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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In Colombia, knowledge about yeast communities has been limited because most reports have focused on yeast species with clinical relevance. The spontaneous fermentation of different substrates creates important habitats for analyzing wild yeast populations; for this reason, in this study we isolated and identified yeasts associated with the "chichas" of corn, pineapple, and "arracacha," which are traditional fermented Colombian beverages. The most representative yeasts were isolated from "chicha" during its three phases of fermentation: initial, tumultuous and final. Initially, we made a partial characterization of isolated yeasts, including macroscopic and microscopic descriptions, physiological tests, and measurement of capacity for producing spores and filaments. However, because these techniques were not sufficient for identification of isolated yeasts to the level of genus and species, the study was complemented by using molecular techniques based on restriction analysis of the ITS1-5.8S rRNA gene-ITS2. When this technique did not permit us to obtain positive results and confirm the PCR-RFLP results, we used the sequence of the D1/D2 domain of the 26S rRNA gene instead for most representative isolates. With these techniques, we identified the most representative yeast species of the three classes of "chicha": Candida tropicalis, Pichia kluyveri, Pichia guilliermondii, Hanseniapora guilliermondii, Pichia fermentans, Saccharomyces cerevisiae, Candida maltosa, Rhodotorula glutinis, Torulaspora delbrueckii, Hanseniaspora uvarum, Kazachstania exigua, Kluyveromyces marxianus, Yarrowia lypolitica, Candida parapsilosis, Debaromyces hansenii, Cryptococcus arboriformis, Saccharomyces martiniae, Dekkera anomala, Aureobasidium pullulans and Candida pseudointermedia. The preliminary characterization of isolated yeasts, based on ethanol-tolerance and salt-tolerance tests, permitted recognition of wild yeasts for possible biotechnological uses in industry.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p align="right"><font face="verdana" size="2"><b>ART&Iacute;CULO CORTO</b></font></p>     <p><font size="4"><b> Diversidad de levaduras asociadas a chichas tradicionales de Colombia</b></font></p>     <p><font size="3">Yeast diversity associated to Colombian traditional &quot;chichas&quot;</font></p>     <p><i> William Andr&eacute;s L&oacute;pez-Arboleda<sup>1</sup> , Mauricio Ram&iacute;rez-Castrill&oacute;n<sup>1</sup> , Luz Adriana Mambuscay-Mena<sup>1</sup> , Esteban Osorio-Cadavid<sup>2</sup> </i></p>     <p> <sup>1</sup> Grupo de Investigaci&oacute;n en Biolog&iacute;a Molecular de Microorganismos, Universidad del Valle, A.A. 25360. Cali-Colombia. E-mail: <a href="mailto:willi8702@gmail.com">willi8702@gmail.com</a>, <a href="mailto:mauriciogeteg@gmail.com">mauriciogeteg@gmail.com</a>, <a href="mailto:luza607@gmail.com">luza607@gmail.com</a>    <br> <sup>2</sup> Profesor Titular secci&oacute;n de Gen&eacute;tica, Departamento de Biolog&iacute;a, Universidad del Valle, Cali-Colombia. E-mail: <a href="mailto:esteban.osorio@correounivalle.edu.co">esteban.osorio@correounivalle.edu.co</a>    <br> </p>     <p>Recibido: marzo 25 de 2010 Aprobado: noviembre 5 de 2010</p>  <hr>      <p><b>Resumen</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> En Colombia el conocimiento de la comunidad levaduriforme ha sido limitado, ya que los estudios se han enfocado principalmente en especies de inter&eacute;s cl&iacute;nico. Las fermentaciones espont&aacute;neas a partir de diversos sustratos representan h&aacute;bitats de gran importancia para el estudio de la din&aacute;mica de las poblaciones de levaduras nativas, por esta raz&oacute;n,  en el presente estudio se aislaron e identificaron las levaduras asociadas a las chichas de ma&iacute;z, pi&ntilde;a y arracacha, que son bebidas fermentadas de manera artesanal en Colombia.</p>     <p> Se realiz&oacute; el aislamiento de las levaduras m&aacute;s representativas de la chicha durante sus tres fases de fermentaci&oacute;n: inicial, tumultuosa y final. Inicialmente, se hizo una caracterizaci&oacute;n parcial de los aislados, que incluy&oacute; pruebas fisiol&oacute;gicas, y medici&oacute;n de su capacidad para producir filamentos y esporas. Sin embargo, debido a que estas t&eacute;cnicas no fueron suficientes para identificar los aislados hasta el nivel taxon&oacute;mico de g&eacute;nero o de especie, se complement&oacute; el estudio de cada aislado empleando t&eacute;cnicas moleculares basadas en el an&aacute;lisis de restricci&oacute;n del gen rRNA 5.8S y los espaciadores transcritos internos (ITS1 e ITS2). Cuando el empleo de esta t&eacute;cnica no permiti&oacute; obtener resultados definitivos y para confirmar las asignaciones realizadas usando PCR-RFLPs, se secuenci&oacute; el dominio D1/D2 del gen 26S rRNA de los aislados m&aacute;s representativos.</p>     <p> Mediante estas t&eacute;cnicas se lograron identificar las especies m&aacute;s representativas de los tres tipos de chicha: <i>Candida  tropicalis</i>, <i>Pichia kluyveri</i>, <i>Pichia guilliermondii</i>, <i>Hanseniapora guilliermondii</i>, <i>Pichia fermentans</i>, <i>Saccharomyces cerevisiae</i>, <i>Candida maltosa</i>, <i>Rhodotorula glutinis</i>,  <i>Torulaspora delbrueckii</i>, <i>Hanseniaspora uvarum</i>, <i>Kazachstania exigua</i>, <i>Kluyveromyces marxianus</i>, <i>Yarrowia lypolitica</i>, <i>Candida parapsilosis</i>, <i>Debaromyces hansenii</i>, <i>Cryptococcus arboriformis</i>, <i>Saccharomyces martiniae</i>, <i>Dekkera anomala</i>, <i>Aureobasidium pullulans</i> y <i>Candida pseudointermedia</i>. La caracterizaci&oacute;n preliminar de los aislados obtenidos, basada en pruebas de tolerancia a etanol y halo-tolerancia, permiti&oacute; identificar levaduras nativas con posible utilizaci&oacute;n biotecnol&oacute;gica en el sector industrial.</p>     <p><b>Palabras clave</b>: Levaduras, diversidad, chicha, identificaci&oacute;n molecular, biotecnolog&iacute;a </p>      <p><b>Abstract</b></p>     <p> In Colombia, knowledge about yeast communities has been limited because most  reports have focused on yeast species with clinical relevance. The spontaneous fermentation of different substrates creates important habitats for analyzing wild yeast populations; for this reason, in this study we isolated and identified yeasts associated with the &quot;chichas&quot; of corn, pineapple, and &quot;arracacha,&quot; which are traditional fermented Colombian beverages.</p>     <p> The most representative yeasts were isolated from &quot;chicha&quot; during its three phases of fermentation: initial, tumultuous and final. Initially, we made a partial characterization of isolated yeasts, including macroscopic and microscopic descriptions, physiological tests, and measurement of capacity for producing spores and filaments. However, because these techniques were not sufficient for identification of isolated yeasts to the level of genus and species, the study was complemented by using molecular techniques based on restriction analysis of the ITS1-5.8S rRNA gene-ITS2. When this technique did not permit us to obtain positive results and confirm the PCR-RFLP results, we used the sequence of the D1/D2 domain of the 26S rRNA gene instead for most representative isolates.</p>     <p> With these techniques, we identified the most representative yeast species of the three classes of &quot;chicha&quot;: <i>Candida  tropicalis</i>, <i>Pichia kluyveri</i>, <i>Pichia guilliermondii</i>, <i>Hanseniapora guilliermondii</i>, <i>Pichia fermentans</i>, <i>Saccharomyces cerevisiae</i>, <i>Candida maltosa</i>, <i>Rhodotorula glutinis</i>,  <i>Torulaspora delbrueckii</i>, <i>Hanseniaspora uvarum</i>, <i>Kazachstania exigua</i>, <i>Kluyveromyces marxianus</i>, <i>Yarrowia lypolitica</i>, <i>Candida parapsilosis</i>, <i>Debaromyces hansenii</i>, <i>Cryptococcus arboriformis</i>, <i>Saccharomyces martiniae</i>, <i>Dekkera anomala</i>, <i>Aureobasidium pullulans</i> and <i>Candida pseudointermedia</i>. The preliminary characterization of isolated yeasts, based on ethanol-tolerance and salt-tolerance tests, permitted recognition of wild yeasts for possible biotechnological uses in industry.</p>     <p><b>Key words</b>: Yeasts, diversity, &quot;chicha&quot;, molecular identification, biotechnology </p> <hr>     <p><b>Introducci&oacute;n</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> La chicha es una bebida alcoh&oacute;lica tradicional producida en Colombia y otros pa&iacute;ses suramericanos como Ecuador, Per&uacute; y Bolivia (Rodr&iacute;guez <i>et al.</i>, 2005). Para la obtenci&oacute;n de esta bebida se utilizan diferentes sustratos, tales como el ma&iacute;z (<i>Zea mays</i>), pi&ntilde;a (<i>Ananas comosus</i>), arracacha (<i>Arracacia xanthorhriza</i>), chontaduro (<i>Bactris gasipaes</i>), man&iacute; (<i>Arachis hypogaea</i>) y trigo (<i>Triticum sativum</i>) (Bristol, 1988; Cutler and C&aacute;rdenas, 1947; Hayashida, 2008). En t&eacute;rminos generales, su preparaci&oacute;n consta de la mezcla de la materia prima con agua, &quot;panela&quot; (ca&ntilde;a de az&uacute;car) y otros suplementos (clavos, canela, hojas de naranja), que var&iacute;an de acuerdo al sustrato empleado.   El proceso de fermentaci&oacute;n puede durar de 15 a 20 d&iacute;as para cereales y 4 a 8 d&iacute;as en frutas y tub&eacute;rculos, a temperatura ambiente (de 10<sup>o</sup>C a 32<sup>o</sup>C). El contenido alcoh&oacute;lico de la chicha var&iacute;a entre 2 a 12 por ciento (v/v) (Steinkraus, 1995) </p>      <p> A lo largo de la fermentaci&oacute;n se presenta una din&aacute;mica y sucesi&oacute;n de la comunidad levaduriforme, directamente relacionada con el aumento en la concentraci&oacute;n de alcohol y variabilidad de compuestos org&aacute;nicos. Al inicio del proceso es posible detectar la mayor diversidad de levaduras, y a medida que el proceso avanza a las fases intermedia y final aparecen levaduras que se caracterizan principalmente por su alcohol-resistencia y alto poder fermentativo como la especie <i>Saccharomyces cerevisiae</i>. La intervenci&oacute;n de las diferentes especies de levaduras aportan propiedades organol&eacute;pticas al producto final (Esteve-Zarzoso <i>et al.</i>, 2001). </p>      <p> En Colombia se desconoce casi por completo la diversidad de levaduras asociadas a suelos, aguas, alimentos y a&uacute;n a  los procesos fermentativos. En este sentido, Duarte <i>et al.</i> (1994) evaluaron la diversidad de levaduras del g&eacute;nero Cryptococcus presentes en &aacute;rboles de Eucaliptos de Bogot&aacute;, siendo clasificadas de acuerdo a caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas y bioqu&iacute;micas. Vanegas <i>et al.</i> (2004) aislaron e identificaron levaduras nativas colombianas de los g&eacute;neros Candida, <i>Cryptococcus</i> y <i>Rhodotorula</i> a partir de diferentes sustratos, usando el kit API-20C AUX. Solamente Osorio-Cadavid <i>et al.</i> (2008) evaluaron la diversidad de levaduras de la bebida fermentada &quot;champ&uacute;s&quot; mediante t&eacute;cnicas moleculares, identificando levaduras tales como <i>S. cerevisiae, Issatchenkia orientalis, P. fermentans, Zygosaccharomyces fermentati, Torulospora delbruekii, Hanseniaspora spp., P. kluyveri var. kluyveri, y Galactomyces geotrichum</i>. </p>      <p> El prop&oacute;sito de esta investigaci&oacute;n fue analizar la riqueza de especies de levaduras y hongos levaduriformes asociada a la producci&oacute;n de tres clases de chicha. De esta forma, este trabajo representa el primer reporte sobre la caracterizaci&oacute;n por m&eacute;todos moleculares de la composici&oacute;n  de levaduras nativas, a nivel de especie, que est&aacute;n implicadas durante la fermentaci&oacute;n de la chicha a partir de diferentes sustratos (pi&ntilde;a, ma&iacute;z y arracacha), en Colombia. </p>      <p><b>Materiales y m&eacute;todos</b></p>      <p><b><i> Preparaci&oacute;n de las chichas </i></b></p>     <p> Las chichas de ma&iacute;z, pi&ntilde;a y arracacha fueron preparadas en cinco repeticiones. La <a href="#t1">tabla 1</a> muestra el diagrama de flujo de la preparaci&oacute;n de las diferentes chichas. La chicha de pi&ntilde;a se prepara a&ntilde;adiendo agua y panela a c&aacute;scaras de pi&ntilde;a, dejando fermentar espont&aacute;neamente entre 3 y 6 d&iacute;as. Por otro lado, para la preparaci&oacute;n de las chichas de ma&iacute;z y arracacha se debe realizar la cocci&oacute;n previa del sustrato antes de mezclar con otros ingredientes como la panela, clavos, entre otros, dej&aacute;ndose fermentar en recipientes de vidrio con tapa pl&aacute;stica entre 15 y 20 d&iacute;as para ma&iacute;z y 5 a 8 d&iacute;as para pi&ntilde;a y arracacha.</p>      <p align="center"><a name="t1"><img src="img/revistas/biote/v12n2/v12n2a14t1.jpg"></a></p>      <p><b><i> Aislamiento de levaduras </i></b></p>     <p> De cada chicha preparada se tomaron tres muestras en cada una de las fases de la fermentaci&oacute;n: inicial (cuando todos los ingredientes estaban reunidos), tumultuosa (se presentaba burbujeo apreciable y acumulaci&oacute;n de gas) y final (una vez finalizado el burbujeo), cada una con tres repeticiones. A partir de cada muestra, se hicieron diluciones seriadas (10<sup>-1</sup>-10<sup>-5</sup>) y de cada diluci&oacute;n se tomaron 100&micro;l para la siembra por dispersi&oacute;n en medio de cultivo YPDA (1% extracto de levadura, 2% peptona, 2% de glucosa, 2% agar-agar) suplementado con 25mg/l de penicilina y cloramfenicol. Las placas se incubaron a 30<sup>o</sup>C durante 2 a 3 d&iacute;as. Un n&uacute;mero aleatorio de cada tipo de colonia fue aislado para su posterior identificaci&oacute;n.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b> Caracterizaci&oacute;n fenot&iacute;pica </b></p>     <p> Los aislados fueron analizados seg&uacute;n criterios morfol&oacute;gicos y fisiol&oacute;gicos de acuerdo a las descripciones realizadas por Boekhout <i>et al.</i> (2004). Se evalu&oacute; la morfolog&iacute;a celular, modo de reproducci&oacute;n vegetativa y caracterizaci&oacute;n fisiol&oacute;gica. La habilidad para fermentar (2% de fuente de carbono) y asimilar (0.5% de fuente de carbono) glucosa, maltosa, sacarosa, galactosa y xilosa fue evaluada por la acumulaci&oacute;n de di&oacute;xido de carbono en tubos durham y turbidez en escala de Wickerham, respectivamente. Finalmente, se evalu&oacute; la halo-tolerancia (10, 15% p/v) y tolerancia a etanol (10 y 15% v/v) en medio YPDA (Boekhout <i>et al.</i> 2004). Todas las pruebas fisiol&oacute;gicas se realizaron a 30C.</p>      <p><b> Extracci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n de ADN </b></p>     <p> La extracci&oacute;n del ADN de levaduras  se realiz&oacute; utilizando la metodolog&iacute;a descrita por Osorio-Cadavid <i>et al.</i> (2009). La cuantificaci&oacute;n se realiz&oacute; mediante espectrofotometr&iacute;a a 260nm y se determin&oacute; la pureza mediante la relaci&oacute;n espectrofotom&eacute;trica A260/A280nm.</p>      <p><b><i> Identificaci&oacute;n molecular de levaduras </i></b></p>     <p> La identificaci&oacute;n de los aislados fue llevado a cabo por PCR-RFLP de la regi&oacute;n ITS1-5.8S rDNA-ITS2 como lo describe Esteve-Zarzoso <i>et al.</i> (1999). Para la amplificaci&oacute;n, los primers usados fueron ITS1 (5&acute;-TCCGTAGGTGAACCTGCGG-3&acute;)  e   ITS4 (5&acute;-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3&acute;) (White <i>et al.</i> 1990). Los productos de PCR fueron digeridos con 1U de las endonucleasas Hae III, Hinf I y Cfo I (Fermentas, USA) a 37<sup>o</sup>C por 2h.</p>      <p> Para la amplificaci&oacute;n, se tomaron 7&micro;l (aproximadamente 1ng/&micro;l) de ADN extra&iacute;do y se resuspendi&oacute; en 28&micro;l de mezcla de PCR: 0.5&micro;M ITS1, 0.5&micro;M ITS4, 10&micro;M dNTPs, 1X NH<sub>4</sub><sup>+</sup>, 1.5mM MgCl<sub>2</sub>, y 1U de Taq Polimerasa. Las reacciones fueron llevadas a cabo en un termociclador autom&aacute;tico (M.J. Research, USA), bajo las siguientes condiciones: desnaturalizaci&oacute;n inicial a 94<sup>o</sup>C por 5 minutos, 30 ciclos de desnaturalizaci&oacute;n a 94<sup>o</sup>C por 1 min, apareamiento a 55<sup>o</sup>C por 1 min, y extensi&oacute;n a 72<sup>o</sup>C por 2 min, con una extensi&oacute;n final de 10 min a 72<sup>o</sup>C. (Esteve-Zarzoso <i>et al.</i>, 1999). Los productos de PCR y fragmentos de restricci&oacute;n fueron analizados en geles de agarosa al 1.5%, en buffer TBE 1X (Tris-Borato, EDTA). Los geles fueron te&ntilde;idos con bromuro de etidio. Los tama&ntilde;os de los fragmentos fueron estimados por comparaci&oacute;n con un marcador de peso molecular 50-1000pb (Fermentas, USA), usando el software UVIgelStartMw v11.0&copy;</p>      <p> Los patrones obtenidos fueron comparados con la base de datos de identificaci&oacute;n r&aacute;pida de levaduras Yeast-id.com del Consejo Superior de Investigaciones Cient&iacute;ficas (CSIC), Espa&ntilde;a.  Se tom&oacute; como control positivo para an&aacute;lisis morfol&oacute;gicos, bioqu&iacute;micos y moleculares la cepa comercial RH218 (ATCC) de <i>Saccharomyces cerevisiae</i>.</p>      <p><b> Secuenciaci&oacute;n del Dominio D1/D2 del gen ribosomal 26S </b></p>     <p> La secuenciaci&oacute;n del dominio D1/D2 de la subunidad grande del gen ribosomal 26S fue llevada a cabo para los grupos principales de los aislados, e identificaciones dudosas, de acuerdo a Kurtzman and Robnett (1998). Para la amplificaci&oacute;n del dominio D1/D2 se usaron los primers NL1 (5&acute;-GCATATCAATAAGCGGAGGAAAAG-3&acute;) y NL4  (5&acute;-GGTCCGTGTTTCAAGACGG-3&acute;). Las reacciones fueron llevados a cabo en un termociclador (Multigene-Labnet, USA) bajo las siguientes condiciones: desnaturalizaci&oacute;n inicial a 94<sup>o</sup>C por 5 minutos, 30 ciclos de desnaturalizaci&oacute;n a 94<sup>o</sup>C por 1 min, apareamiento a 55<sup>o</sup>C por 30 seg, y extensi&oacute;n a 72<sup>o</sup>C por 1 min, con una extensi&oacute;n final de 10 min a 72<sup>o</sup>C. (Osorio-Cadavid <i>et al.</i>, 2008).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Los productos de PCR fueron purificados y secuenciados por la empresa MACROGEN (USA) bajo las condiciones estandarizadas por ellos. Posteriormente, las secuencias fueron ensambladas mediante el software Chromas Pro v. 1.42 &reg; y comparadas con las secuencias reportadas en el GenBank usando el algoritmo &quot;Basic Local Alignment Search Tool (BLAST)&quot;. </p>      <p><b><i> Resultados </i></b></p>     <p> A partir de 196 cepas aisladas de levaduras y hongos levaduriformes, fueron obtenidos 22 perfiles de restricci&oacute;n diferentes. La <a href="#t2">tabla 2</a> contiene las longitudes de los amplificados por PCR y de los fragmentos obtenidos despu&eacute;s de la digesti&oacute;n con las tres enzimas de restricci&oacute;n. Nueve de los 22 grupos fueron identificados despu&eacute;s de comparar los pesos moleculares de los productos de restricci&oacute;n con la base de datos Yeast-id.com (Esteve-Zarzoso <i>et al.</i>, 1999; Guillam&oacute;n <i>et al.</i>, 1998). Las especies asignadas para estos grupos fueron <i>Saccharomyces cerevisiae</i>, Candida tropicalis, <i>Pichia guilliermondii</i>, <i>C. parapsilosis, K. martiniae, C. maltosa</i>, <i>Rhodotorula glutinis</i>, <i>Dekkera anomala</i>, <i>C. pseudointermedia</i>. Para la identificaci&oacute;n de los dem&aacute;s grupos y confirmaci&oacute;n de los anteriores, fue necesaria la secuenciaci&oacute;n del dominio D1/D2 de la subunidad grande 26S rDNA. En total, se analizaron 50 aislados mediante esta t&eacute;cnica y se asignaron a nivel taxon&oacute;mico de especie con homolog&iacute;as entre 98 y 100% usando el algoritmo BLAST de la base de datos GenBank. La identificaci&oacute;n de los grupos II, V, VII, X, XIV y XXII fue confirmada comparando las secuencias con el GenBank. Por otro lado, los aislamientos de los otros grupos s&oacute;lo pudieron ser identificados mediante secuenciaci&oacute;n, ya que el m&eacute;todo PCR-RFLP no lo permiti&oacute; hacer. De esta forma, fueron identificadas hasta nivel de especie el 95% de las cepas estudiadas.</p>      <p align="center"><a name="t2"><a target="_new" href="img/revistas/biote/v12n2/v12n2a14t2.jpg"><img border="2" width="300" height="300" src="img/revistas/biote/v12n2/v12n2a14t2.jpg"></a></a></p>      <p> La riqueza y abundancia de levaduras encontradas en cada uno de los diferentes tipos de chicha de acuerdo a su fase de fermentaci&oacute;n se muestran en la <a href="#t2">tabla 2</a>. Las especies que presentaron mayor abundancia en las tres chichas fueron <i>Saccharomyces cerevisiae</i> (15%), <i>Pichia guilliermondii</i> (18%) y <i>Candida tropicalis</i> (18%). En la chicha de pi&ntilde;a no se encontr&oacute; ninguna especie que estuviera presente en las tres fases de fermentaci&oacute;n, a diferencia de lo encontrado en las chichas de ma&iacute;z (<i>C. tropicalis</i>) y de arracacha (<i>H. uvarum y P. kluyveri</i>). La especie <i>P. kluyveri</i> estuvo presente en la fase inicial de las tres chichas, mientras que <i>S. cerevisiae</i> se present&oacute; en las fases tumultuosa y final. Especies como <i>H. guilliermondii</i> y <i>P. guilliermondii</i> fueron compartidas en la chicha de ma&iacute;z y pi&ntilde;a, y <i>C. tropicalis</i> en ma&iacute;z y arracacha. Las dem&aacute;s especies (<a href="#t3">tabla 3</a>) fueron aislados &uacute;nicos para cada tipo de chicha.</p>      <p align="center"><a name="t3"><img src="img/revistas/biote/v12n2/v12n2a14t3.jpg"></a></p>      <p> En la <a href="#t4">tabla 4</a> se muestran las principales caracter&iacute;sticas de los grupos obtenidos a partir de las chichas. Entre los aislados, 96 de los 196 crecieron en una concentraci&oacute;n de etanol del 15% (v/v), 65 presentaron filamentaci&oacute;n, 90 fermentaron glucosa en un lapso de tiempo no mayor a 7 d&iacute;as, 6 toleraron concentraciones del 15% (p/v) de NaCl, y s&oacute;lo 3 pudieron degradar el almid&oacute;n. Por otro lado, se realizaron pruebas de asimilaci&oacute;n de xilosa y galactosa y de fermentaci&oacute;n de galactosa encontrando que 35 aislados fueron positivos para la asimilaci&oacute;n de estos az&uacute;cares, y 3 lograron fermentar galactosa en menos de 7 d&iacute;as.</p>      <p align="center"><a name="t4"><img src="img/revistas/biote/v12n2/v12n2a14t4.jpg"></a></p>      <p><b> Discusi&oacute;n </b></p>     <p> Las bebidas fermentadas tradicionales, preparadas con variedades de sustrato (cereales, frutas y tub&eacute;rculos) son de gran valor cultural en distintos lugares del mundo. Aunque la microbiota de estos productos es compleja y desconocida, se han reportado levaduras que est&aacute;n involucradas en diferentes tipos de alimentos y bebidas fermentadas artesanales (Zulu <i>et al.</i>, 1997; Torner <i>et al.</i>, 1992; Gadaga <i>et al.</i>, 2001)</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> En las chichas de pi&ntilde;a y arracacha se present&oacute; un patr&oacute;n de riqueza aparentemente similar a lo reportado en otros estudios (Suarez <i>et al.</i>, 2007; Bovo et al., 2009), que se caracteriza por la presencia de gran cantidad de especies diferentes de levaduras con pocos aislados representativos, y la dominancia casi completa por parte de S. cerevisiae al final de la fermentaci&oacute;n. Contrario a esto, la chicha de ma&iacute;z mostr&oacute; una menor riqueza de especies en la fase inicial de la fermentaci&oacute;n debido a la cocci&oacute;n prolongada del sustrato durante la preparaci&oacute;n de la bebida. En la fase tumultuosa, la riqueza de especies fue similar a las otras chichas, no obstante, en la fase final no se present&oacute; dominancia de S. cerevisiae.</p>      <p> El an&aacute;lisis de los aislados mostr&oacute; que, en la chicha de ma&iacute;z, las especies dominantes fueron <i>C. tropicalis, P. guilliermondii y P. fermentans</i>. Para la chicha de pi&ntilde;a las especies m&aacute;s representativas fueron <i>P. guilliermondii</i> y <i>S. cerevisiae</i>. Finalmente, en la chicha de arracacha dominaron las especies <i>H. uvarum, P. kluyveri y S. cerevisiae</i>. La participaci&oacute;n de estas especies ha sido reportada en otros estudios de bebidas fermentadas (Osorio-Cadavid <i>et al.</i>, 2008; Sefa-Dedeh <i>et al.</i>, 1999; Jeyaram <i>et al.</i>, 2008).</p>      <p> <i>Candida  tropicalis</i> estuvo presente en las tres fases de la fermentaci&oacute;n de la chicha de ma&iacute;z y en la fase tumultuosa de la chicha de arracacha. Sefa-Dedeh <i>et al.</i> (1999) encontraron esta especie en &quot;pito&quot;, una bebida fermentada tradicional de Ghana (&Aacute;frica),  que se realiza a base de cereales como el ma&iacute;z y el sorgo. Su presencia en este tipo de bebidas puede estar relacionada con su capacidad de degradar carbohidratos complejos (Rodr&iacute;guez <i>et al.</i>, 2006). Por otro lado, <i>Pichia guilliermondii</i> fue registrado en la fase inicial y tumultuosa de las chichas de ma&iacute;z y pi&ntilde;a. Esta especie fue aislada por Morrissey <i>et al.</i> (2004), durante la fermentaci&oacute;n de la cidra, Jeyaram <i>et al.</i> (2008) en el &quot;hamei&quot;, un vino de arroz tradicional de la India, Zott <i>et al.</i> (2008), evaluando la din&aacute;mica y diversidad de levaduras no-Saccharomyces durante las etapas tempranas de la elaboraci&oacute;n del vino. Algunas investigaciones relacionadas con la contaminaci&oacute;n de vinos, han reportado a <i>Pichia guilliermondii</i> como responsable de la p&eacute;rdida de varias caracter&iacute;sticas organol&eacute;pticas importantes en vinos almacenados (Dias <i>et al.</i>, 2003). <i>Pichia fermentans</i> fue aislada &uacute;nicamente en las fases tumultuosa y final de la chicha de ma&iacute;z. Esta especie ha sido encontrada en otros tipos de bebidas fermentadas, como el &quot;champ&uacute;s&quot; donde fue reportada como una de las levaduras fermentativas dominantes (Osorio-Cadavid <i>et al.</i>, 2008).  Clemente-Jim&eacute;nez <i>et al.</i> (2004) identificaron esta especie durante la fermentaci&oacute;n espont&aacute;nea de 6 variedades de mosto de uvas.</p>      <p> Quiz&aacute; la especie m&aacute;s reconocida, tanto en bebidas fermentadas espont&aacute;neas como inoculadas, es S. cerevisiae (Jespersen, 2003), siendo una de las de mayor inter&eacute;s a nivel comercial,  ya que produce y tolera altas concentraciones de etanol y sintetiza compuestos vol&aacute;tiles que le brindan el sabor y aroma al producto final. En las bebidas estudiadas, fue registrada en las fases tumultuosa y final con alta dominancia en pi&ntilde;a y arracacha. Omemu <i>et al.</i> (2007) aislaron estas cepas de &quot;ogy&quot;, una bebida que se produce de la fermentaci&oacute;n del ma&iacute;z, sorgo o millo en los pa&iacute;ses del oeste de &Aacute;frica. Adem&aacute;s, Osorio-Cadavid <i>et al.</i> (2008), reportaron esta especie en el &quot;champ&uacute;s&quot;. H. uvarum fue registrada solamente para la chicha de arracacha en las tres fases fermentativas. Mingorance-Cazorla <i>et al.</i> (2003) la reportan como una levadura poco resistente a altas concentraciones de alcohol, que sugiere, dependiendo de la din&aacute;mica de comunidades microbianas, una alta variabilidad de contenido alcoh&oacute;lico en el producto final, adem&aacute;s, participa en la producci&oacute;n de &eacute;steres (Clemente-Jimenez <i>et al.</i>, 2004). <i>Pichia kluyveri</i> fue registrada en las tres chichas y en la literatura ha sido utilizada como una especie co-fermentativa en procesos de producci&oacute;n de bebidas fermentadas, uno de estos involucr&oacute; la producci&oacute;n de tioles vol&aacute;tiles que a&ntilde;aden aroma y sabor  al &quot;Sauvignon Blanc&quot; de Nueva Zelanda. Osorio-Cadavid <i>et al.</i> (2008) tambi&eacute;n mostraron la importancia de esta especie en la producci&oacute;n de compuestos vol&aacute;tiles, detectando la producci&oacute;n de caprilato de butilo en la bebida tradicional colombiana &quot;champ&uacute;s&quot;. Adem&aacute;s, Ferreira <i>et al.</i> (2008) resaltan la importancia de <i>Pichia kluyveri</i> por su alta actividad pectinol&iacute;tica a lo largo de la fermentaci&oacute;n de la pulpa y el muc&iacute;lago de caf&eacute;.</p>      <p> Las propiedades de las bebidas fermentadas tradicionales son el resultado combinado de la actividad metab&oacute;lica sin&eacute;rgica de grupos microbianos o cepas &uacute;nicas, junto con las caracter&iacute;sticas del proceso de producci&oacute;n. En los procesos de fermentaci&oacute;n, las levaduras brindan una contribuci&oacute;n &uacute;til para el mejoramiento del sabor y aceptabilidad del producto (Banigo <i>et al.</i>, 1974; Odunfa and Adeyele, 1985). Nuestros resultados mostraron que las especies de levaduras y cepas aisladas de estos tres tipos de chicha colombiana, poseen una gran diversidad metab&oacute;lica, que representa una fuente importante de nuevos biotipos de levaduras con potencial aplicaci&oacute;n en la industria.</p>      <p><b> Conclusiones </b></p>      <p> Este estudio brinda informaci&oacute;n importante sobre la diversidad de la microbiota en bebidas fermentadas artesanales colombianas. Especies como Y. lipolytica y K. exigua no han sido reportadas en otras bebidas fermentadas. Los datos obtenidos en este estudio pueden ser &uacute;tiles para la selecci&oacute;n de levaduras con caracter&iacute;sticas deseables para la industria. Finalmente, es importante la evaluaci&oacute;n del potencial biotecnol&oacute;gico de estos aislados, en futuras investigaciones.</p>      <p><b>Agradecimientos</b></p>      <p> Este proyecto fue financiado por la Vicerrector&iacute;a de Investigaciones de la Universidad del Valle (CI: 7752). Se agradece al Consejo Superior de Investigaciones Cient&iacute;ficas CSIC de la Universidad de Valencia (Espa&ntilde;a) por el acceso a la base de datos Yeast-id.com. Finalmente, agradecemos a la profesora Neyla Benitez por la revisi&oacute;n y sugerencias de este manuscrito.</p>      <p><b>Referencias bibliogr&aacute;ficas</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>1 Banigo, E.O.I., de Man, J.M., Duitschaever, C.L. 1974. Utilization of high-lysine corn for the manufacture of ogi using a new improved processing system. Cereal Chemistry 51: 559-572&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0123-3475201000020001400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2 Boekhout, T., Robert, V.,  Smith, M., Stalpers, J., Yarrow, D., Boer, P., Buis, R., Gijswijt, G., Kurtzman, C.P., Fell, J.W., Gu&eacute;ho, E., Guillot, J., Roberts, I. 2004. Yeasts of the World Version 2.0. ETI Biodiversity Center, Amsterdam, The Netherlands&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0123-3475201000020001400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3 Bovo, B., Andrighetto, C., Carlot, M., Corich, V., Lombardi, A., Giacomini, A. 2009. Yeast population dynamics during pilot-scale storage of grape marcs for the production of Grappa, a traditional Italian alcoholic beverage. International Journal of Food Microbiology 129: 221-228&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0123-3475201000020001400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4 Bristol, M.L. 1988. Edible arracachas of the Sibundoy. Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas, F&iacute;sicas y Naturales 16: 107-110&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0123-3475201000020001400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5 Clemente-Jimenez, J.M., Mingorance-Cazorla, L., Martinez-Rodriguez, S., Lasheras-Vazquez, F.J., Rodriguez-Vico, F. 2004. Molecular characterization and oenological properties of wine yeasts isolated during spontaneous fermentation of six varieties of grape must. Food Microbiology 21: 149-155&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0123-3475201000020001400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6 Cutler, H.C., Cardenas, M. 1947. Chicha, a native south american beer. Botanical Museum Leaflets, Harvard University 18: 33-60&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0123-3475201000020001400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7 Dias, L., Dias, S., Sancho, T., Stender, T., Querol, A., Malfeito-Ferreira, M., Loureiro, V. 2003. Identification of yeast originated from wine related envairoment and capable of producing 4-ethylphenol. Food Microbiology 20: 567-574&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0123-3475201000020001400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8 Duarte A., Ordo&ntilde;ez N. y Casta&ntilde;eda E. 1994. Asociaci&oacute;n de levaduras del g&eacute;nero Cryptococcus con especies de Eucalyptus en Santaf&eacute; de Bogot&aacute;. Rev. Inst. Med. Trop. Sao Paulo. 36(2): 125-130&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0123-3475201000020001400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9 Esteve-Zarzoso, B., Belloch, C., Uruburu, F., Querol, A. 1999. Identification of yeasts by RFLP analysis of the 5.8S rRNA gene and the two ribosomal internal transcribed spacers. International Journal of Systematics Bacteriology 49: 329-337&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0123-3475201000020001400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10 Esteve-Zarzoso, B., Peris-Tor&aacute;n, M.J., Garc&iacute;a-Maiquez, E., Uruburu, F., Querol, A. 2001. Yeast population dynamics during the fermentation and biological aging of sherry wines.  Journal of Applied Environmental Microbiology 67: 2056-2061&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0123-3475201000020001400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11 Ferreira-Silva, C., Batista, L.R., Magalhes-Abreu, L., Souza-Dias, E., Freitas-Schwan, R. 2008. Succession of bacterial and fungal communities during natural coffee (Coffea arabica) fermentation. Food Microbiology. 25: 951-957.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0123-3475201000020001400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12 Gadaga, T.H., Mutukumira, A.N., Narvhus, J.A. 2001. The growth and interaction of yeasts and lactic acid bacteria isolated from Zimbabwean naturally fermented milk in UHT milk. International Journal of Food Microbiology 68: 21-32&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0123-3475201000020001400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13 Guillam&oacute;n, J.M., Cano, J., Barrio, E., Sabat&eacute;, J., Querol, A. 1998. Rapid identification of wine yeast species based on RFLP analysis of the ribosomal ITS regions. Archeological Microbiology 169: 387-392&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0123-3475201000020001400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14 Hayashida, F.M. 2008. Ancient beer and modern brewers: Ethnoarchaeological observations of chicha production in two regions of the North Coast of Peru. Journal of Anthropological Archaeology 27: 161-174&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0123-3475201000020001400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15 Hayashida, F.M. 2008. Ancient beer and modern brewers: Ethnoarchaeological observations of chicha production in two regions of the North Coast of Peru. Journal of Anthropological Archaeology 27: 161-174&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0123-3475201000020001400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16 Jeyaram, K., Mohendro-Singh, W., Capece, A., Romano, P. 2008. Molecular identification of yeast species associated with &quot;Hamei&quot;- A traditional starter used for rice wine production in Manipur, India. International Journal of Food Microbiology 124: 115-125.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0123-3475201000020001400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17 Kurtzman, C.P., Robnett., C.J.  1998. Identification and phylogeny of ascomycetous yeasts from analysis of nuclear large subunit (26S) ribosomal DNA partial sequences. Antonie van Leeuwenhoek 73: 331-71.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0123-3475201000020001400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18 Mingorance-Cazorla, L., Clemente-Jim&eacute;nez, J.M., Mart&iacute;nez-Rodr&iacute;guez, S., Las Heras-V&aacute;zquez F.J., Rodr&iacute;guez-Vico, F. 2003. Contribution of different natural yeasts to the aroma of two alcoholic beverages. World Journal of Microbiology and Biotechnology 19: 297-304.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0123-3475201000020001400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19 Morrissey, W.F., Davenport, B., Querol, A., Dobson, A.D.W.  2004. The role of indigenous yeasts in traditional Irish cider Fermentations. Journal of Applied Microbiology 97: 647-655&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0123-3475201000020001400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20 Odunfa, S.A., Adeyele, S. 1985. Microbiological changes during the traditional production of Ogi-baba, a West African fermented sorghum gruel. Journal of Cereal Science 3: 173-180&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0123-3475201000020001400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21 Omemu, A.A., Oyewoleb, O.B., Bakole, M.O. 2007. Significance of yeasts in the fermentation of maize for ogi production. Food Microbiology. 24: 571-576.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0123-3475201000020001400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22 Osorio-Cadavid, E., Ram&iacute;rez, M., Lopez, W.A., Mambuscay, L.A. 2009. Estandarizaci&oacute;n de un protocolo sencillo para la extracci&oacute;n de ADN gen&oacute;mico de levaduras. Revista Colombiana de Biotecnolog&iacute;a 11: 125-131&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0123-3475201000020001400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23 Osorio-Cadavid, E., Chaves-Lopez, C., Tofalo, R., Paparella, A., Suzzi, G. 2008. Detection and identification of wild yeasts in champ&uacute;s, a fermented colombian maize beverage. Food Microbiology 25: 771-777&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0123-3475201000020001400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24 Rodr&iacute;guez, D., Espitia, M., Caicedo, Y., Cordoba, Y., Baena., Y., Mora, C. 2005. Caracterizaci&oacute;n de algunas propiedades fisicoqu&iacute;micas y farmacot&eacute;cnicas del almid&oacute;n de arracacha (Arracacia xanthorriza). Revista Colombiana de Ciencias Qu&iacute;micas y Farmac&eacute;uticas. 34(2): 140-146&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0123-3475201000020001400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25 Rodr&iacute;guez, Z., Boucourt, R., Rodr&iacute;guez, J., Albelo, N., Nu&ntilde;ez, O., Herrera, F.R. 2006. Isolation and selection of microorganisms with capacity for degrading starch. Cuban Journal of Agricultural Science 40: 331-336&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0123-3475201000020001400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26 Sefa-Dedeh, S., Sanni, A.I., Tetteh, G., Sakyi-Dawson, E. 1999. Yeasts in the traditional brewing of Pito in Ghana. World Journal of Microbiology and Biotechnology 15: 593-597&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0123-3475201000020001400026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27 Steinkraus, K.H. 1995. Handbook of Indigenous Fermented Foods. New York, Marcel Dekker, Inc.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0123-3475201000020001400027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28 Su&aacute;rez, B., Pando, R., Fern&aacute;ndez, N., Querol, A., Rodr&iacute;guez, R. 2007. Yeast species associated with the spontaneous fermentation of cider. Food Microbiology 24: 25-31.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0123-3475201000020001400028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>29 Torner, M.J., Martinez-Anaya, M.A., Antuna, B., Benedito de Barber, C. 1992. Headspace flavour compounds produced by yeasts and lactobacilli during fermentation of preferments and bread doughs. International Journal of Food Microbiology 15: 145-152&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0123-3475201000020001400029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>30 Vanegas, I.A., Yepes, M.S. y Ruiz, O.S. 2004. Producci&oacute;n de Xilitol a partir de levaduras colombianas. Revista Colombiana de Biotecnolog&iacute;a. 6: 31-36&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0123-3475201000020001400030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>31 White, T.J., Burns, T., Lee, S., Tayler, J., 1990. Amplification and Direct Sequencing of Fungal Ribosomal RNA Genes for Phylogenetics. Academic Press, New York.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0123-3475201000020001400031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>32 Zott, K.,  Miot-Sertier, C., Claisse, O., Lonvaud-Funel, A., Masneuf-Pomarede, I. 2008. Dynamics and diversity of non-Saccharomyces yeasts during the early stages in winemaking. International Journal of Food Microbiology. 125: 197-203.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0123-3475201000020001400032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>33 Zulu, R.M., Dillon, V.M., Owens, J.D. 1997. Munkoyo beverage, a traditional Zambian fermented maize gruel using Rhynchosia root as amylase source. International Journal of Food Microbiology 34: 249-258&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0123-3475201000020001400033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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