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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación en campo de plantas de ñame (Dioscorea alata L.) obtenidas de los microtubérculos formados en Sistema de Inmersión Temporal]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Microtubers in some plant species represent an important alternative crop-planting material. The present work involved field work for evaluating the morphoagronomic response of plants obtained from yam microtubers produced in a temporary immersion system (TIS). Three categories of microtuber were planted as experimental variants; they were classified by fresh mass (1 - 0.5 to 0.9 g, 2 - from 1.0 to 2.9 g and 3 - equal toor greater than 3.0 g), previously in vitro-acclimated plants and tuber crowns. The effect of microtuber fresh weight on their sprouting, survival and later development of the plants derived from them in the field were evaluated. The highest sprouting (91.30%) and plant survival percentages (96.50%) and the best response in quantitative traits evaluated in the field were obtained with yam microtubers having a fresh mass equal to or greater than 3.0 g. These results confirmed the importance of microtubers’ fresh weight for using them as plant material in direct planting in the field.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font face="verdana" size="2">     <p align=right><font face="verdana" size="2"><b>ART&Iacute;CULO DE INVESTIGACI&Oacute;N</b></font></p>      <p><font size="3"><b>Evaluaci&oacute;n en campo de plantas de &ntilde;ame (<i><i><i>Dioscorea</i> alata</i></i> L.) obtenidas de los microtub&eacute;rculos formados en Sistema de Inmersi&oacute;n Temporal</b></font></p>       <p><font size="2">Field evaluation of yam plants (<i><i>Dioscorea</i> alata</i> L.) obtained from microtubers produced in a temporary immersion system</b></font></p>      <p><i>Manuel Cabrera Jova<sup>1</sup>, Rafael G&oacute;mez Kosky<sup>2</sup>, Aym&eacute; Rayas Cabrera<sup>1</sup>,Manuel DeFeria<sup>2</sup>,  Jorge L&oacute;pez Torres<sup>2</sup>, V&iacute;ctor Medero Vega<sup>1</sup>, Milagros Basail P&eacute;rez<sup>1</sup>, Germ&aacute;n Rodr&iacute;guez Rodr&iacute;guez<sup>1</sup>, Arletys Santos Pino<sup>1</sup>  </i> </p>   <hr>      <p><sup>1</sup>Instituto Nacional de Investigaciones en Viandas Tropicales (Inivit), Villa Clara, Cuba. <a href="mailto:mcabrera@inivit.cu."> mcabrera@inivit.cu</a> Autor para correspondencia.      <p><sup>2</sup>Instituto de Biotecnolog&iacute;a de las Plantas, Universidad Central Marta Abreus de Las Villas, Villa Clara, Cuba.       <p>Recibido: febrero 19 de 2010 Aprobado: junio 2 de 2010  <hr>      <p><b>Resumen</b></p>      <p>Los microtubérculos en algunas especies de plantas constituyen una importante alternativa como material vegetal de plantaci&oacute;n. Se defini&oacute; como objetivo de trabajo evaluar en campo la respuesta morfoagron&oacute;mica de las plantas obtenidas de los microtub&eacute;rculos de &ntilde;ame formados en Sistema de Inmersi&oacute;n Temporal (SIT). Como variantes experimentales se plantaron tres categor&iacute;as de microtub&eacute;rculos, clasificados seg&uacute;n su masa fresca (I. de 0,5 a 0,9 g; II. de 1,0 a 2,9 g; III. igual o mayor de 3,0 g), plantas <i>in vitro</i> previamente aclimatadas y corona de tub&eacute;rculo. Se evalu&oacute; el efecto de la masa fresca de los microtub&eacute;rculos sobre su brote, supervivencia y posterior desarrollo de las plantas derivadas de ellos en campo. Con los microtub&eacute;rculos de &ntilde;ame, con una masa fresca igual o superior a 3,0 g, se alcanz&oacute; el m&aacute;s alto porcentaje de brotaci&oacute;n (91,30%) y supervivencia de las plantas (96,50%), as&iacute; como las mejores respuestas en los caracteres cuantitativos que se evaluaron en campo. Estos resultados confirmaron la importancia de la masa fresca de los microtub&eacute;rculos para ser empleados como material vegetal de plantaci&oacute;n directo en campo.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Palabras clave</b>: microtub&eacute;rculos, plantas <i><i>in vitro</i></i>, campo.</p>      <p><b>Abreviaturas</b>: SIT sistema de Inmersi&oacute;n Temporal, gMF gramos de masa fresca</p>      <p><b>Abstract</b></p>      <p>Microtubers in some plant species represent an important alternative crop-planting material. The present work involved field work for evaluating the morphoagronomic response of plants obtained from yam microtubers produced in a temporary immersion system (TIS). Three categories of microtuber were planted as experimental variants; they were classified by fresh mass (1 - 0.5 to 0.9 g, 2 - from 1.0 to 2.9 g and 3 - equal toor greater than 3.0 g), previously <i>in vitro</i>-acclimated plants and tuber crowns. The effect of microtuber fresh weight on their sprouting, survival and later development of the plants derived from them in the field were evaluated. The highest sprouting (91.30%) and plant survival percentages (96.50%) and the best response in quantitative traits evaluated in the field were obtained with yam microtubers having a fresh mass equal to or greater than 3.0 g. These results confirmed the importance of microtubers’ fresh weight for using them as plant material in direct planting in the field.</p>      <p><b>Key words</b>: Microtuber, <i>in vitro</i> plant, field evaluation.</p>      <p><b>Abbreviations used</b>: TIS - temporary immersion system, gFW - grams of fresh weight.</p> <hr>     <p><b> Introducci&oacute;n</b></p>      <p>Dentro de las m&aacute;s de 600 especies del g&eacute;nero <i><i>Dioscorea</i></i>, <i><i>Dioscorea</i> alata</i> L. es una de las m&aacute;s cultivadas en el mundo. La producci&oacute;n mundial en el a&ntilde;o 2008 se estim&oacute; en alrededor de 56,4 millones de toneladas (Faostat, 2009).</p>      <p>Desde que esta especie se comenz&oacute; a cultivar por el hombre se ha propagado por tub&eacute;rculos enteros, secciones de tub&eacute;rculos o bulbillos a&eacute;reos. El uso continuado de este tipo de material vegetal de plantaci&oacute;n tiene el inconveniente de que al plantarse de un a&ntilde;o para otro en campo, se puede infestar por microorganismos pat&oacute;genos y perder calidad fisiol&oacute;gica y sanitaria (Amusa <i>et al</i>., 2003; Ovono <i>et al</i>., 2007).</p>      <p>En Cuba, su producci&oacute;n ha ayudado a la diversidad y estabilidad alimentaria. Tradicionalmente este cultivo ha constituido una fuente importante de ingresos y empleo en las regiones oriental y central del pa&iacute;s (Rodr&iacute;guez 2006). No obstante, su desarrollo extensivo ha estado limitado, entre otras causas, por la poca disponibilidad de material vegetal de plantaci&oacute;n con calidad fisiol&oacute;gica y sanitaria (Rodr&iacute;guez 2004). Esto se debe, fundamentalmente, a que los tub&eacute;rculos, que constituyen la parte &uacute;til de la planta para la alimentaci&oacute;n, tambi&eacute;n tienen que ser utilizados como material vegetal de plantaci&oacute;n.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Diferentes m&eacute;todos biotecnol&oacute;gicos tambi&eacute;n han sido empleados para la propagaci&oacute;n de &ntilde;ame pero la producci&oacute;n de plantas <i>in vitro</i> y microtub&eacute;rculos tiene a&uacute;n limitaciones para su uso como material vegetal de plantaci&oacute;n (Balogun <i>et al</i>., 2006; Chen <i>et al</i>., 2007).</p>      <p>Seg&uacute;n Ovono <i>et al</i>. (2007) y Balogun (2009), en el cultivo del &ntilde;ame la producci&oacute;n de microtub&eacute;rculos tiene un gran potencial como alternativa para la propagaci&oacute;n. Pueden ser utilizados en los programas de producci&oacute;n de material vegetal de plantaci&oacute;n, mejoramiento gen&eacute;tico y conservaci&oacute;n de germoplasma, debido a que los microtub&eacute;rculos se pueden producir sin tener en cuenta la &eacute;poca del a&ntilde;o y, a diferencia de las plantas <i>in vitro</i>, pueden ser almacenados por un per&iacute;odo m&aacute;s prolongado de tiempo, sin perder su potencial de brotaci&oacute;n (Mbanaso <i>et al</i>., 2007; Pathirana <i>et al</i>., 2008; Ovono <i>et al</i>., 2009).</p>      <p>La baja masa fresca de los microtub&eacute;rculos ha constituido la problem&aacute;tica fundamental que ha limitado su uso como material vegetal de plantaci&oacute;n directo en campo. Cabrera <i>et al</i>. (2009) desarrollaron un protocolo para la formaci&oacute;n de microtub&eacute;rculos de &ntilde;ame (<i>Dioscorea</i> alata L.) en sistema de inmersi&oacute;n temporal (SIT). Los microtub&eacute;rculos obtenidos en este tipo de sistema de cultivo presentaron una masa fresca superior a 2,40 gMF.</p>      <p>El presente trabajo se realiz&oacute; con el objetivo de evaluar en campo la respuesta morfoagron&oacute;mica de las plantas obtenidas de los microtub&eacute;rculos formados en Sistema de Inmersi&oacute;n Temporal.</p>      <p><b>Materiales y m&eacute;todos</b></p>      <p>La investigaci&oacute;n se realiz&oacute; en el Instituto de Investigaciones en Viandas Tropicales (Inivit); ubicado en Santo Domingo, Villa Clara, Cuba, durante el per&iacute;odo comprendido entre septiembre del 2006 y diciembre del 2009.</p>      <p><b><i>Material vegetal</i></b></p>      <p>Se emplearon microtub&eacute;rculos de &ntilde;ame (<i><i>Dioscorea</i> alata</i> L.) clon Pacala Duclos formados en sistemas de inmersi&oacute;n temporal seg&uacute;n el protocolo descrito por Cabrera <i>et al</i>. (2009).</p>      <p align=center><b><i>Influencia de la masa fresca de los    <br> microtub&eacute;rculos sobre su brotaci&oacute;n,    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> y sobre la supervivencia y caracteres    <br> morfoagron&oacute;micos de las plantas    <br> derivadas de estos</i></b></p>      <p>El presente experimento tuvo como objetivo estudiar el efecto de la masa fresca de los microtub&eacute;rculos que se produjeron en sistema de inmersi&oacute;n temporal (SIT) sobre su brotaci&oacute;n, y sobre la supervivencia y el posterior desarrollo de las plantas derivadas de ellos en campo. Se plantaron las variantes experimentales siguientes:</p>      <p>• Microtub&eacute;rculos con una masa fresca de 0,5-0,9 g.</p>      <p>• Microtub&eacute;rculos con una masa fresca de 1,0-2,9 g.</p>      <p>• Microtub&eacute;rculos con una masa fresca igual o mayor de 3,0 g.</p>      <p>• Plantas <i>in vitro</i> previamente aclimatizadas con una longitud del tallo de 30 cm y al menos cuatro hojas.</p>      <p>• Coronas de tub&eacute;rculo, con una masa fresca de 50 g, propagaci&oacute;n convencional (Control).</p>      <p>El dise&ntilde;o experimental que se emple&oacute; fue un bloque al azar, con cinco parcelas experimentales por tratamiento. Las parcelas experimentales estuvieron formadas por cuatro hileras de mont&iacute;culos, con diez mont&iacute;culos por cada hilera, para un total de 40 mont&iacute;culos por parcela y 200 mont&iacute;culos por tratamiento.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El experimento se plant&oacute; en un suelo pardo sial&iacute;tico c&aacute;lcico carbonatado (Hern&aacute;ndez et al., 1999). La plantaci&oacute;n en campo se realiz&oacute; el 15 de abril del a&ntilde;o 2006. La distancia de plantaci&oacute;n fue de 1,00 x 1,00 m. El riego y las dem&aacute;s atenciones culturales, as&iacute; como el control de plagas y enfermedades se realizaron seg&uacute;n el Instructivo T&eacute;cnico del cultivo del &ntilde;ame (Minag, 2008).</p>      <p>A las cuatro semanas de cultivo en campo se cuantific&oacute; el n&uacute;mero de microtub&eacute;rculos que brotaron por parcelas y se determin&oacute; el porcentaje. A las seis semanas de cultivo se cuantific&oacute; la supervivencia de cada una de las plantas de los materiales de plantaci&oacute;n por parcelas y se determin&oacute; el porcentaje.</p>      <p><b><i>Evaluaci&oacute;n de caracteres cualitativos</i></b></p>      <p>La totalidad de la poblaci&oacute;n se evalu&oacute; seg&uacute;n los caracteres cualitativos morfol&oacute;gicos citados en la lista de descriptores para <i>Dioscorea</i> alata L. (Ipgri/IITA, 1997).</p>      <p><b><i>Evaluaci&oacute;n de caracteres cuantitativos</i></b></p>      <p>Para la evaluaci&oacute;n se seleccionaron 10 plantas de los mont&iacute;culos internos de cada parcela y se evaluaron las variables siguientes: n&uacute;mero de tallos por planta, longitud de los tallos (m), n&uacute;mero de tub&eacute;rculos / planta y masa fresca de los tub&eacute;rculos (kg) / planta.</p>      <p>A las 24 semanas de plantaci&oacute;n se evaluaron los caracteres cualitativos y cuantitativos relacionados con el follaje, y a las 36 semanas de desarrollo del cultivo (en la cosecha) los relacionados con los tub&eacute;rculos.</p>      <p>Los datos relativos al porcentaje de brotaci&oacute;n de los microtub&eacute;rculos, porcentaje de supervivencia de las plantas, n&uacute;mero de tallos por planta, longitud de los tallos, n&uacute;mero de tub&eacute;rculos / planta y masa fresca de los tub&eacute;rculos / planta se analizaron estad&iacute;sticamente mediante una prueba no param&eacute;trica de Kruskall Wallis (Rohlf, 2001).</p>      <p><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></p>      <p>Influencia de la masa fresca de los microtub&eacute;rculos sobre su brotaci&oacute;n, y sobre la supervivencia y los caracteres morfoagron&oacute;micos de las plantas derivadas de estos</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La masa fresca de los microtub&eacute;rculos influy&oacute; en la brotaci&oacute;n de estos en condiciones de campo. Cuando se plantaron directo a campo microtub&eacute;rculos con una masa fresca igual o superior a 3,0 g se obtuvo el m&aacute;s alto porcentaje de brotaci&oacute;n (91,30%), sin diferencias significativas con las coronas de tub&eacute;rculos (96,50%), pero s&iacute; con diferencias significativas respecto a los microtub&eacute;rculos con masa fresca de 1,0-2,9 g y con los microtub&eacute;rculos con masa fresca entre 0,5-0,9 g, en los cuales se obtuvo el m&aacute;s bajo porcentaje de brotaci&oacute;n (<a href="#t1">tabla 1</a>).</p>      <p align="center"><a name="t1"><img src="img/revistas/biote/v12n1/v12n1a06t1.JPG">       <p>En la literatura cient&iacute;fica revisada no fue posible encontrar trabajos publicados donde se hayan efectuado plantaciones directas de microtub&eacute;rculos de &ntilde;ame en condiciones de campo sin previa etapa de aclimataci&oacute;n. Debido, entre otras causas, a que la mayor&iacute;a de los protocolos descritos hasta el presente para la formaci&oacute;n de microtub&eacute;rculos de &ntilde;ame han producido peque&ntilde;os microtub&eacute;rculos con una masa fresca promedio inferior a 0,5 g (Balogun, 2009).</p>      <p>P&eacute;rez <i>et al</i>. (2001), en el cultivo de la papa, evaluaron la respuesta en campo de microtub&eacute;rculos de la variedad Atlantic que se obtuvieron en los SIT. Este investigador plant&oacute; directo en campo microtub&eacute;rculos con una masa fresca de 1,26 g y un di&aacute;metro promedio de 11,4 mm sin previa etapa de aclimataci&oacute;n. En la investigaci&oacute;n obtuvo porcentaje de brotaci&oacute;n de 89,0% a los 15 d&iacute;as de plantados en campo. Los resultados del presente trabajo en cuanto a la evaluaci&oacute;n de la brotaci&oacute;n de los microtub&eacute;rculos de &ntilde;ame se corresponden con los obtenidos por este investigador en el cultivo de la papa.</p>      <p>Seg&uacute;n Pruski <i>et al</i>. (2003), los microtub&eacute;rculos de mayor tama&ntilde;o y masa fresca de papa que se produjeron en los sistemas de cultivo automatizados resultaron los m&aacute;s deseados para la producci&oacute;n comercial, ellos pudieron ser plantados en campo sin previa etapa de aclimataci&oacute;n y conservados durante un per&iacute;odo de seis meses, sin que se afectara la brotaci&oacute;n. Por otra parte, Naik y Karihaloo (2007) se&ntilde;alaron que el tama&ntilde;o, la masa fresca y la edad fisiol&oacute;gica de los microtub&eacute;rculos de papa destinados para la plantaci&oacute;n directa en campo determinan la ruptura del per&iacute;odo de dormancia y brotaci&oacute;n. El tama&ntilde;o y la masa fresca de los microtub&eacute;rculos est&aacute;n determinados en gran medida por el contenido de sustancias de reserva, dentro de las cuales se encuentra el almid&oacute;n, el cual es movilizado en la brotaci&oacute;n para el posterior crecimiento y desarrollo de los brotes (Vreugdenhil, 2004; Özkaynak y Samaci, 2005).</p>      <p>Al evaluar la supervivencia de las plantas de &ntilde;ame a las seis semanas de cultivo en campo, se observ&oacute; que esta variable tambi&eacute;n estuvo influenciada por la masa fresca de los microtub&eacute;rculos, as&iacute; como por el tipo de material vegetal de plantaci&oacute;n que se emple&oacute;. Se obtuvieron los mejores porcentajes de supervivencia con las plantas procedentes de los microtub&eacute;rculos con una masa fresca igual o superior a 3,0 g (96,50%) sin diferencias significativas con las plantas procedentes de las coronas de tub&eacute;rculos de la propagaci&oacute;n convencional (98,0%). Las plantas de estos tipos de materiales de plantaci&oacute;n presentaron diferencias significativas respecto a las de microtub&eacute;rculos que ten&iacute;an un masa fresca de 1,0-2,9 g, y a las de las plantas <i>in vitro</i> previamente aclimatizadas, las cuales no presentaron diferencias significativas entre ellas. El m&aacute;s bajo porcentaje de supervivencia se obtuvo con las plantas procedentes de los microtub&eacute;rculos que ten&iacute;an una masa fresca de 0,5-0,9 g (<a href="#t2">tabla 2).</p>       <p align="center"><a name="t2"><img src="img/revistas/biote/v12n1/v12n1a06t2.JPG">      <p>P&eacute;rez (2001) obtuvo, en las plantas procedentes de los microtub&eacute;rculos de papa que se formaron en el SIT, un porcentaje de supervivencia del 77,3% a los 35 d&iacute;as de cultivo en campo, mientras que con las plantas <i>in vitro</i> s&oacute;lo logr&oacute; un 57,5% de supervivencia en esa misma etapa, debido a las caracter&iacute;sticas morfofisiol&oacute;gicas de las plantas <i>in vitro</i>, las cuales son fr&aacute;giles y d&eacute;biles. Los resultados en cuanto a la supervivencia en campo de las plantas procedentes de los microtub&eacute;rculos y las de las plantas <i>in vitro</i> de &ntilde;ame que se evaluaron se corresponden con los obtenidos por este investigador.</p>      <p>El resultado en cuanto al m&aacute;s alto porcentaje de supervivencia de las plantas procedentes de los microtub&eacute;rculos con una masa fresca igual o superior a 3,0 g, que se emplearon como material vegetal de plantaci&oacute;n directo en campo pudo deberse a que la supervivencia y el posterior crecimiento de los brotes hasta que las plantas comienzan a realizar fotos&iacute;ntesis dependen seg&uacute;n, Ijoyah <i>et al</i>. (2006), de la acumulaci&oacute;n de las sustancias de reservas del material vegetal de plantaci&oacute;n.</p>      <p>Entre los microtub&eacute;rculos de &ntilde;ame clon Pacala Duclos que se formaron en SIT, con los de una masa fresca igual o superior a 3,0 g, se alcanz&oacute; el m&aacute;s alto porcentaje de brotaci&oacute;n (91,30%) y supervivencia de las plantas (96,50%) en campo.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><i>Evaluaci&oacute;n de caracteres cualitativos</i></b></p>      <p>Las plantas de &ntilde;ame clon Pacala Duclos procedentes de los microtub&eacute;rculos, independientemente de la masa fresca de estos, no presentaron diferencias en los caracteres morfol&oacute;gicos cualitativos que se evaluaron en campo, en comparaci&oacute;n con las plantas procedentes de las plantas <i>in vitro</i> y las plantas provenientes de la propagaci&oacute;n convencional que se emplearon como controles.</p>      <p>Hasta el presente no se han desarrollado estudios sobre la estabilidad de caracteres morfol&oacute;gicos de plantas de &ntilde;ame a partir de los microtub&eacute;rculos. Seg&uacute;n Balogun (2009), evaluaciones de este tipo constituyen aspectos que deben ser investigados si se pretende desarrollar protocolos de formaci&oacute;n de microtub&eacute;rculos que pudieran ser utilizados para la conservaci&oacute;n e intercambio de germoplasma, as&iacute; como para establecer un programa de producci&oacute;n de material vegetal de plantaci&oacute;n en este cultivo.</p>      <p>En el cultivo de la papa ha sido descrito que a trav&eacute;s de la organog&eacute;nesis directa, m&eacute;todo de regeneraci&oacute;n que usa la yemas existentes en las plantas para la formaci&oacute;n de los brotes, se proporciona mayor estabilidad en los caracteres morfol&oacute;gicos en la producci&oacute;n de microtub&eacute;rculos semillas (Sarkar, 2008). En el cultivo del &ntilde;ame los microtub&eacute;rculos se desarrollan del complejo nodal primario que se encuentra en las axilas de las hojas de los segmentos nodales (Balogun, 2006). Este tipo de origen puede haber propiciado que no existieran cambios en los caracteres morfol&oacute;gicos cualitativos de las plantas de &ntilde;ame a partir de los microtub&eacute;rculos.</p>      <p>Gopal <i>et al</i>. (2008) evaluaron en campo microtub&eacute;rculos de 22 genotipos de papa en comparaci&oacute;n con tub&eacute;rculos semillas. El trabajo se desarroll&oacute; durante dos a&ntilde;os, en dos estaciones, primavera y oto&ntilde;o. Estos investigadores concluyeron que es posible establecer criterios de selecci&oacute;n en las plantas a partir de los microtub&eacute;rculos debido a la estabilidad en cuanto a h&aacute;bito de crecimiento de los tallos, caracter&iacute;stica morfol&oacute;gicas de las hojas, pigmentaci&oacute;n de los tallos, vigor de la planta, as&iacute; como para la forma y el color de los tub&eacute;rculos en comparaci&oacute;n con las plantas que se obtuvieron de los tub&eacute;rculos semillas utilizados tradicionalmente para la propagaci&oacute;n de este cultivo. Este mismo criterio pudiera emplearse en &ntilde;ame.</p>      <p><b><i>Evaluaci&oacute;n de caracteres cuantitativos</i></b></p>      <p>El tipo de material vegetal de plantaci&oacute;n influy&oacute; en la respuesta de los caracteres cuantitativos de la plantas de &ntilde;ame clon Pacala Duclos en campo. En relaci&oacute;n con el n&uacute;mero de tallos por planta se obtuvieron los mejores resultados en las plantas de los microtub&eacute;rculos con una masa fresca igual o superior a 3,0 g (5,90), las plantas propagadas <i>in vitro</i> (5,70), las de las coronas de tub&eacute;rculos procedentes de la propagaci&oacute;n convencional (5,60), y las de los microtub&eacute;rculos con una masa fresca entre 1,0- 2,9 g (5,40), sin diferencias significativas entre ellas, pero s&iacute; con los microtub&eacute;rculos con masa fresca entre 0,5-0,9 g.</p>      <p>En cuanto a la longitud de los tallos y a la masa fresca de los tub&eacute;rculos por planta, los mejores resultados se obtuvieron en las plantas de los microtub&eacute;rculos con una masa fresca igual o superior a 3,0 g (4,10 m y 3,66 kg/planta) y en las plantas de las coronas de tub&eacute;rculos procedentes de la propagaci&oacute;n convencional (3,90 m y 3,58 kg/planta) sin diferencias significativas entre ellas, pero s&iacute; con el resto de los materiales de plantaci&oacute;n.</p>      <p>Respecto al n&uacute;mero de tub&eacute;rculos por planta se lograron los mejores resultados en las plantas de los microtub&eacute;rculos con una masa fresca igual o superior a 3,0 g (3,80), en las plantas de los microtub&eacute;rculos con una masa fresca entre 1,0-2,9 g (3,40), en las plantas propagadas <i>in vitro</i> (3,20), y en las plantas de los microtub&eacute;rculos con una masa fresca entre 0,5- 0,9 g (3,20), sin diferencias significativas entre ellos, pero s&iacute; con las plantas de las coronas de tub&eacute;rculos procedentes de la propagaci&oacute;n convencional (<a href="#t3">tabla 3</a>).</p>      <p align="center"><a name="t3"><img src="img/revistas/biote/v12n1/v12n1a06t3.JPG">       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En las plantas de todos los materiales de plantaci&oacute;n obtenidos <i>in vitro</i> se obtuvieron como promedio 2,3 veces m&aacute;s tub&eacute;rculos que en las plantas procedentes de las coronas de tub&eacute;rculos de la propagaci&oacute;n convencional, esto puede estar relacionado con el efecto de rejuvenecimiento fisiol&oacute;gico y sanitario que produce el cultivo <i>in vitro</i>. Seg&uacute;n Cardone <i>et al</i>. (2004), en estos tipos de materiales de plantaci&oacute;n, el efecto que se produce cuando el tejido pierde la se&ntilde;al que pose&iacute;a de la planta madre se puede manifestar en los mismos con un aumento en el vigor fisiol&oacute;gico de determinadas variables agron&oacute;micas. Los microtub&eacute;rculos han sido considerados como un material vegetal de plantaci&oacute;n ideal para iniciar programas de producci&oacute;n de “semillas” de alta calidad (Chen et al., 2007). Los resultados del presente trabajo para el cultivo del &ntilde;ame as&iacute; lo corroboraron, pues con ellos es posible obtener en campo un mayor &iacute;ndice de multiplicaci&oacute;n. El mayor n&uacute;mero de tub&eacute;rculos que se obtuvieron en campo en las plantas de los microtub&eacute;rculos posibilita insertarlos en un programa de producci&oacute;n de material vegetal de plantaci&oacute;n de calidad y reducir el n&uacute;mero de multiplicaciones que se le debe dar a los mismos en campo para satisfacer las necesidades de material vegetal de plantaci&oacute;n certificado.</p>      <p>La respuesta que se obtuvo en las plantas de los microtub&eacute;rculos de &ntilde;ame con una masa fresca igual o superior a 3,0 g, se debi&oacute; a que al presentar la mayor acumulaci&oacute;n de sustancias de reservas, emergieron con mayor rapidez y uniformidad, y desarrollaron m&aacute;s r&aacute;pido el follaje. El mayor desarrollo de follaje le permite a las plantas interceptar m&aacute;s radiaci&oacute;n solar, realizar m&aacute;s fotos&iacute;ntesis y sintetizar mayor cantidad de carbohidratos lo que, unido a la absorci&oacute;n de las sustancias minerales por las ra&iacute;ces, repercute en el crecimiento (Bonilla, 2001). Esto corrobora el criterio de que microtub&eacute;rculos con mayor masa fresca pueden ser utilizados para la plantaci&oacute;n directa en campo y que la masa fresca influye en la respuesta de estos en campo.</p>      <p>El r&aacute;pido desarrollo vegetativo de las plantas procedentes de estos microtub&eacute;rculos pudo haber permitido que se produjeran tub&eacute;rculos por planta con una masa fresca que no difiri&oacute; de las que presentaron las plantas de las coronas de tub&eacute;rculos de la propagaci&oacute;n convencional.</p>      <p>Kawakami <i>et al</i>. (2005) estudiaron el desarrollo y la producci&oacute;n en campo de las plantas de papa provenientes de microtub&eacute;rculos y de tub&eacute;rculos semilla convencional durante cuatro a&ntilde;os. Estos investigadores sembraron tub&eacute;rculos “semillas convencional” de unos 50 g y microtub&eacute;rculos con una masa fresca de 0,5 a 1,0 g y de 1,0 a 3,0 g del cultivar Norin. Ellos obtuvieron que a los 40 d&iacute;as despu&eacute;s de la emergencia del follaje, el &iacute;ndice del &aacute;rea foliar fue el mismo, y al momento de la cosecha la masa fresca de los tub&eacute;rculos de las plantas provenientes de microtub&eacute;rculos fue un 82% de la masa de los tub&eacute;rculos provenientes de plantas de tub&eacute;rculos convencionales. Aunque obtuvieron un menor rendimiento con los microtub&eacute;rculos, sugirieron que los mismos tienen un gran potencial para su uso como material vegetal de plantaci&oacute;n en campo.</p>      <p>Los resultados del presente trabajo se comparan con los logrados por Jim&eacute;nez (2005) pero en el cultivo de la papa. Este investigador evalu&oacute; la respuesta de las plantas de los microtub&eacute;rculos de la variedad Atlantic en campo, en comparaci&oacute;n con las de las plantas <i>in vitro</i>, y con las de los microtub&eacute;rculos obtuvo un mayor n&uacute;mero de minitub&eacute;rculos, los cuales presentaron 2,10 y 1,35 veces mayor masa fresca y di&aacute;metro, respectivamente, que los minitub&eacute;rculos formados de las plantas que se desarrollaron de las plantas <i>in vitro</i>. Sin embargo, en el presente trabajo para el cultivo del &ntilde;ame no se detectaron diferencias entre las plantas de los microtub&eacute;rculos y las plantas que se desarrollaron de las plantas <i>in vitro</i> en cuanto al n&uacute;mero de tallos y tub&eacute;rculos producidos por planta, pero s&iacute; en relaci&oacute;n con la masa fresca de los tub&eacute;rculos.</p>      <p>En las plantas de los microtub&eacute;rculos de &ntilde;ame clon Pacala Duclos no se detectaron diferencias en los caracteres morfol&oacute;gicos cualitativos que se evaluaron en campo, sin embargo, las plantas de los microtub&eacute;rculos con una masa fresca igual o superior a 3,0 g, mostraron las mejores respuestas en los caracteres cuantitativos que se evaluaron.</p>      <p>Los microtub&eacute;rculos con una masa fresca superior a 3,0 g resultaron el mejor material vegetal para la plantaci&oacute;n directa en campo. Por otro lado, los microtub&eacute;rculos con masa fresca entre 1,0-2,9 pueden ser tambi&eacute;n empleados para la plantaci&oacute;n directa, pues mostraron valores de supervivencia de 87,0% que, aunque son inferiores a los obtenidos con los de m&aacute;s de 3,0 gMF, resultaron similares a los descritos como aceptables para otras especies como la papa (P&eacute;rez, 2001; Kawakami <i>et al</i>., 2005; Jim&eacute;nez, 2005; Özkaynak y Samaci, 2005; Naik y Karihaloo, 2007).</p>      <p><b>Conclusiones</b></p>      <p>Entre los materiales que se produjeron in vitro, con los microtub&eacute;rculos de &ntilde;ame con una masa fresca igual o superior a 3,0 g se alcanz&oacute; el m&aacute;s alto porcentaje de brotaci&oacute;n (91,30%) y supervivencia de las plantas (96,50%), estas mostraron las mejores respuestas en los caracteres cuantitativos que se evaluaron en campo. Estos resultados confirmaron la importancia de la masa fresca de los microtub&eacute;rculos para ser empleados como material vegetal de plantaci&oacute;n directa en campo, y mostraron que a&uacute;n es necesario continuar las investigaciones para incrementar la calidad de los microtub&eacute;rculos, en especial con una masa fresca igual o mayor a 3,0 g.</p>      <p><b>Referencias bibliogr&aacute;ficas</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>1 Amusa, N., Adegbite, A., Amuhammeda, S., Baiyewu, R. A. 2003. Yam diseases and its management in Nigeria. African Journal of Biotechnology 2 (12): 497-502.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0123-3475201000010000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2 Balogun, MO., Fawole, I., Ng, SYC., Ng, Q., Shiwachi, H., Kikuno, H. 2006. Interaction among cultural factors in microtuberization of white yam (<i>Dioscorea</i> rotundata Poir). Tropical Science 46 (1): 55-59.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0123-3475201000010000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3 Balogun, MO. 2009. Microtubers in yam germplasm conservation and propagation: The status, the prospects and the constraints. Biotechnology and Molecular Biology Reviews 4 (1): 1-10.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0123-3475201000010000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4 Bonilla, I. 2001. Introducci&oacute;n a la nutrici&oacute;n mineral de las plantas. Los elementos minerales. En Azcon-Bieto, J., Talon, M. (eds.). Fundamentos de fisiolog&iacute;a vegetal. pp. 113-131. McGraw-Hill.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0123-3475201000010000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5 Cabrera, M., Kosky, R., Rayas, A., DeFeria, M., L&oacute;pez, J., Basail, M., Medero, V. 2009. Protocolo para la formaci&oacute;n de microtub&eacute;rculos de &ntilde;ame (<i><i>Dioscorea</i> alata</i> L.) en sistema de inmersi&oacute;n temporal. Rev Colomb Biotecnol XI (2): 19-30.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0123-3475201000010000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6 Cardone, S., Olmos S., Echenique, V. 2004. Variaci&oacute;n somaclonal. En Echenique, V., Rubinstein, C., Mroginski, L. (ed.). Biotecnolog&iacute;a y mejoramiento vegetal. pp. 81-95. Springer.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0123-3475201000010000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7 Chen, FY., Wang, D., Gao, X., Wang, L. 2007. The effect of plant growth regulators and sucrose on the micropropagation of <i>Dioscorea</i> nipponica makino. Plant Growth Regulation 26 (1): 38-45.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0123-3475201000010000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8 Faostat. 2009. Disponible en: <a href="http://www.fao.org" target=_blank">http://www.fao.org</a>. Fecha de consulta: 7 de julio del 2009.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0123-3475201000010000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9 Gopal, J., Iwama, K., Jitsuyama, Y. 2008. Effect of water stress mediated through agar on <i>in vitro</i> growth of potato. <i>in vitro</i> Cell. Dev Biol Plant 44 (3): 221-228.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0123-3475201000010000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10 Hern&aacute;ndez, A., P&eacute;rez, J. M., Bosh, D., Rivero, L., Camacho, E. 1999. Nueva versi&oacute;n de clasificaci&oacute;n de los suelos de Cuba. La Habana: Instituto de Suelos. 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Ibad&aacute;n, Nigeria: Instituto Internacional del Agricultura Tropical / Roma: Instituto Internacional de Recursos Fitogen&eacute;ticos.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0123-3475201000010000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13 Jim&eacute;nez E. 2005. Mass propagation of tropical crops in temporary immersion systems. En Hvoslef-Eide, A. K., Preil, W. (eds.). Liquid Culture Systems or <i>in vitro</i> Plant Propagation. pp. 197-211. 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In vitro basal and nodal microtuberization in yam shoot cultures (Discorea rotundata Poir, cv. Obiaoturugo) under nutritional stress conditions. African Journal of Biotechnology 6 (21): 2444-2446.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0123-3475201000010000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16 Minag. 2008. Instructivo T&eacute;cnico del Cultivo del &ntilde;ame. Castellanos, P. (ed.). Ciudad de La Habana: Sedgri/ Agrinfor. 18 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0123-3475201000010000600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17 Naik, P. S., Karihaloo, J. 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O., Kevers, C., Dommes, J. 2009. Effect of reducing concentration on <i>in vitro</i> formation and sprouting in yam (<i>Dioscorea</i> cayenensis-D. rotundata complex). Plant Cell Tissue and Organ Culture 99: 55-59.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0123-3475201000010000600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20 Özkaynak, E., Samanci, B. 2005. Yield and yield components of greenhouse, field and seed bed grown potato (Solanum tuberosum L.) plantlets. Akdeniz Universitesi Ziraat Fakultesi Dergisi 18 (1): 125-129.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0123-3475201000010000600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21 Pathirana, R., Harris, J., Marian, J., McKenzie, M. 2008. A comparison of microtubers and field-grown tubers of potato (Solanum tuberosum L.) for hexoses, sucrose and their ratios following postharvest cold storage. 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