EFECTO DE HONGOS MICORRIZICOS ARBUSCULARES EN PLÁNTULAS DE Elaeis guineensis (Palmaceae) CON ALTO NIVEL DE P EN EL SUELO

EFFECT OF ARBUSCULAR MYCORRHIZAL FUNGI IN Elaeis guineensis (Palmaceae) SEEDLINGS WITH HIGH PHOSPHORUS LEVEL IN THE SOIL

SILVIA EUGENIA BARRERA BERDUGO¹, Bióloga; NELSON F. RODRIGUEZ LOPEZ² M.Sc. Fisiología Vegetal. ¹Escuela de Biología, Facultad de Ciencias, Universidad Industrial de Santander, Calle 9, Carrera 27, ciudad universitaria, Bucaramanga, Colombia. silviaebarrera@tux.uis.edu.co . ²Profesor Escuela de Biología, Universidad Industrial de Santander. Bucaramanga Colombia. Grupo Nacional de Investigación en Ecofisiología & Metabolismo Vegetal Tropical. Actualmente, Estudiante-Doctorado en Fisiología Vegetal, UFV, Viçosa, MG, Brasil. fisionel@uis.edu.co

Presentado 25 de enero de 2009, aceptado 30 de junio de 2009, correcciones 13 de julio de 2009

RESUMEN

Los hongos micorrízicos arbusculares (HMA) facilitan la absorción de nutrientes a las plantas hospederas, por esta razón estos microorganismos cumplen un rol fundamental en el funcionamiento de los agroecosistemas. El objetivo de este trabajo fue evaluar el efecto de la asociación simbiótica entre HMA nativos y comerciales y plántulas de Elaeis guineensis en condiciones de vivero con un nivel alto de fósforo (P) en el suelo.

Plantas de tres meses de edad fueron sometidas a cuatro tratamientos: Inóculo Nativo (IN), Inóculo Comercial (IC), Mixto (M) y Testigo absoluto (TA). Se evaluaron los parámetros: peso seco total de la planta, peso seco raíz, peso seco parte aérea de la planta, altura de la planta, tasa de crecimiento relativo, colonización micorrízica y número de esporas en el suelo. Se realizaron tres muestreos, uno inicial (día 0), uno a los 45 y a los 90 días después del trasplante de las plántulas (ddt). Los datos fueron analizados mediante un ANOVA o Kruskall-Wallis según el comportamiento de los datos, seguido de un test de Duncan para comparar las medias o un test modificado de Tuckey para datos no paramétricos. Se observaron diferencias significativas en el número de esporas entre los tratamientos IN, M y TA, a los 45 ddt. Para la variable colonización micorrízica se observaron diferencias significativas a los 45 ddt entre los tratamientos IC y TA, mientras que a los 90 ddt se presentaron diferencias entre los tratamientos IN, IC y M, con respecto al TA. A pesar de que el nivel de P en el suelo fue alto, el porcentaje de colonización micorrízica estuvo por encima del 50% en los muestreos realizados a los 45 y 90 días. El tratamiento IN funcionó mejor que los tratamientos IC y M, para las condiciones edáficas de este experimento.

Palabras clave: E. guineensis, hongos micorrízicos arbusculares, número de esporas, colonización micorrízica, fósforo en suelo.

ABSTRACT

Key words: E. guineensis, arbuscular mycorrhizal fungi, spores number, mycorrhizal colonization, phosphorus in the soil.

INTRODUCCIÓN

Las micorrizas arbusculares son asociaciones simbióticas formadas entre hongos micorrízicos arbusculares (HMA) y la mayoría de las plantas vasculares, para actuar como un complemento de la raíz de la planta en la toma de nutrientes (Colozzi Filho y Cardoso, 2000), especialmente en la absorción de P (Smith y Read, 1997; Requena et ál., 2007).

Este complemento se da gracias a la extensión de un micelio extraradical que llega más allá de la zona de depleción de la raíz (Blancof y Salas, 1997), con el fin de absorber agua, además de nutrientes del suelo y formar puentes hifales con las raíces de las plantas cercanas, como mecanismo de transferencia de nutrientes entre hospederos (Peterson et ál., 2004).

La importancia ecológica de los HMA radica en los beneficios que aportan a las plantas que colonizan (Rodriguez et ál., 2004) y al grado de adaptación que los HMA presentan a determinadas condiciones edafoclimáticas, lo cual le permite mayores beneficios a un determinado hospedero con respecto a otros (Cuenca et ál., 2004). En estudios ecológicos se ha evaluado el efecto de HMA nativos y comerciales sobre las especies vegetales, observándose respuestas tanto positivas como negativas en el crecimiento de las plantas, por lo que también dependen del genotipo de la planta con la cual se asocian (Klironomos, 2003).

Elaeis guineensis Jacq. (Palma de aceite) es una planta tropical perenne, con un ciclo de vida que puede sobrepasar los 100 años y un promedio de vida productiva de 25 a 30 años (Revelo, 2002). Su importancia radica en la producción de aceite, por lo que se requiere obtener un alto rendimiento de los cultivos debido a la gran demanda que genera en el sector comercial el procesamiento del fruto para la fabricación de productos como aceite para freír, margarinas, aceite para motores diesel, alcoholes ácidos, etc. (CEA y J.E.Austin Associates, 2002).

La palma de aceite forma asociación simbiótica con HMA nativos en su hábitat natural (Sieverding, 1991). Chu, (1997) y Corley y Tinker, (2003) han planteado que es funcionalmente dependiente de estos hongos ya que plántulas crecidas en suelo estéril no se desarrollan adecuadamente al no estar colonizadas por este tipo de microorganismos. En condiciones de vivero, han sido reportados resultados favorables de los HMA sobre el crecimiento de la palma de aceite, en intervalos de tiempo cortos y largos, así como en la absorción de nutrientes (Blal et ál., 1990; Chu, 1997), aún con concentraciones altas de fósforo en el suelo (Motta y Munévar, 2005). Teniendo como base esos datos, el objetivo de este trabajo fue evaluar el efecto de la asociación simbiótica entre HMA nativos y comerciales y plántulas de E. guineensis en condiciones de vivero con un nivel alto de fósforo (P) en el suelo.

MATERIALES Y METODOS

El experimento se realizó en la Granja Experimental Guatiguará (Piedecuesta-Santander), en condiciones de vivero. Se utilizaron plantas de 3 meses de edad (provenían de fase de vivero). La temperatura mínima promedio fue de 19ºC y la temperatura máxima 35ºC. Las plántulas de E. guineensis cultivar Tenera fueron trasplantadas a bolsas de polietileno de 12 kg que contenían una mezcla de suelo y arena de río en una proporción 3:1. El suelo mostró una textura franco-arenosa con las siguientes características químicas: pH=6.8, MO=1.9%, N=0.095%, P=59 ppm y Ca=11.7, K=0.32 y Mg=1.2 meq/100 g de suelo y fue esterilizado previamente con Basamid (Dazomet: 3,5-dimetil-(2H)-tetrahidro-1,3,5 tiadazina-2-tiona) a la dosis recomendada (60 g/m2). Los inóculos utilizados fueron: inóculo nativo (IN), aislado de las zonas palmicultoras de Santander con 32 esporas/g de suelo y el inóculo Comercial (IC), producto SUPPRAcon 34 esporas/g de suelo; los cuales se aplicaron a razón de 25g por planta y 12.5g de cada inóculo para el inóculo mixto (M), mezcla de IN con IC; así como un testigo absoluto (TA)La identificación de las especies del inóculo nativo fue realizada en el laboratorio de microbiología de suelos de la Universidad de Blumenau SC Brasil; tanto estas como las especies presentes en el inóculo comercial se muestran en la Tabla 1. Cada 10 días se aplicaron 100 ml de solución de nutrientes de Hoagland baja en P (0,11 g/L NH4H2PO4).

PARAMETROS DE CRECIMIENTO VEGETAL

Los parámetros de crecimiento evaluados en la planta fueron el peso seco total de la planta (PST), peso seco raíz (PSR), peso seco parte aérea de la planta (PSPA), altura de la planta (AP), y se calculó la tasa de crecimiento relativa (TCR). El área foliar se estimó usando el programa CompuEye, Leaf & Symptom Area Versión. 11.001 (Bakr, 2004).

FASE DE LABORATORIO

Para determinar el porcentaje de colonización micorrízica se tomaron 10 raicillas al azar por planta de un centímetro de largo y se tiñeron con azul de tripán siguiendo la metodología de Phillips y Hayman, (1970) con algunas modificaciones hechas por Sieverding (1991), apropiadas para suelos tropicales. El porcentaje de colonización se obtuvo a partir del número de campos positivos (presencia de arbúsculos, vesículas o hifas) sobre el número de campos totales multiplicado X 100. Esto se hizo con ayuda de un microscopio óptico (LW Scientific). Para el aislamiento de esporas se tomaron 10 g de suelo de la rizosfera de la planta al momento del muestreo, siguiendo el método descrito por Gerdemann y Nicolson, (1963) de tamizado húmedo y centrifugación con sacarosa teniendo en cuenta las modificaciones hechas realizadas por Sieverding, (1991) apropiadas para suelos tropicales. La cuantificación se realizó en un estereoscopio (Olimpus) utilizando placa de conteo.

DISEÑO EXPERIMENTAL Y ANÁLISIS ESTADISTICO

Se utilizó un diseño completamente aleatorizado, con los tratamientos: IN; IC; Mixto y TA. En cada uno de los tratamientos se emplearon 15 unidades experimentales y se tomaron cinco plantas por muestreo. Se realizaron tres muestreos, uno inicial de masa seca al comienzo del experimento, el segundo a los 45 días después del trasplante de las plantas (ddt) y el tercero a los 90 ddt.

Los datos obtenidos fueron analizados por muestreos de forma independiente y se realizaron pruebas de normalidad, homogeneidad de varianza y posteriormente un ANOVA o Kruskal Wallis según se comportaran los datos como paramétricos o no paramétricos. Se hizo una prueba de comparación de medias de Duncan (p≤0.05) o una prueba de Tuckey modificada para los datos no paramétricos donde se presentaron diferencias (Zar, 1999). El análisis se realizó en el programa SPSS versión 12.0 para Windows (SPSS Inc., 2003). Para calcular las medias de la TCR en cada intervalo de tiempo se utilizó el método de la aproximación clásica mediante la hoja de Excel propuesta por Hunt., et ál., (2002) para cada tratamiento, seguida de una prueba de comparación de medias de Duncan (p≤0.05) para determinar las diferencias significativas entre estos.

RESULTADOS

No se presentaron diferencias significativas a los 45 ddt y a los 90 ddt para las respuestas de crecimiento de las plantas (Tabla 2). En los tres intervalos de tiempo evaluados no se presentaron diferencias significativas para la TCR, sin embargo, se puede apreciar que hay una disminución de esta variable para el segundo intervalo de tiempo, mientras que al final del experimento se empieza a notar un leve aumento (Fig 1). Para el tratamiento TA la disminución en el segundo intervalo de tiempo fue mayor que en el resto de los tratamientos (Fig 1).

COLONIZACIÓN MICORRÍZICA Y NÚMERO DE ESPORAS

A los 45 ddt el porcentaje de colonización micorrízica fue alto a pesar de que el nivel de P en el suelo también fue alto (Tabla 2). El tratamiento IC presentó la colonización micorrízica más alta con 69.90% (± 8.08). Se observaron diferencias significativas para esta variable entre los tratamientos IC y TA.

Se observaron diferencias en el porcentaje de colonización micorrízica a los 90 días entre los tratamientos IN, IC y M con respecto al TA. En el tratamiento TA se incrementó la colonización micorrízica de 19.94 % a 38.04 % (Tabla 2) a través del tiempo.

Se observaron diferencias significativas en el número de esporas entre los tratamientos M-IN y M-TA a los 45 ddt (Tabla 2). Fueron aisladas 81 esporas/gramo (± 11.4) de suelo del tratamiento M, siendo este el de mayor número de esporas aislado. A los 90 ddt no se presentaron diferencias significativas en el número de esporas.

DISCUSIÓN

Debido a que el tratamiento TA presentó colonización micorrízica, no se observaron diferencias entre los tratamientos para las variables de crecimiento evaluadas en las plantas, no obstante, se tiene evidencia de que plántulas de palma de aceite en suelo estéril no se desarrollaron sin la presencia de HMA, aún cuando el nivel de P total en el suelo es de 66 ppm (Blal et ál., 1990).

Es importante tener en cuenta que la formación de la simbiosis micorrízica genera un alto costo para la planta hospedera (Schroeder y Janos, 2004), ya que se estima que del carbono fijado en la fotosíntesis, del 4% al 20% es movilizado hacia la raíz para la formación de la simbiosis (Bago et ál., 2000; Sánchez de Prager, 2007). De esta forma, el costo de los carbohidratos que van a ser transferidos a la raíz es más alto en las plantas micorrizadas que en las no micorrizadas (Bryla y Eissenstat, 2005).

La variedad de la planta es otro aspecto o factor a tener en cuenta en estudios posteriores, ya que el tiempo en vivero no es el mismo para todas las variedades y el efecto que los HMA tienen sobre diferentes variedades de una misma especie no es el mismo, razón por la cual puede estar regulada esta interacción por el genoma tanto de la planta como del hospedero.

Aunque el nivel de P en el suelo fue alto al comienzo y al final del experimento (Tabla 3), el porcentaje de colonización micorrízica estuvo por encima del 50% a lo largo del experimento, indicando esto que la palma de aceite es una planta que forma micorrización en esta condición. Esto podría deberse a que la palma de aceite es dependiente de la micorrización para su desarrollo, en este caso sería micotrófica obligada y eso explicaría el porqué la planta responde a la colonización, aun cuando el nivel de P en el suelo es alto (Saggin-Junior y Lovato, 1999). En este experimento las plantas del tratamiento TA presentaron colonización micorrizica, aunque fue el porcentaje más bajo entre los tratamientos durante el experimento. Se ha mencionado que cuando el nivel de P en el suelo es alto y hay colonización de HMA en la raíz, se puede dar una reducción en el crecimiento de la planta (Kahiluoto et ál., 2001), esto nos muestra que la relación entre planta y HMA puede pasar de mutualismo a parasitismo y viceversa (Klironomos, 2003; Jones y Smith, 2004).

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