. Con parasitemias mayores a 500 par&aacute;sitos/µl, la ICT <I>Pf/Pv</I> tuvo una sensibilidad de 100% (4/4) y 84,6% (11/13) para <I>P. falciparum y P. vivax</I>, respectivamente (</FONT><A HREF="#cuadro3"><FONT FACE="Helvetica" SIZE=2>cuadro 3</FONT></A><FONT FACE="Arial">).</P>     <P><A NAME="cuadro3"></A></P>     <P ALIGN="CENTER"><IMG SRC="/img/revistas/bio/v27n2/2a09t3.gif"></P>     <P>La parasitemia no mostr&oacute; diferencias estad&iacute;stica-mente significativas respecto a la intensidad de la coloraci&oacute;n de la banda, tanto para la l&iacute;nea del ant&iacute;geno panmal&aacute;rico como para el HRP-II (</FONT><A HREF="#cuadro4"><FONT FACE="Helvetica" SIZE=2>cuadro 4</FONT></A><FONT FACE="Arial">).</P>     <P><A NAME="cuadro4"></A></P>     <P ALIGN="CENTER"><IMG SRC="/img/revistas/bio/v27n2/2a09t4.gif"></P> <I>    <P>Grupo 2. Pruebas secuenciales</I>: de los 53 casos positivos por gota gruesa, la prueba r&aacute;pida mostr&oacute; que fueron positivos 27 (50,9%) para <I>P. vivax</I> y 23 (43,4%) para <I>P. falciparum</I>, y 3 (5,7%) fueron negativos. Como diagn&oacute;stico confirmatorio, la prueba ICT tuvo una sensibilidad total de 71,6%; para <I>P. falciparum</I> la sensibilidad fue de 95% y para <I>P. vivax</I> fue de 76%.</P>     <P>De estos 53 pacientes incluidos, 38 tuvieron seguimiento en los d&iacute;as 4 y 7; a 12 se les realiz&oacute; seguimiento s&oacute;lo en el d&iacute;a 4 y a 3 pacientes, s&oacute;lo en el d&iacute;a 7. Cinco pacientes continuaron positivos por gota gruesa al d&iacute;a 4 y uno lo fue hasta el d&iacute;a 7; mientras que, por la prueba ICT<I> Pf/Pv</I>, 22 continuaron positivos hasta el d&iacute;a 4 y 15 hasta el d&iacute;a 7 (</FONT><A HREF="#cuadro5"><FONT FACE="Helvetica" SIZE=2>cuadro 5</FONT></A><FONT FACE="Arial">).</P>     <P><A NAME="cuadro5"></A></P>     <P ALIGN="CENTER"><IMG SRC="/img/revistas/bio/v27n2/2a09t5.gif"></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>El d&iacute;a 0, la prueba ICT arroj&oacute; 11 casos falsos positivos (20,7%); tres correspondieron a infecciones por <I>P. vivax </I>y 8 tuvieron infecciones mixtas. Adem&aacute;s, se presentaron tres casos falsos negativos (5,6%) correspondientes a infecciones por <I>P. vivax</I>. En el d&iacute;a 4 se presentaron 18 casos de falsos positivos (36%), 15 para <I>P. falciparum</I>, de los cuales, 5 tuvieron gota gruesa negativa con presencia de gametocitos. En el d&iacute;a 7, se presentaron 14 casos falsos positivos (34%), 13 con diagn&oacute;stico de malaria por <I>P. falciparum</I>; de ellos, 5 presentaron s&oacute;lo gametocitos en la gota gruesa. La sensibilidad y la especificidad de la prueba ICT para el d&iacute;a 4 fueron 80% y 60%, respectivamente; y, para el d&iacute;a 7, la sensibilidad fue de 100% y la especificidad s&oacute;lo de 65%. </P> <B>    <P>Discusi&oacute;n</P> </B>    <P>En el presente estudio, se encontr&oacute; que la prueba Binax NOW&reg; malaria ICT <I>Pf/Pv </I>posee en forma global una sensibilidad y una especificidad para diagnosticar paludismo de 73,4% (IC 95%: 72,7%-74,5%) y 95,7% (IC95%: 94,9%-96,4%), respectivamente. Por especie, la prueba Binax NOW&reg; malaria ICT <I>Pf/Pv </I>mostr&oacute; para <I>P. falciparum</I> una sensibilidad de 54,2% (IC95%: 51,9%-56,3%) y una especificidad de 93,6 (IC95%: 93,1%-94,2%), mientras que para <I>P. vivax</I> la sensibilidad fue de 80% (IC95%: 77,9%-82,1%) y la especificidad de 100% (IC95%: 99,5%-100%). Con parasitemias menores de 500 par&aacute;sitos/µl, la prueba Binax NOW&reg; malaria ICT <I>Pf/Pv </I>mostr&oacute; una sensibilidad de 21,4 % para <I>P. falciparum</I> y de 33% para <I>P. vivax</I>. Cuando la prueba Binax NOW&reg; malaria ICT <I>P.f/P.v</I> se utiliz&oacute; para un diagn&oacute;stico confirmatorio, present&oacute; una sensibilidad global de 71,6% con 20,7% de falsos positivos y 5,6% falsos de falsos negativos. En el seguimiento, la ICT mostr&oacute; 36% y 34% de falsos positivos para los d&iacute;as 4 y 7 de seguimiento, respectivamente.</P>     <P>En este estudio, los resultados obtenidos despu&eacute;s de la aplicaci&oacute;n de la prueba Binax NOW&reg; malaria ICT <I>Pf/Pv </I>se consideran v&aacute;lidos, ya que en todas las muestras se visualiz&oacute; correctamente la l&iacute;nea de control, lo que garantiza que las condiciones ambientales y de almacenamiento no alteraron su desempe&ntilde;o. </P>     <P>En Colombia, en el municipio de Tumaco (Costa Pac&iacute;fica colombiana), Mendoza y colaboradores, en el 2002, evaluaron la capacidad diagn&oacute;stica de la prueba ICT <I>Pf/Pv </I>y encontraron una sensibilidad y una especificidad para malaria por <I>P. falciparum </I>de 98,2% y 98,1% y, para <I>P. vivax,</I> una sensibilidad y una especificidad de 100%. Adem&aacute;s, encontraron buena concordancia en el diagn&oacute;stico de malaria al compararlo con la gota gruesa (Mendoza NM, Garc&iacute;a M, Vela CM, Erazo R, P&eacute;rez P, Cort&eacute;s LJ. Evaluaci&oacute;n de dos pruebas r&aacute;pidas ICT <I>P.f./P.v.</I> y OptiMal para el diagn&oacute;stico de malaria en Tumaco, Colombia. Res&uacute;menes XI Congreso Colombiano de Parasitolog&iacute;a y Medicina Tropical. Biom&eacute;dica 2003:23 (Supl.1):140). Estos resultados no concuerdan con los obtenidos por nosotros, ya que la sensibilidad y la especificidad mostradas por la prueba ICT fueron menores en nuestro estudio, pero est&aacute;n dentro de los rangos encontrados por otros autores en estudios realizados en regiones holoend&eacute;micas, sin epidemias (7,15,20,21). Es sabido que el n&uacute;mero de casos de una enfermedad influencia los valores de predicci&oacute;n positivo y negativo (31). Adem&aacute;s, en nuestro estudio consideramos como resultados falsos positivos los provenientes de pacientes que s&oacute;lo tuvieran formas sexuales de <I>P. falciparum, </I>ya que la presencia de gametocitos de <I>P. falciparum </I>no indica enfermedad mal&aacute;rica (22,26). </P>     <P>En este estudio, el 51% de los positivos por gota gruesa ten&iacute;an parasitemias mayores a 1.000 par&aacute;sitos/µl y, en este caso, la sensibilidad que mostr&oacute; la prueba Binax NOW&reg; malaria ICT <I>Pf/Pv </I>fue de alrededor de 100%, lo cual sugiere que, si la mayor parte de los pacientes con malaria en una regi&oacute;n end&eacute;mica se ubican en este rango de parasitemia, la prueba tendr&aacute; un buen porcentaje de acierto al descartar o confirmar la infecci&oacute;n mal&aacute;rica; sin embargo, con parasitemias menores a 500 par&aacute;sitos/µl, la sensibilidad (34%) disminuy&oacute; significativamente, lo cual plantea la necesidad de conocer las parasitemias que alcanzan los pacientes de la regi&oacute;n donde se contemple el uso de esta prueba. Los 13 valores falsos negativos de la prueba Binax NOW&reg; malaria ICT <I>Pf/Pv </I>en el grupo 1 (11 para <I>P. falciparum</I> y 2 para <I>P. vivax</I>) se encontraron en pacientes que presentaron parasitemias bajas (40 a 564 par&aacute;sitos/µl). Esto se puede explicar por la baja cantidad de ant&iacute;geno circulante que tendr&iacute;a el paciente. De igual forma, como se ha reportado en otros estudios, se encontr&oacute; que la sensibilidad disminuye cuando las parasitemias son bajas (2,8). </P>     <P>Los casos falsos positivos detectados en la pruebas ICT <I>Pf/Pv</I> se puede atribuir a que la prueba no s&oacute;lo detecta ant&iacute;genos que son liberados por las formas asexuales, sino tambi&eacute;n, por las formas sexuales del par&aacute;sito que causan la enfermedad (13). Ser&iacute;a ideal que existiera una prueba r&aacute;pida de diagn&oacute;stico basada &uacute;nicamente en la detecci&oacute;n de ant&iacute;genos que fueran liberados s&oacute;lo por las formas asexuales del par&aacute;sito, ya que de esta manera los casos falsos positivos explicados por la presencia &uacute;nicamente de formas sexuales podr&iacute;an evitarse. Sin embargo, tambi&eacute;n es posible que los valores falsos positivos se deban a la presencia de bajas parasitemias que, en algunas ocasiones, no son detectadas por la gota gruesa. En este sentido ser&iacute;a muy importante repetir la gota gruesa despu&eacute;s de uno o dos d&iacute;as, que puedan indicar si se presenta la infecci&oacute;n mal&aacute;rica o no (32). </P>     <P>La incidencia de infecci&oacute;n mixta parece ser importante en el total de casos de malaria. En este caso, la prueba ICT <I>Pf/Pv</I> present&oacute; confusi&oacute;n entre el diagn&oacute;stico de especies, pues no diferencia infecciones mixtas de infecciones por <I>P. falciparum </I>y,<I> </I>seg&uacute;n lo observado, tampoco de<I> P. vivax. </I>Solamente se puede indicar su posible presencia, hecho que puede alterar la forma del tratamiento antimal&aacute;rico. Ser&iacute;a ideal el desarrollo de pruebas que detecten ant&iacute;genos espec&iacute;ficos de cada especie y as&iacute; lograr una adecuada distinci&oacute;n entre estas especies, de forma que se pueda optimizar el diagn&oacute;stico y por consiguiente el tratamiento<I>.</P> </I>    <P>En el grupo 2 (diagn&oacute;stico confirmatorio y seguimiento), se pudo observar c&oacute;mo el n&uacute;mero de casos falsos positivos (</FONT><A HREF="#cuadro3"><FONT FACE="Helvetica" SIZE=2>cuadro 3</FONT></A><FONT FACE="Arial">) fue muy importante tanto en el d&iacute;a 4 como en el d&iacute;a 7 (18 y 14, respectivamente). Esto se puede explicar por la persistencia de los ant&iacute;genos mal&aacute;ricos, aun en ausencia de par&aacute;sitos, luego de que los pacientes han tomado los medicamentos (25). La mayor cantidad de casos falsos positivos en los d&iacute;as 4 y 7 fue para <I>P. falciparum,</I> con 15 y 13 casos respectivamente, mientras que para <I>P. vivax</I> s&oacute;lo hubo 3 casos en el d&iacute;a 4 y 1 en el d&iacute;a 7. Estos hallazgos sugieren una diferencia en la persistencia de ant&iacute;genos mal&aacute;ricos en la sangre. Por tal raz&oacute;n, la prueba no se puede utilizar para hacer un seguimiento de los pacientes con infecci&oacute;n mal&aacute;rica. Como diagn&oacute;stico confirma-torio, la prueba ICT <I>Pf/Pv</I> fall&oacute; en detectar 11 de los 53 pacientes incluidos en el grupo, lo cual no permite recomendarla como m&eacute;todo de confirmaci&oacute;n.</P>     <P>En resumen, se encontr&oacute; que la prueba Binax&reg; ICT <I>Pf/Pv </I>no posee una gran sensibilidad y especificidad global para el diagn&oacute;stico de malaria de forma rutinaria. Sin embargo, podr&iacute;a ser de utilidad cuano no se pueda acceder al diagn&oacute;stico microsc&oacute;pico. Para diagn&oacute;stico confirmatorio y de seguimiento, no podr&iacute;a utilizarse la prueba Binax NOW&reg; malaria ICT<I> Pf/Pv</I>.</P> <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Agradecimientos</P> </B>    <P>Los autores agradecen a los pacientes y al personal del Hospital Francisco Valderrama de Turbo, Antioquia, por su gran colaboraci&oacute;n; a la bacteri&oacute;loga Alexandra R&iacute;os y al m&eacute;dico Juan Gabriel Pi&ntilde;eros por su incondicional ayuda durante el trabajo de campo. Los autores tambi&eacute;n desean agradecer al profesor Jaime Carmona por la revisi&oacute;n del manuscrito.</P> <B>    <P>Conflicto de intereses</P> </B>    <P>Los autores no tienen ning&uacute;n nexo con las entidades comerciales que venden o distribuyen las pruebas para diagn&oacute;stico r&aacute;pido de paludismo. No tienen conflicto de inter&eacute;s ni compromiso alguno con estas entidades.</P> <B>    <P>Financiaci&oacute;n</P> </B>    <P>El Grupo de Malaria financi&oacute; el presente trabajo con recursos para el sostenimiento asignados por la Universidad de Antioquia.</P> </FONT><FONT FACE="Arial" SIZE=1>    <P>Correspondencia:     <BR>Silvia Blair Trujillo, Grupo Malaria, Universidad de Antioquia, Sede de Investigaciones Universitaria, SIU, Laboratorio 610,     <BR>Calle 62 No. 52-59, Medell&iacute;n, Colombia.     <BR>Tel&eacute;fono: (574) 210 6486, fax: (574) 210 6487. </FONT>    ]]></body>
<body><![CDATA[<BR><A HREF="mailto:sblair@quimbaya.udea.edu.co"><FONT SIZE=2>sblair@quimbaya.udea.edu.co</FONT></A></P> <B><FONT FACE="Arial">    <P>Referencias</P> </B>    <!-- ref --><P>1. <B>World Health Organization.</B> A global strategy for malaria control. Geneva: WHO; 1993.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-4157200700020000900001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>2. <B>Organizaci&oacute;n Panamericana de la Salud, Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud.</B> Informe "Hacer retroceder el paludismo" en la regi&oacute;n de la selva h&uacute;meda tropical de Am&eacute;rica del Sur. OPS/HCP/HCT/15/00. Washington, D.C; OPS, OMS; 1999. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-4157200700020000900002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>3. <B>World Health Organization.</B> Malaria diagnosis. New perspectives. WHO/CDS/RBM/2000. 14; WHO/MAL/2000.1091. Geneva; WHO: 2000.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-4157200700020000900003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>4. <B>World Health Organization.</B> A rapid dipstick antigen capture assay for the diagnosis of <I>P. falciparum</I> malaria. WHO/MAL/95.1072. Geneva: WHO; 1995.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-4157200700020000900004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>5. <B>Zambrano P. </B>Informe final de malaria, semanas 1 a 52, Colombia 2005. Inf Quinc Epidemiol Nac. 2006;11:49-64.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-4157200700020000900005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>6. <B>Blair S, Londo&ntilde;o B.</B> Malaria y laboratorio. Medicina y Laboratorio. 2000;9:211-20.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-4157200700020000900006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>7. <B>Iqbal J, Khalid N, Hira PR. </B>Comparison of two commercial assays with expert microscopy for confirmation of symptomatically diagnosed malaria. J Clin Microbiol. 2002;40:4675-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-4157200700020000900007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>8. <B>Moody A.</B> Rapid diagnostic tests for malaria parasites. Clin Microbiol Rev. 2002;15:66-78.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0120-4157200700020000900008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>9. <B>World Health Organization.</B> Interim notes on selection of type of malaria rapid diagnostic test in relation to the occurrence of different parasite species. Guidance for National malaria control programmes. Prepared by Roll Back Malaria Department with the collaboration of the Regional Offices for Africa and the Western Pacific. (WHO 2004a). Geneva: WHO; 2003.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-4157200700020000900009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>10. <B>World Health Organization.</B> Library cataloguing in publication data. The use of malaria rapid diagnostic tests. Geneva: WHO; 2004.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0120-4157200700020000900010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>11. <B>Kodisinghe HM, Perera KL, Premawansa S, Naotunne T, Wickramasinghe AR, Mendis KN.</B> The ParaSight-F dipstick test as a routine diagnostic tool for malaria in Sri Lanka. 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J Clin Microbiol. 2002;40:4166-71.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0120-4157200700020000900015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>16. <B>Grobusch M, Hanscheid T, Gobels K, Slevogt H, Zoller T, Rogler G, <I>et al</I>.</B> Comparison of three antigen detection tests for diagnosis and follow-up of falciparum malaria in travellers returning to Berlin, Germany. Parasitol Res. 2003;89:354-7.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0120-4157200700020000900016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>17. <B>Londo&ntilde;o B, Carmona J, Blair S.</B> Comparaci&oacute;n de los m&eacute;todos Optimal&reg; y gota gruesa para el diagn&oacute;stico de malaria en una zona end&eacute;mica sin epidemia. Biom&eacute;dica. 2002;22:466-75.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0120-4157200700020000900017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>18. <B>Mendoza N, Montoya R, Garc&iacute;a M, Padilla J, Bruz&oacute;n L, Mendoza E, <I>et al</B></I>. Evaluaci&oacute;n de campo de una prueba r&aacute;pida para el diagn&oacute;stico de malaria. Biom&eacute;dica. 2001;21:313-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0120-4157200700020000900018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>19. <B>Sullivan DJ Jr, Gluzman IY, Goldberg DE.</B> <I>Plasmodium</I> hemozoin formation mediated by histidine-rich proteins. Science. 1996;271:219-22.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0120-4157200700020000900019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>20. <B>Tjitra E, Suprianto S, Dyer M, Currie BJ, Anstey NM.</B> Field evaluation of the ICT malaria <I>P.f/P.v</I> immunochromatographic test for detection of <I>Plasmodium falciparum</I> and <I>Plasmodium vivax</I> in patients with a presumptive clinical diagnosis of malaria in eastern Indonesia. J Clin Microbiol. 1999;37:2412-7.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0120-4157200700020000900020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>21. <B>Zheng X, Tang L, Xu Y, Meng F, Zhu W, Gu Z, <I>et al</I>.</B> Evaluation of immunochromatographic test in the diagnosis of <I>Plasmodium falciparum</I> and <I>Plasmodium vivax</I>. Zhongguo Ji Sheng Chong Xue Yu Ji Sheng Chong Bing Za Zhi.1999;17:235-6. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0120-4157200700020000900021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>22. <B>Van den Broek I, Hill O, Gordillo F, Angarita B, Hamade P, Counihan H <I>et al. </B></I>Evaluation of three rapid tests for diagnosis of <I>P. falciparum</I> and <I>P. vivax</I> malaria in Colombia. Am J Trop Med Hyg. 2006;75:1209-15.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0120-4157200700020000900022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>23. <B>Mockenhaupt FP, Ulmen U, von Gaertner C, Bedu-Addo G, Bienzle U.</B> Diagnosis of placental malaria. J Clin Microbiol. 2002;40:306-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0120-4157200700020000900023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>24. <B>Leke RF, Djokam RR, Mbu R, Leke RJ, Fogako J, Megnekou R, <I>et al</I>.</B> Detection of the <I>Plasmodium falciparum</I> antigen histidine-rich protein 2 in blood of pregnant women: implications for diagnosing placental malaria. J Clin Microbiol. 1999;37:2992-6. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0120-4157200700020000900024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>25. <B>Iqbal J, Sher A, Rab A.</B> <I>Plasmodium falciparum</I> histidine-rich protein 2-based immunocapture diagnostic assay for malaria: cross-reactivity with rheumatoid factors. J Clin Microbiol. 2000;38:1184-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0120-4157200700020000900025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>26. <B>Tjitra E, Suprianto S, McBroom J, Currie BJ, Anstey NM.</B> Persistent ICT malaria P.f/P.v panmalarial and HRP2 antigen reactivity after treatment of <I>Plasmodium falciparum</I> malaria is associated with gametocytemia and results in false-positive diagnoses of <I>Plasmodium vivax</I> in convalescence. J Clin Microbiol. 2001;39:1025-31.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0120-4157200700020000900026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>27. <B>Iqbal J, Siddique A, Jameel M, Hira PR.</B> Persistent histidine-rich protein 2, parasite lactate dehydrogenase, and panmalarial antigen reactivity after clearance of <I>Plasmodium falciparum</I> monoinfection. J Clin Microbiol. 2004;42:4237-41.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0120-4157200700020000900027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>28. <B>Direcci&oacute;n Seccional de Salud de Antioquia. </B>Eventos de vigilancia epidemiol&oacute;gica, ETV y ambiente. Antioquia, 1994-2003. [Consultado: 13 de diciembre 2006]. 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Disponible en: </FONT><A HREF="https://www.fisterra.com/mbe/investiga/pruebas_diagnosticas/pruebas_diagnosticas.htm"><B><FONT FACE="Helvetica" SIZE=1>https://www.fisterra.com/mbe/investiga/pruebas_diagnosticas/pruebas_diagnosticas.htm</B></FONT></A>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0120-4157200700020000900031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>32.<B> Servicio de Salud Colombia</B>. Gu&iacute;a de atenci&oacute;n de la Malaria (I). [Consultado: 13 diciembre de 2006]. Disponible en: </FONT><A HREF="http://www.saludcolombia.com/actual/htmlnormas/ntmalariaI.htm">http://www.saludcolombia.com/actual/htmlnormas/ntmalariaI.htm</A>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0120-4157200700020000900032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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<collab>World Health Organization</collab>
<source><![CDATA[A global strategy for malaria control.]]></source>
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