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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[EFICIENCIA DE DOS MÉTODOS PARA EVALUAR LA VIABILIDAD DEL POLEN DE BERENJENA (Solanum melongena L. cv. Lila criolla)]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[EFFICIENCY OF TWO METHODS FOR EGGPLANT (Solanum melongena L. cv. Lila criolla) POLLEN VIABILITY EVALUATION]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Pollen viability influences the production and fruit quality of cultivated species. Its study is necessary in breeding programs, especially when trying to produce hybrid cultivars. The research was carried out at Monteria, Cordoba, Colombia, in order to compare the efficiency of two methods for assessing pollen viability of the eggplant (Solanum melongena L. cv. Lila criolla): in vitro germination and tetrazolium saltunder tropical conditions, and to determine its potential use in hybrid seed production. The viability test with the tetrazolium salt showed that the concentration of 0.25% allows differentiating, qualitatively and quantitatively, viable pollen grains, and it also presented significant linear decrease per unit of concentration of salt. In the in vitro method, the linear increase was significant for each hour of incubation. Both methods were reliable for estimating pollen viability in the cultivar studied.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Respiración del polen]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="Verdana">     <p align=right><b>CIENCIAS AGROPECUARIAS-Art&iacute;culo Cient&iacute;fico</b></p>     <p align="center"><b>EFICIENCIA DE DOS M&Eacute;TODOS PARA EVALUAR LA VIABILIDAD DEL POLEN DE BERENJENA (<i>Solanum melongena </i>L. cv.  Lila  criolla)</b></p>     <p align="center"><b>EFFICIENCY OF TWO METHODS FOR EGGPLANT (<i>Solanum melongena </i>L. cv.  Lila  criolla) POLLEN VIABILITY EVALUATION</b></p>     <p><b>Hermes Aram&eacute;ndiz-Tatis<sup>1</sup>, Carlos Cardona- Ayala<sup>2</sup>, Alfredo Jarma-Orozco<sup>3</sup></b></p>     <p><sup>1</sup> I.A. Ph.D., Facultad  de Ciencias Agr&iacute;colas, Universidad de C&oacute;rdoba,  Monter&iacute;a. Colombia,  <a href="mailto:haramendiz@hotmail.com">haramendiz@hotmail.com</a></p>     <p><sup>2</sup> I.A. M.Sc. Facultad  de Ciencias Agr&iacute;colas, Universidad de C&oacute;rdoba, <a href="mailto:ccardonaayala@yahoo.com">ccardonaayala@yahoo.com</a></p>     <p><sup>3</sup> I.A. Ph.D. Facultad  de Ciencias Agr&iacute;colas, Universidad de C&oacute;rdoba,  Ciudad Universitaria Carrera 6 No. 76-103.  C&oacute;digo Postal: 354.  Monter&iacute;a - Colombia, <a href="mailto:ajarma24@yahoo.com">ajarma24@yahoo.com</a></p>     <p>Rev. U.D.C.A Act. &amp; Div. Cient. 16(2): 351-358, Julio-Diciembre,  2013</p> <hr>     <p><b>RESUMEN</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La viabilidad del polen influye en la producci&oacute;n y en la calidad de frutos de las especies  cultivadas. Su estudio es necesario en los programas de mejoramiento, especialmente, cuando  se pretende producir cultivares h&iacute;bridos. La investigaci&oacute;n, se realiz&oacute;  en Monter&iacute;a, Departamento de C&oacute;rdoba,  Colombia, con el prop&oacute;sito  de comparar la eficiencia de dos m&eacute;todos para evaluar la viabilidad del polen de berenjena  (<i>Solanum melongena </i>L. cv. Lila criolla) -germinaci&oacute;n <i>in vitro </i>y sal de tetrazolio-, bajo condiciones tropicales,  y determinar su uso potencial,  para la producci&oacute;n de semilla h&iacute;brida. La prueba  de viabilidad con la sal de tetrazolio mostr&oacute;  que la concen traci&oacute;n  de  0,25%  permite  diferenciar,  cualitativa  y cuantitativamente,  los granos  de  polen  viables y, adem&aacute;s, acus&oacute;  disminuci&oacute;n  lineal significativa por cada  unidad  porcentual  de la concentraci&oacute;n de la sal. Con el m&eacute;todo <i>in vitro</i>, el incremento lineal fue significativo por  cada  hora  de  incubaci&oacute;n. Ambos m&eacute;todos resultaron  confiables, para estimar  la viabilidad del polen en el cultivar estudiado, con la salvedad de la concentraci&oacute;n de tetrazolio.</p>     <p><b>   Palabras  clave:</b> Respiraci&oacute;n  del polen,  floraci&oacute;n,  tetrazolio, germinaci&oacute;n <i>in vitro</i>.</p>   <hr>     <p><b>SUMMARY</b></p>     <p>   Pollen viability influences  the production and  fruit quality of cultivated  species.  Its study  is necessary  in breeding  programs,  especially when  trying to  produce  hybrid cultivars. The research  was carried out at Monteria, Cordoba,  Colombia, in order  to compare the efficiency of two methods for assessing pollen viability of the eggplant  (<i>Solanum melongena </i>L. cv. Lila criolla): <i>in vitro </i>germination  and tetrazolium saltunder tropical conditions,  and to determine  its potential use in hybrid seed  production. The viability test with the tetrazolium salt showed that the concentration of 0.25% allows differentiating,  qualitatively and  quantitatively,  viable pollen grains,  and  it also presented significant linear decrease per unit of concentration of salt. In the <i>in vitro </i>method, the linear increase  was significant  for each  hour  of incubation.  Both methods  were reliable for estimating  pollen  viability in the cultivar studied.</p>     <p><b>   Key words:</b> Pollen respiration,  flowering, tetrazolium, <i>in vitro</i> germination.</p>   <hr>     <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>     <p>En el Caribe colombiano, la producci&oacute;n de berenjena  se realiza durante  todo  el a&ntilde;o  con  variedades,  cuyos  rendimientos no superan  las 10t*ha-1,  lo que  afecta  la competitividad  y la posibilidad de incursionar  en mercados internacionales (Agronet, 2011).  La baja productividad  obedece a factores que afectan el potencial de producci&oacute;n y la calidad de fruto, tales como  floraci&oacute;n deficiente, aborto  de flores y la malformaci&oacute;n  de frutos, a causa  de las oscilaciones  de humedad relativa (79% a 99%), n&uacute;mero  de horas  luz inferiores a siete y valores altos de temperatura ambiental  (24&deg;C a 30&deg;C), que inciden en la microsporog&eacute;nesis y germinaci&oacute;n  del grano de polen (Aram&eacute;ndiz <i>et al. </i>2007). Esto constituye un problema,  si se pretende acceder a mercados altamente demandantes  y exigentes,  como  Estados  Unidos y Canad&aacute;  (Aram&eacute;ndiz <i>et al. </i>2008),  de manera  que,  volumen,  calidad  y trazabilidad, resultan  relevantes  para el aprovechamiento de los tratados  comerciales, presentes y futuros. Ante este escenario, el uso de semilla h&iacute;brida representa una alternativa para mejorar los indicadores  de rendimiento  y de calidad de fruto.</p>     <p>   El almacenamiento del polen es de gran importancia  en los programas de  mejoramiento gen&eacute;tico,   cuando   los  padres difieren en su etapa  reproductiva,  ya que permite  la sincron&iacute;a  artificial, con  fines  de  hibridaci&oacute;n  para  la producci&oacute;n de  semilla h&iacute;brida, con  caracter&iacute;sticas gen&eacute;ticas  favorables presentes en parentales; en tales casos,  el polen podr&iacute;a ser utilizado  en  cualquier  momento para  polinizaci&oacute;n artificial, como  tambi&eacute;n  para complementar la acci&oacute;n de agentes  polinizadores (Bettiol Neto <i>et al. </i>2009).</p>     <p>   La viabilidad del polen  puede  ser medida,  a trav&eacute;s de diferentes  t&eacute;cnicas.  Estas  pueden   ser  agrupadas en  m&eacute;todos directos <i>in vitro </i>(Gomes <i>et al. </i>2003;  Pio <i>et al. </i>2007)  e <i>in vivo </i>(Oliveira <i>et al. </i>2001) y m&eacute;todos indirectos,  basados en par&aacute;metros ecol&oacute;gicos, como  el color de la reacci&oacute;n  bioqu&iacute;mica (Dafni, 1992).</p>     <p>   La prueba de tinci&oacute;n con sales de tetrazolio pertenece al grupo de las pruebas  citol&oacute;gicas, cuya caracter&iacute;stica es entregar  una  indicaci&oacute;n  colorim&eacute;trica  de  la actividad  metab&oacute;lica de los granos  de polen luego de su rehidrataci&oacute;n, permitiendo  estimar la viabilidad del polen (Astudillo, 2006).  Estas pruebas ti&ntilde;en los constituyentes espec&iacute;ficos de los granos de polen maduros, almid&oacute;n y calosa,  en particular, gracias  al azul de anilina o al yoduro  de potasio  (Dumas <i>et al. </i>1984)  y la pared y el protoplasma, simult&aacute;neamente (Alexander, 1969). Adem&aacute;s,  pueden  indicar la presencia  de enzimas  funcionales, como peroxidasa,  esterasa y deshidrogenasa (Iborra <i>et al. </i>1992).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   Considerando lo antes  anotado, el objetivo de  la presente  investigaci&oacute;n  fue  comparar la  eficiencia  de  dos  m&eacute;todos para evaluar la viabilidad del polen de berenjena  (<i>Solanum melongena </i>L. cv. Lila criolla), bajo condiciones tropicales  y suministrar  informaci&oacute;n  valiosa para  su uso potencial  en la producci&oacute;n de semilla h&iacute;brida.</p>     <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></p>     <p>El material experimental,  se obtuvo en la vereda ''Garzones'', del municipio de Monter&iacute;a, Colombia, ubicada a 13 m.s.n.m. y coordenadas geogr&aacute;ficas  de 8&deg; 44' de latitud norte  y 75&deg; 33' de  longitud  oeste.  En abril de  2011,  se  colect&oacute;  polen de  berenjena  del cultivar regional  ''Lila criolla'', a partir de botones florales en pre-antesis, en horas de la ma&ntilde;ana (7:00 a.m.  a 8:00 a.m.).  Se almacen&oacute;, inicialmente,  en bolsas  de papel y se transport&oacute; en nevera de polietileno expandido,  al Laboratorio  de Gen&eacute;tica  y Fitomejoramiento de la Facultad  de Ciencias Agr&iacute;colas de la Universidad de C&oacute;rdoba.  Para la extracci&oacute;n del polen de los botones florales, se us&oacute; un vibrador el&eacute;ctrico, siguiendo  las indicaciones  de Aram&eacute;ndiz <i>et al. </i>(2008). Las condiciones ambientales del d&iacute;a de recolecci&oacute;n  del polen fueron: 27,3&deg;C de temperatura, 81,0% de humedad relativa, 2,8 horas de brillo solar y 7,0mm de precipitaci&oacute;n.</p>     <p><u>Prueba de la sal de tetrazolio:</u> para evaluar la calidad del polen, se llev&oacute; a cabo  un experimento  con la sal de tetrazolio, diluida en agua  destilada,  a las concentraciones de 0,25%; 0,50%; 0,75%  y 1,0%. El efecto  de  la sal de  tetrazolio,  se evalu&oacute; sobre  250  granos  de polen contenidos en cinco tubos eppendorf, los cuales,  fueron cubiertos  con una l&aacute;mina de aluminio.  Cada unidad  experimental  estuvo conformada por 50 granos de polen. Una vez aplicada la sal de tetrazolio, se agitaron  los tubos  durante  20 segundos, para  un mejor contacto entre los granos  de polen y la soluci&oacute;n,  siguiendo la metodolog&iacute;a de Fran&ccedil;a  Neto <i>et al. </i>(2009); luego, se colocaron en una incubadora a 25&deg;C, durante  24 horas.</p>     <p>   Las  variables  respuesta  consideradas  en  la  investigaci&oacute;n fueron el  color de la masa  en el microtubo  a simple vista; el color de los granos  de polen  observados al microscopio  &oacute;ptico  a 10x; el color de  los granos  de  polen  visualizados en  el  computador, despu&eacute;s de  ser  puestos  en  papel  filtro, usando lentes de aumento 0,5x y registros  fotogr&aacute;ficos,  utilizando una c&aacute;mara  Visca Visi&oacute;n modelo  DV-2B acoplada al microscopio  y el porcentaje  de polen viable (obtenido  por la relaci&oacute;n entre el n&uacute;mero  de granos de polen viables y el total de cada  tratamiento). Es importante resaltar que los granos  de polen viables registran  coloraci&oacute;n  roja, en tanto  que  los no viables, acusan  ausencia de coloraci&oacute;n.</p>     <p>   <u>Prueba  de evaluaci&oacute;n </u><u><i>in vitro</i></u>: Para determinar la viabilidad del polen en condiciones <i>in vitro</i>, se utiliz&oacute; el medio de cultivo de Reddy &amp; Kakani (2007), constituido  por 100g  de sacarosa  (C<sub>12</sub>H<sub>22</sub>O<sub>11</sub>),  500mg  de nitrato  de calcio &#91;Ca (NO<sub>3</sub>)<sub>2</sub>. 4H<sub>2</sub>O&#93;, 120mg  de sulfato de magnesio (MgSO<sub>4</sub>), 100mg  de  nitrato de potasio (KNO<sub>3</sub>) y 120mg  de &aacute;cido b&oacute;rico (H<sub>3</sub>BO<sub>3</sub>),  disueltos  en 1000  ml de agua  destilada.  Posteriormente, se le agreg&oacute;  10g de agar y el pH fue ajustado  a 6,0.</p>     <p>   El medio de cultivo (28mL) fue vertido en cajas de Petri de vidrio de  9,0cm  de di&aacute;metro.  Previo a su dispersi&oacute;n en el medio de cultivo, con el uso de un pincel, los granos  de polen fueron rehidratados durante dos horas en c&aacute;mara  h&uacute;meda, a temperatura ambiente, para la restauraci&oacute;n de l&iacute;pidos en las membranas celulares  (Fran&ccedil;a  Neto <i>et al. </i>2010),  facilitando su germinaci&oacute;n. La temperatura de incubaci&oacute;n  fue de 25&deg;C, por ocho horas,  con lecturas  cada  dos, de acuerdo  a la metodolog&iacute;a propuesta por Guler <i>et al</i>. (1995).</p>     <p>   Se  tomaron   cinco  campos &oacute;pticos  al azar  por  repetici&oacute;n,  para el conteo de polen. Un grano de polen, se consider&oacute; germinado, cuando el tubo pol&iacute;nico registr&oacute; una longitud mayor o igual al di&aacute;metro del grano de polen, siguiendo las indicaciones de Singh & Shono (2003), Fran&ccedil;a Neto <i>et al.</i> (2009) y Su&aacute;rez <i>et al.</i> (2010).</p>     <p>   Las variables de respuesta fueron la longitud del tubo pol&iacute;nico (mm), el di&aacute;metro del grano de polen (mm), el n&uacute;mero  de granos  de polen viables  y el porcentaje  de granos  de polen germinados, sobre la base de 50 granos tomados al azar por repetici&oacute;n.  &Eacute;ste,  se defini&oacute; por la relaci&oacute;n  entre  el n&uacute;mero  de granos  de polen germinados en cada campo  &oacute;ptico y total de granos  de polen en el mismo,  de acuerdo  a Sorkheh <i>et al. </i>(2011). Para las observaciones, conteo  y fotograf&iacute;a de los granos  de polen germinados, se utiliz&oacute; un estereoscopio &oacute;ptico Carl Zeiss, Stani 2000-C, con aumento de 4x, acoplado  a  una c&aacute;mara  fotogr&aacute;fica  Canon  Power Shot  G10,  con visualizaci&oacute;n en un monitor Philips. Las mediciones, se realizaron utilizando el Software Analizador de Imagen Carl Zeiss, AxioVision 4.3.</p>     <p>   Para  la prueba  de  evaluaci&oacute;n <i>in  vitro</i>,  se  utilizaron cinco tiempos  de incubaci&oacute;n:  2, 4, 6 y 8 horas.  El efecto del tiempo de incubaci&oacute;n, en el medio de cultivo, sobre la viabilidad del polen, se evalu&oacute; sobre  los granos  de polen, contenidos en cinco cajas de petri (unidades  experimentales).  La estructura del dise&ntilde;o  de tratamientos es de gradiente,  por lo que las estimaciones se hicieron mediante  an&aacute;lisis de regresi&oacute;n.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   Como  complemento, se emple&oacute;  la prueba  de Tukey al 5%. Se analizaron los datos  con el paquete estad&iacute;stico  SAS versi&oacute;n 9.2 (SAS, 2008).</p>     <p><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></p>     <p><b>Viabilidad del polen con la prueba del tetrazolio: </b>El an&aacute;lisis cualitativo para determinar la viabilidad del polen de berenjena  (<a href="#f1">Figura 1</a>), mostr&oacute;  respuesta diferencial a las concentraciones de la sal de tetrazolio, en las condiciones que se realiz&oacute; el estudio. A concentraciones mayores a 0,25%, los granos  de polen  presentaron tonalidad  de roja muy tenue,  lo que  seg&uacute;n  Ilgin <i>et al</i>. (2007),  se  pueden  calificar como  semiviables  y se  explica por  la escasa reducci&oacute;n  de  la sal de  tetrazolio  a formaz&aacute;n,  por acci&oacute;n  de las enzimas  deshidrogenasas en las c&eacute;lulas  constituyentes de  los granos  de polen (Delouche <i>et al</i>. 1976). Ello coincide con lo reportado por Fran&ccedil;a  Neto <i>et al</i>. (2009), quienes  a concentraciones de  0,5% y 1,0% reportaron  coloraci&oacute;n  blanca  y muy oscura  de los granos de polen, para la primera y la segunda concentraci&oacute;n, en el cultivar h&iacute;brido de berenjena  Ci&ccedil;a, lo que conduce a evaluaciones  inadecuadas, ya que dichas concentraciones afectan la actividad de la deshidrogenasa.</p>         <p><a name="f1"></a></p>    <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v16n2/v16n2a09f1.jpg"></p>     <p>   La concentraci&oacute;n de 0,25% de sal de tetrazolio fue la mejor para identificar granos  de polen viables (Figura1), cuya condici&oacute;n est&aacute;  relacionada  con  la alta humedad relativa (81%) y temperatura del ambiente  (22&deg;C), al momento de  la colecta,  lo que  seg&uacute;n  Bonaventure (1999)  son  dos  aspectos fundamentales para  la polinizaci&oacute;n y la fecundaci&oacute;n. La sal de tetrazolio reacciona con el hidr&oacute;geno, producto de la respiraci&oacute;n celular, al entrar en contacto con tejidos vivos y vigorosos y facilita la coloraci&oacute;n lenta y uniforme de color rojo, por lo que se considera  un m&eacute;todo  colorim&eacute;trico  confiable, que suministra resultados  semejantes a los estimados, a trav&eacute;s de m&eacute;todos <i>in vitro </i>(Munhoz <i>et al</i>. 2008;  Gaspar  - Oliveira <i>et al</i>. 2010).</p>     <p>   Las  concentraciones de  0,50%,  0,75%  y 1,0%  (Figura  1) afectan  la uniformidad  y la distribuci&oacute;n  del color rojo, que resulta mucho  m&aacute;s claro, por la poca reducci&oacute;n  de la sal de tetrazolio a formaz&aacute;n  por las enzimas deshidrogenasas (Delouche <i>et al. </i>1976) y concuerda con lo reportado por Barros <i>et al. </i>(2005),  en  semillas  de <i>Cucurbita  pepo </i>y Bhering <i>et al. </i>(2005),  en  semillas  de <i>Citrullus  lanatus</i>.  Estos  &uacute;ltimos autores  indican  que  los tejidos  vigorosos,  cuando  son  sometidos a altas concentraciones, en vez de registrar un color rojo intenso,  acusan  una coloraci&oacute;n  rojo tenue,  por la poca actividad de las enzimas deshidrogenasas.</p>     <p>   Contrariamente, en semillas de leucaena  (<i>Leucaena leucocephala </i>(Lam.) de Wit.), en las cuales, se evalu&oacute; la respuesta a tres concentraciones de tetrazolio, Costa &amp; Santos  (2010) observaron  que,  bajo la concentraci&oacute;n de 1,0%, los tejidos asumen un color rojo intenso.  Esto dificulta la valoraci&oacute;n de las semillas,  siendo  ideal el tratamiento de  0,15%,  por  un tiempo de dos a cuatro horas.</p>     <p>   El color rojo intenso,  se relaciona  con  polen  viable. En las coloraciones rojo tenue  y muy tenue,  el polen presenta  una viabilidad limitada  y los granos  sin color  son  inviables, de acuerdo  a la gu&iacute;a la t&eacute;cnica  utilizada por ISTA (1996), para an&aacute;lisis de viabilidad de semillas agr&iacute;colas.  De acuerdo  a lo observado  en el presente  trabajo (<a href="#f1">Figura 1</a>), la concentraci&oacute;n de tetrazolio m&aacute;s adecuada para evaluar la viabilidad de polen de berenjena  es la de 0,25%, ya que present&oacute; una mejor reacci&oacute;n bioqu&iacute;mica,  obteni&eacute;ndose una coloraci&oacute;n  roja bien definida de los granos de polen viables; sin embargo, Fran&ccedil;a Neto <i>et al</i>. (2009) reportaron  el valor de 0,75%, se&ntilde;alando que  la tinci&oacute;n del polen  al 1%  fue demasiado oscura  y al 0,5% clara, lo que puede  obedecer al genotipo  y a las condiciones  ambientales de colecta.  Reportan,  adem&aacute;s, que la mayor&iacute;a de los granos  de polen resultaron  incoloros,  cuando  se  observaron  al microscopio, bajo  lupa  y en  papel,  a la  concentraci&oacute;n de 0,5%. Esto   corrobora  lo anotado por Barros <i>et al. </i>(2005) y Bhering <i>et al. </i>(2005), en el sentido de que las altas concentraciones de sal de tetrazolio afectan  la coloraci&oacute;n  roja normal,  arrojando  conclusiones ambiguas, en raz&oacute;n a que granos  de polen abortados pueden  presentar coloraci&oacute;n  semejante a la de los granos  viables (Heslop- Harrison &amp; Heslop-Harrison,  1970).</p>     <p>   El porcentaje  de granos  de polen viables present&oacute; respuesta lineal negativa altamente significativa, con respecto  a las concentraciones de tetrazolio (0,25%, 0,50%, 0,75% y 1,0%). En la ecuaci&oacute;n  estimada Y=  53  - 43,84X,  (R2 54,35%),  el porcentaje  de granos  de polen viable disminuye  en 43,84% por cada cent&eacute;sima porcentual  de concentraci&oacute;n de la sal de tetrazolio, en el rango de concentraci&oacute;n probado.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   El an&aacute;lisis de varianza para el porcentaje  de granos  de polen viable registr&oacute;  diferencias  altamente significativas, entre  las concentraciones de tetrazolio.</p>     <p>   La prueba  de  comparaci&oacute;n de  medias  (<a href="#t1">Tabla 1</a>) corrobora  que  la concentraci&oacute;n de  0,25%  result&oacute;  ser  el mejor  tratamiento para cuantificar el porcentaje  de granos de polen viable, con un 42,80%, hecho  que concuerda con la valoraci&oacute;n cualitativa realizada en los tubos Eppendorf, coloraci&oacute;n en el papel  y microscopio  &oacute;ptico  en   10x, donde  se registr&oacute;  una declinaci&oacute;n  en la coloraci&oacute;n,  cuando  se increment&oacute; la concentraci&oacute;n  de la sal de tetrazolio. Esto indica que la viabilidad del polen es afectada  por la sal, ya que una mayor absorci&oacute;n  de la misma puede  causar  da&ntilde;o en los tejidos vivos, por una alta actividad respiratoria.</p>         <p><a name="t1"></a></p>    <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v16n2/v16n2a09t1.jpg"></p>     <p><b>Viabilidad del polen  bajo condiciones de germinaci&oacute;n <i>in vitro</i></b>: La <a href="#t2">tabla 2</a> resalta  las regresiones lineales estimadas para la germinaci&oacute;n  de los granos  de polen en condiciones in vitro, en funci&oacute;n del tiempo  de incubaci&oacute;n. Las ecuaciones que explican el comportamiento de la longitud del tubo pol&iacute;nico (LTP), n&uacute;mero  de granos  de polen viables (GPV) y no viables (GPNV) y porcentaje  de granos  de polen  viables (%GV), resultaron ser altamente significativas. Para el di&aacute;metro del grano  de polen (DGP), la regresi&oacute;n  lineal result&oacute; no significativa, por lo que no pudo  ser explicado satisfactoriamente, dada la magnitud de su coeficiente de determinaci&oacute;n (<a href="#t2">Tabla 2</a>).</p>       <p><a name="t2"></a></p>    <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v16n2/v16n2a09t2.jpg"></p>     <p>   El porcentaje de granos  de polen viable <i>in vitro</i>, se ajust&oacute; a un modelo  de regresi&oacute;n  lineal altamente significativa y destaca incrementos del 4,75%, por cada  hora  de incubaci&oacute;n. Este efecto,  se podr&iacute;a  atribuir al calcio y a los iones  de hidr&oacute;geno, que  juegan  un papel  importante en el crecimiento y en la orientaci&oacute;n  del tubo  pol&iacute;nico, como  lo reportado por Michard <i>et al. </i>(2008),  destacando el rol importante de estos  elementos en la actividad respiratoria.  Estos  valores, se consideran superiores  a los reportados por Fran&ccedil;a  Neto <i>et al. </i>(2010),  quienes  despu&eacute;s de cuatro  horas  registraron ausencia de germinaci&oacute;n, logrando  un 66,0% a las 24 horas de incubaci&oacute;n, dado que a medida que transcurre el tiempo, se incrementa el porcentaje  de germinaci&oacute;n  de los granos de polen,  hasta  un punto  m&aacute;ximo,  despu&eacute;s, del cual, decrece hasta hacerse  nulo, por declinaci&oacute;n  de la respiraci&oacute;n  (Karapanos <i>et al</i>. 2009).</p>     <p>La longitud del tubo pol&iacute;nico present&oacute; respuesta lineal altamente  significativa, seg&uacute;n,  la cual,  el crecimiento  del tubo pol&iacute;nico es de 0,041mm por cada  hora de incubaci&oacute;n, en el periodo de 8 horas de duraci&oacute;n de la prueba.  Tal crecimiento  es relativamente  lento para la fecundaci&oacute;n, ante una posible similitud del tejido conductor del estilo con la composici&oacute;n del medio de cultivo utilizado, ya que una demora  considerable para la cariogamia  en el saco embrionario  del rudimento  seminal, podr&iacute;a conducir a la degradaci&oacute;n del ovario (Sharafi,  2011), afect&aacute;ndose la calidad de fruto y el rendimiento  (Karapanos <i>et al</i>. 2009).</p>     <p>   La tasa  de  crecimiento  en longitud  del tubo  pol&iacute;nico,  estimada  en el presente  estudio, es inferior a las registradas por Figueroa-Castro &amp; Holtsford (2009), en <i>Nicotiana longiflora </i>y <i>N. plumbaginifolia</i>, quienes  despu&eacute;s de  12  horas  de incubaci&oacute;n  encontraron valores entre  0,39  &plusmn; 0,06mm/h y  0,70 <u>+</u>0,08mm/h,  respectivamente, siendo  adem&aacute;s superiores para  polen  derivado  de polinizaci&oacute;n cruzada  que  por autofecundaci&oacute;n. Esto se explica por mecanismos de postpolinizaci&oacute;n, que favorecen el crecimiento  del tubo pol&iacute;nico, que no garantizan &eacute;xito en la fecundaci&oacute;n, dada la existencia de  mecanismos pre - zig&oacute;ticos,  como  la interacci&oacute;n  entre el estilo y el grano  de polen, que pueden  favorecer o inhibir el crecimiento  del tubo pol&iacute;nico (Erbar, 2003;  Kruszewski &amp; Galloway, 2006). </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   El di&aacute;metro  del tubo pol&iacute;nico no registr&oacute; regresi&oacute;n  significativa en  los modelos  polin&oacute;mico,  logar&iacute;tmico  y exponencial probados, por  lo que  el crecimiento  diametral  permanece pr&aacute;cticamente constante, mientras  crece en longitud. No se observ&oacute;  un crecimiento  diferencial entre  estos  dos tipos de crecimiento  alom&eacute;trico,  que puede  estar influenciado por la concentraci&oacute;n variable de calcio y de magnesio (Gass <i>et al</i>.  2005; Karapanos <i>et al. </i>2006).</p>     <p>   El an&aacute;lisis de regresi&oacute;n  para el n&uacute;mero  de granos  de polen viables mostr&oacute;  respuesta lineal significativa, indicando  una reducci&oacute;n  de  2,5  granos  de  polen  por cada  hora  de  incubaci&oacute;n,  en el medio  de cultivo; lo que indica, que las reservas  de energ&iacute;a  end&oacute;gena en los granos  de polen  son  suficientes  para  mantener una  tasa  respiratoria,  que  garantiza la viabilidad de los mismos.  De forma similar, Karapanos <i>et al</i>. (2009)  encontraron que  en  tomate  tal tasa  respiratoria decrece despu&eacute;s de ocho  horas  de per&iacute;odo  de incubaci&oacute;n. Al respecto, Soares <i>et al</i>. (2008) y Fran&ccedil;a  Neto <i>et al. </i>(2009) se&ntilde;alan que el az&uacute;car en el medio de cultivo debe proveer un balance  osm&oacute;tico  entre la soluci&oacute;n y la germinaci&oacute;n  del grano de polen, con el fin de suministrar  la energ&iacute;a  necesaria, para el crecimiento  del tubo pol&iacute;nico, simulando  el ovario de la planta.</p>     <p>    Los anteriores  resultados  confirman  que el m&eacute;todo  de germinaci&oacute;n <i>in vitro </i>da una aproximaci&oacute;n  mucho  m&aacute;s cercana a lo que ocurre en realidad (La Porta &amp; Roselli 1991), puesto  que  este  medio  de cultivo simula el exudado  estigm&aacute;tico y proporciona un sustrato  para que la germinaci&oacute;n  del polen, se lleve a cabo.  Posteriormente, el conteo  de los tubos  pol&iacute;nicos y su longitud aseguran que los granos  de polen est&aacute;n  vivos y que est&aacute;n  ocurriendo  procesos metab&oacute;licos en ellos.</p>     <p>   Los dos  m&eacute;todos aqu&iacute; evaluados  son  &uacute;tiles para  estimar  la calidad  del polen  de berenjena.  La concentraci&oacute;n de tetrazolio al 0,25% permite  identificar la viabilidad de granos  de polen bajo las condiciones en que fue realizado el estudio. El porcentaje de germinaci&oacute;n  de granos  de polen,  la longitud del tubo  pol&iacute;nico y los granos  de polen viables, determinados a trav&eacute;s del m&eacute;todo <i>in vitro</i>, acusaron respuesta lineal en las primeras  ocho  horas  de incubaci&oacute;n, por lo que  este m&eacute;todo  resulta  confiable para  evaluar la viabilidad pol&iacute;nica en ambientes tropicales. El polen fresco presenta  caracter&iacute;sticas de vigor, de viabilidad y de longevidad  en las primeras ocho  horas  de  colecta,  que  garantizan  su   calidad  para  la hibridaci&oacute;n artificial.</p>     <p><b>Conflicto de intereses:</b>  El manuscrito fue preparado y revisado  con la participaci&oacute;n  de todos  los autores,  quienes  declaramos  que  no  existe ning&uacute;n  conflicto de  intereses,  que ponga  en riesgo la validez de los resultados  presentados.</p>     <p><b>BILBIOGRAF&Iacute;A</b></p>     <!-- ref --><p>1    AGRONET.  2011.  &Aacute;rea cosechada,  producci&oacute;n y rendimiento   de  berenjena   1997-2010.  Ministerio  de Agricultura y Desarrollo Rural. Disponible desde  Internet   en:  <a href="http://www.agronet.gov.co"target="_blank">http://www.agronet.gov.co</a>  (con  acceso: 31/10/2011).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0123-4226201300020000900001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   2.   ALEXANDER,  M.P. 1969.  Differential staining  of aborted  and  non  aborted   pollen.  Stain  Techn.  (USA). 44(3):117-122.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0123-4226201300020000900002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>   3.   ARAM&Eacute;NDIZ, H.; CARDONA, C.; JARMA,  A.; ESPITIA, M. 2008.  El cultivo de la Berenjena  (<i>Solanum  melongena </i>L.). 1Âª ed. Bogot&aacute;,  Ed. Produmedios. 152p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0123-4226201300020000900003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   4.   ARAM&Eacute;NDIZ, H.; CARDONA, C.; JARMA, A.; ROBLES, J.; MONTALVAN, R. 2007. Efectos del almacenamiento en  la  calidad  fisiol&oacute;gica de  la semilla de  berenjena  (<i>Solanum melongena </i>L.). Agr. Col. 25(1):104-112.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0123-4226201300020000900004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   5.   ASTUDILLO, M.J. 2006. Evaluaci&oacute;n de m&eacute;todos de conservaci&oacute;n de polen sometido  a distintos tiempos  de almacenaje  de  tomate   (<i>Lycopersicon  esculentum</i>  Mill). Ed. Pontificia Universidad Cat&oacute;lica de Valparaiso. 54p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0123-4226201300020000900005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   6.   BARROS, D.I.; DIAS, D.C.F.S.;  BHERING, M.C., DIAS, L.A.S.; ARAUJO, E.F. 2005.  Uso do teste  de tetraazolium para avali&ccedil;&atilde;o da qualidade  fisiol&oacute;gica de sementes de abobrinha  (<i>Cuc&uacute;rbita pepo </i>L.). Rev. Bras. Sementes. 27(2):165-172.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0123-4226201300020000900006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   7.   BETTIOL NETO, J.E.;  DEL NERO, M.; KAVAT, R.; PINTO-MAGLIO, C. 2009.  Viabilidade e conserva&ccedil;&atilde;o de p&oacute;len de tr&ecirc;s anonas comerciais.  Bragantia  (Brasil). 68(4):825-837.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0123-4226201300020000900007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>   8.   BHERING, M.C.; DIAS, D.C.; BARROS, D.I. 2005.  Adequa&ccedil;&atilde;o da metodologia do teste  de tetrazolio para avalia&ccedil;&atilde;o  da  qualidade  fisiol&oacute;gica de  sementes de melancia.  Rev. Bras. Sementes. 27(1):176-182.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0123-4226201300020000900008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   9.   BONAVENTURE, L. 1999.  A cultura  da cherim&oacute;lia  e de seu h&iacute;brido a atem&oacute;ia.  S&atilde;o Paulo, Ed. Nobel. 181p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0123-4226201300020000900009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   10. COSTA, C.; SANTOS, C. 2010.  Teste  de  tetraz&oacute;lio em sementes de leucina. Rev. Bras. Sementes. 32(2):66-72.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0123-4226201300020000900010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   11. DAFNI, A. 1992.   Pollination  ecology:  a  practical  approach  (the practical  approach series). Oxford University Press. New York. 250p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0123-4226201300020000900011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   12. DELOUCHE, T.; STILL, W.; RASPET, M.; LIENHARD, M. 1976. Prueba de viabilidad de la semilla con tetrazol. Bras&iacute;lia, DF. Agiplan. 103p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0123-4226201300020000900012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>   13. DUMAS, C.; DUPLAN, J.C.; GAUDE, T.; SAID, C. 1984.  Cytologie et physico-chimie,  deux approches compl&eacute;mentaires pour  tester  la viabilit&eacute; pollinique.  Versalles.  27-30  sept  1983.  Les  colloques  de  l'INRA.   21:415-421.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0123-4226201300020000900013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   14. ERBAR, C. 2003. Pollen tube transmitting  tissue: place of competition  of male gametophytes. Int. J. Plant Sci. (USA). 164:S265-S277.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0123-4226201300020000900014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   15. FIGUEROA-CASTRO, D.; HOLTSFORD, T.P. 2009. Postpollination mechanisms in <i>Nicotiana longiflora </i>and <i>N.  plumbaginifolia</i>: pollen  tube  growth  rate,  offspring  paternity  and  hybridization.  Sexual  Plant  Reprod. (USA). 22(3):187-196.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0123-4226201300020000900015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   16. FRAN&Ccedil;A NETO, L.V.; NASCIMENTO, W.; CARMONA R., DE FREITAS, R. 2010.  Toler&acirc;ncia  &agrave; desseca&ccedil;&atilde;o de p&oacute;len de  berinjela.  Rev. Bras.  Sementes.  32(1):53- 59.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0123-4226201300020000900016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   17.  FRAN&Ccedil;A NETO,  L.V.;  NASCIMENTO, W.; CARMONA, R.E.; DE FREITAS, R. 2009.  Viability  of  eggplant pollen.   Crop   Breeding   Appl.  Biotechn.    (Brasil).  9(4):320-327.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0123-4226201300020000900017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>   18.  GASS, N.; GLAGOTSKAIA,  T.; MELLEMA, S.; STUURMAN, J.;  BARONE, M.; MANDEL, T.; ROESSNERTUNALI, U.; KUHLEMEIER,  C. 2005.  Pyruvate decarboxylase  provides  growing  pollen  tubes  with a competitive  advantage  in  Petunia.   The  Plant  Cell (USA). 17(8):2355-2368.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0123-4226201300020000900018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   19.   GASPAR-OLIVEIRA,   M.C.;  MARTINS, C.CH.;  NAKAGAWA,  J.  2010.  Avalia&ccedil;&atilde;o da  qualidade  fisiol&oacute;gica de  sementes  de  mamoneira  (<i>Ricinus   communis </i>l.)  pelo  teste   de  tetraz&oacute;lio.  Rev.  Bras.  Sementes. 32(1):186-196.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0123-4226201300020000900019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   20.  GOMES, P.R.; RASEIKA,  M.C.B.; BAUDET, L.L.; PESKE, S.T.  2003.  Armazenamento de  gr&atilde;o  de  p&oacute;len de  cebola  (<i>Allium  cepa </i>L.). Rev. Bras.  Sementes. 25(1):14-17.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0123-4226201300020000900020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   21. GULER, H.Y.; ABAK, K.; ETI, S. 1995.  Method, medium  and incubation  time suitable for in vitro germination  of eggplant  (<i>S. melongena</i>) pollen. Acta Hort. (B&eacute;lgica). 412:99-105.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0123-4226201300020000900021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   22. HESLOP-HARRISON, J.; HESLOP-HARRISON, Y. 1970.  Evaluation of pollen viability by enzymatically induced   fluorescence;  intracellular  hydrolysis  of  fluorescein diacetate. Stain Techn. 45(3):115-120.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0123-4226201300020000900022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>   23. IBORRA, J.L.; GUARDIOLA, J.; MONTANER, S.; CANOVAS, M.; MANJON,  A. 1992. 2, 3, 5 Triphenyltetrazolium chloride as a viable assay for immobilized plant cells. Biotechn.  Techn. (Reino Unido). 6(4):319-322.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0123-4226201300020000900023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   24. ILGIN, M.; ERGENOGLU, F.; CAGLAR, S. 2007. Viability, germination  and amount  of pollen in selected  caprifig types. Pak. J. Bot. (Pakistan). 39(1):9-14.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0123-4226201300020000900024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   25.    INTERNATIONAL SEED   TESTING   ASSOCIATION (ISTA). 1996.  International  Rules For Seed  Testing.  Adopted  at the Twenty - Fourth  International  Seed Testing Congress, Denmark  1995,  to become effective on 1 July 1996.  Zurich, Switzerland. 335p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0123-4226201300020000900025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   26.  KARAPANOS, I.C.; AKOUMIANAKIS, K.A.; OLYMPIOS, C.M.; PASSAM, H.C. 2009.  The effect of substrate, ADP  and  uncoupler   on  the  respiration  of  tomato  pollen during incubation <i>in vitro </i>at moderately  high temperature. Sexual Plant Reprod. 22(3):133-140.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0123-4226201300020000900026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   27.  KARAPANOS, I.C.; AKOUMIANAKIS, K.A.; OLYMPIOS, C.M.; PASSAM, H.C. 2006.  The influence of gelling agent purity  and  ion  additions  on <i>in  vitro </i>tomato  pollen  germinability  and  pollen  tube  growth  on semi-solid  substrates. Plant  Cell Tiss.  Organ  Cult.  87(2):181-190.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0123-4226201300020000900027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>   28.  KRUSZEWSKI, L.J.; GALLOWAY, L.F. 2006.  Explaining outcrossing rate  in <i>Campanulastrum americanum </i>(Campanulaceae): geitonogamy and  cryptic self-incompatibility. Int. J. Plant Sci. 167(3):455-461.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0123-4226201300020000900028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   29. LA PORTA, N.; ROSELLI, G. 1991. Relationship between pollen germination  in vitro and fluorochromatic reaction  in cherry  clone  F12/1  (<i>Prunus avium </i>L.) and some of its mutants. J. Hort. Sci. &amp; Biotechn. (Reino Unido). 66(2):171-175.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0123-4226201300020000900029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   30. MICHARD, E.; DIAS, P.; FEIJ&Oacute;, J.A. 2008.  Tobacco pollen tubes  as cellular models  for ion dynamics:  improved spatial and temporal  resolution of extracellular flux and  free cytosolic concentration of calcium and  protons  using  pHluorin  and  YC3.1  CaMeleon. Sexual Plant Reprod. 21(3):169-181.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0123-4226201300020000900030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   31. MUNHOZ, M.; FERNANDES, C.; MEISSNER, P.; BARTH, O.; REINERT, F. 2008.  Viabilidade pol&iacute;nica de <i>Carica papaya </i>L.: uma compara&ccedil;&atilde;o metodol&oacute;gica. Rev. Bras. Bot. 31(2):209-214.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0123-4226201300020000900031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   32. OLIVEIRA, M.S.P.; MAVES, M.M.; KALUME, M.A.A. 2001.  Viabilidade de p&oacute;len <i>in vivo </i>e <i>in vitro </i>em gen&oacute;tipos de a&ccedil;aizeiro. Acta Bot. Bras. 15(1):27-33.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0123-4226201300020000900032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>   33. PIO, L.A.S.; RAMOS, S.D.; PASQUAL, M.; JUNQUEIRA, K.P.; SANTOS, F.C.; RUFINI, J.C.M. 2007.  Viabilidade  do p&oacute;len  de  laranjas  doces  em  diferentes  condi&ccedil;&otilde;es de armazenamento. Ci&ecirc;ncia e Agrotecn. (Brasil). 31(1):147-153.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0123-4226201300020000900033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   34. REDDY, K.R.; KAKANI, V.G. 2007  Screening <i>Capsicum </i>species of different origins for high temperature tolerance by <i>in vitro </i>pollen germination  and pollen tube length. Sci. Hort. 112(2):130135.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0123-4226201300020000900034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   35.  SAS,  2008.   Statistical  Analysis System,   Institute  Inc.SAS/STAT&reg; 9.2 User's Guide. Cary, NC. 7880p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0123-4226201300020000900035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   36.  SHARAFI, Y.  2011.  An investigation  on  the  pollen germination  and  tube  growth in some <i>Prunus persica </i>genotypes  and cultivars. Afr. J. Microbiol. Res. (Surafrica). 5(14):2003-2007.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0123-4226201300020000900036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>     37. SINGH, I.; SHONO,  M. 2003.  Effect of 24-epibrassinolide on pollen viability during heat-stress in tomato. Indian J. Experim. Biol. 41(2):174-176.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0123-4226201300020000900037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>   38.  SOARES, T.; OLIVEIRA, S.; CARVALHO  COSTA, M.A.; SANTOS-SEREJO,  J.;  SOUZA, A.; MORAIS LINO, L.; SOUZA, E.; JESUS, O. 2008. <i>In vitro </i>germination  and viability of pollen grains of banana diploids. Crop Breed. Appl. Biotechn.  8(2):111-118.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0123-4226201300020000900038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   39. SORKHEH, K.; SHIRAN, B.; ROUHI, V.; KHODAMBAS-  HI, M. 2011. Influence of temperature on the <i>in vitro</i> pollen germination  and pollen tube growth of various native  Iranian  almonds   (<i>Prunus </i>L.  spp.)  species.  Trees (Canada). 25(5):809-822.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0123-4226201300020000900039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   40.  SU&Aacute;REZ, L.; CASTILLA,   Y.;  HERN&Aacute;NDEZ, M.; SALOM&Oacute;N, J.; EST&Eacute;VEZ, A.; C&Eacute;SPEDES, O.; ARAUJO, B.  2010.  Efecto  del PECTIMORF&reg; en la germinaci&oacute;n <i>in vitro </i>del polen de papa (<i>Solanum tuberosum</i>). Temas Cienc.Tecn.  (Cuba). 14(40):43-46.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0123-4226201300020000900040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <p>   Recibido: Enero 23 de 2013 Aceptado: Agosto 24 de 2013</p> </font>     ]]></body><back>
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