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<publisher-name><![CDATA[Universidad de Córdoba - Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia.]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[VIGILANCIA CENTINELA PARA EL VIRUS DEL OESTE DEL NILO EN CULICIDOS Y AVES DOMÉSTICAS EN EL DEPARTAMENTO DE CÓRDOBA]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[West Nile Virus (WNV) genus flavivirus, family Flaviviridae, is maintained in nature in an enzootic cycle mosquito-bird-mosquito. Birds are the main amplifying hosts. Humans and horses are incidental dead-end hosts. In humans it yields a self-limited febrile disease; it can produce encephalitis and meningoencephalitis as well. WNV is wide spread in North America and its circulation has been documented in México, Jamaica, Dominican Republic, Guadalupe, Cuba, Puerto Rico, El Salvador and recently Colombia. It was performed a sentinel surveillance in Culicides and domestic birds to follow-up WNV circulation in the department of Córdoba taking into account its circulation evidence in horses of this region and identifying mosquito species infected with the virus. 4.942 mosquitoes were assessed in 99 pools were assessed by Vec TesttTM (Medical System, Inc. Camarillo, CA) and 162 serums of domestic birds were analyzed by MAC-ELISA in the Centers for Disease Control and Prevention, Division of Vector-Borne Infectious Diseases, Fort Collins, USA. Due to the crossed reactions among WNV and others virus of the Japonese Encephalitis, a plaque reduction neutralization test (PRNT) was used. There was not nor positive mosquitoes neither positives birds.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">      <p align="right"><b>ORIGINAL</b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="3"><b>VIGILANCIA CENTINELA PARA EL VIRUS DEL OESTE    DEL NILO EN CULICIDOS Y AVES DOM&Eacute;STICAS EN EL     <br>   DEPARTAMENTO DE C&Oacute;RDOBA</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><b>SENTINEL SUVEILLANCE FOR WEST NILE VIRUS IN CULICIDES AND    DOMESTIC BIRDS IN C&Oacute;RDOBA</b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>Manolo Jaramillo<sup>1</sup>, Jos&eacute; Pe&ntilde;a<sup>1</sup>, Luis    Berrocal<sup>1</sup>, Nicholas Komar<sup>2</sup>, Marco Gonz&aacute;lez<sup>1</sup>,    C&eacute;sar Ponce<sup>3</sup>, Katiuska Ariza<sup>3</sup>, Salim M&aacute;ttar<sup>1</sup>*</b></p>     <p> <sup>1</sup>Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Instituto de Investigaciones    Biol&oacute;gicas del Tr&oacute;pico. Universidad de C&oacute;rdoba, Monter&iacute;a,    Colombia.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   <sup>2</sup>Centers for Disease Control and Prevention Division of Vector-Borne    Infectious Diseases Fort Collins, Colorado, USA. *Correspondencia: <a href="mailto:smattar@escarsa.net.co">smattar@escarsa.net.co</a>    <br>   <sup>3</sup>Facultad de Medicina. Universidad Cooperativa de Colombia. Seccional    Santa Marta, Colombia. </p>     <p>&nbsp;</p> <hr size="1">     <p><b>RESUMEN</b></p>     <p>El virus del Oeste del Nilo (VON) g&eacute;nero Flavivirus, familia <i>Flaviviridae</i>,    es mantenido en la naturaleza en un ciclo enzo&oacute;tico ave-mosquito-ave.    Las aves son los hospederos amplificadores primarios. Humanos y caballos son    hospederos incidentales finales. En humanos las infecciones se manifiestan como    enfermedad febril autolimitada. Tambi&eacute;n puede presentarse encefalitis    o meningoencefalitis. El virus se ha establecido en Norte Am&eacute;rica y se    ha documentado su circulaci&oacute;n en M&eacute;xico, Jamaica, Rep&uacute;blica    Dominicana, Guadalupe, Cuba, Puerto Rico, El Salvador y recientemente en Colombia.    Se realiz&oacute; una vigilancia centinela en cul&iacute;cidos y aves dom&eacute;sticas    para hacer un seguimiento a la circulaci&oacute;n en el departamento de C&oacute;rdoba    e identificar que especies de mosquitos estaban infectadas con el virus. Se    analizaron 4942 mosquitos en 99 pooles por la t&eacute;cnica Vec TestTM (Medical    System, Inc. Camarillo, CA) y 162 sueros de aves de corral fueron enviadas al    Centers for Disease Control and Prevention Division of Vector-Borne Infectious    Diseases Fort Collins, USA, para ser analizadas por MAC-ELISA y debido a las    reacciones cruzadas que se dan entre el VON y otros virus del serocomplejo de    la encefalitis japonesa se utiliz&oacute; el test de reducci&oacute;n de la    neutralizaci&oacute;n en placa (PRNT). No se obtuvieron mosquitos o aves positivos.</p>     <p><b>Palabras clave</b>: Virus del oeste del Nilo, Colombia, cul&iacute;cidos,    aves.</p> <hr size="1">     <p><b>ABSTRAC</b></p>     <p>West Nile Virus (WNV) genus flavivirus, family <i>Flaviviridae</i>, is maintained    in nature in an enzootic cycle mosquito-bird-mosquito. Birds are the main amplifying    hosts. Humans and horses are incidental dead-end hosts. In humans it yields    a self-limited febrile disease; it can produce encephalitis and meningoencephalitis    as well. WNV is wide spread in North America and its circulation has been documented    in M&eacute;xico, Jamaica, Dominican Republic, Guadalupe, Cuba, Puerto Rico,    El Salvador and recently Colombia. It was performed a sentinel surveillance    in Culicides and domestic birds to follow-up WNV circulation in the department    of C&oacute;rdoba taking into account its circulation evidence in horses of    this region and identifying mosquito species infected with the virus. 4.942    mosquitoes were assessed in 99 pools were assessed by Vec TesttTM (Medical System,    Inc. Camarillo, CA) and 162 serums of domestic birds were analyzed by MAC-ELISA    in the Centers for Disease Control and Prevention, Division of Vector-Borne    Infectious Diseases, Fort Collins, USA. Due to the crossed reactions among WNV    and others virus of the Japonese Encephalitis, a plaque reduction neutralization    test (PRNT) was used. There was not nor positive mosquitoes neither positives    birds.</p>     <p><b>Key words</b>: West Nile virus, Colombia, culicides, birds</p> <hr size="1">     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <font size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p>El virus del Oeste del Nilo (VON) pertenece a la familia <i>Flaviviridae</i> g&eacute;nero    Flavivirus, hace parte del serocomplejo de la encefalitis japonesa junto con    los virus Cacipacora, Koutango, encefalitis japonesa, encefalitis de San Luis,    encefalitis Murray Valley, Usuto y Yaounde (Zeller 2004). Es mantenido en la    naturaleza en un ciclo enzo&oacute;tico ave-mosquito-ave. Fue aislado por primera    vez en la provincia West Nile de Uganda en 1937 y est&aacute; ampliamente disperso    en humanos, aves y mosquitos en &Aacute;frica, el medio oriente y el sur de    Europa (Zeller 2004). Desde los a&ntilde;os 90, la frecuencia y severidad de    las infecciones en humanos aument&oacute;, como tambi&eacute;n el n&uacute;mero    de reportes en una variedad de vertebrados incluyendo mascotas, animales de    granja y animales salvajes. Adem&aacute;s, fue reconocido en &aacute;reas no    afectadas previamente (Hayes 2005). El virus tiene dos ciclos de transmisi&oacute;n;    uno enzo&oacute;tico primario o de amplificaci&oacute;n que envuelve un grupo    de vectores y hu&eacute;spedes aviares, y uno secundario que envuelve artr&oacute;podos    diferentes y transmisi&oacute;n a otros hospederos como humanos y caballos.    Los principales vectores son los mosquitos del g&eacute;nero <i>Culex</i> (Hubalek    y col. 1999).</p>     <p>Las aves son los hospederos amplificadores primarios. Humanos y caballos son    hospederos incidentales finales. La alta viremia en aves y su duraci&oacute;n    permite la transmisi&oacute;n a mosquitos, y teniendo en cuenta las migraciones    que estas realizan en primavera, se ha sugerido que ellas pueden ser veh&iacute;culo    de introducci&oacute;n en &aacute;reas no afectadas (Komar 2003). En humanos    la infecci&oacute;n por VON se presenta como enfermedad febril autolimitada.    En casos de enfermedad neurol&oacute;gica se puede presentar encefalitis, meningitis    o meningoencefalitis, con mayor incidencia y mortalidad de encefalitis en personas    de mayor edad y pacientes inmunocomprometidos. En humanos se han identificado    nuevos modos de transmisi&oacute;n incluyendo; infecci&oacute;n a trav&eacute;s    de productos sangu&iacute;neos contaminados, transplante de &oacute;rganos,    leche materna, transmisi&oacute;n intrauterina y exposici&oacute;n ocupacional    (Campbell y col. 2002). El virus se ha establecido en Norte Am&eacute;rica donde    ha encontrado vectores competentes, hospederos amplificadores susceptibles y    mecanismos eficientes para sobrevivir durante las temporadas fr&iacute;as. Su    circulaci&oacute;n se ha documentado en M&eacute;xico (Elizondo-Quiroga 2005),    Jamaica (Dupuis y col. 2003), Republica Dominicana (Komar y col. 2003), Guadalupe    (Lefrancois y col. 2005), Cuba, Puerto Rico (Dupuis y col. 2005), El Salvador    (Cruz y col. 2005) y recientemente Colombia (M&aacute;ttar y col. 2005).</p>     <p>El objetivo del presente trabajo fue el de realizar una vigilancia centinela    en cul&iacute;cidos y aves domesticas <i>Gallus gallus</i> para monitorear la circulaci&oacute;n    del VON.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p> <font size="3"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p><b>Selecci&oacute;n de &aacute;reas geogr&aacute;ficas</b>: se establecieron    puntos de muestreo en las zonas urbanas y rurales del medio y bajo Sin&uacute;    en las localidades de Monter&iacute;a, Leticia, Cotorra, Cotoc&aacute; Arriba,    Lorica y en el corregimiento San Sebasti&aacute;n, pr&oacute;ximo a la Ci&eacute;naga    Grande del Bajo Sin&uacute;. Adicionalmente, se escogi&oacute; otro punto de    muestreo en el municipio de Planeta Rica, incluido en los territorios de cuenca    del R&iacute;o San Jorge (<a href="#fig1">Figura 1</a>).</p>     <p>    <center><a name="fig1"><img src="img/revistas/mvz/v10n2/v10n2a05fig1.gif"></a></center></p>     <p><b>Muestreo y an&aacute;lisis de vectores</b>: La colecta de los individuos    fue hecha empleando dos trampas de luz CDC y una trampa Shannon. El muestreo    se realiz&oacute; entre los meses de Octubre y Diciembre de 2004 y durante el    primer semestre de 2005, ubicando las trampas en lugares cercanos a cuerpos    de agua y a comunidades aviares densas, en sitios urbanos y rurales. Las trampas    de luz tuvieron un rango de actividad de 12 horas. Las trampas Shannon se usaron    en un rango de dos a tres horas. Los individuos colectados fueron transportados    al Instituto de Investigaciones Biol&oacute;gicas del Tr&oacute;pico de la Universidad    de C&oacute;rdoba donde fueron identificados y clasificados en g&eacute;neros,    especie, fecha y lugar de captura. Se formaron pooles de 50 individuos y se    analizaron para la presencia del ant&iacute;geno viral; cuando no se pudo completar    el n&uacute;mero de 50 individuos de una misma especie, se mezclaron hasta dos    g&eacute;neros en un <i>pool</i>. Los pooles fueron mantenidos a -70&deg;CTM    hasta ser analizados utilizando el m&eacute;todo VecTesttTM WNV/SLV (Medical    An&aacute;lisis Systems, Camarillo, CA, USA) una prueba inmunocromatogr&aacute;fica    que determina cualitativamente presencia o ausencia de ant&iacute;geno viral    en mosquitos infectados. La prueba se inicia con la introducci&oacute;n de la    tira que contiene anticuerpos contra el virus en una soluci&oacute;n de extracto    de mosquitos. El ant&iacute;geno, de estar presente en la muestra, se une al    anticuerpo espec&iacute;fico formando un complejo ant&iacute;geno-anticuerpo-gold    que migra a trav&eacute;s de la zona del test que contiene los anticuerpos inmovilizados    de VON, a los que se une constituyendo un sandwich. Luego el complejo desligado    y marcado migra fuera de la zona de test y es capturado despu&eacute;s en una    zona de control. Una l&iacute;nea rojo p&uacute;rpura en un &aacute;rea espec&iacute;fica    de la zona de test indica presencia del ant&iacute;geno, de no presentarse,    la l&iacute;nea de control &eacute;n la zona de control, muestra si el ensayo    fue llevado a cabo correctamente.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Muestreo y an&aacute;lisis de aves</b>: se tomaron muestras en aves domesticas    (<i>Gallus gallus</i>) en el municipio de Planeta Rica, una sola vez en Octubre    de 2004. Se tomaron 0.5 ml de sangre de una de las alas del ave en tubos Vacutainer&reg;.    Las muestras fueron transportadas al Instituto de Investigaciones Biol&oacute;gicas    del Tr&oacute;pico de la Universidad de C&oacute;rdoba donde fueron procesadas    para la obtenci&oacute;n de suero, &eacute;stos fueron almacenados a -70&deg;C    hasta su env&iacute;o al Centers for Disease Control and Prevention Division    of Vector-Borne Infectious Diseases Fort Collins, Colorado, para ser analizados    utilizando MAC-ELISA (Blitvich y col. 2003) y debido a las reacciones cruzadas    que se dan entre el VON y otros virus del serocomplejo de la encefalitis japonesa    (Calisher y col. 1989) se utiliz&oacute; el test de reducci&oacute;n de la neutralizaci&oacute;n    en placa (PRNT) (Beaty y col. 1995).</p>     <p>&nbsp;</p>     <p> <font size="3"><b>RESULTADOS</b></font></p>     <p><b>Descripci&oacute;n de &aacute;reas geogr&aacute;ficas</b>: estas &aacute;reas    forman parte de los complejos cenagosos de Betanc&iacute;, Ci&eacute;naga Grande    del Bajo Sin&uacute;, Ci&eacute;naga de Ba&ntilde;&oacute; y Ci&eacute;naga    Mono Macho al margen izquierdo del r&iacute;o Sin&uacute; a la altura del caser&iacute;o    Leticia, ecosistemas que sostienen una apreciable ornitofauna y por su humedad,    considerables comunidades de cul&iacute;cidos. Presenta alturas entre los 0    y 14 msnm. El car&aacute;cter tropical del valle y el predominio de zonas bajas    establece un r&eacute;gimen t&eacute;rmico c&aacute;lido tropical con temperaturas    medias mensuales superiores a los 25&deg;C. La temperatura promedio anual del    aire est&aacute; por encima de los 28 &deg;C, las variaciones de la temperatura    en el d&iacute;a son relativamente altas (&plusmn;10&deg;C). Estas &aacute;reas    se consideran del tipo bosque seco tropical, caracterizado por precipitaciones    que no sobrepasan los 2000 mm anuales, de los cuales m&aacute;s del 80% son    en invierno. Las precipitaciones acumuladas durante el per&iacute;odo de estudio    fueron de 449,1 mm (IDEAM 2004). </p>     <p><b>Mosquitos</b>: muestreo e identificaci&oacute;n; Se colectaron un total    de 4942 mosquitos, en 6 puntos de muestreo; Monter&iacute;a (Caser&iacute;o    Leticia y Universidad de C&oacute;rdoba), Cotorra, Cotoc&aacute; Arriba, Lorica    y San Sebasti&aacute;n, representando las zonas geogr&aacute;ficas del medio    y bajo Sin&uacute;, y un punto adicional en el municipio de Planeta Rica, perteneciente    a la cuenca del r&iacute;o San Jorge. Se identificaron especies de mosquitos    de los g&eacute;neros <i>Culex</i> (60.8%), Anopheles (14%), Mansonia (18%),    Coquillettidia (5%), Uranotaenia (2%) y Culiseta (0.20%). Se colect&oacute;    un promedio de 300 mosquitos por semana durante el muestreo, que incluy&oacute;    temporada seca y lluviosa. Se formaron 99 pooles con los 4942 mosquitos colectados.    Ning&uacute;n pool fue hallado positivo para VON (Tablas <a href="#tab1">1</a>    y <a href="#tab2">2</a>).</p>     <p>    <center><a name="tab1"><img src="img/revistas/mvz/v10n2/v10n2a05tab1.gif"></a></center></p>     <p>    <center><a name="tab2"><img src="img/revistas/mvz/v10n2/v10n2a05tab2.gif"></a></center></p>     <p><b>Aves</b>: se colectaron muestras de 162 aves de corral <i><i>Gallus gallus</i></i>    (Orden Galliformes, Familia Phasianidae), ning&uacute;n ave present&oacute;    anticuerpos frente al VON.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p> <font size="3"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p>Luego de su entrada al hemisferio Occidental en 1999, el VON se disemin&oacute;    r&aacute;pidamente en el Norte del continente (McLean y col. 2002) y desde entonces    se hipotetiz&oacute; su transporte al Neotr&oacute;pico por las migraciones    interoce&aacute;nicas que anualmente realizan ciertos grupo de aves (Rappole    y col. 2002). Estas migraciones, condiciones clim&aacute;ticas adecuadas y biodiversidad    en los ecosistemas, facilita en cualquier sitio geogr&aacute;fico la amplificaci&oacute;n    del virus en hospederos vertebrados susceptibles. La actividad del virus en    el Neotr&oacute;pico ha sido documentada en varias islas del Caribe (Dupuis    y col. 2003, Komar y col. 2003, Lefrancois y col. 2005, Dupuis y col. 2005),    y recientemente se document&oacute; su circulaci&oacute;n en dos departamentos    del caribe Colombiano (Mattar y col. 2005).</p>     <p>La ausencia de resultados positivos para la presencia del ant&iacute;geno viral    en mosquitos debe ser interpretada cuidadosamente pues est&aacute;n influenciados    por m&uacute;ltiples variables, entre ellas el tipo y n&uacute;mero de trampas    utilizadas, intensidad y puntos espec&iacute;ficos de muestreo, y el lapso de    tiempo entre la &eacute;poca del a&ntilde;o en que se realizaron las capturas    y la &eacute;poca en que el virus estuvo activo y se produjo su salida del ciclo    aviar para infectar a los equinos, la cual se desconoce. La proporci&oacute;n    de pooles de mosquitos positivos en las poblaciones salvajes son muy bajas incluso    cuando las tasas de transmisi&oacute;n son altas (Murgue y col. 2002). Durante    un estudio muy intenso en Egipto entre 1951 y 1954, el virus s&oacute;lo fue    aislado en un 1.7% de los pooles analizados. Las tasas de aislamiento han sido    similares en Norte Am&eacute;rica, a pesar del uso de trampas CDC para hembras    gr&aacute;vidas del genero <i>Culex</i>, un dispositivo que captura selectivamente    grandes n&uacute;meros de hembras Cx. pipiens y Cx. restuans que se han alimentado    al menos una vez (Murgue y col. 2002).</p>     <p>Cuando se encontr&oacute; evidencia de la actividad del virus en aves y equinos    en la Florida, la seroconversi&oacute;n en gallinas demor&oacute; hasta 7.7    semanas (Blackmore y col. 2003), cuando se utilizan aves como centinelas, la    infecci&oacute;n en estas puede llegar a ser distante en el tiempo con respecto    a una primera evidencia en otros hu&eacute;spedes. Este antecedente podr&iacute;a    otorgar una explicaci&oacute;n a la ausencia de resultados positivos en las    aves analizadas, pues s&oacute;lo se realiz&oacute; un muestreo, limitado con    relaci&oacute;n al precedente sentado e insuficiente de acuerdo con los procedimientos    de los sistemas de vigilancias con aves centinelas, que requieren muestreos    cada una o dos semanas para detecci&oacute;n y confirmaci&oacute;n de infecci&oacute;n    (Komar 2001).</p>     <p>La negatividad de las pruebas utilizadas en este estudio, no significa que    el virus no est&eacute; circulando en C&oacute;rdoba, debido a los resultados    previamente obtenidos por M&aacute;ttar y col. (2005).</p>     <p>En conclusi&oacute;n, la complejidad de los ciclos de transmisi&oacute;n de    los arbovirus y los m&uacute;ltiples factores por los cuales son influenciados    hacen que el resultado de la introducci&oacute;n del VON a Colombia sea impredecible.    Es necesario que las autoridades en salud humana y animal aumenten la vigilancia    de posibles casos de infecci&oacute;n atribuible a VON en humanos, aves y equinos.    Tambi&eacute;n se necesita realizar esfuerzos para aislar el virus, o detectar    ARN viral espec&iacute;fico para confirmar los resultados, e identificar los    vectores y hu&eacute;spedes vertebrados involucrados en el ciclo de transmisi&oacute;n    del virus en Colombia.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"><b>BIBLIOGRAF&Iacute;A</b></font></p>     <!-- ref --><p> 1. Beaty BJ, Calisher CH, Shope RE. Arboviruses. En: Lennette EH, Lennette    DA, Lennette ET, editors. Diagnostic procedures for viral, rickettsial, and    chlamydial infections. 7th ed. 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Epitope-blocking enzyme-linked immunosorbent assays for the detection of    serum antibodies to West Nile virus in multiple avian species. J Clin Microbiol    2003; 41:1041-7. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000054&pid=S0122-0268200500020000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Calisher CH, Karabatsos N, Dalrymple JM, Shope RE, Porterfield JS, Westaway    EG, et al. Antigenic relationships between flaviviruses as determined by cross-neutralization    tests with polyclonal antisera. 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Am J Trop Med and Hyg 2005; 72:612-615.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000057&pid=S0122-0268200500020000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Dupuis AP, Marra PP, Kramer LD. Serologic evidence for West Nile virus transmission    in Jamaica, West Indies. Emerg Infect Dis 2003; 9:860-3.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000058&pid=S0122-0268200500020000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Dupuis II AP, Marra PP, Reitsma R, Jones MJ, Louie KL, Kramer LD. Serologic    evidence for West Nile virus transmission, Puerto Rico and Cuba. Am J Trop Med    Hyg 2005; 2:474-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0122-0268200500020000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Elizondo-Quiroga D. West Nile virus isolation in human and mosquitoes, Mexico.    Emerg Infect Dis 2005; 9:1449-52.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000060&pid=S0122-0268200500020000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Hayes EB. Epidemiology and transmission dynamics of west Nile virus disease.    Emerg Infect Dis 2005;11:1167-73.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0122-0268200500020000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Hubalek Z, Halouzka J. West Nile fever-a reemerging mosquito-borne viral    disease in Europe. Emerg Infect Dis 1999; 5:643-650.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S0122-0268200500020000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Instituto de hidrolog&iacute;a, meteorolog&iacute;a y estudios ambientales    IDEAM. Noviembre 15 de 2004. URL disponible en Internet: <a href="http://bart.ideam.gov.co/treal/treal.htm">http://bart.ideam.gov.co/treal/treal.htm</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0122-0268200500020000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Komar N. West Nile virus: epidemiology and ecology in North America. Adv    Virus Res 2003; 61:185-234.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0122-0268200500020000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Komar O, Robbins MB, Klenk K, Blitvich BJ, Marlenee NJ, Burkhalter KL,    Gubler DJ, Gonzalvez G, Pena CJ, Peterson AT, Komar N. West Nile virus transmission    in resident birds, Dominican Republic. Emerg Infect Dis 2003; 9:1299-1302.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0122-0268200500020000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Komar N. West Nile surveillance using sentinel birds. Ann NY Acad Sci 2001;    951:58-73.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0122-0268200500020000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. Lefrancois T, Blitvich BJ, Pradel J, Molia S, Vachiery N, Pallavicini G,    Marlenee NL, Zietsra S, Petitclerc M, Martinez D. West Nile virus surveillance,    Guadeloupe, 2003-2004. Emerg Infect Dis 2005; 7:1100-3.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0122-0268200500020000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. M&aacute;ttar S, Edwars E, Laguado J, Gonzalez M, Komar N. West Nile Virus    antibodies in Colombian Horses. [letter]. Emerg Infect Dis 2005; 11:1497-8.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0122-0268200500020000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. McLean RG, Ubico SR, Bourne D, Komar N. West Nile virus in livestock and    wildlife. Curr Top Microbiol Immunol 2002; 267:271-308.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0122-0268200500020000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Murgue B, Zeller H, Deubel V. The ecology and epidemiology of West Nile    virus in Africa, Europe and Asia. Curr. Top. Microbiol. Immunol 2002; 267:195-221.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0122-0268200500020000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. Rappole JH, Derrickson SR, Hubalek Z. Migratory birds and spread of West    Nile virus in the Western Hemisphere. Emerg Infect Dis 2000; 4:319-28.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0122-0268200500020000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. Zeller H. West Nile Virus: An Overview of Its Spread in Europe and the    Mediterranean basin in Contrast to Its Spread in the Americas. Eur J Clin Microbiol    Infect Dis 2004; 23:147-156.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0122-0268200500020000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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