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<journal-title><![CDATA[Ciencia y Tecnología Agropecuaria]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[La solubilización de fosfatos como estrategia microbiana para promover el crecimiento vegetal]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad de Boyacá Grupo de investigación Gestión Ambiental ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Because of the constant application of chemical inputs in Agroecosystem, the cost of crop production and environmental quality of soil and water have been affected. Microorganisms carry out most biogeochemical cycles; therefore, their role is essential for agro ecosystem balance. One such functional group is the phosphate solubilizing microorganisms, which are recognized plant growth promoters. These microbial populations perform an important activity, since in many soils there are large reserves of insoluble phosphorus, as a result of fixing much of the phosphorus fertilizer applied, which cannot be assimilated by the plant. The phosphate solubilizing microorganisms use different solubilization mechanisms such as the production of organic acids, which solubilize theses insoluble phosphates in the rhizosphere region. Soluble phosphates are absorbed by the plant, which enhances their growth and productivity. By using these phosphate reserves in soils, application of chemical fertilizers is decreased, on the one hand, can again be fixed by ions Ca, Al or Fe making them insoluble and, by the other hand, increase the costs of crop production. Microbial populations have been widely studied in different types of ecosystems, both natural and Agroecosystem. Thanks to its effectiveness, in laboratory and field studies, the phosphate solubilizing phenotype is of great interest to microbial ecologists who have begun to establish the molecular basis of the trait.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2"> &nbsp;     <p align="right"><font size="3"><b>MICROBIOLOG&Iacute;A DEL  SUELO</b></font></p> &nbsp;     <p><font size="4">    <center> <b>La solubilizaci&oacute;n de fosfatos como estrategia microbiana para promover el crecimiento vegetal</b> </center></font></p> &nbsp;     <p><font size="3">    <center> <b>Phosphate solubilization as a microbial strategy for promoting plant growth</b> </center></font></p> &nbsp;     <p>    <center> <b>Mayra Eleonora Beltr&aacute;n Pineda</b> </center></p>     <p>Bi&oacute;loga. MSc. Microbiolog&iacute;a. Grupo de investigaci&oacute;n Gesti&oacute;n Ambiental. Universidad de Boyac&aacute;. Tunja, Boyac&aacute;. <a href="mailto:mebeltran@uniboyaca.edu.co">mebeltran@uniboyaca.edu.co</a></p>     <p>Fecha de recepci&oacute;n: 17/07/2013. Fecha de aceptaci&oacute;n: 30/01/2014</p> <hr size="1">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>RESUMEN</b></p>     <p>Debido a la aplicaci&oacute;n constante de insumos qu&iacute;micos en los agroecosistemas, el costo de producci&oacute;n de las cosechas y la calidad ambiental del suelo y agua se ha visto afectada. Los microorganismos realizan la mayor&iacute;a de  los ciclos biogeoqu&iacute;micos;  por tanto,  su funci&oacute;n es fundamental para mantener el  equilibrio  de  los agroecosistemas. Uno de esos grupos funcionales son los microorganismos solubilizadores de fosfato, reconocidos promotores de crecimiento vegetal. Estas poblaciones microbianas realizan una actividad importante, ya que en  muchos suelos se encuentran grandes reservas de f&oacute;sforo insoluble, resultado de la fijaci&oacute;n de gran parte de los fertilizantes fosforados aplicados, que no pueden ser  asimilados  por  la  planta.  Los  microorganismos solubilizadores de fosfato usan diferentes mecanismos de solubilizaci&oacute;n, como la producci&oacute;n de &aacute;cidos org&aacute;nicos, que  solubilizan dichos fosfatos insolubles en la zona rizosf&eacute;rica. Los fosfatos solubles son absorbidos por la planta, lo cual mejora su crecimiento y productividad. Al utilizar esas reservas de fosfato presentes en los suelos, se  disminuye  la  aplicaci&oacute;n de fertilizantes qu&iacute;micos que, por una parte, pueden nuevamente ser fijados por iones Ca, Al o Fe volvi&eacute;ndolos insolubles y, por otra, incrementan  los costos de producci&oacute;n de las cosechas. Las  poblaciones  microbianas  han  sido  ampliamente estudiadas  en  diferentes  tipos  de  ecosistemas, tanto naturales como agroecosistemas. Gracias a su efectividad en estudios en laboratorio y campo, el fenotipo solubilizador de fosfato es de gran inter&eacute;s para los ec&oacute;logos microbianos que han empezado a establecer las bases moleculares de dicho rasgo.</p>     <p><b>Palabras claves:</b> &aacute;cidos  org&aacute;nicos,  microorganismos solubilizadores de fosfato, microorganismos promotores de crecimiento vegetal, suelos.</p> <hr size="1">     <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p>Because of the constant application of chemical inputs in  Agroecosystem, the  cost of crop production  and environmental quality  of soil and  water have been affected. Microorganisms carry out most biogeochemical cycles; therefore, their role is essential for agro ecosystem balance. One such functional  group is the phosphate solubilizing  microorganisms, which  are  recognized plant growth promoters. These microbial populations perform an important activity, since in many soils there are large reserves of insoluble phosphorus, as a result of fixing much of the phosphorus fertilizer applied, which cannot be assimilated by the  plant.  The phosphate solubilizing microorganisms use different solubilization mechanisms such as the production  of organic acids, which  solubilize  theses  insoluble  phosphates  in  the rhizosphere region. Soluble phosphates are absorbed by the plant, which enhances their growth and productivity. By using these phosphate reserves in soils, application of  chemical fertilizers is decreased, on the one hand, can again be fixed by ions Ca, Al or Fe making them insoluble and, by the other hand, increase the costs of crop production. Microbial populations have been widely studied in different types of ecosystems, both natural and  Agroecosystem.  Thanks  to  its  effectiveness, in laboratory and field studies, the phosphate solubilizing phenotype is of great interest  to microbial  ecologists who  have begun to establish the molecular basis of the trait.</p>     <p><b>Key  words:</b> Organic  acids,  phosphate solubilizing microorganisms, plant growth promoting microorganisms, soils.</p> <hr size="1"> &nbsp;     <p><font size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p>La agricultura intensiva en los tr&oacute;picos es el resultado de la escasez de tierras agr&iacute;colas y la insuficiente producci&oacute;n de alimentos para satisfacer las necesidades de las poblaciones en crecimiento, lo cual ha generado que grandes &aacute;reas se vean degradadas desde el punto de vista ambiental (Beare <i>et al</i>., 1997). El uso indiscriminado de insumos qu&iacute;micos, incluidos plaguicidas y fertilizantes, ha generado graves efectos en la calidad ambiental de las aguas y el suelo; con el objetivo de preservar la calidad de dichos recursos es necesario implementar pr&aacute;cticas agr&iacute;colas sostenibles.  </p>     <p>La agricultura sostenible es la principal estrategia para contrarrestar el r&aacute;pido declive de la calidad ambiental por medio del mantenimiento del equilibrio de los ecosistemas (Muleta <i>et al</i>., 2013). En ese contexto, el uso de enmiendas microbianas representa una opci&oacute;n amigable desde el punto de vista ambiental como alternativa a la aplicaci&oacute;n de fertilizantes minerales solubles. Dichas enmiendas se producen a partir de microorganismos con diferentes capacidades promotoras de crecimiento vegetal y que en su conjunto reciben el nombre de microorganismos promotores de crecimiento vegetal o PGPM (plant growth promoting microorganisms).  </p>     <p>Los PGPM pueden afectar el crecimiento vegetal por un amplio rango de mecanismos como solubilizaci&oacute;n de fosfato inorg&aacute;nico, disminuci&oacute;n de los niveles de etileno en plantas, fijaci&oacute;n de nitr&oacute;geno atmosf&eacute;rico, biocontrol de enfermedades de plantas, y  producci&oacute;n de fitohormonas, sider&oacute;foros y &aacute;cidos org&aacute;nicos (Datta <i>et  al</i>.,  2011). Los microorganismos solubilizadores de fosfato  son un grupo funcional de PGPM que incluyen no s&oacute;lo bacterias, sino hongos y actinomicetos con la capacidad de solubilizar fosfatos minerales que han sido fijados en  los suelos y que no pueden ser utilizados por las plantas en su nutrici&oacute;n; por ello su rol ecol&oacute;gico es esencial.  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La presente revisi&oacute;n tiene por objetivo realizar una contextualizaci&oacute;n acerca de la importancia del f&oacute;sforo en el suelo, conocer el papel de los microorganismos solubilizadores de fosfato en el ciclaje de dicho nutriente, los principales grupos microbianos con esta capacidad y sus mecanismos de acci&oacute;n, algunos esbozos de la gen&eacute;tica de la solubilizaci&oacute;n de fosfatos y la recopilaci&oacute;n de algunas aproximaciones al estudio de estos microorganismos en distintos tipos de suelo en el &aacute;mbito nacional e internacional. </p>     <p><b>El f&oacute;sforo en los suelos</b></p>     <p>En los suelos la disponibilidad del f&oacute;sforo es esencial para el crecimiento vegetal porque constituye m&aacute;s de  0,2% del peso seco de la planta (Banerjee <i>et al</i>., 2010). Las plantas adquieren el fosfato a partir de la soluci&oacute;n del suelo en forma inorg&aacute;nica en estado soluble como fosfatos mono y dib&aacute;sicos, siendo necesario un pH de 6,5 para que el ion ortofosfato en el suelo sea aprovechable por las plantas, dado que a ese pH la precipitaci&oacute;n de los fosfatos de aluminio y calcio disminuye (Sylvia <i>et al</i>.,  1995).  </p>     <p>El f&oacute;sforo, despu&eacute;s del nitr&oacute;geno, es el elemento m&aacute;s cr&iacute;tico para la producci&oacute;n agropecuaria; pero su disponibilidad es cada vez m&aacute;s limitada debido a la progresiva insuficiencia de sus fuentes naturales, su relativa escasez ed&aacute;fica, elevada retenci&oacute;n por parte de  la matriz del suelo, la falta de reposici&oacute;n natural y su baja movilidad comparada con la de otros nutrientes (Rubio, 2002).  </p>     <p>En general, la movilidad y concentraci&oacute;n del f&oacute;sforo en los suelos es muy baja si se compara con la de otros nutrientes; se presentan coeficientes de difusi&oacute;n del fosfato en el suelo de 0,3-3,3 x 10<sup>-13</sup> m<sup>2</sup>/s y su concentraci&oacute;n en la soluci&oacute;n del suelo es de 0,02 ppm. Es por esto que se hace necesaria la aplicaci&oacute;n excesiva de fertilizantes fosforados a los suelos con el objetivo de suplir la alta demanda de este nutriente por parte de las plantas; sin embargo, el exceso de aplicaci&oacute;n de fosfatos incrementa la p&eacute;rdida potencial por escorrent&iacute;a superficial, lo cual puede acelerar los procesos de eutroficaci&oacute;n en cuerpos de agua. Adem&aacute;s, se conoce que cerca de 90% de esos insumos se precipitan como formas insolubles de fosfato  tric&aacute;lcico (Ca<sub>3</sub>PO<sub>4</sub>) en suelos alcalinos, y fosfato de hierro  (FePO<sub>4</sub>) o fosfato de aluminio (AlPO<sub>4</sub>) en suelos &aacute;cidos (Achal <i>et al</i>., 2007; Banerjee <i>et al</i>., 2010), que no son  utilizables por las plantas lo cual favorece su acumulaci&oacute;n. Ese fosfato no disponible que est&aacute; presente en los suelos ser&iacute;a suficiente para mantener la m&aacute;xima productividad en las cosechas por cerca de 100 a&ntilde;os (Khan <i>et al</i>., 2007).</p>     <p><b>Tipos de f&oacute;sforo presente en los suelos</b></p>     <p>En el suelo existen diferentes fuentes de f&oacute;sforo que pueden ser categorizadas como f&oacute;sforo inorg&aacute;nico y org&aacute;nico. La distribuci&oacute;n de las diferentes formas de f&oacute;sforo en el suelo depende de factores que incluyen tipo de suelo, pH, tipo de vegetaci&oacute;n, actividad microbiana y entradas de fertilizantes (Rooney <i>et al</i>., 2009).</p>     <p>El f&oacute;sforo inorg&aacute;nico se encuentra formando parte de minerales de calcio, hierro y aluminio originados por mecanismos de precipitaci&oacute;n y pueden liberar f&oacute;sforo muy lentamente por medio de la meteorizaci&oacute;n. Los compuestos de f&oacute;sforo inorg&aacute;nico pueden encontrarse en forma de sales en soluci&oacute;n, sales cristalinas o sales  absorbidas por los coloides del suelo (<a href="#t1">tabla 1</a>); tambi&eacute;n pueden formar enlaces de gran estabilidad con hidr&oacute;xidos de hierro, aluminio o manganeso y son menos solubles que los compuestos de f&oacute;sforo org&aacute;nico (Bobadilla <i>et al</i>.,  2008). El f&oacute;sforo disponible para las plantas se encuentra en el suelo en forma de ortofosfatos, que son formas inorg&aacute;nicas solubles, encontr&aacute;ndose iones monob&aacute;sicos (H<sub>2</sub>PO<sub>4</sub><sup>-1</sup>) y dib&aacute;sicos (HPO<sub>4</sub><sup>-2</sup>) (Banerjee <i>et al</i>., 2010).</p>     <p>    <center><a name="t1"><img src="img/revistas/ccta/v15n1/v15n1a09t1.gif"></a></center></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El f&oacute;sforo org&aacute;nico est&aacute; presente en la materia org&aacute;nica, que se origina por la degradaci&oacute;n microbiana de restos de  animales  y  vegetales. En diversos suelos puede representar cerca de 50% del f&oacute;sforo total insoluble (Gyaneshwar <i>et al</i>., 2002; Oliviera <i>et al</i>., 2008). Una gran porci&oacute;n del f&oacute;sforo org&aacute;nico est&aacute; representada por los fosfatos de inositol y en una menor cantidad por otros &eacute;steres de fosfato como fosfol&iacute;pidos presentes en membranas biol&oacute;gicas (Richardson,  2001;  Oliviera,  2008).  </p>     <p>Los fosfatos de inositol, tales como el inositol hexafosfato, son los m&aacute;s abundantes y representan cerca de 50% del f&oacute;sforo org&aacute;nico total; estos compuestos tienden a  acumularse en suelos v&iacute;rgenes debido a que se convierten a formas insolubles como resultado de la formaci&oacute;n de mol&eacute;culas complejas con hierro, aluminio y calcio (Gyaneshwar <i>et al</i>., 2002). Por otra parte, el f&oacute;sforo presente en la biomasa de c&eacute;lulas microbianas representa una porci&oacute;n importante de P org&aacute;nico presente en los suelos; se sabe que el micelio de los hongos contiene entre 0,5% - 1,0% y las bacterias, entre 1,5% y 2,5% de f&oacute;sforo por peso seco. Del f&oacute;sforo presente en los microorganismos, aproximadamente de 30% a 50% est&aacute; en el ARN (P&eacute;rez <i>et al</i>., 2012). Este tipo de fosfato puede actuar como un &iacute;ndice biol&oacute;gico potencial de la disponibilidad de f&oacute;sforo en los suelos (Chen <i>et al</i>., 2000; Guang-Can <i>et al</i>., 2008).</p>     <p><b>Ciclaje del f&oacute;sforo en los suelos</b></p>     <p>Debido a la baja disponibilidad del nutriente, las plantas y los microorganismos compiten por las cantidades limitadas de ese mineral a trav&eacute;s de procesos de precipitaci&oacute;n - solubilizaci&oacute;n y absorci&oacute;n (uni&oacute;n qu&iacute;mica del f&oacute;sforo disponible) - desorci&oacute;n (liberaci&oacute;n del f&oacute;sforo adsorbido) (Da Silva y Vahas, 2002). En el ciclo microbiano de este mineral se producen transformaciones de formas inorg&aacute;nicas a formas org&aacute;nicas y se da la conversi&oacute;n de formas inm&oacute;viles insolubles a compuestos solubles m&oacute;viles. La conversi&oacute;n de fosfatos inorg&aacute;nicos disponibles para la planta y microorganismos en formas org&aacute;nicas no disponibles se denomina inmovilizaci&oacute;n; el proceso contrario es la mineralizaci&oacute;n, que se define como la conversi&oacute;n de formas org&aacute;nicas a ortofosfatos (H<sub>2</sub>PO<sub>4</sub> o  H<sub>3</sub>PO<sub>4</sub>);  el  f&oacute;sforo org&aacute;nico puede ser  mineralizado como subproducto de la mineralizaci&oacute;n  de la materia org&aacute;nica del suelo o mediante la acci&oacute;n de enzimas espec&iacute;ficas que son reguladas por la demanda de este nutriente (Picone <i>et al</i>., 2002).  </p>     <p>Los dos procesos anteriores pueden ocurrir coincidentemente en el suelo, pero en suelos en desarrollo predomina la inmovilizaci&oacute;n que resulta en la acumulaci&oacute;n de compuestos de f&oacute;sforo org&aacute;nico. Los fertilizantes fosforados en los suelos  pueden ser tomados por las plantas o incorporados por los microorganismos del suelo; el ciclo de vida de los organismos del suelo es relativamente corto, cuando mueren, el fosfato que contienen en su biomasa es liberado en formas org&aacute;nicas e inorg&aacute;nicas; algunos  fosfatos org&aacute;nicos son relativamente dif&iacute;ciles de descomponer y tienden a acumularse en condiciones &aacute;cidas.  </p>     <p>La  acci&oacute;n  de  los  microorganismos solubilizadores de fosfato es esencial para facilitar la adquisici&oacute;n del nutriente  por parte  de las plantas; c&oacute;mo lo hacen, qui&eacute;nes lo hacen y qu&eacute; se conoce el respecto son algunos de los interrogantes que la presente revisi&oacute;n quiere abordar.</p>     <p><b>Los microorganismos solubilizadores de fosfato</b></p>     <p>Algunos microorganismos, especialmente los asociados con las ra&iacute;ces, tienen la habilidad de incrementar el crecimiento de las  plantas y su productividad; estos son reconocidos como PGPM por sus siglas en ingl&eacute;s (Plant growth promoting microorganisms) (Rosas <i>et al</i>.,  2006). Los microorganismos solubilizadores de fosfato (MSF)  constituyen un grupo importante de PGPM, pues est&aacute;n involucrados en un amplio rango de procesos  que afectan la transformaci&oacute;n del f&oacute;sforo, siendo componentes integrales del ciclo ed&aacute;fico de este nutriente (Fankem <i>et al</i>., 2006).  </p>     <p>En ambientes naturales, la riz&oacute;sfera de diferentes especies de plantas es afectada por los PGPM, incluidos los MSF; estos &uacute;ltimos microorganismos movilizan fosfato inorg&aacute;nico insoluble desde la matriz mineral hasta el suelo donde puede ser absorbido por las ra&iacute;ces, y las plantas les suministran compuestos carbonados que son metabolizados para el crecimiento microbiano (P&eacute;rez <i>et al</i>., 2007).  </p>     <p>El papel de los MSF en la solubilizaci&oacute;n de fosfatos inorg&aacute;nicos se conoci&oacute; hacia 1903  (Kucey, 1983)  y desde entonces han  sido extensivos los estudios. La solubilizaci&oacute;n natural de fosfatos es un fenotipo natural que exhiben muchos microorganismos del suelo. Los MSF se encuentran en todos los suelos y su n&uacute;mero var&iacute;a de uno a otro (De Freitas <i>et al</i>., 1997); en la riz&oacute;sfera se ha encontrado una concentraci&oacute;n m&aacute;s alta y eficaz de MSF en comparaci&oacute;n con los encontrados en el suelo no rizosf&eacute;rico (Rodr&iacute;guez <i>et al</i>., 1999; Paul <i>et al</i>., 1971). En general, parece existir un efecto rizosf&eacute;rico sobre dichos organismos (G&oacute;mez <i>et al</i>., 2001), debido a que los exudados radicales y detritus vegetales proporcionan el sustrato energ&eacute;tico para que sea posible la actividad microbiol&oacute;gica solubilizadora de fosfato (Valero, 2003). En esta zona de interacci&oacute;n se encuentran cepas aer&oacute;bicas y  anaer&oacute;bicas, con   prevalencia  de  cepas  aer&oacute;bicas (Rodr&iacute;guez <i>et al</i>., 1999).  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las bacterias son los microorganismos predominantes que solubilizan fosfato mineral en los suelos si se comparan con los hongos y  los actinomicetos (Kucey, 1983; Guang-Can <i>et  al</i>., 2008).  En el suelo, las bacterias solubilizadoras de fosfato constituyen de 1% a 50% y los hongos con dicha actividad de 0,1% a 0,5 % del total de la poblaci&oacute;n respectiva. En general, las bacterias solubilizadoras superan en n&uacute;mero a los hongos de 2 a  150  veces (Banik  y Day, 1983;  Kucey <i>et  al</i>.,  1989; Gyaneshwar <i>et al</i>., 2002). Por otra parte, la mayor&iacute;a de los microorganismos solubilizadores pueden solubilizar complejos de fosfato de calcio y s&oacute;lo algunos pueden solubilizar fosfato de aluminio o hierro (Banik y Day,  1983; Gyaneshwar <i>et al</i>., 2002).  </p>     <p>Estos microorganismos del suelo est&aacute;n implicados en la liberaci&oacute;n de P desde fuentes inorg&aacute;nicas por medio de la solubilizaci&oacute;n y desde fuentes org&aacute;nicas a trav&eacute;s de la mineralizaci&oacute;n (Fankem <i>et al</i>., 2006). La biomasa microbiana en el suelo tambi&eacute;n contiene una cantidad significativa de f&oacute;sforo inmovilizado que es potencialmente disponible para las plantas (Oberson <i>et al.</i>, 2001).  </p>     <p>Algunos microorganismos solubilizadores de fosfato pueden mostrar otras actividades de promoci&oacute;n de crecimiento vegetal  como producci&oacute;n de &aacute;cido indol ac&eacute;tico (AIA), &aacute;cido giber&eacute;lico, citoquininas, etileno, &aacute;cido cianh&iacute;drico (HCN), fijaci&oacute;n asimbi&oacute;tica de nitr&oacute;geno y resistencia a pat&oacute;genos del suelo; estas caracter&iacute;sticas son necesarias para que un microorganismo sea considerado un potencial y eficiente bioinsumo (Banerjee <i>et al</i>., 2010).</p>     <p><b>Bacterias solubilizadoras de fosfato</b></p>     <p>A partir del a&ntilde;o 2000, el conocimiento sobre los microorganismos solubilizadores de fosfato ha aumentado significativamente.  Dentro  de  este grupo funcional se encuentran las bacterias solubilizadoras de fosfato  (BSF) que incluyen algunos g&eacute;neros de actinomicetos. Las BSF pueden ser de vida libre en el suelo o establecer relaciones simbi&oacute;ticas con algunas plantas, son capaces de adaptarse, colonizar y persistir en la riz&oacute;sfera de la planta y favorecer su crecimiento o desarrollo por medio de la solubilizaci&oacute;n de fosfato inorg&aacute;nico de diferentes compuestos como son el fosfato bic&aacute;lcico, fosfato tric&aacute;lcico y rocas fosf&oacute;ricas (Pati&ntilde;o, 2010). Existen varios g&eacute;neros bacterianos reconocidos como solubilizadores que pueden evidenciarse en la <a href="#t2">tabla 2</a>.</p>     <p>    <center><a name="t2"><img src="img/revistas/ccta/v15n1/v15n1a09t2.gif"></a></center></p>     <p><b>Hongos solubilizadores de fosfato</b></p>     <p>Los hongos son importantes componentes de la biota del suelo, su abundancia depende de la profundidad del suelo y de las condiciones nutricionales (Chakraborty <i>et al</i>., 2010). Una amplia cantidad de hongos del suelo han  sido reportados como solubilizadores de fosfato insoluble. Los g&eacute;neros de hongos solubilizadores de fosfato (HSF) se pueden observar en la <a href="#t2">tabla 2</a>.</p>     <p><b>Mecanismos de solubilizaci&oacute;n de fosfatos</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El principal mecanismo microbiol&oacute;gico por el cual los compuestos fosfatados son solubilizados es la disminuci&oacute;n del pH  del medio extracelular hasta valores aproximados a 2,0 que son necesarios para que se pueda llevar a cabo la solubilizaci&oacute;n (Lara <i>et al</i>., 2011). Este fen&oacute;meno se origina debido a la liberaci&oacute;n de &aacute;cidos org&aacute;nicos de bajo peso molecular por parte de los microorganismos, cuyas propiedades quelantes favorecen la formaci&oacute;n de complejos insolubles con metales, con la consecuente liberaci&oacute;n del fosfato (Fern&aacute;ndez <i>et al</i>.,  2005).  </p>     <p>Los &aacute;cidos org&aacute;nicos de bajo peso molecular provienen del metabolismo de compuestos de alto peso molecular como carbohidratos, p&eacute;ptidos y l&iacute;pidos (Baziramakenga <i>et  al</i>.,  1995;  Paredes <i>et  al</i>.,  2010).  Esos &aacute;cidos son producidos en el periplasma de muchas bacterias gram negativas a trav&eacute;s de la ruta de oxidaci&oacute;n directa de la glucosa (DOPG por sus siglas en ingl&eacute;s direct oxidation pathway of glucose), cuyo papel fisiol&oacute;gico permanece desconocido (P&eacute;rez <i>et al</i>., 2007). Las enzimas de esta ruta, la quinoprote&iacute;na glucosa deshidrogenasa (GDH) y la gluconato deshidrogenasa (GADH) est&aacute;n orientadas en la cara exterior de la membrana citoplasm&aacute;tica de tal  forma  que puedan oxidar sustratos en el espacio peripl&aacute;smico; consecuentemente, los &aacute;cidos org&aacute;nicos se difunden libremente hacia el exterior de las c&eacute;lulas  y pueden causar la liberaci&oacute;n de grandes cantidades de f&oacute;sforo soluble a partir de fosfatos minerales debido a que se proporcionan protones y aniones de &aacute;cidos org&aacute;nicos que se unen al metal liberando el fosfato (P&eacute;rez <i>et al</i>.,  2007).  En la <a href="#t3">tabla 3</a> se pueden observar los distintos tipos de &aacute;cidos org&aacute;nicos implicados en la  solubilizaci&oacute;n de fosfato. Se ha  reportado al &aacute;cido gluc&oacute;nico como el agente m&aacute;s frecuente en la solubilizaci&oacute;n de fosfatos, el cual es producido por especies de <i>Pseudomonas </i>sp. (Illmer y Schinner, 1995) <i>Erwinia  herbicola </i>(Liu <i>et al</i>.,  1992), <i>Pseudomonas cepacia </i>(Goldstein <i>et al</i>., 1993) y <i>Burkholderia cepacia </i>(Paredes <i>et al</i>., 2010). Otro &aacute;cido org&aacute;nico producido  por bacterias solubilizadoras de fosfato es el  &aacute;cido 2-cetogluc&oacute;nico sintetizado por <i>Rhizobium leguminosarum</i>, <i>Rhizobium meliloti </i>(Paredes <i>et al</i>., 2010) y <i>Bacillus firmus </i>(Banik y Dey, 1983).  </p>     <p>    <center><a name="t3"><img src="img/revistas/ccta/v15n1/v15n1a09t3.gif"></a></center></p>     <p>Algunas   cepas   de <i>Bacillus    liqueniformis </i>y <i>B. amyloliquefaciens </i>producen mezclas de &aacute;cidos l&aacute;ctico, isoval&eacute;rico, isobut&iacute;rico y ac&eacute;tico. Tambi&eacute;n se ha reportado que las bacterias producen &aacute;cido c&iacute;trico, ox&aacute;lico, propi&oacute;nico, l&aacute;ctico, val&eacute;rico, succ&iacute;nico y que tales &aacute;cidos est&aacute;n involucrados en la solubilizaci&oacute;n de minerales de calcio en concentraciones m&aacute;s bajas que el &aacute;cido gluc&oacute;nico. Este estudio apoya la hip&oacute;tesis de que la calidad del &aacute;cido es m&aacute;s importante que la cantidad (Scervino <i>et al</i>., 2010).</p>     <p>Sin embargo, seg&uacute;n Coyne (2000), durante procesos de oxidaci&oacute;n de compuestos inorg&aacute;nicos de nitr&oacute;geno por agentes nitrificantes, se libera &aacute;cido n&iacute;trico y por medio de la oxidaci&oacute;n de compuestos de azufre por parte de bacterias del g&eacute;nero <i>Thiobacillus </i>se genera &aacute;cido sulf&uacute;rico, el cual reacciona con los fosfatos insolubles causando igualmente su solubilizaci&oacute;n.</p>     <p><i>In vitro</i>, en ciertos casos la solubilizaci&oacute;n de fosfatos se ha encontrado como inducible cuando hay escasez de P (Goldstein y Liu,  1987; Gyaneshwar et al., 2002).</p>     <p>Se ha determinado que la limitaci&oacute;n de P resulta en la inducci&oacute;n de la glucosa deshidrogenasa (GDH), enzima involucrada en el metabolismo oxidativo de la glucosa, la cual se cree que conduce el proceso de solubilizaci&oacute;n en bacterias gram negativas (Muleta <i>et al</i>., 2013). Esos autores reportan que la actividad de la GDH aumenta cinco veces con la limitaci&oacute;n de P y se correlaciona con una disminuci&oacute;n del pH del medio de cultivo.  </p>     <p>La habilidad solubilizadora de algunas bacterias puede perderse. Muleta <i>et al</i>. (2013) al respecto indican que la mayor&iacute;a de los aislamientos gram positivos y algunos gram negativos pueden perder su capacidad de solubilizar  fosfatos tras  repetidos subcultivos. Pero esta situaci&oacute;n no se ha observado en hongos solubilizadores que en general, exhiben mayor habilidad solubilizadora tanto en medio l&iacute;quido como s&oacute;lido (Banik y Day, 1983; Kucey, 1983; Gyaneshwar <i>et al</i>., 2002).  </p>     <p>La capacidad de solubilizaci&oacute;n tambi&eacute;n depende de la naturaleza de la fuente de nitr&oacute;geno usada en el medio de cultivo; se han registrado mayores tasas de solubilizaci&oacute;n en presencia de sales de amonio que cuando el nitrato es usado como fuente de nitr&oacute;geno; esto ha sido atribuido a la extrusi&oacute;n de protones que compensan la toma de amonio, produciendo un pH extracelular m&aacute;s bajo por la acidificaci&oacute;n del medio (Gyaneshwar <i>et al</i>.,  2002; Scervino <i>et al</i>., 2010). Adem&aacute;s, se ha encontrado que otros componentes del medio de cultivo tambi&eacute;n pueden afectar la solubilizaci&oacute;n como el contenido de potasio (Gyaneshwar <i>et al</i>., 2002).  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En los suelos, la solubilizaci&oacute;n de fosfato por los &aacute;cidos org&aacute;nicos depende del pH y la mineralog&iacute;a del mismo. Existen dos  mecanismos para  que  esto  ocurra:  el primero es un intercambio del &aacute;cido, por ejemplo, los H<sup>+</sup> provenientes del citrato  se  intercambian por el f&oacute;sforo ligado a la superficie de los cristales del Al(OH)<sub>3</sub> o Fe(OH)<sub>3</sub>, reduci&eacute;ndolos y liberando el f&oacute;sforo (Paredes <i>et al</i>., 2010). El segundo mecanismo depende de la concentraci&oacute;n de los &aacute;cidos org&aacute;nicos producidos por los MSF; la cantidad y el tipo de &aacute;cidos org&aacute;nicos liberados dependen del tipo de microorganismo, el efecto quelante de estos &aacute;cidos en la solubilizaci&oacute;n consiste en que a trav&eacute;s de sus grupos hidroxil y carboxil quelan los cationes unidos  al  fosfato convirti&eacute;ndolo a  formas solubles (Chen <i>et al</i>., 2006)</p>     <p><b>Gen&eacute;tica de la solubilizaci&oacute;n de fosfatos</b></p>     <p>Las t&eacute;cnicas en biolog&iacute;a molecular son una aproximaci&oacute;n ventajosa para obtener y caracterizar cepas PGPR mejoradas; la  introducci&oacute;n de genes sobreexpresados para la solubilizaci&oacute;n de fosfato en bacterias de la riz&oacute;sfera es una aproximaci&oacute;n muy  atractiva para mejorar la capacidad de los microorganismos como inoculantes. La inserci&oacute;n de genes de la solubilizaci&oacute;n de fosfatos en microorganismos que no tienen esa capacidad puede evitar la mezcla de varias poblaciones de bacterias con capacidades de promoci&oacute;n de crecimiento vegetal diferentes, cuando se usan como bioinoculantes (Rodr&iacute;guez <i>et al</i>., 2006).  </p>     <p>Las bases de la gen&eacute;tica de la solubilizaci&oacute;n de fosfatos no est&aacute;n bien establecidas, ya que si bien se conoce que la producci&oacute;n de &aacute;cidos org&aacute;nicos es el principal mecanismo para la solubilizaci&oacute;n de fosfatos minerales, se podr&iacute;a asumir que cualquier gen  implicado en la s&iacute;ntesis de &aacute;cidos org&aacute;nicos podr&iacute;a tener alg&uacute;n efecto en esta caracter&iacute;stica denominada fenotipo solubilizador (Rodr&iacute;guez <i>et al</i>., 1999). Se ha evidenciado que la habilidad de algunas bacterias gram negativas para disolver fosfatos de calcio insolubles (fenotipo solubilizador) es el resultado de la oxidaci&oacute;n peripl&aacute;smica de la glucosa a &aacute;cido gluc&oacute;nico por la v&iacute;a de la quinoprote&iacute;na glucosa deshidrogenasa (GDH), un componente de la ruta de oxidaci&oacute;n directa de la glucosa (Babu-Khan <i>et al</i>., 1995).  </p>     <p>Las enzimas de la ruta de oxidaci&oacute;n directa de la glucosa est&aacute;n localizadas en la membrana citoplasm&aacute;tica; en esta ruta, la glucosa sufre tres oxidaciones en el espacio peripl&aacute;smico, dando como resultado la formaci&oacute;n de &aacute;cido gluc&oacute;nico, 2-cetogluc&oacute;nico y 2,5 dicetogluc&oacute;nico, con la consecuente oxidaci&oacute;n de ese espacio y finalmente del medio adyacente (Babu-Khan <i>et al</i>., 1995).</p>     <p>  Las quinoprote&iacute;nas regulan los procesos bioenerg&eacute;ticos en  bacterias gram negativas (Liu <i>et  al</i>.,  1992).  La quinoprote&iacute;na glucosa  deshidrogenasa (GDH) controla una etapa en la ruta metab&oacute;lica de la oxidaci&oacute;n de aldosas que es el principal mecanismo para la utilizaci&oacute;n de az&uacute;cares por parte de microorganismos. La GDH act&uacute;a en la generaci&oacute;n de la fuerza motriz de protones  durante la oxidaci&oacute;n de los az&uacute;cares; esta enzima s&oacute;lo act&uacute;a en presencia del cofactor PQQ(2,7,9- tricarboxil-1H-pirrolo&#91;2,3-f &#93;quinolina-4,5-diona), que es necesario para la actividad de la quinoprote&iacute;na GDH y es biosintetizado por la enzima PQQ sintasa (Rodr&iacute;guez <i>et al</i>., 2000).  </p>     <p>Se conoce poco acerca de la regulaci&oacute;n g&eacute;nica de la solubilizaci&oacute;n, y por tanto los mecanismos gen&eacute;ticos o bioqu&iacute;micos involucrados en la s&iacute;ntesis de la holoenzima GDH-PQQ; sin embargo, se han realizado varias aproximaciones a su estudio. La primera investigaci&oacute;n que reporta aproximaciones moleculares al estudio de la solubilizaci&oacute;n de fosfatos es la de Goldstein y Liu en  1987, quienes clonaron un gen a partir de <i>Erwinia  herbicola </i>involucrado en la solubilizaci&oacute;n de fosfatos minerales. En esa investigaci&oacute;n se realiz&oacute; una evaluaci&oacute;n de recombinantes resistentes a antibi&oacute;ticos pertenecientes a una genoteca, en un medio de cultivo que conten&iacute;a hidroxiapatita como fuente de f&oacute;sforo. La expresi&oacute;n de ese gen permiti&oacute; la producci&oacute;n de &aacute;cido gluc&oacute;nico y, por tanto, la solubilizaci&oacute;n de fosfatos en <i>E. coli </i>HB101. El an&aacute;lisis de la secuencia de ese gen sugiri&oacute; que puede estar involucrado en la s&iacute;ntesis de la enzima pirroloquinolinaquinona (PQQ sintasa).  </p>     <p>Por otra parte, se sabe que <i>Escherichia coli </i>no sintetiza el cofactor PQQ, pero s&iacute; sintetiza la apoenzima GHD y depende de la toma del PQQ del ambiente o del medio de cultivo para poder solubilizar fosfatos minerales. La holoenzima GDH puede formarse en <i>E. coli </i>cuando se introducen los genes funcionales para la bios&iacute;ntesis del cofactor PQQ; esto lo realizaron Goosen <i>et al</i>. (1989), quienes identificaron y aislaron el gen implicado en la s&iacute;ntesis de la PQQ sintasa, a partir de <i>Acinetobacter calcoaceticus</i>; por medio de transformaci&oacute;n bacteriana lograron que <i>E. coli </i>formara la holoenzima GDH en ausencia de PQQ ex&oacute;geno y adquiriera la capacidad solubilizadora de fosfatos.</p>     <p>Liu <i>et al</i>. (1992) aislaron el gen de la PQQ sintasa de <i>Erwinia  herbicola </i>EHO10 y lo introdujeron en <i>E. coli</i>, que no es un buen solubilizador de fosfatos, con el fin de estudiar los productos codificantes involucrados en el fenotipo solubilizador.  Estos autores concluyeron que los genes responsables del fenotipo solubilizador y los genes que controlan la producci&oacute;n de &aacute;cido org&aacute;nico y su secreci&oacute;n pueden estar &iacute;ntimamente relacionados. </p>     <p>En estudios realizados por Babu-Khan <i>et  al</i>. (1995) se encontr&oacute; un gen implicado en la solubilizaci&oacute;n de fosfatos denominado  gabY, cuya secuencia completa ha sido reportada. Teniendo la secuencia del gen, se pueden deducir los amino&aacute;cidos que  conforman la prote&iacute;na GabY (con masa molecular de 14235 KDa), que es transmembranal con dominios peripl&aacute;smicos y citoplasm&aacute;ticos que hace parte de un sistema permeasa. Dicho gen puede desempe&ntilde;ar un papel alternativo en la expresi&oacute;n y regulaci&oacute;n de la ruta de la oxidaci&oacute;n directa de la glucosa en <i>P. cepacia </i>actuando como un gen funcional de esta actividad <i>in  vivo </i>(Rodr&iacute;guez <i>et al</i>.,  1999). Como la expresi&oacute;n de este gen permite la inducci&oacute;n del fenotipo solubilizador, Rodr&iacute;guez <i>et al</i>. (1999) construyeron un pl&aacute;smido que conten&iacute;a el gen funcional para la solubilizaci&oacute;n de fosfatos a partir de la cepa <i>P. cepacia </i>E-37, y lo expresaron en cepas de <i>E. coli </i>JM109 o HB101 lo que result&oacute; en la disoluci&oacute;n de hidroxiapatita y la producci&oacute;n de &aacute;cido gluc&oacute;nico. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Rodr&iacute;guez <i>et  al</i>. (2000)  transfirieron, por medio del vector de clonaci&oacute;n pMCG898, un gen implicado en la s&iacute;ntesis de PQQ sintasa presente en <i>E. herbicola </i>a una cepa de <i>E. coli </i>MC1061, la cual por conjugaci&oacute;n transfiri&oacute; el gen en cepas de <i>Burkholderia cepacia </i>IS16 y a una cepa de <i>Pseudomonas </i>sp. La expresi&oacute;n de ese rasgo adquirido por las cepas receptoras se evidenci&oacute; con el aumento en la habilidad de solubilizar fosfatos, ya que formaron halos grandes de solubilizaci&oacute;n en medio de cultivo con fosfato insoluble, gracias a la transferencia del gen.  </p>     <p>En estudios m&aacute;s recientes se realiz&oacute; una integraci&oacute;n gen&oacute;mica del  gen  pcc  de <i>Synechococcus </i>PCC7942 en <i>Pseudomonas  fluorescens </i>7942, lo cual permiti&oacute; la solubilizaci&oacute;n de fosfatos en la  cepa receptora; sin embargo, la expresi&oacute;n del fenotipo  solubilizador en diferentes hu&eacute;spedes podr&iacute;a estar determinada por las caracter&iacute;sticas gen&eacute;ticas de la cepa receptora, el n&uacute;mero de copias del pl&aacute;smido y las interacciones metab&oacute;licas (Rodr&iacute;guez <i>et al</i>., 2006).</p>     <p>Aunque existen esfuerzos para entender la solubilizaci&oacute;n de P a escala molecular, el mecanismo utilizado por diferentes bacterias  solubilizadoras de fosfato permanece en gran medida sin identificar (Babu-Khan <i>et al</i>.,  1995; Muleta <i>et al</i>., 2013). A pesar de las ventajas que puede traer la modificaci&oacute;n gen&eacute;tica de microorganismos, su  liberaci&oacute;n  al  ambiente  es controversial, algunas naciones lo fomentan, mientras otras proh&iacute;ben el uso de esa tecnolog&iacute;a y exigen etiquetar los productos que contienen  ingredientes  modificados gen&eacute;ticamente; sin embargo, estudios han mostrado que siguiendo las regulaciones apropiadas, los microorganismos modificados gen&eacute;ticamente pueden ser usados sin riesgo en la agricultura (Rodr&iacute;guez <i>et al</i>., 2006).</p>     <p><b>Algunas aproximaciones al estudio de los microorganismos solubilizadores de fosfato</b></p>     <p>Uno de los primeros estudios en torno a la solubilizaci&oacute;n de fosfatos fue el reportado por Pikovskaia en 1948, quien report&oacute;  bacterias productoras de &aacute;cido l&aacute;ctico que permiten la solubilizaci&oacute;n de fosfatos en cultivos <i>in vitro</i>,  y estandariz&oacute; el primer medio de cultivo para el aislamiento de solubilizadores de fosfato, el cual lleva su nombre. Como resultado de estos trabajos, se gener&oacute; el primer biofertilizante a base de este tipo de microorganismos denominado fosfobacterina (Cooper, 1959; Menkina, 1963). En 1982, Banik y Dey evaluaron la disponibilidad de fosfato en suelos aluviales despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n de algunos microorganismos solubilizadores de fosfato, y encontraron algunos microorganismos promisorios:  dos  cepas  de  hongos  con   capacidad solubilizadora <i>Aspergillus candidus </i>y <i>A. fumigatus</i>, una cepa bacteriana <i>Bacillus  firmus </i>y un actinomiceto del g&eacute;nero <i>Streptomyces </i>sp.; estos autores concluyeron que el uso de enmiendas org&aacute;nicas m&aacute;s la adici&oacute;n de bacterias solubilizadoras de fosfato favorece la disponibilidad de f&oacute;sforo en suelos aluviales.  </p>     <p>Posteriormente, se desarroll&oacute; un producto comercial de tipo fosf&oacute;rico obtenido por la fusi&oacute;n de roca fosf&oacute;rica con azufre elemental y activado con la inoculaci&oacute;n de bacterias del g&eacute;nero <i>Thiobacillus </i>(Urbanek, 1987). En  1997, Herrera report&oacute; 40 cepas con capacidad solubilizadora, entre las que se destacan los g&eacute;neros bacterianos de <i>Bacillus</i>, <i>Pseudomonas </i>y <i>Arthrobacter</i>,  12 cepas de hongos y 5 actinomicetos; dichas cepas son la base para la formulaci&oacute;n de un  nuevo  producto denominado fosforina, que incrementa la producci&oacute;n de algunos cultivos entre 5% y 25% y reduce aplicaci&oacute;n de fertilizantes fosforados entre 50% y 100%.  </p>     <p>Se destacan investigaciones a escala mundial en torno a microorganismos solubilizadores de fosfato aislados en distintos tipos de suelo. Chung <i>et al</i>. (2005), a partir de muestras rizosf&eacute;ricas de varios cultivos incluyendo arroz, aislaron e identificaron grupos bacterianos que solubilizan fosfatos activamente <i>in  vitro</i>,  y lograron identificar   aislados  pertenecientes  a   los   g&eacute;neros <i>Enterobacter</i>, <i>Pantoea </i>y <i>Klebsiella</i>. Chen <i>et al</i>. (2006) aislaron bacterias solubilizadoras de suelos subtropicales y evaluaron su habilidad para solubilizar fosfato tric&aacute;lcico encontrando aislados pertenecientes a los g&eacute;neros <i>Bacillus</i>, <i>Rhodococcus</i>, <i>Arthrobacter</i>, <i>Serratia</i>, <i>Chryseobacterium</i>, <i>Delftia</i>, <i>Gordonia </i>y <i>Phyllobacterium</i>; adem&aacute;s reportaron por primera vez cuatro aislados <i>Arthrobacter ureafaciens</i>, <i>Phyllobacterium myrsinacearum</i>, <i>Rhodococcus erythropolisy Delftia </i>sp., como bacterias solubilizadoras de fosfato.  </p>     <p>Seg&uacute;n Banerjee <i>et  al</i>.  (2010),  los microorganismos solubilizadores de fosfato han sido aislados de suelos rizosf&eacute;ricos de varias plantas de inter&eacute;s agr&iacute;cola como arroz (Chaiharn y Lumyong, 2009), trigo (Ahmad <i>et al</i>.,  2008), soya (Son <i>et al</i>., 2006) mostaza (Chandra <i>et al</i>.,  2007), berenjena y chili (Ponmurugan y Gopi, 2006). Scervino <i>et al</i>. (2010) evaluaron la capacidad de solubilizaci&oacute;n de varias fuentes de P por parte de aislamientos f&uacute;ngicos aislados de la riz&oacute;sfera de varios cultivos, que tienen  la capacidad de ser agentes  biocontroladores contra hongos pat&oacute;genos como <i>Sclerotinia sclerotiorum</i>, y  encontraron que  cada aislado muestra diferentes patrones de producci&oacute;n de &aacute;cidos org&aacute;nicos, involucrados en la solubilizaci&oacute;n de sales de fosfato.  </p>     <p>Xiao <i>et  al</i>.  (2011)  estudiaron tres cepas de hongos aisladas de la riz&oacute;sfera de trigo en una granja en Hubei, China, identificadas como <i>Aspergillus niger</i>, <i>Aspergillus japonicus </i>y <i>Penicillium simplicissimum</i>, y encontraron diferentes capacidades de solubilizaci&oacute;n de fosfato en condiciones de estr&eacute;s por temperatura, pH, alta salinidad y desecaci&oacute;n. Coutinho <i>et al</i>. (2011) estudiaron hongos solubilizadores de fosfato aislados de la riz&oacute;sfera de mel&oacute;n (<i>Cucumis melo </i>L. cv. gold mine) en el Valle de San Francisco en Brasil, y encontraron 52 aislados con la capacidad de solubilizar fosfato pertenecientes a los &oacute;rdenes Aphyllophorales y a los  g&eacute;neros <i>Aspergillus</i>, <i>Penicillium </i>y <i>Rhizopus</i>.  </p>     <p>En 2012,  Prashar y sus colaboradores estudiaron la diversidad  estructural  y  funcional  de  rizobacterias asociadas al cultivo de millo perlado (<i>Panicum glaucum</i>) en una zona semi&aacute;rida en el distrito  de Faridabad, Haryana en India. En el mismo a&ntilde;o,  Muleta  y sus colaboradores estudiaron rizobacterias solubilizadoras de fosfato asociadas a plantas de caf&eacute; (<i>Coffea arabica</i>) en bosques del suroeste de Etiopia.  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En Suram&eacute;rica  sobresalen investigaciones como las realizadas por G&oacute;mez <i>et al</i>. (2001), quienes determinaron la capacidad y  eficiencia solubilizadora de Ca<sub>3</sub>PO<sub>4</sub> y  la roca fosf&oacute;rica por parte de los hongos aislados de la  riz&oacute;sfera del man&iacute; (<i>Arachis hypogae </i>L.) para establecer la posibilidad de su empleo como in&oacute;culo en suelos &aacute;cidos enmendados con fuentes insolubles de f&oacute;sforo. De un total de trece organismos, s&oacute;lo cinco presentaron la capacidad para solubilizar estas fuentes insolubles de f&oacute;sforo. Los hongos con esta habilidad, pertenecieron en su totalidad a los g&eacute;neros <i>Penicillium </i>y <i>Aspergillus</i>. La  mayor  capacidad  solubilizadora  de  la  fosforita correspondi&oacute; a <i>P.  brevicompactum</i>, <i>P.  chrysogenum</i>, <i>Penicillium </i>sp., y <i>A. niger</i>.  </p>     <p>Barroso y Nahas (2005) estudiaron suelos brasileros con bajo contenido de f&oacute;sforo y ricos en &oacute;xidos de aluminio y hierro, evaluaron bosques, suelos agr&iacute;colas y la habilidad de hongos del suelo de solubilizar fosfatos de hierro y aluminio. Se aislaron 481 hongos, de los cuales 33 mostraron habilidad de solubilizar fosfatos inorg&aacute;nicos y de esos, 14 fueron considerados como sobresalientes, pues solubilizaron m&aacute;s de 1000 <font face="symbol" size="3">m</font>gPO<sub>4</sub>/mL. Tambi&eacute;n en  2005, Fern&aacute;ndez y sus colaboradores estudiaron la habilidad solubilizadora de aislados que provienen de suelos soyeros argentinos incluyendo cepas de <i>Bradyrhizobium </i>sp. En ese estudio se encontraron 14 aislamientos solubilizadores (10 de la microflora y 4 de <i>Bradyrhizobium </i>sp.) y concluyeron que existen aislamientos de bacterias del suelo con diferente capacidad solubilizadora de f&oacute;sforo inorg&aacute;nico y que las cepas de <i>Bradyrhizobium </i>sp. muestran capacidades de solubilizaci&oacute;n comparables a las de otros g&eacute;neros bacterianos.  </p>     <p>P&eacute;rez <i>et al</i>. (2007) encontraron 130 aislados bacterianos con capacidad solubilizadora en suelos del oriente de Venezuela, que pertenecen a los g&eacute;neros <i>Burkholderia</i>, <i>Serratia</i>, <i>Ralstonia </i>y <i>Pantoea</i>, provenientes de suelos &aacute;cidos y ricos en hierro. Jorquera <i>et  al</i>.,  (2008)  estudiaron fosfobacterias (bacterias que mineralizan fitato y bacterias que solubilizan fosfato) en suelos volc&aacute;nicos chilenos; estos organismos fueron aislados de la  riz&oacute;sfera de raigr&aacute;s, tr&eacute;bol blanco, trigo, avena y lupino amarillo. Se seleccionaron seis fosfobacterias que pertenecen a los g&eacute;neros <i>Pseudomonas</i>, <i>Enterobacter </i>y <i>Pantoea</i>.  </p>     <p>Oliviera <i>et al</i>. (2008) aislaron, seleccionaron y evaluaron la actividad solubilizadora de microorganismos en riz&oacute;sfera de ma&iacute;z en suelos brasileros, con el fin de encontrar potenciales  bioinoculantes;  se  seleccionaron los  45 mejores aislamientos que fueron identificados bas&aacute;ndose en la secuencia de nucle&oacute;tidos del 16S rDNA para bacterias y  actinomicetos y  en  el  ITS  (espaciador interno transcrito) rDNA para los hongos. Se identificaron los g&eacute;neros <i>Bacillus </i>y <i>Burkholderia </i>sp., como mejores bacterias; <i>Kitasatospora</i>, como nuevo g&eacute;nero de actinomicetos solubilizadores de fosfato, y <i>Aspergillus terreus </i>como mejor hongo solubilizador.  </p>     <p>En Colombia se han desarrollado estudios sobre la capacidad de solubilizaci&oacute;n de microorganismos rizosf&eacute;ricos asociados con  distintos tipos de ecosistemas, tanto naturales como agroecosistemas (Vera <i>et al</i>., 2002; Moratto <i>et al</i>.; 2005, Torres <i>et al</i>., 2006; Beltr&aacute;n, 2009) que incluyen diferentes cultivos comerciales como araz&aacute;, cebolla, papa y arroz.  </p>     <p>En estudios como el realizado por Beltr&aacute;n (2009)  se realiz&oacute; una aproximaci&oacute;n para conocer el efecto del sistema de producci&oacute;n del cultivo del arroz (secano e inundado) sobre la poblaci&oacute;n microbiana y la actividad enzim&aacute;tica asociada al metabolismo ed&aacute;fico del f&oacute;sforo en suelos del Meta. En su trabajo se realizaron los recuentos del grupo funcional y la caracterizaci&oacute;n de los microorganismos solubilizadores de fosfato de calcio aluminio y hierro; y encontr&oacute; actividades sobresalientes de  solubilizaci&oacute;n de  fosfatos por parte  de  aislados f&uacute;ngicos de los g&eacute;neros <i>Penicillum </i>sp., <i>Mucor </i>sp., y como g&eacute;nero bacteriano destacado a <i>Micrococcus </i>sp.  </p>     <p>P&eacute;rez <i>et   al</i>.   (2012)   aislaron  especies  de  hongos solubilizadores de fosfatos end&oacute;fitos y asociados a la riz&oacute;sfera de pasto  colosoana pertenecientes a fincas ganaderas del municipio de Sinc&eacute;, Sucre, e identificaron  53 especies de hongos en suelo y 43 en ra&iacute;ces, de los cuales se encontraron 3 y 6 especies solubilizadoras de fosfatos  respectivamente. En ese estudio, <i>Penicillium </i>sp. y <i>Aspergillus niger </i>fueron las especies solubilizadoras de fosfatos m&aacute;s  predominantes y <i>Paecilomyces </i>sp., la de menor presencia.  </p>     <p>En cuanto a investigaciones de campo, Pandey <i>et al</i>. (2006)  han demostrado el potencial biotecnol&oacute;gico de  la  aplicaci&oacute;n de  microorganismos nativos en  la promoci&oacute;n de crecimiento vegetal. La inoculaci&oacute;n de suelos o semillas con microorganismos solubilizadores de fosfato ha sido ampliamente utilizada para mejorar el crecimiento y la producci&oacute;n de las cosechas (Banerjee <i>et al</i>., 2010). Por otra parte, Guang-Can <i>et al</i>. (2008) reportaron una correlaci&oacute;n positiva entre el n&uacute;mero de bacterias solubilizadoras de fosfato en la riz&oacute;sfera y la toma de fosfato y rendimiento de grano en varios cultivos agr&iacute;colas.  </p>     <p>En el norte de Bengala en la India, Chakraborty <i>et al</i>.  (2010)  evaluaron la  capacidad de  promover el crecimiento vegetal en pl&aacute;ntulas de soya por parte de algunos hongos solubilizadores de fosfato aislados de suelos agr&iacute;colas, bosques y cuencas de r&iacute;os, y encontraron que todos los aislamientos promovieron el crecimiento; el m&aacute;s efectivo fue la cepa <i>A. niger </i>RSP-14. En dicho estudio el contenido de f&oacute;sforo en el suelo disminuy&oacute; debido a la actividad de esos microorganismos  mientras que la concentraci&oacute;n de f&oacute;sforo en las ra&iacute;ces mostr&oacute; un incremento significativo.  </p>     <p>En varios casos la utilizaci&oacute;n de biofertilizantes ha sido exitosa y se han podido emplear como alternativa a la fertilizaci&oacute;n   tradicional.   Seg&uacute;n  lo  reportado  por Wakelin <i>et  al</i>.  (2004)  en  un  estudio  realizado en Australia,  la  utilizaci&oacute;n  de  inoculantes  a  base  de <i>Penicillium bilaiae </i>y <i>Penicillium radicum </i>ha mostrado efectos ben&eacute;ficos en  los  cultivos.  En  Canad&aacute;,  un biofertilizante a base del hongo <i>Penicillium bilaiae </i>que se registr&oacute; en 1990 para ser utilizado en trigo, fue inicialmente probado  en unas pocas hect&aacute;reas con buenos resultados y en 2002, aproximadamente un mill&oacute;n de hect&aacute;reas sembradas con los  principales cultivos de Canad&aacute; utilizaban ese biofertilizante (Pati&ntilde;o, 2010).  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Finalmente, en Colombia se comercializa un bioinsumo producto  de  la  investigaci&oacute;n  que  se  realiza  sobre microorganismos   solubilizadores de  fosfatos en  el Instituto de Biotecnolog&iacute;a de la Universidad Nacional de Colombia sede Bogot&aacute;, cuyo ingrediente activo es <i>Penicillium  janthinellum</i>; este producto est&aacute; dirigido especialmente al cultivo del arroz, y produce incrementos del rendimiento entre 5% y 38% con respecto a cultivos no inoculados (Moreno <i>et al</i>., 2007).</p> &nbsp;     <p><font size="3"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>      <p>El incremento de la contaminaci&oacute;n ambiental espec&iacute;ficamente  de  suelos se debe, en  gran  medida,  a  la aplicaci&oacute;n de fertilizantes sint&eacute;ticos, que si bien se utilizan para incrementar el rendimiento de cosechas en suelos con deficiencias nutricionales, su presencia tiene efectos residuales como la acumulaci&oacute;n de metales pesados y la eutroficaci&oacute;n de los cuerpos de agua que son fen&oacute;menos que pueden perjudicar la salud de los organismos vivos asociados.  </p>     <p>Debido a la importancia del suelo como recurso, pues es el sustrato para el establecimiento de cultivos agron&oacute;micos a gran escala, preservar su calidad es una necesidad apremiante. Dentro de las estrategias para conseguir este prop&oacute;sito es urgente implementar pr&aacute;cticas agr&iacute;colas amigables con el medio ambiente, como programas de fertilizaci&oacute;n que incluyan el uso de insumos biol&oacute;gicos o biofertilizantes. Estas enmiendas microbianas pueden fabricarse a base de algunos microorganismos promotores de  crecimiento  vegetal, como los  microorganismos solubilizadores de fosfato.  </p>     <p>Dada la importancia de estos insumos biol&oacute;gicos por la reducci&oacute;n de los costos de producci&oacute;n y la disminuci&oacute;n de la contaminaci&oacute;n ambiental, es evidente que la investigaci&oacute;n en este campo es promisoria.</p> &nbsp;     <p><font size="3"><b>REFERENCIAS</b></font></p>     <!-- ref --><p>Achal V, Savant V, Reddy M. 2007. Phosphate solubilization by a wild type strain and UV-induced mutants of <i>Aspergillus tubugensis</i>, Soil. Biol. Biochem. 39:695-699.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0122-8706201400010000900001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Ahmad  F, Ahmad  I,  Khan M.  2008.  Screening of free-living rhizobacteria for their multiple plant growth promoting activities. Microbiol. Res. 163:173-181.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0122-8706201400010000900002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Babu-Khan S, Chia  Yeo T, Martin  W, Duron R, Goldstein, A. 1995.  Cloning  a  mineral  phosphate-solubilizing gene from <i>Pseudomonas cepacia</i>.  Applied and environmental microbiology 61(3):972-978.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0122-8706201400010000900003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Banerjee S, Palit R, Sengupta C, Standing, D. 2010. Stress induced phosphate solubilization by <i>Arthrobacter </i>sp. and <i>Bacillus </i>sp. Isolated from tomato  rhizosphere. Australian Journal of crop science 4(6):378-383.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0122-8706201400010000900004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Banik S, Dey B. 1983. Available phosphate content of an alluvial soil as influenced by inoculation of some isolated phosphate-solubilizing microorganisms. Plant and Soil. 69: 353-364.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0122-8706201400010000900005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Barroso C,  Nahas E. 2005. The status of soil phosphate fractions and the ability of fungi to dissolve hardly soluble phosphates. Applied Soil Ecolog y 29: 73-83.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0122-8706201400010000900006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Baziramakenga R, Simard R, Leroux G. 1995. Determination of organic acids in soil extracts by ion chromatography. Soil. Biol. Biochem. 27(3): 349-356.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0122-8706201400010000900007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Beare M, Reddy M, Tian  G, Srivastava S. 1997. Agricultural intensification, soil biodiversity and Agroecosystem function in the tropics: the role of descomposer biota. App. Soil. Ecol 6: 87-108.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0122-8706201400010000900008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Beltr&aacute;n M. 2009. Evaluaci&oacute;n del efecto del sistema de producci&oacute;n del cultivo del arroz (secano e inundado) sobre la poblaci&oacute;n microbiana y la actividad enzim&aacute;tica asociada al metabolismo ed&aacute;fico del f&oacute;sforo (tesis de Maestr&iacute;a en Ciencias-Microbiolog&iacute;a). Facultad de Ciencias. Universidad Nacional de Colombia sede Bogot&aacute;    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0122-8706201400010000900009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->.</p>     <!-- ref --><p>Bobadilla C, Rinc&oacute;n S. 2008. Aislamiento y producci&oacute;n de bacterias fosfato solubilizadoras a partir de compost obtenido a partir de residuos de plaza (tesis  de  grado Microbiolog&iacute;a Industrial). Pontificia Universidad Javeriana. Bogot&aacute;    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0122-8706201400010000900010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->.</p>     <!-- ref --><p>Chaiharn M, Lumyong S. 2009. Phosphate solubilization potential and stress tolerance of rhizobacteria from rice soil in Northern Thailand. W J Microbiol Biotechnol 25: 305-314.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0122-8706201400010000900011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Chakraborty B, Chakraborty U, Sha A, Sunar K, Dey P. 2010. Evaluation of phosphate solubilizers from soils of North bengal and their diversity analysis. World Journal of Agricultural Sciences 6(2):195-200.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0122-8706201400010000900012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Chandra S, Choure K, Chaubey R, Maheshwari D. 2007. Rhizosphere competent <i>Mesorhizobium </i>loti MP6 induces root hair curling, inhibits <i>Sclerotina   sclerotiorum </i>and   enhances  growth  of Indian  mustard  (<i>Brassica   campestris</i>).  Br.  J.  Microbiol.  38: 124-130.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0122-8706201400010000900013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Chen G, He Z, Huang C. 2000. Microbial biomass phosphorus and its significance in predicting phosphorus availability in red soils. Commun. Soil. Sci. Plant Anal. 31:655-667.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0122-8706201400010000900014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Chen Y, Rekha A, Arun A, Shen F, Lai W, Young C. 2006. Phosphate solubilizing bacteria from subtropical soil and their tricalcium phosphate solubilizing abilities. Applied Soil Ecolog y 34: 33-41.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0122-8706201400010000900015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Chung H, Park M, Madhaiyan M, Seshadri S, Song J, Cho H, Sa T. 2005. Isolation and characterization of phosphate solubilizing bacteria from the rhizosphere of crop plants of Korea. Soil. Biol. Biochem. 37:1970-1974.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0122-8706201400010000900016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Cooper R. 1959. Bacterial fertilizers in Soviet Union. Soils fertility 22: 327-333.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0122-8706201400010000900017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Coutinho F, De Queiroz Cavalcanti M, Mayumi A. 2011.Phosphate-solubilizing fungi isolated from a semiarid area cultivated with melon (<i>Cucumis melo </i>L. cv. gold mine) Acta Bot&aacute;nica Brasilica 25(4): 929-931.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0122-8706201400010000900018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Coyne M. 2000. Microbiolog&iacute;a del suelo: un enfoque exploratorio. Madrid: Editorial panamericana, p 180 - 185.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0122-8706201400010000900019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Datta M, Palit R, Sengupta C, Kumar M, Banerjee S. 2011. Plant growth promoting rhizobacteria enhance growth and yield of Chilli (<i>Capsicum annuum </i>L.) under ï¬eld conditions. Australian Journal of Crop Science 5:531-536.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0122-8706201400010000900020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Da Silva P, Vahas E. 2002. Bacterial diversity on soil in response to different plants, phosphate and liming. Brazilian Journal of Microbiolog y. 33: 304-310.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0122-8706201400010000900021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>De Freitas J, Banerjee M, Germida J. 1997. Phosphate-solubilizing rhizobacteria enhance the growth and yield but not phosphorus uptake of canola (<i>Brassica napus </i>L.) Biolog y Fertility Soils 24: 358-364.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0122-8706201400010000900022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Fankem H, Nwaga D, Deubel A, Dieng W, Merbach W. 2006. Occurrence and functioning of phosphate solubilizing microorganisms from oil palm tree (<i>Elaeis  guineensis</i>) rhizosphere in Cameroon. African Journal of Biotechnolog y 5 (24): 2450-2460.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0122-8706201400010000900023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Fern&aacute;ndez L, Zalba P, G&oacute;mez M. 2005. Bacterias solubilizadoras de fosfato inorg&aacute;nico aisladas de suelos de la regi&oacute;n sojera.CI. Suelo (Argentina) 23 (1):31-37.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S0122-8706201400010000900024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Goldstein A, Liu S. 1987. Molecular cloning and regulation of a mineral phosphate solubilizing gene from <i>Erwinia  herbicola</i>. Biotechnolog y 5:72-74.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000147&pid=S0122-8706201400010000900025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Goldstein A, Rogers D, Mead G. 1993. Separating phosphate from via bioprocessing. Biotechnolog y 11:1250-1254.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S0122-8706201400010000900026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>G&oacute;mez Y,  Zabala  M.  2001.  Determinaci&oacute;n  de  la  capacidad solubilizadora del P en hongos aislados de la riz&oacute;sfera del man&iacute; (<i>Arachis hypogaea </i>L.) Saber. Universidad de Oriente, Venezuela 13(1):8-13.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000151&pid=S0122-8706201400010000900027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Goosen N,  Horsman  H,  Huinen  R,  Van  de  Putte  P.  1989. Acinetobacter calcoaceticus genes involved in biosynthesis of the coenzyme pyrrolo-quinoline-quinone: nucleotide sequence and expression in <i>Escherichia coli </i>K-12. J. Bacteriol.171:447-455.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000153&pid=S0122-8706201400010000900028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Guang-Can T, Shu-tun T, Miao-Ying C, Guang-hui. 2008. Phosphate solubilizing and mineralizing abilities of bacteria isolated from soils. Pedosphere 18(4):515-523.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000155&pid=S0122-8706201400010000900029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Gyaneshwar P, Naresh G, Kumar L, Parekh J, Poole P. 2002. Role of soil microorganisms in improving P nutrition of plants. Plant and Soil 245: 83-93.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000157&pid=S0122-8706201400010000900030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Herrera J. 1997. El uso de biofertilizantes en la agricultura cubana. Centro de investigaciones microbiol&oacute;gicas. La Habana. Cuba.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000159&pid=S0122-8706201400010000900031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>Illmer P, Schinner F. 1995. Solubilization of inorganic calcium phosphates-solubilization mechanisms. Soil.  Biol.  Biochem. 27(3): 257-263.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000161&pid=S0122-8706201400010000900032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Jorquera M, Hern&aacute;ndez M, Rengel Z, Marschner P, Mora M. 2008. Isolation of culturable  phosphobacteria with  both  phytate-mineralization and phosphate-solubilization activity from the rhizosphere of plants grown in a volcanic soil. Soil Biology Fertility Soils 44: 1025-1034.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000163&pid=S0122-8706201400010000900033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Khan M, Zaidi A, Wani P. 2007. Role of phosphate solubilizing microorganisms in agriculture- a review. Agron. Sustain. Dev. 27:29-43.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000165&pid=S0122-8706201400010000900034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Kucey R. 1983. Phosphate-solubilizing bacteria and fungi in various cultivated and virgin Alberta soils. Canadian Journal Soil Science 63: 671-678.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000167&pid=S0122-8706201400010000900035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Kucey R, Jenzen H, Leggett M. 1989. Microbially mediated increases in plant available phosphorus. Adv. Agron. 42: 199-228.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000169&pid=S0122-8706201400010000900036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Lara C, Esquivel L, Negrete J. 2011. Bacterias nativas solubilizadoras de fosfato para incrementar los cultivos en el departamento de C&oacute;rdoba-Colombia. Biotecnolog&iacute;a en el sector agropecuario y agroindustrial 9(2): 114-120.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000171&pid=S0122-8706201400010000900037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Liu S, Lee L, Tai C, Hung C, Chang Y, Wolfram J, Rogers R, Golds- tein A.1992. Cloning of an <i>Erwinia  herbicola </i>gene necessary for gluconic acid production and enhanced mineral phosphate solubilization in <i>Escherichia coli </i>HB101: nucleotide sequence and probable involvement in biosynthesis of coenzyme pyrrolo-quinoline quinone. Journal of Bacteriolog y 174(18): 5814-5819.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000173&pid=S0122-8706201400010000900038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Menkina R. 1963. Bacterial fertilizers and their importance for agricultural plants. Microbiolog y 33: 352-358.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000175&pid=S0122-8706201400010000900039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Moratto C, Mart&iacute;nez L, Valencia H, S&aacute;nchez J. 2005. Efecto del uso del suelo sobre hongos solubilizadores de fosfato y bacterias diazotr&oacute;ficas en  el   p&aacute;ramo  de  Guerrero  (Cundinamarca). Agronom&iacute;a colombiana 23(2): 299-309.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000177&pid=S0122-8706201400010000900040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Moreno N, Moreno L, Uribe D. 2007.  Biofertilizantes para la agricultura en Colombia. En: Izaguirre Mayoral M, Labandera C,  Sanju&aacute;n J. (eds.)  Biofertilizantes en Iberoam&eacute;rica: Visi&oacute;n t&eacute;cnica, Cient&iacute;fica y Empresarial vol. 1. Denad Internacional, Montevideo, p 38-45.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000179&pid=S0122-8706201400010000900041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Muleta D, Assefa F, B&ouml;rjessoon E, Granhall U. 2013. Phosphate-solubilising rhizobacteria associated with <i>Coffea  arabica </i>L. in natural coffee forests of southwestern Ethiopia. Journal of the Saudi Society of Agricultural Sciences (12):73-84.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000181&pid=S0122-8706201400010000900042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Naik P, Raman G, Narayanan K, Natarajan N. 2008. Assesment of genetic and functional diversity of phosphate solubilizing fluorescent pseudomonads isolated from rhizospheric soil. BCM Microbiolog y (8)230:1-14.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000183&pid=S0122-8706201400010000900043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Oberson A, Friesen D, Rao I, B&uuml;hler S, Frossard E. 2001. Phosphorus transformations in an oxisol under contrasting land-use systems: The role of the microbial biomass. Plant and Soil (237):197-210.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000185&pid=S0122-8706201400010000900044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p> Oliviera C, Alves V, Marriel I, G&oacute;mez E, Scotti M, Carneiro M, Guimaraes M, Schaffert R, Sa N. 2008. Phosphate solubilizing microorganisms isolated from rhizosphere of maize cultivated in an oxisol of the Brazilian Cerrado Biome. Soil. Biol. Biochem. 41: 1782-1787.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000187&pid=S0122-8706201400010000900045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Oviedo M, Iglesias M. 2005. Utilizaci&oacute;n de bacterias solubilizadoras de fosfato en cultivo de raygras. Resumen A053. Comunicaciones cient&iacute;ficas y tecnol&oacute;gicas.  Universidad Nacional del Nordeste. Argentina. 3 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000189&pid=S0122-8706201400010000900046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Pandey A, Trivedi P, Kumar B, Palni L. 2006. Characterization of a phosphate solubilizing and antagonistic strain of <i>Pseudomonas putida </i>(BO) isolated from a sub-Alpine location in the Indian Central Himalaya. Current Microbiolog y 53: 102-107.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000191&pid=S0122-8706201400010000900047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Paredes M, Espinosa D. 2010. &Aacute;cidos org&aacute;nicos producidos por rizobacterias que solubilizan fosfatos: una revisi&oacute;n cr&iacute;tica. Terra Latinoamericana. 28(1): 61-70.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000193&pid=S0122-8706201400010000900048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Pati&ntilde;o  C.  2010.  Solubilizaci&oacute;n  de  fosfatos por  poblaciones bacterianas aisladas de un suelo del Valle del cauca. Estudio de biodiversidad y eficiencia (tesis doctoral en Ciencias Agropecuarias - Manejo de Suelos y Aguas). Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad Nacional de Colombia sede Palmira.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000195&pid=S0122-8706201400010000900049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Paul N, Sundara W.  1971. Phosphate-dissolving bacteria in the rhizosphere of some cultivated legumes. Plant and Soil 35: 127-132.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000197&pid=S0122-8706201400010000900050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --> P&eacute;rez A, De la ossa J, Montes D. 2012. Hongos solubilizadores de fosfatos en fincas ganaderas del departamento de Sucre. Rev. Colombiana Cienc. Anim. 4(1):35-45.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000198&pid=S0122-8706201400010000900051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>P&eacute;rez E, Sulbaran M,  Ball M,  Yarzabal L. 2007.  Isolation and characterization  of  mineral  phosphate-solubilizing  bacteria naturally  colonizing a  limonitic  crust  in  the  south-eastern Venezuelan region. Soil. Biol. Biochem 39: 2905-2914.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000200&pid=S0122-8706201400010000900052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Picone L, Zamuner E. 2002. F&oacute;sforo org&aacute;nico y fertilidad fosf&oacute;rica. Informaciones agron&oacute;micas del cono sur 16: 11-15.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000202&pid=S0122-8706201400010000900053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Pikovskaya R. 1948. Mobilization of phosphorus in soil in connection with vital activity of some microbial species. Mikrobiologiya 17: 362-370.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000204&pid=S0122-8706201400010000900054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Ponmurugan P, Gopi C. 2006. <i>In vitro </i>production of growth regulators and phosphatase activity by phosphate solubilizing bacteria. Afr. J. Biotechnol. 5:348-350.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000206&pid=S0122-8706201400010000900055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Prashar P, Kapoor N, Sachdeva S. 2012. Structural and functional diversity of Rhizobacteria of pearl millet in Semi-arid Agroclimatic Zone. Asian Journal of Plant Science and Research 2 (5):599-606.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000208&pid=S0122-8706201400010000900056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Richardson A. 2001. Prospects for using soil microorganisms to improve the acquisition of phosphorus by plants. Australian Journal of Plant Physiolog y 28:897-906.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000210&pid=S0122-8706201400010000900057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Rodr&iacute;guez H, Fraga R. 1999. Phosphate solubilizing bacteria and their role in plant growth promotion. Research review paper. Biotechnolog y Advances 17: 319-339.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000212&pid=S0122-8706201400010000900058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Rodr&iacute;guez H, Gonz&aacute;lez T, Selman G. 2000. Expression of a mineral phosphate solubilizing gene from <i>Erwinia   herbicola </i>in  two rhizobacterial strains. Journal of Biotechnolog y 84: 155-161.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000214&pid=S0122-8706201400010000900059&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Rodriguez H, Fraga R, Gonz&aacute;lez T, Bashan Y. 2006. Genetics of phosphate solubilization and its potential applications for improving plant  growth-promoting bacteria. Plant  and  Soil 287:15-21.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000216&pid=S0122-8706201400010000900060&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Rooney D, Clipson N. 2009. Phosphate addition and plant species alters microbial community structure in acidic upland grassland soil. Microb. Ecol. 57: 4-13.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000218&pid=S0122-8706201400010000900061&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Rosas  S,  Rovera  M,  Correa  J.  2006.  Phosphate-solubilizing <i>Pseudomonas putida </i>can influence the rhizobia-legume simbiosis. Soil. Biol. Biochem. 38: 3502-3505.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000220&pid=S0122-8706201400010000900062&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Rubio G. 2002. Conectando el f&oacute;sforo del suelo con la planta. Informaciones agron&oacute;micas del cono sur 16: 19:23.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000222&pid=S0122-8706201400010000900063&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Scervino M, Prieto M, Ivana M, Recchi M, Sarmiento N, Godeas A. 2010. Soil fungal isolates produce different organic acid patterns involved in  phosphate salts solubilization. Biol. Fertil Soils. 46:755-763.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000224&pid=S0122-8706201400010000900064&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Son H, Park G, Cha M, Heo M. 2006. Solubilization of insoluble inorganic phosphates by a novel salt- and pH tolerant <i>Pantoea agglomerans </i>R-42 isolated from soybean rhizosphere. Bioresour. Technol. 97:204-210.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000226&pid=S0122-8706201400010000900065&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Sylvia M, Fuhrmann J, Hartel P, Zuberer D. 1995. Principles and applications on soil microbiolog y. Second Edition. Prentice Hall. New Jersey.640 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000228&pid=S0122-8706201400010000900066&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Torres M,  Lizarazo L. 2006.  Evaluaci&oacute;n de grupos funcionales (C,N,P) y actividad de la fosfatasa &aacute;cida en dos suelos agr&iacute;colas del departamento de Boyac&aacute;, Colombia. Agronom&iacute;a Colombiana 24(2): 317- 325.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000230&pid=S0122-8706201400010000900067&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Urbanek A. 1987. Technical report concerning phosphate fertilizers production from Tachira State rocks phosphate in Venezuela. Warsaw technical Univ. Varsobia. Polonia.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000232&pid=S0122-8706201400010000900068&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Valero N. 2003. Potencial biofertilizante de bacterias diazotr&oacute;ficas y solubilizadoras de fosfato asociadas al cultivo de arroz (<i>Oriza sativa</i>) (tesis de Maestr&iacute;a en Ciencias - Microbiolog&iacute;a). Universidad Nacional de Colombia sede Bogot&aacute;    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000234&pid=S0122-8706201400010000900069&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->.</p>     <!-- ref --><p>Vera  D,  Valencia  H,  P&eacute;rez H.  2002.  Aislamiento  de  hongos solubilizadores de fosfatos de la riz&oacute;sfera de araz&aacute; (<i>Eugenia stipitata</i>, myrtaceae). Acta Biol&oacute;gica Colombiana 7(1):33-40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000236&pid=S0122-8706201400010000900070&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Wakelin  S,  Warren  A,  Harvey R,  Ryder H.  2004.  Phosphate solubilization by <i>Penicillium </i>sp. closely associated with wheat roots. Biol. Fert. Soils (40):36-43.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000238&pid=S0122-8706201400010000900071&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Xiao C, Chi R, Li X, Xia M, Xia Z. 2011. Biosolubilization of rock phosphate by three stress-tolerant fungal strains. Appl. Biochem. Biotechnol. (165):719-727.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000240&pid=S0122-8706201400010000900072&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p> </font>      ]]></body><back>
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