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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Composición Química y Actividad Antibacteriana del Aceite Esencial de Minthostachys mollis]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The chemical composition and antibacterial activity of essential oil from Minthostachys mollis]]></article-title>
<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[Química Composição e Atividade Antibacteriano Óleo Essencial de Minthostachys mollis]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The chemical composition and antibacterial activity of essential oil from Minthostachys mollis were evaluated; the plants were grown in the Norte de Santander department, Colombia. The essential oil was obtained by conventional hydrodistillation from Minthostachys mollis leaves; relative density was determined at 20°C, as were the refraction index, essential oil solubility in ethanol (70% v/v) and optical rotation. Chemical composition was evaluated by gas chromatography/mass spectrometry (GC-MS). Three bacteria were used for evaluating antibacterial activity: Staphylococcus aureus ATCC 25923, Staphylococcus epidermidis ATCC 12228 and Escherichia coli ATCC 25922. The oil was diluted to the desired concentration (1,000-50 µg/mL) for determining antibacterial sensitivity and minimum inhibitory concentration, using the broth microdilution method, and a microplate reader was used for quantifying bacterial growth. Yield was 0.6%. Sensitivity test results revealed that bacteria were sensitive to essential oil from Minthostachys mollis; furthermore, this oil had a high content of oxygenated monoterpenes (i.e. carvacrol and thymol) having recognised antibacterial activity. It can thus be concluded that the vegetal species evaluated here is promising for controlling bacteria.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[Avaliou-se a composição química e atividade antibacteriana do óleo essencial Minthostachys mollis cultivada no departamento de Norte de Santander, Colômbia. O óleo essencial foi obtido por destilação convencional das folhas; determinada densidade relativa a 20°C, índice de refração; solubilidade de óleos essenciais em álcool etílico (70% v/v) e rotação óptica. A composição química foi avaliada utilizando o espectrômetro de massa/cromatógrafo. O evento foi realizado para três bactérias: Staphylococcus aureus ATCC 25923, Staphylococcus epidermidis ATCC 12228 e Escherichia coli ATCC 25922. Para determinar a sensibilidade antibacteriana e a concentração inibitória mínima, óleos são diluídos para a concentração desejada (1000-50 µg/mL), utilizando o método de microdiluição em caldo, e usado o leitor de microplacas para a quantificação do crescimento bacteriano. O rendimento foi de 0,6%. Os resultados do teste de sensibilidade mostraram que as bactérias foram sensíveis para o óleo essencial de Minthostachys mollis; Além disso, este óleo apresenta um alto teor de monoterpenos, oxigenados com atividade antibacteriana conhecida, tais como o carvacrol e timol. Dependendo dos resultados, podemos concluir que as espécies de plantas avaliadas é promissora para o controle do componente bacteriano.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="left"><font face="verdana" size="2"><b>ART&Iacute;CULO ORIGINAL/ORIGINAL ARTICLE</b></font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Composici&oacute;n Qu&iacute;mica y Actividad Antibacteriana del Aceite Esencial de <i>Minthostachys mollis</i></b></font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>The chemical composition and antibacterial activity of essential oil from Minthostachys mollis</b></font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Qu&iacute;mica Composi&ccedil;&atilde;o e Atividade Antibacteriano &Oacute;leo Essencial&nbsp; de <i>Minthostachys mollis</i></b></font></p> 	    <p align="left"><font face="verdana" size="2"><b><i>Miladys Torrenegra-Alarc&oacute;n</i><a href="#nt1"><sup>1</sup></a><a name="n1"></a>    <br><i> Clemente Granados-Conde</i><a href="#nt2"><sup>2</sup></a><a name="n2"></a>    <br> 	<i>Marlene Dur&aacute;n-Lengua</i><a href="#nt3"><sup>3</sup></a><a name="n3"></a>    <br><i> Glicerio Le&oacute;n-M&eacute;ndez</i><a href="#nt4"><sup>4</sup></a><a name="n4"></a>    <br> 	<i>Xiomara Y&aacute;&ntilde;ez-Rueda</i><a href="#nt5"><sup>5</sup></a><a name="n5"></a>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> 	<i>C&eacute;sar Mart&iacute;nez</i><a href="#nt6"><sup>6</sup></a><a name="n6"></a>    <br><i> Nerlis P&aacute;jaro-Castro</i><a href="#nt7"><sup>7</sup></a><a name="n7"></a></b></font></p> 	    <p><font face="verdana" size="2"><a name="nt1"></a><a href="#n1">1</a>Ing. Alim, MSc, Centro de Comercio y Servicios, Regional Bol&iacute;var. SENA. Grupo de Investigaci&oacute;n de Biotecnolog&iacute;a e<font size="2" face="verdana"> innovaci&oacute;n &#150;GIBEI-, Facultad de Ingenier&iacute;a, Universidad de Cartagena. Grupo de Investigaci&oacute;n en Ingenier&iacute;a, Innovaci&oacute;n, Calidad Alimentaria y Salud&#150;INCAS-</font></font> 	         <br>   <font face="verdana" size="2"><a name="nt2"></a><a href="#n2">2</a>Ing. Alim, MSc, Facultad de Ingenier&iacute;a, Universidad de Cartagena. Grupo de Investigaci&oacute;n en Ingenier&iacute;a, Innovaci&oacute;n, Calidad Alimentaria y Salud&#150;INCAS-</font>    <br> 	     <font face="verdana" size="2"><a name="nt3"></a><a href="#n3">3</a>Bact, MSc, PhD Facultad de Medicina, Universidad de Cartagena.</font>    <br> 	   	  <font face="verdana" size="2"><a name="nt4"></a><a href="#n4">4</a>Qu&iacute;mico Farmac&eacute;utico, MSc(C), Facultad de Ciencias Farmac&eacute;uticas, Universidad de Cartagena. Grupo de Investigaci&oacute;n en Tecnolog&iacute;a Farmac&eacute;utica, Cosm&eacute;tica y de Alimentos &#150;GITFCA-</font>    <br> 	   	  <font face="verdana" size="2"><a name="nt5"></a><a href="#n5">5</a>Lic. Ciencias, MSc, PhD, Facultad de Ciencias B&aacute;sicas, Universidad de Pamplona. Grupo de Investigaci&oacute;n en Productos&nbsp;&nbsp; &nbsp; Verdes (GPV)</font>    <br> 	   	  <font face="verdana" size="2"><a name="nt6"></a><a href="#n6">6</a>Mic. Ind, Esp, <i>Fundaci&oacute;n Universitaria Tecnol&oacute;gico de Comfenalco.</i></font>    <br> 	   <font face="verdana" size="2"><a name="nt7"></a><a href="#n7">7</a>QF, MSc, PhD (C) Facultad de Ciencias de la Salud, Universidad de Sucre. Grupo de Ciencias M&eacute;dicas y Farmac&eacute;uticas Email: <a href="mailto:mtorrenegraa@hotmail.com">mtorrenegraa@hotmail.com</a></font></p> 	    <p><font face="verdana" size="2">Recibido: enero 25 de 2014 Aceptado: mayo 23 de 2016</font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="3"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se evalu&oacute; la composici&oacute;n qu&iacute;mica y la actividad antibacteriana del aceite esencial <i>Minthostachys mollis</i> cultivado en el departamento de Norte de Santander, Colombia.El aceite esencial fue obtenido por hidrodestilaci&oacute;n convencional, a partir de las hojas; se determin&oacute; densidad relativa a 20&deg;C, &iacute;ndice de refracci&oacute;n; solubilidad de los aceites esenciales en etanol (70% v/v) y rotaci&oacute;n &oacute;ptica. La composici&oacute;n qu&iacute;mica se evalu&oacute; mediante cromatograf&iacute;a de gases/espectr&oacute;metro de masa. La actividad se realiz&oacute; sobre tres bacterias: <i>Staphylococcus aureus</i> ATCC 25923, <i>Staphylococcus epidermidis</i> ATCC 12228 y <i>Escherichia coli</i> ATCC 25922. Para determinar la sensibilidad antibacteriana y la concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria, los aceites se diluyeron hasta la concentraci&oacute;n deseada (1000&#150;50 &micro;g/mL) empleando el m&eacute;todo de microdiluci&oacute;n en caldo, y se emple&oacute; el lector de microplacas para la cuantificaci&oacute;n del crecimiento bacteriano. El rendimiento fue de 0,6%. Los resultados de la prueba de sensibilidad mostraron que las bacterias fueron sensibles al aceite esencial de <i>Minthostachys mollis</i>; adem&aacute;s, este aceite present&oacute; un elevado contenido de monoterpenos oxigenados con reconocida actividad antibacteriana, como son el carvacrol y el timol. En funci&oacute;n de los resultados obtenidos, concluimos que la especie vegetal evaluada es promisoria para el control del componente bacteriano.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave</b>: Mu&ntilde;a, aceite esencial, actividad antibacteriana.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="3"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The chemical composition and antibacterial activity of essential oil from Minthostachys mollis were evaluated; the plants were grown in the Norte de Santander department, Colombia. The essential oil was obtained by conventional hydrodistillation from Minthostachys mollis leaves; relative density was determined at 20&deg;C, as were the refraction index, essential oil solubility in ethanol (70% v/v) and optical rotation. Chemical composition was evaluated by gas chromatography/mass spectrometry (GC-MS). Three bacteria were used for evaluating antibacterial activity: Staphylococcus aureus ATCC 25923, Staphylococcus epidermidis ATCC 12228 and Escherichia coli ATCC 25922. The oil was diluted to the desired concentration (1,000-50 &micro;g/mL) for determining antibacterial sensitivity and minimum inhibitory concentration, using the broth microdilution method, and a microplate reader was used for quantifying bacterial growth. Yield was 0.6%. Sensitivity test results revealed that bacteria were sensitive to essential oil from Minthostachys mollis; furthermore, this oil had a high content of oxygenated monoterpenes (i.e. carvacrol and thymol) having recognised antibacterial activity. It can thus be concluded that the vegetal species evaluated here is promising for controlling bacteria.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words</b>: Mu&ntilde;a, essential oil, antibacterial activity.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="3"><b>Resumo</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Avaliou-se a composi&ccedil;&atilde;o qu&iacute;mica e atividade antibacteriana do &oacute;leo essencial Minthostachys mollis cultivada no departamento de Norte de Santander, Col&ocirc;mbia. O &oacute;leo essencial foi obtido por destila&ccedil;&atilde;o convencional das folhas; determinada densidade relativa a 20&deg;C, &iacute;ndice de refra&ccedil;&atilde;o; solubilidade de &oacute;leos essenciais em &aacute;lcool et&iacute;lico (70% v/v) e rota&ccedil;&atilde;o &oacute;ptica. A composi&ccedil;&atilde;o qu&iacute;mica foi avaliada utilizando o espectr&ocirc;metro de massa/cromat&oacute;grafo. O evento foi realizado para tr&ecirc;s bact&eacute;rias: Staphylococcus aureus ATCC 25923, Staphylococcus epidermidis ATCC 12228 e Escherichia coli ATCC 25922. Para determinar a sensibilidade antibacteriana e a concentra&ccedil;&atilde;o inibit&oacute;ria m&iacute;nima, &oacute;leos s&atilde;o dilu&iacute;dos para a concentra&ccedil;&atilde;o desejada (1000-50 &micro;g/mL), utilizando o m&eacute;todo de microdilui&ccedil;&atilde;o em caldo, e usado o leitor de microplacas para a quantifica&ccedil;&atilde;o do crescimento bacteriano. O rendimento foi de 0,6%. Os resultados do teste de sensibilidade mostraram que as bact&eacute;rias foram sens&iacute;veis para o &oacute;leo essencial de Minthostachys mollis; Al&eacute;m disso, este &oacute;leo apresenta um alto teor de monoterpenos, oxigenados com atividade antibacteriana conhecida, tais como o carvacrol e timol. Dependendo dos resultados, podemos concluir que as esp&eacute;cies de plantas avaliadas &eacute; promissora para o controle do componente bacteriano.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palavras-chave</b>: Mu&ntilde;a, &oacute;leo essencial, atividade antibacteriana.</font></p> 	<hr>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="3">	<b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Colombia es un pa&iacute;s que posee una gran diversidad de ecosistemas y microclimas, lo cual hace que su vegetaci&oacute;n sea muy variada, enriquecida con especies end&eacute;micas y diversidad gen&eacute;tica muy alta, entre las cuales se tienen algunas que poseen aceites esenciales (AE) con principios activos con potencial actividad biol&oacute;gica e industrial, que convierten a nuestro pa&iacute;s en una regi&oacute;n muy interesante para la investigaci&oacute;n y desarrollo de nuevos productos naturales (Granados <i>et al.,</i> 2012; Torrenegra <i>et al.,</i> 2015a).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">    Los aceites esenciales (AE) de plantas arom&aacute;ticas y medicinales contienen principios activos que exhiben bioactividades como la antioxidante, antif&uacute;ngica, antimicrobiana, entre otras (Matiz <i>et al.,</i> 2012a). En particular, el AE de la especie vegetal <i>Minthostachys</i> <i>mollis</i> Griseb perteneciente al g&eacute;nero <i>Minthostachys</i> conocida com&uacute;nmente como mu&ntilde;a, es una especie de planta arbustiva le&ntilde;osa, oriunda de Argentina, Bolivia, Colombia, Ecuador, Per&uacute; y Venezuela<i>,</i> utilizada en medicina popular para tratar los c&oacute;licos estomacales y ciertos trastornos gripales (Carhuapoma <i>et al.,</i> 2009;Torrenegra <i>et al.,</i> 2015a).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">    Adicionalmente, hoy por hoy, la tendencia de los pacientes se inclina hacia el consumo de "fitoterap&eacute;uticos", libres de productos de s&iacute;ntesis y aditivos qu&iacute;micos por lo que resulta interesante estudiar la actividad antibacteriana de los aceites esenciales (AE) de plantas nativas.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">    En este trabajo, se obtuvo el AE, mediante hidrodestilaci&oacute;n de la especie vegetal <i>Minthostachys</i> <i>mollis</i>, cultivada en el departamento de Norte de Santander (Colombia); y se determin&oacute; la composici&oacute;n qu&iacute;mica, la sensibilidad antibacteriana y la concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria (CMI) <i>in vitro</i> del AE sobre tres bacterias: <i>Staphylococcus epidermidis</i>, <i>Escherichia coli</i> y <i>Staphylococcus</i> <i>aureus</i>.</font></p>  	    <p align="justify"><b><font face="verdana" size="3">Materiales y m&eacute;todos</font></b></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las muestras de mu&ntilde;a fueron recolectadas en el municipio de Pamplona en Norte de Santander - Colombia (7&deg;22&rsquo;34"N 72&deg;38&rsquo;54"O). Cabe resaltar que la etapa de muestreo de la especie vegetal, se llev&oacute; a cabo durante la puesta del sol, para evitar que las altas temperaturas pudieran volatizar algunos componentes presentes en las muestras. El material vegetal se empac&oacute; en un contenedor de poliestireno expandido y se preserv&oacute; a 25&deg;C (Granados <i>et al.,</i> 2012). El material vegetal fue identificado en el Herbario Regional Catatumbo-Sarare (HECASE) de la Universidad de Pamplona, registro nacional de colecciones biol&oacute;gicas. El n&uacute;mero de colecci&oacute;n de dicha planta fue conservado con N&ordm; de colecci&oacute;n Granados C. N&deg;01.</font></p>  	    <p align="justify"><b><font face="verdana" size="2">Procesamiento del material vegetal</font></b></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las hojas colectadas fueron lavadas con agua y seleccionadas para garantizar buen estado; seguidamente se trocearon, pesaron y procesaron inmediatamente. La extracci&oacute;n del AE de las hojas se realiz&oacute; por hidrodestilaci&oacute;n convencional (HD). Se emple&oacute; un equipo de hidrodestilaci&oacute;n con capacidad para 4 L, 500 g del material vegetal, seleccionado y troceado, se introdujeron en el bal&oacute;n de extracci&oacute;n, el cual conten&iacute;a 500 mL de agua destilada; el tiempo de extracci&oacute;n fue de 3&#150;4 horas. El AE se colect&oacute; en un recipiente tipo Dean Stark. El AE se separ&oacute; por decantaci&oacute;n e inmediatamente fue almacenado en un vial &aacute;mbar de 4 mL (Torrenegra <i>et al.,</i> 2015b).</font></p>  	    <p align="justify"><b><font face="verdana" size="2">Determinaci&oacute;n de propiedades f&iacute;sicas del AE</font></b></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A cada muestra de AE se le midieron las siguientes propiedades f&iacute;sicas: a) densidad relativa a 20 &deg;C; b) &iacute;ndice de refracci&oacute;n; c) solubilidad del AE en etanol (70 % v/v): en un tubo de pl&aacute;stico con tapa de 1,5 mL se adicionaron 100 &micro;L de etanol al 70 % (v/v) y 2 &micro;L del AE. La mezcla se homogeniz&oacute; en un v&oacute;rtex a 200 rpm hasta obtener una soluci&oacute;n homog&eacute;nea (Torrenegra <i>et al.,</i> 2015b).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b><font face="verdana" size="2">An&aacute;lisis del AE por cromatograf&iacute;a de gases/ espectr&oacute;metro de masa (CG/EM)</font></b></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se emple&oacute; un equipo CG/EM 7890A/5975C Agilent (Estados Unidos) en interfase con un detector selectivo de masas HP5973 Network conectado en l&iacute;nea con un sistema HP-MS ChemStation y la base de datos NIST-2008. Las condiciones de operaci&oacute;n fueron: columna capilar HP-5MS (5% phenyl methyl silox, 30 m x 250 &micro;m x 0,25 &micro;m), temperatura inicial 45&deg;C, temperatura de la l&iacute;nea de transferencia de 280&deg;C y volumen de inyecci&oacute;n 1,0 &micro;L en modo split (20:1), con temperatura del inyector de 250&deg;C. La detecci&oacute;n de los compuestos se realiz&oacute; por comparaci&oacute;n del espectro de masas, en cada tiempo de retenci&oacute;n, con los reportados en la base de datos NIST-2008 (Tomy <i>et al</i>., 1997; Baharum <i>et al</i>., 2010; Le&oacute;n <i>et al</i>., 2015; (Torrenegra <i>et al.,</i> 2015b).</font></p>  	    <p align="justify"><b><font face="verdana" size="2">Actividad antibacteriana in vitro</font></b></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los in&oacute;culos bacterianos se prepararon de acuerdo a las indicaciones establecidas por el Instituto de est&aacute;ndares cl&iacute;nicos y de laboratorio (CLSI, 2011), tomando entre 3&#150;4 colonias bien diferenciadas y morfol&oacute;gicamente similares de las bacterias previamente sembradas en placas Petri con el agar espec&iacute;fico, y luego suspendi&eacute;ndolas en tubos de ensayo en caldo hom&oacute;logo est&eacute;ril, para <i>S. aureus, S epidermidis y E. coli</i> se utiliz&oacute; Tripticasa Soya (TSA). La incubaci&oacute;n se realiz&oacute; a 35&plusmn;2 &deg;C y se verific&oacute; sistem&aacute;ticamente la densidad &oacute;ptica (DO) a 620 nm en lector de microplacas (<i>Multiscan EX Thermo&reg;,</i> Estados Unidos) hasta que la suspensi&oacute;n bacteriana alcanzara una DO620 entre 0,08&#150;0,1 unidades, equivalente a 0,5 en la escala de <i>McFarland</i> (1x108 UFC/mL); la suspensi&oacute;n fue diluida a fin de obtener una suspensi&oacute;n de trabajo de 5x105 UFC/mL en los ensayos biol&oacute;gicos. Las cepas se inocularon en el momento de mayor densidad &oacute;ptica. Para ello, 0,1 mL de in&oacute;culo diluido fue adicionado a 9,9 mL del caldo espec&iacute;fico, e incubado a 35&plusmn;2 &deg;C y verificando, a intervalos regulares la DO620 de la suspensi&oacute;n bacteriana en lector de microplacas. El tiempo en el que se logr&oacute; el mayor valor, se emple&oacute; como tiempo de incubaci&oacute;n en todos los ensayos. Debido a la insolubilidad en agua de los AE, se utilizaron mezclas de caldo: etanol: <i>Tween&#150;</i>80. Para este estudio, diferentes mezclas de etanol: caldo:<i>tween&#150;</i>80 se incubaron con las cepas bacterianas en placas de 96 pocillos a 35&plusmn;2 &deg;C por el tiempo definido para cada bacteria seg&uacute;n las curvas de crecimiento; posteriormente, se determinaron los porcentajes de viabilidad frente al blanco de m&aacute;ximo crecimiento (caldo con in&oacute;culo), con el objeto de seleccionar la mezcla m&aacute;s adecuada. Para la evaluaci&oacute;n de la sensibilidad antibacteriana se prepararon soluciones de AE a concentraci&oacute;n de 1000 &micro;g/mL, acorde con el criterio de <i>Gibbons</i> que considera como promisorios los productos que presenten valores de CMI inferior a 1 000 &micro;g/mL. Estas soluciones se incubaron con las suspensiones bacterianas a 35&plusmn;2 &deg;C, utilizando gentamicina sulfato (0,016 mg/mL) como control positivo de actividad antibacteriana. Al final del periodo de incubaci&oacute;n, las placas se agitaron durante 5 min a 100 rpm, se determin&oacute; la DO620 en lector de microplacas y se estim&oacute; la viabilidad por comparaci&oacute;n frente al blanco de m&aacute;ximo crecimiento (Gibbons 2005; Ram&iacute;rez <i>et al</i>., 2009; Matiz <i>et al</i>., 2015b; (Torrenegra <i>et al.,</i> 2015b).</font></p>  	    <p align="justify"><b><font face="verdana" size="2">Concentraci&oacute;n M&iacute;nima Inhibitoria (CMI)</font></b></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cincuenta &micro;L de las suspensiones de las cepas fueron incubadas en placas de 96 pozos, con 50 &micro;L de concentraciones seriadas entre 1 000 y 50 partes por mill&oacute;n (ppm) de los aceites esenciales evaluados. Las placas fueron selladas durante la incubaci&oacute;n para reducir la evaporaci&oacute;n. Al finalizar, se agitaron (100 rpm, 5 min) y se determin&oacute; la DO620 en lector de microplacas. La CMI (ppm) se calcul&oacute; como la m&iacute;nima concentraci&oacute;n del aceite esencial que inhibi&oacute; completamente el crecimiento, comparando contra pozos de caldo puro. Pozos con caldo inoculado (m&aacute;ximo crecimiento) y con gentamicina (30 ppm) se emplearon como control (Matiz <i>et al</i>., 2015b; (Torrenegra <i>et al.,</i> 2015b).</font></p>  	    <p align="justify"><b><font face="verdana" size="2">An&aacute;lisis estad&iacute;stico</font></b></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Todos los ensayos se realizaron por triplicado. Los resultados se expresaron como la media &plusmn; DE (desviaci&oacute;n est&aacute;ndar). Las diferencias significativas se determinaron mediante an&aacute;lisis de <i>t de student</i>.</font></p>  	    <p align="justify"><b><font face="verdana" size="3">Resultados y discusi&oacute;n</font></b></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La eficiencia de la extracci&oacute;n, las propiedades f&iacute;sicas del AE se presenta en la <a href="#(tab1)">tabla 1.</a> El AE de la especie vegetal obtenido por el m&eacute;todo de extracci&oacute;n presento un olor intenso y caracter&iacute;stico, l&iacute;quidos a temperatura ambiente, arrastrable por vapor de agua e insolubles en ella, coloraci&oacute;n amarillo p&aacute;lido.</font></p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="(tab1)"><img src="img/revistas/rori/v20n1/v20n1a08tab1.gif"></a></font>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">    Cano <i>et al</i>., 2008, obtuvieron un rendimiento del 0,19% por el m&eacute;todo de arrastre con vapor de agua, muy inferior al reportado en el presente estudio (0,6%) esto se debe principalmente a los siguientes factores: m&eacute;todos de cultivo, condiciones geobot&aacute;nicas: clima, altitud, tipo de suelo, luminosidad, pluviosidad, temperatura; &eacute;poca de recolecci&oacute;n y edad de las plantas.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">    Torrenegra <i>et al</i>., 2015a, indicaron que a mayor &iacute;ndice de refracci&oacute;n el AE contendr&aacute; mayores terpenos benc&eacute;nicos. Seg&uacute;n este criterio el aceite esencial posee ligeramente m&aacute;s compuestos terp&eacute;nicos.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">    La literatura cient&iacute;fica menciona que valores mayores a 1,00 indican la presencia de terpenos arom&aacute;ticos, nitrogenados y azufrados; en cambio, valores menores, incluso cercanos a 0,840, atestiguan la presencia de hidrocarburos arom&aacute;ticos. Estos datos muestran que el aceite esencial posee mayores terpenos oxigenados (Torrenegra <i>et al</i>., 2015a).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">    La prueba de solubilidad en etanol al 70% fue positiva para los diferentes AE obtenidos ambos m&eacute;todos. El comportamiento de solubilidad es semejante al reportado por Torrenegra <i>et al</i>., 2015a; lo anterior, se debe principalmente al contenido de compuestos oxigenados en los AE. La presencia de compuestos oxigenados aumenta la afinidad por el solvente y, adicionalmente, los aldeh&iacute;dos y alcoholes poseen la capacidad de formar puentes de hidr&oacute;geno; por tal raz&oacute;n, el contenido de compuestos oxigenados, adem&aacute;s de proveer las notas arom&aacute;ticas agradables a los AE, aumentan su solubilidad en etanol haci&eacute;ndolos m&aacute;s aptos para su aplicaci&oacute;n en la industria.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">    La identificaci&oacute;n de los componentes, los tiempos de retenci&oacute;n y porcentajes de abundancia del AE de <i>M. mollis</i> (mu&ntilde;a) por CG/EM son reportados en la <a href="#(tab2)">tabla 2</a>. El compuesto mayoritario encontrado es el carvacrol con un porcentaje de abundancia relativa de 21,24 %     Tiempo de retenci&oacute;n (tr) y abundancia relativa (%) de los aceites esenciales, identificados por comparaci&oacute;n con espectro de masas de referencia de la base de datos NIST - 2008.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="(tab2)"><img src="img/revistas/rori/v20n1/v20n1a08tab2.gif"></a></font> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">    Cano <i>et al</i>., 2008, encontraron como componente mayoritario del aceite esencial de Mu&ntilde;aal pulegona (36,68%). Resaltado que este compuesto est&aacute; presente en el perfil cromatogr&aacute;fico mostrados en la <a href="#(tab2)">tabla 2</a>.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">    Sin embargo, es visible una peque&ntilde;a variaci&oacute;n con respecto a los componentes minoritarios encontrados por Cano <i>et al</i>., 2008, ocasionado por el efecto de diferentes factores ambientales sobre el contenido de compuestos en plantas medicinales. La intensidad de la luz y el fotoper&iacute;odo, que var&iacute;an de regi&oacute;n en regi&oacute;n; &eacute;poca de recolecci&oacute;n y edad de las plantas afectan la composici&oacute;n del aceite esencial.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">    Los ensayos de crecimiento revelaron que las cepas de <i>S. aureus, S. epidermidis</i> y <i>E. coli</i> alcanzaron la mayor DO620 a las 20 horas<i>,</i> estos fueron los tiempos de punto final de incubaci&oacute;n en los bioensayos de actividad antibacteriana. Para solubilizar los aceites, se demostr&oacute; que las mezclas que conten&iacute;an etanol al 4 % y polisorbato-80 al 1 % no inhibieron el crecimiento de ninguna de las cepas, por tanto, se eligi&oacute; utilizar un sistema caldo: etanol: polisorbato-80 en proporci&oacute;n 95:4:1, para solubilizar el aceites esenciales evaluado en este trabajo.</font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">    Los resultados de la evaluaci&oacute;n de la sensibilidad antibacteriana del AE (<a href="#(tab3)">tabla 3</a>), permiti&oacute; escoger el aceite en estudio, tomando como criterio de selecci&oacute;n, que fuera capaz de inhibir en m&aacute;s de un 90% a las tres cepas. La cepa menos sensible a los aceites fue la <i>S. epidermidis</i>.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="(tab3)"><img src="img/revistas/rori/v20n1/v20n1a08tab3.gif"></a></font> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">    La CMI se determina con la utilizaci&oacute;n de caldo inoculado y estandarizado, al que se adicionan soluciones de aceites a diferentes concentraciones, provocando una diluci&oacute;n; esto explica el por qu&eacute; la absorbancia (DO620) del caldo puro es mayor que la de los dem&aacute;s pozos al tiempo inicial de incubaci&oacute;n. Al final de la misma, se leen las absorbancias de todos los pozos. Se considera inhibici&oacute;n total, en aquellos con valores inferiores al del caldo puro. La mayor concentraci&oacute;n de aceite capaz de lograr esto, se denomina CMI. Los valores se presentan en la <a href="#(tab4)">tabla 4</a>.</font></p> 	    <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="(tab4)"><img src="img/revistas/rori/v20n1/v20n1a08tab4.gif"></a></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">    Se reconoce que los AE dependen de sus propiedades lipof&iacute;licas o hidrof&iacute;licas. Los terpenoides pueden servir como un ejemplo de agentes liposolubles, los cuales afectan la actividad de las enzimas catalizadoras a nivel de membrana, por ej. Ciertos componentes del AE pueden actuar como desacopladores, los cuales interfieren en la translocaci&oacute;n de protones sobre la membrana y subsecuentemente interrumpir por la fosforilaci&oacute;n del ADP (Cano <i>et al</i>., 2008).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">    En particular, este AE present&oacute; la mayor concentraci&oacute;n relativa del compuesto carvacrol, el cual puede penetrar la membrana del citoplasma, causando una desestabilizaci&oacute;n de esta; igualmente podr&iacute;a actuar como intercambiador de protones, reduciendo el gradiente de pH a lo largo de la membrana (Xu <i>et al.,</i> 2008).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">    De esta manera se sigue sumando evidencia sosteniendo que los AE, son una buena fuente natural y disponible que posibilitar&aacute; desarrollar diferentes formas farmac&eacute;uticas con actividad farmacol&oacute;gica definida. Por otro lado, estos resultados pueden servir para comenzar a entender las razones del extenso uso de los aceites esenciales, ya sean en la medicina tradicional o en la aromaterapia, al mismo tiempo podemos acercarnos cada vez m&aacute;s a la utilizaci&oacute;n de las plantas     arom&aacute;ticas, que contienen AE, como terapia complementaria de las convencionales.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="3"><b>Conclusiones</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las cepas bacterianas de <i>S. aureus</i>, <i>S. epidermidis</i> y <i>E. coli,</i> resultaron susceptibles a la acci&oacute;n antibacteriana del AE de <i>M. mollis</i> extra&iacute;do por el m&eacute;todo de hidrodestilaci&oacute;n; lo cual, convierte a este AE, cuyo principal constituyente es el agente antimicrobiano carvacrol, como promisorio para el control del componente bacteriano.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="3"><b>Agradecimientos</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los autores agradecen a las Universidades de Pamplona, Cartagena y Sucre e igualmente al SENA -Centro de Comercio y Servicios, Regional Bol&iacute;var-, por facilitar espacio, recursos y tiempo de los investigadores.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="3"><b>Bibliograf&iacute;a</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="left"><font face="verdana" size="2">Baharum SN, Bunawan H, Ghani MaA, Mustapha WAW, Noor NM. Analysis of the chemical composition of the essential oil of <i>Polygonum minus</i> Huds. using two dimensional gas chromatography-time-of-flight mass spectrometry (GC-TOF MS). Molecules. 2010;15(10):7006-7015.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4089057&pid=S0121-3709201600010000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="left"><font face="verdana" size="2">    Cano C, Bonilla P, Roque M, Ruiz J. Actividad antimic&oacute;tica <i>in vitro</i> y metabolitos del aceite esencial de las hojas de <i>Minthostachys mollis</i> (MU&Ntilde;A): Rev Peru Med Exp Salud P&uacute;blica. 2008;25(3):298-301.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4089059&pid=S0121-3709201600010000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="left"><font face="verdana" size="2">    Carhuapoma M, L&oacute;pez S, Roque M, Velapati&ntilde;o B, Bell C, Whu D. Actividad antibacteriana del aceite esencial de <i>Minthostachys mollis</i> Griseb "Ruyaq Mu&ntilde;a". Ciencia e Investigaci&oacute;n. 2009;12(2):83-89.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4089061&pid=S0121-3709201600010000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="left"><font face="verdana" size="2">    CLSI. Performance standards for Antimicrobial susceptibility testing, 21st international supplements. CLSI Document M100-S21.</font><font face="verdana" size="2">    Wayne, Pennysylavania, USA: Clinical and Laboratory Standards Institute; 2011.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4089063&pid=S0121-3709201600010000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="left"><font face="verdana" size="2">    Gibbons S. Plants as a source of bacterial resistance modulators and antiinfective agents. Phytochem Rev. 2005;4(1):63-78.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4089065&pid=S0121-3709201600010000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="left"><font face="verdana" size="2">    Granados C, Y&aacute;&ntilde;ez Y, Santaf&eacute; G. Evaluaci&oacute;n de la actividad antioxidante del aceite esencial foliar de <i>Calycolpus moritzianus</i> y <i>Minthostachys mollis</i> de Norte de Santander. Bistua: Revista de la Facultad de Ciencias B&aacute;sicas. 2012;10(1):12-23.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4089067&pid=S0121-3709201600010000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="left"><font face="verdana" size="2">    Le&oacute;n G, Osorio MR, Mart&iacute;nez SR. Comparaci&oacute;n de dos m&eacute;todos de extracci&oacute;n del aceite esencial de <i>Citrus Sinensis</i> L. Rev Cuba Farm. 2015;49(4):742-750.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4089069&pid=S0121-3709201600010000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="left"><font face="verdana" size="2">    Matiz G, Osorio MR, Camacho F, Atencia M, Herazo J. Dise&ntilde;o y evaluaci&oacute;n <i>in vivo</i> de f&oacute;rmulas para acn&eacute; basadas en aceites esenciales de naranja (<i>Citrus sinensis</i>), albahaca (<i>Ocimum basilicum</i> L) y &aacute;cido ac&eacute;tico. Biom&eacute;dica 2012;32:125-133.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4089071&pid=S0121-3709201600010000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->&nbsp;</font></p> 	    <!-- ref --><p align="left"><font face="verdana" size="2">    Matiz G, Osorio M, Le&oacute;n G. Actividad antibacteriana <i>in vitro</i> de diecinueve aceites esenciales frente a bacterias asociadas al acn&eacute;, Rev Cubana Farm. 2015;49(1):103-116.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4089073&pid=S0121-3709201600010000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="left"><font face="verdana" size="2">    Ram&iacute;rez A, Stella L, Mar&iacute;n D. Metodolog&iacute;as para evaluar <i>in vitro</i> la actividad antibacteriana de compuestos de origen vegetal. Scientia et Technica. 2009;15(42):263-268.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4089075&pid=S0121-3709201600010000800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="left"><font face="verdana" size="2">    Tomy GT, Stern GA, Muir DC, Fisk AT, Cymbalisty CD, Westmore JB. Quantifying C10-C13 polychloroalkanes in environmental samples by highresolution gas chromatography/electron capture negative ion high-resolution mass spectrometry. Anal Chem. 1997;69(14):2762-71.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4089077&pid=S0121-3709201600010000800011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="left"><font face="verdana" size="2">    Torrenegra M, Granados C, Osorio M, Le&oacute;n G. Method comparison of hydrodistillation microwave radiation-assisted (MWHD) front hydrodistillation (HD) in the extraction of essential oil of Minthostachys mollis. Inf Tecnol. 2015;26(1):117-122.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4089079&pid=S0121-3709201600010000800012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="left"><font face="verdana" size="2">    Torrenegra M, Matiz G, Le&oacute;n G. Actividad antibacteriana <i>in vitro</i> de aceites esenciales frente a microorganismos implicados en el acn&eacute;. Rev Cubana Farm. 2015;49(3): 512-523.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4089081&pid=S0121-3709201600010000800013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="left"><font face="verdana" size="2">    Xu J, Zhou F, Ji B, Pei R, Xu N. The antibacterial mechanism of carvacrol and thymol against <i>Escherichia coli</i>. Lett Appl Microbiol. 2008;47(3):174-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4089083&pid=S0121-3709201600010000800014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
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