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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación del método dilución neutralización aplicado a un desinfectante según la Norma Técnica Colombiana 5473 de 2007]]></article-title>
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<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[Avaliação do método de diluição-neutralização aplicado num desinfectante segundo a "Norma Técnica Colombiana 5473 de 2007"]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Objective. Evaluate the dilution-neutralization method proposed in the Colombian Technical Norm 5473/07, by using a gel, alcohol-based disinfectant. Materials and methods. This study was done using Pseudomonas aeruginosa ATCC 15442, Staphylococcus aureus ATCC 6538, and Enterococcus hirae ATCC 10541 as the assay microorganisms. The study was carried out at 20±1°C as obligatory temperature and additionally at 36±1°C. Four contact times between microorganisms and the disinfectant were evaluated (0, 2, 5 and 10 minutes). The assay was done both under clean conditions (0.3 g/L of bovine serum albumin), and unclean conditions (3 g/L of bovine serum albumin and 3g/L of sheep erythrocytes). Results. The implementation of this method produced precise results in all of the six repetitions used during the assay. The obtained results demonstrated a logarithmic reduction higher than five, demonstrating the bactericidal activity exerted by the disinfectant on the control microorganisms. The established experimental conditions and methodology did not affect negatively the growth of any of the strains of microorganisms. Similarly, the neutralizing used did not inhibit the development of the microorganisms of the assay. Conclusions. The method was verified by means of the fulfillment of the limits set by the rule. Our results suggest that the method evaluated by means of the implementation of the protocol established in the Colombian Technical Norm 5473/07, allows evaluating the effectiveness of a disinfectant under selected and controlled experimental conditions.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[Objetivo. Avaliar o método de diluição-neutralização proposto na "Norma Técnica Colombiana 5473 de 2007", pela utilização de um desinfectante gel à base de álcool. Materiais e métodos. O teste foi realizado utilizando Pseudomonas aeruginosa ATCC 15442, Staphylococcus aureus ATCC 6538 e Enterococcus hirae ATCC 10541, como microrganismos de ensaio. As temperaturas do estudo foram de 20 ± 1°C como temperatura requerida e 36 ± 1°C e foram utilizados quatro tempos de contacto entre o desinfectante e os microorganismos avaliados (0, 2, 5 e 10 minutos). O método foi realizado sob condições limpas (0,3 g/L de albumina sérica bovina) e sujas (3g/L de albumina sérica bovina e 3g/L de eritrócitos de carneiro). Resultados. A implementação do método produz resultados precisos sobre cada uma das seis repetições realizadas no ensaio. Os resultados mostraram uma redução logarítmica superior a cinco, o que evidencia a actividade bactericida exercida pelo desinfectante contra os microrganismos control. O estabelecimento das condições experimentais e da metodologia provou não incidir negativamente no crescimento de cada uma das cepas. Similarmente, o neutralizador utilizado não inibiu o desenvolvimento dos organismos do experimento. Conclusões. Verificou-se o método através do cumprimento dos limites estabelecidos pela norma. Os resultados sugerem que o método avaliado através da aplicação do protocolo estabelecido pela "Norma Técnica Colombiana 5473 de 2007", permite avaliar a eficácia de um desinfectante em condições experimentais seleccionadas e controladas.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="verdana">     <p align="center"><font size=4><b>Evaluaci&oacute;n del m&eacute;todo diluci&oacute;n neutralizaci&oacute;n aplicado a un desinfectante seg&uacute;n la Norma T&eacute;cnica Colombiana 5473 de 2007</b></font></p>     <p align="center"><font size=3><b>Assessment of the dilution-neutralization method with a disinfectant according to the Colombian Technical Norm 5473 of 2007.</b></font></p>     <p align="center"><font size=3><b>Avalia&ccedil;&atilde;o do m&eacute;todo de dilui&ccedil;&atilde;o-neutraliza&ccedil;&atilde;o aplicado num desinfectante segundo a &quot;Norma T&eacute;cnica Colombiana 5473 de 2007&quot;.</b></font></p>     <p align="center">Janeth Arias-Palacios<sup>1</sup>*, Libardo Hernandez-Esquivel<sup>2</sup>, Juan Carlos Mar&iacute;n-D&iacute;az<sup>3</sup>, Natalia Navarro-Pe&ntilde;a<sup>3</sup>, Natalia Santos-Ar&eacute;valo<sup>3</sup></p>     <p align="center"><sup>1</sup>Grupo de Biotecnolog&iacute;a Ambiental e Industrial (GBAI). Departamento de Microbiolog&iacute;a, Facultad de Ciencias. Pontificia Universidad Javeriana, Bogot&aacute;, D.C., Colombia.    <br> <sup>2</sup>Laboratorios Vicar Farmac&eacute;utica. Bogot&aacute;, D.C., Colombia.    <br> <sup>3</sup>Carrera de Microbiolog&iacute;a Industrial. Facultad de Ciencias. Pontificia Universidad Javeriana, Bogot&aacute;, D.C., Colombia.</p>     <p align="center"><sup>*</sup><a target="_blank" href="mailto:jdcarias@javeriana.edu.co">jdcarias@javeriana.edu.co</a></p>     <p align="center">Recibido: 27-09-2011; Aceptado: 28-02-2012</p> <hr>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size=3><b>Resumen</b></font></p>     <p><b>Objetivo. </b>Evaluar el m&eacute;todo de diluci&oacute;n neutralizaci&oacute;n propuesto en la Norma T&eacute;cnica Colombiana 5473 de 2007, mediante la utilizaci&oacute;n de un desinfectante en gel a base de alcohol. <b>Materiales y m&eacute;todos. </b>El ensayo se efectu&oacute; utilizando <i>Pseudomonas aeruginosa </i>ATCC 15442, <i>Staphylococcus aureus </i>ATCC 6538 <i>y Enterococcus hirae </i>ATCC 10541, como microorganismos de ensayo. Las temperaturas del estudio fueron 20&plusmn;1&deg;C como temperatura obligatoria y 36&plusmn;1&deg;C y se emplearon cuatro tiempos de contacto entre el desinfectante y los microorganismos evaluados (0, 2, 5 y 10 minutos). El m&eacute;todo fue realizado bajo condiciones limpias (0,3 g/L de albumina de suero bovino) y sucias (3g/L de albumina de suero bovino y 3g/L de eritrocitos de oveja). <b>Resultados. </b>La implementaci&oacute;n del m&eacute;todo arroj&oacute; resultados precisos en cada una de las seis repeticiones realizadas en el ensayo. Los resultados obtenidos demostraron una reducci&oacute;n logar&iacute;tmica superior a cinco, evidenciando la actividad bactericida ejercida por el desinfectante frente a los microorganismos control. El establecimiento de las condiciones experimentales y de la metodolog&iacute;a demostr&oacute; no incidir negativamente en el crecimiento de cada una de las cepas. Igualmente, el neutralizante utilizado no inhibi&oacute; el desarrollo de los organismos de ensayo. <b>Conclusiones. </b>Se verific&oacute; el m&eacute;todo mediante el cumplimiento de los l&iacute;mites establecidos por la norma. Los resultados sugieren que el m&eacute;todo evaluado mediante la implementaci&oacute;n del protocolo establecido en la Norma T&eacute;cnica Colombiana 5473 de 2007, permite evaluar la eficacia de un desinfectante bajo condiciones experimentales escogidas y controladas.</p>     <p><b>Palabras clave: </b>desinfecci&oacute;n, condiciones limpias, condiciones sucias, m&eacute;todo diluci&oacute;n neutralizaci&oacute;n, reducci&oacute;n logar&iacute;tmica. </p> <hr>     <p><font size=3><b>Abstract</b></font></p>     <p><b>Objective. </b>Evaluate the dilution-neutralization method proposed in the Colombian Technical Norm 5473/07, by using a gel, alcohol-based disinfectant. <b>Materials and methods. </b>This study was done using <i>Pseudomonas aeruginosa </i>ATCC 15442, <i>Staphylococcus aureus </i>ATCC 6538, and <i>Enterococcus hirae </i>ATCC 10541 as the assay microorganisms. The study was carried out at 20&plusmn;1&deg;C as obligatory temperature and additionally at 36&plusmn;1&deg;C. Four contact times between microorganisms and the disinfectant were evaluated (0, 2, 5 and 10 minutes). The assay was done both under clean conditions (0.3 g/L of bovine serum albumin), and unclean conditions (3 g/L of bovine serum albumin and 3g/L of sheep erythrocytes). <b>Results. </b>The implementation of this method produced precise results in all of the six repetitions used during the assay. The obtained results demonstrated a logarithmic reduction higher than five, demonstrating the bactericidal activity exerted by the disinfectant on the control microorganisms. The established experimental conditions and methodology did not affect negatively the growth of any of the strains of microorganisms. Similarly, the neutralizing used did not inhibit the development of the microorganisms of the assay. <b>Conclusions. </b>The method was verified by means of the fulfillment of the limits set by the rule. Our results suggest that the method evaluated by means of the implementation of the protocol established in the Colombian Technical Norm 5473/07, allows evaluating the effectiveness of a disinfectant under selected and controlled experimental conditions.</p>     <p><b>Key words: </b>disinfection, clean conditions, unclean conditions, dilution-neutralization method, logarithmic reduction.</p> <hr>     <p><font size=3><b>Resumo</b></font></p>     <p><b>Objetivo. </b>Avaliar o m&eacute;todo de dilui&ccedil;&atilde;o-neutraliza&ccedil;&atilde;o proposto na &quot;Norma T&eacute;cnica Colombiana 5473 de 2007&quot;, pela utiliza&ccedil;&atilde;o de um desinfectante gel &agrave; base de &aacute;lcool. <b>Materiais e m&eacute;todos. </b>O teste foi realizado utilizando <i>Pseudomonas aeruginosa </i>ATCC 15442, <i>Staphylococcus aureus </i>ATCC 6538 e <i>Enterococcus hirae </i>ATCC 10541, como microrganismos de ensaio. As temperaturas do estudo foram de 20 &plusmn; 1&deg;C como temperatura requerida e 36 &plusmn; 1&deg;C e foram utilizados quatro tempos de contacto entre o desinfectante e os microorganismos avaliados (0, 2, 5 e 10 minutos). O m&eacute;todo foi realizado sob condi&ccedil;&otilde;es limpas (0,3 g/L de albumina s&eacute;rica bovina) e sujas (3g/L de albumina s&eacute;rica bovina e 3g/L de eritr&oacute;citos de carneiro). <b>Resultados. </b>A implementa&ccedil;&atilde;o do m&eacute;todo produz resultados precisos sobre cada uma das seis repeti&ccedil;&otilde;es realizadas no ensaio. Os resultados mostraram uma redu&ccedil;&atilde;o logar&iacute;tmica superior a cinco, o que evidencia a actividade bactericida exercida pelo desinfectante contra os microrganismos control. O estabelecimento das condi&ccedil;&otilde;es experimentais e da metodologia provou n&atilde;o incidir negativamente no crescimento de cada uma das cepas. Similarmente, o neutralizador utilizado n&atilde;o inibiu o desenvolvimento dos organismos do experimento. <b>Conclus&otilde;es. </b>Verificou-se o m&eacute;todo atrav&eacute;s do cumprimento dos limites estabelecidos pela norma. Os resultados sugerem que o m&eacute;todo avaliado atrav&eacute;s da aplica&ccedil;&atilde;o do protocolo estabelecido pela &quot;Norma T&eacute;cnica Colombiana 5473 de 2007&quot;, permite avaliar a efic&aacute;cia de um desinfectante em condi&ccedil;&otilde;es experimentais seleccionadas e controladas.</p>     <p><b>Palavras-chave: </b>desinfec&ccedil;&atilde;o, condi&ccedil;&otilde;es limpas, condi&ccedil;&otilde;es sujas, o m&eacute;todo de dilui&ccedil;&atilde;o-neutraliza&ccedil;&atilde;o, redu&ccedil;&atilde;o logar&iacute;tmica.</p> <hr>     <p><font size=3><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El control microbiano en el &aacute;rea de la salud, constituye actualmente, uno de los pilares para la implementaci&oacute;n de procesos que garanticen la seguridad a pacientes y personal que labora en el &aacute;rea. Por ello, la limpieza y la desinfecci&oacute;n son el mecanismo principal al cual se debe acudir si se quiere mantener un ambiente libre de microorganismos que pueden llegar a alterar la salud de pacientes y personal asistencial (1)</p>     <p>La desinfecci&oacute;n efectiva requiere control y monitoreo de todas la etapas del proceso. Los procesos de limpieza, desinfecci&oacute;n y esterilizaci&oacute;n tienen como prop&oacute;sito remover o destruir microorganismos. La selecci&oacute;n del m&eacute;todo de limpieza y desinfecci&oacute;n depende del riesgo de infecci&oacute;n asociado con el uso del objeto a desinfectar. Esto tambi&eacute;n depende de la disponibilidad de m&eacute;todo, del tiempo necesario para el proceso y de la naturaleza del objeto, por ejemplo su tolerancia al calor, a la humedad y a los agente qu&iacute;micos (2) Los desinfectantes son agentes que eliminan microorganismos pero no necesariamente sus esporas y no deben aplicarse sobre tejidos sino sobre objetos inanimados, en contraste, los antis&eacute;pticos son agentes microbicidas que pueden aplicarse sobre la piel y mucosas pero no pueden ser utilizados internamente (3)</p>     <p><font size=3><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>     <p><b>Preparaci&oacute;n de los cultivos de trabajo</b></p>     <p>Se prepararon tres pases de los microorganismos de ensayo en agar TSA, incubando cada uno durante 24 horas a 37&deg;C, a partir del tercer pase se elabor&oacute; la suspensi&oacute;n de ensayo transfiriendo asadas de c&eacute;lulas a un frasco schott con 300ml de soluci&oacute;n salina. Se agit&oacute; con vortex y se midi&oacute; la absorbancia a longitud de onda de 540nm. Se prepararon diluciones 10<sup>6</sup> y 10<sup>7</sup> y se sembraron por duplicado en agar TSA, utilizando la t&eacute;cnica de vertido en cajas. A partir de la diluci&oacute;n 10<sup>5</sup> de la suspensi&oacute;n de ensayo, se prepar&oacute; la suspensi&oacute;n de validaci&oacute;n diluy&eacute;ndola una cuarta parte. De esta suspensi&oacute;n se prepar&oacute; una diluci&oacute;n 10<sup>1</sup> y se sembr&oacute; por duplicado en agar TSA. Todas las cajas se incubaron durante 24 horas a 37&deg;C y se realizaron los respectivos recuentos.</p>     <p><b>Establecimiento de las condiciones experimentales</b></p>     <p>El ensayo se efectu&oacute; empleando una temperatura obligatoria de 20&deg;&plusmn;1&deg;C y una adicional de 36&deg;&plusmn;1&deg;C. Los tiempos de contacto entre el desinfectante y las cepas estudiadas se ajustaron mediante un ensayo preliminar, teniendo en cuenta las condiciones reales de uso del desinfectante evaluado, alcohol glicerinado al 65%. De esta forma, se implementaron los siguientes tiempos: 0, 2, 5 y 10 minutos. El ensayo se realiz&oacute; bajo condiciones limpias (0,3g/L de alb&uacute;mina de suero bovino) y bajo condiciones sucias simuladas (3g/L de alb&uacute;mina de suero bovino y 3g/L de eritrocitos de oveja), siguiendo las especificaciones de la norma. Los microorganismos evaluados fueron <i>Pseudomonas aeruginosa </i>ATCC 15442, <i>Staphylococcus aureus </i>ATCC 6538 y <i>Enterococcus hirae </i>ATCC 10541, establecidos en la norma.</p>     <p><b>Implementaci&oacute;n del m&eacute;todo</b></p>     <p>Se pipete&oacute; 1ml de la sustancia interferente en un tubo y 1ml de la suspensi&oacute;n de ensayo. Se mezcl&oacute; y se coloc&oacute; en un ba&ntilde;o de agua a la temperatura seleccionada durante 2min. Se a&ntilde;adieron 8ml de producto y luego de mezclar se coloc&oacute; el tubo en un ba&ntilde;o de agua a la temperatura y el tiempo seleccionados. Se tom&oacute; 1ml de esta mezcla y se transfiri&oacute; a un tubo que conten&iacute;a 8ml de neutralizante y 1ml de agua. El tubo fue colocado en un ba&ntilde;o de agua a 20&deg;&plusmn;1&deg;C durante 5min. Se mezcl&oacute; con vortex y se sembr&oacute; 1ml por duplicado en agar TSA mediante la t&eacute;cnica de vertido en caja. Las cajas se incubaron 24 horas a 37&deg;C para luego efectuar el recuento. Se realizaron 6 r&eacute;plicas de cada ensayo.</p>     <p><b>Control de las condiciones experimentales (Control A)</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se dispens&oacute; 1ml de la sustancia interferente y 1ml de la suspensi&oacute;n de validaci&oacute;n en un tubo. Luego de mezclar, se coloc&oacute; el tubo en un ba&ntilde;o de agua a la temperatura seleccionada durante 2min. Se a&ntilde;adieron 8ml de agua destilada est&eacute;ril, se mezcl&oacute; y se coloc&oacute; el tubo en un ba&ntilde;o de agua a la temperatura y tiempos seleccionados. Se mezcl&oacute; y se inocul&oacute; 1ml de esta mezcla por duplicado mediante la t&eacute;cnica de vertido en caja. Las cajas se incubaron 24 horas a 37&deg;C para luego efectuar el recuento. Se realizaron 6 r&eacute;plicas de este control.</p>     <p><b>Control del neutralizante (Control B)</b></p>     <p>Se transfirieron 8ml del neutralizante (caldo Letheen) y 1ml de agua destilada est&eacute;ril en un tubo. Se a&ntilde;adi&oacute; 1ml de la suspensi&oacute;n de validaci&oacute;n. Se mezcl&oacute; y se coloc&oacute; el tubo en un ba&ntilde;o de agua a 20&deg;&plusmn;1&deg;C durante 5min. Se mezcl&oacute;, y se inocul&oacute; 1ml por duplicado utilizando la t&eacute;cnica de vertido en caja. Las cajas se incubaron 24 horas a 37&deg;C para luego efectuar el recuento. Se realizaron 6 r&eacute;plicas de este control.</p>     <p><b>Control del m&eacute;todo diluci&oacute;n-neutralizaci&oacute;n (Control C)</b></p>     <p>Se pipete&oacute; 1ml de la sustancia interferente y 1ml de diluyente en un tubo. Se a&ntilde;adieron 8ml de producto, se mezcl&oacute; y se coloc&oacute; el tubo en un ba&ntilde;o de agua a la temperatura y tiempos seleccionados. Se mezcl&oacute; y se transfiri&oacute; 1ml de esta mezcla a un tubo con 8ml de neutralizante. Se coloc&oacute; el tubo en un ba&ntilde;o de agua a 20&deg;&plusmn;1&deg;C durante 5min. Se a&ntilde;adi&oacute; 1ml de la suspensi&oacute;n de validaci&oacute;n, se mezcl&oacute; y se coloc&oacute; el tubo en un ba&ntilde;o de agua a 20&deg;&plusmn;1&deg;C durante 30min. Se mezcl&oacute; y se inocul&oacute; 1ml de esta mezcla por duplicado utilizando la t&eacute;cnica de vertido en caja. Las cajas se incubaron 24 horas a 37&deg;C para luego efectuar el recuento. Se realizaron 6 r&eacute;plicas de este control.</p>     <p><b>Verificaci&oacute;n del m&eacute;todo diluci&oacute;n-neutralizaci&oacute;n</b></p>     <p>La verificaci&oacute;n del m&eacute;todo se realiz&oacute; teniendo en cuenta el cumplimiento de los l&iacute;mites b&aacute;sicos estipulados en la norma y consignados en el numeral 5.7.3 de la misma.</p>     <p><font size=3><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></font></p>     <p><b>Establecimiento de las condiciones experimentales para el m&eacute;todo de ensayo diluci&oacute;n-neutralizaci&oacute;n</b></p>     <p>Las condiciones experimentales establecidas por la norma no presentaron modificaciones, a excepci&oacute;n del tiempo de contacto de 60 min, el cual fue omitido ya que las especificaciones del producto sugieren un tiempo de contacto corto para ejercer su acci&oacute;n bactericida. Se establecieron los tiempos de contacto 2, 5 y 10 minutos, luego de un ensayo preliminar que demostr&oacute; que el producto ejerc&iacute;a acci&oacute;n bactericida en el menor tiempo de contacto (5 minutos). Las condiciones experimentales obligatorias y adicionales aplicadas en el ensayo se consignan en la <a href="#f1">figura 1</a>.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Implementaci&oacute;n y verificaci&oacute;n del m&eacute;todo de ensayo diluci&oacute;n-neutralizaci&oacute;n seg&uacute;n la norma t&eacute;cnica colombiana 5473 del 2007</b></p>     <p><b>Preparaci&oacute;n de la suspensi&oacute;n de ensayo y validaci&oacute;n</b></p>     <p>Se trabaj&oacute; inicialmente con la cepa de <i>Staphylococcus aureus </i>ATCC 6538. Para esto se tom&oacute; como referencia el tubo N&deg; 1 del patr&oacute;n de McFarland cuya concentraci&oacute;n celular es equivalente a 3x10<sup>8</sup> UFC/ml, para cumplir con las exigencias de la norma que determina que el recuento en esta suspensi&oacute;n debe ser entre 1,5x10<sup>8</sup> UFC/ml y 5,0x10<sup>8 </sup>UFC/ml. La absorbancia fue calibrada a un valor de 0,2. Sin embargo, al realizar el recuento este fue de 4x10<sup>9</sup> por lo cual fue necesario preparar una suspensi&oacute;n nueva. De acuerdo con lo anterior, se sugiri&oacute; trabajar la suspensi&oacute;n utilizando soluci&oacute;n salina como diluyente omitiendo la adici&oacute;n de triptona, ya que se ten&iacute;a como hip&oacute;tesis que esto podr&iacute;a estar interfiriendo con la absorbancia propia de la suspensi&oacute;n, se prepararon dos suspensiones, una empleando &uacute;nicamente soluci&oacute;n salina como diluyente y la otra utilizando el diluyente especificado en la norma, es decir, soluci&oacute;n salina m&aacute;s triptona. La absorbancia de ambas suspensiones fue similar al patr&oacute;n de McFarland (0,199). Los resultados de los recuentos reflejaron que efectivamente, la suspensi&oacute;n elaborada solo con soluci&oacute;n salina cumpl&iacute;a con las especificaciones de la norma tabla 1, mientras que el recuento de la suspensi&oacute;n elaborada con triptona exced&iacute;a los requerimientos de la norma.</p>     <center><a name="f1"><img src="img/revistas/unsc/v17n1/v17n1a08f1.jpg"></a></center>     <p>A partir de la suspensi&oacute;n de ensayo, se prepar&oacute; la suspensi&oacute;n de validaci&oacute;n, siguiendo las especificaciones de la norma, es decir a partir de una cuarta parte de la diluci&oacute;n 10<sup>5</sup> de la Suspensi&oacute;n de ensayo. Igualmente se utiliz&oacute; como diluyente soluci&oacute;n salina y el recuento fue adecuado para llevar a cabo el procedimiento (<a href="#t2">Tabla 2</a>).</p>     <p>Al preparar la suspensi&oacute;n de <i>Pseudomonas aeruginosa </i>cepa ATCC 15442, siguiendo el procedimiento descrito para la suspensi&oacute;n de <i>Staphylococcus aureus, </i>se not&oacute; que la turbidez que proporcionaba una colonia de <i>P. aeruginosa </i>era mayor comparada con una colonia de <i>S. aureus, </i>posiblemente debido a que <i>Pseudomonas aeruginosa </i>es un microorganismo formador de biopel&iacute;culas. Este tipo de microorganismos son capaces de producir polisac&aacute;ridos y glicoprote&iacute;nas para formar agregados entre s&iacute; (5). Por esta raz&oacute;n, se ajust&oacute; la absorbancia a un valor medio (0,16). Esta absorbancia emiti&oacute; un recuento que permiti&oacute; trabajar con esta suspensi&oacute;n y elaborar a partir de ella, la suspensi&oacute;n de validaci&oacute;n (<a href="#t2">Tabla 2</a>).</p>     <center><a name="t1"><img src="img/revistas/unsc/v17n1/v17n1a08t1.jpg"></a></center>     <p>En otros estudios (6), se recomienda ajustar espectrofoto-m&eacute;tricamente la densidad de las suspensiones bacterianas a 620 nm de longitud de onda, para obtener una absorbancia de 0,2 a 0,3 para bacilos Gram-negativos y de 0,3 a 0,4 para cocos Gram-positivos, lo cual puede ser &uacute;til al momento de preparar una suspensi&oacute;n con un recuento comprendido entre 1 y 3x10<sup>8</sup> UFC/ml.</p>     <p>Por otra parte, la preparaci&oacute;n de la suspensi&oacute;n de la cepa de <i>Enterococcus hirae, </i>utilizando como referencia la absorbancia emitida por la suspensi&oacute;n de <i>S. aureus </i>(0,19) al tratarse de microorganismos Gram-positivos con morfolog&iacute;a microsc&oacute;picamente similar, arroj&oacute; una absorbancia final de 0,18. El recuento establecido fue el adecuado para trabajar con esta suspensi&oacute;n (<a href="#t2">Tabla 2</a>).</p>     <p><b>Evaluaci&oacute;n de las condiciones experimentales (Control A)</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>De acuerdo con la norma, los resultados de los recuentos obtenidos en los par&aacute;metros de control no deben ser menores a la mitad del recuento obtenido en cada par&aacute;metro al final del tiempo cero de contacto. Esta condici&oacute;n fue satisfactoria en este control, tal como se refleja en los resultados experimentales consignados en la <a href="#73">tabla 3</a>.</p>     <center><a name="t2"><img src="img/revistas/unsc/v17n1/v17n1a08t2.jpg"></a></center>     <p>Esto permiti&oacute; determinar que las temperaturas trabajadas (20&deg;C y 36&deg;C), los interferentes, y los tiempos de exposici&oacute;n, no inciden de forma negativa en el crecimiento de los microorganismos.</p>     <p>Los resultados fueron similares para los dos interferentes.</p>     <p><b>Verificaci&oacute;n de la ausencia de toxicidad del neutralizante (Control B).</b></p>     <p>En este estudio se utiliz&oacute; caldo Letheen que es un medio altamente nutritivo compuesto por lecitina y Tween 80, capaz de neutralizar o inhibir la acci&oacute;n de los componentes activos del desinfectante, en este caso alcohol, permitiendo la culminaci&oacute;n de la reacci&oacute;n bactericida.</p>     <center><a name="t3"><img src="img/revistas/unsc/v17n1/v17n1a08t3.jpg"></a></center>     <p>Los datos recopilados en la <a href="#t4">tabla 4</a>, muestran que el neutralizante permiti&oacute; ampliamente el crecimiento de los microorganismos evaluados, y no present&oacute; efectos negativos que llegaran a ocasionar inhibici&oacute;n en los mismos.</p>     <p><b>Validaci&oacute;n del m&eacute;todo Diluci&oacute;n Neutralizaci&oacute;n (Control C)</b></p>     <p>De igual manera que en los dem&aacute;s controles, el recuento de todas las replicas en los diferentes tiempos y temperaturas evaluados, fue superior a la mitad del recuento obtenido en el par&aacute;metro al final del tiempo de contacto cero, para los tres microorganismos y las dos condiciones de limpieza simuladas (<a href="#t5">Tabla 5</a>).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Este par&aacute;metro de control permiti&oacute; determinar que el m&eacute;todo est&aacute; dise&ntilde;ado para conocer la acci&oacute;n bactericida de cualquier desinfectante sin generar por si mismo efectos negativos sobre el microorganismo control.</p>     <center><a name="t4"><img src="img/revistas/unsc/v17n1/v17n1a08t4.jpg"></a></center>     <p><b>Ensayo NA - m&eacute;todo diluci&oacute;n neutralizaci&oacute;n</b></p>     <p>Las suspensiones de ensayo de cada uno de los microorganismos control propuestos en la norma se enfrentaron al desinfectante para manos en gel a una concentraci&oacute;n final de ensayo de 80% del producto.</p>     <p>El comportamiento de cada cepa evaluada fue diferente. La cepa de <i>S. aureus </i>s&oacute;lo present&oacute; crecimiento en el tiempo 0, el cual fue mayor a 330 que fue el l&iacute;mite m&aacute;ximo establecido por la norma (<a href="#t6">Tabla 6</a>). Esto debido a que en este tiempo, el desinfectante es neutralizado inmediatamente despu&eacute;s de la adici&oacute;n del microorganismo, impidiendo que haya un tiempo de contacto suficiente entre el desinfectante y la suspensi&oacute;n.</p>     <p>En los dem&aacute;s tiempos evaluados no se present&oacute; crecimiento del microorganismo, con lo cual se comprueba que el desinfectante es capaz de actuar desde 2 minutos de contacto. Estos resultados est&aacute;n de acuerdo con los resultados establecidos en estudios anteriores (7), en el cual concentraciones m&iacute;nimas de etanol causan ruptura celular y cambios irregulares en la apariencia de las mismas, as&iacute; como afecci&oacute;n en la funci&oacute;n de la membrana celular, interferencia en la divisi&oacute;n celular, afecci&oacute;n en el crecimiento, variaci&oacute;n en la composici&oacute;n de los &aacute;cidos grasos y en la s&iacute;ntesis de prote&iacute;nas e inhibici&oacute;n en el transporte de nutrientes a la c&eacute;lula.</p>     <p>Por otra parte, <i>P. aeruginosa </i>mostr&oacute; crecimiento leve en todos los tiempos excepto en el tiempo 0 en el que el recuento en todas la replicas fue mayor a 330 (<a href="#t6">Tabla 6</a>). Debido a que en las replicas de los tiempos 2, 5 y 10 los recuentos oscilaron entre10 y 15 colonias, se tomaron como menores a catorce por especificaci&oacute;n de la norma, lo que permiti&oacute; obtener valores Na menores a 140. La resistencia de <i>P. aeruginosa </i>es atribuida a varios factores que han sido consignados en diversos estudios (8), estableci&oacute; que las bacterias Gram-negativas poseen reducida sensibilidad hacia los desinfectantes comparadas con los estafilococos debido a los lipopolisacaridos de su membrana externa que impiden el flujo de los desinfectantes al interior de la c&eacute;lula.</p>     <p>Por otra parte (9), estableci&oacute; que <i>P. aeruginosa </i>es capaz de crecer en etanol e inducir enzimas capaces de oxidarlo y metabolizarlo a acetato.</p>     <p>Se esperaba que <i>E. hirae, </i>se comportara de manera similar al del microorganismo <i>S. aureus </i>por la similitud en morfolog&iacute;a y coloraci&oacute;n que existe entre estos dos microorganismos. Sin embargo, <i>E. hirae </i>a diferencia de <i>S. aureus </i>present&oacute; crecimiento en los tiempos 2, 5 y 10 de los ambos interferentes. Sin embargo, aunque present&oacute; crecimiento, el n&uacute;mero de colonias fue menor a 12 por lo cual se consider&oacute; la especificaci&oacute;n de la norma y se report&oacute; el resultado como menor a 140.</p>     <p>Seg&uacute;n el estudio realizado por (10), los enterococos son importantes pat&oacute;genos nosocomiales cuyo factor de virulencia importante es su resistencia intr&iacute;nseca y adquirida a muchos agentes antimicrobianos; esto podr&iacute;a explicar el crecimiento de la cepa de <i>E. hirae, </i>en los tiempos de contacto 2, 5 y 10min.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En s&iacute;ntesis, el empleo de desinfectantes en gel cuyo principio activo es alcohol, pueden constituir un mecanismo importante de desinfecci&oacute;n de manos en el &aacute;mbito hospitalario, y para que su efecto sea notorio en bacterias Gram-negativas y otros microorganismos de dif&iacute;cil eliminaci&oacute;n se puede aumentar la concentraci&oacute;n de alcohol al tiempo que se manejen emolientes que eviten el da&ntilde;o a la piel pero no interfieran en la acci&oacute;n bactericida del desinfectante.</p>     <p><b>Verificaci&oacute;n de la metodolog&iacute;a</b></p>     <p>Se llev&oacute; a cabo de acuerdo con los numerales 5,7 y 5,8 de la NTC 5473 del ICONTEC, mediante la comparaci&oacute;n de la media aritm&eacute;tica de las replicas de los resultados obtenidos con los l&iacute;mites b&aacute;sicos establecidos por la norma. El par&aacute;metro de aceptaci&oacute;n de la Norma es que al menos una concentraci&oacute;n debe demostrar un LOG R &gt; 5 y al menos una concentraci&oacute;n debe demostrar un Log R &lt; 5</p>     <p><b>Recolecci&oacute;n de la informaci&oacute;n</b></p>     <p>Para recolectar la informaci&oacute;n se emplearon los par&aacute;metros establecidos por la norma t&eacute;cnica colombiana 5473 a partir de la cual se tuvo en cuenta los procedimientos experimentales para la determinaci&oacute;n de la actividad bactericida del desinfectante empleado.</p>     <p>Adem&aacute;s se obtuvo informaci&oacute;n partir de consulta bibliogr&aacute;fica con el fin de determinar los mecanismos de acci&oacute;n del proceso de desinfecci&oacute;n y su aplicaci&oacute;n en instrumental m&eacute;dico.</p>     <p>Para la recopilaci&oacute;n de los datos experimentales se emple&oacute; una matriz en la cual se registraron los resultados obtenidos en cada una de las replicas a las condiciones de 38 tiempo, temperatura, tipo de microorganismo, interferente y concentraci&oacute;n de los desinfectantes evaluados.</p>     <p>Por otra parte se emplearon tablas en la cual se registraron los resultados obtenidos a partir del conteo de c&eacute;lulas/ ml en cada uno de los ensayos y en los controles realizados.</p>     <p><b>An&aacute;lisis de informaci&oacute;n</b></p>     <p>Inicialmente se hizo una determinaci&oacute;n de los valores Vc, que son los valores experimentales que se obtuvieron en el m&eacute;todo de diluci&oacute;n-neutralizaci&oacute;n. Estos valores incluyen los valores de ensayo y los controles.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="t5"><img src="img/revistas/unsc/v17n1/v17n1a08t5.jpg"></a></center>     <p>En el m&eacute;todo de diluci&oacute;n-neutralizaci&oacute;n se tuvo en cuenta valores Vc entre un l&iacute;mite entre 14y 130 colonias. Para el c&aacute;lculo del n&uacute;mero de c&eacute;lulas/ ml de la suspensi&oacute;n de ensayo se calcul&oacute; la media aritm&eacute;tica ponderada de los recuentos de dos diluciones escogidas de esta suspensi&oacute;n. Para esto se utilizara la siguiente f&oacute;rmula:</p> <img src="img/revistas/unsc/v17n1/v17n1a08e1.jpg">     <p><b>Donde:</b></p>     <p><i>C </i>es la suma de los valores Vc tenidos en cuenta;    <br> n1 es el numero de los valores Vc tenidos en cuenta en la diluci&oacute;n inferior, es decir (10<sup>-6</sup>);<i>    <br> n2 </i>es el numero de valores Vc tenidos en cuenta en la segunda diluci&oacute;n, es decir (10<sup>-7</sup>);    <br> 10<sup>-6</sup> es el factor de diluci&oacute;n correspondiente a la diluci&oacute;n inferior.</p>     <p>Para determinar el n&uacute;mero de c&eacute;lulas/ml en la mezcla de ensayo al comienzo del tiempo de contacto (No) es decir, al tiempo cero, se obtuvo la decima parte de la media aritm&eacute;tica ponderada de N (n&uacute;mero de c&eacute;lulas/ml en la suspensi&oacute;n de ensayo) debido a que por la adici&oacute;n del producto y de la sustancia interferente se obtiene una diluci&oacute;n a la decima parte.</p>     <center><a name="t6"><img src="img/revistas/unsc/v17n1/v17n1a08t6.jpg"></a></center>     <p>Para la determinaci&oacute;n del n&uacute;mero de microorganismos supervivientes/ml en la mezcla de ensayo al final del tiempo de contacto y antes de la neutralizaci&oacute;n (Na), se emple&oacute; la siguiente f&oacute;rmula:</p> <img src="img/revistas/unsc/v17n1/v17n1a08e2.jpg">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Donde:</b></p>     <p><i>C </i>es la suma de los valores <i>Vc </i>tenidos en cuenta<i>    <br> n </i>es el n&uacute;mero de valores <i>Vc </i>tenidos en cuenta.</p>     <p>Para calcular el n&uacute;mero de sobrevivientes en el control de las condiciones experimentales (tiempo, temperatura, sustancia interferente), control del neutralizante y estandarizaci&oacute;n del m&eacute;todo al final del tiempo de contacto, se emple&oacute; la siguiente f&oacute;rmula:</p> <img src="img/revistas/unsc/v17n1/v17n1a08e3.jpg">     <p><b>Donde:</b></p>     <p><i>c </i>es la suma de los valores <i>Vc </i>tenidos en cuenta; <i>    <br> n </i>es el n&uacute;mero de valores <i>Vc </i>tenidos en cuenta</p>     <p>La tabulaci&oacute;n de los datos se hizo teniendo en cuenta la matriz de resultados relacionando lo obtenido en cada uno de los ensayo con las condiciones experimentales trabajadas.</p>     <p><font size=3><b>Conclusiones</b></font></p>     <p>Se determin&oacute; que las condiciones experimentales del ensayo deben establecerse teniendo en cuenta las condiciones reales a las que se ver&aacute; sometido el desinfectante a evaluar; para este fin, deben tenerse en cuenta las especificaciones del fabricante, el principio activo del desinfectante, su presentaci&oacute;n e incluso el lugar donde se va a utilizar. Los resultados obtenidos en este estudio elucidan que el m&eacute;todo diluci&oacute;n neutralizaci&oacute;n de la NTC 5473, resulta confiable para evaluar la actividad bactericida de un desinfectante. De este modo, la norma garantiza a quien emplee su m&eacute;todo diluci&oacute;n neutralizaci&oacute;n, la consecuci&oacute;n de resultados confiables y el control de los par&aacute;metros que pudieran tener un efecto letal sobre los microorganismos de la prueba. Mediante el an&aacute;lisis de los resultados obtenidos en el ensayo y en los par&aacute;metros de control se determin&oacute; que no se generan inhibiciones del crecimiento bacteriano por motivos diferentes a la acci&oacute;n del producto a evaluar, tal como la metodolog&iacute;a, las condiciones experimentales y la sustancia neutralizante. La elaboraci&oacute;n del informe del ensayo permiti&oacute; reportar y verificar los resultados obtenidos, compar&aacute;ndolos con los l&iacute;mites exigidos por la norma en pro de determinar su validez. Se encontr&oacute; que el diluyente citado en la norma para la preparaci&oacute;n de las suspensiones de ensayo y validaci&oacute;n, puede interferir con la lectura de la absorbancia; adem&aacute;s, si la suspensi&oacute;n de ensayo cumple con la absorbancia te&oacute;rica del patr&oacute;n n&uacute;mero 1 de Mc Farland, al utilizar la cuarta parte de la diluci&oacute;n 10<sup>-5</sup> de la suspensi&oacute;n de ensayo, el recuento de la suspensi&oacute;n de validaci&oacute;n cumple con el rango de especificaci&oacute;n de la norma.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Para la preparaci&oacute;n de la suspensi&oacute;n de ensayo de <i>P. aeruginosa y E. hirae, </i>es preferible, ajustar la suspensi&oacute;n a una concentraci&oacute;n alta (absorbancia de 620 nm) y realizar el recuento, el cual servir&aacute; para preparar las suspensiones por el m&eacute;todo de diluci&oacute;n.</p>     <p><b>Financiaci&oacute;n</b></p>     <p>Este trabajo fue financiado por Laboratorios Vicar de Colombia</p>     <p><b>Conflicto de intereses</b></p>     <p>Los autores manifiestan no tener conflicto de intereses</p> <hr>     <p><font size=3><b>Referencias</b></font></p>     <!-- ref --><p>1. Ayliffe G A J, Fraise A P, Geddes A M, Mitchell K, eds. <i>Control of Hospital Infection A Practical Handbook. </i>4th edition. Oxford: Arnold, 2000&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0122-7483201200010000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Steer Jane. Decontamination. <i>,Surgery Medicine Publishing </i>2002; 20 (8): 197-200&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0122-7483201200010000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Sterilization, Disinfection, and Cleaning of Medical Equipment: Guidance on Decontamination from the Microbiology Advisory Committee to the Department of Health. London: Medical Devices Agency, 1996.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0122-7483201200010000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Norma T&eacute;cnica Colombiana 5473. 2007 Instituto Colombiano de Normas T&eacute;cnicas y Certificaci&oacute;n Icontec Bogot&aacute; Colombia 44p&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0122-7483201200010000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Wirtanen G, Salo S, Helander IM, Mattila T. Microbiological methods for testing disinfectants efficiency on <i>Pseudomonas </i>biofilm. <i>Colloids and  Surfaces </i>2001; 20: 37-50.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0122-7483201200010000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Espigares E, Bueno A, Fern&aacute;ndez-Crehuet M, Espigares M. Efficacy of some neutralizers in suspension tests determining the activity of disinfectants. <i>Journal of Hospital Infection </i>2003; 55(2):137-140&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0122-7483201200010000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Chatterjee I, Somerville GA, Heilmann C, Sahl H, Maurer HH, Herrmann M. Very low etanol concentrations affect the viability and growth recovery in post-stationary-phase <i>,taphylococcus aureus </i>populations. <i>Applied and E nvironmental Microbiology </i>2006; 72(4): 2627- 2636.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0122-7483201200010000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Russell AD. Bacterial resistance to disinfectants: present knowledge and future problems. <i>Journal of Hospital Infection </i>1998; 43:57-68.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0122-7483201200010000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Gorisch H. The etanol oxidation system and its regulation in <i>Pseudomonas aeruginosa. Biochimica et Biophysica Acta </i>2003; 1647(1-2):98-102&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0122-7483201200010000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Sakagami Y, Kajimura K. Bactericidal activities of disinfectants against vancomycin-resistant <i>enterococci. Journal of Hospital Infection </i>2002; 50(2): 140-4.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0122-7483201200010000800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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