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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Actividad tripanocida y citotóxica de extractos de plantas colombianas]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction. The treatment of Chagas disease is based on only two drugs with limited efficacy and significant side effects. The rich biodiversity of the Colombian flora makes bio-prospecting a potential alternative in the search for new antiparasitic drugs. Objective. Potential trypanocidal activity and cytotoxicity was assessed in extracts from 23 Colombian plants. Materials and methods. Extracts of leaves, stems, or of the whole plants were obtained in solvents of a range of polarities. The activity against Trypanosoma cruzi epimastigotes and the cytotoxicity were evaluated by the MTT enzymatic micro-method. Extracts active against epimastigotes and with lowcytotoxicity were also tested on trypomastigotes and intracellular amastigotes. Results. Among the extracts, biological activity was confirmed in 4 species. The extracts were active on epimastigotes and trypomastigotes; one was active also against amastigotes. The latter extract was isolated from the plant Hieronyma antioquensis and presented IC50 of 3.1 mg/ml for epimastigotes, 11.5mg/ml for trypomastigotes and 2.9 mg/ml for amastigotes. The selectivity indexes were 25, 7, and 27 respectively. Conclusions. The extract from H. antioquensis proved a promising candidate for Chagas disease treatment. Futhermore, the MTT enzymatic micromethod was a useful tool for screening biological activity on epimastigotes and other stages of the parasite for further extract trials.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p>ART&Iacute;CULO ORIGINAL</p>     <p><font size="4">     <center><b>Actividad tripanocida y citot&oacute;xica de extractos de plantas colombianas</b></center></font></p>      <p>    <center>Lorena Valencia<sup>1</sup>, Diana Lorena Mu&ntilde;oz<sup>2</sup>, Sara Mar&iacute;a Robledo<sup>2</sup>, Fernando Echeverri<sup>3</sup>,Gabriel Jaime Arango<sup>4</sup>, Iv&aacute;n Dar&iacute;o V&eacute;lez<sup>2</sup>, Omar Triana<sup>1</sup></center></p>      <p><sup>1</sup>Biolog&iacute;a y Control de Enfermedades Infecciosas, Instituto de Biolog&iacute;a, Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n,Colombia</p>      <p><sup>2</sup>Programa de Estudio y Control de Enfermedades Tropicales, Facultad de Medicina, Universidad de Antioquia,Medell&iacute;n, Colombia</p>      <p><sup>3</sup>Qu&iacute;mica Org&aacute;nica de Productos Naturales, Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n, Colombia</p>      <p><sup>4</sup>Grupo de Investigaci&oacute;n de Sustancias Bioactivas, Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n, Colombia</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Contribuci&oacute;n de los autores:</b></p>      <p>Lorena Valencia: realiz&oacute; los ensayos antiparasitarios y la escritura del art&iacute;culo.</p>       <p>Diana Lorena Mu&ntilde;oz: realiz&oacute; los ensayos de citotoxicidad.</p>       <p>Sara Mar&iacute;a Robledo e Iv&aacute;n Dar&iacute;o V&eacute;lez: dise&ntilde;o de los experimentos y escritura del art&iacute;culo.</p>       <p>Fernando Echeverri y Gabriel Jaime Arango: preparaci&oacute;n de extractos, dise&ntilde;o de los experimentos y escritura del art&iacute;culo.</p>       <p>Omar Triana: dise&ntilde;o de los experimentos, an&aacute;lisis de resultados y escritura del art&iacute;culo.</p>     <p>Recibido: 06/05/11; aceptado:11/08/11</p>  <hr size="1">      <p><b>Introducci&oacute;n. </b>El tratamiento de la enfermedad de Chagas est&aacute; basado en s&oacute;lo dos medicamentos de eficacia limitada y con importantes efectos colaterales. La gran biodiversidad de la flora colombiana hace de la bioprospecci&oacute;n una alternativa potencial en la b&uacute;squeda de nuevos antiparasitarios.</p>       <p><b>Objetivo. </b>Evaluar <i>in vitro </i>el potencial tripanocida y la citotoxicidad de extractos obtenidos de 23 plantas colombianas.</p>       <p><b>Materiales y m&eacute;todos. </b>Se obtuvieron extractos de hojas, de tallos o de la planta entera, en solventes de diferente polaridad. La actividad contra epimastigotes y la citotoxicidad se evaluaron por el microm&eacute;todo enzim&aacute;tico con MTT. Los extractos activos contra epimastigotes y con baja citotoxicidad se evaluaron tambi&eacute;n en tripomastigotes y amastigotes intracelulares.</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Resultados. </b>Se reporta la actividad tripanocida de 13 plantas colombianas y se confirma el efecto biol&oacute;gico de cuatro especies previamente evaluadas. Cuatro extractos activos en epimastigotes tambi&eacute;n fueron activos en tripomastigotes y, uno de ellos, en amastigotes. Este extracto fue aislado de la planta <i>Hieronyma antioquensis</i>, y present&oacute; CI<sub>50</sub> de 3,125, 11,48 y 2,85 &micro;g/ml, e &iacute;ndices de selectividad de 25,7 y 27, para epimastigotes, tripomastigotes y amastigotes, respectivamente. Los resultados sugieren que este extracto es un candidato promisorio para el tratamiento de la enfermedad de Chagas.</p>       <p><b>Conclusi&oacute;n. </b>La flora colombiana es una fuente potencial de nuevas sustancias para la quimioterapia contra la enfermedad de Chagas. El microm&eacute;todo enzim&aacute;tico con MTT es una herramienta &uacute;til para la tamizaci&oacute;n de la actividad biol&oacute;gica en epimastigotes y posterior selecci&oacute;n para ensayos con otros estadios del par&aacute;sito.</p>       <p><b>Palabras clave: </b><i>Trypanosoma cruzi</i>, enfermedad de Chagas, extractos vegetales.</p>  <hr size="1">       <p><font size="3"><b>Trypanocidal and cytotoxic activity of extracts of Colombian plants</b></font></p>      <p><b>Introduction. </b>The treatment of Chagas disease is based on only two drugs with limited efficacy and significant side effects. The rich biodiversity of the Colombian flora makes bio-prospecting a potential alternative in the search for new antiparasitic drugs.</p>       <p><b>Objective. </b>Potential trypanocidal activity and cytotoxicity was assessed in extracts from 23 Colombian plants.</p>       <p><b>Materials and methods. </b>Extracts of leaves, stems, or of the whole plants were obtained in solvents of a range of polarities. The activity against <i>Trypanosoma cruzi </i>epimastigotes and the cytotoxicity were evaluated by the MTT enzymatic micro-method. Extracts active against epimastigotes and with lowcytotoxicity were also tested on trypomastigotes and intracellular amastigotes.</p>       <p><b>Results. </b>Among the extracts, biological activity was confirmed in 4 species. The extracts were active on epimastigotes and trypomastigotes; one was active also against amastigotes. The latter extract was isolated from the plant <i>Hieronyma antioquensis </i>and presented IC50 of 3.1 mg/ml for epimastigotes, 11.5mg/ml for trypomastigotes and 2.9 mg/ml for amastigotes. The selectivity indexes were 25, 7, and 27 respectively.</p>       <p><b>Conclusions. </b>The extract from <i>H. antioquensis </i>proved a promising candidate for Chagas disease treatment. Futhermore, the MTT enzymatic micromethod was a useful tool for screening biological activity on epimastigotes and other stages of the parasite for further extract trials.</p>       <p><b>Key words: </b><i>Trypanosoma cruzi</i>, Chagas disease, plants extracts.</p>  <hr size="1">      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La enfermedad de Chagas es una enfermedad infecciosa causada por el par&aacute;sito protozoario <i>Trypanosoma cruzi</i>. La enfermedad se extiende por 21 pa&iacute;ses de Centroam&eacute;rica y Suram&eacute;rica y est&aacute; asociada con la pobreza, las malas condiciones de vivienda y los desplazamientos masivos desde los ambientes rurales a las ciudades. Representa la segunda mayor carga econ&oacute;mica en Am&eacute;rica entre las enfermedades transmitidas por vectores, y se calcula que existen 15 millones de infectados y 28 millones de personas en riesgo, con un promedio de 41.200 nuevos casos por a&ntilde;o (1). En Colombia, entre 700.000 y 1&middot;200.000 personas est&aacute;n infectadas y ocho millones est&aacute;n en riesgo de infecci&oacute;n (2).</p>     <p>La quimioterapia para la enfermedad de Chagas  se basa en dos medicamentos descubiertos  hace mas de 30 a&ntilde;os: nifurtimox (3-metil-4-(5&middot;-  nitrofurfurilideneamina) tetrahidro-4H-1,4-tiazina-1,1-  di&oacute;xido) y benznidazol (2-nitroimidazol (N-benzil-  2-nitroimidazol) acetamida), que son efectivos  durante la fase aguda de la enfermedad (hasta 80 %  de &eacute;xito) (3), as&iacute; como en la fase cr&oacute;nica temprana  (hasta 60 % de &eacute;xito) (4,5), aunque hay reportes que discrepan de estos resultados (6,7).</p>      <p>El tratamiento es de larga duraci&oacute;n (promedio de 60 d&iacute;as) y unos de los principales inconvenientes provienen de la resistencia observada en algunas cepas del par&aacute;sito y de la alta toxicidad manifestada en efectos colaterales, como c&oacute;licos, v&oacute;mito, anorexia, dermopat&iacute;as al&eacute;rgicas, insomnio, linfoadenopat&iacute;as y dolor muscular, depresi&oacute;n de la m&eacute;dula espinal, trombocitopenia y agranulocitosis, polineuropat&iacute;a, parestesia y polineuritis de nervios perif&eacute;ricos (8). Aproximadamente, el 16 % de los pacientes cr&oacute;nicos tratados con benznidazol abandonan el tratamiento por sus efectos colaterales (1). En este sentido, se hace necesario encontrar nuevas sustancias con actividad tripanocida, con menores efectos colaterales, que permitan el desarrollo de tratamientos m&aacute;s cortos y con efectividad en las diferentes cepas del par&aacute;sito.</p>      <p>Desde hace m&aacute;s de 20 a&ntilde;os se viene explorando la b&uacute;squeda de nuevos antiparasitarios en los productos naturales (9,10). Sin embargo, hasta ahora es poco el conocimiento sobre las potencialidades de la flora colombiana como fuente de nuevos agentes contra el par&aacute;sito <i>T. cruzi</i>. En el presente estudio se evalu&oacute; <i>in vitro</i> el potencial tripanocida de extractos obtenidos de 23 especies de plantas que crecen en Colombia, pertenecientes a familias en las cuales se ha demostrado la presencia de metabolitos secundarios con actividad antiparasitaria, como son las familias Solanaceae, Annonaceae, Asteraceae, Euphorbiaceae y Ebenaceae, y otras plantas con actividad desconocida (11).</p>     <p>Conjuntamente, se evalu&oacute; la citotoxicidad in vitro de los extractos y se calcul&oacute; el &iacute;ndice de selectividad o proporci&oacute;n entre la actividad contra el par&aacute;sito y la citotoxicidad registrada. Algunos extractos activos en los bioensayos iniciales con epimastigotes se probaron en tripomastigotes y amastigotes intracelulares, y mostraron excelentes resultados. Estos extractos son candidatos promisorios para seguir estudios de bioprospecci&oacute;n en el tratamiento de la enfermedad de Chagas.</p>     <p><b>Materiales y m&eacute;todos</b></p>      <p><b><i>Material vegetal</i></b></p>     <p>Las familias y especies de plantas seleccionadas  para este estudio se recolectaron en los departamentos de Antioquia, Risaralda y Santander. Se identificaron en los herbarios de la Universidad de Antioquia y de la Universidad Nacional de Colombia, sede Bogot&aacute;. Las plantas estudiadas fueron las siguientes: <i>Annona muricata, Desmopsis panamensis, Ephedranthus colombianus, Guatteria cf. Tonduzii, Pseudomalmea boyacana, Rollinia exsucca, R. pittieri, Achyrocline bogotensis, Achyroclines sp., Chromolaena perglabra, Gnaphalium meridanum, Pentacalia sp., Diospyros artantifolia, Euphorbia cotinifolia, E. heterophylla, E. splendens, Hieronyma antioquensis, Acnistus arborecens, Cuatresia riparia, Larnax sachapapa, Solanum laevigatum, S. nematorhachis y S. Psychotrioides</i>.</p>      <p><b><i>Preparaci&oacute;n de extractos</i></b></p>      <p>Las hojas, tallos o plantas enteras se secaron a temperatura ambiente por varios d&iacute;as y se sometieron a percolaci&oacute;n en fr&iacute;o. Para el arrastre de sustancias apolares, se utiliz&oacute; &eacute;ter de petr&oacute;leo o hexano, para sustancias de polaridad intermedia, diclorometano o acetato de etilo, y para un perfil de sustancias m&aacute;s polares, metanol o etanol. Para las plantas <i>S. nematorhachis </i>y <i>S. psychotrioides</i>, el material vegetal seco se tritur&oacute; con etanol al 90 % y los restos del solvente se eliminaron por rotaevaporaci&oacute;n.</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El extracto se disolvi&oacute; de nuevo en la mezcla triple de hexano, diclorometano y metanol en proporci&oacute;n 2:1:1, y la parte insoluble en la mezcla triple se disolvi&oacute; en metanol. Los extractos se llevaron a sequedad para la eliminaci&oacute;n de los solventes. Para la planta <i>C. riparia </i>se obtuvo extracto acuoso. En todos los casos, los restos del solvente se eliminaron por rotaevaporaci&oacute;n. Los extractos se disolvieron en polivinilpirrolidona (PVP) en proporci&oacute;n 1:4 (compuesto: PVP) para mejorar su solubilidad y se diluyeron en soluci&oacute;n salina amortiguada con fosfatos (PBS) a pH 7,2 (12).</p>     <p><b><i>Actividad contra epimastigotes de</i></b> <b><i>Trypanosoma cruzi</i></b></p>      <p>Epimastigotes de la cepa HA de <i>T. cruzi</i>, aislada de humano en el departamento de Casanare, Colombia, y caracterizada como unidad de tipificaci&oacute;n discreta I mediante el an&aacute;lisis molecular del gen miniex&oacute;n, se incubaron junto a los extractos en medio LIT enriquecido con suero fetal bovino al 10 % durante 96 horas a 28&deg;C.</p>       <p>La viabilidad de los par&aacute;sitos se midi&oacute; seg&uacute;n la formaci&oacute;n de cristales de formaz&aacute;n despu&eacute;s de agregar bromuro de 3-(4,5-dimetiltiazol-2-il)-2,5- difeniltetrazolio) (MTT) seg&uacute;n la metodolog&iacute;a descrita (13). La formaci&oacute;n de los cristales se determin&oacute; en un lector de ELISA (BioRad) a una densidad &oacute;ptica de 595 nm.</p>       <p>Se estim&oacute; la concentraci&oacute;n a la cual los extractos disminu&iacute;an al 50 % el crecimiento de los par&aacute;sitos o concentraci&oacute;n inhibitoria 50 (CI<sub>50</sub>). Para todos los experimentos, el medicamento benznidazol (Rochagan-Roche), el solvente PVP y el medio de cultivo, se utilizaron como controles de crecimiento.</p>       <p>Los niveles de actividad de los extractos se agruparon en cuatro categor&iacute;as, de la siguiente manera: muy activos, para extractos con CI<sub>50</sub> menores de 10&micro;g/ml; activos, aqu&eacute;llos con CI<sub>50</sub> entre 10 y 50&micro;g/ml; actividad baja, para extractos con CI<sub>50</sub> entre 51 y 100 &micro;g/ml; y extractos no activos, con CI<sub>50</sub> por encima de 100 &micro;g/ml (14,15).</p>       <p><b><i>Citotoxicidad en c&eacute;lulas U937</i></b></p>      <p>La citotoxicidad se evalu&oacute; en la l&iacute;nea celular de promonocitos humanos U937. Despu&eacute;s de 96 horas de incubaci&oacute;n en presencia de los extractos, la viabilidad de las c&eacute;lulas se determin&oacute; de acuerdo con la producci&oacute;n de cristales de formaz&aacute;n, despu&eacute;s de la adici&oacute;n de MTT, como se describi&oacute; previamente. Se usaron como controles c&eacute;lulas bajo las mismas condiciones, pero en ausencia de los extractos.</p>       <p>Los resultados se expresaron como la concentraci&oacute;n inhibitoria 50 (CI<sub>50</sub>), que corresponde a la concentraci&oacute;n a la cual ocurre el 50 % de muerte celular. La citotoxicidad se categoriz&oacute; en los siguientes tres niveles: citot&oacute;xico, para los extractos con CI<sub>50</sub> menores de 50 &micro;g/ml; medianamente citot&oacute;xicos, para extractos con CI<sub>50</sub> entre 51 y 100&micro;g/ml, y extractos levemente citot&oacute;xicos, para aqu&eacute;llos con CI<sub>50</sub> por encima de 100 &micro;g/ml (15).</p>       <p><b><i>Actividad contra tripomastigotes de T.cruzi</i></b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los extractos con buena actividad en epimastigotes y baja citotoxicidad, fueron evaluados en tripomastigotes. Para esta prueba se seleccionaron extractos con un &iacute;ndice de selectividad de 3 o m&aacute;s En este ensayo, 2 x 106 tripomastigotes/ml se incubaron junto a los extractos o benznidazol en medio RPMI 1640 con suplemento de suero fetal bovino al 5 %, durante 24 horas, a 37&deg;C y 5 % de CO2, en platos de 24 pozos y usando como control de viabilidad los par&aacute;sitos incubados s&oacute;lo con medio.</p>     <p>Cada ensayo se hizo por triplicado y en dos experimentos independientes. El conteo de par&aacute;sitos vivos se hizo por observaci&oacute;n directa al microscopio en c&aacute;mara de Neubauer. Para medir la actividad, se calcul&oacute; la concentraci&oacute;n a la cual sobreviv&iacute;an el 50 % de los tripomastigotes con respecto al control (CI<sub>50</sub>), como se mencion&oacute; anteriormente.</p>       <p><b><i>Actividad contra amastigotes intracelulares de</i></b> <b><i>T. cruzi</i></b></p>      <p>Para la obtenci&oacute;n de amastigotes, se sembraron 1 x 105 c&eacute;lulas U937/ml en medio RPMI 1640 y 100 ng/ml de forbol 12-miristato 13-acetato (PMA). Para su adhesi&oacute;n, 1 ml de c&eacute;lulas en suspensi&oacute;n se incubaron durante 48 horas a 37 &deg;C y 5 % de CO<sub>2</sub>, en placas de 24 pozos, con cambio por medio fresco sin PMA a las 24 horas. Las c&eacute;lulas adheridas se infectaron con tripomastigotes de <i>T.</i> <i>cruzi </i>en proporci&oacute;n c&eacute;lula:par&aacute;sitos de 1:10. Las c&eacute;lulas se dejaron en contacto con los par&aacute;sitos por 24 horas, a 37&deg;C, con CO<sub>2</sub> al 5 % en medio RPMI enriquecido con 5 % de suero fetal bovino. Despu&eacute;s de la incubaci&oacute;n, se cambi&oacute; el medio, se agregaron las diferentes concentraciones de los extractos y se dejaron en incubaci&oacute;n por 48 horas. Cada tratamiento se hizo por triplicado. Para el control de viabilidad, se utilizaron c&eacute;lulas infectadas sin tratamiento. Las c&eacute;lulas se lavaron, se fijaron con metanol y se colorearon con Giemsa.</p>     <p>La observaci&oacute;n del desarrollo y el conteo de los amastigotes se hizo seg&uacute;n la metodolog&iacute;a descrita en trabajos anteriores (16,17). Los resultados se expresaron como CE50, entendida como la concentraci&oacute;n a la cual la carga de amastigotes intracelulares disminuye 50 % con respecto al control. Para esta prueba, se selecciono el extracto que fue activo contra epimastigotes y tripomastigotes y mostr&oacute; baja citotoxicidad.</p>       <p><b><i>&Iacute;ndice de selectividad</i></b></p>      <p>Para observar la relaci&oacute;n entre la citotoxicidad y la actividad registrada, se us&oacute; como indicador el &iacute;ndice de selectividad, que corresponde al cociente entre la CI<sub>50</sub> en c&eacute;lulas y la CI<sub>50</sub> en los diferentes estadios del par&aacute;sito. Entre mayor sea la relaci&oacute;n, mayor ser&aacute; el valor de &iacute;ndice de selectividad.Para las pruebas en tripomastigotes y amastigotes, se consideraron selectivos los extractos con &iacute;ndice de selectividad de 3 o m&aacute;s, y muy selectivos, aqu&eacute;llos con un &iacute;ndice de 10 o m&aacute;s.</p>       <p><b><i>Tratamiento de datos</i></b></p>      <p>Todos los bioensayos se hicieron por triplicado en dos experimentos independientes. Las CI<sub>50</sub> se obtuvieron con el m&eacute;todo de an&aacute;lisis dosis- respuesta Probit (18), usando el programa Probit 2.0&reg;.</p>       <p><b>Resultados</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><i>Actividad contra epimastigotes y citotoxicidad</i></b></p>      <p>De los 64 extractos obtenidos de las plantas, 37 mostraron actividad contra epimastigotes de <i>T.</i> <i>cruzi </i>(<a href="#cuadro1">cuadro 1</a>). La mayor&iacute;a (81 %) de los extractos activos o muy activos contra epimastigotes resultaron ser citot&oacute;xicos. Sin embargo, once extractos alcanzaron un &iacute;ndice de selectividad entre 3 y 10, y s&oacute;lo dos extractos alcanzaron &iacute;ndices mayores de 10. Las CI<sub>50</sub> menores, equivalentes a las mayores actividades, las alcanzaron los extractos de las plantas <i>S. psychotrioides</i>, <i>L.</i> <i>sachapapa </i>y <i>H. antioquensis</i>. Esta &uacute;ltima mostr&oacute; un &iacute;ndice de selectividad mayor de 22. Los extractos de <i>Pentacalia </i>sp. y <i>C. riparia </i>fueron activos y registraron las menores citotoxicidades, con CI<sub>50</sub> superiores a 100&micro;g/ml.</p>      <p>    <center><a name="cuadro1"><img src="img/revistas/bio/v31n4/4a10t1.gif"></a></center></p>       <p>Los resultados para los extractos con actividad baja y los no activos, se presentan en el <a href="#cuadro2">cuadro 2</a>. Las plantas <i>Achyroclines </i>sp., <i>G. meridanum</i>, <i>E. cotinifolia </i>y <i>E. heterophylla</i>, exhibieron poca o ninguna actividad contra el par&aacute;sito con los diferentes solventes usados. Adem&aacute;s, los resultados obtenidos para el solvente PVP indicaron que, a las concentraciones usadas, no fueron t&oacute;xicos para el par&aacute;sito (datos no mostrados).</p>      <p>    <center><a name="cuadro2"><img src="img/revistas/bio/v31n4/4a10t2.gif"></a></center></p>       <p><b><i>Actividad contra tripomastigotes y</i></b> <b><i>amastigotes</i></b></p>      <p>Para los ensayos contra tripomastigotes se seleccionaron cinco extractos que fueron muy activos en epimastigotes<i>. </i>Los resultados se presentan en el <a href="#cuadro3">cuadro 3</a>. De los cinco extractos seleccionados, cuatro mostraron actividad contra tripomastigotes. Los extractos de <i>H. antioquensis </i>y <i>L. sachapapa</i> mostraron la mejor actividad contra tripomastigotes, con CI<sub>50</sub> de 11,48&micro;g/ml e &iacute;ndice de selectividad de 6,8, y CI<sub>50</sub> menor de 2 &micro;g/ml e &iacute;ndice de selectividad mayor de 11, respectivamente. La CI<sub>50</sub> contra tripomastigotes para el extracto de <i>L. sachapapa</i> fue cercana a la CI<sub>50</sub> en tripomastigotes registrada con benznidazol.</p>      <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="cuadro3"><img src="img/revistas/bio/v31n4/4a10t3.gif"></a></center></p>      <p>Debido a su buena actividad en epimastigotes y tripomastigotes y a su abundancia, el extracto de <i>H. antioquensis </i>fue elegido para probarlo en amastigotes intracelulares. Los resultados mostraron una CE50 de 2,85&micro;g/ml y un &iacute;ndice de selectividad de 27,5, lo cual indica que es un candidato promisorio para el tratamiento de la enfermedad de Chagas.</p>       <p><b>Discusi&oacute;n</b></p>      <p>&Eacute;ste es el primer estudio de bioprospecci&oacute;n de un gran n&uacute;mero de plantas colombianas con actividad tripanocida. En todas las familias de plantas estudiadas, se encontr&oacute; alta actividad tripanocida en epimastigotes, lo que indica la posible existencia de una gama de sustancias bioactivas por determinar y que justifica la continuaci&oacute;n de la bioprospecci&oacute;n en la flora colombiana.</p>       <p>En este trabajo se reporta la actividad contra epimastigotes de las plantas de las especies <i>C. riparia</i>, <i>L. sachapapa</i>, <i>S. laevigatum, S.</i> <i>nematorhachis </i>y <i>S. psychotrioides</i>, y se confirma la actividad tripanocida reportada para <i>Acnistus arborecens </i>(19). Adem&aacute;s, se reporta actividad contra tripomastigotes, el estado infeccioso del par&aacute;sito, de <i>S. nematorhachis</i>, <i>S. psycothroides </i>y <i>L. sachapapa. </i>En reportes previos se encontraron lactonas esteroideas o withanolidos, denominados as&iacute; por ser obtenidos de la planta whitania, en <i>A. arborescens, </i>los cuales se muestran como potentes inhibidores del crecimiento de epimastigotes de <i>T. cruzi </i>(20). De igual manera, otros compuestos como withafisalin O, M y N, obtenidos de esta planta, mostraron actividad tripanocida y menor citotoxicidad (19). Adem&aacute;s, la presencia de sustancias de este tipo y su actividad contra par&aacute;sitos, como por ejemplo <i>Leishmania (V)</i> <i>panamensis</i>, se ha confirmado en otras plantas de esta misma familia (21). Es recomendable confirmar la presencia de withanolidos en las solan&aacute;ceas utilizadas en este estudio.</p>       <p>Por otra parte, en los estudios con diferentes plantas de la familia Annonaceae se ha demostrado la presencia de metabolitos secundarios con actividad biol&oacute;gica (22). Por lo tanto, no es sorprendente que las siete especies de la familia Annonaceae incluidas en este estudio mostraran actividad contra epimastigotes, destac&aacute;ndose por sus bajas concentraciones efectivas <i>D. panamensis</i>, <i>Rollinia</i> <i>exsucca </i>y <i>Pseudomalmea boyacana.</i> En este trabajo se estudia por primera vez la actividad de <i>Ephedranthus colombianus </i>y <i>Guatteria</i> <i>cf. Tonduzzi </i>contra epimastigotes, mientras que en otros trabajos se ha reportado actividad para <i>A. muricata</i>, <i>R. exsucca </i>y <i>R. pittieri </i>(15). Se cree que, en esta familia de plantas, las acetogeninas presentes pueden ser responsables de la actividad antiparasitaria, aunque con gran citotoxicidad (23,24).</p>       <p>Para las plantas de la familia Asteraceae, se reporta por primera vez la actividad contra epimastigotes de <i>Achyroclines bogotensis</i>, <i>Chromolaena pergabra </i>y <i>Pentacalia </i>sp., todas en el extracto crudo o en las fracciones en &eacute;ter de petr&oacute;leo, lo cual puede indicar la presencia de una sustancia tripanocida similar en las tres plantas. Tanto para el g&eacute;nero <i>Chromolaena </i>como para el g&eacute;nero <i>Achyrocline</i>, se ha reportado la presencia de flavonoides con mayor abundancia en las partes a&eacute;reas (25).</p>       <p>&Eacute;sta es la primera vez que se demuestra actividad tripanocida para <i>A. bogotensis</i>, pero existen indicios de actividad tripanocida en otra especie del g&eacute;nero, <i>Achyrocline satureioides</i>, con la cual se observ&oacute; lisis de tripomastigotes aunque a altas concentraciones (26). En <i>Pentacalia </i>sp., la baja citotoxicidad observada es interesante, ya que precisamente la gran toxicidad de los compuestos en uso para el tratamiento de la enfermedad de Chagas, es uno de los principales problemas por resolver. El determinar el potencial tripanocida en tripomastigotes y amastigotes ser&iacute;a el camino por seguir, as&iacute; como iniciar la determinaci&oacute;n de los metabolitos presentes.</p>       <p>M&aacute;s de 130 especies de <i>Diospyros </i>se han estudiado, en las que se ha demostrado la amplia presencia de naftoquinonas (27), entre las que se destacan las O-naftoquinonas, como la &alpha;-lapachona, &beta;-lapachona y sus an&aacute;logos, y las mansononas, como sustancias citot&oacute;xicas e inhibidoras del crecimiento de tripanosom&aacute;tidos (28). En este estudio se reporta por primera vez actividad tripanocida y gran citotoxicidad en el extracto en hexano de <i>Diospyros arthantifolia.</i></p>      <p>De la familia Euphorbiaceae se estudiaron tres plantas del g&eacute;nero <i>Euphorbia </i>y se observ&oacute; en todas gran citotoxicidad. S&oacute;lo en <i>E. splendens </i>se registr&oacute; acci&oacute;n tripanocida en epimastigotes, una actividad no reportada con anterioridad para la especie. <i>H. antioquensis </i>fue una planta destacada. Los resultados obtenidos en tripomastigotes y en amastigotes con esta planta, sugieren la presencia de sustancias capaces de ser absorbidas, inhibir la formaci&oacute;n de amastigotes dentro de las c&eacute;lulas y reducir la cantidad de tripomastigotes liberados al medio, lo que supone un avance importante desde lo observado en los epimastigotes. Los resultados en amastigotes y tripomastigotes son un buen punto de partida para continuar estudios con <i>H.</i> <i>antioquensis </i>en el modelo <i>in vivo.</i></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En este estudio hubo concordancia entre la actividad de los extractos observada en epimastigotes y la actividad encontrada en los tripomastigotes. Esto indica que el ensayo masivo en epimastigotes es una buena prueba de tamizaci&oacute;n con miras a encontrar compuestos activos en otros estadios del par&aacute;sito.Todos los extractos y fracciones activos contra <i>T. cruzi </i>podr&iacute;an ser candidatos para continuar los estudios, ya que la gran citotoxicidad podr&iacute;a deberse a sustancias diferentes a las que est&aacute;n actuando sobre los par&aacute;sitos o a un efecto sin&eacute;rgico entre las sustancias presentes en el extracto crudo, y podr&iacute;a disminuir con la separaci&oacute;n en fracciones o con el aislamiento de mol&eacute;culas (29). Tambi&eacute;n, ser&iacute;a importante determinar la genotocixidad de los extractos activos como una aproximaci&oacute;n a la identificaci&oacute;n de las causas de los efectos colaterales, como ocurre con el benznidazol, cuyo potencial genot&oacute;xico se ha demostrado (30,31).</p>     <p>Finalmente, los resultados indican que las plantas colombianas son una fuente potencial de sustancias con bioprospecci&oacute;n para el tratamiento de las enfermedades consideradas como desatendidas por la Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud. Particularmente, en esta investigaci&oacute;n se reporta actividad tripanocida nueva para 13 plantas en epimastigotes, para cuatro de ellas en tripomastigotes y para una en amastigotes intracelulares de <i>T.</i> <i>cruzi</i>. Estos resultados abren nuevas perspectivas de investigaci&oacute;n sobre la flora colombiana y la quimioterapia, para la enfermedad de Chagas y para otros par&aacute;sitos de importancia m&eacute;dica<i>.</i></p>      <p><b>Conflicto de intereses</b></p>      <p>Todos los autores de este trabajo declaramos que no existe conflicto de intereses.</p>       <p><b>Financiaci&oacute;n</b></p>      <p>Este trabajo se realiz&oacute; en el marco del proyecto 1115-04-1449 &quot;B&uacute;squeda de antiparasitarios de la flora colombiana&quot;, financiado por Colciencias.</p>     <p>Correspondencia:   Omar Triana, Grupo BiologÃ­a y Control de Enfermedades    Infecciosas, Laboratorio 620, Sede de InvestigaciÃ³n    Universitaria, Universidad de Antioquia, Calle 62 NÂº 52-59,    MedellÃ­n, Colombia.    TelÃ©fono: (5704) 219 6520 <a href="mailto:otriana@gmail.com">otriana@gmail.com</a></p>        <p><b>Referencias</b></p>      <!-- ref --><p>1. <b>Guhl F, Lazdins-Held J. </b>Grupo de trabajo cient&iacute;fico sobre la enfermedad de Chagas, Geneva: Special Programme for Research and Training in Tropical Diseases; 2007. p. 5-31.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-4157201100040001000001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. <b>Padilla JC. </b>Situaci&oacute;n de la enfermedad de Chagas en Colombia. Memorias. En: Guhl F, editor. Primer taller internacional sobre control de la enfermedad de Chagas. Curso de diagn&oacute;stico, manejo y tratamiento de la enfermedad de Chagas. Sexta reuni&oacute;n de la iniciativa andina para el control de la enfermedad de Chagas. Bogot&aacute;: Ediciones Uniandes; 2005. p. 19-24.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-4157201100040001000002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. <b>Can&ccedil;ado JR. </b>Criteria of Chagas disease cure. Mem Inst Oswaldo Cruz. 1999;94:331-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-4157201100040001000003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. <b>de Andrade LS, Zicker F, Rassi A, Rassi AG, Oliveira RM,</b> <b>Silva SA, </b><b><i>et al</i></b><b>. </b>Early electrocardiographic abnormalities in <i>Trypanosoma cruzi</i>-seropositive children. Am J Trop Med Hyg. 1998;59:530-4.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-4157201100040001000004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. <b>Sosa-Estani S, Segura EL. </b>Treatment of <i>Trypanosoma</i> <i>cruzi </i>infection in the undetermined phase. Experience and current guidelines in Argentina. Mem Inst Oswaldo Cruz. 1999:94(Suppl.1):363-5.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-4157201100040001000005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. <b>Silveira CA, Castillo E, Castro C. </b>Avalia&ccedil;&atilde;o do tratamiento especifico para o <i>Trypanosoma cruzi </i>en cria&ccedil;as, na evolucion da fase indeterminada. Rev Soc Bras Med Trop. 2000;33:191-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-4157201100040001000006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. <b>Solari A, Ortiz S, Soto A, Arancibia C, Campillay R,</b> <b>Contreras M, </b><b><i>et al</i></b><b>. </b>Treatment of <i>Trypanosoma cruzi</i>infected children with nifurtimox: A 3-year follow-up study. J Antimicrob Chemother. 2001;48:515-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-4157201100040001000007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. <b>Kirchhoff LV. </b>American trypanosomiasis (Chagas&acute; disease). En: Rakel RE, editor. Conn&acute;s current therapy. New York, USA: W.B. Saunders; 2000. p. 101-2.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-4157201100040001000008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. <b>Phillipson JD, Wright CW. </b>Medicinal plants against protozoal diseases. Trans R Soc Trop Med Hyg.1991;85:155-65.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-4157201100040001000009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. <b>Kayser O, Kinderlen AF, Croft SL. </b>Natural products as antiparasitic drugs. Parasitol Res. 2003;90:55-62.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-4157201100040001000010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. <b>Osorio EJ, Robledo SM, Bastida J. </b>Alkaloids with antiprotozoal activity. Alkaloids Chem Biol. 2008;66:113-90.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-4157201100040001000011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. <b>D&acute;Souza AJ, Schowen RL, Topp EM. </b>Polyvinylpyrrolidonedrug conjugate: Synthesis and release mechanism. J Control Release. 2004;94:91-100.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-4157201100040001000012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. <b>Weniger B, Robledo S, Arango GJ, Deharo E, Aragon R,</b> <b>Mu&ntilde;oz V, </b><b><i>et al</i></b><b>. </b>Antiprotozoal activities of Colombian plants. 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Atienza J, Mart&iacute;nez RA, G&oacute;mez A, Escario JA, Herrero</b> <b>A, Ochoa C, </b><b><i>et al</i></b><b>. </b>Activity assays of thiadiazine derivates on <i>Trichomonas vaginalis </i>and amastigote forms of T<i>rypanosoma cruzi</i>. Chemotherapy. 1992;38:441-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-4157201100040001000016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. <b>Mart&iacute;nez RA. </b>Variabilidad intraespec&iacute;fica en <i>Trypanosoma</i> <i>cruzi </i>y ensayo de nuevos m&eacute;todos para el cribado farmacol&oacute;gico (tesis). Madrid: Universidad Complutense de Madrid; 1996. p. 130.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-4157201100040001000017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. <b>Finney JD. </b>Statistical logic in the monitoring of reactions to therapeutic drugs. Methods Inf Med.1971;10:237-45.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-4157201100040001000018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. <b>Vieira NC, Esp&iacute;ndola LS, Santana JM, Veras ML, Pessoa</b> <b>OD, Pinheiro SM, </b><b><i>et al</i></b><b>. </b>Trypanocidal activity of a new pterocarpan and other secundary metabolites of plants from northeastern Brazil flora. 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Phytochemistry. 2002;59:635-41.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-4157201100040001000020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. <b>Cardona D, Qui&ntilde;ones W, Torres F, V&eacute;lez ID, Orozco CI,</b> <b>Garzon J, </b><b><i>et al</i></b><b>. </b>Estructura y actividad leishmanicida de larnaxolida A y B, nuevos withan&oacute;lidos de <i>Larnax glabra</i> (Standl.) Sawyer. Actual Biol. 2005;27:81-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-4157201100040001000021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22. <b>Leboeuf M, Cav&eacute; A, Bhaumikk PK, Mukherjee B,</b> <b>Mukherjee R. </b>The phytochemistry of the Annonaceae. Phytochemistry. 1982;21:2783-813.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0120-4157201100040001000022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. <b>Raynaud-Le Grandic S, Fourneau C, Laurens A, Bories</b> <b>D, Hoquemiller R, </b><b><i>et al</i></b><b>. </b><i>In vitro </i>antileishmanial activity of acetogenins from Annonaceae. Biomed and Pharmacother. 2004;58:388-92.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-4157201100040001000023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24. <b>Jim&eacute;nez N. </b>Contribuci&oacute;n al estudio de la qu&iacute;mica y la actividad biol&oacute;gica de Annonaceae: actividad anti-leishmania de alcaloides de <i>Rollinia pittieri </i>y acetogeninas de <i>Rollinia</i> <i>exsucca </i>(tesis). Medell&iacute;n: Universidad de Antioquia; 2005. p. 84.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0120-4157201100040001000024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25. <b>Akinmoladun AC, Obuotor EM, Farombi EO. </b>Evaluation of antioxidant and free radical scavenging capacities of some Nigerian indigenous medicinal plants. J Med Food. 2010;13:444-51.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0120-4157201100040001000025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26. <b>Rojas A, Ferro E, Inchausti A, Ascurra M, Acosta</b> <b>N, Rodr&iacute;guez E, </b><b><i>et al</i></b><b>. </b>Mutagenicity, insecticidal and trypanocidal activity of some Paraguayan Asteraceae. J Ethnopharmacol. 1995;45:35-41.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0120-4157201100040001000026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27. <b>Mallavadhani U, Anita V, Panda K, Rao YR. </b>Pharmacology and chemotaxonomy of <i>Diospyros</i>. Phytochemistry. 1998;49:901-51.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0120-4157201100040001000027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28. <b>Croft SL, Evans AT, Neal RA. </b>The activity of plumbagin and other electron carriers against <i>Leishmania donovani</i> and <i>Leishmania mexicana</i>. Ann Trop Med Parasitol. 1985;79:651-3.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0120-4157201100040001000028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>29. <b>Campos FR, Janu&aacute;rio AH, Rosas LV, Nascimento SK,</b> <b>Pereira PS, Fran&ccedil;a SC, </b><b><i>et al</i></b><b>. </b>Trypanocidal activity of extracts and fractions of <i>Bertholletia excelsa</i>. Fitoterapia. 2005;76:26-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0120-4157201100040001000029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>30. <b>Melo M, Ferreira L. </b>Screening the mutagenic activities of commonly used antiparasite drugs by the simultest, a simplified <i>Salmonella</i>/microsome plate incorporation assay. Rev Inst Med Trop Sao Paulo. 1990;32:269-74.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0120-4157201100040001000030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>31. <b>Lacava ZG, Luna H. </b>The anticlastogenic effect of tocopherol in peritoneal macrophages of benznidazole-treated and ovariectomized mice. Mutat Res<i>. </i>1994;305:145-50.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0120-4157201100040001000031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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