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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Caracterización e identificación de aislados de levaduras carotenogénicas de varias zonas naturales del Ecuador]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Characterization and identification of isolates of carotenogenic yeast strains from several natural zones of Ecuador]]></article-title>
<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[Caracterização e identificação de isolados de leveduras carotenogénicas de diferentes áreas naturais do Equador]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Pontificia Universidad Católica del Ecuador Escuela de Ciencias Biológicas Centro Neotropical para Investigación de la Biomasa]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Objective. To identify and characterize pigmented yeasts isolated from natural environments in Ecuador, producing metabolites with industrial importance and with potential use in further biotechnological applications. Materials and methods. Twenty-six pigmented isolates from the "Colección de Levaduras Quito-Católica" (CLQCA) were exposed to physiological and molecular tests for their characterization, typification and identification. Sugar assimilation ability was evaluated. Molecular techniques such as ITS-RFLP, MSP-PCR, partial amplification of the segment 26S of the rDNA, and sequencing were used for their identification at the species level. Growth curves for each isolate according to their specific optimum growth temperatures. Results. The following species were identified: Rhodotorula mucilaginosa, Rhodosporidium babjevae, Sporidiobolus ruineniae, Rhodotorula glutinis, Rhodotorula slooffiae, as well as a new species of the genus Rhodotorula. Conclusions. Rhodotorula mucilaginosa (CLQCA-12-013 and CLQCA-12-008) and Rhodosporidium babjevae (CLQCA-10-188) isolates were selected as promising strains for industrial applications, because they showed characteristics such as rapid growth, high assimilation of sugars, biomass production, and pigment synthesis.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[Objetivo. Identificar e caracterizar leveduras pigmentadas isoladas de ambientes naturais do Equador, que produzem metabólitos de interesse para a indústria e podem ser usadas em subseqüentes aplicações biotecnológicas. Materiais e métodos. Trabalhou-se com 26 isolados pigmentados da Coleção de Leveduras Quito-Católica (CLQCA) que se submeteram a provas fisiológicas e molecular para sua caracterização, tipificação e identificação. Foi avaliada a capacidade de assimilação de açúcares. Foram utilizadas as técnicas moleculares RFLP-ITS, MSP-PCR, amplificação parcial do segmento 26S do ADNr ribossomal e seqüenciamento para sua identificação em nível de espécie. Determinaramse as curvas de crescimento para cada isolado de acordo com a sua temperatura ótima de crescimento. Resultados. Foram identificadas as espécies: Rhodotorula mucilaginosa, Rhodosporidium babjevae, Sporidiobolus ruineniae, Rhodotorula glutinis, Rhodotorula slooffiae e uma nova espécie do gênero Rhodotorula. Conclusões. Foram selecionados como cepas promissoras para futuros usos industriais os isolados de Rhodotorula mucilaginosa (CLQCA-12-013 e CLQCA-12-008) e Rhodosporidium babjevae (CLQCA-10-188), por apresentar características de crescimento rápido, alta assimilação de açúcares, produção de biomassa e síntese de pigmentos.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font size="2" face="verdana">      <p align="center"><font size="4"><b>Caracterizaci&oacute;n e identificaci&oacute;n de aislados de levaduras carotenog&eacute;nicas de varias zonas naturales del Ecuador</b></font></p>      <p align="center"><font size="3"><b>Characterization and identification of isolates of carotenogenic yeast strains from several natural zones of Ecuador</font></p>      <p align="center"><font size="3">Caracteriza&ccedil;&atilde;o e identifica&ccedil;&atilde;o de isolados de leveduras carotenog&eacute;nicas de diferentes &aacute;reas naturais do Equador</b></font></p>      <p>    <center>Cristina Guam&aacute;n-Burneo<sup>*</sup>, Javier Carvajal-Barriga</center></p>      <br>      <p>    <center><i>Pontificia Universidad Cat&oacute;lica del Ecuador, Escuela de Ciencias Biol&oacute;gicas, Centro Neotropical para    <br> Investigaci&oacute;n de la Biomasa, Colecci&oacute;n de Levaduras Quito-Cat&oacute;lica (CLQCA), Quito, Ecuador.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Av. 12 de Octubre 1076 y Roca, Casilla Postal 17-01-2184, Quito, Ecuador. Tel.: 1593 2 299 1700, ext. 1175; fax 1593 2 299 1687</i>    <br></p>      <p>*<a href="mailto:cris.gb9@gmail.com">cris.gb9@gmail.com</a></p>      <p>Recibido: 13-10-2009; Aceptado: 03-12-2009</center></p>  <hr>      <p><font size="3"><b>Resumen</b></font></p>      <p><b>Objetivo.</b> Identificar y caracterizar levaduras pigmentadas aisladas de ambientes naturales del Ecuador que sean productoras de metabolitos de inter&eacute;s para la industria y puedan ser utilizadas en posteriores aplicaciones biotecnol&oacute;gicas. <b>Materiales y m&eacute;todos.</b> Se trabaj&oacute; con 26 aislados pigmentados de la Colecci&oacute;n de Levaduras Quito-Cat&oacute;lica (CLQCA) que fueron sometidos a pruebas fisiol&oacute;gicas y moleculares para su caracterizaci&oacute;n, tipificaci&oacute;n e identificaci&oacute;n. Se evalu&oacute; la capacidad de asimilaci&oacute;n de az&uacute;cares. Se emplearon las t&eacute;cnicas moleculares RFLP-ITS, MSP-PCR, amplificaci&oacute;n parcial del segmento 26S del ADNr y secuenciamiento para identificaci&oacute;n a nivel de especie. Se incubaron todos los aislados a 20, 30 y 37&deg;C para determinar la temperatura en la que presenten mejor crecimiento. Posteriormente, fueron determinadas las curvas de crecimiento para cada aislado. <b>Resultados.</b> Se identificaron las especies: <i>Rhodotorula mucilaginosa, Rhodosporidium babjevae, Sporidiobolus ruineniae, Rhodotorula glutinis, Rhodotorula slooffiae</i> y una especie nueva del g&eacute;nero <i>Rhodotorula</i>. <b>Conclusiones.</b> Se seleccionaron como cepas promisorias para futuros usos industriales los aislados de <i>Rhodotorula mucilaginosa</i> (CLQCA-12-013 y CLQCA-12-008) y <i>Rhodosporidium babjevae</i> (CLQCA-10-188), por presentar caracter&iacute;sticas de crecimiento r&aacute;pido, alta asimilaci&oacute;n de az&uacute;cares, producci&oacute;n de biomasa e intensidad en la pigmentaci&oacute;n.</p>      <p><b>Palabras clave</b>: levaduras pigmentadas, tipificaci&oacute;n molecular y fisiol&oacute;gica, curva de crecimiento.    <p>  <hr>      <p><font size="3"><b>Abstract</b></font></p>      <p><b>Objective.</b> To identify and characterize pigmented yeasts isolated from natural environments in Ecuador, producing metabolites with industrial importance and with potential use in further biotechnological applications. <b>Materials and methods.</b> Twenty-six pigmented isolates from the "<i>Colecci&oacute;n de Levaduras Quito-Cat&oacute;lica</i>" (CLQCA) were exposed to physiological and molecular tests for their characterization, typification and identification. Sugar assimilation ability was evaluated. Molecular techniques such as ITS-RFLP, MSP-PCR, partial amplification of the segment 26S of the rDNA, and sequencing were used for their identification at the species level. Growth curves for each isolate according to their specific optimum growth temperatures. <b>Results.</b> The following species were identified: <i>Rhodotorula mucilaginosa, Rhodosporidium babjevae, Sporidiobolus ruineniae, Rhodotorula glutinis, Rhodotorula slooffiae</i>, as well as a new species of the genus <i>Rhodotorula</i>. <b>Conclusions.</b> <i>Rhodotorula mucilaginosa</i> (CLQCA-12-013 and CLQCA-12-008) and <i>Rhodosporidium babjevae</i> (CLQCA-10-188) isolates were selected as promising strains for industrial applications, because they showed characteristics such as rapid growth, high assimilation of sugars, biomass production, and pigment synthesis.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Key words</b>: pigmented yeasts, molecular and physiological typification, growth curve.</p>  <hr>      <p><font size="3"><b>Resumo</b></font></p>      <p><b>Objetivo.</b> Identificar e caracterizar leveduras pigmentadas isoladas de ambientes naturais do Equador, que produzem metab&oacute;litos de interesse para a ind&uacute;stria e podem ser usadas em subseq&uuml;entes aplica&ccedil;&otilde;es biotecnol&oacute;gicas. <b>Materiais e m&eacute;todos.</b> Trabalhou-se com 26 isolados pigmentados da Cole&ccedil;&atilde;o de Leveduras Quito-Cat&oacute;lica (CLQCA) que se submeteram a provas fisiol&oacute;gicas e molecular para sua caracteriza&ccedil;&atilde;o, tipifica&ccedil;&atilde;o e identifica&ccedil;&atilde;o. Foi avaliada a capacidade de assimila&ccedil;&atilde;o de a&ccedil;&uacute;cares. Foram utilizadas as t&eacute;cnicas moleculares RFLP-ITS, MSP-PCR, amplifica&ccedil;&atilde;o parcial do segmento 26S do ADNr ribossomal e seq&uuml;enciamento para sua identifica&ccedil;&atilde;o em n&iacute;vel de esp&eacute;cie. Determinaramse as curvas de crescimento para cada isolado de acordo com a sua temperatura &oacute;tima de crescimento. <b>Resultados.</b> Foram identificadas as esp&eacute;cies: <i>Rhodotorula mucilaginosa, Rhodosporidium babjevae, Sporidiobolus ruineniae, Rhodotorula glutinis, Rhodotorula slooffiae</i> e uma nova esp&eacute;cie do g&ecirc;nero <i>Rhodotorula.</i> <b>Conclus&otilde;es.</b> Foram selecionados como cepas promissoras para futuros usos industriais os isolados de <i>Rhodotorula mucilaginosa</i> (CLQCA-12-013 e CLQCA-12-008) e <i>Rhodosporidium babjevae</i> (CLQCA-10-188), por apresentar caracter&iacute;sticas de crescimento r&aacute;pido, alta assimila&ccedil;&atilde;o de a&ccedil;&uacute;cares, produ&ccedil;&atilde;o de biomassa e s&iacute;ntese de pigmentos.</p>      <p><b>Palavras-Chave</b>: leveduras pigmentadas, tipifica&ccedil;&atilde;o molecular e fisiol&oacute;gica, curva de crescimento.</p>  <hr>      <p><font size="3"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>      <p>Los pigmentos carotenoides presentes en algunos g&eacute;neros de levaduras confieren colores caracter&iacute;sticos a las colonias y protecci&oacute;n contra efectos da&ntilde;inos de la radiaci&oacute;n UV (1). La identificaci&oacute;n de especies basada en criterios de morfolog&iacute;a est&aacute; fuertemente influenciada por las condiciones de cultivo por lo que, en la actualidad, es complementada con datos obtenidos por t&eacute;cnicas de biolog&iacute;a molecular, que se fundamentan en el an&aacute;lisis de fragmentos de las mol&eacute;culas de &aacute;cidos nucleicos, con particular &eacute;nfasis en la comparaci&oacute;n de secuencias de ADNr (2, 3).</p>      <p>Levaduras productoras de carotenoides pertenecientes a los g&eacute;neros <i>Rhodotorula, Rhodosporidium, Sporobolomyces, Sporidiobolus</i> y la especie <i>Phaffia rhodozyma</i> han sido estudiadas en otros trabajos similares, las cuales se caracterizan por asimilar un amplio espectro de fuentes de carbono (4). Los g&eacute;neros <i>Rhodosporidium y Sporidiobolus</i>, son productores de carotenoides como: &acirc;- caroteno, &atilde; caroteno, toruleno y torularodina (5). Mientras que, <i>Phaffia rhodozyma</i> ha sido utilizada industrialmente en la producci&oacute;n de astaxantina. Este pigmento es utilizado en la avicultura para la alimentaci&oacute;n de gallinas de postura y pollos de engorde para mejorar el color de la yema de huevo y la piel de pollo; adem&aacute;s, en la acuacultura se utiliza como pigmento de carne, piel o exoesqueleto en salm&oacute;nidos y crust&aacute;ceos (6).</p>      <p>Estas levaduras pueden ser aisladas de ambientes naturales ya que presentan una amplia distribuci&oacute;n, y son capaces de colonizar m&uacute;ltiples sustratos naturales y artificiales. Adem&aacute;s, presentan capacidad de adaptaci&oacute;n a ambientes extremos como glaciares y ambientes &aacute;cidos (10).</p>      <p>Algunas especies de levaduras, como las que son objeto del presente estudio, han desarrollado estrategias para la disminuci&oacute;n del da&ntilde;o producido por la radiaci&oacute;n solar.</p>      <p>Los mecanismos de fotoprotecci&oacute;n que se conocen en levaduras incluyen la s&iacute;ntesis de compuestos antioxidantes como pigmentos carotenoides y de absorci&oacute;n UV, como las micosporinas (7, 8).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La funci&oacute;n m&aacute;s importante de los carotenoides, en las levaduras es la protecci&oacute;n contra la combinaci&oacute;n da&ntilde;ina del ox&iacute;geno singlete y la luz visible o UV (6, 9). Su acci&oacute;n consiste en desactivar los radicales libres que se producen durante el metabolismo normal de las c&eacute;lulas, tales como el ox&iacute;geno singlete (<sup>1</sup>O<sub>2</sub>), hidroxilo (OH-), per&oacute;xidos y otros oxidantes mediante un proceso en el que se transfiere energ&iacute;a de altos niveles de excitaci&oacute;n a un triplete de la mol&eacute;cula de carotenoide, el cual puede regresar a su estado basal liberando calor. Se ha reportado que en organismos como <i>Phaffia rhodozyma</i>, el <sup>1</sup>O<sub>2</sub> y los radicales per&oacute;xidos inducen la bios&iacute;ntesis de su pigmento caracter&iacute;stico. Otros factores que inducen la s&iacute;ntesis de astaxantina incluyen a la antimicina y otros inhibidores de la cadena respiratoria (6).</p>      <p>Ecuador es un pa&iacute;s megadiverso debido a la gran variedad de ecosistemas y microclimas como resultado de su ubicaci&oacute;n geogr&aacute;fica, misma que adem&aacute;s determina una alta incidencia de rayos UV, especialmente en la cordillera de los Andes. Esto hace del Ecuador un sitio de inter&eacute;s para estudios de biodiversidad de levaduras productoras de pigmentos. El presente estudio es el primero realizado sobre levaduras carotenog&eacute;ncias de algunas regiones de Ecuador con un enfoque biotecnol&oacute;gico.</p>      <p>Las levaduras pigmentadas que se presentan en este estudio podr&iacute;an ser utilizadas como fuentes naturales de carotenoides, lo que ha generado inter&eacute;s por las posibles aplicaciones industriales, en especial de alimentos y cosm&eacute;ticos. Esta investigaci&oacute;n se enfoca en el estudio y selecci&oacute;n de aislados promisorios con miras a futuras aplicaciones industriales.</p>      <p>El presente trabajo fue realizado entre enero de 2008 y abril de 2009 en lo que se refiere espec&iacute;ficamente a la b&uacute;squeda de aislados de inter&eacute;s biotecnol&oacute;gico preservados en la CLQCA, sean estos aislados identificados en anteriores estudios o aislados por ser identificados dentro de esta investigaci&oacute;n. La nueva especie del g&eacute;nero <i>Rhodotorula</i> fue hallada por Carvajal y James en 2007.</p>      <p><font size="3"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>      <p><b>Aislados de levaduras carotenog&eacute;nicas</b></p>      <p>Se trabaj&oacute; con 26 aislados de levaduras pigmentadas de la Colecci&oacute;n de Levaduras Quito Cat&oacute;lica (CLQCA) (<a href="#tab1">Tabla 1</a>).</p>      <p>    <center><a name="tab1"><img src="img/revistas/unsc/v14n3/v14n3a02t1.jpg"></center></p>      <p>Se realizaron diluciones seriadas de cada aislado (10<sup>2</sup>, 10<sup>3</sup>, 10<sup>4</sup>, 10<sup>5</sup> y 10<sup>6</sup>) a partir de cultivos l&iacute;quidos previamente obtenidos con 24 horas de crecimiento. Las diluciones fueron sembradas por duplicado con esferas de vidrio en placas con medio CPM agar (Carotenoid Production Medium) (g L<sup>-1</sup>): glucosa, 20; fosfato de potasio, 8; sulfato de magnesio, 0,5; extracto de levadura, 4,7; agar, 20 a un pH 5,8 (16). Se monitore&oacute; el crecimiento de los cultivos hasta las 72 horas (11) y se evalu&oacute; visualmente el n&uacute;mero de colonias conseguidas en placa, lo que permiti&oacute; conocer el n&uacute;mero de c&eacute;lulas viables por volumen de soluci&oacute;n, expresando en UFC mL<sup>-1</sup>. Todas las placas fueron incubadas a 20, 30 y 37&deg;C con lo que se determin&oacute; cu&aacute;l de estas temperaturas ofrece mejores condiciones para el crecimiento de cada aislado.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La caracterizaci&oacute;n morfol&oacute;gica de los 26 aislados se hizo tomando en cuenta: forma, brillo, tama&ntilde;o, elevaci&oacute;n, bordes, superficie, consistencia y color de las colonias que van de tonalidades salm&oacute;n claro a rosa oscuro. A partir de esta caracterizaci&oacute;n se agruparon los aislados para posteriores an&aacute;lisis moleculares.</p>      <p><b>Evaluaci&oacute;n de respuestas de crecimiento en compuestos carbonados</b></p>      <p>Para determinar la asimilaci&oacute;n de az&uacute;cares se emple&oacute; medio YNB l&iacute;quido (Yeast Nitrogen Base) al que se le a&ntilde;adi&oacute;: glucosa, fructosa, xilosa, galactosa, sacarosa, lactosa, maltosa y rafinosa, de manera independiente, a una concentraci&oacute;n final del 2% (p/v). Para determinar la actividad se evalu&oacute; la turbidez del medio; adem&aacute;s, se utiliz&oacute; el indicador rojo fenol para indicar cambio de pH. Los resultados fueron codificados mediante signos: (+), asimilaci&oacute;n positiva; L, asimilaci&oacute;n lenta; D, asimilaci&oacute;n d&eacute;bil; (-), asimilaci&oacute;n negativa (12). Y, se utiliz&oacute; un control negativo para evaluar la asimilaci&oacute;n de cada az&uacute;car.</p>      <p><font size="3"><b>Identificaci&oacute;n molecular</b></font></p>      <p><b>Extracci&oacute;n de ADN</b></p>      <p>La extracci&oacute;n de ADN se realiz&oacute; mediante los protocolos descritos por Libkind <i>et al</i>. (2003); Hartung <i>et al</i>, (2005) para la amplificaci&oacute;n de Micro/Minisatellite Primed PCR (MSP-PCR); y el protocolo descrito por Guthrie y Fink (2002) para la amplificaci&oacute;n de la regi&oacute;n ITS y 26S del ADNr con algunas modificaciones.</p>      <p><b>Amplificaci&oacute;n de la regi&oacute;n ITS mediante PCR</b></p>      <p>Para la amplificaci&oacute;n de la regi&oacute;n ITS se utilizaron los oligonucle&oacute;tidos sint&eacute;ticos ITS1 (5'–TCC GTA GGT GAA CCT GCG G-3') e ITS4 (5'–TCC TCC GCT TAT TGA TAT GC-3'). La reacci&oacute;n de PCR tuvo lugar a&ntilde;adiendo en un microtubo de 200 ul: 10 &micro;l de buffer GoTaq&reg; 5 X; 3 &micro;L de MgCl<sub>2</sub> 25 mM; 4 &micro;L mix dNTPs 10mM; 21,6 &micro;L de agua libre de nucleasas; 0,4 &micro;L de GoTaq&reg; polimerasa (5 u &micro;L<sup>-1</sup>); 3 &micro;L de oligonucle&oacute;tido ITS1 5 &micro;M; 3 &micro;L oligonucle&oacute;tido ITS4 5 &micro;M; y, 5 &micro;L de ADN total previamente diluido 2:1000. El ADN fue amplificado en un termociclador TC-412 (Techne) mediante un paso inicial de desnaturalizaci&oacute;n de 5 min a 94&deg;C seguido por 40 ciclos de 60 s a 93&deg;C; 2 min de anillamiento a 55&deg;C; 2 min de extensi&oacute;n a 72&deg;C y, una extensi&oacute;n final de 10 min a 72&deg;C. El producto de PCR se evidenci&oacute; mediante electroforesis en geles de agarosa al 0,8% corridos a 100 V durante 30 min en buffer TBE 0,5 X (Tris 50 mM, &aacute;cido b&oacute;rico, EDTA 50 mM, pH 8). Los geles fueron te&ntilde;idos con bromuro de etidio. Se corrieron los amplicones obtenidos con un marcador de peso molecular con intervalos de 100 pb TrackltTM DNA Ladder (Invitrogen, 0,1 &micro;g &micro;L-1). Las bandas fueron evidenciadas mediante un transluminador Spectroline Ultraviolet Translluminator y las im&aacute;genes se registraron por un sistema de documentaci&oacute;n digital (Fisher Bioblock Scientific).</p>      <p><b>Polimorfismos de Longitud de Fragmentos de Restricci&oacute;n (RFLP-ITS)</b></p>      <p>Para el an&aacute;lisis de los polimorfismos de longitud de fragmentos de restricci&oacute;n (RFLP-ITS) se emplearon tres enzimas de restricci&oacute;n: <i>HhaI, HaeIII</i> y <i>HinfI</i>. La reacci&oacute;n de digesti&oacute;n fue realizada en un volumen final de 15 &micro;L conteniendo 5 &micro;L del mix para RFLP-PCR y 10 &micro;l del producto de amplificaci&oacute;n de ITS. El mix RFLP-PCR para cada enzima fue preparado con 2 &micro;L de buffer de reacci&oacute;n REact&reg; 2 10x; 2,2 &micro;L de H<sub>2</sub>O libre de nucleasas y 0,8 &micro;L de enzima de restricci&oacute;n 10 u &micro;L<sup>-1</sup>; seg&uacute;n el protocolo descrito por Guillam&oacute;n <i>et al</i>. (1998) (13). El patr&oacute;n de bandas fue comparado con la base de datos de la Universidad de Valencia que incluye los tama&ntilde;os de los fragmentos de restricci&oacute;n para diferentes especies de levaduras.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El producto de digesti&oacute;n se evidenci&oacute; mediante electroforesis en geles de agarosa al 1% corridos a 100 V durante 90 minutos en buffer TBE 0,5 X, te&ntilde;idos con bromuro de etidio. Los patrones de bandas fueron analizados mediante el programa PhotoCaptMw versi&oacute;n 10,0.</p>      <p>A partir de esta t&eacute;cnica se agruparon los 26 aislados de acuerdo con su patr&oacute;n de digesti&oacute;n. Todos los aislados fueron analizados mediante MSP-PCR y amplificados en su regi&oacute;n 26S ADNr para su secuenciamiento, mismo que fue efectuado &uacute;nicamente en uno o dos aislados representantes de cada grupo.</p>      <p><b>MSP-PCR (Micro/Minisatellite-Primed PCR)</b></p>      <p>En el an&aacute;lisis de MSP-PCR, se emplearon los primers sint&eacute;ticos (GTG)<sub>5</sub> en experimentos de micro-sat&eacute;lites y la secuencia central del fago M13 (5'-GAG GGT GGC GGT TCT-3') en experimentos de mini-sat&eacute;lites (3). Las reacciones de PCR fueron realizadas en un volumen final de 25 &micro;L, conteniendo 5 &micro;L de buffer GoTaq&reg; &#95;5X; 1,5 &micro;L de MgCl<sub>2</sub> 50 mM; 2,5 &micro;L mix dNTPs 10 mM; 4 &micro;L de primer M13 5 &micro;M &oacute; 4 &micro;L de primer (GTG)<sub>5</sub>, 5&micro;M; 0,4 &micro;L de GoTaq&reg; polimerasa, 5 u &micro;L<sup>-1</sup>; 6,6 &micro;L de agua libre de nucleasas y 5 &micro;L de diluci&oacute;n de ADN 3:1000 (&micro;L) previamente obtenido en la extracci&oacute;n de ADN. Los primers se utilizaron de manera independiente para cada reacci&oacute;n. El programa de amplificaci&oacute;n const&oacute; de una desnaturalizaci&oacute;n inicial de 5 min a 95&deg;C; seguido por 40 ciclos de 45s a 93&deg;C; 60 s a 55&deg;C; 60 s a 72&deg;C; y, una extensi&oacute;n final de 6 min a 72&deg;C.</p>      <p>El producto de PCR se evidenci&oacute; mediante electroforesis en geles de agarosa al 1%, corridos a 100 V durante 90 minutos en buffer TBE 0,5 X. Los geles fueron te&ntilde;idos con bromuro de etidio. El producto fue evidenciado mediante transluminador (Spectroline Ultraviolet Translluminator) y las im&aacute;genes se registraron por un sistema de documentaci&oacute;n digital (Fisher Bioblock Scientific).</p>      <p><b>Amplificaci&oacute;n del dominio D1/D2 del segmento 26S ADNr mediante PCR</b></p>      <p>Para el secuenciamiento que llev&oacute; a la identificaci&oacute;n de especies, se amplific&oacute; el dominio D1/D2 del segmento 26S del ADNr mediante los primers NL1 (5'–GCATATCA ATAAGCGGAGGAAAAC-3') y NL4 (5'–GGTCCGT GTTTCAAGACGG-3') (14). La reacci&oacute;n de PCR se realiz&oacute; en un volumen final de 50 &micro;L conteniendo 10 &micro;L de buffer 5 X GoTaq&reg;; 1 &micro;L mix dNTPs 10 mM; 1,5 &micro;L de MgCl<sub>2</sub>, 25 mM; 1 &micro;L de primer NL1 0.1 &micro;M; 1 &micro;L de primer NL4 0.1 &micro;M; 30,1 &micro;L de agua libre de nucleasas; 0,4 &micro;L de GoTaq&reg; polimerasa, 5&micro;L<sup>-1</sup>; y, 5 &micro;L de ADN templado. Las condiciones utilizadas en el termociclador consistieron en una desnaturalizaci&oacute;n inicial de 17 min a 94&deg;C; 40 ciclos de 30 s a 95&deg;C; 45 s a 60&deg;C y, extensi&oacute;n final de 45 s a 72&deg;C.</p>      <p>Los amplicones fueron enviados a secuenciar a la National Collection of Yeast Cultures (NCYC) en Norwich (Reino Unido) y en el Instituto de Ciencias Biol&oacute;gicas de la Universidad Federal de Minas Gerais (Brasil). La secuenciaci&oacute;n en ambos casos se realiz&oacute; usando un kit de ciclo terminador ABI BigDye versi&oacute;n 3,1 (Applied Biosystems) con los primers NL1 y NL4.</p>      <p><b>Curvas de crecimiento</b></p>      <p>Se inocul&oacute; 0,05 g de levadura liofilizada en 150 mL en YPD caldo (Yeast Peptone Dextrose) (g L<sup>-1</sup>): glucosa, 20; extracto de levadura, 10; peptona, 20 y agar, 20 (16); y se incub&oacute; durante 24 horas a la temperatura favorable previamente determinada para cada aislado con agitaci&oacute;n de 260 rpm, en un agitador rotatorio (Microprocessor Shaker Bath, LAB-Line). Se midi&oacute; la densidad &oacute;ptica (DO<sub>600</sub>) de cada cultivo cada hora hasta obtener la gr&aacute;fica de la curva de crecimiento, para lo que se emple&oacute; un espectrofot&oacute;metro HE&euml;IOS &acirc; (Thermo Spectronic) (11).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3"><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></font></p>      <p>De las diferentes especies de levaduras pigmentadas que han sido identificadas en el presente estudio dentro de los g&eacute;neros <i>Rhodotorula, Rhodosporidium y Sporobolomyces</i>, se evidencia variabilidad morfol&oacute;gica, bioqu&iacute;mica y molecular dependiendo de cada especie.</p>      <p>Se evidencia en general que existe una correlaci&oacute;n entre el tipo de sustrato y la diversidad de especies que pueden encontrarse en ambientes naturales. De esta manera, especies que difieren de <i>Rhodotorula mucilaginosa</i>, como son <i>Rhodosporidium babjevae, Rhodotorula glutinis, R. slooffiae y Rhodotorula</i> sp. provienen, en su mayor&iacute;a, de vasijas y metates de excavaciones arqueol&oacute;gicas realizadas en las localidades de La Florida y el yacimiento arqueol&oacute;gico de Rumipamba (Quito); mientras que, <i>Sporidiobolus ruineniae</i> es una especie que fue hallada en bosques de las provincias de Loja y Orellana..</p>      <p>Los aislados de <i>Rhodotorula mucilaginosa</i> se caracterizan por presentar colonias mucoides en diferentes tonalidades salm&oacute;n y rosa (<a href="#tab2">Tabla 2</a>, <a href="#fig1">Figura 1</a>). Asimilan de manera positiva la sacarosa y fructosa en relaci&oacute;n al resto de az&uacute;cares utilizados donde se da una asimilaci&oacute;n lenta o d&eacute;bil (<a href="#tab3">Tabla 3</a>).</p>      <p>    <center><a name="tab2"><img src="img/revistas/unsc/v14n3/v14n3a02t2.jpg"></center></p>     <p>    <center><a name="fig1"><img src="img/revistas/unsc/v14n3/v14n3a02f1.jpg"></center></p>     <p>    <center><a name="tab3"><img src="img/revistas/unsc/v14n3/v14n3a02t3.jpg"></center></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las colonias que pertenecen a <i>Rhodosporidium babjevae</i> se caracterizan por tener una consistencia butirosa o cremosa, y una predominancia del color salm&oacute;n. Asimilan de manera positiva la fructosa (<a href="#tab3">Tabla 3</a>). La temperatura que result&oacute; m&aacute;s favorable para su crecimiento fue 20&deg;C.</p>      <p><i>Sporidiobolus ruineniae</i> presenta colonias cremosas color rosa claro y salm&oacute;n. El az&uacute;car que asimila de mejor manera es la sacarosa, en comparaci&oacute;n con el resto de az&uacute;cares que los asimila de manera lenta o d&eacute;bil.</p>      <p>Al comparar la base de datos de levaduras pigmentadas actualmente identificadas de la CLQCA con la base de datos de levaduras NCYC "National Collection of Yeast Cultures"; CBS "Centraalbureau voor Schimmelcultures" Holanda y Barnett et al. (2007) "Yeasts: Characterization and Identification" se puede evidenciar que la especie Rhodotorula mucilaginosa es la m&aacute;s abundante en lo que se refiere a levaduras pigmentadas en todas las colecciones, incluida la CLQCA, donde fue realizado este trabajo.</p>      <p>La segunda especie m&aacute;s representativa en la CLQCA fue <i>Rhodosporidium babjevae</i> (4 aislados) con mayor n&uacute;mero de ejemplares que en las otras colecciones anteriormente mencionadas. <i>Sporidiobolus ruineniae</i> est&aacute; presente en la CLQCA con 3 aislados; mientras que <i>Rhodotorula glutinis, Rhodotorula slooffiae y Rhodotorula</i> sp. se encuentran representadas por un solo aislado.</p>      <p>De los 26 aislados con los que se trabaj&oacute;, se observ&oacute; un crecimiento conspicuo de 13 aislados a 30&deg;C (50%); 9 aislados a 20&deg;C (34,6%); y en los 4 aislados restantes se observ&oacute; un mejor crecimiento a 37&deg;C (15,3%).</p>      <p><b>Evaluaci&oacute;n de respuestas de crecimiento en compuestos carbonados</b></p>      <p>Las levaduras pigmentadas en general asimilaron de mejor manera los az&uacute;cares: glucosa, sacarosa y fructosa, en comparaci&oacute;n con el resto de az&uacute;cares que fueron asimilados de manera d&eacute;bil o lenta. Al comparar los resultados obtenidos en asimilaciones negativas sobre maltosa, galactosa y lactosa; los datos coinciden con la bibliograf&iacute;a sobre la ambig&uuml;edad que puede presentarse en distintos aislados para asimilar estos az&uacute;cares (12).</p>      <p><b>Identificaci&oacute;n molecular de los aislados estudiados</b></p>      <p>Mediante RFLP-ITS, se evidenci&oacute; un patr&oacute;n de digesti&oacute;n para cada especie debido a que los organismos difieren en la distancia de los sitios de clivaje para cada enzima de restricci&oacute;n en diferentes especies. Por otro lado, la similitud de los patrones generados permiti&oacute; establecer diferencias dentro de las seis especies y entre ellas (2). Los patrones de digesti&oacute;n que coincidieron con las especies se muestran en la <a href="#tab4">tabla 4</a>.</p>      <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="tab4"><img src="img/revistas/unsc/v14n3/v14n3a02t4.jpg"></center></p>      <p>Seg&uacute;n la t&eacute;cnica de RFLP, para los aislados de <i>R. mucilaginosa</i> el patr&oacute;n de digesti&oacute;n fue similar dentro de la especie. Esta identificaci&oacute;n preliminar fue confirmada por medio de la secuenciaci&oacute;n obtenida del fragmento 26S ADNr. Por la t&eacute;cnica de MSP-PCR se agruparon los aislados evidenciando que existe un perfil homog&eacute;neo en la mayor&iacute;a de aislados de los mismos sustratos o localidades. Por ejemplo, aislados extra&iacute;dos de vasijas y metates tienen un perfil de ADN similar entre ellos, sugiriendo que se trata de aislados que corresponden a la misma cepa (CLQCA-10-186, CLQCA-10-192, CLQCA-10-195, CLQCA-10-196), as&iacute; como aislados de la provincia de Loja (CLQCA-17-005, CLQCA-17-058) (<a href="#fig2">Figura 2</a>).</p>      <p>    <center><a name="fig2"><img src="img/revistas/unsc/v14n3/v14n3a02f2.jpg"></center></p>      <p>Para los aislados pertenecientes a <i>Rhodosporidium babjevae y Sporidiobolus ruineniae</i> analizados mediante las t&eacute;cnicas de RFLP y MSP-PCR, el perfil de ADN fue similar a nivel intraespec&iacute;fico para cada una de estas especies. Mientras que, el resto de especies no pudo ser evaluado mediante estas t&eacute;cnicas debido a que se encontr&oacute; solo un aislado, por lo que los resultados de secuenciaci&oacute;n de su regi&oacute;n 26S ADNr fueron determinantes para su identificaci&oacute;n.</p>      <p><b>MSP-PCR (Micro/Minisatellite-Primed PCR)</b></p>      <p>A trav&eacute;s de la t&eacute;cnica de MSP-PCR y empleando individualmente los primers (GTG)<sub>5</sub> y M13, se obtuvo los perfiles de ADN para los 26 aislados. Se evidenci&oacute; polimorfismo para la especie <i>R. mucilaginosa</i> con el primer (GTG)<sub>5</sub>. Estos datos contrastan con estudios realizados por Libkind (2007) donde el primer (GTG)<sub>5</sub> permiti&oacute; diferenciar a la especie <i>R. mucilaginosa</i> de otras, mientras que los resultados obtenidos con el primer M13 dieron perfiles homog&eacute;neos. Esto sugiere que el primer M13 puede amplificar regiones m&aacute;s conservadas y, por lo tanto, tendr&iacute;a menor grado de resoluci&oacute;n para diferenciar especies emparentadas con <i>R. mucilaginosa</i> (10). Como se puede ver en las <a href="#fig2">figuras 2</a>A y <a href="#fig2">2</a>B</a>, en el caso de la amplificaci&oacute;n con el primer (GTG)<sub>5</sub> existen patrones muy similares, mientras que en el caso de la amplificaci&oacute;n con el primer M13, los patrones evidencian diferencias importantes que entre los diferentes aislados.</p>      <p><b>Amplificaci&oacute;n del dominio D1/D2 del segmento 26S ADNr mediante PCR</b></p>      <p>A partir de la amplificaci&oacute;n de la regi&oacute;n 26S rADN se realiz&oacute; el secuenciamiento de los aislados en dos grupos. El primer grupo fue secuenciado en la NCYC en Norwich- Inglaterra (julio de 2007), donde los aislados CLQCA-10-005, CLQCA-10-009, CLQCA-10-024, CLQCA-10-033, CLQCA-12-013 y CLQCA-17-058 fueron identificados como <i>Rhodotorula mucilaginosa</i> (99-100%), mientras que el aislado CLQCA-10-166 fue identificado como <i>Rhodotorula slooffiae</i> &oacute; <i>Rhodotorula minuta</i> con una similitud del 97,7%-97,6% respectivamente.</p>      <p>El segundo grupo de amplicones a secuenciar correspondi&oacute; a los aislados seleccionados de acuerdo a los grupos formados seg&uacute;n el patr&oacute;n de bandas de las t&eacute;cnicas moleculares previamente empleadas.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Curvas de crecimiento</b></p>      <p>El tiempo en que se dan las diferentes fases de crecimiento var&iacute;a entre cada aislado y entre especies. Los aislados de <i>R. mucilaginosa</i>—especie altamente representada en la colecci&oacute;n—presentaron una fase de latencia corta de 8 horas, con una duraci&oacute;n de 7 horas para llegar a su fase estacionaria. Los siguientes aislados que muestran una potencial habilidad de crecer en este medio es la perteneciente a la especie <i>Rhodotorula</i> sp., as&iacute; como tambi&eacute;n <i>Rhodotorula glutinis y Rhodosporidium babjevae</i>, seguidos por <i>Sporidiobolus ruineniae</i> al presentar una fase de latencia m&aacute;s larga. Esta fase tiene gran importancia en la microbiolog&iacute;a industrial porque se puede predecir la evoluci&oacute;n de un cultivo microbiano bajo factores que influyen en esta etapa de crecimiento, tales como medio y condiciones iniciales del in&oacute;culo (15), (<a href="#fig3">Figura 3</a>).</p>      <p>    <center><a name="fig3"><img src="img/revistas/unsc/v14n3/v14n3a02f3.jpg"></center></p>      <p><font size="3"><b>Conclusiones</b></font></p>      <p>La predominancia de levaduras pigmentadas en la CLQCA est&aacute; determinada por <i>R. mucilaginosa</i>, como tambi&eacute;n en otras colecciones como NCYC y CBS.</p>      <p>Los aislados de <i>R. mucilaginosa</i> con los c&oacute;digos: (CLQCA-12-013 y CLQCA-12-008) y el aislado de <i>Rhodosporidium babjevae</i> con el c&oacute;digo (CLQCA-10-188), fueron encontrados como los aislados con mejores caracter&iacute;sticas de crecimiento y producci&oacute;n de intensidad de color; por lo que se sugiere, podr&iacute;an ser escogidos para futuros estudios que lleven a la producci&oacute;n industrial de pigmentos. El aislado CLQCA-12-013 al presentar caracter&iacute;sticas de crecimiento r&aacute;pido, asimilaci&oacute;n de az&uacute;cares y mayor intensidad de su coloraci&oacute;n, es considerado como un aislado promisorio para futuras aplicaciones industriales.</p>      <p><b>Agradecimientos</b></p>      <p>A la Pontificia Universidad Cat&oacute;lica del Ecuador por el financiamiento para esta investigaci&oacute;n. Al Institute of Food Research, Nacional Collection of Yeast Cultures y Universidade Federal de Minas Gerais por su colaboraci&oacute;n. Al Dr. Carlos Rosa y Dr. Diego Libkind por su apoyo para la realizaci&oacute;n de este proyecto.</p>      <p><b>Financiaci&oacute;n</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El proyecto fue financiado con fondos de la Pontificia Universidad Cat&oacute;lica del Ecuador, entre el a&ntilde;o 2007 y el 2009.</p>      <p><b>Conflictos de intereses</b></p>      <p>Los autores no tienen conflicto de intereses relacionados con la investigaci&oacute;n aqu&iacute; presentada.</p>  <hr>      <p><font size="3"><b>Referencias</b></font></p>      <!-- ref --><p>1. Amitabha D, Sang-Hwal Y, Sook-Hee Lee, Jae-Yean K, Deok-Kun O, Seon-Won K. An update on microbial carotenoid production: application of recent metabolic engineering tools. <i>Applied Microbiology and Biotechnology</i> 2007; 77:505-512.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0122-7483200900030000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Orber&aacute; T. M&eacute;todos moleculares de identificaci&oacute;n de levaduras de inter&eacute;s biotecnol&oacute;gico. <i>Revista Iberoamericana de Micolog&iacute;a</i> 2004; 21(1):15-19.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0122-7483200900030000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Hierro N, Gonz&aacute;lez A, Mas A, Guillam&oacute;n J. New PCRbased methods for yeast identification. <i>Journal of Applied Microbiology</i> 2004; 97:792–801.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0122-7483200900030000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Libkind D, Di&eacute;guez M, Moline M, P&eacute;rez P, Zagarese H, Van Broock M. Occurrence of Photoprotective Compounds in Yeasts from Freshwater Ecosystems of Northwestern Patagonia (Argentina). <i>Photochemistry and Photobiology</i> 2006; 82:972–980.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0122-7483200900030000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Buzzini P, Innocenti M, Turchetti B, Libkind D, Van Broock M, Molinacci N. Carotenoid profiles of yeast belonging to the genera <i>Rhodotorula, Rhodosporidium, Sporobolomyces</i>, and <i>Sporidiobolus. Canadian Journal of Microbiology</i> 2007; 53:1024-1031.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0122-7483200900030000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. S&aacute;nchez A, Flores L, Langley E, Mart&iacute;n R, Maldonado G, S&aacute;nchez S. Carotenoides: Estructura, Funci&oacute;n, Bios&iacute;ntesis, Regulaci&oacute;n y Aplicaciones. <i>Revista Latinoamericana de Microbiolog&iacute;a</i> 1999; 41:175-191.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0122-7483200900030000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Bandaranayake W. Mycosporines: are they nature's sunscreens? <i>Natural Product Reports</i> 1998; 15:159-172.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0122-7483200900030000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Libkind D, Molin&eacute; M, Van Broock M. Posibles mecanismos de fotoprotecci&oacute;n en levaduras. <i>Revista electr&oacute;nica de Radiobiolog&iacute;a</i> 2004; 4:84-88.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0122-7483200900030000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Libkind D, P&eacute;rez P, Sommaruga R, Di&eacute;guez M, Ferraro M, Brizzio S, Zagarese H, Van Broock M. Constitutive and UV-inducible synthesis of photoprotective compounds (carotenoids and mycosporines) by freshwater yeasts. <i>Photochemical and Photobiological Sciences</i> 2004, 3(3):281-286.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0122-7483200900030000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Libkind D. Evaluaci&oacute;n de la t&eacute;cnica de MSP-PCR para la caracterizaci&oacute;n molecular de aislamientos de <i>Rhodotorula mucilaginosa</i> provenientes de la Patagonia noroccidental. <i>Revista Argentina de Microbiolog&iacute;a</i> 2007; 39:133-137.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0122-7483200900030000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Margesin R. Effect of temperature on growth parameters of psychrophilic bacteria and yeasts. <i>Extremophiles</i> 2009; 13:257-262.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0122-7483200900030000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Barnett J, Payne R, Yarrow D. <i>YEASTS. Characteristics and identification</i>. Third Edition. Printed in the United Kingdom at the University Press, Cambridge. United States of America. 2007, 1139 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0122-7483200900030000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Guillam&oacute;n J, Sabat&eacute; J, Barrio E, Cano J, Querol A. Rapid identification of wine yeast species based on RFLP analysis of the ribosomal internal transcribed spacer (ITS) region. <i>Archives in Microbiology</i> 1998; 169:387–392.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0122-7483200900030000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. James S, Carvajal E, Bond C, Cross K, N&uacute;&ntilde;ez N, Portero P, Roberts I. <i>Candida carvajalis</i> sp.nov., an ascomycetous yeast species from the Ecuadorian Amazon jungle. FEMS <i>Yeast Research</i> 2009; 1: 1–5.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0122-7483200900030000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Cattaneo C, Larcher L, Togo S, Chaillou L. Aplicaci&oacute;n de m&eacute;todos de Monte Carlo para estudio de crecimiento de bacterias y levaduras. <i>Mec&aacute;nica Computacional</i> 2007; 36:3380-3393.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0122-7483200900030000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. Libkind D. Levaduras carotenog&eacute;nicas de ambientes acu&aacute;ticos de la Patagonia Noroccidental Argentina. Aplicaciones biotecnol&oacute;gicas. Trabajo para la obtenci&oacute;n del grado acad&eacute;mico superior de doctor en bioqu&iacute;mica. 2006. Argentina.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0122-7483200900030000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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