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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Multiplicación in vitro de segmentos nodales del clon de ñame Blanco de Guinea (Dioscorea cayenensis - D. rotundata ) en sistemas de cultivo semiautomatizado]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[´Blanco de Guinea´ yam clone nodal segment multiplication was increased by using the temporary immersion system (TIS). The highest values for plant height, internodal number per plant and fresh and dry weight were obtained in this culture system. Nodal segments cultivated in TIS produced the highest multiplication coefficient (8,50). These plants were characterised by their green colour and rapid growth. The number of plants having vitrification symptoms (3,30) became reduced due to the favourable culture conditions created in the TIS. It is recommended that nodal segment multiplication in TIS be include in the available micropropagation protocols for Dioscorea cayenensis - D. rotundata to decrease propagation/production costs.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p align=”right”><font face="verdana" size="2"><b>ART&Iacute;CULO DE INVESTIGACI&Oacute;N</b></font></p>     <p><font size="4"><b>Multiplicaci&oacute;n <i>in vitro</i> de segmentos nodales del clon de &ntilde;ame Blanco de Guinea (<i>Dioscorea cayenensis - D. rotundata </i>) en sistemas de cultivo semiautomatizado </b></font></p>     <p><font size="3">“Blanco de Guinea” (<i>Dioscorea cayenensis - D. rotundata </i>) yam clone in vitro nodal segment multiplication in a temporary immersion system</font></p>     <p><i> Manuel Cabrera Jova<sup>1</sup> , Rafael G&oacute;mez Kosky<sup>2</sup> , Sergio Rodr&iacute;guez Morales<sup>1</sup> , Jorge L&oacute;pez Torres<sup>1</sup> , Aym&eacute; Rayas Cabrera<sup>1</sup> , Milagros Basail P&eacute;rez<sup>1</sup> , Arletys Santos Pino<sup>1</sup> , V&iacute;ctor Medero Vega<sup>1</sup> , Germ&aacute;n Rodr&iacute;guez Rodr&iacute;guez<sup>1</sup> </i></p>     <p> <sup>1</sup>Instituto Nacional de Investigaciones en Viandas Tropicales (Inivit), Villa Clara, Cuba. <a href="mailto:mcabrera@inivit.co.cu">mcabrera@inivit.co.cu</a>    <br> <sup>2</sup>Instituto de Biotecnolog&iacute;a de las Plantas, Universidad Central &quot;Marta Abreus&quot; de Las Villas, Santa Clara, Villa Clara, Cuba.    <br> </p>     <p>Recibido: abril 09 de 2008 Aprobado: noviembre 25 de 2008</p>  <hr>      <p><b>Resumen</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Con el empleo del sistema de inmersi&oacute;n temporal fue posible incrementar la multiplicaci&oacute;n <i>in vitro</i> de los segmentos nodales en el clon de &ntilde;ame Blanco de Guinea. Con este tipo de sistema de cultivo se obtuvieron los m&aacute;s altos valores para la altura de la planta, n&uacute;mero de entrenudos por planta, as&iacute; como para la masa fresca y seca de las mismas. Las condiciones de cultivo creadas en el sistema de inmersi&oacute;n temporal para la multiplicaci&oacute;n <i>in vitro</i> de los segmentos nodales lograron el m&aacute;s alto coeficiente de multiplicaci&oacute;n (8,50), as&iacute; como redujeron el n&uacute;mero de plantas con s&iacute;ntomas de vitrificaci&oacute;n (3,30). Las plantas cultivadas en este tipo de sistema de cultivo se caracterizaron por el mayor crecimiento de los segmentos nodales, coloraci&oacute;n verde y hojas m&aacute;s desarrolladas. La utilizaci&oacute;n de este tipo de sistema de cultivo en la fase de multiplicaci&oacute;n <i>in vitro</i> de los segmentos nodales posibilitar&aacute; incrementar el empleo de la micropropagaci&oacute;n para la producci&oacute;n de semilla en el complejo <i>Dioscorea cayenensis - D. rotundata</i>.</p>     <p><b>Palabras clave</b>: sistema de inmersi&oacute;n temporal, medio l&iacute;quido, micropropagaci&oacute;n.</p>      <p><b>Abstract</b></p>     <p>&acute;Blanco de Guinea&acute; yam clone nodal segment multiplication was increased by using the temporary immersion system (TIS). The highest values for plant height, internodal number per plant and fresh and dry weight were obtained in this culture system. Nodal segments cultivated in TIS produced the highest multiplication coefficient (8,50). These plants were characterised by their green colour and rapid growth. The number of plants having vitrification symptoms (3,30) became reduced due to the favourable culture conditions created in the TIS. It is recommended that nodal segment multiplication in TIS be include in the available micropropagation protocols for <i>Dioscorea cayenensis - D. rotundata</i> to decrease propagation/production costs.</p>     <p><b>Key words</b>: temporary immersion system, liquid medium, micropropagation.</p>  <hr>      <p><b>Introducci&oacute;n</b></p>      <p>El cultivo del &ntilde;ame (<i>Dioscorea spp.</i>) contribuye a los requerimientos energ&eacute;ticos y de nutrici&oacute;n de una gran parte de las poblaciones en los pa&iacute;ses en desarrollo, y lo continuar&aacute; siendo en las pr&oacute;ximas d&eacute;cadas (Craufurd et &aacute;l., 2006). Este cultivo se adapta a una amplia gama de usos: alimentos b&aacute;sicos (para consumo fresco y en forma procesada), alimento animal y como materia prima para fines industriales. </p>      <p>Adem&aacute;s, es considerado el segundo cultivo en eficiencia para producir energ&iacute;a digestible, solamente superado por la papa (Ondo et &aacute;l., 2007). La producci&oacute;n anual mundial se estima en alrededor de 51,4 millones de toneladas (Faostat, 2006). </p>      <p>Dentro de las m&aacute;s de 600 especies del g&eacute;nero Dioscorea, el complejo de especie <i>Dioscorea cayenensis - D. rotundata</i> es uno de los m&aacute;s cultivados en Cuba y en el mundo (Minagri, 2004). </p>      <p>En este cultivo los tub&eacute;rculos subterr&aacute;neos constituyen la parte &uacute;til de la planta, tanto para el consumo, como para obtener la semilla. Desde que se comenz&oacute; a explotar por el hombre, esta especie se viene propagando de forma ag&aacute;mica por tub&eacute;rculos enteros o secciones de tub&eacute;rculos. Este tipo de semilla, al plantarse de un a&ntilde;o para otro en campo, se puede infestar por microorganismos pat&oacute;genos y perder su calidad (Tschannen et &aacute;l., 2005). </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La micropropagaci&oacute;n en el cultivo de &ntilde;ame ha estado dirigida, a nivel mundial, b&aacute;sicamente para solucionar problemas de enfermedades virales (Lebas, 2002; Gonz&aacute;lez, 2006). Sin embargo, los protocolos desarrollados para la micropropagaci&oacute;n en <i>Dioscorea cayenensis - D. rotundata</i> se han caracterizado por el empleo de medios de cultivo semis&oacute;lidos y por la utilizaci&oacute;n de frascos de cultivo de tama&ntilde;o convencional, lo cual restringe las posibilidades de la automatizaci&oacute;n de la multiplicaci&oacute;n (Malaurie et &aacute;l., 1995; Ondo et &aacute;l., 2007). &Eacute;stas han sido algunas de las causas del lento crecimiento y pobre multiplicaci&oacute;n de los segmentos nodales, limitando el uso comercial de la micropropagaci&oacute;n para la producci&oacute;n de semilla, debido a los relativos altos costos para la obtenci&oacute;n de los prop&aacute;gulos (Perea, 2001; Balogun et &aacute;l., 2006). </p>      <p>Con el objetivo de incrementar el empleo de la micropropagaci&oacute;n para la producci&oacute;n de semilla en el complejo <i>Dioscorea cayenensis - D. rotundata</i>, se evalu&oacute; el efecto de dos sistemas de cultivo semiautomatizados sobre la multiplicaci&oacute;n <i>in vitro</i> de los segmentos nodales en el clon de &ntilde;ame Blanco de Guinea. </p>      <p><b>Materiales y m&eacute;todos</b></p>      <p><b><i>Material vegetal</i></b></p>     <p>Se emplearon como explantes segmentos nodales con una yema axilar del clon de &ntilde;ame Blanco de Guinea (<i>Dioscorea cayenensis - D. rotundata</i>) certificados como libres de enfermedades virales, en tercer subcultivo, procedentes del Banco de Germosplasma <i>in vitro</i> de la especie que conserva el Instituto de Investigaciones en Viandas Tropicales (Inivit); ubicado en Santo Domingo, Villa Clara, Cuba. </p>      <p>Se utiliz&oacute; como medio de cultivo basal las sales inorg&aacute;nicas y vitaminas propuestas por (MS), con cisteina (20 mg/L<sup>-1</sup>). El pH fue ajustado a 5,7 con NaOH 0,5 N o HCl 0,5 N antes de la esterilizaci&oacute;n por 20 minutos en autoclave vertical (BK75).</p>      <p>En cada sistema de cultivo fueron colocados 50 segmentos nodales con una yema axilar y un volumen de 30 mL de medio de cultivo l&iacute;quido por segmento nodal. Las condiciones de cultivo empleadas fueron temperatura de 25&plusmn;2,0 &deg;C e iluminaci&oacute;n artificial mediante tubos fluorescentes de 40 W, con un r&eacute;gimen de fotoperiodo de 16 horas luz y una densidad de flujo de fotones fotosint&eacute;ticos (FFF) de 42,048,0 &micro;mol/m <sup>2</sup>/s <sup>-1</sup></p>      <p><b><i>Multiplicaci&oacute;n de segmentos nodales</i></b></p>     <p>Con el objetivo de evaluar el efecto de los sistemas de cultivo semiautomatizados en la multiplicaci&oacute;n <i>in vitro</i> de los segmentos nodales, se desarroll&oacute; el presente experimento que tuvo los tratamientos siguientes:</p>      <p><b><i>Sistema de cultivo I: Sistemas de inmersi&oacute;n temporal</i></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El sistema de inmersi&oacute;n temporal estuvo compuesto por dos frascos de cultivo de vidrio de 5000 mL de capacidad, uno para el crecimiento de los segmentos nodales y el otro como reservorio de medio de cultivo. Estos frascos de cultivo se conectaron entre s&iacute; por una manguera de silicona de seis mil&iacute;metros de di&aacute;metro, mediante conectores de vidrio que atravesaron la tapa del frasco. En la parte interna se coloc&oacute; una manguera, la cual descendi&oacute; hasta el fondo en ambos recipientes. El medio de cultivo circul&oacute; de un frasco de cultivo a otro en dependencia de la apertura o cierre de dos electrov&aacute;lvulas de tres v&iacute;as, las cuales estaban conectadas a un temporizador programable para determinar el tiempo y la frecuencia de la inmersi&oacute;n. A la entrada de los frascos de cultivo se colocaron filtros hidrof&oacute;bicos (0,22 &micro;m, Midisart 2000, Sartorius Co.) para garantizar la esterilidad del aire. La presi&oacute;n del aire de 2,0 atm proveniente de un compresor, fue regulada por un man&oacute;metro. Se emple&oacute; un tiempo de inmersi&oacute;n de 10 min con una frecuencia cada 6 horas (4 inmersiones por d&iacute;a) seg&uacute;n resultados previos no mostrados.</p>      <p><b><i>Sistema de cultivo II: Sistema de inmersi&oacute;n constante con aireaci&oacute;n mediante burbujeo cont&iacute;nuo en el medio de cultivo (SIC)</i></b></p>     <p>El sistema de inmersi&oacute;n constante con aeraci&oacute;n mediante burbujeo continuo en el medio de cultivo consisti&oacute; en un frasco de cultivo de vidrio de 5000 mL de capacidad, en el cual se colocaron los segmentos nodales y el medio de cultivo. El aire proveniente del compresor circul&oacute; por una manguera de silicona de seis mil&iacute;metros de di&aacute;metro que atraves&oacute; el tap&oacute;n de goma mediante conectores de vidrio, la cual descendi&oacute; hasta el fondo del frasco de cultivo. A la entrada y salida del frasco de cultivo se colocaron filtros hidrof&oacute;bicos (0,22 &micro;m, Midisart 2000, Sartorius Co.) para garantizar la esterilidad del aire proveniente del compresor que permiti&oacute; un flujo de aire de 25 ml/min<sup>-1</sup>.</p>      <p><b><i>Sistema de cultivo III: (Control) Sistema con el medio de cultivo l&iacute;quido est&aacute;tico con renovaci&oacute;n pasiva de la atm&oacute;sfera interna</i></b></p>     <p>El sistema con el medio de cultivo l&iacute;quido est&aacute;tico con renovaci&oacute;n pasiva de la atm&oacute;sfera interna consisti&oacute; en un frasco de cultivo de vidrio de 5000 mL de capacidad, en el cual se colocaron los segmentos nodales y el medio de cultivo l&iacute;quido est&aacute;tico. El frasco de cultivo fue cerrado con un tap&oacute;n de goma, que ten&iacute;a en el centro un orificio de 5,0 mm de di&aacute;metro relleno con algod&oacute;n para el intercambio de gases con el exterior.</p>      <p>Este experimento tuvo cinco repeticiones por cada tratamiento. A las seis semanas de cultivo se seleccionaron al azar 10 plantas en cada una de las repeticiones por tratamiento y se evalu&oacute;: altura de la planta (cm), n&uacute;mero de entrenudos por planta, la masa fresca (gMF) de las plantas y luego de que &eacute;stas fueron colocadas en una estufa a 70 &deg;C durante 48 horas se defini&oacute; la masa seca (gMS). Se calcul&oacute; el coeficiente de multiplicaci&oacute;n al dividir el n&uacute;mero final de segmentos nodales con una yema axilar entre el n&uacute;mero inicial. En cada una de las repeticiones por tratamiento se evalu&oacute;, de las 50 plantas cultivadas, el n&uacute;mero de plantas con s&iacute;ntomas de vitrificaci&oacute;n, aquellas que presentaron apariencia acuosa y hojas trasl&uacute;cidas.</p>      <p>El procesamiento estad&iacute;stico de los datos experimentales se realiz&oacute; mediante un an&aacute;lisis de varianza. Para la comparaci&oacute;n m&uacute;ltiple de medias se aplic&oacute; la prueba de Dunnentt&acute;s C cuando no se encontr&oacute; homogeneidad de varianza, y cuando ocurri&oacute; lo contrario se aplic&oacute; la prueba param&eacute;trica de Tukey, con un nivel de significaci&oacute;n de p&lt;0,05.</p>      <p><b>Resultados</b></p>     <p>Las plantas cultivadas en el sistema de inmersi&oacute;n temporal mostraron los mejores resultados para la altura de la planta, n&uacute;mero de entrenudos por planta, as&iacute; como para la masa fresca y seca de las plantas, con diferencias significativas respecto al sistema de inmersi&oacute;n constante con aeraci&oacute;n mediante burbujeo continuo en el medio de cultivo y al sistema de cultivo con el medio de cultivo l&iacute;quido est&aacute;tico con renovaci&oacute;n pasiva de la atm&oacute;sfera interna utilizado como control (<a href="#t1">tabla 1</a>).</p>      <p align="center"><a name="t1"><img src="img/revistas/biote/v10n2/v10n2a11t1.JPG"></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las plantas cultivadas en el sistema de inmersi&oacute;n temporal se caracterizaron por el mayor crecimiento de los segmentos nodales, coloraci&oacute;n verde y hojas m&aacute;s desarrolladas, mientras que las plantas cultivadas en sistema de cultivo l&iacute;quido est&aacute;tico presentaron tallos y hojas trasl&uacute;cidas con apariencia turgente.</p>      <p>Con el empleo del sistema de inmersi&oacute;n temporal se obtuvieron los m&aacute;s altos valores para el coeficiente de multiplicaci&oacute;n, con diferencias significativas respecto al sistema de inmersi&oacute;n constante con aeraci&oacute;n mediante burbujeo continuo en el medio de cultivo, y al sistema de cultivo con el medio de cultivo l&iacute;quido est&aacute;tico con renovaci&oacute;n pasiva de la atm&oacute;sfera interna utilizado como control (<a href="#f1">figura 1</a>).</p>      <p align="center"><a name="f1"><img src="img/revistas/biote/v10n2/v10n2a11f1.JPG"></p>     <p align="center"><a name="f2"><img src="img/revistas/biote/v10n2/v10n2a11f2.JPG"></p>      <p>Con el empleo del sistema de inmersi&oacute;n temporal tambi&eacute;n se obtuvo el menor n&uacute;mero de plantas con s&iacute;ntomas de vitrificaci&oacute;n, con diferencias significativas respecto a las plantas cultivadas en el sistema de inmersi&oacute;n constante con aeraci&oacute;n mediante burbujeo continuo en el medio de cultivo, y al sistema de cultivo con el medio de cultivo l&iacute;quido est&aacute;tico con renovaci&oacute;n pasiva de la atm&oacute;sfera interna utilizado como control</p>      <p><b>Discusi&oacute;n</b></p>     <p>Los mejores resultados obtenidos para la multiplicaci&oacute;n <i>in vitro</i> de los segmentos nodales de &ntilde;ame con el sistema de inmersi&oacute;n temporal se deben a las condiciones f&iacute;sicas creadas en el interior del recipiente de cultivo (Escalona et &aacute;l., 2003). El contacto directo y renovado de los segmentos nodales con el medio de cultivo durante cada inmersi&oacute;n pudo haber provocado una asimilaci&oacute;n m&aacute;s efi ciente de elementos nutritivos. Con este tipo de sistema de cultivo se logr&oacute; que los segmentos nodales estuvieran cubiertos por una fi na pel&iacute;cula de medio de cultivo, lo cual impidi&oacute; la desecaci&oacute;n y adem&aacute;s posibilit&oacute; una baja resistencia a la difusi&oacute;n de gases, por lo que debi&oacute; haber existido una m&iacute;nima interrupci&oacute;n de intercambio de gases entre los segmentos nodales y la atm&oacute;sfera interna del recipiente de cultivo la cual, con el tiempo y la frecuencia de inmersi&oacute;n empleados, se pudo haber renovado completamente, favoreciendo un balance arm&oacute;nico de gases como ox&iacute;geno y di&oacute;xido de carbono, y limitando la acumulaci&oacute;n de gases nocivos como el etileno en el interior del recipiente de cultivo, aspectos estos que seg&uacute;n Berthouly y Etienne (2005) favorecen el crecimiento de los brotes en otras especies de plantas.</p>      <p>Las condiciones de cultivo creadas en el sistema de inmersi&oacute;n temporal provocaron cambios fi siol&oacute;gicos favorables para la multiplicaci&oacute;n de los segmentos nodales, as&iacute; como los m&aacute;s altos valores para la masa fresca y seca. Se debe se&ntilde;alar la importancia de los valores de masa seca como un indicadores de calidad de las plantas, pues &eacute;sta se compone principalmente de lignina y polisac&aacute;ridos en la pared celular, adem&aacute;s de componentes del protoplasma como prote&iacute;nas, l&iacute;pidos, amino&aacute;cidos, &aacute;cidos org&aacute;nicos y algunos elementos inorg&aacute;nicos como el potasio (Arag&oacute;n et &aacute;l., 2005).</p>      <p>El contacto intermitente de los explantes con el medio de cultivo tuvo gran importancia, tanto para la asimilaci&oacute;n de los nutrientes por los explantes, como en la renovaci&oacute;n de la atm&oacute;sfera interna del recipiente de cultivo. El tiempo de contacto de los explantes con el medio de cultivo ayud&oacute; a controlar la vitrificaci&oacute;n causada por la carencia de ox&iacute;geno que apareci&oacute; en un gran n&uacute;mero de los segmentos nodales desarrollados en medios de cultivo l&iacute;quidos est&aacute;ticos con renovaci&oacute;n pasiva de la atm&oacute;sfera interna (McAlister et &aacute;l., 2005).</p>      <p>P&eacute;rez (2001) demostr&oacute; para el crecimiento de los segmentos nodales en el cultivo de la papa (<i>Solanum tuberosum L.</i>), mediante el estudio de dos sistemas de cultivo semiautomatizados, el control semicontinuo del nivel de medio de cultivo y la inmersi&oacute;n temporal, que los segmentos nodales desarrolladas en el SIT presentaron coeficientes de multiplicaci&oacute;n superior debido a las condiciones de cultivo creadas en este sistema de cultivo.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los resultados logrados para el crecimiento de los segmentos nodales en el clon de &ntilde;ame Blanco de Guinea en sistema de inmersi&oacute;n temporal se relacionan con los obtenidos por Escalona (2003) en la fase de elongaci&oacute;n de brotes de pi&ntilde;a (<i>Ananas comosus L.</i>). Estos brotes presentaron mayor masa seca y &aacute;rea foliar en comparaci&oacute;n con los brotes cultivados en sistemas de cultivo convencional, debido a que las plantas en el sistema de inmersi&oacute;n presentaron una mayor absorci&oacute;n de az&uacute;car y nitr&oacute;geno. Zobayed (2001) describi&oacute; que la carencia de ox&iacute;geno en el interior de los frascos de cultivo en la micropropagaci&oacute;n de la papa en sistemas de cultivo cerrado sin renovaci&oacute;n de la atm&oacute;sfera interna, y en sistema de cultivo con una ventilaci&oacute;n difusa, provoc&oacute; un lento crecimiento de los segmentos nodales, as&iacute; como un pobre coeficiente de multiplicaci&oacute;n.</p>      <p>Chakrabarty et &aacute;l. (2006) investigaron la din&aacute;mica de utilizaci&oacute;n de los nutrientes, as&iacute; como varios par&aacute;metros de crecimiento y fisiol&oacute;gicos en la proliferaci&oacute;n de brotes de manzana M9 EMLA cultivados en dos sistemas de biorreactores. Los brotes cultivados en el sistema de inmersi&oacute;n temporal presentaron mayor masa seca y calidad que los obtenidos en el sistema de inmersi&oacute;n constante, debido a que en este tipo de sistema de cultivo se crearon mejores condiciones de cultivo para un metabolismo fotomixotr&oacute;fico.</p>      <p>El empleo del medio de cultivo en estado l&iacute;quido, para la multiplicaci&oacute;n de los segmentos nodales de &ntilde;ame en sistema de inmersi&oacute;n temporal, pudiera reducir los costos de producci&oacute;n de los prop&aacute;gulos de &ntilde;ame, al no utilizar agente gelificante tradicionalmente usado en la gran mayor&iacute;a de los protocolos descritos para la multiplicaci&oacute;n de esta especie. Con este sistema de cultivo es posible disminuir la manipulaci&oacute;n del material vegetal, reducir el n&uacute;mero de frascos de cultivo, as&iacute; como una menor utilizaci&oacute;n del espacio en las c&aacute;maras de crecimiento. Lorenzo et &aacute;l. (1998) calcularon que utilizando el sistema de inmersi&oacute;n temporal se redujo un 46% el costo de producci&oacute;n de la proliferaci&oacute;n de los brotes de ca&ntilde;a de az&uacute;car (<i>Saccharum sp.</i>). Escalona et &aacute;l. (1999) desarrollaron un protocolo para propagar brotes de pi&ntilde;a en SIT que redujo el costo de producci&oacute;n por planta en un 20% cuando se compar&oacute; con el m&eacute;todo convencional que empleaba el medio de cultivo l&iacute;quido.</p>      <p><b> Conclusiones </b></p>      <p>Los resultados obtenidos permitieron demostrar que es posible multiplicar los segmentos nodales del clon de &ntilde;ame Blanco de Guinea en sistemas de cultivo semiautomatizado. Con el Sistema de inmersi&oacute;n temporal se increment&oacute; el coeficiente de multiplicaci&oacute;n de los segmentos nodales, lo que posibilitar&aacute; incrementar el empleo de la micropropagaci&oacute;n para la producci&oacute;n de semilla en el complejo <i>Dioscorea cayenensis D. rotundata.</i></p>      <p><b>Referencias bibliogr&aacute;ficas</b></p>      <!-- ref --><p>1 Balogun, M,O.; Fawole, I.; Ng SYC.; Ng Q.; Shiwachi, H.; Kikuno, H. (2006). Interaction among cultural factors in microtuberization of white yam (Dioscorea rotundata Poir). Tropical Science 46 (1), 55-59.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0123-3475200800020001100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2 Berthouly, M.; Etienne, H. (2005). Temporary immersion system: a new concept for use liquid medium in mass propagation. En: HvoslefEide, A. K. y Preil, W. (eds.). Liquid Culture Systems or <i>in vitro</i> Plant Propagation. Springer. pp. 59-73.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000060&pid=S0123-3475200800020001100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3 Castellanos, P. (ed.) (2004). Instructivo T&eacute;cnico del Cultivo del &Ntilde;ame. Ciudad de La Habana, Cuba: Minagri Sedgri/Agrinfor.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0123-3475200800020001100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4 Chakrabarty, D.; Dewir, YH.; Hahn, E. J.; Datta, S.; Paek, K. Y. (2006). The dynamics of nutrient utilization and growth of apple root stock &quot;M9 EMLA&quot; in temporary versus continuous immersion bioreactors. Plant Growth Regul 43, 184-189.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S0123-3475200800020001100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5 Craufurd, PQ.; Battey, NH.; Ile, E.I.; Asedu, R. (2006). Phases of dormancy in yam tubers (Dioscorea rotundata ). Ann Bot 97, 497-504.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0123-3475200800020001100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6 Escalona, M.; Lorenzo, J. C.; Gonzalez, B.; Dauinta, M.; Fundora, Z.; Borroto, C. G. et &aacute;l. (1999). New system for <i>in vitro</i> propagation of pineapple (Ananas comosus (L.) Merr). Pineapple News 5, 57.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0123-3475200800020001100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7 Escalona, M.; Samaon, G.; Borroto, C.; Desjardins, J. (2003). Physiology of effects of termporary immersion bioreactors on micropropagated pineapple plantlets. In vitro Cell. Dev Biol Plant 39, 651-656.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0123-3475200800020001100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8 F AO. 2006. Los datos de Faostat. Disponible en: http://www.fao.org. [Fecha de consulta 7 de marzo de 2006].&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0123-3475200800020001100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9 Gonz&aacute;lez, J. E. (2006). Diagn&oacute;stico de enfermedades virales pertenecientes al g&eacute;nero de los Potivirus en los geneotipos de &ntilde;ame &acute;Pacala Duclos&acute; (Dioscorea alata L.) y &ntilde;ame de Guinea (Dioscorea rotundata Poir). Aplicaciones de la corriente el&eacute;ctrica. Tesis de Maestr&iacute;a. Universidad Central de Las Villas, Instituto de Biotecnolog&iacute;a de las Plantas. Cuba.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0123-3475200800020001100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10 Lebas BSM. (2002). Diversity of virases infesting dioscorea species in the south pacific. A thesis submitted in partial fulfilment of the requirements of the University of Greenwich for the Degree of Doctor of Philosophy (Ph.D.). The University of Greenwich Natural Resources Institute.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0123-3475200800020001100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11 Lorenzo, J.C.; Gonz&aacute;lez, B. L.; Escalona, M.; Teisson, C.; Espinosa, P.; Borroto, C. (1998). Sugarcane shoot formation in a improved temporary inmersion system. Plant Cell Tiss Org Cult 54, 197-200.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0123-3475200800020001100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12 Malaurie, B.; Pungu, O.; Trouslot, M. (1995). Effect of growth regulators concentrations on morphological development of meristem tips in Dioscorea cayenensis-D. Rotundata complex and D. praehensilis. Plant Cell Tiss Org Cult 41, 229-235.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0123-3475200800020001100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13 McAlister, B.; Finnie, J.; Watt, M. P.; Blakeway, F.F. (2005). Use of the temporary immersion bioreactor system (RITA) for production of commercial Eucalyptus clones in Mondi Forests (SA). Plant Cell Tiss Org Cult 81, 347-358.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0123-3475200800020001100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14 Murashige, T.; Skoog, F.F. (1962). A revised medium for rapid growth and biossays with tobacco tissue culture. Physiol Plant 15, 473-497.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0123-3475200800020001100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15 Ondo, P.; Kevers, C.; Dommes, J. (2007). Axillary proliferation and tuberization of Dioscorea cayenensis-D. rotundata complex. Plant Cell Tiss Org Cult 91, 107-109.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0123-3475200800020001100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16 Perea, M. (2001). Contribuci&oacute;n de la biotecnolog&iacute;a al desarrollo sostenible del cultivo del &ntilde;ame. En: Perea, M. (ed.). Biotecnolog&iacute;a Agr&iacute;cola. Bogot&aacute;: Editora Guadalupe. pp. 289-301.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0123-3475200800020001100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17 P&eacute;rez, N. (2001). Producci&oacute;n de microtub&eacute;rculos de papa (Solanum tuberosum L.) en Sistemas de Inmersi&oacute;n Temporal. Tesis de Maestr&iacute;a. Universidad Central de Las Villas, Instituto de Biotecnolog&iacute;a de las Plantas. Santa Clara, Cuba.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0123-3475200800020001100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18 Tschannen, A. B.; Escher, F.F.; Stamp, P. (2005). Post harvest treatment of seed tubers with gibberellic acid and field performance of yam (Dioscorea cayenensis- rotundata) in Ivory Coast. Expl Agric 41, 175-186.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0123-3475200800020001100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19 Zobayed, S. M. A.; Armstrong J.; Armstrong W. (2001) Micropropagation of potato: evaluation of closed, diffusive and forced ventilation on growth and tuberization. Annals of Botany 87, 53-59.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0123-3475200800020001100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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