<?xml version="1.0" encoding="ISO-8859-1"?><article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance">
<front>
<journal-meta>
<journal-id>0304-3584</journal-id>
<journal-title><![CDATA[Actualidades Biológicas]]></journal-title>
<abbrev-journal-title><![CDATA[Actu Biol]]></abbrev-journal-title>
<issn>0304-3584</issn>
<publisher>
<publisher-name><![CDATA[Instituto de Biología, Universidad de Antioquia]]></publisher-name>
</publisher>
</journal-meta>
<article-meta>
<article-id>S0304-35842010000200001</article-id>
<title-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[EVALUACIÓN IN VITRO DEL POTENCIAL PROBIÓTICO DE BACTERIAS ÁCIDO LÁCTICAS AISLADAS DE SUERO COSTEÑO]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[IN VITRO EVALUATION OF PROBIOTIC POTENTIAL OF LACTIC BACTERIA ACID ISOLATED FROM COASTAL SERUM]]></article-title>
</title-group>
<contrib-group>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Cueto-Vigil]]></surname>
<given-names><![CDATA[María C.]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Acuña-Monsalve]]></surname>
<given-names><![CDATA[Yudtanduly]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A02"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Valenzuela-Riaño]]></surname>
<given-names><![CDATA[Jacqueline]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A03"/>
</contrib>
</contrib-group>
<aff id="A01">
<institution><![CDATA[,Universidad de La Sabana Facultad de Ingeniería ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Cundinamarca ]]></addr-line>
<country>Colombia</country>
</aff>
<aff id="A02">
<institution><![CDATA[,Universidad de La Sabana Facultad de Ingeniería ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Cundinamarca ]]></addr-line>
<country>Colombia</country>
</aff>
<aff id="A03">
<institution><![CDATA[,Universidad de La Sabana Facultad de Ingeniería ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Cundinamarca ]]></addr-line>
<country>Colombia</country>
</aff>
<pub-date pub-type="pub">
<day>00</day>
<month>12</month>
<year>2010</year>
</pub-date>
<pub-date pub-type="epub">
<day>00</day>
<month>12</month>
<year>2010</year>
</pub-date>
<volume>32</volume>
<numero>93</numero>
<fpage>129</fpage>
<lpage>138</lpage>
<copyright-statement/>
<copyright-year/>
<self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0304-35842010000200001&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0304-35842010000200001&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0304-35842010000200001&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Un grupo de 53 bacterias ácido lácticas (BAL) aisladas del suero costeño, fueron sometidas a estudios preliminares in vitro simulando las condiciones del tracto digestivo, para determinar sus características como potenciales probióticos: se evaluó la tolerancia a pH ácido (MRS pH: 2,0) y sales biliares (MRS con sales biliares al 0,3%) y posteriormente se determinó la población sobreviviente como log UFC/ml. A las cepas tolerantes a las condiciones mencionadas, se les determinó la resistencia a 14 antibióticos de uso comercial, se evaluó la adhesión a mucus intestinal y la producción de ácido láctico por cromatografía líquida de alta precisión (HPLC). Se encontró que 54,7% de las BAL evaluadas son tolerantes a las condiciones de pH ácido y 49,1 a 0,3% de sales biliares con una población de 10(6) log UFC/ml en promedio. Siete cepas fueron seleccionadas por presentar sensibilidad a vancomicina antibiótico de importancia epidemiológica y se adhirieron a mucus intestinal, reuniendo las condiciones requeridas para considerarse como potencialmente probióticas. Adicionalmente la cuantificación de ácido láctico para las cepas seleccionadas presentó un rango entre 0,13 &plusmn; 0,05 y 1,0 &plusmn; 0,08 g/l.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[A group of 53 lactic acid bacteria (LAB) isolated from costal serum were evaluated with preliminary in vitro studies simulating the conditions of the digestive tract, to determine their characteristics as potential probiotics; acid pH tolerance (MRS pH: 2.0) and bile salts (MRS with 0.3% bile salts) and subsequently the surviving population was determined as log CFU/ml. Strains tolerant to such conditions were evaluated for resistance to 14 antibiotics of commercial use; we assessed adherence to intestinal mucus and the production of lactic acid by high performance liquid chromatography (HPLC). It was shown that 54.7% of the LAB evaluated were tolerant to acid pH conditions and 49.1 to 0.3% bile salts with a population of 10(6) log CFU/ml on average. Seven strains were selected by antibiotic vancomycin tenderness of epidemiological importance and adhered to intestinal mucus, meeting the requirements to be considered as potentially probiotic. Additionally, the quantification of lactic acid in the selected strains showed a range between 0.13 and 1.0 &plusmn; 0.05 &plusmn; 0.08 g/l.]]></p></abstract>
<kwd-group>
<kwd lng="es"><![CDATA[ácido láctico]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[bacterias ácido lácticas]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[probiótico]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[resistencia a pH]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[sales biliares]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[suero costeño]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[acid pH and bile salt resistance]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[coastal serum]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[lactic acid]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[lactic acid bacteria]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[probiotic]]></kwd>
</kwd-group>
</article-meta>
</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>ART&Iacute;CULOS DE INVESTIGACI&Oacute;N</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="4">EVALUACI&Oacute;N IN VITRO DEL POTENCIAL PROBI&Oacute;TICO DE BACTERIAS &Aacute;CIDO L&Aacute;CTICAS AISLADAS DE SUERO COSTE&Ntilde;O</font></b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"> IN VITRO EVALUATION OF PROBIOTIC POTENTIAL OF LACTIC BACTERIA ACID ISOLATED    <br> FROM COASTAL SERUM</font></b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Mar&iacute;a C. Cueto-Vigil<sup>1</sup>; Yudtanduly Acu&ntilde;a-Monsalve<sup>2</sup>; Jacqueline Valenzuela-Ria&ntilde;o<sup>3</sup></font></b></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">1 Universidad de La Sabana, Facultad de Ingenier&iacute;a. Campus Universitario Puente del Com&uacute;n. Km 7, autopista Bogot&aacute;-Ch&iacute;a.   Cundinamarca, Colombia. <a href="mailto:maria.cueto@unisabana.edu.co">maria.cueto@unisabana.edu.co</a> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">2 Universidad de La Sabana, Facultad de Ingenier&iacute;a. Campus Universitario Puente del Com&uacute;n. Km 7, autopista Bogot&aacute;-Ch&iacute;a. Cundinamarca, Colombia. <a href="mailto:yudtanduly@gmail.com">yudtanduly@gmail.com</a>. </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">3 Universidad de La Sabana, Facultad de Ingenier&iacute;a. Campus Universitario Puente del Com&uacute;n. Km 7, autopista Bogot&aacute;-Ch&iacute;a.   Cundinamarca, Colombia. <a href="mailto:jacquelinevari@unisabana.edu.co">jacquelinevari@unisabana.edu.co</a>.</font></p>     <p>&nbsp;</p> <hr noshade size="1">     <p><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> RESUMEN</font></b></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Un grupo de 53 bacterias &aacute;cido l&aacute;cticas (<b>BAL</b>) aisladas del suero coste&ntilde;o, fueron sometidas a estudios preliminares   in vitro simulando las condiciones del tracto digestivo, para determinar sus caracter&iacute;sticas como potenciales   probi&oacute;ticos: se evalu&oacute; la tolerancia a pH &aacute;cido (MRS pH: 2,0) y sales biliares (MRS con sales biliares al 0,3%) y   posteriormente se determin&oacute; la poblaci&oacute;n sobreviviente como log UFC/ml. A las cepas tolerantes a las condiciones   mencionadas, se les determin&oacute; la resistencia a 14 antibi&oacute;ticos de uso comercial, se evalu&oacute; la adhesi&oacute;n a mucus   intestinal y la producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico por cromatograf&iacute;a l&iacute;quida de alta precisi&oacute;n (<b>HPLC</b>). Se encontr&oacute; que   54,7% de las BAL evaluadas son tolerantes a las condiciones de pH &aacute;cido y 49,1 a 0,3% de sales biliares con   una poblaci&oacute;n de 10<sup>6</sup> log UFC/ml en promedio. Siete cepas fueron seleccionadas por presentar sensibilidad a   vancomicina antibi&oacute;tico de importancia epidemiol&oacute;gica y se adhirieron a mucus intestinal, reuniendo las condiciones   requeridas para considerarse como potencialmente probi&oacute;ticas. Adicionalmente la cuantificaci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico   para las cepas seleccionadas present&oacute; un rango entre 0,13 &plusmn; 0,05 y 1,0 &plusmn; 0,08 g/l.  </font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>Palabras clave:</b> &aacute;cido l&aacute;ctico, bacterias &aacute;cido l&aacute;cticas, probi&oacute;tico, resistencia a pH, sales biliares, suero coste&ntilde;o.</font></p> <hr noshade size="1">     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>ABSTRACT</b></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> A group of 53 lactic acid bacteria (<b>LAB</b>) isolated from costal serum were evaluated with preliminary in vitro   studies simulating the conditions of the digestive tract, to determine their characteristics as potential probiotics;   acid pH tolerance (MRS pH: 2.0) and bile salts (MRS with 0.3% bile salts) and subsequently the surviving   population was determined as log CFU/ml. Strains tolerant to such conditions were evaluated for resistance to   14 antibiotics of commercial use; we assessed adherence to intestinal mucus and the production of lactic acid by   high performance liquid chromatography (<b>HPLC</b>). It was shown that 54.7% of the LAB evaluated were tolerant   to acid pH conditions and 49.1 to 0.3% bile salts with a population of 10<sup>6</sup> log CFU/ml on average. Seven strains   were selected by antibiotic vancomycin tenderness of epidemiological importance and adhered to intestinal mucus,   meeting the requirements to be considered as potentially probiotic. Additionally, the quantification of lactic acid in the selected strains showed a range between 0.13 and 1.0 &plusmn; 0.05 &plusmn; 0.08 g/l.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>Key words:</b> acid pH and bile salt resistance, coastal serum, lactic acid, lactic acid bacteria, probiotic.  </font></p> <hr noshade size="1">     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> ELas bacterias &aacute;cido l&aacute;cticas (<b>BAL</b>) se caracterizan   por fermentar carbohidratos y producir  &aacute;cido l&aacute;ctico como principal producto metab&oacute;lico.   Muchas de ellas poseen propiedades probi&oacute;ticas   y est&aacute;n presentes en la alimentaci&oacute;n del hombre ya que se encuentran en productos como leches fermentadas, quesos madurados, c&aacute;rnicos y hasta en algunas preparaciones de vegetales; son microorganismos comensales de la piel y la mucosa del tracto digestivo y genital de humanos y animales, sitios de donde se han recuperado numerosas especies con frecuencia y distribuci&oacute;n variable seg&uacute;n el organismo de donde fueron aisladas. Este grupo bacteriano inicia la colonizaci&oacute;n del sistema digestivo al momento del nacimiento de un nuevo ser, la cual declina con la edad por disminuci&oacute;n en la adhesi&oacute;n a la mucosa intestinal (Strompfov&aacute; y Laukov&aacute; 2004).</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> El suero coste&ntilde;o es un producto l&aacute;cteo de color crema blanco suave, moderadamente fluido que presenta grumos y algo de sin&eacute;resis; se obtiene mediante la acidificaci&oacute;n espont&aacute;nea de la leche en calabazos (fruto seco de<i> Lagenaria vigalis</i>) por la acci&oacute;n de BAL y otros microorganismos, en procesos artesanales o semindustriales y es consumido en la costa Atl&aacute;ntica colombiana, en la mayor&iacute;a de los municipios de los departamentos de Bol&iacute;var, Cesar, C&oacute;rdoba, Magdalena y Sucre. El proceso tradicional es producto de la combinaci&oacute;n de diversos factores tales como: la temperatura ambiental, que en la regi&oacute;n del Caribe es en promedio 28 &ordm;C, y de la poblaci&oacute;n microbiana de la leche que se fija naturalmente en el calabazo (Cueto et al. 2007).</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> La Organizaci&oacute;n de las Naciones Unidas para la Agricultura y Alimentos y la Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud (WHO 2002) definen la palabra probi&oacute;tico como: ''organismos vivos que ingeridos en cantidad adecuada confieren un beneficio saludable en el hu&eacute;sped''. Para ello, se han establecido ciertas caracter&iacute;sticas que deben reunir estos microorganismos las cuales aseguran su eficiencia, eficacia y beneficio para el hospedero. Entre estas caracter&iacute;sticas se encuentran: no ser pat&oacute;geno, ni t&oacute;xico; estabilidad al contacto con bilis y &aacute;cido; adhesi&oacute;n a la mucosa intestinal (Shah 2000). Entre los principales g&eacute;neros utilizados en la industria de alimentos como probi&oacute;ticos se encuentran especies de <i>Lactobacillus y Bifidobacterium</i>. En este estudio se utiliz&oacute; una metodolog&iacute;a in vitro, que simula el paso por el tracto gastrointestinal humano que debe atravesar un microorganismo para ser considerado como potencial probi&oacute;tico.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Los microorganismos probi&oacute;ticos producen sustancias antimicrobianas como &aacute;cidos l&aacute;ctico y ac&eacute;tico, que por medio de la acidificaci&oacute;n del intestino ayudan a inhibir la proliferaci&oacute;n de algunos microorganismos pat&oacute;genos, as&iacute; mismo son fuente de metabolitos como per&oacute;xido de hidr&oacute;geno, diacetilo y bacteriocinas (Savadogo et al. 2006).</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Los antibi&oacute;ticos son agentes antimicrobianos altamente eficaces en el tratamiento y erradicaci&oacute;n de las infecciones bacterianas, sin embargo su efectividad se ha visto reducida debido a que las bacterias son microorganismos adaptables y capaces de desarrollar mecanismos de resistencia. En recientes investigaciones, se ha afirmado que las bacterias comensales incluyendo BAL pueden actuar como reservorios de genes de resistencia a antibi&oacute;ticos similares a los encontrados en pat&oacute;genos humanos (Mathur y Singh 2005). La principal amenaza asociada con estas bacterias es que pueden transferir los genes de resistencia a bacterias pat&oacute;genas por medio de elementos m&oacute;viles como pl&aacute;smidos o transposones (Mathur y Singh 2005); por este motivo es importante evaluar si la resistencia a antibi&oacute;ticos encontrada en algunas BAL se debe a elementos m&oacute;viles o a elementos cromosomales, en cuyo caso no presentar&iacute;an riesgo.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"> <b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>Condiciones de crecimiento.</b> Se evaluaron 53 cepas de bacterias &aacute;cido l&aacute;cticas aisladas del suero coste&ntilde;o (Cueto et al. 2007), conservadas a -80 &deg;C en caldo Man, Ragosa, Sharpe (<b>MRS</b>) y 30% de glicerol (p/v). Como referencia se utiliz&oacute; la cepa<i> Lactobacillus acidophilus</i> ATCC 4356 (Cebeci y G&uuml;rakan 2003). Las bacterias fueron activadas por incubaci&oacute;n de 24 h en caldo MRS en condiciones aer&oacute;bicas a 37 &deg;C y para cada ensayo se verific&oacute; la pureza de cada uno de los cultivos que se iba evaluar.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>Simulaci&oacute;n de tolerancia a jugo g&aacute;strico y sales biliares.</b> En la evaluaci&oacute;n de la tolerancia de estas cepas a pH &aacute;cido luego de activar el microorganismo, se tomaron 100 &mu;l del cultivo y se inocul&oacute; en caldo MRS ajustado a pH 2,0 con HCL 6 M y se incub&oacute; por 2 h a 37 &deg;C (Noriega et al. 2004). En la determinaci&oacute;n de la tolerancia a sales biliares de las cepas evaluadas se tomaron 100 &mu;l del cultivo fresco y se inocul&oacute; en caldo MRS enriquecido con sales biliares (0,3%) (Sigma B8756) (pH: 7,0) se incub&oacute; por 2 h a 37 &deg;C. La confirmaci&oacute;n de c&eacute;lulas viables se realiz&oacute; con el procedimiento descrito anteriormente.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>Determinaci&oacute;n del porcentaje de c&eacute;lulas viables</b>. El conteo de c&eacute;lulas viables se realiz&oacute; por el m&eacute;todo de conteo en placa en agar MRS. Fueron incubados a 37 &ordm;C por 24 a 48 h determinando el n&uacute;mero unidades formadoras de colonias. El porcentaje de supervivencia fue calculado de acuerdo con la siguiente ecuaci&oacute;n:</font></p>     <p align="center"><img src="img/revistas/acbi/v32n93/v32n93a1e1.jpg"></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Donde <i>N</i><sub>1</sub> representa el total de c&eacute;lulas viables despu&eacute;s de los tratamientos y <i>N</i><sub>0</sub> representa el n&uacute;mero inicial de BAL inoculadas (Bao et al. 2010).</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>Cuantificaci&oacute;n del &aacute;cido l&aacute;ctico.</b> Para determinar la concentraci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico producido por cada BAL se utiliz&oacute; la metodolog&iacute;a de cromatograf&iacute;a l&iacute;quida de alta precisi&oacute;n (<b>HPLC</b>) descrita por Dubey y Mistre (1996). El sobrenadante de cada cultivo se filtr&oacute; con un filtro de jeringa de 0,2 &mu;m (Minisart&reg; 0,2 &mu;m). Se adicionaron 100 &mu;l de &aacute;cido n&iacute;trico 0,1 N a 1,5 ml del filtrado, el cual se centrifug&oacute; a 1.500 g por 30 minutos a 25 &deg;C. La concentraci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico se determin&oacute; por HPLC (<i>Bomba BAS Solvandeli system PM- 80</i>) equipada con una columna para la determinaci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico (MetaCarb 67H 300 x 6,5 mm, <i>Varian Inc.</i>) y un detector de UV de 210 nm, operado a 60 &deg;C con una tasa de flujo de 0,5 ml/minuto y utilizando como fase m&oacute;vil &aacute;cido fosf&oacute;rico 0,01 N; la cuantificaci&oacute;n se realiz&oacute; por triplicado. El sistema HPLC fue calibrado usando est&aacute;ndares de &aacute;cido l&aacute;ctico (Sigma) de 1-4 g/l con un r = 0,9948.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>Determinaci&oacute;n de la resistencia a antibi&oacute;ticos de uso comercial</b>. Se emple&oacute; la prueba de difusi&oacute;n agar recomendada por el <i>National Committee for Clinical Laboratory Standars </i>con las cepas activadas en caldo MRS a 37 &deg;C durante 8 h y discos de antibi&oacute;ticos Becton Dickinson, BBL. Estas placas se incubaron a 37 &deg;C por 24 h y luego se determin&oacute; el di&aacute;metro de inhibici&oacute;n en mm (Can&#382;ek y Bogovic 2001). Los antibi&oacute;ticos utilizados fueron: penicilina, cloranfenicol, ampicilina, rifampicina, vancomicina, norfloxacina, clindamicina, ampicilina sulbactam, tetraciclina, cefoxitin, eritromicina, gentamicina, &aacute;cido nalid&iacute;xico y amoxicilina.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>Caracterizaci&oacute;n bioqu&iacute;mica.</b> Se utiliz&oacute; el sistema de identificaci&oacute;n bioqu&iacute;mico <i>Miniaturized Biochemical Test Kits API&reg; 50 CHL Medium</i> (<b>BioMerieux</b>). Se tomaron las colonias aisladas en agar MRS provenientes de un subcultivo, que se hab&iacute;an mantenido durante 24 h en incubaci&oacute;n y se siguieron las recomendaciones del fabricante. Al comparar el perfil de fermentaci&oacute;n de carbohidratos de cada una de las cepas con la bases de datos proporcionada por el fabricante, se identific&oacute; la especie para cada una de las bacterias aisladas.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>Adhesi&oacute;n al mucus intestinal</b>. Para evaluar la adhesi&oacute;n de las BAL se realizaron tres pasos: obtenci&oacute;n del mucus intestinal; marcaje de BAL con fluoresce&iacute;na (<b>DTAF</b>) y ensayo de adhesi&oacute;n in vitro.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>Obtenci&oacute;n del mucus intestinal</b>. La adhesi&oacute;n se evalu&oacute; seg&uacute;n el m&eacute;todo descrito por Ouwehand et al. (2002) modificado. Para la obtenci&oacute;n de mucus de intestino delgado de cerdo se cort&oacute; el intestino en trozos de 15 cm, se lav&oacute; con agua destilada est&eacute;ril y luego con <i>buffer</i> fosfato salino (<b>PBS</b>) (NaCl 8,0 g, KCl 0,2 g, Na<SUB>2</SUB>HPO<SUP>4</SUP>&bull;2H<SUB>2</SUB>O 1,44 g, 0,2 g, KH2PO4, en 1.000 ml de H2O destilada est&eacute;ril) con 0,01% de gelatina pH 7,4 enseguida se abrieron los trozos de intestino y se obtuvo el mucus por raspado, la muestra fue recolectada en tubos Falcom est&eacute;riles, se adicion&oacute; PBS, se homogeneiz&oacute;, se centrifug&oacute; a 7.400 g por 10 minutos a 4 &ordm;C y se retir&oacute; el sobrenadante; este procedimiento se realiz&oacute; dos veces y se almacen&oacute; inmediatamente a -80 &ordm;C hasta su utilizaci&oacute;n.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>Marcaje de BAL con fluoresce&iacute;na.</b> Para observar la adhesi&oacute;n de las BAL en el mucus intestinal, fueron marcadas con DTAF seg&uacute;n el m&eacute;todo descrito por Sherr et al. (1987). Las cepas se cultivaron en 30 ml de caldo MRS por 24 h a 37 &deg;C, se centrifugaron a 8.000 g por 10 minutos a 4 &deg;C y se descart&oacute; el sobrenadante. El pellet fue resuspendido en 500 &mu;l de PBS y 250 &mu;l de DTAF (10 mg de DTAF Sigma en 50 ml de PBS). La suspensi&oacute;n fue incubada en ba&ntilde;o Mar&iacute;a a 60 &ordm;C por 2 h y lavada tres veces con PBS.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>Ensayo de adhesi&oacute;n in vitro.</b> Para evaluar la adherencia bacteriana a la mucosa intestinal, se tomaron 10 &mu;l de la suspensi&oacute;n de BAL y se centrifugaron a 10.000 g, por 10 minutos a 4 &deg;C; 200 &mu;l del mucus fueron adicionados al pellet, homogeneizando con vortex. Se incub&oacute; durante 2 h a 37 &deg;C y seguidamente fue lavado con <i>buffer</i> PBS de 3-4 veces; 1 &mu;l fue colocado en una l&aacute;mina portaobjetos, y visualizado en microscopio de fluorescencia (<i>Nikon Eclipse 80i</i>) con filtro de 450-500 nm en 100x y se evalu&oacute; la cantidad de BAL adherida por campo.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b>. Los experimentos se realizaron por triplicado y los datos obtenidos se expresaron en t&eacute;rminos de desviaci&oacute;n est&aacute;ndar. Los valores promedio fueron comparados con una prueba de significancia ANOVA (an&aacute;lisis de la varianza) con P &lt; 0,05.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"> <b>RESULTADOS</b></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> De las 53 cepas evaluadas, 29 toleraron el caldo MRS ajustado a pH 2,0 con reducci&oacute;n en promedio de 3 ciclos log, partiendo del crecimiento inicial 9,0 log UFC; y 26 cepas toleraron el caldo enriquecido con sales biliares presentando una disminuci&oacute;n de 4 ciclos log postratamiento. El porcentaje promedio de supervivencia de las cepas evaluadas en el medio con pH 2,0 fue de 54% y el obtenido con 0,3% de sales biliares de 63%.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Se seleccionaron inicialmente 26 cepas que presentaron crecimiento en los medios modificados, a las cuales se les cuantific&oacute; la producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico, estudio adicional para evaluar la capacidad de &eacute;ste como agente antimicrobiano. La cepa <i>L. fermentum</i> 72, present&oacute; la mayor concentraci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico 1,0 &plusmn; 0,08 g/l. Como control de la t&eacute;cnica HPLC se cuantific&oacute; un patr&oacute;n de 4,00 g/l obteni&eacute;ndose como resultado 3,98 g/l.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Como criterio de selecci&oacute;n para las cepas tolerantes a condiciones de estr&eacute;s como pH bajo y sales biliares, a estas 26 cepas se les evalu&oacute; la resistencia a 14 antibi&oacute;ticos de importancia epidemiol&oacute;gica (<a href="#t1">tabla 1</a>). Las cepas seleccionadas como potenciales probi&oacute;ticas para este estudio, fueron aquellas que presentaron sensibilidad a los antibi&oacute;ticos vancomicina y cefoxitin. De estas, 5 eran Lactobacilos y presentaron sensibilidad a vancomicina y 2 <i>Enterococcus</i> que presentaron sensibilidad tanto a vancomicina como cefoxitin, para un total de 7 cepas.</font></p>     <p align="center"><a name="t1"></a><img src="img/revistas/acbi/v32n93/v32n93a1t1.jpg"></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Las 7 cepas seleccionadas por presentar sensibilidad a antibi&oacute;ticos fueron caracterizadas inicialmente por fermentaci&oacute;n de az&uacute;cares y actualmente hacen parte de identificaci&oacute;n molecular; las cepas encontradas fueron: <i>Enterococcus faecium</i> 02, <i>E. durans</i> 381,<i> Lactobacillus rhamnosus</i> 73,<i> L. fermentum</i> 11, <i>L. fermentum</i> 72, <i>L. fermentum</i> 1-1 y<i> L. fermentum</i> 75.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> El efecto causado en las bacterias seleccionadas por la simulaci&oacute;n del tr&aacute;nsito g&aacute;strico se observa en la <a href="#f1">figura 1</a> y <a href="#t2">tabla 2</a>; en los resultados de la tasa de supervivencia en medio con pH bajo, tres de las cepas seleccionadas evidenciaron alta tolerancia a pH 2,0 durante dos horas presentando porcentaje de supervivencia por encima del 70%, asimismo dos de estas cepas reportaron porcentaje mayor del 60% y las dos &uacute;ltimas mayor al 40.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><a name="f1"></a><img src="img/revistas/acbi/v32n93/v32n93a1f1.jpg"></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><a name="t2"></a><img src="img/revistas/acbi/v32n93/v32n93a1t2.jpg"></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">   La tolerancia a 0,3% de sales biliares de las cepas seleccionadas se observa en la <a href="#f1">figura 1</a> y <a href="#t3">tabla 3</a>; en los resultados del porcentaje de supervivencia se nota que las sales biliares tienen mayor efecto que el pH &aacute;cido en la inhibici&oacute;n del crecimiento de las cepas seleccionadas, aunque una de las cepas presenta alta tolerancia (80%); tres cepas presentaron un porcentaje de supervivencia mayor al 50%, dos superior al 40% y una con 35%.</font></p>       <p align="center"><a name="t3"></a><img src="img/revistas/acbi/v32n93/v32n93a1t3.jpg"></p>       <p align="center">&nbsp;</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">     A estas siete cepas, siguiendo con los criterios de selecci&oacute;n in vitro de probi&oacute;ticos se les evalu&oacute; la adhesi&oacute;n al mucus intestinal, contando las BAL adheridas en 10 campos microsc&oacute;picos (<a href="#t4">tabla 4</a>); el ensayo demostr&oacute; que en su totalidad las BAL se adhirieron a la mucosa intestinal (<a href="#f2">figura 2</a>).</font></p>       <p align="center"><a name="f2"></a><img src="img/revistas/acbi/v32n93/v32n93a1f2.jpg"></p>       <p>&nbsp;</p>       <p align="center"><a name="t4"></a><img src="img/revistas/acbi/v32n93/v32n93a1t4.jpg"></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"> <b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> La Organizaci&oacute;n de las Naciones Unidas para la Agricultura y Alimentos (<b>FAO</b>) y la Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud (<b>OMS</b>), establecieron en 2002 criterios de selecci&oacute;n de microorganismos probi&oacute;ticos en el ''Informe del grupo de trabajo sobre la redacci&oacute;n de directrices para la evaluaci&oacute;n de los probi&oacute;ticos en los alimentos'' (WHO 2002). Uno de los criterios de selecci&oacute;n in vitro es la resistencia a la acidez estomacal y a las sales biliares de intestino delgado (Park et al. 2006). En el presente estudio preliminar, este criterio fue el primero en ser evaluado para seleccionar las cepas con potencial probi&oacute;tico, para luego seleccionar las cepas tolerantes a estas condiciones por su resistencia a antibi&oacute;ticos de inter&eacute;s epidemiol&oacute;gico.</font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> De los 53 aislamientos obtenidos del suero coste&ntilde;o, 54,7% resistieron pH 2,0 y 49,1% resistieron sales biliar?</font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">es al 0,3% caracter&iacute;sticas que se pueden correlacionar con la supervivencia in vivo a trav&eacute;s del tracto gastrointestinal. En condiciones normales el tiempo de tr&aacute;nsito gastrointestinal comprende de 2 a 4 h y var&iacute;a seg&uacute;n el individuo (Macfarlane y Dillon 2007). El estr&eacute;s celular inicia en el est&oacute;mago a pH de 1,5 previo a la ingesti&oacute;n de alimentos; las bacterias pasan a trav&eacute;s del est&oacute;mago, entran al tracto intestinal donde son secretadas las sales biliares (Cebeci y G&uuml;rakan 2003; Chou y Weimer1999). Gilliland et al. (1984) consideraron que la concentraci&oacute;n cr&iacute;tica para determinar la resistencia de cepas era de 0,3% de sales biliares (Erkkil&auml; y Pet&auml;j&auml; 2000).</font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> En la <a href="#t3">tabla 3</a> se observa que la cepa m&aacute;s tolerante a la acidez g&aacute;strica fue <i>L. fermentum</i> 72 presentando porcentaje de supervivencia de 77,7%, luego de dos horas de incubaci&oacute;n, Bao et al. (2010) reportaron en su estudio 11 cepas de <i>L. fermentum</i> con alta tolerancia a la acidez g&aacute;strica con porcentaje de supervivencia del 80% luego de 3 h de incubaci&oacute;n a pH 2,5; asimismo citan los resultados reportados por Conway et al. (1987) donde<i> L. acidophilus</i> NCFM disminuye cuatro ciclos log al ser inoculado en <i>buffer</i> fosfato por 3 h a pH 3,0. Teniendo en cuenta esto, <i>L. fermentum</i> 72 presenta alta tolerancia a la acidez y<i> L. fermentum</i> 75, <i>L. rhamnosus </i>73 y <i>L. fermentum</i> 1-1 tuvieron un comportamiento superior a <i>L. acidophilus </i>NCFM.</font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> El porcentaje de supervivencia en los <i>Enterococcus</i> seleccionados bajo estas condiciones hostiles fue de 43 y 61% para <i>E. faecium</i> 02 y <i>E. durans</i> 381, respectivamente, tolerancia a la acidez de acuerdo con los resultados obtenidos por Strompfov&aacute; et al. (2004); aunque estas cepas se incluyen en los resultados como potenciales probi&oacute;ticos, deben ser evaluadas con estudios m&aacute;s detallados para establecer su seguridad en el hospedero. Adicionalmente, en estudios reportados por Maragkoudakis et al. (2006), en los cuales se eval&uacute;a el potencial probi&oacute;tico de cepas aisladas de l&aacute;cteos se encontr&oacute; que la cepa <i>L. rhamnosus</i> ACA-DC 112 presenta porcentaje de supervivencia del 80%, inoculada en medio ajustado a pH 2,0 despu&eacute;s de 2 h, que compar&aacute;ndolo con la supervivencia obtenida por la cepa de <i>L. rhamnosus</i> evaluada en este estudio en las mismas condiciones de crecimiento, presenta valores en el mismo rango.</font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> En la tolerancia a sales biliares se observa que el porcentaje de supervivencia de las bacterias clasificadas como <i>E. faecium</i> 02 y<i> E. durans</i> 381 inoculadas en medio ajustado al 0,3% de sales biliares, presentaron porcentaje en c&eacute;lulas viables del 80% en promedio; este porcentaje se encuentra en el rango reportado por Marcin&aacute;kov&aacute; et al. (2010) de <i>Enterococcus</i> sp. aislados de heces de conejo que presentaron en promedio 80-90% de tolerancia a 0,3% de sales biliares (<a href="#t3">tabla 3</a>); Maragkoudakis et al. (2006), reportan una tasa de supevivencia para BAL tolerantes a 0,3% de sales biliares de 0% de acuerdo con estos resultados los <i>Lactobacillus</i> evaluados presentaron alta tolerancia.</font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Los resultados obtenidos para la cuantificaci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico de las cepas seleccionadas de tolerancia a pH &aacute;cido y sales biliares oscilaron en un rango de 0,018 &plusmn; 0,08 a 1,008 &plusmn; 0,17 g/l valores que se encuentran en el rango reportado por Adesokan et al. (2009), los cuales obtuvieron una producci&oacute;n entre 0,65 &plusmn; 0,4 a 1,35 &plusmn; 0,04 g/l de &aacute;cido l&aacute;ctico de Lactobacillus sp., cultivados en medios enriquecidos.</font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> La siguiente etapa de selecci&oacute;n se realiz&oacute; de acuerdo con la sensibilidad a antibi&oacute;ticos presentada por cada una las cepas, donde se obtuvieron 7 cepas como potenciales probi&oacute;ticos por presentar sensibilidad a vancomicina y cefoxitin considerados de importancia epidemiol&oacute;gica e influyente en la seguridad del hospedero.</font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> En este estudio solo se trabaj&oacute; con las 7 cepas seleccionadas, las cepas restantes y dos de las cepas seleccionadas del g&eacute;nero <i>Enterococcus</i>, ser&aacute;n evaluadas en un estudio molecular donde se determinar&aacute; si la resistencia presentada se debe a elementos gen&eacute;ticos m&oacute;viles como pl&aacute;smidos o trasposones, as&iacute; como tambi&eacute;n se evaluar&aacute;n las cepas de <i>Enterococcus</i> que no presentaron dicha resistencia, para reducir el riesgo de que exista transferencia de resistencia a antibi&oacute;ticos con microorganismos pat&oacute;genos presentes en la microflora intestinal. Actualmente, existen pocos estudios que investiguen los mecanismos de resistencia a antibi&oacute;ticos en BAL provenientes de los alimentos, en la mayor&iacute;a dichas investigaciones se concentran en Enterococcus pat&oacute;genos, mientras que el n&uacute;mero de estudios sobre <i>Lactococcus</i> y <i>Lactobacillus</i> es limitado (Mathur y Singh 2005).</font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> En a&ntilde;os recientes se han incrementado las cepas multirresistentes a antibi&oacute;ticos como la meticilina, cefoxitin, vancomicina, entre otros, evidenciando un problema epidemiol&oacute;gico (Pultz et al. 2006). Estas cepas provienen en su mayor&iacute;a de aislamientos cl&iacute;nicos causando infecciones nosocomiales (Kaufmann y Fairchild 2004).</font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Cabe la posibilidad de encontrar BAL en alimentos de elaboraci&oacute;n artesanal como el suero coste&ntilde;o y de estar presentes en productos l&aacute;cteos fermentados y cultivos iniciadores, de forma que pueden ser ingeridos en grandes cantidades para interactuar con la microflora intestinal. La introducci&oacute;n comercial de probi&oacute;ticos que incluyan genes con resistencia a los antibi&oacute;ticos tambi&eacute;n puede tener consecuencias negativas, por ejemplo, cuando la resistencia se transfiere a pat&oacute;genos intestinales (Mathur y Singh 2005). Entre las cepas de mayor importancia epidemiol&oacute;gica se encuentran los <i>Enterococcus</i> vancomicina resistentes (<b>VRE</b>) y los <i>Staphylococcus aureus</i> meticilina resistentes (<b>MRSA</b>). Los <i>Enterococcus</i> y <i>Staphylococcus</i> comparten un nicho ecol&oacute;gico com&uacute;n como el tracto gastrointestinal seg&uacute;n lo demostraron Naoko y Kenji (1996) y Ray et al. (2003), donde el 62% de los pacientes colonizados con VRE y <i>S. aureus,</i> presentaron resistencia a la vancomicina evidenciando la transferencia de genes de resistencia. Hasta la fecha no se ha reportado ning&uacute;n caso de MRSA y vancomicina resistente, raz&oacute;n por la cual en este estudio las cepas pertenecientes al g&eacute;nero <i>Enterococcus</i> spp. que presentaron resistencia al cefoxitin y la vancomicina no fueron seleccionadas como potenciales probi&oacute;ticos, teniendo en cuenta que el antibi&oacute;tico de elecci&oacute;n para tratar MRSA es la vancomicina. El criterio de selecci&oacute;n de cepas de <i>Lactobacillus</i> sp. fue la sensibilidad a la vancomicina.</font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Las siete cepas que se encontraron con caracter&iacute;sticas probi&oacute;ticas seg&uacute;n clasificaci&oacute;n API&reg; 50 CHL son: <i>Enterococcus durans</i> 381, <i>E. faecium</i> 02,<i> Lactobacillus fermentum</i>, <i>L. fermentum</i> 72, <i>L. fermentum</i> 1-1, <i>L. fermentum</i> 75 y <i>L. rhamnosus</i> 73.</font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> La capacidad de adhesi&oacute;n de las bacterias con potencial probi&oacute;tico es una caracter&iacute;stica importante debido a que las cepas que se pueden adherir a la mucosa intestinal podr&aacute;n colonizar y ejercer un efecto ben&eacute;fico al hu&eacute;sped y competir con microorganismos pat&oacute;genos. A estas cepas, siguiendo con los criterios de selecci&oacute;n in vitro de potenciales probi&oacute;ticos, se les evalu&oacute; la adhesi&oacute;n al mucus intestinal contando las BAL adheridas en 10 campos microsc&oacute;picos (<a href="#t4">tabla 4</a>); el ensayo demostr&oacute; que en su totalidad las BAL se adhirieron a la mucosa intestinal (<a href="#f2">figura 2</a>).</font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Las 7 cepas seleccionadas por presentar tolerancia a pH &aacute;cido y sales biliares, sensibilidad a los antibi&oacute;ticos de importancia epidemiol&oacute;gica y adhesi&oacute;n a mucus intestinal, re&uacute;nen las condiciones requeridas para considerarse como potencialmente probi&oacute;ticas seg&uacute;n los criterios estipulados por la FAO y una de estas cepas produjo cantidades importantes de &aacute;cido l&aacute;ctico, caracter&iacute;stica probi&oacute;tica que tambi&eacute;n podr&iacute;a ser importante en el &aacute;mbito industrial. Este estudio es un primer paso de caracterizaci&oacute;n que deber&aacute; ser complementado con una evaluaci&oacute;n in vivo que confirme los resultados obtenidos para considerar estas cepas como probi&oacute;ticas y poderse incluir en una matriz alimentaria.</font></p>       <p>&nbsp;</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"> <b>CONCLUSIONES</b></font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> De los 53 aislamientos evaluados fueron preseleccionados 26 por su sobrevivencia en medios hostiles (pH 2,0 y sales biliares), y 7 se seleccionaron como potenciales probi&oacute;ticos debido a la sensibilidad que presentaban a antibi&oacute;ticos de importancia epidemiol&oacute;gica.</font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> El antibiograma realizado a las 26 cepas seleccionadas, demostr&oacute; que algunas de estas cepas identificadas bioqu&iacute;micamente como <i>Enterococcus</i> presentaron resistencia a la vancomicina considerando este resultado de importancia cl&iacute;nica debido a que puede generar resistencia en la microbiota del hospedero, por esta raz&oacute;n no fueron consideradas para continuar con su caracterizaci&oacute;n como potenciales probi&oacute;ticos. Siete cepas cumplieron con las condiciones in vitro seleccionadas para este estudio, raz&oacute;n por la cual se sugiere continuar con las pruebas in vivo en un modelo animal para complementar el estudio. Adicionalmente, realizar el estudio de los genes de resistencia de las cepas descartadas. As&iacute; mismo, estas cepas caracterizadas previamente por <i>API&reg; 50 CHL</i>, ser&aacute;n caracterizadas por t&eacute;cnicas moleculares, siendo esta la prueba m&aacute;s certera para la identificaci&oacute;n de microorganismos.</font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> De las cepas seleccionadas <i>L. fermentum</i> 72, <i>L. fermentum</i> 11 y<i> L. rhamnosus</i> 73, tuvieron producci&oacute;n de &aacute;cido l&aacute;ctico por encima de 0,46 g/l, caracter&iacute;stica que les confiere un valor agregado a estas cepas.</font></p>       <p>&nbsp;</p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"> <b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Los autores agradecen a la Universidad de La Sabana la financiaci&oacute;n del proyecto ING-35-2007.</font></p>       <p>&nbsp;</p>       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"> <b>REFERENCIAS</b></font></p>       <!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 1. Adesokan Y, Odetoyinbo B, Okanlawon B. 2009. Optimization of lactic acid production by lactic acid bacteria isolater from some traditional fermented food in Nigeria. Pakistan Journal of Nutrition, 8 (5): 611-615.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0304-3584201000020000100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 2. Bao Y, Zhang Y, Zhang Y, Liu Y, Wanga Y, Dong X, Wang Y, Zhang H. 2010. Screening of potential probiotic properties of <i>Lactobacillus fermentum</i> isolated from traditional dairy products. Food Control, 21 (5): 695-712.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0304-3584201000020000100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 3. Can&#382;ek A, Bogovic B. 2001. Antibiotics influence on lactic acid bacteria inhabiting gastrointestinal tract. Mljekarstvo, 51 (2): 119-134.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0304-3584201000020000100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 4. Cebeci A, G&uuml;rakan C. 2003. Properties of potential probiotic <i>Lactobacillus</i> plantarum strains. Food Microbiology, 20 (5): 511-518.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0304-3584201000020000100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 5. Chou L, Weimer B. 1999. Isolation and characterization of acid- and bile-tolerant isolates from strains of <i>Lactobacillus acidophilus</i>. Journal of Dairy Science, 82 (1): 23-31.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0304-3584201000020000100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 6. Conway PL, Gorbach SL, Goldin BR. 1987. Survival of lactic acid bacteria in the human stomach and adhesion to intestinal cells. Journal of Dairy Science, 70 (1): 1-12.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0304-3584201000020000100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 7. Cueto C, Garc&iacute;a D, Garc&eacute;s F, Cruz J. 2007. Preliminary studies on the microbiological characterization of lactic acid bacteria in suero coste&ntilde;o, a Colombian traditional fermented milk product. Revista Latinoamericana de Microbiolog&iacute;a, 49 (1-2): 12-18.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0304-3584201000020000100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 8. Dubey U, Mistry V. 1996. Growth characteristics of bifidobacteria in infant formulas. Journal of Dairy Science, 79 (7): 1146-1155.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0304-3584201000020000100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 9. Erkkil&auml; S, Pet&auml;j&auml; E. 2000. Screening of commercial meat starter cultures at low pH and in the presence of bile salts for potential probiotic use. Meat Science, 55 (3): 297-300.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0304-3584201000020000100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 10. Gilliland S, Staley T, Bush L. 1984. Importance of bile toler-ance of<i> Lactobacillus acidophilus</i> used as dietary adjunct. Journal of Dairy Science, 67 (12): 3045-3051.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0304-3584201000020000100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 11. Kaufmann D, Fairchild K. 2004. Clinical microbiology of bacterial and fungal sepsis in very-low-birth-weight infants. Clinical Microbiology, 17 (3): 638-680.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0304-3584201000020000100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 12. Macfarlane S, Dillon JF. 2007. Review, microbial biofilms in the human gastrointestinal tract. Journal of Applied Microbiology, 102 (5): 1177-1436.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0304-3584201000020000100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 13. Maragkoudakis A, Zoumpopouloua G, Miarisa C, Kalantzopoulosa G, Potb B, Tsakalidoua F. 2006. Probiotic potential of <i>Lactobacillus</i> strains isolated from dairy products. International Dairy Journal, 16 (3): 189-199.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0304-3584201000020000100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 14. Marcin&aacute;kov&aacute; M, Klingberg T, Laukov&aacute; T, Budde B. 2010. The effect of pH, bile and calcium on the adhesion ability of probiotic enterococci of animal origin to the porcine jejunal epithelial cell line IPEC-J2. Anaerobe, 16 (2): 120-124.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0304-3584201000020000100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 15. Mathur S, Singh R. 2005. Antibiotic resistance in food lactic acid bacteria &#8211;a review. International Journal of Food Microbiology, 105 (3): 281-295.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0304-3584201000020000100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 16. Naoko KM, Kenji O. 1996. Gastrointestinal colonization by methicillin-resistant <i>Staphylococcus aureus</i> in immunosuppressed mice. Infection and Immunity, 64 (10): 4231-4235.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0304-3584201000020000100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 17. Noriega L, Gueimonde M, S&aacute;nchez B, Margolles A, de los Reyes-Gavil&aacute;n CG. 2004. Effect of the adaptation to high bile salts concentrations on glucosydic activity, survival at low pH and cross-resistance to bile salts in <i>Bifidobacterium</i>. International Journal of Food Microbiology, 94 (1): 79-86.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0304-3584201000020000100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">   18. Ouwehand A, Suomalainen T, T&ouml;lkk&ouml; S, Salminen S. 2002. In vitro adhesion of propionic acid bacteria to human intestinal mucus. Lait 82 (1): 123-130.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0304-3584201000020000100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 19. Park S, Hwang Y, Kim Y, KIM J, Song J, Lee K, Jeong K, Rhee M, Kim K, Kim T. 2006. Comparison of pH and bile resistance of <i>Lactobacillus acidophilus</i> strains isolated from rat, pig, chicken, and human sources. Journal of Microbiology and Biotechnology, 22 (1): 35-37.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0304-3584201000020000100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 20. Pultz N, Vesterlund S, Ouwehand AC, Donskey CJ. 2006. Adhesion of vancomycin-resistant <i>Enterococcus</i> to human intestinal mucus. Current Microbiology, 52 (3): 221-224.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0304-3584201000020000100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 21. Ray A, Pultz N, Bhalla A, Aron D, Donskey C. 2003. Coexistence of vancomycin-resistant enterococci and <i>Staphylococcus aureus</i> in the intestinal tracts of hospitalized patients. Clinical Infectious Diseases, 37 (7): 875-881.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0304-3584201000020000100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 22. Savadogo A, Ouattara C, Bassole I, Traore SA. 2006. Bacteriocins and lactic acid bacteria &#8211;minireview. African Journal of Biotechnology, 5 (9): 678-683.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0304-3584201000020000100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 23. Shah N. 2000. Probiotic bacteria: selective enumeration and survival in dairy foods. Journal of Dairy Science, 83 (4): 894-907.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0304-3584201000020000100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 24. Sherr B, Sherr E, Fallon R. 1987. Use of monodispersed, fluorescently labeled bacteria to estimate in situ protozoan bacterivory. Applied and Environmental Microbiology, 53 (5): 958-965.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0304-3584201000020000100024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 25. Strompfov&aacute; V, Laukov&aacute; A. 2004. Antibiotic resistance of acid lactic bacteria from canine faeces. Bulletin of Veterinary Institute in Pulawy, 48: 215-218.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0304-3584201000020000100025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 26. Strompfov&aacute; V, Laukov&aacute; A, Ouwehand A. 2004. Selection of enterococci for potential canine probiotic additives. Veterinary Microbiology, 100 (1-2): 107-114.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0304-3584201000020000100026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> 27. WHO (World Health Organization) [Internet]. 2002. Guidelines for the evaluation of probiotics in food. Report of a joint FAO/WHO working group on drafting guidelines for the evaluation of probiotics in food. Food and Agriculture Organization. Fecha de acceso: 17 de diciembre de 2010. Disponible en: <a href="http://www.who.int/foodsafety/fs_management/en/probiotic_guidelines.pdf" target="_blank">http://www.who.int/foodsafety/fs_management/en/probiotic_guidelines.pdf</a>.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0304-3584201000020000100027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Recibido: diciembre 2009; aceptado: octubre 2010</font> </p>      ]]></body><back>
<ref-list>
<ref id="B1">
<label>1</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Adesokan]]></surname>
<given-names><![CDATA[Y]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Odetoyinbo]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Okanlawon]]></surname>
<given-names><![CDATA[B.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Optimization of lactic acid production by lactic acid bacteria isolater from some traditional fermented food in Nigeria]]></article-title>
<source><![CDATA[Pakistan Journal of Nutrition,]]></source>
<year>2009</year>
<volume>8</volume>
<numero>5</numero>
<issue>5</issue>
<page-range>611-615</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B2">
<label>2</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Bao]]></surname>
<given-names><![CDATA[Y]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Zhang]]></surname>
<given-names><![CDATA[Y]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Zhang]]></surname>
<given-names><![CDATA[Y]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Liu]]></surname>
<given-names><![CDATA[Y]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Wanga]]></surname>
<given-names><![CDATA[Y]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Dong]]></surname>
<given-names><![CDATA[X]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Wang]]></surname>
<given-names><![CDATA[Y]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Zhang]]></surname>
<given-names><![CDATA[H.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Screening of potential probiotic properties of Lactobacillus fermentum isolated from traditional dairy products]]></article-title>
<source><![CDATA[Food Control,]]></source>
<year>2010</year>
<volume>21</volume>
<numero>5</numero>
<issue>5</issue>
<page-range>695-712</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B3">
<label>3</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Canžek]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bogovic]]></surname>
<given-names><![CDATA[B.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antibiotics influence on lactic acid bacteria inhabiting gastrointestinal tract]]></article-title>
<source><![CDATA[Mljekarstvo,]]></source>
<year>2001</year>
<volume>51</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>119-134</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B4">
<label>4</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Cebeci]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gürakan]]></surname>
<given-names><![CDATA[C.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Properties of potential probiotic Lactobacillus plantarum strains]]></article-title>
<source><![CDATA[Food Microbiology,]]></source>
<year>2003</year>
<volume>20</volume>
<numero>5</numero>
<issue>5</issue>
<page-range>511-518</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B5">
<label>5</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Chou]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Weimer]]></surname>
<given-names><![CDATA[B.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Isolation and characterization of acid- and bile-tolerant isolates from strains of Lactobacillus acidophilus]]></article-title>
<source><![CDATA[Journal of Dairy Science,]]></source>
<year>1999</year>
<volume>82</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>23-31</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B6">
<label>6</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Conway]]></surname>
<given-names><![CDATA[PL]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gorbach]]></surname>
<given-names><![CDATA[SL]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Goldin]]></surname>
<given-names><![CDATA[BR.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Survival of lactic acid bacteria in the human stomach and adhesion to intestinal cells]]></article-title>
<source><![CDATA[Journal of Dairy Science,]]></source>
<year>1987</year>
<volume>70</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>1-12</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B7">
<label>7</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Cueto]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[García]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Garcés]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cruz]]></surname>
<given-names><![CDATA[J.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Preliminary studies on the microbiological characterization of lactic acid bacteria in suero costeño, a Colombian traditional fermented milk product]]></article-title>
<source><![CDATA[Revista Latinoamericana de Microbiología,]]></source>
<year>2007</year>
<volume>49</volume>
<numero>1-2</numero>
<issue>1-2</issue>
<page-range>12-18</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B8">
<label>8</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Dubey]]></surname>
<given-names><![CDATA[U]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Mistry]]></surname>
<given-names><![CDATA[V.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Growth characteristics of bifidobacteria in infant formulas]]></article-title>
<source><![CDATA[Journal of Dairy Science,]]></source>
<year>1996</year>
<volume>79</volume>
<numero>7</numero>
<issue>7</issue>
<page-range>1146-1155</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B9">
<label>9</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Erkkilä]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Petäjä]]></surname>
<given-names><![CDATA[E.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Screening of commercial meat starter cultures at low pH and in the presence of bile salts for potential probiotic use]]></article-title>
<source><![CDATA[Meat Science,]]></source>
<year>2000</year>
<volume>55</volume>
<numero>3</numero>
<issue>3</issue>
<page-range>297-300</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B10">
<label>10</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Gilliland]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Staley]]></surname>
<given-names><![CDATA[T]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bush]]></surname>
<given-names><![CDATA[L.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Importance of bile toler-ance of Lactobacillus acidophilus used as dietary adjunct]]></article-title>
<source><![CDATA[Journal of Dairy Science,]]></source>
<year>1984</year>
<volume>67</volume>
<numero>12</numero>
<issue>12</issue>
<page-range>3045-3051</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B11">
<label>11</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Kaufmann]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fairchild]]></surname>
<given-names><![CDATA[K.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Clinical microbiology of bacterial and fungal sepsis in very-low-birth-weight infants]]></article-title>
<source><![CDATA[Clinical Microbiology,]]></source>
<year>2004</year>
<volume>17</volume>
<numero>3</numero>
<issue>3</issue>
<page-range>638-680</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B12">
<label>12</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Macfarlane]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Dillon]]></surname>
<given-names><![CDATA[JF.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Review, microbial biofilms in the human gastrointestinal tract]]></article-title>
<source><![CDATA[Journal of Applied Microbiology,]]></source>
<year>2007</year>
<volume>102</volume>
<numero>5</numero>
<issue>5</issue>
<page-range>1177-1436</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B13">
<label>13</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Maragkoudakis]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Zoumpopouloua]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Miarisa]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kalantzopoulosa]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Potb]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Tsakalidoua]]></surname>
<given-names><![CDATA[F.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Probiotic potential of Lactobacillus strains isolated from dairy products]]></article-title>
<source><![CDATA[International Dairy Journal,]]></source>
<year>2006</year>
<volume>16</volume>
<numero>3</numero>
<issue>3</issue>
<page-range>189-199</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B14">
<label>14</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Marcináková]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Klingberg]]></surname>
<given-names><![CDATA[T]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Lauková]]></surname>
<given-names><![CDATA[T]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Budde]]></surname>
<given-names><![CDATA[B.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The effect of pH, bile and calcium on the adhesion ability of probiotic enterococci of animal origin to the porcine jejunal epithelial cell line IPEC-J2]]></article-title>
<source><![CDATA[Anaerobe,]]></source>
<year>2010</year>
<volume>16</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>120-124</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B15">
<label>15</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Mathur]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Singh]]></surname>
<given-names><![CDATA[R.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antibiotic resistance in food lactic acid bacteria -a review]]></article-title>
<source><![CDATA[International Journal of Food Microbiology,]]></source>
<year>2005</year>
<volume>105</volume>
<numero>3</numero>
<issue>3</issue>
<page-range>281-295</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B16">
<label>16</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Naoko]]></surname>
<given-names><![CDATA[KM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kenji]]></surname>
<given-names><![CDATA[O.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Gastrointestinal colonization by methicillin-resistant Staphylococcus aureus in immunosuppressed mice]]></article-title>
<source><![CDATA[Infection and Immunity,]]></source>
<year>1996</year>
<volume>64</volume>
<numero>10</numero>
<issue>10</issue>
<page-range>4231-4235</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B17">
<label>17</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Noriega]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gueimonde]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sánchez]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Margolles]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[de los Reyes-Gavilán]]></surname>
<given-names><![CDATA[CG.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Effect of the adaptation to high bile salts concentrations on glucosydic activity, survival at low pH and cross-resistance to bile salts in Bifidobacterium]]></article-title>
<source><![CDATA[International Journal of Food Microbiology,]]></source>
<year>2004</year>
<volume>94</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>79-86</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B18">
<label>18</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Ouwehand]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Suomalainen]]></surname>
<given-names><![CDATA[T]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Tölkkö]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Salminen]]></surname>
<given-names><![CDATA[S.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[In vitro adhesion of propionic acid bacteria to human intestinal mucus]]></article-title>
<source><![CDATA[Lait]]></source>
<year>2002</year>
<volume>82</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>123-130</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B19">
<label>19</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Park]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hwang]]></surname>
<given-names><![CDATA[Y]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kim]]></surname>
<given-names><![CDATA[Y]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[KIM]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Song]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Lee]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Jeong]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rhee]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kim]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kim]]></surname>
<given-names><![CDATA[T.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Comparison of pH and bile resistance of Lactobacillus acidophilus strains isolated from rat, pig, chicken, and human sources]]></article-title>
<source><![CDATA[Journal of Microbiology and Biotechnology,]]></source>
<year>2006</year>
<volume>22</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>35-37</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B20">
<label>20</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Pultz]]></surname>
<given-names><![CDATA[N]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Vesterlund]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ouwehand]]></surname>
<given-names><![CDATA[AC]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Donskey]]></surname>
<given-names><![CDATA[CJ.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Adhesion of vancomycin-resistant Enterococcus to human intestinal mucus]]></article-title>
<source><![CDATA[Current Microbiology,]]></source>
<year>2006</year>
<volume>52</volume>
<numero>3</numero>
<issue>3</issue>
<page-range>221-224</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B21">
<label>21</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Ray]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Pultz]]></surname>
<given-names><![CDATA[N]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bhalla]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Aron]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Donskey]]></surname>
<given-names><![CDATA[C.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Coexistence of vancomycin-resistant enterococci and Staphylococcus aureus in the intestinal tracts of hospitalized patients]]></article-title>
<source><![CDATA[Clinical Infectious Diseases,]]></source>
<year>2003</year>
<volume>37</volume>
<numero>7</numero>
<issue>7</issue>
<page-range>875-881</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B22">
<label>22</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Savadogo]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ouattara]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bassole]]></surname>
<given-names><![CDATA[I]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Traore]]></surname>
<given-names><![CDATA[SA.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Bacteriocins and lactic acid bacteria -minireview]]></article-title>
<source><![CDATA[African Journal of Biotechnology,]]></source>
<year>2006</year>
<volume>5</volume>
<numero>9</numero>
<issue>9</issue>
<page-range>678-683</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B23">
<label>23</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Shah]]></surname>
<given-names><![CDATA[N.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Probiotic bacteria: selective enumeration and survival in dairy foods]]></article-title>
<source><![CDATA[Journal of Dairy Science,]]></source>
<year>2000</year>
<volume>83</volume>
<numero>4</numero>
<issue>4</issue>
<page-range>894-907</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B24">
<label>24</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sherr]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sherr]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fallon]]></surname>
<given-names><![CDATA[R.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Use of monodispersed, fluorescently labeled bacteria to estimate in situ protozoan bacterivory]]></article-title>
<source><![CDATA[Applied and Environmental Microbiology,]]></source>
<year>1987</year>
<volume>53</volume>
<numero>5</numero>
<issue>5</issue>
<page-range>958-965</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B25">
<label>25</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Strompfová]]></surname>
<given-names><![CDATA[V]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Lauková]]></surname>
<given-names><![CDATA[A.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antibiotic resistance of acid lactic bacteria from canine faeces]]></article-title>
<source><![CDATA[Bulletin of Veterinary Institute in Pulawy,]]></source>
<year>2004</year>
<volume>48</volume>
<page-range>215-218</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B26">
<label>26</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Strompfová]]></surname>
<given-names><![CDATA[V]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Lauková]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ouwehand]]></surname>
<given-names><![CDATA[A.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Selection of enterococci for potential canine probiotic additives]]></article-title>
<source><![CDATA[Veterinary Microbiology,]]></source>
<year>2004</year>
<volume>100</volume>
<numero>1-2</numero>
<issue>1-2</issue>
<page-range>107-114</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B27">
<label>27</label><nlm-citation citation-type="">
<collab>WHO (World Health Organization)</collab>
<source><![CDATA[Guidelines for the evaluation of probiotics in food. Report of a joint FAO/WHO working group on drafting guidelines for the evaluation of probiotics in food. Food and Agriculture Organization]]></source>
<year>2002</year>
</nlm-citation>
</ref>
</ref-list>
</back>
</article>
