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<journal-title><![CDATA[Agronomía Colombiana]]></journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[Universidad Nacional de Colombia, Facultad de Agronomía]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Potencial alelopático de Brassica campestris subsp. rapa y Lolium temulentum sobre la germinación de semillas de tomate]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad Nacional de Colombia Profesora titular ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Bioassays were carried out for evaluating the allelopathic potential of 10, 25, 50, and 100 g. L-1 aqueous and methanolic concentrations of turnip (Brassica campestris subsp. rapa) and ryegrass (Lolium temulentum) leaf extracts in pre-germinated tomato seeds in the Universidad Nacional de Colombia’s Weed Science laboratory. Germination percentage and shoot and root elongation were measured; elongation and germination inhibition were also calculated. Results did not reveal any effects of the extracts (10, 25, 50 and 100 g. L-1) on tomato seed germination. Aqueous turnip extracts were seen to stimulate tomato root elongation at 10 g. L-1 and be detrimental at 25 to 100 g. L-1. DC50 was 44 and 49 g. L-1 for root and shoot elongation, respectively. Methanolic turnip extracts reduced tomato root elongation as extract concentration increased. Ryegrass extract effect on tomato root elongation response was similar regarding the two solvents (aqueous and methanolic); it became reduced by 40% at concentrations of 10 to 100 g. L-1; DC50 calculated for aqueous extract root elongation was 10 g. L-1.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">      <p align="center"><b><font size="4">Potencial alelop&aacute;tico de <i>Brassica campestris</i> <i>subsp. rapa</i> y <i>Lolium temulentum</i> sobre la germinaci&oacute;n de semillas de tomate</font></b></p>       <p align="center"><b><font size="3">Allelopathic potential of <i>Brassica campestris</i> <i>subsp. rapa</i> and <i>Lolium temulentum</i> regarding tomato seed germination</font></b></p>       <p></p>Carolina Zamorano<sup>1</sup> y Cilia L. Fuentes<sup>2</sup> </p>     <p><sup>1</sup> Docente, Universidad de Cundinamarca, Fusagasug&aacute; (Colombia). e-mail: <a href="mailto:carolina.zamoranom@gmail.com">carolina.zamoranom@gmail.com</a>    <br> <sup>2</sup> Profesora titular, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;. e-mail: <a href="mailto:ciliafuentes@lycos.com">ciliafuentes@lycos.com</a></p>     <p>Fecha de recepci&oacute;n: 05 de septiembre de 2005. Aceptado para publicaci&oacute;n: 21 de noviembre de 2005</p> <hr size="1">     <p><b>Resumen</b></p>     <p>Con el objeto de evaluar el potencial alelop&aacute;tico de los extractos de hojas de nabo (<i>Brassica campestris</i> <i>subsp. rapa</i>) y raigr&aacute;s (<i>Lolium temulentum</i>), utilizando dos solventes (agua y metanol), se desarrollaron bioensayos con semillas pregerminadas de tomate en el laboratorio de Malherbolog&iacute;a de la Universidad Nacional de Colombia, sede Bogot&aacute;. Los bioensayos tuvieron un dise&ntilde;o de bloques al azar con tres repeticiones y se replicaron tres veces. Las concentraciones de los extractos utilizados fueron 10, 25, 50 y 100 g&middot; L<sup>-1</sup>. Como variables se midieron: el porcentaje de germinaci&oacute;n, la longitud del brote a&eacute;reo y ra&iacute;z y, adicionalmente, se calcul&oacute; el porcentaje de elongaci&oacute;n con respecto al control. No hubo efectos de los extractos sobre la germinaci&oacute;n de semillas de tomate. Los extractos acuosos de nabo tuvieron efectos estimulantes sobre la elongaci&oacute;n de la ra&iacute;z del tomate, con concentraciones de 10 g&middot; L<sup>-1</sup>, y detrimentales en el rango de 25 a 100 g&middot; L<sup>-1</sup>; la concentraci&oacute;n que redujo el crecimiento en 50% (DC<sub>50</sub>) estuvo entre 44 y 49 g&middot; L<sup>-1</sup>, para la longitud de ra&iacute;z y de brote a&eacute;reo, respectivamente. Los extractos metan&oacute;licos de nabo disminuyeron la elongaci&oacute;n de la ra&iacute;z de tomate a medida que aumentaba la concentraci&oacute;n del extracto. El efecto de los extractos de raigr&aacute;s sobre la elongaci&oacute;n de la ra&iacute;z del tomate fue similar con los dos solventes, disminuy&eacute;ndola 40% en promedio con las concentraciones de 10 a 100 g&middot; L<sup>-1</sup>; la DC<sub>50</sub> se calcul&oacute; para el porcentaje de elongaci&oacute;n de la ra&iacute;z con extracto acuoso y fue 10 g&middot; L<sup>-1</sup>.</p>     <p><b>Palabras claves adicionales:</b> <i>Lycopersicon esculentum</i>, alelopat&iacute;a, extracto.</p> <hr size="1">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Abstract</b></p>     <p>Bioassays were carried out for evaluating the allelopathic potential of 10, 25, 50, and 100 g&middot; L<sup>-1</sup> aqueous and methanolic concentrations of turnip (<i>Brassica campestris</i> <i>subsp. rapa</i>) and ryegrass (<i>Lolium temulentum</i>) leaf extracts in pre-germinated tomato seeds in the Universidad Nacional de Colombia&rsquo;s Weed Science laboratory. Germination percentage and shoot and root elongation were measured; elongation and germination inhibition were also calculated. Results did not reveal any effects of the extracts (10, 25, 50 and 100 g&middot; L<sup>-1</sup>) on tomato seed germination. Aqueous turnip extracts were seen to stimulate tomato root elongation at 10 g&middot; L<sup>-1</sup> and be detrimental at 25 to 100 g&middot; L<sup>-1</sup>. DC<sub>50</sub> was 44 and 49 g&middot; L<sup>-1</sup> for root and shoot elongation, respectively. Methanolic turnip extracts reduced tomato root elongation as extract concentration increased. Ryegrass extract effect on tomato root elongation response was similar regarding the two solvents (aqueous and methanolic); it became reduced by 40% at concentrations of 10 to 100 g&middot; L<sup>-1</sup>; DC<sub>50</sub> calculated for aqueous extract root elongation was 10 g&middot; L<sup>-1</sup>.</p>     <p><b>Additional key words:</b> <i>Lycopersicon esculentum</i>, allelopathy, extract.</p> <hr size="1">      <p><b><font size="3">Introducci&oacute;n</font></b></p>     <p>LA  MAYOR&Iacute;A DE LOS COMPUESTOS ALELOP&Aacute;TICOS se ha obtenido de las especies vegetales, aunque recientemente, como lo estudi&oacute; Kremer (2000), se ha explorado el potencial de los microorganismos del suelo. Por su parte, los avances en las t&eacute;cnicas anal&iacute;ticas y bioqu&iacute;micas, entre otras, en los m&eacute;todos de extracci&oacute;n e identificaci&oacute;n de compuestos activos e, incluso, en los bioensayos, han permitido desarrollos importantes en el campo de la alelopat&iacute;a.</p>     <p>Tukey (1966) reporta trabajos sobre lixiviados obtenidos a partir de hojas, aunque anota que otras partes de las plantas pueden liberar compuestos alelop&aacute;ticos al contacto con agua. Este m&eacute;todo es uno de los que con m&aacute;s frecuencia se utiliza en tejidos de tallos y ra&iacute;ces de plantas que se sospecha tienen potencial alelop&aacute;tico; por su parte, Liebman y Ohno (1998) anotan que en estos lixiviados lo m&aacute;s importante es mantener la estabilidad de las sustancias extra&iacute;das.</p>     <p>La extracci&oacute;n de los compuestos de las especies que se presumen con potencial alelop&aacute;tico es una parte primordial en los bioensayos (Inderjit y Dakshini, 1994), y dentro de ellos se encuentra la discrimaci&oacute;n entre solventes org&aacute;nicos e inorg&aacute;nicos.</p>       <p>En especies de los g&eacute;neros <i>Brassica</i> y <i>Sinapis</i> (Cruciferae) se han identificado compuestos alelop&aacute;ticos como alil isotiocianato y &Beta;-fenetil isotiocianato (Choesin y Boerner, 1991), y Carpentier <i>et al.</i> (1998), que emplearon diferentes solventes para la extracci&oacute;n de compuestos alelop&aacute;ticos en <i>Brassica napus</i>, sugieren que el uso del metanol puede evitar el problema de la actividad de la enzima mirosinasa (que descompone compuestos como los glucosinolatos, comunes en la familia Brassicaceae) y reduce la extracci&oacute;n de compuestos indeseables; sin embargo, tambi&eacute;n sugieren que el metanol es un solvente t&oacute;xico. En <i>L. temulentum</i>, Hartley <i>et al.</i> (1988) encontraron en las paredes celulares compuestos fen&oacute;licos relacionados con el &aacute;cido fer&uacute;lico y cum&aacute;rico, compuestos solubles en agua.</p>       <p>En la mayor&iacute;a de los bioensayos con compuestos alelop&aacute;ticos se prefiere hacer las evaluaciones con especies cultivadas sensibles. Mac&iacute;as <i>et al.</i> (2000) sugieren que el uso de semillas de cultivos comerciales permite generar modelos generales sobre los aleloqu&iacute;micos y, en especial, en lo referente a efectos estimulantes. Esas semillas tienen adem&aacute;s la ventaja de ser gen&eacute;ticamente m&aacute;s homog&eacute;neas que las semillas de malezas, germinar uniformemente y estar disponibles con facilidad.</p>       <p>El objetivo de este trabajo fue determinar los efectos causados por extractos en dos tipos de solventes (agua y metanol) de <i>Brassica campestris</i> <i>subsp. rapa</i> (L.) Calpham y de <i>Lolium temulentum</i> L., sobre tomate <i>Lycorpesicon esculentum</i> var. Santa Clara, una planta muy sensible a herbicidas.</p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><font size="3">Materiales y m&eacute;todos</font></b></p>       <p>Se realizaron bioensayos con diferentes concentraciones de los extractos acuosos y metan&oacute;licos de Brassica. campestris <i>subsp. rapa</i> y de <i>Lolium temulentum</i> (10, 25, 50, y 100 g&middot; L<sup>-1</sup>). Los extractos (5 mL) se utilizaron para humedecer el papel filtro de una caja Petri, en donde se colocaron semillas pregerminadas de tomate (<i>Lycopersicon esculentum</i> Mill var. Santa Cruz Kada); esto con el fin de garantizar la viabilidad de la semilla.</p>       <p>Las semillas se colocaron en una c&aacute;mara de crecimiento (WTB-Binder) a 28 &deg;C y completa oscuridad. Siete d&iacute;as despu&eacute;s de la exposici&oacute;n a los extractos, se registr&oacute; el porcentaje de germinaci&oacute;n, la longitud del brote a&eacute;reo (cm) y de la ra&iacute;z (cm) y se calcul&oacute; el porcentaje de inhibici&oacute;n de la enlongaci&oacute;n del brote y la ra&iacute;z, con respecto al testigo sin tratar, con la siguiente f&oacute;rmula:</p>       <p>    <center><img src="img/revistas/agc/v23n2/v23n2a09fig.jpg"></a></center></p>     <p>donde, L: longitud (promedio para el testigo).</p>     <p>Se realizaron regresiones log-log&iacute;sticas siguiendo el modelo propuesto por Seefeldt <i>et al.</i> (1995): </p>     <p>    <center><img src="img/revistas/agc/v23n2/v23n2a09fig0.jpg"></a></center></p>     <p>donde, C: l&iacute;mite inferior (concentraci&oacute;n alta)     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   D: l&iacute;mite superior (concentraci&oacute;n baja)     <br>   b: pendiente     <br>   DC<sub>50</sub>: concentraci&oacute;n que reduce el crecimiento en 50%.</p>       <p>El modelo se emple&oacute; sobre los datos de longitudes de ra&iacute;ces y brotes a&eacute;reos en cada uno de los experimentos y se efectuaron regresiones <i>probit</i> para los porcentajes de elongaci&oacute;n, con respecto al control. De esas regresiones se escogieron las curvas que mejor describieran la respuesta, con base en el valor de la concentraci&oacute;n DC<sub>50</sub> calculada en cada caso.</p>       <p><b><font size="3">Resultados y discusi&oacute;n</font></b></p>     <p>El porcentaje de elongaci&oacute;n, con respecto al control de la ra&iacute;z de tomate con extractos acuosos de <i>B. campestris</i> <i>subsp. rapa</i> (<a href="#fig1">figura 1</a>), tuvo un comportamiento decreciente: la elongaci&oacute;n de la ra&iacute;z con respecto al testigo disminuy&oacute; con el aumento de la concentraci&oacute;n. Con la concentraci&oacute;n de 10 g&middot; L<sup>-1</sup> no se obtuvo inhibici&oacute;n de la elongaci&oacute;n de la ra&iacute;z, resultado que coincide con lo que sugieren Butgko y Jensen (2002) sobre los extractos de tejidos vegetales, que en bajas concentraciones frecuentemente estimulan la germinaci&oacute;n y/o el crecimiento de una planta.</p>     <p>En el caso del extracto en metanol (<a href="#fig1">figura 1</a>), la inhibici&oacute;n en la elongaci&oacute;n mostr&oacute; una relaci&oacute;n directa con la concentraci&oacute;n del extracto: a mayor concentraci&oacute;n, mayor inhibici&oacute;n en la elongaci&oacute;n de la ra&iacute;z con respecto al control. Esa respuesta estar&iacute;a relacionada con lo que referencian Carpentier <i>et al.</i> (1998) sobre el uso del metanol que, al evitar la actividad de una enzima, hace menos variable el efecto del extracto de B. campes-tris <i>subsp. rapa</i> , si se compara con el comportamiento del extracto acuoso.</p>     <p>    <center><a name="fig1"><img src="img/revistas/agc/v23n2/v23n2a09fig1.jpg"></a></center></p>     <p>Para ambos solventes, el valor m&aacute;ximo de reducci&oacute;n de crecimiento estuvo por encima de 80%, lo que sugiere el efecto detrimental de extractos de esta especie al ser utilizados en cultivos como el tomate, as&iacute; como el gran beneficio para el control de flora no deseada dentro de los sistemas de cultivo.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La tendencia observada con los extractos de <i>L. temulentum</i> result&oacute; ser similar para ambos solventes (<a href="#fig2">figura 2</a>), logr&aacute;ndose una relaci&oacute;n directa entre la inhibici&oacute;n de la elongaci&oacute;n de la ra&iacute;z con respecto al control y la concentraci&oacute;n de los extractos, con concentraciones entre 10 y 100 g&middot; L<sup>-1</sup>.</p>     <p>    <center><a name="fig2"><img src="img/revistas/agc/v23n2/v23n2a09fig2.jpg"></a></center></p>     <p>Con los extractos de <i>L. temulentum</i>, las concentraciones entre 25 y 50 g&middot; L<sup>-1</sup> pueden considerarse como las mejores, pues permiten alcanzar una reducci&oacute;n de 50% en el crecimiento en longitud de la ra&iacute;z de tomate. Los compuestos extra&iacute;dos de las hojas de <i>L. temulentum</i> parecen ser m&aacute;s estables en las condiciones evaluadas y, aunque no logran reducciones del crecimiento, con respecto al control, tan altos como en el caso de B. rapa (80% vs. 60%), la estabilidad de los compuestos podr&iacute;a ser una fortaleza en el momento de su incorporaci&oacute;n en las pr&aacute;cticas agr&iacute;colas.</p>     <p>En referencia a la respuesta del tomate a los extractos en los dos solventes escogidos, Kato-Noguchi (2000) encontr&oacute;, al trabajar con fracciones de <i>Evolvulus alsinoides</i> en n-hexano, acetona y agua sobre el crecimiento de <i>Lactuca sativa</i>, que la fracci&oacute;n soluble en agua fue la que mayor efecto tuvo sobre el crecimiento, con una I<sub>25</sub> (dosis que reduce el crecimiento en un 50%, equivalente a DC<sub>50</sub>) de 0,01 mg&middot; mL<sup>-1</sup>, frente a 0,14 y 0,032 mg&middot; mL<sup>-1</sup> para las fracciones en acetona y n-hexano, respectivamente. Adicionalmente, Inderjit y Dakshini (1994 y 1995) sugieren que, en t&eacute;rminos de la importancia ecol&oacute;gica de los compuestos involucrados en la interferencia alelop&aacute;tica, es deseable que ellos sean solubles en agua, por tratarse de un solvente com&uacute;n e inocuo ambientalmente.</p>       <p>El porcentaje de germinaci&oacute;n (<a href="#tab1">tabla 1</a>) no fue una variable importante para evaluar el efecto de los extractos, puesto que los valores obtenidos en todos los casos fueron de 100%, sugiriendo, en el caso de <i>L. esculentum</i>, que no tienen efecto sobre los procesos relacionados con la germinaci&oacute;n y que esa respuesta podr&iacute;a asumirse como igual para otro tipo de semillas, dada la susceptibilidad de esta especie a variaciones en el medio de germinaci&oacute;n. De igual manera, el pH no tuvo variaciones importantes por causa de las sustancias evaluadas, manteni&eacute;ndose entre 6 y 7 unidades, valores considerados dentro del rango &oacute;ptimo de pH para la germinaci&oacute;n y el crecimiento de plantas (Mac&iacute;as <i>et al.</i>, 2000).</p>     <p>    <center><a name="tab1"><img src="img/revistas/agc/v23n2/v23n2a09tab1.jpg"></a></center></p>     <p>El c&aacute;lculo de la concentraci&oacute;n DC<sub>50</sub> no fue posible para todas las variables (<a href="#tab1">tabla 1</a>); las DC<sub>50</sub> del extracto acuoso de <i>B. campestris</i> <i>subsp. rapa</i> para las longitudes de la ra&iacute;z y el brote a&eacute;reo no se obtuvieron, pero s&iacute; las de los extractos en agua y metanol para los porcentajes de elongaci&oacute;n, 14,3 y 8,9 g&middot; L<sup>-1</sup>, respectivamente. Para los datos de longitud del brote a&eacute;reo, se pudo determinar la concentraci&oacute;n del extracto de <i>B. campestris</i> <i>subsp. rapa</i> en agua y metanol que produce 50% de inhibici&oacute;n en la elongaci&oacute;n (34,4 y 8,0 g&middot; L<sup>-1</sup>, respectivamente).</p>     <p>Para los extractos de <i>L. temulentum</i>, a pesar de su actividad inhibitoria del crecimiento con respecto al testigo (<a href="#fig2">figura 2</a>), no se pudo calcular la DC<sub>50</sub> en los dos solventes (<a href="#tab1">tabla 1</a>), lo que puede deberse a la presencia de datos tanto para inhibici&oacute;n como para est&iacute;mulo del crecimiento; es posible que, si se obvian esos datos, pueda encontrarse un valor de DC<sub>50</sub>, pero no corresponder&iacute;a a la realidad experimental.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los resultados de estas concentraciones muestran que, si bien pueden definirse comportamientos de los extractos en sus respectivos solventes, resulta complejo ajustar los datos para hacer c&aacute;lculos de estas concentraciones. Esto puede estar relacionado con el hecho de que los c&aacute;lculos de concentraci&oacute;n DC<sub>50</sub> se han desarrollado para compuestos que producen un solo tipo de respuesta en las plantas, como es el caso de los herbicidas.</p>     <p>Los resultados expuestos en este trabajo sugieren que los efectos de los extractos de <i>B. campestris</i> <i>subsp. rapa</i> y de <i>L. temulentum</i> pueden verificarse con la variable longitud, pues pudo ajustarse con el modelo log-log&iacute;stico. Esto coincide con lo que reportan Mac&iacute;as <i>et al.</i> (2000), quienes evaluaron efectos de algunos herbicidas comerciales sobre semillas de hortalizas, con el fin de estandarizar metodolog&iacute;as para evaluaci&oacute;n de aleloqu&iacute;micos en bioensayos y concluyeron que la longitud de ra&iacute;ces es una de las mejores variables para evaluar la actividad de un compuesto, por los menores valores de la desviaci&oacute;n est&aacute;ndar en semillas peque&ntilde;as, como las de tomate.</p>     <p>Con los resultados obtenidos bajo las concentraciones evaluadas en <i>L. esculentum</i>, se sugiere que con otras especies de hortalizas, usadas com&uacute;nmente en ensayos de alelopat&iacute;a, y con especies de malezas se emplee en los ensayos un rango de concentraci&oacute;n un poco m&aacute;s amplio, por debajo de 10 g&middot; L<sup>-1</sup>, y menos espaciado entre 10 y 100 g&middot; L<sup>-1</sup>, con el fin de observar mejor el comportamiento de las variables y definir si el rango de est&iacute;mulo de algunos de los extractos se encuentra por debajo de 10 g&middot; L<sup>-1</sup>.</p>  <hr>      <p><font size="3"><b>Literatura citada</b></font></p>      <!-- ref --><p>Butgko, V.M. y R.J. Jensen. 2002. Evidence of tissue-specific allelopathic activity in <i>Euthamia graminifolia</i> and <i>Solidago canadensis</i> (Asteraceae). Amer. Midland Naturalist 148 (2), 253-262.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000057&pid=S0120-9965200500020000900001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Carpentier, N., S. Bostyn y J.P. Co&iuml;c. 1998. Isolation of a rich glucosinolate fraction by liquid chromatography from an aqueous extract obtained by leaching dehulled rapeseed meal (<i>Brassica napus</i> L.). Ind. Crops Prod. 8, 151-158.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0120-9965200500020000900002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Choesin, D.N. y R.E.J. Boerner. 1991. Allyl isothiocyanate release and the allelopathic potencial of <i>Brassica napus</i> (Brassicaceae). Amer. J. Bot. 78(8), 1083-1090.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0120-9965200500020000900003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Hartley, R.D., R.W. Frederick y P.J. Harris. 1988. 4,4’ Dihydroxytruxillic acid as a component of cell walls of <i>Lolium multiflorum</i>. Phytochem. 27 (2), 349-357.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0120-9965200500020000900004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Inderjit y K.M.M. Dakshini. 1994. Allelopathic effect of <i>Pluchea lanceolata</i> (Asteraceae) on characteristics of four soils and tomato and mustard growth. Amer. J. Bot. 81(7), 799-804.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0120-9965200500020000900005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Inderjit y K.M.M. Dakshini. 1995. On laboratory bioassays in allelopathy. Bot. Rev. 61(1), 28-44.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0120-9965200500020000900006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Kato-Noguchi, H. 2000. Assessmente of the allelopathic potential of extracts of <i>Evolvulus alsinoides</i>. Weed Res. 40, 343-350.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-9965200500020000900007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Kremer, R.J. 2000. Growth supression of annual weeds by deleterious rhizobacteria integrated with cover crops. pp. 931-940. En: Spencer, N.R. (ed.). Proc. X International symposium on biological control of weeds. July 4-14, 1999. Montana State University, Bozeman, MT.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-9965200500020000900008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Liebman, M. y T. Ohno. 1998. Crop rotation and legume residue effects on weed emergence and growth: applications for weed management. pp.181-221. En: Hatfield, J.L., D.O. Buhler y B.A. Stewart (eds.). Integrated weed and soil management. Ann Arbor Press, Michigan.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-9965200500020000900009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Mac&iacute;as, F.A., D. Castellano y J.M.G. Molinillo. 2000. Search for a standard phytotoxic bioassay for allelochemicals. Selection of standard target specie. J. Agr. Food Chem. 48, 2512-2521.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-9965200500020000900010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Seefeldt, S.S., J.E. Jensen y E.P. Fuerst. 1995. Log-logistic analysis of herbicide dose-response relationships. Weed Technol. 9, 218-227.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-9965200500020000900011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Tukey, H.B. Jr. 1966. Leaching of metabolites from above ground plant part and its implications. Bul. Torrey Bot. Club 93, 385-401.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-9965200500020000900012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p> </font>      ]]></body><back>
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