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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Aislamiento de Toxoplasma gondii a partir de líquido cefalorraquídeo de dos pacientes VIH positivos]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Isolation of Toxoplasma gondii from cerebrospinal fluid of two human immunodeficiency virus-seropositive patients]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto Nacional de Salud Subdirección de Investigación Grupo de Parasitología]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Background: Isolation of T. gondii from cerebrospinal fluid enables confirmatory diagnosis of cerebral toxoplasmosis, considered the second most important opportunistic infection in HIV-positive patients. Objective: To isolate Toxoplasma gondii from samples of cerebrospinal fluid from 2 HIV-positive patients with cerebral toxoplasmosis. Materials and methods: Imprinting control region (ICR) mice were intraperitoneally inoculated with CSF sediment from 2 HIV-positive patients with cerebral toxoplasmosis. Five of the inoculations were performed blind to successive passes. T. gondii tachyzoites were observed in these 5 inoculations in the peritoneal exudate through direct examination of the modified-Romanowsky-stained smears. Results: After 43 days, 4 mice showed piloerection, hepatosplenomegaly and lethargy. The peritoneal exudate exhibited T. gondii tachyzoites, a finding that was confirmed by examining the modified-Romanowsky-stained smears. These isolates were cryopreserved and their viability was confirmed after freezing. Conclusions: Although direct detection techniques of T. gondii in CSF have low sensitivity (38%), this study was able to yield 2 T. gondii isolates in 2 HIV-positive patients with cerebral toxoplasmosis.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p>ORIGINAL </p>     <p><font size="4"><b>Aislamiento de <i>Toxoplasma gondii </i>a partir de l&iacute;quido cefalorraqu&iacute;deo de dos pacientes VIH positivos </b></font></p>     <p><b>Liliana Jazm&iacute;n Cort&eacute;s*, Adriana Ar&eacute;valo y Sof&iacute;a Duque </b></p>     <p><i>Grupo de Parasitolog&iacute;a, Subdirecci&oacute;n de Investigaci&oacute;n, Instituto Nacional de Salud, Bogot&aacute; D.C., Colombia </i></p>     <p>Recibido el 20 de octubre de 2012; aceptado el 2 de septiembre de 2013 </p> <hr size="1">     <p><b>Resumen </b></p>     <p><i>Introducci&oacute;n: </i>El aislamiento de <i>T. gondii </i>a partir de l&iacute;quido cefalorraqu&iacute;deo permite el diagn&oacute;stico confirmatorio de toxoplasmosis cerebral, considerada la segunda infecci&oacute;n oportunista m&aacute;s importante en pacientes VIH positivos. </p>     <p><i>Objetivo: </i>Aislar <i>Toxoplasma gondii </i>a partir de muestras de l&iacute;quido cefalorraqu&iacute;deo de dos pacientes VIH positivos con toxoplasmosis cerebral. </p>     <p><i>Materiales y m&eacute;todos: </i>Se realiz&oacute; la inoculaci&oacute;n intraperitoneal del sedimento de LCR de dos pacientes VIH positivos con toxoplasmosis cerebral en ratones ICR, se llevaron a cabo 5 pases sucesivos ciegos hasta la observaci&oacute;n de taquizo&iacute;tos de <i>T. gondii </i>en el exudado peritoneal mediante examen directo y coloraci&oacute;n de extendidos con Romanowsky modificado. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><i>Resultados: </i>A los 43 d&iacute;as los 4 ratones de trabajo presentaron piloerecci&oacute;n, hepato-esplenomegalia, letargia y en el exudado peritoneal se observaron taquizo&iacute;tos de <i>T. gondii </i>, hallazgo que fue confirmado al examinar los extendidos coloreados con Romanowsky modificado. Estos aislamientos fueron crioconservados y fue confirmada la viabilidad poscongelamiento de los mismos. </p>     <p><i>Conclusiones: </i>A pesar de que las t&eacute;cnicas de detecci&oacute;n directa de <i>T. gondii </i>en LCR tienen una baja sensibilidad (38%) el presente trabajo permiti&oacute; obtener dos aislamientos de <i>T. gondii </i>de dos pacientes VIH positivos con toxoplasmosis cerebral. </p>     <p>&copy; 2013 ACIN. Publicado por Elsevier Espa&ntilde;a, S.L. Todos los derechos reservados. </p>     <p><b>PALABRAS CLAVE </b></p>     <p>Toxoplasmosis; Virus de Inmunodeficiencia humano; Modelo animal; L&iacute;quido cefalorraqu&iacute;deo; Aislamiento; Colombia </p> <hr size="1">     <p><font size="3"><b>Isolation of <i>Toxoplasma gondii </i>from cerebrospinal fluid of two human immunodeficiency virus-seropositive patients</b></font></p>     <p><b>Abstract </b></p>     <p><i>Background: </i>Isolation of T. gondii from cerebrospinal fluid enables confirmatory diagnosis of cerebral toxoplasmosis, considered the second most important opportunistic infection in HIV-positive patients. </p>     <p><i>Objective: </i>To isolate <i>Toxoplasma gondii </i>from samples of cerebrospinal fluid from 2 HIV-positive patients with cerebral toxoplasmosis. </p>     <p><i>Materials and methods: </i>Imprinting control region (ICR) mice were intraperitoneally inoculated with CSF sediment from 2 HIV-positive patients with cerebral toxoplasmosis. Five of the inoculations were performed blind to successive passes. <i>T. gondii </i>tachyzoites were observed in these 5 inoculations in the peritoneal exudate through direct examination of the modified-Romanowsky-stained smears. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><i>Results: </i>After 43 days, 4 mice showed piloerection, hepatosplenomegaly and lethargy. The peritoneal exudate exhibited <i>T. gondii </i>tachyzoites, a finding that was confirmed by examining the modified-Romanowsky-stained smears. These isolates were cryopreserved and their viability was confirmed after freezing. </p>     <p><i>Conclusions: </i>Although direct detection techniques of <i>T. gondii </i>in CSF have low sensitivity </p>     <p>(38%), this study was able to yield 2 <i>T. gondii </i>isolates in 2 HIV-positive patients with cerebral toxoplasmosis. </p>     <p>&copy; 2012 ACIN. Published by Elsevier Espa&ntilde;a, S.L. All rights reserved. </p>     <p><b>KEYWORDS: </b></p>     <p>Toxoplasmosis; Human Immunodeficiency Virus; Animal model; Cerebrospinal fluid; Isolation; Colombia </p> <hr size="1">     <p><b>Introducci&oacute;n </b></p>     <p>Seg&uacute;n cifras de la Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud, 34 millones de personas viven con el VIH/SIDA en el mundo; en Colombia para el 2007 se reportaron 170.000 personas entre adultos y ni&ntilde;os viviendo con el VIH <sup>1,2</sup>, quienes son afectados por infecciones oportunistas, dentro de estas se encuentra la toxoplasmosis cerebral (TC), segunda infecci&oacute;n m&aacute;s com&uacute;n que afecta el sistema nervioso central (SNC) en pacientes infectados por VIH <sup>3</sup>. En nuestro pa&iacute;s, estudios relacionados con TC y VIH como el de Silva et al. <sup>4</sup> describen 27 casos de encefalitis durante los primeros a&ntilde;os de la epidemia en Bogot&aacute; registrada entre 1988 y 1993. Otro estudio como el de Corral et al. <sup>5</sup> describe 33 casos presentados entre 1988 y 1994 en Cali. Es importante resaltar que el riesgo de desarrollar TC oscila entre 30-40% en los pacientes con anticuerpos frente a <i>Toxoplasma gondii </i>6 (60% de pacientes VIH positivos), por lo que en Colombia se pueden esperar entre nueve a doce mil casos de TC <sup>3</sup> cuyo diagn&oacute;stico es dif&iacute;cil sin el uso de t&eacute;cnicas invasivas, lo que ha llevado a la pr&aacute;ctica de la terap&eacute;utica presuntiva basada en hallazgos cl&iacute;nicos y radiol&oacute;gicos y su confirmaci&oacute;n en la respuesta favorable a estos <sup>7</sup> . Sin embargo, el diagn&oacute;stico parasitol&oacute;gico definitivo se debe realizar evidenciando la presencia del par&aacute;sito, por lo que el aislamiento de <i>T. gondii </i>a partir de cualquier muestra biol&oacute;gica contribuye a confirmar la infecci&oacute;n activa <sup>8</sup>. </p>     <p>Para el aislamiento de <i>T. gondii </i>a partir de tejidos o fluidos corporales, la inoculaci&oacute;n en ratones ha sido considerada como el m&eacute;todo m&aacute;s sensible, en comparaci&oacute;n con el cultivo celular e inoculaci&oacute;n en embriones de pollo <sup>9</sup>. El objetivo de esta comunicaci&oacute;n breve es documentar el aislamiento de dos cepas de <i>T. gondii </i>a partir de pacientes con VIH y diagnosticados por hallazgos cl&iacute;nicos y paracl&iacute;nicos con TC, ya que en Colombia se han reportado muy pocos aislamientos de <i>T. gondii </i>a partir de muestras biol&oacute;gicas <sup>10</sup>. </p>     <p><b>Materiales y m&eacute;todos </b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Muestras biol&oacute;gicas </b></p>     <p>Se obtuvo l&iacute;quido cefalorraqu&iacute;deo (LCR) de dos pacientes VIH positivos con toxoplasmosis cerebral (previo consentimiento informado de los pacientes y autorizaci&oacute;n de uso de muestras biol&oacute;gicas en estudios posteriores) y cuyas pruebas serol&oacute;gicas (inmunofluorescencia indirecta, IFI) fueron positivas con t&iacute;tulos de anticuerpos IgG frente a <i>T. gondii </i>de 1/2.048 y 1/4.096, respectivamente (el resultado se considera positivo a partir de 1/16). </p>     <p><b>Obtenci&oacute;n del aislamiento cl&iacute;nico </b><b><i>&quot;in vivo&quot; </i></b></p>     <p>Se centrifug&oacute; el LCR de cada paciente a 1.000 rpm durante 15-20 minutos con el fin de concentrar los par&aacute;sitos, en caso de que se encontraran presentes en la muestra. Se elimin&oacute; el sobrenadante y a partir del sedimento se realiz&oacute; observaci&oacute;n directa en microscopio de luz (400x), elaboraci&oacute;n de frotis a partir del sedimento y coloraci&oacute;n del mismo con Romanowsky modificado e inoculaci&oacute;n del sedimento en ratones cepa ICR-CD1. </p>     <p><b>Animales </b></p>     <p>Se utilizaron ratones machos ICR-CD1, colonia no consangu&iacute;nea, nombre cient&iacute;fico: <i>Mus musculus, s </i>tatus sanitario: convencional, origen: Centre Anticancereux Romand. Dr. De Coulon. Lausanne-Suiza, procedencia: Charles River Laboratories. EE. UU., Crl: CD-1(ICR) BR, color: blanco (albino), de 20 d&iacute;as de edad suministrados por el Bioterio del Instituto Nacional de Salud. </p>     <p><b>Inoculaci&oacute;n en rat&oacute;n </b></p>     <p>Se siguieron las normas para el cuidado y uso de animales <sup>11,12</sup> para el aislamiento de <i>T. gondii </i>y se tuvieron en cuenta todas las normas de bioseguridad para el manejo de muestras biol&oacute;gicas, lo que incluye el empleo de los elementos de protecci&oacute;n personal, la aplicaci&oacute;n de los esquemas de vacunaci&oacute;n fundamentales y la adecuada eliminaci&oacute;n de material contaminado. Se inocularon los ratones ICR v&iacute;a intraperitoneal (<a href="#fig.1">fig. 1</a>) con 0,4 ml del sedimento obtenido luego de centrifugar el LCR (2 ratones por cada muestra y 1 rat&oacute;n control sin inocular). Se observaron los ratones inoculados durante 2 semanas, tiempo en el cual no se present&oacute; ninguna sintomatolog&iacute;a compatible con infecci&oacute;n. Al cabo de este tiempo los 6 ratones fueron sacrificados en c&aacute;mara de CO <sub>2</sub>, se hizo extracci&oacute;n de exudado peritoneal con 2 ml de soluci&oacute;n salina est&eacute;ril (<a href="#fig.2">fig. 2</a>) y este se concentr&oacute; por centrifugaci&oacute;n a 1.000 rpm por 15-20 minutos para su observaci&oacute;n directa, elaboraci&oacute;n y coloraci&oacute;n de frotis con Romanowsky modificado e inoculaci&oacute;n haciendo pase en ciego a otros 6 ratones. A partir de este material se realizaron 5 pases sucesivos (6 ratones por pase), hasta la positivizaci&oacute;n (presencia de taquizo&iacute;tos de <i>T. gondii </i>) <i>. </i></p>     <p>    <center> <a name="fig.1"><img src="img/revistas/inf/v17n2/v17n2a03i1.jpg"></a></center></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center> <a name="fig.2"><img src="img/revistas/inf/v17n2/v17n2a03i2.jpg"></a></center></p>     <p><b>Preservaci&oacute;n de los aislamientos de </b><b><i>Toxoplasma gondii </i></b></p>     <p>Se realiz&oacute; el mantenimiento de los aislamientos parasitarios a trav&eacute;s de pases sucesivos en ratones de la cepa ICR durante 6 meses despu&eacute;s de los cuales se crioconservaron en nitr&oacute;geno l&iacute;quido a ?196 &ordm;C. La viabilidad poscongelamiento de los aislamientos se confirm&oacute; realizando pases sucesivos en rat&oacute;n a los 10, 40 y 270 d&iacute;as siguientes a la crioconservaci&oacute;n <sup>13</sup>. </p>     <p><b>Resultados </b></p>     <p><b>Observaci&oacute;n del sedimento de l&iacute;quido cefalorraqu&iacute;deo </b></p>     <p>Al realizar la observaci&oacute;n directa en microscopio de luz (400x) del sedimento de LCR de cada paciente no se observ&oacute; ninguna forma parasitaria compatible con <i>T. gondii </i>, igual hallazgo se encontr&oacute; al examinar en microscopio de luz (1.000x) los frotis coloreados con Romanowsky modificado. </p>     <p><b>Inoculaci&oacute;n en rat&oacute;n </b></p>     <p>Los ratones inoculados con el sedimento de LCR de los pacientes no presentaron ninguna sintomatolog&iacute;a compatible con infecci&oacute;n toxopl&aacute;smica como piloerecci&oacute;n, ataxia del tren posterior, hepato-esplenomegalia, letargia ni diarrea (<a href="#fig.3">fig. 3</a>), durante las dos primeras semanas que fueron observados, al igual que los ratones control. Luego de los 5 pases ciegos sucesivos, a los 43 d&iacute;as los 2 ratones control continuaron sin presentar ninguna sintomatolog&iacute;a, pero los 4 ratones de trabajo presentaron piloerecci&oacute;n, hepatoesplenomegalia, letargia y en el exudado peritoneal se observaron taquizo&iacute;tos de <i>T. gondii </i>sin que se observaran en el exudado de los ratones control, hallazgo que fue confirmado al examinar los extendidos coloreados con Romanowsky modificado (<a href="#fig.4">fig. 4</a>). </p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center> <a name="fig.3"><img src="img/revistas/inf/v17n2/v17n2a03i3.jpg"></a></center></p>     <p>    <center> <a name="fig.4"><img src="img/revistas/inf/v17n2/v17n2a03i4.jpg"></a></center></p>     <p><b>Preservaci&oacute;n de los aislamientos de </b><b><i>Toxoplasma gondii </i></b></p>      <p>Los ratones ICR inoculados con los aislamientos parasitarios obtenidos presentaron sintomatolog&iacute;a cl&iacute;nica compatible con toxoplasmosis a los 3-5 d&iacute;as luego de inoculaci&oacute;n intraperitoneal, el exudado peritoneal obtenido fue observado en directo en microscopio de luz (400x) evidenci&aacute;ndose la presencia de taquizo&iacute;tos de <i>T. gondii </i>. Los ratones ICR inoculados para la confirmaci&oacute;n de la viabilidad poscongelamiento presentaron s&iacute;ntomas compatibles con toxoplasmosis como hepato-esplenomegalia, piloerecci&oacute;n y letargia luego de 8-10 d&iacute;as de inoculaci&oacute;n, el exudado peritoneal obtenido a partir de estos ratones fue observado en directo en microscopio de luz (400x) evidenci&aacute;ndose la presencia de taquizo&iacute;tos de <i>T. gondii </i>. </p>     <p><b>Discusi&oacute;n </b></p>     <p><i>Toxoplasma gondii </i>es un par&aacute;sito intracelular obligado que infecta a vertebrados de sangre caliente y se estima que una tercera parte de la poblaci&oacute;n humana global esta cr&oacute;nicamente infectada. La infecci&oacute;n inicial ocurre oralmente tras la ingesti&oacute;n de ooquistes o quistes tisulares que se transforman en taquizo&iacute;tos, los cuales se diseminan ampliamente en el organismo, tras el establecimiento de la respuesta inmune del hu&eacute;sped ocurre la diferenciaci&oacute;n de taquizo&iacute;to a bradizo&iacute;to en sistemas y &oacute;rganos espec&iacute;ficos como el sistema nervioso central, resultando una infecci&oacute;n asintom&aacute;tica cr&oacute;nica; en individuos con inmunodeficiencias como SIDA o con tratamientos inmunosupresivos prolongados como en el caso de trasplantes, la reactivaci&oacute;n de la infecci&oacute;n puede llevar a una encefalitis toxopl&aacute;smica letal <sup>14</sup>. </p>     <p>Por lo general la afecci&oacute;n del Sistema Nervioso Central (SNC) por <i>T. gondii </i>se considera una reactivaci&oacute;n de una infecci&oacute;n cr&oacute;nica latente que se presenta con frecuencia en pacientes con diagn&oacute;stico de SIDA pero en algunos casos es la primera manifestaci&oacute;n de este s&iacute;ndrome <sup>15-17</sup>. Los protocolos de diagn&oacute;stico de la toxoplasmosis cerebral en pacientes con SIDA var&iacute;an dependiendo de las caracter&iacute;sticas cl&iacute;nicas del paciente y de las herramientas tecnol&oacute;gicas con las que se cuente <sup>18</sup>; sin embargo, esta infecci&oacute;n es generalmente letal si el paciente no recibe el tratamiento en forma adecuada y oportuna, por lo que es fundamental un diagn&oacute;stico oportuno y confiable basado en hallazgos cl&iacute;nicos y radiol&oacute;gicos <sup>19</sup>, teniendo en cuenta que para obtener un diagn&oacute;stico de certeza se necesitan pruebas que permitan demostrar en forma directa la presencia del par&aacute;sito en cerebro (biopsia), o en muestras biol&oacute;gicas (LCR, sangre) a trav&eacute;s de cultivos celulares que permiten obtener taquizo&iacute;tos viables y con la pureza deseable, los cuales son una fuente de par&aacute;sitos con m&aacute;ximo rendimiento y m&iacute;nima contaminaci&oacute;n de las c&eacute;lulas del hu&eacute;sped <sup>20</sup>, de inoculaci&oacute;n en animales, t&eacute;cnica m&aacute;s sensible que el cultivo celular 9 o con la t&eacute;cnica de Reacci&oacute;n de Cadena de Polimerasa (PCR) en la cual se amplifica el ADN del par&aacute;sito logr&aacute;ndose una alta sensibilidad (50-65%) y especificidad (95-100%); lamentablemente la falta de laboratorios preparados para realizar estas t&eacute;cnicas y sus altos costos pueden ser limitantes para el diagn&oacute;stico <sup>21</sup>. </p>     <p>A pesar de que las t&eacute;cnicas de detecci&oacute;n directa del par&aacute;sito en sangre o LCR tales como el cultivo en c&eacute;lulas de fibroblastos o la inoculaci&oacute;n en ratones de laboratorio consumen mucho tiempo y tienen una baja sensibilidad <sup>21-23</sup> (38%) el presente trabajo permiti&oacute; obtener dos aislamientos de <i>Toxoplasma gondii </i>de dos casos humanos de toxoplasmosis cerebral que crecen bien en rat&oacute;n y que pueden ser utilizados por investigadores a nivel nacional e internacional. </p>     <p><b>Financiaci&oacute;n </b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Este estudio fue financiado en su totalidad por el Instituto Nacional de Salud. </p>     <p><b>Conflicto de intereses </b></p>     <p>Los autores declaran no tener ning&uacute;n conflicto de intereses. </p>     <p>* Autor para correspondencia. </p>     <p><i>Correo electr&oacute;nico: </i><a href="mailto:jcortes@ins.gov.co">jcortes@ins.gov.co</a> (L.J. Cortes). </p>     <p>0123-9392/$ - see front matter &copy; 2013 ACIN. Publicado por Elsevier Espa&ntilde;a, S.L. Todos los derechos reservados. </p>      <p><b>Bibliograf&iacute;a </b></p>     <!-- ref --><p>1. Epidemiological fact sheet on HIV and AIDS Core data on epidemiology and response. Colombia: OMS; 2008.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0123-9392201300020000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>2. Unaids. World AIDS. Day Report. 2011.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0123-9392201300020000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>3. G&oacute;mez JE, Alvarado F, Hern&aacute;ndez C, Cuervo S, Saravia J. Tratamiento de la fase aguda de la toxoplasmosis cerebral con clindamicina-falcidar (pirimetamina-sulfadoxina) en pacientes infectados por VIH. Infectio. 2001;5:162-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0123-9392201300020000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>4. Silva F, Torres A, Prada G. Encefalitis por toxoplasma y SIDA: an&aacute;lisis de 27 episodios. Rev Panam Infectol. 1997;1:4-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0123-9392201300020000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>5. Corral RH, Varela A, Gonz&aacute;lez I, Guti&eacute;rrez MI, Vel&aacute;squez LH. Toxoplasmosis en pacientes con infecci&oacute;n por VIH. Bol SIEI-ISSCali. 1996;2:11-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0123-9392201300020000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>6. G&oacute;mez Mar&iacute;n JE, Corredor A, Murcia M, L&oacute;pez MC, Alvarado F, Anzola I, et al. Valor diagn&oacute;stico de la medici&oacute;n de IgG, IgM e IgA anti toxoplasma en pacientes infectados por VIH. Infectio. 2000;4:4-10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0123-9392201300020000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>7. Dupon M, Cazenave J, Pellegrin JL, Ragnaud JM, Cheyrou A, Fischer I, et al. Detection of <i>Toxoplasma gondii </i>by PCR and tissue culture in cerebrospinal fluid and blood of human immunodeficiency virus-seropositive patients. JCM. 1995;33:2421-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0123-9392201300020000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>8. Howe DK, Honore S, Derouin F, Sibley LD. Determination of genotypes of <i>Toxoplasma gondii </i>strains isolated from patients with Toxoplasmosis. J Clin Microbiol. 1997;35:1411-4.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0123-9392201300020000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>9. Dperouin F, Mazeron M, Garin Y. Comparative study of tissue culture and mouse inoculation methods for demonstration of <i>Toxoplasma gondii </i>. JMC. 1987;25:1597-60.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0123-9392201300020000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>10. Gallego C, Casta&ntilde;o J, Giraldo A, Ajzenberg D, Dard&eacute; M, G&oacute;mez JE. Caracterizaci&oacute;n biol&oacute;gica y molecular del aislamiento CIBMUQ/HDC, una cepa colombiana de referencia para <i>T. gondii. </i>Biom&eacute;dica. 2004;24:282-90.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0123-9392201300020000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>11. Committee National Research Council. Guide for the care and use of laboratory animals. 8th ed. Washington, D.C.: National Academies Press; 2011.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0123-9392201300020000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>12. Instituto Nacional de Salud. Resoluci&oacute;n No. 0458 de 2011 &quot;por medio de la cual se crea y reglamenta el CICUAL del Instituto Nacional de Salud&quot;. Bogot&aacute;, D.C.: Instituto Nacional de Salud; 2011.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0123-9392201300020000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>13. Duque S, Santacruz MM, Corredor A. Crioconservaci&oacute;n de <i>Toxoplasma gondii </i>. Biom&eacute;dica. 1992;12:18-20.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0123-9392201300020000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>14. Ho YC, Sun HY, Chen MY, Hsieh SM, Sheng WH, Chang SC. Clinical presentation and outcome of toxoplasmic encephalitis in patients with human immunodeficiency virus type 1 infection. J Microbiol Immunol Infect. 2008;41:386-92.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0123-9392201300020000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>15. Vega A, Quintana O, Gonz&aacute;lez R, Gonz&aacute;lez P. Neurotoxoplasmosis como debut de paciente con SIDA. AMC. 2010;4. Disponible en: <a href="http://www.actamedica.sld.cu/r4_10/neurotoxoplasmosis.htm" target="_blank">http://www.actamedica.sld.cu/r4_10/neurotoxoplasmosis.htm</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0123-9392201300020000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>16. Ho YC, Sun HY, Chen MY, Hsieh SM, Sheng WH, Chang SC. Clinical presentation and outcome of toxoplasmic encephalitis in patients with human immunodeficiency virus type 1 infection. J Microbiol Immunol Infect. 2008;41:386-92.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0123-9392201300020000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>17. Dur&aacute;n E, Mirazo I, Combol A. Toxoplasmosis cerebral en pacientes con SIDA. Parasitol d&iacute;a. 1997;21:123-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0123-9392201300020000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>18. Fauci AS, Braunwald E, Isselbacher KJ, Wilson JD, Martin JB, Kasper DL, et al. Harrison&acute;s principles of internal medicine. 14th ed. New York: McGraw Hill, Health Professions Division; 1998. p. 1371-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0123-9392201300020000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>19. Priya J, Calder&oacute;n M, Gilman RH, Quispe ML, Cok J, Ticona E, et. al. Optimization and evaluation of a PCR assay for detecting toxoplasmic encephalitis in patients with AIDS. J Clin Microbiol. 2002;40:4499-503.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0123-9392201300020000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>20. Saadatnia G, Haj Ghani H, Khoo B, Maimunah A, Rahmah N. Optimization of <i>Toxoplasma gondii </i>cultivation in VERO cell line. Trop Biomed. 2010;27:125-30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0123-9392201300020000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>21. Lamoril J, Molina JM, De Gouvello A, Garin YJ, Deybach JC, Modai J, et al. Detection by PCR of <i>Toxoplasma gondii </i>in blood in the diagnosis of cerebral toxoplasmosis in patients with AIDS. J Clin Pathol. 1996;49:89-92.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0123-9392201300020000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>22. Raffi F, Aboulker JP, Michelet C, Reliquet V, Pelloux H, Huart A, et al. A prospective study of criteria for the diagnosis of toxoplasmic encephalitis in 186 AIDS patients. AIDS. 1997;11:177-84.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0123-9392201300020000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>23. Dupon M, Cazenave J, Pellegrin J, Ragnaud J, Cheyrou A, Fischer I, et al. Detection of <i>Toxoplasma gondii </i>by PCR and tissue culture in cerebrospinal fluid and blood of human immunodeficiency virus-seropositive patients. Journal Of Clinical Microbiology. 1995;33:2421-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0123-9392201300020000300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p> </font>      ]]></body><back>
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