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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Adaptación de una cepa compatible con Acidithiobacillus ferrooxidans sobre concentrados de calcopirita (CuFeS2), esfalerita (ZnS) y galena (PbS)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In this study the adaptation of Acidithiobacillus ferrooxidans-like to high concentrations of chalcopyrite, sphalerite and galena were evaluated with two mineral-particle sizes: 200 and 325 Tyler mesh. The strain was adapted using two simultaneous processes. The first one consisted in a gradual decreasing of the main energy source, ferrous sulphate. The second one consisted in a gradual increasing of the mineral content. Finally, a test was made without ferrous sulphate. The serial subculturing was found to be an efficient strategy to adapt Acidithiobacillus ferrooxidans-like to higher concentrations of chalcopyrite, sphalerite and galena. This indicates that a suitable protocol was employed. The results showed that Acidithiobacillus ferrooxidans-like is more resistant to high concentration of sphalerite, chalcopyrite and galena in descendant order. The particle size played an important role in the adaption of microorganism to the mineral.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p align="right"><font face="verdana" size="2"><b>ART&Iacute;CULO CORTO</b></font></p>     <p><font size="4"><b> Adaptaci&oacute;n de una cepa compatible con <i>Acidithiobacillus ferrooxidans</i> sobre concentrados de calcopirita (CuFeS<sub>2</sub>), esfalerita (ZnS) y galena (PbS)</b></font></p>     <p><font size="3"> Adaptation of a strain <i>Acidithiobacillus ferrooxidans</i> compatible on concentrates of chalcopyrite (CuFeS<sub>2</sub>), sphalerite (ZnS) and galena (PbS)</font></p>     <p><i> E. Mej&iacute;a <sup>1</sup> , J. D. Ospina <sup>2</sup> , B. L. Osorno <sup>3</sup> , M. A. M&aacute;rquez <sup>4</sup> , A. L. Morales <sup>5</sup>.</i></p>     <p> <sup>1</sup> Escuela de Ingenier&iacute;a de Materiales, Grupo de Mineralog&iacute;a Aplicada y Bioprocesos, Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n. <a href="mailto:ermejiare@unal.edu.co">ermejiare@unal.edu.co</a>    <br> <sup>2</sup> Escuela de Ingenier&iacute;a de Materiales, Grupo de Mineralog&iacute;a Aplicada y Bioprocesos, Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n. <a href="mailto:judospinaco@unal.edu.co">judospinaco@unal.edu.co</a>    <br> <sup>3</sup> Escuela de Ingenier&iacute;a de Materiales, Grupo de Mineralog&iacute;a Aplicada y Bioprocesos, Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n. <a href="mailto:losorno@unal.edu.co">losorno@unal.edu.co</a>    <br> <sup>4</sup> Escuela de Ingenier&iacute;a de Materiales, Grupo de Mineralog&iacute;a Aplicada y Bioprocesos, Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n. <a href="mailto:mmarquez@unal.edu.co">mmarquez@unal.edu.co</a>    <br> <sup>5</sup> Grupo de Estado S&oacute;lido, Sede de Investigaci&oacute;n Universitaria, Universidad de Antioquia, Sede Medell&iacute;n. <a href="mailto:amoral@fisica.udea.edu.co">amoral@fisica.udea.edu.co</a>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> </p>     <p>Recibido: julio 30 de 2010 Aprobado: mayo 25 de 2011</p>  <hr>      <p><b>Resumen</b></p>     <p> En este estudio se evalu&oacute; la adaptaci&oacute;n de una cepa compatible con <i>Acidithiobacillus ferrooxidans</i> a altas densidades de pulpa de calcopirita, esfalerita y galena, con dos distribuciones de tama&ntilde;o de part&iacute;cula, -200 y -325 serie Tyler de tamices. Los microorganismos fueron adaptados por la disminuci&oacute;n gradual de la fuente principal de energ&iacute;a, sulfato ferroso, y el aumento en el contenido de mineral, para finalmente realizar un subcultivo sin la adici&oacute;n de fuente de energ&iacute;a externa. La realizaci&oacute;n de subcultivos en serie result&oacute; ser una estrategia eficaz para la adaptaci&oacute;n a altas densidades de pulpa de esfalerita, calcopirita y galena indicando que el protocolo empleado es adecuado. Los resultados muestran que la cepa compatible con <i>Acidithiobacillus ferrooxidans</i> es m&aacute;s resistente a altas concentraciones de esfalerita, seguido por calcopirita y finalmente por galena. El tama&ntilde;o de part&iacute;cula juega un papel fundamental en la adaptaci&oacute;n de los microorganismos al mineral.</p>     <p><b>Palabras clave</b>: esfalerita, calcopirita, galena, adaptaci&oacute;n, <i>Acidithiobacillus ferrooxidans</i>, biolixiviaci&oacute;n.</p>      <p><b>Abstract</b></p>     <p> In this study the adaptation of <i>Acidithiobacillus ferrooxidans</i>-like to high concentrations of chalcopyrite, sphalerite and galena were evaluated with two mineral-particle sizes: 200 and 325 Tyler mesh. The strain was adapted using two simultaneous processes. The first one consisted in a gradual decreasing of the main energy source, ferrous sulphate. The second one consisted in a gradual increasing of the mineral content. Finally, a test was made without ferrous sulphate. The serial subculturing was found to be an efficient strategy to adapt <i>Acidithiobacillus ferrooxidans</i>-like to higher concentrations of chalcopyrite, sphalerite and galena. This indicates that a suitable protocol was employed. The results showed that <i>Acidithiobacillus ferrooxidans</i>-like is more resistant to high concentration of sphalerite, chalcopyrite and galena in descendant order. The particle size played an important role in the adaption of microorganism to the mineral.</p>     <p><b>Key words</b>: Sphalerite, chalcopyrite, galena, adapting, <i>Acidithiobacillus ferrooxidans</i>, bioleaching.</p>  <hr>      <p><b>Introducci&oacute;n</b></p>      <p> La biolixiviaci&oacute;n de sulfuros met&aacute;licos ha despertado gran inter&eacute;s en las &uacute;ltimas d&eacute;cadas debido al agotamiento de menas de alto grado, lo cual hace necesario encontrar nuevas tecnolog&iacute;as &quot;ambientalmente m&aacute;s amigables&quot; que permitan el beneficio de menas de bajo tenor (Brierley y Luinstra, 1993; Marsden y House, 1992; Watling, 2006). </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Los sulfuros utilizados en este trabajo presentan gran importancia industrial. La esfalerita (Zn<sub>x</sub>Fe<sub>1_</sub>x<sub>S</sub>) es la fuente primaria de zinc en el mundo, presentando gran inter&eacute;s en aplicaciones industriales como la galvanizaci&oacute;n de aceros, la obtenci&oacute;n de lat&oacute;n y en fabricaci&oacute;n de pinturas (Harmer <i>et al</i>., 2006; Haghshenas <i>et al</i>., 2009). </p>      <p> La calcopirita (CuFeS<sub>2</sub>) es la fuente primaria de cobre en el mundo, representando el 70% de las reservas. Su beneficio se hace generalmente por pirometalurg&iacute;a; sin embargo, esta tecnolog&iacute;a genera contaminaciones de SO2, principal causante de las lluvias &aacute;cidas. La investigaci&oacute;n se ha centrado, por tanto, en la hidrometalurgia donde la extracci&oacute;n de cobre se ve limitada por su car&aacute;cter refractario (Dutrizac, 1981; Rivadeneira, 2006). La galena (PbS) es un mineral de gran importancia desde dos puntos de vista, 1) como fuente primaria de plomo, y 2) como material semiconductor, con un bandgap aproximado de 0,4 eV (Muscat y Gale, 2003). Adem&aacute;s, este mineral es importante desde el punto de vista ambiental ya que a menudo es responsable de aumentar la acidificaci&oacute;n de las aguas luego de la explotaci&oacute;n minera (Muscat y Gale, 2003). </p>      <p> La adaptaci&oacute;n de animales, plantas y microorganismos al ambiente es un fen&oacute;meno natural. Los organismos adaptados a ambientes espec&iacute;ficos por largos per&iacute;odos de tiempo presentan mejores resultados (Elzeky y Attia, 1995). En los procesos de lixiviaci&oacute;n se realizan generalmente varias etapas de adaptaci&oacute;n del microorganismo con el fin de obtener una mejor velocidad de disoluci&oacute;n del metal de inter&eacute;s (Shahverdi <i>et al</i>., 2001; Shi y Fang, 2004; Xia <i>et al</i>., 2008). En los procesos biohidrometal&uacute;rgicos, la adaptaci&oacute;n a iones met&aacute;licos realizada en cultivos selectivos es el m&eacute;todo m&aacute;s popular para lograr una buena actividad de las cepas (Haghshenas <i>et al</i>., 2009).</p>      <p> Los microorganismos com&uacute;nmente usados en la lixiviaci&oacute;n de sulfuros, <i>Acidithiobacillus ferrooxidans</i> y <i>Acidithiobacillus thiooxidans</i> met&aacute;licos son mes&oacute;filos, se presentan en intervalos de temperatura entre los 20 y 45 &ordm;C; los acid&oacute;filos viven en ambientes cuya acidez puede bajar hasta pH &lt; 1, y los quimiolit&oacute;trofos, que derivan la energ&iacute;a para llevar a cabo sus procesos metab&oacute;licos de compuestos inorg&aacute;nicos (Bozdemir <i>et al</i>., 1996; Rawling <i>et al</i>., 1999; Daoud y Karamanev, 2005), los cuales obtienen la energ&iacute;a necesaria de la oxidaci&oacute;n de compuestos reducidos del azufre y del Fe<sup>2+</sup> a Fe<sup>3+</sup>. La diferencia entre estos dos microorganismos es que <i>Acidithiobacillus thiooxidans</i> no es capaz de utilizar la oxidaci&oacute;n del ion ferroso como fuente de energ&iacute;a (Bozdemir <i>et al</i>., 1996; Rawling <i>et al</i>., 1999; Cabrera <i>et al</i>., 2005; Daoud y Karamanev, 2006).</p>      <p> La exposici&oacute;n de cultivos mes&oacute;filos a concentrados de sulfuros met&aacute;licos genera inhibici&oacute;n o disminuci&oacute;n en su actividad, especialmente a altas densidades de pulpa. Este fen&oacute;meno se debe a varios factores: 1) menor cantidad de ox&iacute;geno disuelto, 2) da&ntilde;o a la pared celular como resultado de la fricci&oacute;n entre las part&iacute;culas minerales y los microorganismos, y 3) efecto nocivo de los iones met&aacute;licos como Pb<sup>2+</sup>, Cu<sup>2+</sup> y Zn<sup>2+</sup> (Cabrera <i>et al</i>., 2004; Akcil <i>et al</i>., 2007). Sin embargo, estas bacterias pueden ser adaptadas para tolerar estos factores inhibitorios (Cabrera <i>et al</i>., 2004; Xia <i>et al</i>., 2008). El m&eacute;todo generalmente usado para adaptar los microorganismos al mineral, en estos proceso, consiste en una serie de cultivos sucesivos en los cuales se incrementa la densidad de pulpa y se disminuye la fuente de energ&iacute;a principal, obligando a los microorganismos a crecer a expensas de la disoluci&oacute;n del mineral (Haghshenas <i>et al</i>., 2009).</p>      <p> En la biolixiviaci&oacute;n de concentrados de esfalerita, calcopirita y galena, un factor que retarda e inhibe la actividad bacteriana es la toxicidad de altas concentraciones de Zn<sup>2+</sup>, Cu<sup>2+</sup> y Pb<sup>2+</sup> que se encuentran en la soluci&oacute;n (Rawling <i>et al</i>., 1999; Dopson <i>et al</i>., 2003; Xia <i>et al</i>., 2008). Gentina y Acevedo (2005) encontraron niveles inhibitorios para <i>Acidithiobacillus ferrooxidans</i>. Para el caso del Cu<sup>2+</sup> y Zn<sup>2+</sup>, una concentraci&oacute;n mayor a 10000 mg/L gener&oacute; efectos inhibitorios. Aston <i>et al</i>. (2010) observaron que, para el caso del plomo, solo 0,036 mg/L generaban inhibici&oacute;n. Xia <i>et al</i>. (2008) y Haghshenas <i>et al</i>. (2009 a y b) encontraron que se daba una mejor lixiviaci&oacute;n del Cu<sup>2+</sup> en las cepas adaptadas de <i>Acidithiobacillus ferrooxidans</i>. Li y Jun-Ke (2000) encontraron resultados similares para la disoluci&oacute;n de Zn<sup>2+</sup>. Por tanto, una buena adaptaci&oacute;n de los microorganismos al mineral aumenta la tasa de disoluci&oacute;n de los metales de inter&eacute;s.</p>      <p> El prop&oacute;sito de este trabajo fue comparar la adaptaci&oacute;n de una cepa compatible con <i>Acidithiobacillus ferrooxidans</i> a altas densidades de pulpa de calcopirita, esfalerita y galena, aumentando gradualmente el porcentaje de pulpa y disminuyendo la fuente de energ&iacute;a &mdash;sulfato ferroso&mdash;, y trabajando con dos distribuciones de tama&ntilde;o de part&iacute;cula.</p>      <p><b>Materiales y m&eacute;todos</b></p>      <p><b><i> Obtenci&oacute;n y caracterizaci&oacute;n inicial del mineral </i></b></p>     <p> Los experimentos se realizaron usando muestras naturales de mineral tomadas en varias minas del departamento de Antioquia. La esfalerita se tom&oacute; de la mina El Centeno (Buritic&aacute;), la galena fue provista por la empresa minera Frontino Gold Mine (Segovia), y la calcopirita fue tomada de la mina La Chorrera (Cisneros). Los minerales fueron sometidos, individualmente, a un proceso de conminuci&oacute;n y concentraci&oacute;n gravim&eacute;trica en mesa Wilfley, con el fin de concentrar la fase de inter&eacute;s. Para el caso de la esfalerita, fue necesario realizar un proceso de flotaci&oacute;n espumante. Los concentrados fueron molidos en mortero de &aacute;gata y tamizado con el fin de asegurar dos distribuciones de tama&ntilde;os de part&iacute;cula: ?200 y -325 de acuerdo con la serie Tyler de tamices. El mineral se esteriliz&oacute; en autoclave a 18 psi y 120 &ordm;C por 20 min. Mediante el uso del microscopio &oacute;ptico de luz plana polarizada, modo luz reflejada, marca Leitz Laborolux 11POL, con objetivos de aumento de 10X y 20X en aire y 32X y 50X de inmersi&oacute;n en aceite, se estim&oacute; por conteo de puntos, seg&uacute;n norma ASTM D 2799 de 2009, la composici&oacute;n mineral&oacute;gica resultante.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><i> Microorganismos empleados </i></b></p>     <p> Se utiliz&oacute; una cepa compatible con <i>Acidithiobacillus ferrooxidans</i>, cedida por el laboratorio de biomineralog&iacute;a de la Universidad Nacional de Colombia, sede Medell&iacute;n. La cepa es proveniente de la mina de carb&oacute;n &quot;La Angostura&quot; manto &quot;El Vampiro II&quot; ubicada en el municipio de Morales, Cauca. En el estudio hecho por Cardona (2007) se verific&oacute; la compatibilidad de dichos microorganismos con <i>Acidithiobacillus ferrooxidans</i> por medio de pruebas bioqu&iacute;micas. Los microorganismos fueron crecidos previamente en medio T&K con una composici&oacute;n qu&iacute;mica de 0,5% de (NH<sub>4</sub>)SO<sub>4</sub>; 0,5% de MgSO<sub>4</sub>.7H<sub>2</sub>O; 0,5% de K<sub>2</sub>HPO<sub>4</sub> y 33,33 g/L de sulfato ferroso. Durante este proceso se logr&oacute; aumentar la concentraci&oacute;n celular y obtener una poblaci&oacute;n id&oacute;nea para inocular los ensayos ~ 108 c&eacute;lulas/ml, estimada a partir de conteo en c&aacute;mara de Newbauer.</p>      <p><b><i> Ensayos de adaptaci&oacute;n </i></b></p>     <p> Los microorganismos fueron adaptados independientemente a concentrados de calcopirita, esfalerita y galena, en medio T&amp;K, con reemplazo sucesivo de sulfato ferroso por concentrado de mineral. La primera etapa consisti&oacute; en 2,5% (p/v) de mineral y 10% (v/v) de sulfato ferroso, el segundo subcultivo 5% (p/v) de mineral y 7,5% (v/v) de sulfato ferroso, el tercer subcultivo 7,5% (p/v) de mineral y 5% (v/v) de sulfato ferroso, el pen&uacute;ltimo subcultivo const&oacute; de 10% (p/v) de mineral y 2,5% (v/v) de sulfato ferroso, y el &uacute;ltimo periodo de adaptaci&oacute;n se hizo con 10% (p/v) de mineral y fue inoculado sin adici&oacute;n externa de sulfato ferroso. Los medios fueron acidificados a pH 1,8 con &aacute;cido sulf&uacute;rico (H2SO4) al 98%; esta soluci&oacute;n fue esterilizada en autoclave a 120 &ordm;C por 20 min. Los experimentos se inocularon con 10% (v/v) y una poblaci&oacute;n de 108 c&eacute;lulas/ml, la cual fue determinada por conteo en c&aacute;mara de Newbauer. Los ensayos de biolixiviaci&oacute;n se llevaron a cabo por 14 d&iacute;as en erlenmeyers de 250 ml, utilizando un volumen de trabajo de 100 ml. Se hizo control de evaporaci&oacute;n, diariamente, por p&eacute;rdida de peso. Los ensayos fueron incubados con agitaci&oacute;n de 180 rpm &plusmn; 2 rpm y 30 &ordm;C &plusmn; 1 &ordm;C. Todas las condiciones fueron replicadas y se incluy&oacute; el respectivo control abi&oacute;tico.</p>      <p><b><i> Medidas de Eh y pH </i></b></p>     <p> Cada dos d&iacute;as se hizo un seguimiento de la cin&eacute;tica del proceso mediante medidas de pH (HACH HQ40d multi PHC30103) con electrolito KCl y potenciales de &oacute;xido reducci&oacute;n (Shot Handylab 1 Pt 6880) in situ (electrodo de referencia Ag0/AgCl). Las medidas se hicieron en c&aacute;mara de flujo laminar horizontal para garantizar las condiciones de esterilidad en los electrodos empleados y en el sistema. En los ensayos con concentrado de galena (tanto para los ensayos inoculados como los controles abi&oacute;ticos), fue necesario acidificar el sistema con &aacute;cido sulf&uacute;rico (H<sub>2</sub>SO<sub>4</sub>) con el fin de evitar efectos nocivos en los microorganismos ya que la galena consume protones, aumentando el pH hasta valores superiores a 5,0 como ha sido reportado por Bhatti <i>et al</i>. (1993) y Garc&iacute;a <i>et al</i>. (1995).</p>      <p><b> Resultados </b></p>      <p><b> Caracterizaci&oacute;n inicial de los minerales </b></p>     <p> Los an&aacute;lisis al &oacute;ptico mostraron que para la esfalerita la fase mineral principal fue esfalerita (ZnS) 80% con cantidades menores de pirita (FeS<sub>2</sub>) 4%, calcopirita (CuFeS<sub>2</sub>) 10% y cuarzo (SiO<sub>2</sub>) 6%; la composici&oacute;n de la calcopirita fue 88% de calcopirita (CuFeS<sub>2</sub>), 9% de ganga (SiO<sub>2</sub>), 1% de covelita (CuS) y 2% de molibdenita (MoS<sub>2</sub>), para el caso de la galena la concentraci&oacute;n fue 93,3% de galena (PbS), 6,2% de esfalerita (ZnS) y 0,5% de calcopirita (CuFeS<sub>2</sub>).</p>      <p><b> Calcopirita (CuFeS<sub>2</sub>).  Potencial de &oacute;xido-reducci&oacute;n (Eh) y pH </b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> En general, todos los subcultivos presentaron una fase de adaptaci&oacute;n seguida de una fase estacionaria para finalmente estabilizarse hacia el final de proceso (<a href="#f1">figura 1 a, c, e y g</a>). Sin embargo, se presentaron peque&ntilde;as variaciones en los subcultivos. En la primera etapa la fase de adaptaci&oacute;n o fase lag dur&oacute; 6 d&iacute;as para el tama&ntilde;o de part&iacute;cula m&aacute;s grueso, mientras que para el tama&ntilde;o de part&iacute;cula m&aacute;s fino dur&oacute; solo 2 d&iacute;as (<a href="#f1">figura 1a</a>). En la segunda etapa el tama&ntilde;o de part&iacute;cula m&aacute;s fino present&oacute; un comportamiento similar que en la etapa anterior, siendo un poco m&aacute;s larga la fase lag (alrededor de 8 d&iacute;as), mientras que la malla m&aacute;s gruesa mostr&oacute; un crecimiento exponencial desde el inicio del proceso (<a href="#f1">figura 1 c</a>). En el tercer subcultivo, los dos tama&ntilde;os de part&iacute;cula presentaron fase lag hasta el d&iacute;a 4, seguido de una fase exponencial para finalmente estabilizarse. El ensayo realizado con tama&ntilde;o de part&iacute;cula m&aacute;s fino present&oacute; un mayor Eh (620 mV) (<a href="#f1">figura 1 e</a>).</p>      <p align="center"><a name="f1"><img src="img/revistas/biote/v13n1/v13n1a18f1.jpg"></a></p>      <p> En el &uacute;ltimo periodo de adaptaci&oacute;n el comportamiento fue similar. Sin embargo, la fase de adaptaci&oacute;n fue mayor para el tama&ntilde;o de part&iacute;cula m&aacute;s fino, mientras que el tama&ntilde;o m&aacute;s grueso dur&oacute; 2 d&iacute;as (<a href="#f1">figura 1g</a>). Es importante anotar que los ensayos no inoculados no presentan cambios aparentes en ninguno de los subcultivos (<a href="#f1">figura 1 a, c, e y g</a>). En todos los subcultivos se observ&oacute; que al aumentar el contendido de pulpa se present&oacute; un leve incremento en el pH (<a href="#f1">figura 1b, d, f y h</a>). En el caso del segundo y cuarto subcultivo el pH disminuye y se estabiliza al final de proceso, siendo m&aacute;s r&aacute;pido este descenso para el mayor porcentaje de pulpa (<a href="#f1">figura 1 d y h</a>). El pH en los ensayos no inoculados fue estable solo en el primer subcultivo (<a href="#f1">figura 1 b</a>). El segundo y tercer subcultivo exhibieron un incremento progresivo del pH en el tiempo (alrededor de 2,8) (<a href="#f1">figura 1 d y f</a>). En el &uacute;ltimo subcultivo el tama&ntilde;o de part&iacute;cula m&aacute;s grueso present&oacute; un incremento a lo largo del proceso, mientras que el tama&ntilde;o m&aacute;s fino no mostr&oacute; cambios aparentes (<a href="#f1">figura 1 h</a>).</p>      <p><b><i> Esfalerita (ZnxFe1xS). Potencial de &oacute;xido-reducci&oacute;n (Eh) y pH </i></b></p>     <p> En general, todos los subcultivos presentaron un comportamiento similar al concentrado de calcopirita, mostrando una fase de adaptaci&oacute;n seguida de una fase de crecimiento exponencial y finalmente una fase estacionaria (<a href="#f2">figura 2 a, c, e y g</a>). Sin embargo, al igual que para el concentrado de calcopirita, se presentaron peque&ntilde;as variaciones en los subcultivos. En la primera etapa, la fase lag duro 4 d&iacute;as para ambos tama&ntilde;os de part&iacute;cula, seguido de un incremento exponencial hasta el final de proceso (<a href="#f2">figura 2 a</a>). En el segundo subcultivo se observ&oacute; un crecimiento exponencial desde el inicio del proceso para ambos tama&ntilde;os de part&iacute;cula (<a href="#f2">figura 2 c</a>). El tercer subcultivo present&oacute; una fase de adaptaci&oacute;n de cuatro d&iacute;as para ambos tama&ntilde;os de part&iacute;cula, seguida de un crecimiento exponencial para finalmente estabilizarse en el tiempo (<a href="#f2">figura 2 e</a>). El cuarto subcultivo evidenci&oacute; una fase lag mayor para el tama&ntilde;o de part&iacute;cula m&aacute;s fino (6 d&iacute;as), seguida de un crecimiento exponencial hasta el final de proceso. Mientras que el tama&ntilde;o de part&iacute;cula m&aacute;s grueso mostr&oacute; una fase lag de dos d&iacute;as seguida de un crecimiento exponencial para finalmente estabilizarse (<a href="#f2">figura 2 g</a>). Los ensayos no inoculados no presentaron cambios aparentes en ninguno de los subcultivos de adaptaci&oacute;n (<a href="#f2">figura 2 a, b, e y g</a>). El comportamiento del pH en general para todos los subcultivos present&oacute; un incremento en los primeros d&iacute;as del proceso para finalmente descender y estabilizarse (<a href="#f2">figura 2 b, d, f y h</a>). Este aumento inicial en el pH fue m&aacute;s marcado en el &uacute;ltimo subcultivo (<a href="#f2">figura 2 g</a>). Los ensayos no inoculados mostraron un aumento progresivo del pH hasta estabilizase 199 en todos los 200 subcultivos, alcanzando mayor acidez a mayor porcentaje de pulpa (<a href="#f2">figura 2 b, d, f y h</a>).</p>      <p align="center"><a name="f2"><img src="img/revistas/biote/v13n1/v13n1a17f2.jpg"></a></p>      <p><b><i> Galena (PbS). Potencial de &oacute;xido-reducci&oacute;n (Eh) y pH </i></b></p>     <p> Al igual que para el concentrado de calcopirita y esfalerita, se observ&oacute; la presencia de tres fases caracter&iacute;sticas en la curvas de Eh: fase de adaptaci&oacute;n o fase lag, fase de crecimiento exponencial y fase estacionaria (<a href="#f3">figura 3 a, c, e y g</a>). Para los dos primeros subcultivos el comportamiento es muy similar, presentando una fase de adaptaci&oacute;n de 4 d&iacute;as para el primero y de 2 d&iacute;as para el segundo, seguido de una fase de crecimiento exponencial hasta el final de proceso (alcanzando valores alrededor de 600 mV) (<a href="#f3">figura 3 a y c</a>). Los dos &uacute;ltimos subcultivos presentaron fases de adaptaci&oacute;n m&aacute;s largas (6 y 8 d&iacute;as respectivamente), seguidas de una fase de crecimiento exponencial. Los valores de Eh alcanzados son menores, alrededor de 550 mV (<a href="#f3">figura 3 e y g</a>). En general, se observ&oacute; un aumento generalizado del pH en todas las etapas de adaptaci&oacute;n, a pesar de la acidificaci&oacute;n del sistema con &aacute;cido sulf&uacute;rico (hasta el d&iacute;a 6), pero a partir del d&iacute;a sexto el pH decae y se estabiliza en el tiempo (<a href="#f3">figura 3 b, d, f y h</a>). Los ensayos no inoculados presentaron un comportamiento creciente para todos los subcultivos (<a href="#f3">figura 3 b, d, f y h</a>). Sin embargo, en el tercer y el cuarto subcultivos se observa un descenso a partir del d&iacute;a 8 (<a href="#f3">figura 3 f y h</a>). Cabe anotar que en todos los subcultivos los valores de Eh y pH son similares durante todo el proceso para los dos tama&ntilde;os de part&iacute;cula.</p>      <p align="center"><a name="f3"><img src="img/revistas/biote/v13n1/v13n1a17f3.jpg"></a></p>      <p><b> Discusi&oacute;n </b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><i> La importancia del pH </i></b></p>     <p> A continuaci&oacute;n se discuten los comportamientos obtenidos para los concentrados de esfalerita, calcopirita y galena durante el per&iacute;odo de adaptaci&oacute;n. El pH es un factor determinante en el proceso de adaptaci&oacute;n de los microorganismos a los diferentes minerales e influye de forma significativa en la velocidad de crecimiento de los mismos, debido a que afecta a los grupos ionizables presentes en las enzimas, situadas en el citoplasma y periplasma de la c&eacute;lula (Das <i>et al</i>., 1999; G&oacute;mez y Cantero, 2005).</p>      <p> El aumento inicial en el pH puede deberse a varios factores: 1) La presencia de carbonatos y fases silicatadas en contacto con la soluci&oacute;n lixiviante genera consumo de &aacute;cido (Sampson <i>et al</i>., 2005; Arroyave, 2007); 2) el consumo de protones generado principalmente en los monosulfuros como calcopirita, esfalerita y galena siendo mayor en este &uacute;ltimo (Garc&iacute;a <i>et al</i>., 1995; Da Silva, 2004; Ballester, 2005), y 3) a la oxidaci&oacute;n del Fe<sup>2+</sup> (Bevilaqua <i>et al</i>., 2002; Meruane y Vargas, 2003).</p>      <p> El aumento inicial de pH en todos los subcultivos de adaptaci&oacute;n para el caso de la esfalerita se debe aparentemente a la presencia de carbonatos en el concentrado, ya que este conten&iacute;a gran cantidad de ganga (alrededor del 6%). El aumento pudo inhibir el adecuado crecimiento de los microorganismos y por tanto retardar la adaptaci&oacute;n (Das <i>et al</i>., 1999). Sin embargo, en todos los subcultivos se observa estabilidad en el pH hacia el final de proceso (<a href="#f2">figura 2 b, d, f y h</a>), lo cual sugiere una neutralizaci&oacute;n de los carbonatos, ya que este mineral en presencia de &aacute;cido sulf&uacute;rico se neutraliza formando yeso y otro tipo de sulfatos dependiendo de la composici&oacute;n qu&iacute;mica del carbonato (M&aacute;rquez, 1999). En general, el incremento en el pH fue mayor para las muestras m&aacute;s finas, lo cual pudo deberse a que un menor tama&ntilde;o de part&iacute;cula se traduce en mayor &aacute;rea superficial y, por tanto, una mayor reactividad, generando un consumo de protones m&aacute;s elevado. Adem&aacute;s, a menor tama&ntilde;o de part&iacute;cula se aumenta el estr&eacute;s hidrodin&aacute;mico para los microorganismos, lo cual pudo evitar que estos favorecieran la neutralizaci&oacute;n de carbonatos m&aacute;s r&aacute;pidamente como ocurri&oacute; para el mayor tama&ntilde;o de part&iacute;cula (<a href="#f2">figura 2 b, d, f y h</a>). Estos resultados est&aacute;n de acuerdo con lo observado por Silverman (1961), Deveci (2004) y Haghshenas <i>et al</i>. (2009 a y b). Por otra parte, Deveci (2002) encontr&oacute; que a menor tama&ntilde;o de part&iacute;cula hay mayor posibilidad de colisiones, las cuales son las responsables del da&ntilde;o celular o incluso de la muerte de los microorganismos. El consumo de &aacute;cido tambi&eacute;n puede ser atribuido a la oxidaci&oacute;n del Fe<sup>2+</sup>; no obstante, este proceso genera un aumento menor en el pH (~3), seg&uacute;n lo reportado por Bevilaqua <i>et al</i>. (2002) y Meruane y Vargas (2003).</p>      <p> El aumento generalizado del pH inicial en todas las etapas de adaptaci&oacute;n para el caso de la galena es interpretado como consumo de protones debido a su car&aacute;cter de monosulfuro. El consumo de protones para este mineral es mucho mayor que para la calcopirita y esfalerita como ha sido reportado por varios autores (Garc&iacute;a <i>et al</i>., 1995; Da Silva, 2004; Mej&iacute;a <i>et al</i>., 2007), lo que hizo necesario acidificar el sistema hasta agotar la demanda de protones, la cual se dio aproximadamente el d&iacute;a sexto, a partir del cual se observ&oacute; una paulatina disminuci&oacute;n en los valores de pH. Esto es debido a que la disoluci&oacute;n de galena en ambientes &aacute;cidos ocurre como resultado de la protonaci&oacute;n en la superficie del mineral, donde el &uacute;nico mecanismo de protonaci&oacute;n en soluci&oacute;n acuosa energ&eacute;ticamente favorable se genera por la uni&oacute;n de tres H<sup>+</sup> en los tres &aacute;tomos superficiales de azufre, los cuales rodean un &aacute;tomo de plomo sustituido por un cuarto ion H<sup>+</sup> (Gerson y O&rsquo;Dea, 2003; Acero <i>et al</i>., 2007). Estas teor&iacute;as explican el decrecimiento en el valor del pH alrededor del sexto d&iacute;a para estabilizarse alrededor de 2,0 y m&aacute;s bajos en la &uacute;ltima etapa de adaptaci&oacute;n, con 1,8 (<a href="#f3">figura 3 b, d, f y h</a>), indicando de este modo un incremento en la concentraci&oacute;n de H<sup>+</sup> producido por la actividad bacteriana. En este caso, al igual que en la esfalerita, el aumento del pH fue mayor para el tama&ntilde;o de part&iacute;cula -325 serie Tyler de tamices confirmando el efecto adverso del menor tama&ntilde;o de part&iacute;cula sobre los microorganismos, debido posiblemente a mayores colisiones entre las part&iacute;culas.</p>      <p> Para el caso de la calcopirita, el comportamiento en el pH fue muy estable en todo el proceso de adaptaci&oacute;n, presentando un ligero incremento al inicio de todas las etapas, explicado como la adaptaci&oacute;n de los microorganismo al mineral, el cual se estabiliza r&aacute;pidamente (Bevilaqua <i>et al</i>., 2002; Meruane y Vargas 2003). Este comportamiento da indicios de una buena adaptaci&oacute;n y actividad bacteriana (Cox <i>et al</i>., 1977; Tekeuchi y Susuki, 1994).</p>      <p><b><i> La importancia del potencial de &oacute;xido-reducci&oacute;n (Eh)</i></b></p>     <p> El potencial de &oacute;xido-reducci&oacute;n puede relacionarse con el crecimiento y la actividad bacteriana. Un r&aacute;pido incremento en este se puede deber a una buena adaptaci&oacute;n de los microorganismos al mineral, indicando indirectamente que los iones solubilizados aparentemente no inhiben la capacidad bacteriana de oxidar el ion ferroso (Xia <i>et al</i>., 2008). Adem&aacute;s, todos los concentrados de minerales empleados presentaron tres fases caracter&iacute;sticas en las curvas de crecimiento bacteriano: fase de adaptaci&oacute;n o fase lag (los microorganismos adaptan su metabolismo a las nuevas condiciones ambientales), fase de crecimiento exponencial (las bacterias consumen los nutrientes del medio a velocidad m&aacute;xima, y su velocidad de crecimiento es la m&aacute;xima) y fase estacionaria (no se incrementa el n&uacute;mero de bacterias, los microorganismos entran en fase estacionaria bien porque se agota alg&uacute;n nutriente esencial del medio o porque los productos de desecho que han liberado durante la fase de crecimiento exponencial hacen que el medio sea inh&oacute;spito) (Madigan <i>et al</i>., 2003). Cabe mencionar que aunque las concentraciones de los iones met&aacute;licos no fueron medidas al inicio y final del proceso, fue posible observar turbidez, cambio de color y olor en los medios de cultivo a medida que avanzaba el desarrollo para todos los ensayos, lo que da indicios de cambios en el sistema; adem&aacute;s, al final del proceso fue posible observar una buena poblaci&oacute;n bacteriana indicando que los iones solubilizados no generaron alta toxicidad en los medios de cultivo.</p>      <p> A continuaci&oacute;n se discuten los comportamientos obtenidos por la esfalerita, calcopirita y galena en todos los periodos de adaptaci&oacute;n.</p>      <p> El tama&ntilde;o de part&iacute;cula m&aacute;s fino present&oacute; un mejor desempe&ntilde;o del Eh para todos los subcultivos debido a que a menor tama&ntilde;o de part&iacute;cula el mineral posee un &aacute;rea superficial mayor y su reactividad aumenta. Al haber una mayor fuente de Fe<sup>2+</sup> para los microorganismos, se da una r&aacute;pida transformaci&oacute;n de Fe<sup>2+</sup> a Fe<sup>3+</sup> obteni&eacute;ndose de este modo altos valores de potencial. Adem&aacute;s, a bajas concentraciones de pulpa los da&ntilde;os debidos a las colisiones en las part&iacute;culas son menores (Deveci, 2002). Sin embargo, para el caso del concentrado de esfalerita, aunque el ion Zn<sup>2+</sup> es menos t&oacute;xico que el Cu<sup>2+</sup> en soluci&oacute;n, la presencia de carbonatos aparentemente afect&oacute; el buen desarrollo de los microorganismos, siendo menos evidente para el tama&ntilde;o de part&iacute;cula -200 serie Tyler de tamices. Adem&aacute;s, esto tambi&eacute;n podr&iacute;a estar relacionado con la reactividad del mineral en funci&oacute;n del tama&ntilde;o de part&iacute;cula. Por otra parte, el comportamiento del Eh para el concentrado de galena se debe a la gran toxicidad del plomo para los microorganismos, donde el tama&ntilde;o de part&iacute;cula juega un papel fundamental &mdash;a menor tama&ntilde;o de part&iacute;cula se tiene mayor concentraci&oacute;n de Pb<sup>2+</sup> en soluci&oacute;n&mdash;.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> En el subcultivo realizado para 5% (p/v) de mineral y 7,5% (v/v) de sulfato ferroso, la fase lag fue menor, alrededor de 2 d&iacute;as, mostrando de forma indirecta una buena adaptaci&oacute;n de los microorganismos al mineral. El crecimiento del potencial de &oacute;xido-reducci&oacute;n es mejor, al igual que en la etapa anterior, para el tama&ntilde;o de part&iacute;cula m&aacute;s grueso en el caso de la esfalerita y la galena. En esta etapa la calcopirita mostr&oacute; un mejor comportamiento para el tama&ntilde;o de part&iacute;cula m&aacute;s grueso, lo cual da indicios que a mayor concentraci&oacute;n de Cu2+ los microorganismos son afectados por la toxicidad de este ion, lo cual dificulta su etapa de adaptaci&oacute;n (Rawling <i>et al</i>., 1999; Rawling, 2005). Para el ensayo de adaptaci&oacute;n realizado con 7,5% (p/v) y 5% (v/v) de sulfato ferroso &mdash;datos no mostrados&mdash;, el comportamiento fue muy similar al obtenido en la segunda etapa de adaptaci&oacute;n.</p>      <p> Para el caso de 10% (p/v) de pulpa y 2,5% (v/v) de sulfato ferroso (<a href="#f1">figura 1e</a>, <a href="#f2">2e</a> y <a href="#f3">3e</a>), el crecimiento del potencial redox fue muy similar para todos los minerales. No se observ&oacute; fase estacionaria. Sin embargo el crecimiento, aunque constante, es lento hasta aproximadamente el d&iacute;a sexto del proceso. Este comportamiento indica que los microorganismos se van adaptando a las condiciones del sistema paulatinamente, usando su energ&iacute;a para tolerar las condiciones adversas y no para generar una r&aacute;pida oxidaci&oacute;n del Fe<sup>2+</sup> a Fe<sup>3+</sup>; adem&aacute;s, pueden toman la fuente de energ&iacute;a de las trazas de Fe<sup>2+</sup> provenientes del in&oacute;culo bacteriano, la cual es de m&aacute;s f&aacute;cil acceso. Finalmente, se logr&oacute; una buena adaptaci&oacute;n luego del d&iacute;a sexto, donde se presenta un fuerte incremento en el Eh, indicando que los iones dejados en soluci&oacute;n no afectaron aparentemente la actividad oxidativa de los microorganismos, lo que est&aacute; de acuerdo con lo observado por Xia <i>et al</i>. (2008).</p>      <p> Al disminuir totalmente la fuente de energ&iacute;a (<a href="#f1">figura 1g</a>, <a href="#f2">2g</a> y <a href="#f3">3g</a>) el crecimiento del Eh fue constante pero m&aacute;s lento que en la etapa anterior, indicando que aunque los microorganismos se adaptaron al sistema, les cost&oacute; m&aacute;s tiempo tolerar las condiciones adversas. Adem&aacute;s, como los microorganismos no contaban con fuente de energ&iacute;a extra, y como se agotan las trazas de Fe<sup>2+</sup> provenientes del in&oacute;culo, se vieron obligados a tomar la fuente de energ&iacute;a de los iones de Fe<sup>2+</sup> provenientes de la disoluci&oacute;n en medio &aacute;cido de los minerales, proceso que tiene una cin&eacute;tica m&aacute;s lenta (Zapata <i>et al</i>., 2007). Alrededor del d&iacute;a 8 se dio un marcado incremento indicando, en principio, una buena actividad bacteriana para la oxidaci&oacute;n del ion ferroso.</p>      <p> De acuerdo con Touvinen <i>et al</i>. (1971), la tolerancia del microorganismo al mineral es adquirida durante la fase lag, lo cual puede ser observado en la fase estacionaria de crecimiento del Eh y en el aumento inicial del pH.</p>      <p> La evoluci&oacute;n del potencial de &oacute;xido-reducci&oacute;n se relaciona con la tasa de crecimiento bacteriano y su capacidad de oxidar el Fe<sup>2+</sup> (Gentina y Acevedo, 2005). Esta capacidad oxidativa aument&oacute; a trav&eacute;s del tiempo en las cuatro etapas de adaptaci&oacute;n, donde las bacterias alcanzaron valores de Eh alrededor de 600 mV en corto tiempo y los mantuvieron hasta el final de proceso, especialmente en las primeras etapas de adaptaci&oacute;n, en las que a&uacute;n ten&iacute;an fuente de energ&iacute;a adicional. En la &uacute;ltima fase de adaptaci&oacute;n, sin adici&oacute;n de fuente de energ&iacute;a, el crecimiento de la curva de Eh para los sulfuros es m&aacute;s lento, aunque el valor aumenta paulatinamente, lo que sugiere que los microorganismos toman la fuente de energ&iacute;a necesaria para su crecimiento de la oxidaci&oacute;n del Fe<sup>2+</sup> proveniente del mineral (Prayuenyong, 2002). Esto da indicios de una buena actividad oxidativa y de que las bacterias respondieron favorablemente a las etapas de adaptaci&oacute;n, llev&aacute;ndose a cabo el mecanismos indirecto (Prayuenyong, 2002; Ballester, 2005). El aumento del Eh sugiere que en presencia de bacterias hay un transporte constante de electrones en el sistema, como la trasformaci&oacute;n de Fe<sup>2+</sup> a Fe<sup>3+</sup>, funci&oacute;n principal de <i>A. ferrooxidans</i> (Rossi, 1990; Kodali <i>et al</i>., 2004).</p>      <p> Adem&aacute;s de los ensayos de adaptaci&oacute;n para una cepa compatible con <i>A. ferrooxidans</i> se realizaron ensayos alternos de adaptaci&oacute;n para una cepa compatible con A. thiooxidans (datos no mostrados). Cuando se adicion&oacute; azufre elemental como fuente de energ&iacute;a extra, los ensayos mostraron producci&oacute;n de &aacute;cido, evidenciado por la disminuci&oacute;n del pH (0,6), y los valores de potencial aumentaron hasta aproximadamente 460 mV para todos los ensayos. Sin embargo, al ir disminuyendo la fuente externa de energ&iacute;a, este microorganismo fue perdiendo la habilidad de producir &aacute;cido. Al suprimir totalmente la fuente de energ&iacute;a los valores de pH obtenidos fueron similares a los controles abi&oacute;ticos lo cual da indicios de que este microorganismo no fue capaz de obtener energ&iacute;a del mineral (Bevilaqua <i>et al</i>., 2002).</p>      <p><b> Conclusiones </b></p>      <p> La adaptaci&oacute;n de una cepa compatible con <i>Acidithiobacillus ferrooxidans</i> en etapas sucesivas mediante la disminuci&oacute;n gradual de fuente de energ&iacute;a y aumento en el contenido del mineral (calcopirita, esfalerita y galena respectivamente), result&oacute; ser un m&eacute;todo eficaz para este tipo de procesos. Esta metodolog&iacute;a provee una adecuada adaptaci&oacute;n de los microorganismos al mineral.</p>      <p> La metodolog&iacute;a empleada permiti&oacute; observar que la presencia de iones met&aacute;licos afecta la evoluci&oacute;n del crecimiento bacteriano y la oxidaci&oacute;n del ion ferroso. La cepa compatible con <i>A. ferrooxidans</i> mostr&oacute; m&aacute;s tolerancia a los iones de zinc, cobre y plomo para el tama&ntilde;o de part&iacute;cula -200 serie Tyler de tamices. Para el tama&ntilde;o de part&iacute;cula -325 serie Tyler de tamices el microorganismo present&oacute; m&aacute;s tolerancia al Cu<sup>2+</sup>, seguido por el Zn<sup>2+</sup> y finalmente al Pb<sup>2 +</sup>, esto debido al efecto del tama&ntilde;o de la part&iacute;cula y a la presencia de carbonatos en el concentrado de esfalerita. Como recomendaci&oacute;n, es necesario complementar este estudio con t&eacute;cnicas moleculares que permitan verificar la presencia de <i>A. ferrooxidans</i> y su viabilidad en este tipo de procesos. Adem&aacute;s, hacer medidas de hierro, sulfatos, cobre, plomo y zinc que permitan verificar el aumento de dichos iones a trav&eacute;s del proceso.</p>      <p><b>Agradecimientos</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Los autores agradecen al programa de biotecnolog&iacute;a de Colciencias; a los laboratorios de biomineralog&iacute;a, Cimex, preparaci&oacute;n de rocas y carbones de la Universidad Nacional de Colombia, sede Medell&iacute;n: al laboratorio de Ingeominas, Medell&iacute;n; a I. C. Cardona de la Universidad de West Virgina, USA, por sus comentarios. ALM agradece al CODI de la Universidad de Antioquia.</p>      <p><b>Referencias bibliogr&aacute;ficas</b></p>      <!-- ref --><p>1 Acero, P., Cama, J., Ayora, C. 2007. Rate law for galena dissolution in acidic environment. <i>Chemical Geology</i>, 245 (007): 219-229.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0123-3475201100010001800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2 Akcil, A., Ciftci, H., Deveci, H. 2007. Role and contribution of pure and mixed cultures of mesophiles in bioleaching of a pyritic chalcopyrite concentrate. <i>Mineral Engineering</i>, 20: 310-318.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0123-3475201100010001800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3 Arroyave, D. 2007. Evaluaci&oacute;n del proceso de biooxidaci&oacute;n a escala de laboratorio del mineral de la mina El Zancudo, Titirib&iacute;, Antioquia. Tesis de Maestr&iacute;a. Universidad Nacional de Colombia Sede Medell&iacute;n.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0123-3475201100010001800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4 Aston, E., Peyton, M., Lee, B., Apel, A. 2010. Effects of ferrous sulfate, inoculum history, and anionic form on lead, zinc, and copper toxicity to <i>Acidithiobacillus caldus</i> strain BC13. <i>Environmental Toxicology and Chemistry</i>, 29 (12): 2669-2675.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0123-3475201100010001800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5 Ballester, A. 2005. Mecanismos de la biolixiviaci&oacute;n, cap&iacute;tulo 1. En: Fundamentos y perspectivas de las tecnolog&iacute;as biomineras, 9-24.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0123-3475201100010001800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6 Bevilaqua, D., Leite, A., Garc&iacute;a, Jr O., Touvinen, O. 2002. Oxidation of Chalcopyrite by <i>Acidihiobacillus ferrooxidans</i> and <i>Acidithiobacillus thiooxidans</i> in shake flasks. <i>Process Biochemistry</i>, 38: 587-592.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0123-3475201100010001800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7 Bhatti, T., Bigham, J., Vuorinen, A., Tuovinen, O. 1993. Biological leaching of sulfides with emphasis on pyrrhotite and pyrite. In: Proceedings of International Symposium on Biotechnology for Sustainable Development, Kauser A, Malik, Anwar Nasim &amp; Ahmad M. Khalid, NIBGE, Faisalabad, Pakistan, 299-308.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0123-3475201100010001800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8 Bozdemir, T., Durusoy, T., Erincin, E., Y&uuml;r&uuml;m, Y. 1996. Biodesulfurization of Turkish lignites. <i>Fuel</i>, 75 (13): 1596-1600.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0123-3475201100010001800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9 Brierley, J., Luinstra, L. 1993. Biooxidation-heap concept for pretreatment of refractory gold ore. In: Biohydrometallurgical Biohydrometallurgical Technologies, A. E.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0123-3475201100010001800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10 Cabrera, G., G&oacute;mez, J., Cantero, D. 2005. Kinetic study of ferrous sulphate oxidation of <i>Acidithiobacillus ferrooxidans</i> in the presence of heavy metal ions. <i>Encyme and Microbial Technology</i>, 36: 301-306.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0123-3475201100010001800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11 Cardona, I. 2008. Mineralog&iacute;a del proceso de biodesulfurizaci&oacute;n de carbones provenientes de la zona r&iacute;o Guachinte-r&iacute;o Asnaz&uacute; (Valle del Cauca y Cauca). Tesis de Maestr&iacute;a, Materiales y Procesos. Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0123-3475201100010001800011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12 Cox, J., Nicholas, D., Inglew, W. 1977. Transmembrane electrical potencial and transmembrane pH gradient in the acidophilic <i>Thiobacillus ferrooxidans</i>. <i>Biocem</i>, J, 178: 195-200.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0123-3475201100010001800012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13 Da Silva G. 2004. Kinetics and mechanism of the bacterial and ferric sulphate oxidation of galena. <i>Hydromatallurgy</i>, 75: 99-110.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0123-3475201100010001800013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14 Daoud J., Karamanev, D. 2006. Formation of coal jarosite during Fe2+ oxidation by <i>Acidithiobacillus ferrooxidans</i>. <i>Mineral Engineering</i>, 19: 960-967.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0123-3475201100010001800014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15 Das, T., Ayyappan, S., Chaudhury, G. R. 1999. Factors Affecting Bioleaching Kinetics of Sulfide Ores Using Acidophilic Microorganisms. <i>BioMetals</i>, 12: 1-10.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0123-3475201100010001800015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16 Deveci H. 2002. Effect of solids on viability of acidophilic bacteria. <i>Minerals Engineering</i>, 15: 1181-1189.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0123-3475201100010001800016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17 Deveci, H., 2004. Effect of particle size and shape of solids on the viability of acidophilic bacteria during mixing in stirred tank reactors. <i>Hydrometallurgy</i>, 71: 385-396.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0123-3475201100010001800017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18 Dutrizac, J. E. 1981. The dissolution of chalcopyrite in ferric sulfate and ferric chloride media. <i>Met. Trans. B.</i> 12B: 371-378.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0123-3475201100010001800018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19 Elzety, M., Attia, Y. 1995. Efect of bacterial adaptation on kinetics and mechanisms of bioleaching ferrous sulfides. <i>The Chemical Engineering Journal</i>, 56: 115-124.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0123-3475201100010001800019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20 Garc&iacute;a, Jr., O., Bigham, J., Tuovinen, O. 1995. Oxidation of galena by <i>Thiobacillus</i> ferrooxidans and <i>Thiobacillus thiooxidans</i>. <i>Canadian Journal Microbiology</i>, 41: 508-514.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0123-3475201100010001800020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21 Gentina, J., Acevedo, F. 2005. Biolixiviaci&oacute;n de minerales de oro. In: Fernando Acevedo y Juan Carlos Gentina (eds.). Fundamentos y perspectivas de las tecnolog&iacute;as biomineras. 79-91.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0123-3475201100010001800021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22 Gerson, A., O'Dea, A. 2003. A quantum chemical investigation of the oxidation and dissolution mechanisms of Galena. <i>Geochim. Cosmochim. Acta</i> 67 (5): 813-822.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0123-3475201100010001800022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23 G&oacute;mez, J., Cantero, D. 2005. Biooxidaci&oacute;n del i&oacute;n ferroso. In: Fernando Acevedo y Juan Carlos Gentina (eds.). Fundamentos y perspectivas de las tecnolog&iacute;as biomineras. 25-43.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0123-3475201100010001800023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24 Haghshena, D. F., Keshavarz, A. E., Amouei, T., Bonakdarpour, B., Nasernejad, B. 2009a. Adaptation of <i>Acidithiobacillus ferrooxidans</i> to high grade sphalerite concentrate. <i>Minerals Engineering</i>, 22: 1299-1306.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0123-3475201100010001800024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25 Haghshenas, D., Keshavarz, A., Bonakdarpour, B., Darvishi, D., Nasernejad, B. 2009b. Hydrometallurgy. Article in press doi:10.1016/j.hydromet.2009.08.007.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0123-3475201100010001800025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26 Harmer, S., Thomas, J., Fornasiero, D., Gerson, A. 2006. The evolution of surface layers formed during chalcopyrite leaching. <i>Geochimica et Cosmochimica Acta</i>, 70: 4392-4402.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0123-3475201100010001800026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27 Hong-Mei, L., Jia-Jun, K. 2001. Technical note influence of Cu 2+ and Mg 2+ on the growth and activity of Ni 2+ adapted <i>Thiobacillus</i> ferrooxidans. <i>Minerals Engineering</i>, 14: 113-116.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0123-3475201100010001800027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28 Kodali, B., Rao, B., Narasu, L., Pogaku, R. 2004. Effect of biochemical reactions in enhancement of rate of leaching. <i>Chemical Engineering Science</i>, 59: 5069-5073.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0123-3475201100010001800028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>29 Madigan, M., Martinko, J., Parker, J. 2003. Biolog&iacute;a de los microorganismos. 10 ed. Madrid: Pearson Educaci&oacute;n.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0123-3475201100010001800029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>30 M&aacute;rquez, M. 1999. Mineralogia dos processos de oxida&ccedil;&atilde;o sobre press&atilde;o e bacteriana do minerio de ouro da mina S&atilde;o Bento, MG. Tese de doutorado. Universidad de Brasilia.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0123-3475201100010001800030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>31 Marsden, J., House, I. 1992. The chemistry of gold extraction. England: Ellis Horwood Limited.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0123-3475201100010001800031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>32 Mej&iacute;a, R., Ospina, C., M&aacute;rquez, M. 2007. Mineralog&iacute;a del proceso de oxidaci&oacute;n bacteriana de la galena (PbS) por <i>Acidithiobacillus ferrooxidans</i>, mediante an&aacute;lisis de microscop&iacute;a electr&oacute;nica de barrido, FTIR, y DRX. <i>Scientia et Technica</i>, 36: 549-554.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0123-3475201100010001800032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>33 Meruane, G., Vargas, T. 2003. Bacterial oxidation of ferrous iron by <i>Acidithiobacillus ferrooxidans</i> in the pH range 2,5-7,0. <i>Hydrometallurgy</i>, 71 (1-2): 149-158.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0123-3475201100010001800033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>34 Muscat, J., Gale, J. 2003. First principles of the surface of galena PbS. <i>Geochemica at Cosmochimica Acta</i>, 67 (5): 799-805.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0123-3475201100010001800034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>35 Prayouenyong, P. 2002. Coal biodesulphurization. <i>Journal Science Technology</i>, 24: 493-507.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0123-3475201100010001800035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>36 Rawlings, D. E. 2005. Characteristics and adaptability of iron- and sulfur-oxidizing microorganisms used for the recovery of metals from minerals and their concentrates. <i>Microbial Cell Factories</i>, 4: 13.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0123-3475201100010001800036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>37 Rawlings, D. E., Tributsch, H., Hansford, G. 1999. Reasons why &quot;Leptospirillum &quot;-like species rather than Thiobacillus ferrooxidans are the dominant iron-oxidizing bacteria in many commercial processes for the biooxidation of pyrite and related ores. <i>Microbiology</i>, 145, 5-13.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0123-3475201100010001800037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>38 Rivadeneira, J. 2006. Introduction. Mining innovation in Latin America Report. Publication via on-line (<a href="http://www.mininginnovation.cl/content.htm" target="_blank">http://www.mininginnovation.cl/content.htm</a>). Santiago, Chile. 6-7.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0123-3475201100010001800038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>39 Rossi, G. 1990. Biohydrometallurgy. Hamburg: McGraw-Hill Book Company GmbH.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0123-3475201100010001800039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>40 Sampson, M., van der Merwe, J., Harvey, T., Bath, M. 2005. Testing the ability of a low grade sphalerite concentrate to achieve autothermality during biooxidation heap leaching <i>Minerals Engineering</i>. 18: 427-437.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0123-3475201100010001800040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>41 Shahverdi, A., Yazdi, M., Oliazadeh, M., Darebidi, M. 2001. Biooxidation of mouteh refractory gold-bearing concentrate by an adapted <i>Thiobacillus ferrooxidans</i>. <i>Journal of Sciences, Islamic Republic of Iran</i>, 12 (3): 209-212.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0123-3475201100010001800041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>42 Shi, S., Fang, Z. 2005. 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Bacteria of sulphur cycle: an overview of microbiology, biokinetics and their role in petroleum and minig industries. <i>Biochemical Engineering Journal</i>, 44: 73-94.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0123-3475201100010001800044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>45 Tekeuchi, T., Susuki, I. 1994. Effect of pH sulfite oxidation by Thiobacillus cell with sulfurous acid or sulfur dioxide as posible sustrate. <i>J. 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The bioleaching of sulphide minerals with emphasis on copper sulphides-a review. <i>Hydrometallurgy</i>, 84 (1-2): 81-108.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0123-3475201100010001800047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 48 Xia, L., Liu, J., Xiao, L., Zeng, J., Li, B., Geng, M., Qiu, G. 2008. Single and cooperative bioleaching of sphalerite by two kinds of bacteria-Acidithiobacillus ferriooxidans and <i>Acidithiobacillus thiooxidans</i>. <i>Trans. Nonferrous Met. Soc. 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