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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Plan de muestreo directo para Trialeurodes vaporariorum (Westwood) (Hemiptera: Aleyrodidae) en cultivos comerciales de tomate]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Direct sampling plan for Trialeurodes vaporariorum (Westwood) (Hemiptera: Aleyrodidae) in commercial tomato crops]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The damages produced by Trialeurodes vaporariorum generate economic losses that decrease yield and can cause an increase in the price of tomato. The control of this pest is carried out by continues applications of insecticides without obtaining satisfactory results. One alternative control is carried out releasing wasps of the parasitoid Encarsia formosa. Nevertheless, the success of this system implies to reckon the pest density through a method of adequate sampling. An economic and viable direct sampling plan by the previous arguments was standardized for nymphs of whitefly in a commercial tomato crop under greenhouse. The incidence of the management practices and phenology was determined in the spatial distribution of nymphs. In general terms, the sampling was divided in three stages: 1) sampling completely random that was carried out between 5th and 7th weeks after sowing (WAS) for plants no divided in thirds, 2) sampling random between 8th and 16th WAS, counts were carried out in leaves from the lower third, 3) sampling in two stages: plant and leaf, counts were carried out between 17th and 24th WAS on leaves from the middle and upper third. It was found that cultural practices as the blunt influenced the spatial distribution of nymphs. The implementation of direct sampling generated an increment in yield equal to 0.06% and reckoned nymph density of T. vaporariorum in tomato crops (with precisions 5%, 10% and 25%) as a criterion to carry out releasing the parasitoid E. formosa.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2"> &nbsp;     <p>    <center><b><font size="4">Plan de muestreo directo para <i>Trialeurodes vaporariorum</i> (Westwood)   (Hemiptera: Aleyrodidae) en cultivos comerciales de tomate</font></b></center></p> &nbsp;     <p>    <center><b><font size="3">Direct sampling plan for <i>Trialeurodes vaporariorum</i> (Westwood) (Hemiptera: Aleyrodidae)   in commercial tomato crops</font></b></center></p> &nbsp;       <p>Liliana Bernal<sup>1</sup>, Lucy Pesca<sup>1</sup>, Daniel Rodr&iacute;guez<sup>2</sup>, Fernando Cantor<sup>2</sup> y Jos&eacute; R. Cure<sup>2</sup></p>     <p>1 Bi&oacute;logas, Facultad de Ciencias, Universidad Militar Nueva Granada, Bogot&aacute; (Colombia). <a href="mailto:ecologia@umng.edu.co">ecologia@umng.edu.co</a>    <br> 2 Docentes, Facultad de Ciencias, Universidad Militar Nueva Granada, Bogot&aacute; (Colombia). <a href="mailto:ecologia@umng.edu.co">ecologia@umng.edu.co</a></p>     <p>Fecha de recepci&oacute;n: febrero 2 de 2008. Aceptado para publicaci&oacute;n: julio 10 de 2008</p> <hr size="1">     <p><b>RESUMEN</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los da&ntilde;os ocasionados por <i>Trialeurodes vaporariorum</i> generan   p&eacute;rdidas econ&oacute;micas que disminuyen la producci&oacute;n y   pueden contribuir en el alza de los precios del tomate. Para su   control se acude a aplicaciones continuas de insecticidas, sin   obtener resultados satisfactorios. Como alternativa de control   se realizan liberaciones del parasitoide <i>Encarsia formosa</i>. Sin   embargo, el &eacute;xito de este sistema implica estimar la densidad de   la plaga a trav&eacute;s de un m&eacute;todo de muestreo adecuado. Por ello,   se estandariz&oacute; un plan de muestreo directo, econ&oacute;micamente   viable, para ninfas de mosca blanca en un cultivo comercial de   tomate bajo invernadero. Se determin&oacute; la incidencia de pr&aacute;cticas   de manejo y de la fenolog&iacute;a en la distribuci&oacute;n espacial de   ninfas. En t&eacute;rminos generales, el muestreo se dividi&oacute; en tres   etapas: 1) muestreo totalmente aleatorio, entre las 5 y 7 semanas   despu&eacute;s de la siembra (sds), para plantas no divididas en   tercios; 2) muestreo aleatorio, entre las 8 y 16 sds, los conteos   se realizaron en hojas del tercio inferior; 3) muestreo biet&aacute;pico:   planta y hoja, entre las 17 y 24 sds, los conteos se efectuaron   sobre hojas de los tercios medio y superior. Se encontr&oacute; que   pr&aacute;cticas culturales como el despunte influyeron en la distribuci&oacute;n   espacial de las ninfas. La implementaci&oacute;n del muestreo   directo gener&oacute; un incremento en la producci&oacute;n del 0,06% y   permiti&oacute; estimar la densidad de ninfas de <i>T. vaporariorum</i> en   el cultivo (con precisiones de 5%, 10% y 25%) como criterio   para liberar <i>E. formosa</i>. </p>     <p><b>Palabras clave:</b> mosca blanca, tama&ntilde;o de muestra, din&aacute;mica   de poblaci&oacute;n, tomate.</p> <hr size="1">     <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p>The damages produced by <i>Trialeurodes vaporariorum</i> generate   economic losses that decrease yield and can cause an increase   in the price of tomato. The control of this pest is carried out   by continues applications of insecticides without obtaining   satisfactory results. One alternative control is carried out   releasing wasps of the parasitoid <i>Encarsia formosa</i>. Nevertheless,   the success of this system implies to reckon the pest density   through a method of adequate sampling. An economic and   viable direct sampling plan by the previous arguments was   standardized for nymphs of whitefly in a commercial tomato crop   under greenhouse. The incidence of the management practices   and phenology was determined in the spatial distribution of   nymphs. In general terms, the sampling was divided in three   stages: 1) sampling completely random that was carried out   between 5th and 7th weeks after sowing (WAS) for plants no   divided in thirds, 2) sampling random between 8th and 16th   WAS, counts were carried out in leaves from the lower third, 3)   sampling in two stages: plant and leaf, counts were carried out   between 17th and 24th WAS on leaves from the middle and upper   third. It was found that cultural practices as the blunt influenced   the spatial distribution of nymphs. The implementation of direct   sampling generated an increment in yield equal to 0.06% and   reckoned nymph density of <i>T. vaporariorum</i> in tomato crops   (with precisions 5%, 10% and 25%) as a criterion to carry out   releasing the parasitoid <i>E. formosa</i>. </p>     <p><b>Key words:</b> whitefly, sample size, population dynamics,   tomato.</p> <hr size="1"> &nbsp;     <p><b><font size="3">Introducci&oacute;n</font></b></p>   El tomate es una planta de importancia socioecon&oacute;mica por   su alta demanda como hortaliza de consumo. No obstante,   requiere de un alto costo en mano de obra, que puede   llegar a 160 jornales por ciclo de producci&oacute;n (Jaramillo <i>et  al</i>., 2006), siendo un producto susceptible a fluctuaciones   clim&aacute;ticas, enfermedades y plagas, como la mosca blanca   de los invernaderos <i>Trialeurodes vaporariorum</i> (Westwood) (Hemiptera: Aleyrodidae) (Vallejo, 1999).</p>     <p>   Cardona (1995) anota que <i>T. vaporariorum</i> hizo su aparici&oacute;n   en Colombia en 1984, en la zona Andina. Desde   entonces el control de esta plaga se ha convertido en un serio problema. Esto se debe a que el insecto exhibe altos   niveles de resistencia a los insecticidas (Madrigal, 1992,   2001), plasticidad gen&eacute;tica para desarrollar biotipos (Van   Lenteren, 2000), alta capacidad de proliferaci&oacute;n, amplio   rango de plantas hospederas y h&aacute;bito de mantenerse   protegida en el env&eacute;s de las hojas (Madrigal, 1992, 2001; Rodr&iacute;guez <i>et  al</i>., 1996; Van Lenteren, 2000).</p>     <p>   Por ser una especie de h&aacute;bitos chupadores (Perea <i>et  al</i>.,   2003), <i>T. vaporariorum</i> ocasiona da&ntilde;os directos e indirectos   en la planta: a) al perforar las c&eacute;lulas del follaje; b)   al succionar la savia de las plantas, causando clorosis y   debilitando su crecimiento; c) al excretar miel de roc&iacute;o,   induciendo el desarrollo de <i>Cladosporium sp</i>. (fumagina)   (Noldus <i>et  al</i>.,1986; Corredor, 1992; Gerling, 1992; Malais   y Ravensberg, 1992; Baker, 1996; Perea <i>et  al</i>., 2003) y d) al   transmitir enfermedades virosas de una planta a otra, como   el virus del amarillamiento del tomate (ToCV) (Wisler   <i>et  al</i>., 1998b) y el virus infeccioso del amarillamiento del tomate (TICV) (Difuss <i>et  al</i>., 1996).</p>     <p>   A nivel mundial se realizan estudios orientados al control   biol&oacute;gico de la mosca blanca con el endoparasitoide <i>Encarsia formosa</i> (Hymenoptera: Aphelinidae), como alternativa   de manejo de <i>T. vaporariorum</i> (Gould <i>et  al</i>., 1975; Van Lenteren   y Van Roermund, 1999). Sin embargo, fue s&oacute;lo hasta   1997 que un programa de investigaci&oacute;n empez&oacute; a evaluar   y adaptar en Colombia sistemas de control biol&oacute;gico de   esta plaga con la avispa parasitoide (De Vis, 2001), demostrando   que, en el caso de cultivos bajo invernadero, el uso   de sistemas de control biol&oacute;gico resulta econ&oacute;micamente   m&aacute;s rentable que el control qu&iacute;mico (Bolckmans, 1999; Van Lenteren y Martin, 1999).</p>     <p>   El desarrollo de un programa de control biol&oacute;gico involucra   el conocimiento del ciclo de vida, la dispersi&oacute;n de la poblaci&oacute;n   y la densidad de la plaga, como criterios al momento   de tomar decisiones oportunas sobre actividades de manejo (Legg y Moon, 1994).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   El ciclo de vida de la mosca blanca tiene una duraci&oacute;n   aproximada de 28 d&iacute;as, a temperaturas entre 22-25 &deg;C   (Castresana, 1986) y consiste en seis estados de desarrollo:   huevo, cuatro estadios ninfales y adulto (Malais y Ravensberg,   1992). Los estados de desarrollo de <i>T. vaporariorum</i>   presentan distribuci&oacute;n agregada durante casi todo el ciclo de cultivo (Xu Ru-Mei, 1985; Bueno <i>et  al</i>., 2005).</p>     <p>   Los adultos se caracterizan por estar agregados en el   env&eacute;s de las hojas del tercio superior de la planta, donde   se realiza la s&iacute;ntesis de prote&iacute;nas y por lo tanto, se encuentran   niveles m&aacute;s altos de nitr&oacute;geno; esto se debe al   apareamiento y a la selecci&oacute;n de sitios de oviposici&oacute;n y   alimento cercanos a las venas principales (Xu Ru-Mei,   1985). Las ninfas se encuentran en mayor n&uacute;mero en el   tercio medio de la planta (Su&aacute;rez y L&oacute;pez, 1992) y, conforme &eacute;sta crece, se presenta una diferenciaci&oacute;n de edades de ninfas dentro de los tercios de ella (Xu Ru-Mei, 1985; Noldus <i>et  al</i>., 1986).</p>     <p>   Van Lenteren y Woets (1988) afirman que la densidad de <i>T. vaporariorum</i> puede estar determinada por la edad en que   se encuentre el cultivo, ya que las plantas son m&aacute;s susceptibles   al ataque de la plaga en determinadas etapas.</p>     <p>   El conocimiento de la dispersi&oacute;n de una poblaci&oacute;n permite:   a) entender el comportamiento b&aacute;sico de la especie (Ives   y Moon, 1987; Buntin, 1994; Davis, 1994), b) transformar   datos para el an&aacute;lisis estad&iacute;stico (Ives y Moon, 1987), c)   seleccionar un patr&oacute;n &oacute;ptimo de muestreo (Duque, 1986;   Ives y Moon, 1987; Andrews y Quezada, 1989), d) determinar   un tama&ntilde;o &oacute;ptimo de muestra (Buntin, 1994; Davis,   1994) y e) desarrollar un programa de muestreo (Buntin,   1994; Davis, 1994).</p>     <p>   Una herramienta &uacute;til en programas de manejo integrado de   plagas es el muestreo directo, que permite estimar la densidad   de la plaga en un cultivo y establecer si la poblaci&oacute;n se   encuentra por encima o por debajo del umbral de acci&oacute;n.   Esto posibilita la toma de decisiones al momento de implementar   estrategias de control (Buntin, 1994; Ramos, 1991).</p>     <p>   En Colombia no se conoce un sistema de muestreo directo   en tomate que sea a su vez confiable y econ&oacute;mico para   cuantificar las poblaciones de mosca blanca en cultivos de   tomate. Los m&eacute;todos de muestreo directo que se manejan   en la actualidad son aplicaciones de t&eacute;cnicas empleadas   en el sector floricultor, con especificaciones diferentes a   las caracter&iacute;sticas propias del cultivo de tomate (S&aacute;nchez,   1997). Sin embargo, varios acercamientos se han logrado   con los estudios realizados en tomate por Rodr&iacute;guez <i>et  al</i>.   (1996) y en habichuela y fr&iacute;jol por Bueno <i>et  al</i>. (2005).</p>     <p>   Con el fin de implementar estrategias de manejo para el   control de mosca blanca en tomate bajo invernadero, se   desarroll&oacute; un plan de muestreo directo para la mosca blanca   de los invernaderos <i>T. vaporariorum</i>, como criterio de   manejo para realizar liberaciones del parasitoide <i>E. formosa</i>   y contribuir as&iacute; al establecimiento de un sistema de control   biol&oacute;gico confiable y econ&oacute;micamente viable.</p> &nbsp;     <p><b><font size="3">Materiales y m&eacute;todos</font></b></p>     <p><b>Caracterizaci&oacute;n del &aacute;rea de estudio</b>    <br>   El estudio se realiz&oacute; en un cultivo comercial de tomate   bajo invernadero, entre marzo y julio de 2006, durante un ciclo de cultivo en un invernadero con un &aacute;rea de 4.500 m<sup>2</sup>,   localizado a 2.095 msnm, en la empresa Hortifresh S.A.,   vereda el Pedregal, municipio de Sutamarch&aacute;n (Boyac&aacute;).   La temperatura m&aacute;xima bajo invernadero fue 25 &deg;C y la   m&iacute;nima, 10 &deg;C, con una humedad relativa de 70% y fotoper&iacute;odo   de 12:12. El invernadero estaba cubierto por pl&aacute;stico   de invernadero calibre 8 y la entrada de aire se hizo a trav&eacute;s   de cortinas y cumbreras.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   Se trabaj&oacute; con tres variedades: Bravona, Durinta y Romana,   transplantadas a las 4 semanas de edad en sustrato de   cascarilla de arroz cruda y c&aacute;scara de coco, con distancias   de siembra de 0,23 m entre plantas y 1,03 m entre camas.   Las pr&aacute;cticas culturales fueron representativas de las realizadas   por agricultores de la zona. En cuanto al control   qu&iacute;mico, se emple&oacute; un total de 20 pesticidas, la mitad de   ellos insecticidas.</p>     <p><b>Definici&oacute;n del plan de muestreo</b>    <br>   Con el fin de determinar el n&uacute;mero de muestras que deben   tomarse para la ejecuci&oacute;n de un plan de muestreo, se realiz&oacute;   un estudio preliminar considerando el costo en t&eacute;rminos   de tiempo (en segundos) y el esfuerzo (representado por   un jornal).</p>     <p> Se defini&oacute; la hoja como unidad de muestreo y se realiz&oacute; un muestreo    triet&aacute;pico, estableciendo como unidades de la etapa primaria a cuadros,    de la etapa secundaria a plantas y de la etapa terciaria a hojas.</p>     <p>   En cada evento de muestreo y antes del inicio de los conteos,   se aleatorizaron cuadros y plantas. La unidad cuadro ten&iacute;a   un &aacute;rea de 29,60 m<sup>2</sup>, cada cuadro conten&iacute;a 5 camas y estaba   definido por la intersecci&oacute;n entre las naves y las divisiones   del invernadero. Cada planta se dividi&oacute; en tercio superior,   medio e inferior, que variaron dependiendo de la altura de   la planta. En cada planta se tomaron datos de: altura, n&uacute;mero   de nudos, n&uacute;mero de hojas, inflorescencias, racimos   y n&uacute;meros de ninfas y adultos presentes por hoja.</p>     <p>   Adem&aacute;s, con el fin de determinar si ninfas y adultos se distribu&iacute;an   homog&eacute;neamente o se agrupaban sobre determinados   foliolos de la hoja, se dise&ntilde;&oacute; una numeraci&oacute;n para cada   foliolo. El conteo de los individuos se inici&oacute; en el foliolo del   extremo de la hoja (opuesto al pec&iacute;olo) y posteriormente de   derecha a izquierda en zig-zag a lo largo de la hoja.</p>     <p>   Para determinar el n&uacute;mero de unidades de muestreo, se   tuvo en cuenta la fenolog&iacute;a de la planta, la densidad de   ninfas y adultos de mosca blanca y el tiempo de un jornal.   El muestreo empez&oacute; a las 5 sds; inicialmente se tomaron 24   cuadros, 4 plantas por cuadro y 6 hojas por planta. Cuando   las plantas alcanzaron 8 semanas de edad, el conteo de los   individuos se realiz&oacute; en 9 hojas por planta (3 hojas por   tercio).</p>     <p>   El registro de las variables se realiz&oacute; semanalmente,   desde las 5 hasta las 24 semanas de edad de las plantas.   As&iacute; mismo, se registraron cada semana los datos de temperaturas   m&aacute;xima y m&iacute;nima y cada 20 d&iacute;as el pH (con   pHmetro) y la conductividad el&eacute;ctrica del suelo (con   conductiv&iacute;metro).</p>     <p><b>   An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b>    <br>  Para el an&aacute;lisis estad&iacute;stico se utiliz&oacute; el <i>software</i> R versi&oacute;n   2.2.1 (<a href="http://www.r-project.org" target="_blank">http://www.r-project.org</a>). Se realiz&oacute; una regresi&oacute;n   m&uacute;ltiple para determinar si se present&oacute; efecto de las pr&aacute;cticas   de manejo y/o condiciones agroclim&aacute;ticas sobre la densidad   de ninfas y adultos. Se realizaron an&aacute;lisis de varianza   con el fin de determinar: a) c&oacute;mo se relacionan las etapas   con la variabilidad en la densidad de ninfas en el cultivo y   b) si los tercios de la planta y la disposici&oacute;n de los foliolos   tienen efecto sobre la densidad de las ninfas. Adicional a   esto, se hizo una prueba de comparaci&oacute;n m&uacute;ltiple para   conocer la proporci&oacute;n de ninfas y adultos en cada tercio   de la planta y foliolo de la hoja.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   Con el fin de comparar el promedio de ninfas de tercer estadio   por hoja entre los tres tercios de la planta, se realiz&oacute; un   an&aacute;lisis de varianza completamente al azar, tomando 3 hojas   por tercio como repeticiones. Se aplic&oacute; la transformaci&oacute;n   Box-Cox (G&oacute;mez, 1999) a los conteos de ninfas por hojas   para aproximar los datos a una distribuci&oacute;n normal. Posteriormente,   se compararon los promedios para cada uno de   los tercios mediante la prueba de Tukey (Zar, 1974).   El patr&oacute;n de distribuci&oacute;n espacial de ninfas de <i>T. vaporariorum</i>   en el universo de muestreo se estim&oacute; a trav&eacute;s de   la relaci&oacute;n varianza/promedio de la densidad de ninfas   por hoja y el par&aacute;metro b de la ley de poder de Taylor   (LPT). En t&eacute;rminos descriptivos, la LPT presenta altos   coeficientes de correlaci&oacute;n y proporciona un mejor ajuste   de los datos, especialmente a un bajo rango de densidades   medias (Buntin, 1994; Davis 1994).</p>     <p>   El tama&ntilde;o &oacute;ptimo de muestra se estim&oacute; con precisiones de   5%, 10% y 25%. Para un muestreo triet&aacute;pico se utilizaron   las <a href="#for1">f&oacute;rmulas</a> citadas por G&oacute;mez (1999):</p>     <p>    <center><a name="for1"><img src="img/revistas/agc/v26n2/v26n2a11for1.gif"></a></center></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>en donde, V es igual a la varianza media; E, la precisi&oacute;n   deseada; Z, el valor de z; a, unidades de la etapa primaria;   b, unidades de la etapa secundaria; r, unidades de la etapa   terciaria; &sigma;2, varianza de las unidades de la etapa terciaria   dentro de la secundaria; &sigma;2   <sub>S/P</sub>, varianza de las unidades de   la etapa secundaria dentro de la primaria y &sigma;2   <sub>P</sub>, varianza dentro de las unidades de la etapa primaria.</p>     <p>   Sin embargo, en caso de que las etapas no resultaran relevantes,   se consideraron las f&oacute;rmulas planteada por Finch   <i>et  al</i>. (1975) para un muestreo totalmente aleatorio y sin   etapas, que consideran par&aacute;metros de regresi&oacute;n de la LPT   con un valor fijo de precisi&oacute;n:</p>     <p>    <center>     log n = (log a - 2 log Do) -(2 - b)log m    </center></p>     <p>   en donde, n es el n&uacute;mero de muestras; a (el intercepto) y   b (la pendiente), par&aacute;metros de regresi&oacute;n del promedio   de individuos por unidad secundaria y la varianza de la   etapa secundaria (S<sub>e</sub>   <sup>2</sup>); Do, un valor de precisi&oacute;n fijo y m,   la densidad de individuos por unidad secundaria.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Estimaci&oacute;n de la densidad de ninfas   de <i>T. vaporariorum</i> por planta</b>    <br>   Con el prop&oacute;sito de determinar la densidad promedio   de ninfas por planta como herramienta al momento de   realizar liberaciones de <i>E. formosa</i> en cultivos de tomate   mantenidos bajo invernadero, se elabor&oacute; un <i>software</i> de   aplicaci&oacute;n que facilita al agricultor realizar esta tarea en   forma r&aacute;pida y precisa.</p>     <p>   El <i>software</i> de aplicaci&oacute;n se elabor&oacute; a partir del resultado   de la separaci&oacute;n de medias de los tercios de la planta, agrupadas   conforme al tercio en el que se present&oacute; la mayor   concentraci&oacute;n de individuos por hoja. Este <i>software</i> permite   proyectar el promedio de ninfas por hoja para cualquier   tercio, a partir del n&uacute;mero total de hojas por tercio y del   promedio de ninfas por hoja para el tercio en donde se   concentr&oacute; la mayor proporci&oacute;n de individuos.</p>     <p>   Las proporciones de ninfas por tercio demandan errores   que son aplicables en cualquier evento de muestreo; por lo   tanto, se calcul&oacute; el error est&aacute;ndar para cada una de estas   proporciones.</p>     <p>   El costo del muestreo se estim&oacute; a partir del tama&ntilde;o de   muestra, el tiempo empleado y el costo de un jornal.</p> &nbsp;     <p><b><font size="3">Resultados y discusi&oacute;n</font></b></p>     <p><b>Fluctuaci&oacute;n de ninfas y adultos   de <i>T. vaporariorum</i> a nivel de planta</b>    <br>   La densidad de ninfas y adultos de <i>T. vaporariorum</i> en un   cultivo de tomate bajo invernadero puede presentar variaciones,   como resultado de la influencia de labores culturales,   el control qu&iacute;mico y las condiciones ambientales.</p>     <p>   Aunque pr&aacute;cticas como el deshoje, la poda, la eliminaci&oacute;n   de chupones y el despunte son labores que tienen por objeto   la remoci&oacute;n de material vegetal, se encontr&oacute; que el deshoje   repercute significativamente sobre la densidad de ninfas   (P=0,00220) y adultos (P=0,00607) de <i>T. vaporariorum</i>.   En la <a href="#fig1">figura 1</a> se observa que el efecto del deshoje realizado   a las 20 sds (semanas despu&eacute;s de la siembra), pico de   densidad para ninfas y adultos, produjo una disminuci&oacute;n   de 87% en el n&uacute;mero de ninfas por planta, con respecto a   las 21 sds. Al efectuar el segundo deshoje (a las 21 sds) se   encontr&oacute; una disminuci&oacute;n de 62% y 47% en la poblaci&oacute;n   de ninfas y adultos, respectivamente, en relaci&oacute;n con las   23 sds. Entre las 23 y 24 sds, cuando no se realiz&oacute; esta labor,   la poblaci&oacute;n de ninfas disminuy&oacute; 15% y la de adultos   aument&oacute; 15% (<a href="#fig1">figura 1</a>).</p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="fig1"><img src="img/revistas/agc/v26n2/v26n2a11fig1.gif"></a></center></p>     <p>   Adem&aacute;s del deshoje, la aplicaci&oacute;n de insecticidas tuvo efecto   sobre la densidad de adultos (P = 0,13270, con significancia   al 15%). La primera aplicaci&oacute;n se realiz&oacute; a las 5 sds (semana   en la que se iniciaron los conteos), cuando era evidente la   presencia de adultos de mosca blanca. Hacia las 8 sds &oacute;   inicio de la fase reproductiva (<a href="#fig1">figuras 1</a> y <a href="#fig2">2c</a>), se observ&oacute;   que la poblaci&oacute;n de ninfas se duplic&oacute;, con respecto a la   primera semana del muestreo, mientras que la de adultos   se mantuvo.</p>     <p>    <center><a name="fig2"><img src="img/revistas/agc/v26n2/v26n2a11fig2.gif"></a></center></p>     <p>   La disminuci&oacute;n en las aplicaciones de insecticidas en las dos   semanas consecutivas al inicio de los conteos, permiti&oacute; un   aumento en la poblaci&oacute;n de adultos de 50% a las 8 sds (con   respecto a las 9 sds) y de 96% entre las 19 y 20 sds, como lo   muestra la <a href="#fig1">figura 1b</a>. Sin embargo, es importante resaltar   que las aplicaciones no estuvieron sujetas al estudio sino a   pol&iacute;ticas de empresa.</p>     <p>   El deshoje sumado a la aplicaci&oacute;n de insecticidas ocasion&oacute;   una disminuci&oacute;n de 96% en el n&uacute;mero de adultos entre las   20 y 21 sds. Esto confirma estudios anteriores realizados   por De Vis (2001), en los que se afirma que el n&uacute;mero de   ninfas por hoja es notablemente mayor al de adultos, debido   a que aqu&eacute;llas son menos susceptibles por permanecer en el   env&eacute;s de las hojas y estar protegidas con una cubierta cerosa   contra insecticidas y altas temperaturas (<a href="#fig1">figura 1</a>).</p>     <p>   En los resultados obtenidos por De Vis (2001), se encontr&oacute;   que el mayor n&uacute;mero de adultos por planta (a temperatura   promedio de 15,5 &deg;C bajo invernadero) se mantuvo entre   las 16 y las 19 sds, lo que variaba seg&uacute;n el a&ntilde;o de muestreo.   Por otra parte, S&aacute;nchez <i>et  al</i>. (2005) registraron que a   temperatura promedio de 32,5 &deg;C la densidad m&aacute;xima de   ninfas y de adultos en un cultivo de tomate a media sombra se present&oacute; a las 20 y 22 sds, respectivamente, y en cultivo   al aire libre, a las 19 sds para ambos estadios.</p>     <p>   Al comparar los resultados del presente estudio con los   obtenidos por De Vis (2001) y S&aacute;nchez <i>et  al</i>. (2005), se   encontr&oacute; que la planta fue m&aacute;s susceptible al ataque por   parte de ninfas y adultos entre las 19 y 20 sds, lo que puede   explicarse por el hecho que las plantas registran la mayor   cantidad de hojas en todo el ciclo de cultivo y por lo tanto,   alcanzan su m&aacute;xima oferta en el suministro alimenticio   (<a href="#fig2">figura 2b</a>).</p>     <p>   Efecto de la fenolog&iacute;a sobre la fluctuaci&oacute;n   de <i>T. vaporariorum</i>   En las <a href="#fig1">figuras 1</a> y <a href="#fig2">2</a> se observa que la fase vegetativa culmina   a las 8 sds (l&iacute;nea gris) con la aparici&oacute;n de la primera   infl orescencia, dando paso a la fase reproductiva, tal como   lo reporta Jaramillo <i>et  al</i>. (2006). La fase reproductiva tiene   una duraci&oacute;n de 17 semanas, es decir, desde las 8 sds hasta   las 24 sds. Dentro de la fase reproductiva, la etapa de fructificaci&oacute;n se inici&oacute; a partir de la 11 semana de edad (<a href="#fig2">figura   2c</a>), coincidiendo tambi&eacute;n con lo anotado por Jaramillo   <i>et  al</i>. (2006).</p>     <p>   En la <a href="#fig2">figura 2a</a> se observa que la altura de las plantas de   tomate se asemeja a una curva sigmoidea. A las 21 sds   la planta alcanz&oacute; su m&aacute;xima altura, as&iacute; como la mayor   cantidad de nudos, hojas y racimos (<a href="#fig2">figuras 2b y 2c</a>). Si se   tiene en cuenta que a las 20 sds se obtuvo el pico m&aacute;ximo   de densidad de ninfas y adultos, es factible explicar este   aumento por el incremento en el n&uacute;mero de hojas y por   lo tanto, por la m&aacute;xima oferta de suministro alimenticio   (<a href="#fig2">figura 2b</a>).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   Durante el muestreo se observ&oacute; que el n&uacute;mero de nudos super&oacute;   al de hojas a partir de las 8 sds, cuando se inici&oacute; la fase   reproductiva (<a href="#fig2">figura 2b</a>). Hacia la 21 sds, el n&uacute;mero de hojas   disminuy&oacute; debido al deshoje realizado a las 20 semanas de   edad (<a href="#fig1">figura 1</a>) y a la aparici&oacute;n de hojas senescentes.   El aumento en el n&uacute;mero de racimos (<a href="#fig2">figura 2c</a>), la altura   y el n&uacute;mero de hojas entre las 9 y 11 sds (<a href="#fig2">figura 2a y 2b</a>)   coincide con el incremento de la poblaci&oacute;n de ninfas entre   las 8 y las 11 sds (<a href="#fig1">figura 1a</a>). Si se tiene en cuenta que la etapa   vegetativa culmin&oacute; a las 8 sds y que la formaci&oacute;n del primer   racimo ocurri&oacute; a las 11 sds, se asume que entre las 9 y 11   sds la planta contaba con una gran cantidad de asimilados   en sus hojas (para el llenado de frutos) que suministraron   una fuente rica en nutrientes y contribuyeron en parte al   aumento de la poblaci&oacute;n de ninfas.</p>     <p>   En la <a href="#fig1">figura 1</a> se observa que entre las 11 y 13 sds la poblaci&oacute;n   de adultos aument&oacute;, debido a que a las 12 sds no se   realiz&oacute; aplicaci&oacute;n de insecticidas, y la de ninfas disminuy&oacute;.   Sin embargo, si se considera que entre las 12 y 13 sds el   n&uacute;mero de racimos aument&oacute; (<a href="#fig2">figura 2c</a>) y el de hojas se   mantuvo estable (<a href="#fig2">figura 2b</a>), es posible que el descenso en   la poblaci&oacute;n de ninfas se debiera al efecto de la competencia   por alimento y espacio.</p>     <p><b>Fluctuaci&oacute;n en la proporci&oacute;n de ninfas   de <i>T. vaporariorum</i> a nivel de tercio</b>    <br>  En la <a href="#fig3">figura 3</a> se observa que la proporci&oacute;n de ninfas por   tercio de la planta se encuentra a partir de la 8 sds. Los   conteos comprendidos entre las 5 y 7 sds se realizaron sobre   6 hojas, debido a que las plantas no superaban las 8 hojas   ni los 50 cm de altura.</p>     <p>    <center><a name="fig3"><img src="img/revistas/agc/v26n2/v26n2a11fig3.gif"></a></center></p>     <p>   Entre las 8 y 16 sds se encontraron diferencias altamente   significativas en el n&uacute;mero promedio de ninfas seg&uacute;n el   tercio de la planta (P&lt;0,01); as&iacute; mismo, la prueba de Tukey   mostr&oacute; diferencias significativas entre los tres tercios, con   P&lt;0,01 para las tres comparaciones.</p>     <p>Los an&aacute;lisis de varianza entre las 17 y 24 sds revelaron   diferencias altamente significativas entre los tercios de la   planta (P&lt;0,01); posteriormente, la prueba de Tukey se&ntilde;al&oacute;   diferencias entre los tercios medio e inferior (P&gt;0,05). Adicional   a esto, se compar&oacute; el tercio superior con los otros dos   tercios, encontr&aacute;ndose diferencias altamente significativas   (P&lt;0,01), con el promedio mayor para los tercios medio e inferior.</p>     <p>   El paso de la etapa vegetativa a la reproductiva (8 sds) y el   crecimiento en t&eacute;rminos de altura marc&oacute; el inicio de una   diferenciaci&oacute;n de ninfas en edades sobre los tercios de la   planta (<a href="#fig3">figura 3</a>).</p>     <p>   Entre las 8 y 16 sds se registr&oacute; una mayor proporci&oacute;n de   ninfas de mosca blanca en el tercio inferior (Ti) de la planta.   Entre las 17 y 18 sds se encontr&oacute; una mayor proporci&oacute;n en   el tercio medio de la planta y a partir de las 19 sds y hasta   las 21 sds fue evidente un aumento en el n&uacute;mero de ninfas   en el tercio superior, debido a la preferencia de la mosca   blanca por alimentarse de hojas j&oacute;venes y de ovipositar   cerca de las venas principales, lo que posteriormente da   surgimiento a nuevas generaciones de ninfas como consecuencia   de oviposiciones previas. A las 23 y 24 sds las   ninfas se encontraron en mayor proporci&oacute;n en el tercio   medio y superior, respectivamente, como consecuencia   de la superposici&oacute;n de generaciones de ninfas y del crecimiento   de la planta.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La proporci&oacute;n de ninfas en los tercios de la planta determina   el surgimiento de cuatro momentos de la poblaci&oacute;n:   el primero, para plantas no divididas en tercios (Tp); el   segundo, para ninfas concentradas en el tercio inferior   (Ti); el tercero, para ninfas concentradas en el tercio medio   (Tm) y el cuarto, para ninfas concentradas en el tercio superior (Ts).</p>     <p><b>Distribuci&oacute;n de ninfas y adultos de <i>T. vaporariorum</i> a nivel de foliolos</b>    <br>   En el caso de las ninfas, se encontr&oacute; que de los 18 eventos   de muestreo s&oacute;lo 8 resultaron significativos para diferencia   de n&uacute;mero promedio de individuos por foliolo. En   estas fechas se encontr&oacute; una mayor incidencia de ninfas en   los foliolos 7 y 8 localizados hacia el interior de la planta.   La mayor incidencia puede explicarse por el hecho que   los foliolos 7 y 8 eran ramificaciones j&oacute;venes de la hoja,   seleccionados por el adulto como sitios de oviposici&oacute;n.   Sin embargo, por la alta variabilidad de las ninfas en los   foliolos se recomienda realizar los conteos de ninfas sobre toda la hoja.</p>     <p><b>   Distribuci&oacute;n espacial de ninfas de <i>T. vaporariorum</i></b>    <br>   En los resultados obtenidos con la relaci&oacute;n varianza/promedio   de densidad de ninfas por hoja (<a href="#fig4">figura 4</a>), se observ&oacute;   que la varianza es mayor que el promedio en todas las semanas   de muestreo, es decir, que la distribuci&oacute;n de ninfas   es agregada durante todo el ciclo de cultivo. Sin embargo,   se encontr&oacute; que pr&aacute;cticas culturales como el despunte infl uyen   significativamente (P=4,29&middot;10<sup>-7</sup>) en que la distribuci&oacute;n de ninfas de <i>T. vaporariorum</i> sea agregada.</p>     <p align="center"><a name="fig4"><img src="img/revistas/agc/v26n2/v26n2a11fig4.gif"></a></p>     <p>   En la semana 16 despu&eacute;s de la siembra, la poblaci&oacute;n de   ninfas se encontraba muy agregada (<a href="#fig4">figura 4</a>), posiblemente   por haber sido esta semana una etapa transitoria en la   distribuci&oacute;n de ninfas entre el tercio inferior y medio de la planta (<a href="#fig3">figura 3</a>).</p>     <p>   Entre las 21 y 23 sds la poblaci&oacute;n de ninfas present&oacute; la   mayor agregaci&oacute;n en todo del ciclo de cultivo (<a href="#fig4">figura   4</a>). Lo anterior, tal vez como consecuencia del despunte   o la eliminaci&oacute;n del meristemo apical de la planta, que   evita la formaci&oacute;n de hojas nuevas (sitios de oviposici&oacute;n)   y ocasiona una aglomeraci&oacute;n de los huevos y despu&eacute;s,   el surgimiento de ninfas en las hojas m&aacute;s j&oacute;venes de la   planta cercanas al meristemo apical, localizadas entre el Tm y el Ts (<a href="#fig3">figura 3</a>).</p>     <p><b> Definici&oacute;n del tama&ntilde;o de muestra</b>    <br>   Al realizar el Anova para el muestreo triet&aacute;pico, se encontr&oacute;    que la variabilidad de la etapa cuadro es muy baja, generando en ocasiones estimativos    negativos. Por esta raz&oacute;n, el muestreo se redujo a dos etapas: planta    y hoja. Cuando se estim&oacute; el tama&ntilde;o de muestra para el muestreo    biet&aacute;pico, se encontr&oacute; que &eacute;ste variaba considerablemente    en cada evento de muestreo. Por esta raz&oacute;n se utiliz&oacute; la ley de    poder de Taylor (LPT).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Los par&aacute;metros de la LPT se estimaron para cada uno de los cuatro momentos    descritos previamente (Tp, Ti, Tm y Ts) y para cada unidad de muestreo (planta    y hoja); sin embargo, se encontr&oacute; una pendiente mayor a 2 (b&gt;2). Por    esta raz&oacute;n, se analizaron: a) las proporciones de varianza de planta    y hoja para cada una de las fechas de muestreo y b) los resultados de la proporci&oacute;n    de <i>T. vaporariorum</i> entre tercios (<a href="#fig3">figura 3</a>).</p>     <p>   En el an&aacute;lisis de los resultados se identifi caron tres momentos   diferentes, desde el punto de vista de la distribuci&oacute;n de la plaga:</p>     <p> 1. Tp (plantas no divididas en tercios), en el que en la etapa planta no result&oacute;    ser un componente importante, por lo cual se tuvo en cuenta s&oacute;lo hoja    (muestreo aleatorio).</p>     <p> 2. Ti (ninfas concentradas en el tercio inferior de la planta), en el que    la proporci&oacute;n de varianza de planta no fue significativa, por lo cual    se redujo a hoja (muestreo aleatorio).</p>     <p> 3. Tm-s (ninfas concentradas en el tercio medio y superior de la planta),    en el que las etapas planta y hoja son importantes (biet&aacute;pico). Sin embargo,    cuando se realizaron las regresiones por separado para cada tercio, ninguna    result&oacute; significativa. Lo anterior llev&oacute; a unir los dos tercios    y a hacer una regresi&oacute;n conjunta para ambos, de modo que el tama&ntilde;o    de muestra obtenido pueda usarse para Tm y Ts.</p>     <p>   El surgimiento de los tres momentos determina que la   densidad y la distribuci&oacute;n de la plaga var&iacute;en con la edad de   la planta. De esta manera, con s&oacute;lo realizar conteos en el   tercio en donde se concentra la mayor proporci&oacute;n de ninfas   y contar el n&uacute;mero total de hojas por tercio, es posible estimar un n&uacute;mero promedio de individuos por hoja en   los tercios restantes.</p>     <p>   Cuando la proporci&oacute;n de ninfas es mayor en el tercio inferior,   se realizan conteos de ninfas en hojas ubicadas en   el tercio inferior y luego el promedio de ninfas por hoja   se extrapola a los tercios medio y superior a trav&eacute;s de las   siguientes proporciones: 0,51 para el tercio medio y 0,04   para el tercio superior.</p>     <p>   Para el tercer momento del muestreo (Tm-s), se encontr&oacute;   una proporci&oacute;n mayor en el tercio medio. La proyecci&oacute;n del   n&uacute;mero promedio de ninfas por hoja sobre los tercios inferior   y superior se calcula con las siguientes proporciones:   0,15 para el tercio inferior y 0,98 para el tercio superior.</p>     <p>   Estas proporciones, que hacen parte del <i>software</i> de   aplicaci&oacute;n, permiten proyectar la densidad de ninfas por   planta, que sirve como criterio de manejo al momento   de realizar liberaciones del parasitoide <i>E. formosa</i>. En la   <a href="#fig5">figuras 5</a> y <a href="#fig6">6</a> se observa que el tama&ntilde;o de muestra var&iacute;a   conforme a la densidad promedio de ninfas por hoja, la   precisi&oacute;n y el costo. Es decir, que el n&uacute;mero de muestras   disminuye cuando: a) la densidad de ninfas por hoja aumenta   y/o b) la precisi&oacute;n disminuye; lo que genera una   reducci&oacute;n en el costo.</p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="fig5"><img src="img/revistas/agc/v26n2/v26n2a11fig5.gif"></a></center></p>     <p>    <center><a name="fig6"><img src="img/revistas/agc/v26n2/v26n2a11fig6.gif"></a></center></p>     <p>   En la <a href="#fig5">figura 5a</a> se estima el tama&ntilde;o de muestra para un   muestreo aleatorio (entre las 5 y 7 sds, cuando las plantas   no se dividen en tercios), en funci&oacute;n de la densidad de   ninfas por hoja. Es decir, si el promedio de ninfas por hoja   para esta etapa no supera la unidad, se deben muestrear   143; 36 &oacute; 6 hojas (1 hoja por planta), asumiendo un costo   de: $763,29 pesos, con una precisi&oacute;n del 5%; $190,82 pesos   al 10% &oacute; $30,53 pesos al 25%. Esto depender&aacute; del balance   que el agricultor realice entre precisi&oacute;n y costo al momento   de realizar liberaciones con la avispa parasitoide.</p>     <p> En las <a href="#fig5">figuras 5b</a> y <a href="#fig6">6a-c</a> se estimaron    tres tama&ntilde;os de muestra. La l&iacute;nea punteada indica la densidad    promedio de ninfas de <i>T. vaporariorum</i> que se obtuvo para las etapas Ti,    Tm y Ts, respectivamente.</p>     <p>Entre las 8 y las 16 sds, cuando las ninfas se concentraron   en el Ti de las plantas de tomate (<a href="#fig5">figura 5b</a>), se alcanz&oacute; una   densidad m&iacute;nima de 1 y m&aacute;xima de 12 ninfas por hoja (l&iacute;nea   punteada). El n&uacute;mero de hojas que se debe muestrear para   estimar la densidad m&iacute;nima encontrada en el muestreo   es de 388; 97 &oacute; 16 hojas (1 hoja por planta), asumiendo un   costo aproximado de $3800, $950 y $150 pesos, con una   precisi&oacute;n de 5%, 10% &oacute; 25%, respectivamente. Para estimar   la densidad m&aacute;xima como la obtenida en el muestreo, se   deben muestrear 198; 49 u 8 hojas, asumiendo un costo   aproximado de $1.940, $485 &oacute; $78 pesos, con una precisi&oacute;n de 5%, 10% &oacute; 25%, respectivamente.</p>     <p>   En las <a href="#fig6">figuras 6a-c</a> se observa que para estimar una densidad   de 13 ninfas por planta (l&iacute;nea punteada) se recomienda   muestrear una hoja que se localice entre el tercio medio y   el superior (17-24 sds), asumiendo un costo aproximado de   $3.510, $580 &oacute; $140 pesos, con una precisi&oacute;n de 5%, 10% &oacute;   25%, respectivamente.</p>     <p><b>Plan de muestreo directo</b>    <br>   El plan de muestreo para la determinaci&oacute;n de la densidad   de ninfas de <i>T. vaporariorum</i> en cultivos de tomate mantenidos   bajo invernadero contempla los siguientes pasos   (<a href="#fig7">figura 7</a>):</p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="fig7"><img src="img/revistas/agc/v26n2/v26n2a11fig7.gif"></a></center></p>     <p>   1. Ejecuci&oacute;n del muestreo piloto, que consiste te en tomar   5 hojas por planta, dependiendo de la edad en la que se   encuentre el cultivo.</p>     <p> 2. Definici&oacute;n del tama&ntilde;o de muestra con base en costo y precisi&oacute;n    con que se quiere proceder. 3. Ejecuci&oacute;n del plan de muestreo.</p>     <p>   4. Estimaci&oacute;n de la densidad de ninfas de <i>T. vaporariorum</i>   por hoja.</p>     <p>   5. Estimaci&oacute;n de la densidad de ninfas de <i>T. vaporariorum</i>   por planta.</p>     <p>6. de <i>T. vaporariorum</i> en el cultivo.</p>     <p><b>Costo total del muestreo</b>    <br>   El costo total (en pesos) de los 18 eventos de muestreo fluct&uacute;a entre    $2.357,92 y $327,69, con una precisi&oacute;n de 25%; entre $13.274,84 y $1.989,84,    con una precisi&oacute;n de 10% y entre $52.263,83 y $7.719,86, con una precisi&oacute;n    de 5%. Jaramillo <i>et al</i>. (2006) afirman que por ciclo de producci&oacute;n    en tomate se requieren 160 jornales; es decir, si se asume que el costo m&aacute;ximo    del muestreo directo equivale a $52.263,83 (con una precisi&oacute;n de 5%),    se concluye que el muestreo directo representa un 6% de sobrecosto en mano de    obra y un 0,06% de sobrecosto en la producci&oacute;n de una hect&aacute;rea    de tomate bajo invernadero, asumiendo como costo total de la producci&oacute;n    de una hect&aacute;rea de tomate bajo invernadero a $155.579.400.</p> &nbsp;     <p><b><font size="3">Conclusiones</font></b></p>   Se desarroll&oacute; un plan de muestreo directo confiable y econ&oacute;mico   para la determinaci&oacute;n de niveles de poblaci&oacute;n de   ninfas de <i>T. vaporariorum</i>, como criterio para la liberaci&oacute;n   de <i>E. formosa</i>. Este m&eacute;todo contempla diferentes esquemas   de muestreo, conforme var&iacute;a la distribuci&oacute;n de la plaga en   funci&oacute;n de la edad de la planta.</p>     <p>   En t&eacute;rminos generales el plan de muestreo cambia en tres   etapas del cultivo: en la primera, las plantas tienen entre 5   y 7 semanas de edad y se realiza un muestreo aleatorio y   conteos en toda la planta. En la segunda, las plantas tienen   entre 8 y 16 semanas de edad y se realiza un muestreo aleatorio   y conteos de ninfas por hoja en el tercio inferior. En   la tercera, las plantas est&aacute;n entre las 17 y 24 sds y se realiza   un muestreo biet&aacute;pico (planta y hoja) y conteos de ninfas   por hoja en los tercios medio-superior.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   Pr&aacute;cticas culturales como el despunte influyen en la distribuci&oacute;n   espacial de ninfas de <i>T. vaporariorum</i> en un cultivo   comercial de tomate bajo invernadero.</p>     <p><b>Agradecimientos</b></p>     <p>   A la Universidad Militar Nueva Granada por el apoyo   financiero de este proyecto (CIAS-2004-007) y a la   Empresa Hortifresh por el apoyo log&iacute;stico durante su   desarrollo.</p> &nbsp;     <p><b><font size="3">Literatura citada</font></b></p>     <!-- ref --><p>   Andrews, K. y J. Quezada. 1989. Manejo integrado de plagas ins&eacute;ctiles   en la agricultura, estado actual y futuro. Escuela Agr&iacute;cola   Panamericana, El Zamorano (Honduras). 623 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0120-9965200800020001100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Baker, J.R. 1996. Insectos y otras plagas de las flores y plantas del   follaje. Hortitecnia, Bogot&aacute;. 105 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0120-9965200800020001100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Bolcksmans, K.J.F. 1999. Commercial aspects of biological pests   control. pp. 310-318. En: Albajes, R., M.L. Gullino, J.C. Van   Lenteren y Y. Elad (eds.). Integrated pest and disease management   in greenhouse crops. Kluwer Publishers, Dordrecht   (Holanda).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0120-9965200800020001100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Bueno, J.M., C. Cardona y P. Chac&oacute;n. 2005. Fenolog&iacute;a, distribuci&oacute;n   espacial y desarrollo de m&eacute;todos de muestreo para <i>Trialeurodes vaporariorum</i> (Westwood) (Hemiptera:Aleyrodidae) en habichuela   y fr&iacute;jol (<i>Phaseolus vulgaris</i> L.). Revista Colombiana de   Entomolog&iacute;a 31(2), 161-170.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0120-9965200800020001100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Buntin, D. 1994. Developing a primary sampling program. pp. 99-   115. En: Pedigo, L.P. y G.D. Buntin. Handbook of sampling   methods for arthropods in agriculture. CRC Press, Boca   Raton, FL. 714 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0120-9965200800020001100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> Castresana, L. 1986. <i>Encarsia tricolor</i> Foerster (Hymenoptera, Aphelinidae)    en la lucha biol&oacute;gica contra la mosca blanca de los invernaderos (<i>Trialeurodes    vaporariorum</i> Westwood). Tesis doctoral. Escuela T&eacute;cnica Superior    de Ingenieros Agr&oacute;nomos de Madrid (ETSI), Universidad Polit&eacute;cnica    de Madrid, Madrid.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0120-9965200800020001100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Cardona, C. 1995. Manejo de <i>Trialeurodes vaporariorum</i> (Westwood)   en fr&iacute;jol en la zona Andina: aspectos t&eacute;cnicos, actitudes   del agricultor y transferencia de tecnolog&iacute;a. Revista CEIBA   36(1), 53-65.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0120-9965200800020001100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Corredor, D. 1992. Algunos aspectos sobre el control de la mosca   blanca de los invernaderos <i>Trialeurodes vaporariorum</i> en   la Sabana de Bogot&aacute;. Universidad Nacional de Colombia,   Bogot&aacute;. 10 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0120-9965200800020001100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Davis, P. 1994. Statistics for describing population. pp. 33-54. En:   Pedigo, L.P. y G.D. Buntin. Handbook of sampling methods for   arthropods in agriculture. CRC Press, Boca Raton, FL. 714 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0120-9965200800020001100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   De Vis, R.M.J. 2001. Biological control of whitefly on greenhouse in   Colombia: <i>Encarsia formosa</i> or <i>Amitus fuscipensis</i>? Wageningen   University, Amsterdam. 166 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0120-9965200800020001100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Duffus, J.E., H. Liu y G.C. Wisler. 1996. Tomato infectious chlorosis   virus. A new clostero-likevirus transmitted by <i>Trialeurodes vaporariorum</i>. Eur. J. Plant Pathol. 102, 219-226.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0120-9965200800020001100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Duque, M.C. 1986. Patrones de distribuci&oacute;n espacial de artr&oacute;podos   y su importancia en la definici&oacute;n de un plan de muestreo.   Seminario-taller. Miscel&aacute;nea. Sociedad Colombiana de Entomolog&iacute;a,   Bogot&aacute;. pp. 1-29.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S0120-9965200800020001100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Finch, S., G. Skinner y G.H. Freeman. 1975. The distribution and   analysis of cabbage root fly egg populations. Ann. Appl. Biol.   79, 1-18.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0120-9965200800020001100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Gerling, D. 1992. Approaches to the biological control of whiteflies.   Florida Entomologist 75 (4), 446-456.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S0120-9965200800020001100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   G&oacute;mez, H. 1999. Algunos m&eacute;todos estad&iacute;sticos para el estudio para   el estudio de poblaciones de organismos. Universidad Nacional   de Colombia, Medell&iacute;n. 216 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0120-9965200800020001100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Gould, H.J., W.J. Parr, H.C. Woodville y S.P. Simmonds. 1975.   Biological control of glasshouse whitefly (<i>Trialeurodes vaporariorum</i>)   on cucumbers. Entomophaga 20(3), 285-292.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S0120-9965200800020001100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Ives, P.M. y R.D. Moon,. 1987. Sampling theory and protocol for   insects. pp. 49-75. En: Teng, P.S. (ed.). Crop loss assessment   and pest management. American Phytopathological Society Press, USA. 270 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0120-9965200800020001100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Jaramillo, J., V.P. Rodr&iacute;guez, M. Guzm&aacute;n y M. Zapata. 2006. El   cultivo de tomate bajo invernadero. Corpoica, Centro de Investigaci&oacute;n   La Selva, Rionegro (Antioquia, Colombia). 48 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S0120-9965200800020001100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Legg, D.E. y R.D.Moon. 1994. Bias and variability in statistical estimates.   pp. 55-69. En: Pedigo, L.P. y G.D. Buntin. Handbook of   sampling methods for arthropods in agriculture. CRC Press,   Boca Raton, FL. 714 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S0120-9965200800020001100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Madrigal, A. 1992. Nuevos aportes al manejo integrado de la mosca   blanca de los invernaderos. Universidad Nacional de Colombia,   Medell&iacute;n. 93 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000146&pid=S0120-9965200800020001100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Madrigal, A. 2001. Fundamentos de control biol&oacute;gico de plagas.   Universidad Nacional de Colombia, Medell&iacute;n. 397 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000147&pid=S0120-9965200800020001100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Malais, M. y W.J. Ravensberg. 1992. Knowing and recognizing. The   biology of glasshouse pests and their natural enemies. Koppert   Biological Systems, Holanda. 110 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000148&pid=S0120-9965200800020001100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Noldus, L.P.J.J., X. Rumei y J.C. Van Lenteren. 1986. The parasitehost   relationship between <i>Encarsia formosa</i> Gahan (Hymenoptera,   Aphelinidae) and <i>Trialeurodes vaporariorum</i>   (Westwood) (Homoptera, Aleyrodidae). XIX. Feeding- site   selection by the greenhouse whitefly. J. Appl. Ent. 101, 492-   507.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S0120-9965200800020001100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Perea, E.I., E. Rojas y A. Villalobos. 2003. Diagnostico de <i>Trialeurodes vaporariorum</i> (Homoptera: Aleyrodidae) en tabaco y   fr&iacute;jol de Garc&iacute;a Rovira (Santander). Revista Colombiana de   Entomolog&iacute;a 29(1), 7-10.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000150&pid=S0120-9965200800020001100024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Ramos, H.A. 1991. Bases para el establecimiento de un sistema   de muestreo de trips (Thysanoptera: Tripidae), con trampas   blancas en un cultivo comercial de clavel, en la Sabana de Bogot&aacute;.   Trabajo de grado. Facultad de Agronom&iacute;a, Universidad   Nacional de Colombia, Bogot&aacute;. 65 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000151&pid=S0120-9965200800020001100025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Rodr&iacute;guez, A., M. Hiller y E. Williams. 1996. Umbrales de acci&oacute;n   para la mosca blanca de los invernaderos, <i>Trialeurodes vaporariorum</i>   (Westwood) (Homoptera:Aleyrodidae), en tomate.   Revista Colombiana de Entomolog&iacute;a 22(1), 87-92.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000152&pid=S0120-9965200800020001100026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   S&aacute;nchez, M.L. 1997. Evaluaci&oacute;n de las fluctuaciones poblacionales   de la mosca blanca <i>Trialeurodes vaporariorum</i> (Westwood)   al introducir el par&aacute;sito <i>Encarsia formosa</i> (Gahan) como   alternativa de manejo de la plaga, en cultivo de rosa para   exportaci&oacute;n en la Sabana de Bogot&aacute;. Trabajo de grado. Facultad   de Agronom&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia,   Bogot&aacute;. 119 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000153&pid=S0120-9965200800020001100027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   S&aacute;nchez, D., R. Scotta y C. Arregui. 2005. Poblaci&oacute;n de mosca blanca   en tomate cultivado a campo con pantallas de sombreamiento.   Pesq. Agropec. Bras. 40 (2), 183-185.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000154&pid=S0120-9965200800020001100028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Su&aacute;rez, M. y A. L&oacute;pez. 1992. Estudio para la cr&iacute;a masiva de <i>Encarsia formosa</i> Gahan bajo condiciones de invernadero en la Sabana   de Bogot&aacute;. Trabajo de grado. Facultad de Agronom&iacute;a, Universidad   Nacional de Colombia, Bogot&aacute;. 96 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000155&pid=S0120-9965200800020001100029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Vallejo, F.A. 1999. Mejoramiento gen&eacute;tico y producci&oacute;n de tomate   en Colombia. Editorial Feriva, Cali (Colombia). 216 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000156&pid=S0120-9965200800020001100030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Van Lenteren, J.C. y J. Woets. 1988. Biological and integrated pest   control in greenhouses. Annu. Rev. Entomol. 33, 239-269.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000157&pid=S0120-9965200800020001100031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Van Lenteren, J.C. y N.A. Martin. 1999. Biological control of whitefly.   pp. 202-216. En: Albajes, R., M.L. Gullino, J.C. Van Lenteren   y Y. Elad (eds.). Integrated pest and disease management in   greenhouse crops. Kluwer Publishers, Dordrecht (Holanda).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000158&pid=S0120-9965200800020001100032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Van Lenteren, J.C. y H.J.W Van Roermund. 1999. Why is the parasitoid   <i>Encarsia formosa</i> so successful in controlling whitefly? pp.   116-130. En: Hawkins, B.A. y H.V. Cornell (eds.). Theoretical   approaches to biological control. Cambridge University Press,   Cambridge (Reino Unido).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000159&pid=S0120-9965200800020001100033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Van Lenteren, J.C. 2000. A greenhouse without pesticides: fact or   fantasy? Crop Protection 19, 375-384.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000160&pid=S0120-9965200800020001100034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Wisler, G.C., LI, R.H., Liu, H.-Y., Lowry, D.S. y J.E. Duffus. 1998.   Tomato chlorosis virus: a new whitefly-transmitted, phloemlimited,   bipartite closterovirus of tomato. Phytopathology   88, 402-409.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000161&pid=S0120-9965200800020001100035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Xu Ru-Mei. 1985. Dynamics of within-leaf spatial distribution   patterns of greenhouse whiteflies and the biological interpretations.   J. Appl. Ecology 22, 63-72.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000162&pid=S0120-9965200800020001100036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Zar, J. 1974. Biostatistical analysis. Prentice-Hall, Englewood Cliffs,   NJ. 620 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000163&pid=S0120-9965200800020001100037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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