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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Capacidad predadora in vitro de hongos nematófagos nativos de Cundinamarca sobre nematodos gastrointestinales de bovinos]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Dependence and indiscriminate use of chemical anthelmintics as the sole method for controlling gastrointestinal nematodes (GIN) of cattle causes problems in the environment, public health, and the productivity of cattle. It is important to develop non-chemical control strategies. Nematophagous fungi can be a viable and promising alternative for the control of these endoparasites. This study aimed to isolate, identify and evaluate in vitro the potential of nematophagous fungi from Cundinamarca on L3 larvae of gastrointestinal nematodes of cattle. 60 soil samples from cattle ranches were sown in Petri boxes containing agar-water for trapping fungi, and three strains of the fungus Arthrobotrys oligospora (L1, XVIII, and XXI) and one of Arthrobotrys musiformis (XXIV) were identified by morphometric keys. 1 x 10(6) conidia or chlamydospores of each fungi were used, which faced 100 nematode larvae. Isolate XXIV (A. musiformis) showed greater predatory capacity (96.8%) than isolates (A. olígospora) XVIII, LI, and XXI (69.68, 71.1, and 87.62%, respectively). There were no statistically significant differences (p > 0.05) among the strains with more predatory capacity. This is the first record of in vitro identification and evaluation of the predatory capacity of A. olígospora and A. musiformis, native fungi from Cundinamarca. The results suggest that these fungi could be used as biocontrol agents of nematodes in cattle.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[A dependência e o uso indiscriminado de anti-helmínticos químicos como único método de controle dos nematódeos gastrointestinais (NGI) de bovinos ocasionam problemas no meio ambiente, a saúde pública e a produtividade da pecuária bovina. É necessário desenvolver estratégias não químicas de controle. Os fungos nematófagos podem ser uma alternativa viável e promissória para o controle destes endoparasitas. O objetivo deste estudo foi isolar; identificar e avaliar in vitro o potencial nematófago de fungos de Cundinamarca sobre larvas L3 de NGI de bovinos. Foram semeadas 60 amostras de solo de fazendas de gado em placas de Petri com ágar-água para a armadilhagem dos fungos, e se identificaram através de chaves morfométricas três cepas do fungo Arthrobotrys oligospora (L1, XVIII e XXI) e uma de Arthrobotrys musiformis (XXIV). Utilizaram-se 1 x 10(6) conidios ou clamidósporos de cada fungo, os quais se enfrentaram a 100 larvas de nematódeos. O isolamento XXIV (A. musiformis) demonstrou maior capacidade predadora (96,8 %) que os isolamentos (A. oligospora) XVIII, L1 e XXI (69, 68, 71,1 e 87,62 %, respectivamente). No houve diferenças estatisticamente significativas (p > 0,05) entre as cepas de maior capacidade predadora. Este é o primeiro registro de identificação e avaliação in vitro da capacidade predadora dos fungos A. oligospora e A. musiformis nativos de Cundinamarca. Os resultados sugerem que estes fungos poderiam empregar-se como agentes bio controladores de nematódeos de bovinos.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <a name="Inicio"></a>  <font face="verdana" size="2">      <br>    <p align="center"><font size="4"><b>Capacidad predadora <i>in vitro </i>de hongos nemat&oacute;fagos nativos de Cundinamarca sobre nematodos gastrointestinales de bovinos</b></font></p> <font size="3">     <p align="center"><b>Predatory Capacity <i>in vitro </i>of Native Nematophagous Fungi from Cundinamarca on Gastrointestinal Nematodes of Cattle</b></p>      <p align="center"><b>Capacidade predadora <i>in vitro </i>de fungos nemat&oacute;fagos nativos de Cundinamarca sobre nemat&oacute;deos gastrointestinais de bovinos</b></p> </font>     <p align="justify">Dildo M&aacute;rquez Lara<a name="nota1"></a><a href="#nota_1"><sup>1</sup></a> / Roc&iacute;o Esperanza Pati&ntilde;o Burbano<a name="nota2"></a><a href="#nota_2"><sup>2</sup></a> / Jaime Andr&eacute;s Cubides C&aacute;rdenas<a name="nota3"></a><a href="#nota_3"><sup>3</sup></a> / Karina Montero Acero<a name="nota4"></a><a href="#nota_4"><sup>4</sup></a> / Diego D&iacute;az Sabogal<a name="nota5"></a><a href="#nota_5"><sup>5</sup></a> / Yonattan G&oacute;mez S&aacute;nchez<a name="nota6"></a><a href="#nota_6"><sup>6</sup></a></p>      <p align="justify"><a name="nota_1"></a><a href="#nota1"><sup>1</sup></a> M&eacute;dico veterinario. MSc. Corporaci&oacute;n Colombiana de Investigaci&oacute;n Agropecuaria (Corpoica), Grupo de Salud Animal, Bogot&aacute;, Colombia.     <br><a href="mailto:dmarquez@corpoica.org.co">dmarquez@corpoica.org.co</a></p>      <p align="justify"><a name="nota_2"></a><a href="#nota2"><sup>2</sup></a> Bacteri&oacute;loga y laboratorista cl&iacute;nica. MSc. Corporaci&oacute;n Colombiana de Investigaci&oacute;n Agropecuaria (Corpoica), Grupo de Salud Animal, Bogot&aacute;, Colombia.    <br><a href="mailto:rpatino@corpoica.org.co">rpatino@corpoica.org.co</a></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><a name="nota_3"></a><a href="#nota3"><sup>3</sup></a> M&eacute;dico veterinario. Corporaci&oacute;n Colombiana de Investigaci&oacute;n Agropecuaria (Corpoica), Grupo de Salud Animal, Bogot&aacute;.    <br><a href="mailto:jcubides@corpoica.org.co">jcubides@corpoica.org.co</a></p>      <p align="justify"><a name="nota_4"></a><a href="#nota4"><sup>4</sup></a> Bacteri&oacute;loga y laboratorista cl&iacute;nica. Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca, Bogot&aacute;, Colombia.     <br><a href="mailto:emontero@corpoica.org.co">emontero@corpoica.org.co</a></p>      <p align="justify"><a name="nota_5"></a><a href="#nota5"><sup>5</sup></a> M&eacute;dico veterinario, Universidad de La Salle, Bogot&aacute;, Colombia.    <br><a href="mailto:goblin_899@hotmail.com">goblin_899@hotmail.com&ccedil;</a></p>      <p align="justify"><a name="nota_6"></a><a href="#nota6"><sup>6</sup></a> M&eacute;dico veterinario, Universidad de La Salle, Bogot&aacute;, Colombia.    <br><a href="mailto:cubef%c3%admanic@hotmail.com">cubef&iacute;manic@hotmail.com</a></p>      <p align="justify"><b>Recibido</b>: 11 de abril de 2015 / <b>Aceptado</b>: 30 de mayo de 2015</p>      <p align="justify">C&oacute;mo citar este art&iacute;culo: M&aacute;rquez Lara D, Pati&ntilde;o Burbano RE, Cubides C&aacute;rdenas JA, Montero Acero K , D&iacute;az Sabogal D, G&oacute;mez S&aacute;nchez Y. Capacidad predadora <i>in vitro </i>de hongos nemat&oacute;fagos nativos de Cundinamarca sobre nematodos gastrointestinales de bovinos. Rev Med Vet. 2015;(31):47-55.</p>  <hr>  <font size=3>     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>    <p align="justify"><b>Resumen</b></p></font>      <p align="justify">La dependencia y el uso indiscriminado de antihelm&iacute;nticos qu&iacute;micos como &uacute;nico m&eacute;todo de control de los nematodos gastrointestinales (NGI) de bovinos ocasiona problemas en el medio ambiente, la salud p&uacute;blica y la productividad de la ganader&iacute;a bovina. Es necesario desarrollar estrategias no qu&iacute;micas de control. Los hongos nemat&oacute;fagos pueden ser una alternativa viable y promisoria para el control de estos endopar&aacute;sitos. El objetivo de este estudio fue aislar, identificar y evaluar <i>in vitro </i>el potencial nemat&oacute;fago de hongos de Cundinamarca sobre larvas L3 de NGI de bovinos. Se sembraron 60 muestras de suelo de fincas ganaderas en cajas de Petri con medio agar-agua para el atrapamiento de los hongos, y se identificaron mediante claves morfom&eacute;tricas tres cepas del hongo <i>Arthrobotrys oligospora </i>(L1, XVIII y XXI) y una de <i>Arthrobotrys musiformis </i>(XXIV). Se utilizaron 1 x 10<sup>6</sup> conidios o clamidosporas de cada hongo, los cuales se enfrentaron a 100 larvas de nematodos. El aislamiento XXIV (<i>A. musiformis) </i>demostr&oacute; mayor capacidad predadora (96,8 %) que los aislamientos <i>(A. oligospora) </i>XVIII, L1 y XXI (69, 68, 71,1 y 87,62 %, respectivamente). No hubo diferencias estad&iacute;sticamente significativas (p &gt; 0,05) entre las cepas de mayor capacidad predadora. Este es el primer registro de identificaci&oacute;n y evaluaci&oacute;n <i>in vitro </i>de la capacidad predadora de los hongos <i>A. oligospora </i>y <i>A. musiformis </i>nativos de Cundinamarca. Los resultados sugieren que estos hongos podr&iacute;an emplearse como agentes biocontroladores de nematodos de bovinos.</p>      <p align="justify"><b>Palabras clave: </b><i>Arthrobotrys oligospora, A. musiformis, </i>bovinos, control sustentable, nematodos gastrointestinales.</p>  <hr>  <font size=3>     <br>    <p align="justify"><b>Abstract</b></p> </font>      <p align="justify">Dependence and indiscriminate use of chemical anthelmintics as the sole method for controlling gastrointestinal nematodes (GIN) of cattle causes problems in the environment, public health, and the productivity of cattle. It is important to develop non-chemical control strategies. Nematophagous fungi can be a viable and promising alternative for the control of these endoparasites. This study aimed to isolate, identify and evaluate <i>in vitro </i>the potential of nematophagous fungi from Cundinamarca on L3 larvae of gastrointestinal nematodes of cattle. 60 soil samples from cattle ranches were sown in Petri boxes containing agar-water for trapping fungi, and three strains of the fungus <i>Arthrobotrys oligospora </i>(L1, XVIII, and XXI) and one of <i>Arthrobotrys musiformis </i>(XXIV) were identified by morphometric keys. 1 x 10<sup>6</sup> conidia or chlamydospores of each fungi were used, which faced 100 nematode larvae. Isolate XXIV (<i>A. musiformis) </i>showed greater predatory capacity (96.8%) than isolates <i>(A. ol&iacute;gospora) </i>XVIII, LI, and XXI (69.68, 71.1, and 87.62%, respectively). There were no statistically significant differences (p &gt; 0.05) among the strains with more predatory capacity. This is the first record of <i>in vitro </i>identification and evaluation of the predatory capacity of <i>A. ol&iacute;gospora </i>and <i>A. musiformis, </i>native fungi from Cundinamarca. The results suggest that these fungi could be used as biocontrol agents of nematodes in cattle.</p>  </font>    <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Keywords: </b><i>Arthrobotrys oligospora, Arthrobotrys musiformis, </i>cattle, sustainable control, gastrointestinal nematodes.</font></p>  <font face="verdana" size="2"><hr>  <font size=3>     <br>    <p align="justify"><b>Resumo</b></p> </font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">A depend&ecirc;ncia e o uso indiscriminado de anti-helm&iacute;nticos qu&iacute;micos como &uacute;nico m&eacute;todo de controle dos nemat&oacute;deos gastrointestinais (NGI) de bovinos ocasionam problemas no meio ambiente, a sa&uacute;de p&uacute;blica e a produtividade da pecu&aacute;ria bovina. &Eacute; necess&aacute;rio desenvolver estrat&eacute;gias n&atilde;o qu&iacute;micas de controle. Os fungos nemat&oacute;fagos podem ser uma alternativa vi&aacute;vel e promiss&oacute;ria para o controle destes endoparasitas. O objetivo deste estudo foi isolar; identificar e avaliar <i>in vitro </i>o potencial nemat&oacute;fago de fungos de Cundinamarca sobre larvas L3 de NGI de bovinos. Foram semeadas 60 amostras de solo de fazendas de gado em placas de Petri com &aacute;gar-&aacute;gua para a armadilhagem dos fungos, e se identificaram atrav&eacute;s de chaves morfom&eacute;tricas tr&ecirc;s cepas do fungo <i>Arthrobotrys oligospora </i>(L1, XVIII e XXI) e uma de <i>Arthrobotrys musiformis </i>(XXIV). Utilizaram-se 1 x 10<sup>6</sup> conidios ou clamid&oacute;sporos de cada fungo, os quais se enfrentaram a 100 larvas de nemat&oacute;deos. O isolamento XXIV (<i>A. musiformis) </i>demonstrou maior capacidade predadora (96,8 %) que os isolamentos <i>(A. oligospora) </i>XVIII, L1 e XXI (69, 68, 71,1 e 87,62 %, respectivamente). No houve diferen&ccedil;as estatisticamente significativas (p &gt; 0,05) entre as cepas de maior capacidade predadora. Este &eacute; o primeiro registro de identifica&ccedil;&atilde;o e avalia&ccedil;&atilde;o <i>in vitro </i>da capacidade predadora dos fungos <i>A. oligospora e A. musiformis </i>nativos de Cundinamarca. Os resultados sugerem que estes fungos poderiam empregar-se como agentes bio controladores de nemat&oacute;deos de bovinos.</p>      <p align="justify"><b>Palavras chave: </b><i>Arthrobotrys oligospora, Arthrobotrys musiformis, </i>bovinos, controle sustent&aacute;vel, nemat&oacute;deos gastrointestinais.</p>  <hr>  <font size=3>     <br>    <p align="justify"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p> </font>      <p align="justify">Los nematodos gastrointestinales (NGI) de bovinos constituyen una amenaza permanente para los ganaderos, dadas las p&eacute;rdidas econ&oacute;micas que estos par&aacute;sitos ocasionan en los sistemas de producci&oacute;n ganaderos (1). El uso de compuestos qu&iacute;micos ha sido la base para el control de los par&aacute;sitos del ganado. Sin embargo, el uso prolongado e inapropiado de antihelm&iacute;nticos qu&iacute;micos ha tra&iacute;do consigo problemas como: desarrollo de resistencia de estos endopar&aacute;sitos a las mol&eacute;culas qu&iacute;micas empleadas, impacto ambiental negativo y residuos de antiparasitarios en los alimentos derivados de los bovinos (2). Por tales razones, este tipo de control es insostenible ambiental, econ&oacute;mica y socialmente.</p>      <p align="justify">La problem&aacute;tica derivada del control qu&iacute;mico impuso la necesidad de cambiar el paradigma del control convencional por enfoques y pr&aacute;cticas de control sustentable, para lo cual el desarrollo y la aplicaci&oacute;n de estrategias no qu&iacute;micas de control constituye la principal recomendaci&oacute;n en la actualidad, en el contexto mundial (3). Hoy en d&iacute;a, la investigaci&oacute;n en el mundo est&aacute; focalizada en el desarrollo de estrategias basadas en el uso de plantas bioactivas (fitoterapia), el uso de animales resistentes o resilentes a los par&aacute;sitos (resistencia gen&eacute;tica) y el control biol&oacute;gico, mediante el empleo de hongos nemat&oacute;fagos (4).</p>      <p align="justify">El uso de hongos nemat&oacute;fagos se considera la alternativa m&aacute;s promisoria para el control de NGI en rumiantes (5,6), debido a que poseen algunas ventajas, entre las que se destacan: ciclo de vida corto; alta capacidad reproductiva; producci&oacute;n de esporas de resistencia y sobrevivencia en la fase saprof&iacute;tica en ausencia de hospedadores; no son pat&oacute;genos para los seres humanos y reducen las poblaciones parasitarias, en vez de eliminarlas, lo cual constituye un est&iacute;mulo inmunol&oacute;gico permanente en los animales.</p>      <p align="justify">Estos microrganismos rompen el ciclo de vida de los NGI al atrapar los estados infectivos de estos par&aacute;sitos en las heces de los bovinos o en el suelo (7), por medio de trampas de captura para posteriormente destruirlos y nutrirse de sus tejidos (8). De esta manera, disminuyen las cargas de larvas L3 en las praderas y, por tanto, reducen la contaminaci&oacute;n y la infecci&oacute;n de las pasturas y de los animales durante el pastoreo (9).</p>      <p align="justify">El objetivo del presente estudio fue aislar, identificar y determinar la capacidad predadora <i>in vitro </i>de dos hongos nemat&oacute;fagos nativos de Colombia sobre las larvas infectivas L3 de nematodos gastrointestinales.</p>  <font size=3>     <br>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></p>      <p align="justify"><b>Aislamiento e identificaci&oacute;n de hongos nemat&oacute;fagos</b></p> </font>      <p align="justify">Se colectaron 60 muestras de heces de bovinos y suelos de fincas ubicadas en pisos t&eacute;rmicos fr&iacute;o, medio y c&aacute;lido de Cundinamarca tanto en &eacute;poca de verano como de lluvias. La fase experimental se llev&oacute; a cabo en el Laboratorio del Centro de Investigaci&oacute;n en Salud Animal de la Corporaci&oacute;n Colombiana de Investigaci&oacute;n Agropecuaria (Corpoica), Bogot&aacute;. Se obtuvieron larvas L3 de NGI mediante coprocultivos de las heces colectadas, con base en la metodolog&iacute;a del <i>Manual of Veterinary Parasitological Laboratory Techniques </i>(10).</p>      <p align="justify">Se aislaron hongos nemat&oacute;fagos a partir de cultivos de 60 muestras de suelo obtenidas a una profundidad de 5 a 10 cm. De cada muestra se hicieron tres siembras en cajas de Petri con agar-agua mediante la t&eacute;cnica del espolvoreo, y tres d&iacute;as m&aacute;s tarde se agregaron larvas para estimular el desarrollo de los hongos. Los cultivos se incubaron a temperatura (28 &deg;C en promedio) y luz ambiente durante 30 d&iacute;as, y se revisaba cada dos d&iacute;as para seleccionar los hongos de inter&eacute;s.</p>      <p align="justify">Previa selecci&oacute;n de los hongos que desarrollaban estructuras de captura de larvas en las muestras de suelo, fueron aislados en papa dextrosa agar (PDA) y harina de ma&iacute;z (AHM) para asegurar cultivos puros. La identificaci&oacute;n de los hongos aislados se hizo mediante las caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas y morfom&eacute;tricas (11) de los hongos y por los tipos de estructuras de captura que exhibieron.</p>  <font size="3">     <br>    <p align="justify"><b>Evaluaci&oacute;n de la capacidad predadora de los aislamientos</b></p> </font>      <p align="justify">Para evaluar la capacidad predadora <i>in vitro </i>de los hongos se sembraron 1 x 10<sup>6</sup> conidios o clamidosporas de <i>A. oligospora </i>y <i>A. musiformis, </i>respectivamente, y 100 larvas L3 de bovinos en cajas de Petri con agar agua, en cinco repeticiones por aislamiento, y se incubaron a temperatura ambiente. Se contaron larvas atrapadas, libres, enroscadas y muertas durante los d&iacute;as cuarto y quinto de incubaci&oacute;n por medio de un microscopio &oacute;ptico invertido a 10X y 40X.</p>      <p align="justify">La capacidad predadora de los hongos aislados se evalu&oacute; mediante la f&oacute;rmula (4):</p>      <p align="center"><a name="e04"></a><img src="img/revistas/rmv/n31/n31a05e04.jpg"></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">&nbsp;</p>     <p align="justify">Donde: <i>A </i>= porcentaje de captura, <i>x </i>= n&uacute;mero de larvas atrapadas, <i>y </i>= n&uacute;mero de larvas libres, <i>w </i>= n&uacute;mero de larvas enroscadas, <i>z </i>= n&uacute;mero de larvas muertas.</p>  <font size="3">     <br>    <p align="justify"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></p> </font>      <p align="justify">Se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de varianza (Anova) de una v&iacute;a, en la que cada hongo depredador aislado fue un tratamiento, cada uno con cinco repeticiones, utilizando los resultados obtenidos por la f&oacute;rmula matem&aacute;tica indicada, y se estim&oacute; la diferencia estad&iacute;stica mediante el test Tukey de comparaci&oacute;n de medias con nivel de confianza de 95 %.</p>   <font size=3>     <br>    <p align="justify"><b>RESULTADOS</b></p> </font>      <p align="justify">Se identificaron dos especies de hongos nematofagos, correspondientes a <i>A. oligospora, </i>con tres aislamientos (L1, XVIII y XXI), y <i>A. musiformis </i>(aislamiento XXIV), provenientes de suelos de fincas ubicadas en los municipios de Sibat&eacute;, Funza y Tenjo, respectivamente, y uno perteneciente a <i>A. musiformis </i>(aislamiento XXIV), de una finca ubicada en el municipio de Viot&aacute;. Las estructuras morfol&oacute;gicas observadas fueron conidi&oacute;foros erectos y simples, los cuales proliferaron repetitivamente generando varios racimos de conidios ovoidales divididos en la parte central, formando las c&eacute;lulas proximal y distal, con cabezas conidi&oacute;genas que agrupaban en promedio 10 conidios (<a href="#f01">figura 1</a>).</p>      <p align="center"><a name="f01"></a><img src="img/revistas/rmv/n31/n31a05f01.jpg"></p>      <p align="justify"><i>A. musiformis </i>se caracteriz&oacute; por desarrollar conidi&oacute;foros erectos y simples, los cuales ten&iacute;an peque&ntilde;as ramas terminales con un &uacute;nico conidio, lo cual les daba la apariencia de candelabros, y agruparon en promedio 10 conidios por conidi&oacute;foro; estos ten&iacute;an forma elipsoidal alargada y semicurvas, que estaban dividas por un septo, lo que evidencia as&iacute; dos c&eacute;lulas, una proximal y otra distal, esta &uacute;ltima de mayor tama&ntilde;o, cuyo tama&ntilde;o fue determinado de colonias establecidas en agar PDA (<a href="#t01">tabla 1</a>).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="t01"></a><img src="img/revistas/rmv/n31/n31a05t01.jpg"></p>      <p align="justify">Las estructuras de atrapamiento desarrolladas por <i>A. musiformis </i>fueron redes adhesivas tridimensionales (<a href="#f02">figura 2</a>). Otra caracter&iacute;stica importante desarrollada por este hongo fue la r&aacute;pida y abundante formaci&oacute;n de clamidosporas en los tres medios de cultivos utilizados (AA, AHM, PDA). Estas estructuras reproductivas se formaban al poco tiempo de sembrados, y fue adem&aacute;s evidente la gran producci&oacute;n de dichas estructuras a lo largo de los cuerpos miceliales.</p>      <p align="center"><a name="f02"></a><img src="img/revistas/rmv/n31/n31a05f02.jpg"></p>      <p align="justify">De los cuatro aislamientos evaluados, el hongo que demostr&oacute; mayor actividad predadora fue <i>A. musiformis </i>con una capacidad de atrapamiento promedio de 96,82 %, mientras que de los aislados del hongo <i>A. oligospora </i>el que demostr&oacute; mayor capacidad de captura fue el aislamiento XXI, con un promedio de captura de larvas de 87,62 %, seguido del XVIII, con 71,1 % y, por &uacute;ltimo, el aislamiento L1 fue el que menor actividad predadora tuvo, con 69,68 % en promedio (<a href="#f03">figura 3</a>).</p>      <p align="center"><a name="f03"></a><img src="img/revistas/rmv/n31/n31a05f03.jpg"></p>      <p align="justify">El an&aacute;lisis estad&iacute;stico (Anova) demostr&oacute; la existencia de diferencias significativas entre los aislamientos; por tal motivo se procedi&oacute; con el test Tukey para comparaci&oacute;n de medias, con el cual se determin&oacute; que estad&iacute;sticamente los hongos <i>A. musiformis </i>(XXIV) y <i>A. oligospora </i>(XXI) son significativamente m&aacute;s activos contra larvas L3 de nematodos gastrointestinales bovinos respecto a los otros aislamientos evaluados, los aislamientos L1 y XVII de <i>A. oligospora </i>menos predadores (<a href="#t02">tabla 2</a>).</p>      <p align="center"><a name="t02"></a><img src="img/revistas/rmv/n31/n31a05t02.jpg"></p>  <font size=3>     <br>    <p align="justify"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></p> </font>      <p align="justify">Las caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas evidenciadas en los aislamientos L1, XVIII y XXI concuerdan con los datos encontrados por diversos autores que han identificado <i>A. oligospora: </i>conidi&oacute;foros erectos y hialinos que proliferan repetitivamente. Cada una de estas proliferaciones agrupaba de 10 a 12 conidios ovoides o piriformes, con un septo medial que forma dos c&eacute;lulas, una distal y una proximal, de la cual la distal fue 1,5 a 2 veces m&aacute;s larga que la proximal (12-16).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Resultados registrados en la literatura internacional se&ntilde;alan que los principales mecanismos de atrapamiento desarrollados por el hongo <i>A. oligospora </i>en presencia de larvas L3 de NGI son redes tridimensionales (12,15,17-19), tal como se observ&oacute; en este estudio.</p>      <p align="justify">Al igual que con <i>A. oligospora, </i>las caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas de <i>A. musiformis </i>observadas en el presente trabajo son coincidentes con lo encontrado en estudios llevados a cabo en otros pa&iacute;ses: crecimiento y extensi&oacute;n r&aacute;pida de la colonia, conidios de 22-44 x 10-14 &micro;m de longitud x 7,5-12,7 &micro;m de ancho, en promedio (20-25). As&iacute; mismo, se detect&oacute; que la formaci&oacute;n de redes tridimensionales es la principal estructura de atrapamiento de estos dos hongos, resultados coincidentes con registros internacionales (12,22,26-29).</p>      <p align="justify">Un estudio demostr&oacute; que la capacidad predadora del hongo <i>A. musiformis </i>frente a NGI de peque&ntilde;os rumiantes fue, en promedio, de 73,7 % (22), mientras que en otro se informa que la capacidad predadora de diferentes cepas de <i>A. musiformis </i>es variable, pues frente a larvas de <i>Strongyloides papillosus </i>los porcentajes de captura fueron de 86,22, 99 y 100 % (30).</p>      <p align="justify">En relaci&oacute;n con el hongo <i>A. oligospora, </i>se conocen resultados de la capacidad predadora de este hongo, que indican una alta variabilidad en los porcentajes de atrapamiento entre diferentes cepas de esta especie (20).</p>     <p align="justify">Los resultados de diferentes estudios demuestran que algunas especies del g&eacute;nero <i>Arthrobotrys </i>spp. podr&iacute;an ser empleadas como agentes de control biol&oacute;gico contra NGI de bovinos, como es el caso de <i>A. oligospora, </i>el cual muestra porcentajes de reducci&oacute;n larvaria entre 70 y 90 % (18). En Australia, <i>A. oligospora </i>demostr&oacute; tener una eficiencia depredadora mayor a 90 % contra larvas de NGI (19).</p>      <p align="justify">Al comparar la capacidad predadora de los dos hongos evaluados, diversos estudios han determinado, al igual que en este trabajo, que el hongo <i>A. musiformis </i>tiene mayor capacidad de atrapamiento de larvas de NGI que el hongo <i>A. oligospora. </i>El hongo <i>A. musiformis </i>tiene mayor capacidad predadora frente a larvas L<sub>3</sub> de <i>H. contortus </i>con un porcentaje de captura promedio de 96,6 %, mientras que el porcentaje de captura de <i>A. oligospora </i>vari&oacute; de 9,1 a 93,4 % (20). De igual forma, al enfrentar los hongos <i>A. musiformis </i>y <i>A. oligospora </i>a larvas L<sub>3</sub> de <i>H. contortus, </i>se encontr&oacute; una capacidad predadora de 45 y 40 %, respectivamente. Aunque <i>A. musiformis </i>fue m&aacute;s eficiente, no hubo diferencias significativas estad&iacute;sticamente (24). Por otro lado, existen registros de porcentajes de reducci&oacute;n de 97 % (&plusmn; 3,9 %) frente a larvas L<sub>3</sub> y de 75 % (&plusmn; 13,9 %) frente a larvas L<sub>4</sub>, y de 90,3 %(&plusmn; 8 %) frente a larvas L<sub>3</sub> y de 59,7 (&plusmn; 17,5) frente a larvas L<sub>4</sub>, respectivamente (23)</p>     <p align="justify">En un estudio llevado a cabo en Costa Rica (20), cepas del <i>A. oligospora </i>fueron enfrentadas a NGI de ovejas y cabras, lo que dio un porcentaje m&aacute;ximo de atrapamiento de 96,79 % y m&iacute;nimo de 36,66 % frente a nematodos de ovejas, y 94,28 % como m&aacute;ximo y 61,17 % m&iacute;nimo frente a nematodos de cabras. En dicho estudio se evalu&oacute; tambi&eacute;n la capacidad de nueve cepas de <i>A. musiformis; </i>encontraron diferencias altamente significativas entre estas, con porcentajes de captura frente a nematodos de ovinos de 70,35 a 9,76 % y frente a nematodos caprinos de 95,55 a 11,70 %, con lo cual se concluye que puede existir variabilidad de atrapamiento entre cepas de un mismo hongo.</p>     <p align="justify">Tal como lo demuestran distintos estudios, existe gran variabilidad de la capacidad predadora posiblemente debida a diferentes factores ambientales como la temperatura que influye en la capacidad de predaci&oacute;n de los hongos, pues se ha demostrado que temperaturas superiores a 20 &deg;C favorecen el crecimiento de los hongos, as&iacute; como incide directamente en la formaci&oacute;n o no de mecanismos de atrapamiento (31,32). De igual forma, se ha demostrado que en las regiones de alta humedad y temperatura, o regiones donde hay incrementos en la precipitaci&oacute;n en &eacute;pocas de verano o altas temperaturas, se fomenta el crecimiento de hongos nemat&oacute;fagos (33); es decir que la temperatura incide directamente en el desarrollo de estos hongos al igual que en el desarrollo de estados larvarios de vida libre (L<sub>3</sub>), inhibiendo o aumentando la capacidad de atrapamiento (34).</p>      <p align="justify">Las caracter&iacute;sticas ecol&oacute;gicas del suelo o del sustrato del cual se a&iacute;slan tambi&eacute;n son factores que influyen en la formaci&oacute;n de trampas de atrapamiento y, por consiguiente, en la capacidad predadora de los hongos nemat&oacute;fagos, pues la deficiencia o la restricci&oacute;n de nutrientes pueden inducir en los hongos el cambio de estado saprof&iacute;tico a paras&iacute;tico (35). Por lo tanto, resulta importante aislar hongos nativos de las regiones estudiadas con el fin de encontrar mejores resultados en el desempe&ntilde;o antagonista (20).</p>      <p align="justify">La relaci&oacute;n que llega a existir entre el hongo nemat&oacute;fago y la larva determina la capacidad predadora que puede haber. En general, las larvas de vida libre tienen una compleja cut&iacute;cula que les ayuda a mantener la integridad morfol&oacute;gica; tambi&eacute;n es importante para su motilidad, ya que las protege de las condiciones medioambientales en las que se encuentran. Estas estructuras est&aacute;n compuestas por diversas prote&iacute;nas, en especial col&aacute;genos, que determinan la conformaci&oacute;n de dicha cut&iacute;cula (36).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Por tanto, la patogenicidad de las diferentes cepas de hongos nemat&oacute;fagos est&aacute; determinada por la acci&oacute;n de enzimas hidrol&iacute;ticas, proteasas, colagenasas, quitinasas y otras enzimas, las cuales, se ha demostrado, est&aacute;n influenciadas por la expresi&oacute;n gen&eacute;tica que lleva consigo cada hongo (22,37). De esta forma, se determina que la acci&oacute;n y expresi&oacute;n de las diferentes enzimas producidas por los hongos nemat&oacute;fagos inciden en la inmovilizaci&oacute;n, penetraci&oacute;n y degradaci&oacute;n de las larvas; por lo tanto, es importante tener en cuenta la variabilidad gen&eacute;tica entre individuos de una misma especie (24).</p>      <p align="justify">Otro aspecto que se debe tener en cuenta respecto a la interacci&oacute;n hongo-nematodo es la densidad larvaria, pues se ha evidenciado que la actividad paras&iacute;tica de un hongo nemat&oacute;fago por estados larvarios de vida libre de par&aacute;sitos gastrointestinales es dependiente de la densidad poblacional (25); por lo tanto, la relaci&oacute;n entre la cantidad de larvas que se encuentra en los suelos y los hongo motivo de estudio condiciona la capacidad de estos por formar o no gran cantidad de trampas de atrapamiento. De esta manera se ha determinado que la capacidad predadora depende del previo contacto con las larvas, el cual favorece el reconocimiento del hongo frente al nematodo (20,38,39).</p>      <p align="justify">Otro factor que influye en la patogenicidad de las cepas es la edad de estas, ya que se ha demostrado que hongos viejos muestran menor virulencia que los m&aacute;s recientes; por lo tanto, la variabilidad entre los resultados obtenidos en el presente estudio pudo ser influida por los tiempo en los cuales fueron aisladas las cepas, es as&iacute; como se evidencia una menor capacidad de atrapamiento en las cepas L1 y XVIII, seguidas de la cepa XXI y por &uacute;ltimo la cepa XXIV, las dos primeras fueron las m&aacute;s antiguas cepas aisladas y la XXIV la m&aacute;s reciente.</p>  <font size=3>      <BR>    <p align="justify"><b>CONCLUSIONES</b></p> </font>      <p align="justify">Se demostr&oacute; la existencia de dos especies de hongos nemat&oacute;fagos en diferentes fincas ganaderas. Este hallazgo constituye el primer reporte de la presencia, aislamiento e identificaci&oacute;n de los hongos <i>A. oligospora y A. musiformis </i>en Cundinamarca y Boyac&aacute;.</p>      <p align="justify">La alta capacidad nemat&oacute;faga <i>in vitro </i>del aislamiento colombiano de <i>A. musiformis </i>sugiere que podr&iacute;a ser un buen candidato para ser empleado como agente de control biol&oacute;gico de los NGI en la ganader&iacute;a bovina colombiana, siempre y cuando esta estrategia de control biol&oacute;gico sea previamente evaluada en condiciones <i>in vivo.</i></p>      <p align="justify">La presente investigaci&oacute;n abre el camino para futuras investigaciones sobre estrategias no qu&iacute;micas de control de los par&aacute;sitos del ganado bovino en Colombia, en particular la relacionada con los hongos nemat&oacute;fagos.</p>  <hr>  <font size=3>     <br>    <p align="justify"><b>REFERENCIAS</b></p> </font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">1.&nbsp;Barger I. The role of the epidemiological knowledge and grazing management for helminth control in small ruminants. Int J Parasitol. 1998;29(1):41-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0122-9354201600010000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">2.&nbsp;M&aacute;rquez D. Resistencia a los antihelm&iacute;nticos en nematodos de rumiantes y estrategias para su control. Bogot&aacute;: Produmedios; 2010.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0122-9354201600010000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">3.&nbsp;Mendoza, P. Control biol&oacute;gico de nematodos gastrointestinales, diagn&oacute;stico y control de los nematodosis gastrointestinales y pulmonares de los rumiantes. Huamantla: Tlaxcala; 2002.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0122-9354201600010000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">4.&nbsp;Gonz&aacute;lez R, Mendoza P, Torres G, Becerril C, Ortega E, Hern&aacute;ndez O. Estudio <i>in vitro </i>de la capacidad depredadora de <i>Duddingtonia flagrans </i>contra larvas de nematodos gastrointestinales de ovinos de pelo. T&eacute;cnica Pecuaria en M&eacute;xico. 2005; 43(3):405-14.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0122-9354201600010000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">5.&nbsp;Ketzis JK, Vercruysse J, Stromberg BE, Larsen M, Athanasiadou S, Houdijk JG. Evaluation of efficacy expectations for novel and non-chemical helminth control strategies in ruminants. Vet Parasitol 2006;139(4):321-35.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0122-9354201600010000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">6.&nbsp;Braga F, De Ara&uacute;jo J. Nematophagous fungi for biological control of gastrointestinal nematodes in domestic animals. Appl Microbiol Biotechnol. 2014;98(1):71-82.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0122-9354201600010000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">7.&nbsp;Waller P. Biological control of sheep parasites using <i>Duddingtonia flagrans: </i>trials on commercial farms in Sweden. Acta Vet Scand. 2006;47:23-32.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0122-9354201600010000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">8.&nbsp;Barron G. The Nematode-destroying fungi. 3a ed. Canad&aacute;: Biological Publications; 1977.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0122-9354201600010000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">9.&nbsp;Waghorn T, Leathwick D, Chen L, Skipp R. Efficacy of the nematode-trapping fungus <i>Duddingtonia flagrans </i>against three species of gastro-intestinal nematodes in laboratory faecal cultures from sheep and goats. Vet Parasitol. 2003;118(3-4):227-34.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0122-9354201600010000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">10.&nbsp;Ministry of Agriculture, Fisheries and Food. Manual of veterinary parasitological laboratory techniques. Technical Bulletin (18). Londres: Majesty's Stationery Office; 1971.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0122-9354201600010000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">11.&nbsp;Cooke R, Godfrey B. A key of nematode-destroying fungi. T Brit Mycol Soc. 1964;47(1):61-74.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0122-9354201600010000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">12.&nbsp;De Lima R, Ferraz S, Couto A, Dias C. Caracteriza&ccedil;ao morfol&oacute;gica e isoenzim&aacute;tica de especies <i>Athrobotrys </i>ocorrentes no Brasil. Nematol Bras. 2002;26(2):181-97.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0122-9354201600010000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">13.&nbsp;G&oacute;mez L, Bar&oacute; G, S&aacute;nchez L, Rodr&iacute;guez M. Identification and characterization of cuban isolates of nematode-trapping fungi. Revista de Protecci&oacute;n Vegetal. 2003;18(1):53-57.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0122-9354201600010000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">14.&nbsp;Shams M, Razzaghi M, Ranjbar S, Eslami A, Zare R, Ebrahimi M. Screening of soil and sheep faecal samples for predacious fungi: isolation and characterization of the nematode trapping fungus <i>Arthrobotrys oligospora. </i>Iran Biomed J. 2004;8(3):135-42.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0122-9354201600010000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">15.&nbsp;Singh R, Kumar N, Singh K. Morphological variations in conidia of <i>Arthrobotrys Oligospora </i>on different media. Mycobiology 2005;33(2):118-20.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0122-9354201600010000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">16.&nbsp;Nagesh M, Hussaini, S, Chidanandaswamy B, Biswas S. Isolation <i>in vitro </i>characterization and predaceous activity of an indian isolate of the fungus, <i>arthrobotrys oligospora </i>on the root-knot nematode, <i>meloidogyne incognita. </i>Nematol Mediterr. 2005;33(2):179-83.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0122-9354201600010000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">17.&nbsp;Maciel A, Araujo JV, Campos AK, Lopes EA, Freitas LG. Predation of <i>Ancylostoma </i>spp. dog infective larvae by nematophagous fungi in different conidial concentrations. Vet Parasitol. 2009;161(3-4):239-47.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0122-9354201600010000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">18.&nbsp;Gomes A, Ramos M, Vasconcellos R, Jensen J, Vieira-Bressan M, Araujo J. <i>In Vitro </i>activity of Brazilian Strains of the predatory fungi <i>Arthrobotrys </i>spp. on free-living nematodes and infective larvae of <i>Haemonchus placei. </i>Mem Inst Oswaldo Cruz. 2000;95(6):873-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0122-9354201600010000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">19.&nbsp;Park J, Gams W, Scholler M, Ghisalberti E, Sivasithamparam K. Orbiliaceous nematode-trapping fungi and related species in western Australia and their biological activities. Aust Mycol. 2002;21(2):45-52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0122-9354201600010000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">20.&nbsp;Soto N, Oliveira J, Vega R, Montero D, Vargas B, Hern&aacute;ndez J, Orozco C. <i>In vitro </i>predatory activity of nematophagous fungi from Costa Rica with potential use for controlling sheep and goat parasitic nematodes. Rev Biol Trop. 2011;59(1):37-52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0122-9354201600010000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">21.&nbsp;Drechsler C. Some hyphomycetes that prey on free living terrricolous nematodes. Mycologia. 1937;29:447-552.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0122-9354201600010000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">22.&nbsp;Graminha E, Costa A, Oliveira G, Monteiro A, Palmeira S. Biological control of sheep parasite nematodes by nematode-trapping fungi: <i>in vitro </i>activity and after passage through the gastrointestinal tract. World J Microb Biot. 2005;21:717-22.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0122-9354201600010000500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">23.&nbsp;Alfaro I, Mendoza de Gives P, Li&eacute;bano E, Eugenia M, Valero R, Hern&aacute;ndez V. Nematophagous fungi (Orbiliales) capturing, destroying and feeding on the histotrophic larvae of <i>Haemonchus contortus </i>(Nematoda: Trichostrongylidae). Rev Mex Mic. 2011;33:29-35.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0122-9354201600010000500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">24.&nbsp;Acevedo P, Quiroz H, Valero R, Mendoza-de Gives P, G&oacute;mez J. Nematophagous fungi from Mexico with activity against the sheep nematode <i>Haemonchus contortus. </i>Rev Ibero-Latinoam Parasitol. 2011;70(1):101-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0122-9354201600010000500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>25.&nbsp;Yuh G, Yuan Ch. Nematode trapping fungi in Taiwan: <i>Candelabrella musiformis </i>and <i>Artrhobotrys conoides </i>&#91;internet&#93;. 1982 &#91;citado 2013 dic 24&#93;. Disponible en: <a href="http://www.biol.ntnu.edu.tw/download.php" target="_blank">www.biol.ntnu.edu.tw/download.php</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0122-9354201600010000500025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">26.&nbsp;Ahren D, Tunlid A. Evolution of parasitism in nematode-trapping Fungi. J Nematol. 2003;35(2):194-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S0122-9354201600010000500026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">27.&nbsp;Norbring-Hertz B, Mattiasson B. Action of nematode trapping fungus shows lectin mediated host-microorganism interaction. Nature 1979;281:477-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S0122-9354201600010000500027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">28.&nbsp;Garcia A. Survival and predatory activity of <i>Arthrobotrys musiformis </i>submitted to lyophilization. Ci&ecirc;nc Agrotec. 2007;31(4):1203-06.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000146&pid=S0122-9354201600010000500028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">29.&nbsp;Soares P, Nozaki M, Barbosa B, Santos J, Barbosa J. Growth and sporulation of two species of <i>Arthrobotrys corda </i>in different culture media and two environments. Biosci J Uberlandia. 2009;25(2):63-74.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000148&pid=S0122-9354201600010000500029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">30.&nbsp;Kanadani A. Fungos nemat&oacute;fagos no controle de nemat&oacute;ides Gastrintestinais de ruminantes &#91;tesis de maestr&iacute;a&#93;. Minas Gerias: Universidade Federal de Minas Gerais; 2006.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000150&pid=S0122-9354201600010000500030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">31.&nbsp;Jacobs H, Gray S, Crump D. Interactions between nematophagous fungi and consequences for their potential as biological agents for the control of potato cyst nematodes. Mycol Res. 2003;107(Pt 1):47-56.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000152&pid=S0122-9354201600010000500031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">32.&nbsp;Chandrawanthani P, Jamnah O, Waller P, Hoglund J, Larsen M, Zahari W. Nematophagous fungi as a biological control agent for nematode parasites of small ruminants in Malaysia: a special emphasis on <i>Duddingtonia flagrans. </i>Vet Res. 2002;33(6):685-96.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000154&pid=S0122-9354201600010000500032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">33.&nbsp;Su H, Hao Y, Mo M, Zhang K. The ecology, of nematode-trapping hyphomycetes in cattle dung from three plateau pastures. Vet parasitol. 2007;144(3-4):293-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000156&pid=S0122-9354201600010000500033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">34.&nbsp;Santos C, Padilha T, Azevedo, M. Predatory activity of <i>Arthrobotrys oligospora </i>and <i>Duddingtonia flagrans </i>on preparasitic larval stages of cyathostominae under different constant temperaturas. Ci&ecirc;nc Rural. 2001;31(5):839-42.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000158&pid=S0122-9354201600010000500034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">35.&nbsp;Saumel C, Fus&eacute; L, Iglesias L, Fern&aacute;ndez S, Fiel C. Enfoque bioecol&oacute;gico del potencial de los hongos nemat&oacute;fagos en el control biol&oacute;gico de tricostrongil&iacute;deos de rumiantes. 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The living strategy of nematophagous fungi. Mycoscience. 2009;50:20-25.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000164&pid=S0122-9354201600010000500037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">38.&nbsp;Jaffee B. Do organic amendments enhance the nematode-trapping fungi <i>Dactylellina haptotyla </i>and <i>Arthrobotrys oligospora. </i>J Nematol. 2004;36(3):267-75.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000166&pid=S0122-9354201600010000500038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p align="justify">39.&nbsp;Elshafie E, Al-mueini R, Al-bahry S, Akindi A, Mahmoud I, Al-rawahi S. Diversity and trapping efficiency of nematophagous fungi from Oman. Phytopathol Mediterr. 2006;45:266-70.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000168&pid=S0122-9354201600010000500039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p> <hr>      <p align="justify"><a href="#Inicio">Inicio</a></p>  </font>        ]]></body><back>
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