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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación de preservantes florales en la poscosecha de tres variedades de clavel estándar]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In cut carnation, it is indispensable the postharvest treatment based on silver thiosulphate (STS) in order to guarantee high flower longevity; nevertheless, the anti-ethylene treatments with the silver ions imply an environmental pollution. The objective of this study was to carry out the evaluation of different compounds in the post harvest of standard carnation varieties Nelson, Dream and Delphi, as possible replacements of the STS treatment. For this purpose, the treatments based on STS, SR-AOA (slow release aminooxyacetic acid) and chitosan were used. Following the harvest of flower stalks, a trip simulation for 21 day was carried out; subsequently, the flowers stalks were evaluated for longevity, blooming speed, color and water consumption. In the evolution of the vase life, the same tendency for the three varieties was observed: a first group of higher flower longevity conformed by treatments based on SR-AOA and STS had an average duration from 14 to 20 days; and the second group of lower flower longevity conformed by the treatments based on chitosan, chitosan plus citric acid, chitosan plus AOA and absolute control had an average duration from 6 to 8 days.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2"> &nbsp;     <p align="right"><b>FISIOLOG&Iacute;A Y TECNOLOG&Iacute;A POSCOSECHA</b></p> &nbsp;     <p>    <center><b><font size="4">Evaluaci&oacute;n de preservantes florales en la poscosecha de tres variedades de clavel est&aacute;ndar</font></b></center></p> &nbsp;     <p>    <center><b><font size="3">Evaluation of floral preservatives in the postharvest of three varieties of standard carnation</font></b></center></p> &nbsp;    <p>   Paola L&oacute;pez<sup>1</sup>, Diana Patricia Neisa<sup>1</sup>, Cecilia Bacca<sup>2</sup> y V&iacute;ctor Julio Fl&oacute;rez<sup>3</sup></p>     <p>  1 Licenciadas en Qu&iacute;mica, Universidad Pedag&oacute;gica Nacional, Bogot&aacute;. <a href="mailto:josohannalopez@hotmail.com">josohannalopez@hotmail.com</a>; <a href="mailto:neisapatricia@yahoo.com.mx">neisapatricia@yahoo.com.mx</a>    <br>   2 Profesora titular, Facultad de Ciencia y Tecnolog&iacute;a, Universidad Pedag&oacute;gica Nacional, Bogot&aacute;. <a href="mailto:cbacca@pedagogica.edu.co">cbacca@pedagogica.edu.co</a>    <br> 3 Profesor asociado, Facultad de Agronom&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;. <a href="mailto:vjflorezr@unal.edu.co">vjflorezr@unal.edu.co</a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Fecha de recepci&oacute;n: noviembre 11 de 2007. Aceptado para publicaci&oacute;n: abril 9 de 2008</p> <hr size="1">     <p><b>RESUMEN</b></p>     <p>En clavel es imprescindible el tratamiento poscosecha a base de   tiosulfato de plata (STS), para garantizar una mayor longevidad   floral; sin embargo, los tratamientos antietil&eacute;nicos a base   del i&oacute;n plata implican contaminaci&oacute;n ambiental. El objetivo   de este estudio fue realizar la evaluaci&oacute;n de diferentes compuestos   en la poscosecha de clavel est&aacute;ndar variedades Nelson,   Dream y Delphi, como posibles sustitutos del STS. Para este   fin, se utilizaron tratamientos a base de STS, SR-AOA (&aacute;cido   aminooxac&eacute;tico de liberaci&oacute;n lenta) y quitosan. En seguida a la   cosecha de los tallos florales se realiz&oacute; una simulaci&oacute;n de viaje   con una duraci&oacute;n aproximada de 21 d&iacute;as; posteriormente, las   flores fueron sometidas a evaluaciones de longevidad, velocidad   de apertura, color y consumo de agua. En la evoluci&oacute;n de la vida   en florero, se observ&oacute; la misma tendencia para las tres variedades:   un primer grupo de mayor longevidad floral, conformado   por los tratamientos a base de SR-AOA y STS, con un promedio   de durabilidad de 14 a 20 d&iacute;as; y el segundo grupo, de menor   longevidad floral, conformado por los tratamientos a base de   quitosan, quitosan m&aacute;s &aacute;cido c&iacute;trico, quitosan m&aacute;s AOA y testigo absoluto, con una duraci&oacute;n promedio de 6 a 8 d&iacute;as.</p>     <p><b>Palabras clave:</b> quitosan, tiosulfato de plata, &aacute;cido aminooxiac&eacute;tico, compuestos antietil&eacute;nicos, contaminaci&oacute;n ambiental.</p> <hr size="1">     <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p>In cut carnation, it is indispensable the postharvest treatment   based on silver thiosulphate (STS) in order to guarantee high   flower longevity; nevertheless, the anti-ethylene treatments   with the silver ions imply an environmental pollution. The   objective of this study was to carry out the evaluation of   different compounds in the post harvest of standard carnation   varieties Nelson, Dream and Delphi, as possible replacements   of the STS treatment. For this purpose, the treatments based   on STS, SR-AOA (slow release aminooxyacetic acid) and   chitosan were used. Following the harvest of flower stalks, a   trip simulation for 21 day was carried out; subsequently, the   flowers stalks were evaluated for longevity, blooming speed,   color and water consumption. In the evolution of the vase life,   the same tendency for the three varieties was observed: a first   group of higher flower longevity conformed by treatments   based on SR-AOA and STS had an average duration from 14   to 20 days; and the second group of lower flower longevity   conformed by the treatments based on chitosan, chitosan   plus citric acid, chitosan plus AOA and absolute control had   an average duration from 6 to 8 days. </p>     <p><b>Key words:</b> chitosan, silver thiosulphate, amino oxyacetic acid,   anti-ethylene compounds, environmental contamination.</p> <hr size="1"> &nbsp;     <p><b><font size="3">Introducci&oacute;n</font></b></p>     <p>  En la poscosecha del clavel el efecto del etileno sobre el   tejido vegetal es uno de los aspectos a controlar. Esta fitohormona   causa un r&aacute;pido enrollamiento de los p&eacute;talos,   adormecimiento o incapacidad de apertura de los botones   florales y reduce significativamente la longevidad de la flor   en el florero, produciendo senescencia, marchitamiento y   cambio en el color de los p&eacute;talos (Reid y Hunter, 2000; Reid   y Dodge, 2007). La aplicaci&oacute;n de etileno en rosas Golden   Wave aumenta la velocidad de la apertura floral, pero promueve   la senescencia de las flores tratadas, y la disminuci&oacute;n del tama&ntilde;o de los p&eacute;talos (Mayak y Halevy, 1972).</p>     <p>   Entre los efectos del etileno estar&iacute;a la alteraci&oacute;n de la integridad   de las membranas celulares durante la senescencia.   Al respecto, Suttle y Kende (1980) afirman que el aumento   de la permeabilidad de las membranas celulares es producido   por la p&eacute;rdida masiva de fosfol&iacute;pidos, evento que   desequilibra la relaci&oacute;n esterol:fosfol&iacute;pidos aumentando   as&iacute; la microviscosidad de las membranas.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   Como en otras Caryophyllaceae, en clavel es imprescindible   el tratamiento poscosecha a base de tiosulfato de plata   (STS) para aumentar la longevidad floral. En la Sabana de   Bogot&aacute;, el i&oacute;n plata es ampliamente utilizado para la conservaci&oacute;n   de flores de corte, ya que su uso como inhibidor de etileno es eficaz. No obstante, un efecto indirecto de los   tratamientos que contienen este i&oacute;n es su acci&oacute;n negativa   sobre el componente bi&oacute;tico debido a su dif&iacute;cil degradaci&oacute;n   y alta persistencia (Nell, 1992, citado por Bowyer <i><i>et   al</i></i>., 2003).</p>     <p>   En el comercio existen diversos productos con efecto   antietil&eacute;nico: algunos a base de STS, como Chrysal AVB,   Flor&iacute;ssima 125 y Florissant 100 y otros con impacto ambiental   menos negativo. Entre ellos, se encuentran los   productos derivados del &aacute;cido aminooxac&eacute;tico (AOA),   como Chrysal EVB y Flor&iacute;ssima 135, adem&aacute;s del 1-metil   ciclopropano (1-MCP).</p>     <p>   El AOA es un potente inhibidor de la primera etapa espec&iacute;fica   de la s&iacute;ntesis del etileno. Act&uacute;a inhibiendo la enzima   ACC sintasa, dependiente de fosfato de piridoxal, bloqueando   la conversi&oacute;n de la S-adenosilmetionina (SAM) en &aacute;cido   1- amino-ciclopropano-1- carbox&iacute;lico (ACC) (Yang, 1985;   Taiz y Zeiger, 1998).</p>     <p>   Se han reportado resultados positivos con productos a   base de AOA aplicados al clavel; Cubillos <i><i>et   al</i></i>. (2001)   encontraron que el uso de Flor&iacute;ssima 135, producto a base   de AOA, preserva criterios aceptables de valor decorativo   como color y grado de apertura floral.</p>     <p>   Sin embargo, estos compuestos mantienen una longevidad   floral siempre menor que la de los tratados con STS (Staby   <i>et   al</i>., 1993). Esto se debe a que el AOA inhibe la s&iacute;ntesis   del etileno, pero no impide el efecto del etileno proveniente   de otras fuentes.</p>     <p>   Por otro lado, entre otras aplicaciones, la quitina-quitosan   tendr&iacute;a acci&oacute;n como germicida de amplio espectro   (Benavides, 2002) y seg&uacute;n Shepherd <i>et   al</i>. (1997), al ser   un polisac&aacute;rido de carga positiva, puede ser usado para   precipitar mol&eacute;culas de carga negativa (acci&oacute;n floculante);   raz&oacute;n por la cual se supone su eficiencia como ingrediente   en preservantes florales. Este compuesto es un pol&iacute;mero   biodegradable que proviene del tratamiento qu&iacute;mico de la   quitina, principal componente del exoesqueleto de camarones,   cangrejos y otros crust&aacute;ceos.</p>     <p>   En Colombia, seg&uacute;n cifras del Departamento Nacional de   Planeaci&oacute;n y del Instituto Nacional de Pesca Artesanal, entre   industrias pesqueras de mayor y menor escala se genera   un volumen anual aproximado de 5.000 ton de desechos,   incrementando el nivel de contaminaci&oacute;n en los puertos   pesqueros del pa&iacute;s. Un uso de estos desechos es la extracci&oacute;n   del quitosan, compuesto con resultados alentadores en el   campo de la medicina y biotecnolog&iacute;a, que le coloca entre   los candidatos a posibles pol&iacute;meros del futuro (Benavides,   2002). Sin embargo, la utilizaci&oacute;n del quitosan en el campo   agron&oacute;mico ha sido poco explorada.</p>     <p>   En este estudio se vislumbran posibilidades del uso de   sustitutos de compuestos a base de plata en la conservaci&oacute;n   de flores de exportaci&oacute;n, particularmente en clavel, para lo   cual fueron evaluados diversos compuestos en la longevidad   floral de clavel (<i>Dianthus caryophyllus</i> L.), variedades   Nelson, Dream y Delphi.</p> &nbsp;     <p><b><font size="3">Materiales y m&eacute;todos</font></b></p>     <p>   El ensayo se realiz&oacute; en la finca Splendor Flowers (El Corzo),   ubicada en el municipio de Facatativ&aacute; a una altitud de   2.586 msnm, con promedios de temperatura de 14 &ordm;C y de   humedad relativa del 70%.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   En los laboratorios de la Universidad Pedag&oacute;gica Nacional   se estandariz&oacute; el m&eacute;todo para la s&iacute;ntesis de quitosan y la   consecuente obtenci&oacute;n del gel; posteriormente, se prepararon   las soluciones de hidrataci&oacute;n, que fueron empleadas   en evaluaciones de las distintas fases.</p>     <p>   En las instalaciones de la finca se llev&oacute; a cabo la cosecha, la   clasificaci&oacute;n, la hidrataci&oacute;n y la simulaci&oacute;n de viaje de los   tallos florales de clavel est&aacute;ndar empleados en el ensayo.   Para todas las fases, la cosecha se realiz&oacute; a primer pico de   producci&oacute;n, en punto semiajustado y a primera hora de la   ma&ntilde;ana. Se utilizaron ramos de calidad Fancy, los cuales   se confeccionaron con 20 flores cada uno y en un solo nivel   para evitar maltrato. En el proceso de hidrataci&oacute;n en   poscosecha se usaron baldes con capacidad de 5 L, donde la   l&aacute;mina de agua fue de 10 cm, de tal forma que la soluci&oacute;n   cubriera la base de los tallos florales. Por cada tratamiento   se hidrataron 30 tallos.</p>     <p>   Para la obtenci&oacute;n de la soluci&oacute;n de tiosulfato de plata se   emplearon las siguientes soluciones madres: tiosulfato de   sodio (Na<sub>2</sub>S<sub>2</sub>O<sub>3</sub>) 1,8 g&middot;L<sup>-1</sup>, nitrato de plata (AgNO3) 0,9 g&middot;L<sup>-1</sup>   y citrato de hidroxiquinoleina 0,15 g&middot;L<sup>-1</sup>. Una vez preparadas   las soluciones con agua destilada y por separado se   llev&oacute; a cabo su mezcla, teniendo especial cuidado con el   manejo de la luz, preferiblemente en cuarto oscuro. La   adici&oacute;n del nitrato de plata se realiz&oacute; en &uacute;ltimo lugar para   evitar precipitaciones. En los tratamientos con quitosan   m&aacute;s &aacute;cido c&iacute;trico, &eacute;ste se utiliz&oacute; con la finalidad de ajustar   el pH de la soluci&oacute;n.</p>     <p><b>S&iacute;ntesis del gel de quitosan</b>    <br>   La <a href="#tab1">tabla 1</a> presenta el procedimiento para la s&iacute;ntesis y   obtenci&oacute;n del gel de quitosan a partir de desechos de crust&aacute;ceos.</p>     <p>    <center><a name="tab1"><img src="img/revistas/agc/v26n1/v26n1a14tab1.gif"></a></center></p>     <p> <b>Fases del trabajo</b>    <br>   El trabajo se organiz&oacute; en cuatro fases: 1) optimizaci&oacute;n de   las condiciones de trabajo y de los criterios de eliminaci&oacute;n   en flor, tallos y follaje. Se emplearon 250 tallos de la variedad   Delphi, utilizando ocho tallos florales por florero,   con los cuales se evaluaron las soluciones de hidrataci&oacute;n   respectivas (<a href="#tab2">tabla 2</a>); 2) evaluaci&oacute;n de los tratamientos de   la fase previa, aplicados a las variedades Nelson, Dream y   Delphi e insistiendo en el compuesto quitosan m&aacute;s &aacute;cido   c&iacute;trico. Se cosecharon 250 tallos florales de cada una de las   variedades, utilizando seis tallos florales por florero para   evaluar las soluciones de hidrataci&oacute;n correspondientes   (<a href="#tab2">tabla 2</a>); 3) evaluaci&oacute;n de la longevidad floral en los laboratorios   de Florcontrol (empresa especializada en manejo   poscosecha de flor de corte), con la finalidad de contrastar   los resultados de las fases anteriores, empleando los tratamientos   que mostraron mejor desempe&ntilde;o. Se cosecharon   500 tallos florales de cada una de las variedades en estudio,   acondicionando seis tallos por florero en las soluciones   de hidrataci&oacute;n que se muestran para esta fase en la <a href="#tab2">tabla   2</a>, y; <a href="#tab4">4</a>) evaluaci&oacute;n de la longevidad floral en la finca para   corroborar los mejores tratamientos de hidrataci&oacute;n de la   flor. Se cosecharon 300 tallos florales de cada una de las   tres variedades, hidratando cinco tallos por florero con las   diferentes soluciones de hidrataci&oacute;n de esta fase (<a href="#tab2">tabla 2</a>). </p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="tab2"><img src="img/revistas/agc/v26n1/v26n1a14tab2.gif"></a></center></p>     <p><b>Simulaci&oacute;n de viaje</b>    <br>   De forma secuencial, sin interrupciones y de acuerdo con el   protocolo previamente propuesto por la finca, entre el 21 de   febrero y el 10 de noviembre de 2005 se hizo la simulaci&oacute;n   de viaje, as&iacute;: 24 h de rotaci&oacute;n en cuarto fr&iacute;o (2-3 &ordm;C), 24 h   a temperatura ambiente (6-14 &ordm;C), 17 d&iacute;as en cuarto fr&iacute;o   (2-3 &ordm;C) y 48h a temperatura ambiente (6-14 &ordm;C). Las cajas   fueron recubiertas con icopor antes de colocarlas en cuarto   fr&iacute;o con la finalidad de simular un &ldquo;pallet&rdquo;. Durante el   proceso se midieron las variables temperatura y humedad   relativa. Para ello, se coloc&oacute; un higroterm&oacute;metro (TempTale   H) en el interior de la caja, a 25 cm de uno de los extremos, asegur&aacute;ndolo contra la pared de cart&oacute;n.</p>     <p> <b>Longevidad floral</b>    <br>   Para la evaluaci&oacute;n de la longevidad floral se acondicion&oacute;   un laboratorio en la Facultad de Agronom&iacute;a de la Universidad   Nacional de Colombia, sede Bogot&aacute;, en donde no   entra radiaci&oacute;n directa ni se permite el intercambio de   aire, evitando la entrada directa de viento. Se mantuvo   un fotoperiodo de 12 h con luz fluorescente, con lo que   se obtuvieron 107 footcandles, a la altura de los botones   florales. La longevidad floral se evalu&oacute; a partir del d&iacute;a en   el que se acondicionaron los tallos florales en el florero hasta la p&eacute;rdida del valor de ornato, con mediciones realizadas entre el 15 de marzo y 30 de noviembre de 2005.</p>     <p>   Las variables de calificaci&oacute;n y los respectivos criterios   para descarte de tallos florales que se tuvieron en cuenta   durante el proceso de evaluaci&oacute;n de la longevidad floral   fueron los siguientes: 1) criterios de eliminaci&oacute;n en flor:   apertura excesiva (m&aacute;s del 50% de los p&eacute;talos de la flor con apertura mayor de 180&deg;), deformidad (m&aacute;s del 25%   de los p&eacute;talos deformes), dormancia (flores que no abren -m&aacute;s del 25%- al tercer d&iacute;a en florero), ca&iacute;da de p&eacute;talos o de flores (afectando a m&aacute;s del 50% de los p&eacute;talos o de flores), cuellos doblados (apenas se presente), senescencia (presente en m&aacute;s del 50% de los p&eacute;talos); y, 2) criterios de eliminaci&oacute;n en tallo y follaje: colapso del tallo (apenas se presente), geotropismo (doblamiento mayor de 30&deg;), ausencia de follaje (afectando a m&aacute;s del 50% del follaje). Tambi&eacute;n se usaron como criterios de eliminaci&oacute;n en flor y en tallo: da&ntilde;o por hongo (apenas presente cualquier tipo de lesi&oacute;n sin importar su tama&ntilde;o), decoloraci&oacute;n (afectando a m&aacute;s del 50% de la flor o del follaje), deshidrataci&oacute;n (presente en m&aacute;s del 50% de los p&eacute;talos o del follaje), y necrosis (manchas de necrosis presentes en la corola o en el follaje sin importar el tama&ntilde;o de estas).</p>     <p>   Durante las evaluaciones se midi&oacute; temperatura y humedad   relativa, empleando un higroterm&oacute;metro (TempTale H),   ubicado a la altura de los floreros.</p>     <p>   <b>Valoraci&oacute;n del color de la flor y del follaje</b>    <br>   Para establecer el color de la flor y del follaje durante las   evaluaciones y determinar el cambio en la coloraci&oacute;n, se   marcaron dos tallos por florero, realizando mediciones por   comparaci&oacute;n con las cartas de color de la <i>Royal Society of   Horticulture of England</i>, en las cuales se observan las diferentes   tonalidades de color y los respectivos c&oacute;digos. La   valoraci&oacute;n de color fue realizada los d&iacute;as 0, 7 y 15. </p>     <p><b>Grado y velocidad de apertura floral</b>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   El grado de apertura de la flor se midi&oacute; teniendo en cuenta   la posici&oacute;n de los p&eacute;talos externos con relaci&oacute;n a la parte   superior del c&aacute;liz, diferenciando as&iacute; cinco grados de apertura:   grado 1, flor cerrada hasta p&eacute;talo recto; grado 2, de   p&eacute;talo recto hasta los 25&ordm; de apertura; grado 3, de 25&deg; hasta   los 65&ordm;; grado 4, hasta los 90&ordm;; y, por &uacute;ltimo grado 5, m&aacute;s   de 90&ordm; de apertura. En la <a href="#fig1">figura 1</a> se observan los estadios   de apertura floral considerados en este estudio.</p>       <p>    <center><a name="fig1"><img src="img/revistas/agc/v26n1/v26n1a14fig1.gif"></a></center></p>     <p>   Para calcular la velocidad de apertura floral, se tom&oacute; como   referencia la f&oacute;rmula para calcular la velocidad de germinaci&oacute;n   en semillas propuesta por Labouriau (1983), </p>     <p>    <center><i>t</i> = (&Sigma;<i>n<sub>i</sub>t<sub>i</sub></i>)/&Sigma;<i>n<sub>i</sub></i></center></p>     <p>   donde <i>t</i> representa la velocidad promedio de apertura floral,   calculada como la media ponderada de los tiempos de   apertura floral <i>t<sub>i</sub></i> utilizando como pesos de ponderaci&oacute;n el   n&uacute;mero <i>n<sub>i</sub></i> de flores en el estadio a evaluar en los intervalos   de tiempo sucesivos. Este c&aacute;lculo se realiz&oacute; asumiendo   que m&aacute;s del 50 % de los tallos florales se encontraban en el mismo estadio.</p>     <p><b>Consumo de agua</b>    <br> Durante la evaluaci&oacute;n de la longevidad floral se llev&oacute; el   control del consumo de agua por florero. Para ello, en el   florero se marc&oacute; el d&iacute;a de descarte de los tallos florales y   el n&uacute;mero de tallos restantes en el florero. El promedio de   consumo diario de agua se calcul&oacute; considerando los d&iacute;as   de evaluaci&oacute;n y la evaporaci&oacute;n del agua, que fue medida   en un florero sin flores dispuesto para este fin. Adem&aacute;s, se   tuvo en cuenta la cantidad de tallos por d&iacute;a en cada florero   y para cada tratamiento. Este promedio se calcul&oacute; mediante   la siguiente ecuaci&oacute;n:</p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center>   &Ccedil;= ( &zeta;- &ccedil;)/(<i>d</i>*<i>f</i>)</center> </p>     <p>considerando &Ccedil; como el promedio de consumo de agua   diario por tallo, donde &zeta; es el consumo diario de agua por   florero y &ccedil; la evaporaci&oacute;n diaria en el florero; d equivale a la   cantidad de d&iacute;as para el consumo y <i>f</i> la cantidad de tallos   para <i>d</i> d&iacute;as. Este dato fue tomado una vez se realizaban   descartes de tallos florales por alg&uacute;n criterio de eliminaci&oacute;n   durante el proceso de evaluaci&oacute;n.</p>     <p><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b>    <br>   Se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o completamente al azar (DCA), con   cuatro repeticiones por tratamiento en cada una de las fases   evaluadas, en donde el florero fue la unidad experimental.   Los datos fueron sometidos a an&aacute;lisis de varianza utilizando   el programa SAS, y los promedios fueron comparando   por la prueba de Tukey (P&lt;0,05).</p> &nbsp;     <p><b><font size="3">   Resultados y discusi&oacute;n   </font></b></p>     <p><b>Simulaci&oacute;n de viaje</b>    <br>    En la <a href="#fig2">figura 2</a> se presentan los promedios diurnos y nocturnos   de temperatura y humedad relativa obtenidos a trav&eacute;s   del monitoreo de las variables durante las diferentes fases   de esta investigaci&oacute;n. De forma general, se observa que las   fases uno y tres presentaron respectivamente valores extremos   para temperatura (3,8 &deg;C y 16,9 &deg;C) y humedad relativa   (92% y 62,2%). En la segunda y cuarta fase se presentaron   valores intermedios de temperatura y humedad relativa. </p>       <p>    <center><a name="fig2"><img src="img/revistas/agc/v26n1/v26n1a14fig2.gif"></a></center></p>     <p><b>Evaluaci&oacute;n de la longevidad floral</b>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Durante la evaluaci&oacute;n de la longevidad floral se encontraron   promedios diurnos y nocturnos de temperatura y   humedad relativa en cada una de la fases, como sigue (tabla   3): para la primera fase 22,7 &ordm;C y 54,2%; para la segunda   21,3 &ordm;C y 55%; para la tercera fase 20 &ordm;C y 57,3%; y para la   cuarta fase 22,9 &ordm;C y 57,6%. </p>     <p><b>Efecto de las diferentes soluciones sobre la longevidad floral   </b>    <br> En las <a href="#tab3">tablas 3</a> (primera fase) y <a href="#tab4">4</a> (segunda a cuarta fase)   se presentan los promedios de longevidad floral para las   variedades de clavel hidratadas en las diferentes soluciones   utilizadas en cada una de las fases del experimento. </p>       <p>    <center><a name="tab3"><img src="img/revistas/agc/v26n1/v26n1a14tab3.gif"></a></center></p>     <p><b>Primera fase   </b>    <br> En esta fase se observan dos grupos con diferencias estad&iacute;sticas   significativas: el grupo de mayor longevidad, compuesto   por los tratamientos Flor&iacute;ssima 125, SR-AOA (10 mL&middot;L<sup>-1</sup>), SRAOA   (6 mL&middot;L<sup>-1</sup>) y STS; y el grupo de menor longevidad, conformado   por los tratamientos quitosan (5 mg&middot;L<sup>-1</sup>), quitosan-   AOA 1, testigo absoluto y quitosan (10 mg&middot;L<sup>-1</sup>) (<a href="#tab3">tabla 3</a>). Los   tratamientos que conforman el primer grupo muestran una   longevidad promedio superior a los 15 d&iacute;as, con diferencias   no mayores a 1,5 d&iacute;as entre ellos, mientras que el segundo   grupo no super&oacute; en promedio los 10 d&iacute;as de longevidad floral.</p>     <p><b>Segunda fase</b>    <br>   Para esta fase (<a href="#tab4">tabla 4</a>) en la variedad Nelson se observan dos   grupos con diferencias estad&iacute;sticas significativas: el grupo   que present&oacute; mayor longevidad, del que hacen parte los   tratamientos Flor&iacute;ssima 125, SR-AOA (6 mL&middot;L<sup>-1</sup>) y SR-AOA   (10 mL&middot;L<sup>-1</sup>); y el grupo de menor longevidad floral conformado   por los tratamientos quitosan-AOA 1, quitosan (10   mg&middot;L<sup>-1</sup>), testigo absoluto, quitosan (5 mg&middot;L<sup>-1</sup>), quitosan (10   mg&middot;L<sup>-1</sup>) m&aacute;s &aacute;cido c&iacute;trico y quitosan (5 mg&middot;L<sup>-1</sup>) m&aacute;s &aacute;cido   c&iacute;trico. Por su parte, los tratamientos STS y quitosan-AOA   1 hacen parte del grupo de compuestos que muestran un   comportamiento intermedio, ya que sus respectivos promedios   no difieren del grupo con mayor ni del grupo con   menor longevidad floral. Los tratamientos que conforman el   primer grupo muestran una longevidad promedio superior   a los 16 d&iacute;as, con diferencia no mayor a 1 d&iacute;a entre ellos. Por   otro lado, el segundo grupo no super&oacute; en promedio los 10   d&iacute;as de longevidad floral.</p>       <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="tab4"><img src="img/revistas/agc/v26n1/v26n1a14tab4.gif"></a></center></p>     <p>   De forma similar, para la variedad Dream se observan dos   grupos con diferencias estad&iacute;sticas significativas: el grupo   con mayor longevidad, conformado por los tratamientos   Flor&iacute;ssima 125 y STS; y el grupo de menor longevidad,   donde se encuentran los tratamientos quitosan-AOA 1,   testigo, quitosan (10 mg&middot;L<sup>-1</sup>) m&aacute;s &aacute;cido c&iacute;trico, quitosan (5   mg&middot;L<sup>-1</sup>) m&aacute;s &aacute;cido c&iacute;trico, y quitosan (10 mg&middot;L<sup>-1</sup>). Al igual   que en la fase anterior, existe un grupo intermedio, conformado   por los tratamientos SR-AOA (6 mL&middot;L<sup>-1</sup>), SR-AOA   (10 mL&middot;L<sup>-1</sup>) y quitosan (5 mg&middot;L<sup>-1</sup>), cuyos tratamientos no   presentan diferencias estad&iacute;sticas significativas entre s&iacute;, ni   difieren de los tratamientos de menor y mayor longevidad floral. Los tratamientos que conforman el primer grupo   presentan una longevidad promedio superior a los 12 d&iacute;as,   con diferencia no mayor a 0,5 d&iacute;as entre ellos; mientras   que el segundo grupo no super&oacute; en promedio los 6 d&iacute;as   de longevidad floral.</p>     <p>   En la variedad Delphi se evidencian dos grandes grupos   con diferencias significativas, al interior de los cuales se   observan subgrupos que presentan l&iacute;mites cercanos entre los mejores tratamientos, subgrupos que a su vez no difieren   de los tratamientos con menor longevidad floral. El primer   grupo est&aacute; conformado por los tratamientos Flor&iacute;ssima 125,   SR-AOA (6 mL&middot;L<sup>-1</sup>), SR-AOA (10 mL&middot;L<sup>-1</sup>) y STS. El grupo   de menor longevidad floral lo conforman los tratamientos   quitosan-AOA 1, quitosan 10 mg&middot;L<sup>-1</sup>, testigo, quitosan 5   mg&middot;L<sup>-1</sup>, quitosan 10 mg&middot;L<sup>-1</sup> m&aacute;s &aacute;cido c&iacute;trico, y quitosan 5   mg&middot;L<sup>-1</sup> m&aacute;s &aacute;cido c&iacute;trico.</p>     <p>   <b>Tercera fase</b>    <br>   En esta fase no se observan para la variedad Nelson diferencias   estad&iacute;sticas significativas entre los tratamientos   (<a href="#tab4">tabla 4</a>), excepto con el tratamiento testigo, el cual present&oacute;   una longevidad floral menor. Por otro lado, el tratamiento   SR-AOA (4 mL&middot;L<sup>-1</sup>&middot;h<sup>-1</sup>) presenta un comportamiento   intermedio, sin diferenciarse del testigo ni de los mejores   tratamientos. Estos &uacute;ltimos muestran una longevidad promedio   superior a los 16 d&iacute;as, mientras que el tratamiento   testigo no super&oacute; los 12 d&iacute;as de longevidad floral.</p>     <p>   De manera an&aacute;loga, para la variedad Dream el tratamiento   testigo fue significativamente inferior con respecto a los   tratamientos Flor&iacute;ssima 125 y SR-AOA (4 mL&middot;L<sup>-1</sup>&middot;2 h<sup>-1</sup>);   sin embargo, se observa un grupo que no difiere de los   dos mejores promedios ni del testigo. Estos tratamientos   son quitosan-AOA 2, SR-AOA (4 mL&middot;L<sup>-1</sup>&middot;1 h<sup>-1</sup>), SR-AOA (6   mL&middot;L<sup>-1</sup>&middot;2 h<sup>-1</sup>) y STS. Los mejores tratamientos muestran   una longevidad promedio superior a los siete d&iacute;as; mientras   que el testigo no super&oacute; en promedio los tres d&iacute;as de   longevidad floral.</p>     <p>   La mayor longevidad floral en la variedad Delphi se observ&oacute;   en los tratamientos SR-AOA (6 mL&middot;L<sup>-1</sup>&middot;2 h<sup>-1</sup>) y SR-AOA (4   mL&middot;L<sup>-1</sup>&middot;1 h<sup>-1</sup>), sin embargo, no tuvieron diferencia estad&iacute;sticamente   significativa con los tratamientos Flor&iacute;ssima   125, quitosan-AOA 2 y SR-AOA (4 mL&middot;L<sup>-1</sup>&middot;2 h<sup>-1</sup>). De forma   inesperada, el tratamiento STS no fue significativamente   diferente del testigo.</p>     <p><b>   Cuarta fase   </b>    <br> Para la variedad Nelson se observan diferencias significativas   entre el tratamiento Flor&iacute;ssima 125 con respecto al   testigo y a quitosan-AOA 2. Con valores intermedios de la   longevidad floral se presentaron los tratamientos SR-AOA   (6 mL&middot;L<sup>-1</sup>&middot;1 h<sup>-1</sup>), SR-AOA (4 mL&middot;L<sup>-1</sup>&middot;1 h<sup>-1</sup>), STS y SR-AOA (3   mL&middot;L<sup>-1</sup>&middot;2 h<sup>-1</sup>), con una longevidad promedio de 11 d&iacute;as.   Por otro lado, mientras que los promedios de la variedad   Dream no presentaron diferencias entre la variedad de   tratamientos, en la variedad Delphi, como se esperaban,   el testigo fue significativamente inferior, en comparaci&oacute;n   con los dem&aacute;s tratamientos.</p>     <p>De forma general, la variedad Nelson present&oacute; promedios   de longevidad floral mayor en los diferentes tratamientos   con relaci&oacute;n a las dem&aacute;s variedades, lo cual podr&iacute;a estar   asociado con caracter&iacute;sticas inherentes a la propia variedad.   Los tratamientos con promedios m&aacute;s altos fueron Flor&iacute;ssima   125, SR-AOA (4 mL&middot;L<sup>-1</sup>&middot;2 h<sup>-1</sup>), SR-AOA (6 mL&middot;L<sup>-1</sup>&middot;2 h<sup>-1</sup>)   y quitosan-AOA 2. Este &uacute;ltimo, sin embargo, utilizado en   las fases 3 y 4, present&oacute; resultados inconsistentes: en la fase   3 obtuvo una longevidad de 21,9 d&iacute;as, mientras que en la fase 4 apenas de 7,5 d&iacute;as.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   El promedio de longevidad floral de los diferentes tratamientos   en la variedad Dream fue inferior en comparaci&oacute;n   con las dem&aacute;s variedades. La flor de esta variedad presenta   p&eacute;talos aserrados, raz&oacute;n por la cual habr&iacute;a mayor incidencia   de p&eacute;talo quemado y, en consecuencia, mayor susceptibilidad   a botrytis. Esto significa que la calidad poscosecha de   la flor de esta variedad depende en gran parte del cuidado   en su manipulaci&oacute;n. Entre los tratamientos con mayores   promedios para longevidad floral se destacan Flor&iacute;ssima   125, STS y SR-AOA (4 mL&middot;L<sup>-1</sup>&middot;2 h<sup>-1</sup>).</p>     <p>   En la variedad Delphi se observan tiempos de longevidad   floral constantes en cada una de las fases, lo que podr&iacute;a   estar asociado con la rusticidad propia de la variedad. Los   tratamientos con promedios m&aacute;s altos en esta variedad son   Flor&iacute;ssima 125, SR-AOA (6 mL&middot;L<sup>-1</sup>) en diferentes tiempos   de hidrataci&oacute;n (4 h en la segunda y 2 h en la tercera fase)   y SR-AOA (4 mL&middot;L<sup>-1</sup>) en 1 h de hidrataci&oacute;n.</p>     <p>   Un aspecto interesante respecto del SR-AOA es que se detect&oacute;   una respuesta favorable cuando la concentraci&oacute;n del   compuesto en la soluci&oacute;n es baja; es decir, cuando se usan   4 mL&middot;L<sup>-1</sup> &oacute; 6 mL&middot;L<sup>-1</sup> en lugar de 10 mL&middot;L<sup>-1</sup>. Sin embargo,   entre estos tratamientos no se constataron diferencias   estad&iacute;sticas. Tambi&eacute;n es de anotar que las soluciones combinadas   de SR-AOA con quitosan tuvieron mejor efecto   en concentraciones bajas Quitosan-AOA 2 (Quitosan (2   mg&middot;L<sup>-1</sup>) + SR-AOA (4 mL&middot;L<sup>-1</sup>)) que en concentraciones   altas (Quitosan-AOA 1 (Quitosan (5 mg&middot;L<sup>-1</sup>) + SR-AOA   (6 mL&middot;L<sup>-1</sup>))). Probablemente en concentraciones altas el   quitosan interfiere con el desempe&ntilde;o del SR-AOA como   preservante floral.</p>     <p>   En clavel, el periodo de longevidad, que est&aacute; determinado   por la senescencia y por el marchitamiento de los p&eacute;talos,   puede ser acortado por la producci&oacute;n end&oacute;gena de etileno.   Los tratamientos con soluciones a base de AOA hacen parte   de los grupos que presentaron mayor longevidad floral,   esto en concordancia con trabajos previos en <i>Hibiscus   rosa-sinensis</i> L. cv. Pink Versicolor, donde se encontr&oacute; que   el uso del AOA retarda procesos como la senescencia y el enrollamiento de los p&eacute;talos como consecuencia de su   acci&oacute;n inhibitoria sobre la s&iacute;ntesis de etileno (Woodson   <i>et   al</i>., 1985). La acci&oacute;n del etileno se vio comprometida   en los tratamientos con soluciones a base de STS, como   Flor&iacute;ssima y STS, que interfiere en la oxidaci&oacute;n del etileno   y consecuentemente en su acci&oacute;n (Beyer, 1976). </p>     <p><b>Velocidad de apertura   </b>    <br> En la <a href="#tab5">tabla 5</a> se presentan las velocidades de apertura   floral de los diferentes tratamientos. En la primera fase   del experimento, usando solamente la variedad Delphi, a   excepci&oacute;n de los tratamientos STS y Flor&iacute;ssima, se encontr&oacute;   que la mayor&iacute;a de los tratamientos tardaron 7,8 d&iacute;as   para alcanzar el estadio de apertura 5 (grado m&aacute;ximo de   apertura floral).</p>     <p>    <center><a name="tab5"><img src="img/revistas/agc/v26n1/v26n1a14tab5.gif"></a></center></p>    <p>   En la segunda fase del experimento, para llegar al estadio   5 las flores de las variedades Nelson, Delphi y Dream   tardaron de 1,8 a 3,8, de 1,7 a 3,2 y de 1,5 a 3,2 d&iacute;as, respectivamente.</p>     <p>Es importante se&ntilde;alar que las flores del clavel Delphi sometidas   al tratamiento SR-AOA (10 mL&middot;L<sup>-1</sup>) no alcanzaron   el grado de apertura 5; as&iacute; como tampoco las flores de   Dream en quitosan (5 mg&middot;L<sup>-1</sup>) m&aacute;s &aacute;cido c&iacute;trico, quitosan (5 mg&middot;L<sup>-1</sup>) y en el tratamiento testigo.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   En la cuarta fase del experimento, para alcanzar el estadio   5, las flores de las variedades Nelson y Delphi tardaron de   1,9 a 4 d&iacute;as y de 2 a 3,2 d&iacute;as, respectivamente. La variedad   Dream tard&oacute; entre 1,5 y 3,2 d&iacute;as para alcanzar este mismo   estadio; sin embargo, los tallos florales de esta variedad   sometidos al tratamiento SR-AOA (3 mL&middot;L<sup>-1</sup>&middot;2 h<sup>-1</sup>) no alcanzaron   el estadio de apertura en menci&oacute;n.</p>     <p>   Con relaci&oacute;n a las dem&aacute;s variedades, Delphi presenta   apertura m&aacute;s uniforme. Si bien en la segunda fase Nelson   mostr&oacute; los valores m&aacute;s homog&eacute;neos de apertura floral,   en la cuarta fase fueron las velocidades de apertura floral   de la variedad Delphi las m&aacute;s uniformes. La diferencia en   d&iacute;as entre grados de apertura floral estar&iacute;a asociada con las   distintas velocidades de apertura y con la posici&oacute;n de los p&eacute;talos   internos y externos con relaci&oacute;n al c&aacute;liz, as&iacute; como con   variaciones de turgencia celular (P&eacute;rez y Mart&iacute;nez, 1994). </p>     <p><b>Consumo de agua</b>       <br> En las flores de corte el consumo y la p&eacute;rdida de agua   declinan r&aacute;pidamente en un periodo de cinco d&iacute;as desde   el tiempo de corte. En este periodo la p&eacute;rdida supera el   consumo de agua gradualmente. Sin embargo, estas flores   contin&uacute;an desarroll&aacute;ndose si son mantenidas en condiciones   adecuadas de hidrataci&oacute;n (Zieslin y Gottesman 1986,   citado por Burge <i>et   al</i>.,1996).</p>     <p>   En los tratamientos de la primera fase, el promedio de consumo   de agua fue mayor con relaci&oacute;n a las fases siguientes.   En la primera fase, los tratamientos testigo y STS presentaron   respectivamente el mayor y el menor promedio ponderado   de consumo de agua; mientras que en la segunda fase,   los tratamientos que registraron los mayores promedios   ponderados fueron STS, SR-AOA (10 mL&middot;L<sup>-1</sup>) y STS en las   variedades Nelson, Dream y Delphi, respectivamente. Para   la cuarta fase, los promedios m&aacute;s altos de esta variable para   las tres variedades se presentaron en el tratamiento SR-AOA   (4 mL&middot;L<sup>-1</sup>&middot;2 h<sup>-1</sup>) (datos no mostrados).</p>     <p>   Lo que pudo ocurrir en la primera fase, con el incremento   del promedio ponderado de consumo de agua por tallo   en cada uno de los tratamientos, podr&iacute;a estar asociado   con los cambios de temperatura y humedad relativas en el   laboratorio para esta fase.</p>     <p>   Durante el desarrollo de esta investigaci&oacute;n en los tratamientos   quitosan, quitosan - AOA y testigo, a diferencia   de los dem&aacute;s, se observ&oacute; una notable disminuci&oacute;n de la   turgencia de los tejidos, consistencia fl&aacute;cida y marchitez,   lo que podr&iacute;a estar asociado con una mayor incidencia   de deshidrataci&oacute;n auspiciada por estos tratamientos. </p>     <p>En cada uno de los ensayos se observaron promedios ponderados   altos y bajos del consumo de agua por tallo, que   dependen de la variedad y en algunos casos del tratamiento   de hidrataci&oacute;n al que fueron sometidos, sin embargo, no se   evidencia una tendencia clara de la informaci&oacute;n obtenida. </p>     <p><b>Valoraci&oacute;n de color en flor y follaje   </b>    <br> Durante el transcurso del ensayo, la variedad Nelson present&oacute;   una decoloraci&oacute;n mayor con relaci&oacute;n a las dem&aacute;s variedades,   mientras que, para Dream la p&eacute;rdida del color fue   gradual. Por otro lado, en la variedad Delphi no se observaron   cambios importantes en el color de la flor ni en el follaje. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En las observaciones realizadas (datos no mostrados) se manifiestan   cambios notables en la decoloraci&oacute;n de los p&eacute;talos   de las flores, que podr&iacute;an estar relacionados con la clase de   luz y la intensidad lum&iacute;nica que reciben los tallos florales,   adem&aacute;s de la senescencia normal que estos manifiestan. </p>     <p>Aunque los tratamientos a base de STS ser&iacute;an la mejor alternativa   antietil&eacute;nica en la poscosecha de clavel, durante los   ensayos de esta investigaci&oacute;n se logr&oacute; evidenciar de forma   consistente que no hay diferencia estad&iacute;stica significativa   entre los tratamientos con SR-AOA y STS. En consecuencia,   el tratamiento a base de SR-AOA podr&iacute;a convertirse en una   alternativa viable para el sector floricultor, sin presentar un   impacto ambiental representativo. </p>     <p><b>Agradecimientos</b> </p>     <p>Los autores expresan sus agradecimientos a Brenntag   Colombia S.A. por el apoyo financiero que hizo viable la   presente investigaci&oacute;n. </p> &nbsp;     <p><b><font size="3">Literatura citada</font></b></p>     <!-- ref --><p>Benavides C., M.A. 2002. Quitina y quitosana: los pol&iacute;meros del   futuro. Divisi&oacute;n de comunicaciones SENA-Direcci&oacute;n general,   Bogot&aacute;. pp. 1-13.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0120-9965200800010001400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Beyer, E.M. 1976. A potent inhibitor of ethylene action in plants.   Plant Physiol. 58, 268-271.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0120-9965200800010001400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Bowyer, M.C., R.B.H. Wills, D. Badiyan y V.V.V. Ku. 2003. Extending   the postharvest life of carnations with nitric oxide-comparison   of fumigation and in vivo delivery. Postharvest Biol.   Technol. 30, 281-286.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0120-9965200800010001400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Burge, G.K., P.A. Bicknell y B.G. Dobson.1996. Postharvest treatments   to increase water uptake and the vase life of <i>Leptospermum   scoparium</i> Forst. New Zealand J. Crop Hort. Sci. 24, 371-378.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0120-9965200800010001400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Cubillos, E., V. Molina, V.J. Fl&oacute;rez y G. Fischer. 2001. Efecto inhibidor   de etileno en la longevidad floral del clavel (<i>Dianthus caryophyllus</i> L.) como probables sustitutos del tiosulfato de   plata (STS). Agron. Colomb. 18, 7-13.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0120-9965200800010001400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Labouriau, L. G. 1983. A germina&ccedil;&atilde;o das sementes. Secretaria-geral   da Organiza&ccedil;&atilde;o dos Estados Americanos, Washington. 172 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0120-9965200800010001400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Mayak, S. y A.H. Halevy. 1972. Interrelationships of ethylene and   abscisic acid in the control of rose petal senescence. Plant   Physiol. 50, 341-346.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0120-9965200800010001400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   P&eacute;rez, F. y L. Mart&iacute;nez. 1994. Introducci&oacute;n a la fisiolog&iacute;a vegetal.   Ediciones Mundi-Prensa, Madrid. 218 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0120-9965200800010001400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Reid, M. S. y D. Hunter. 2000. Manejo de la poscosecha. pp. 165-175.   En: Pizano de M&aacute;rquez, M. (ed.). Clavel. Ediciones HortiTecnica   Ltda. Bogot&aacute;.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0120-9965200800010001400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Reid, M.S. y L. Dodge. Clavel. 2007. Department of Environmental   Horticulture. University of California, Davis. En: <a href="http://postharvest.ucdavis.edu/Produce/ProduceFacts/Espanol/Clavel.shtml" target="_blank">http://postharvest.   ucdavis.edu/Produce/ProduceFacts/Espanol/Clavel.   shtml</a>; consulta: noviembre de 2007.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0120-9965200800010001400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Shepherd, R., S. Reader y A. Falshaw. 1997. Chitosan functional   properties. Glycoconjugate J. 14, 535-542.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0120-9965200800010001400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Staby, G.L., R.M. Basel, M.S. Reid y L.L. Dodge. 1993. Efficacies   of commercial anti-ethylene products for fresh cut flowers.   HortTechnol. 3(2), 199-202.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0120-9965200800010001400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Suttle, J.C. y H. Kende. 1980. Ethylene action and loss of membrane   integrity during petal senescence in <i>Tradescantia</i>. Plant   Physiol. 65, 1067-1072.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0120-9965200800010001400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Taiz, L. y E. Zeiger. 1998. Plant physiology. 2<sup>nd</sup> edition. Sinauer Associates,   Inc., Publishers, Sunderland. 792 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0120-9965200800010001400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Woodson, W.R., S.H. Hanchey y D.N. Chisholm. 1985. Role of   ethylene in the senescence of isolated <i>Hibiscus petals</i>. Plant   Physiol. 79, 679-683.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0120-9965200800010001400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Yang, S.F. 1985. Regulation of ethylene biosynthesis. HortScience   15, 238-243.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0120-9965200800010001400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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