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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[ESTUDIO MORFOMÉTRICO Y TOPOLÓGICO DEL CEREBRO DEL PEZ NEÓN CARDENAL, Paracheirodon axelrodi (CHARACIFORMES: CHARACIDAE)]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[MORPHOMETRICAL AND TOPOLOGICAL STUDY OF CARDINAL NEON BRAIN, Paracheirodon axelrodi (CHARACIFORMS: CHARACIDAE)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[This work identified and described external and internal brain anatomy of Paracheirodon axelrodi (Schultz, 1956, Characiformes: Characidae). 28 individuals were sacrificed using bioethical protocols for research animal use. Heads were stored in 4% formaldehyde. The brains were later removed and dissected for anatomical description and digital image capture. In addition, length and area of some brain lobes (olfactory bulbs, telencephalic hemispheres, optic lobes and cerebellum) were obtained and an ANOVA was carried out to determine if statistical differences in size existed between these structures. For brain internal topology a protocol was followed for the preparations of paraffin sections and Nissl staining was performed. The brain of P. axelrodi exhibited several lobes in agreement with the general teleost brain pattern. However, as special characteristics, olfactory bulbs were sesil, the cerebellum was intermediate in size, and no facial lobes were observed. In the morphometrical analysis, for both length and area, highly significant differences were observed between the evaluated structures (p < 0.001), with optic lobes being the larger structures, suggesting a mayor role of vision. Internal topology of P. axelrodi brains was similar to other teleosts in terms of main nuclei location.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">     <p align="right"> <b>ART&Iacute;CULOS DE INVESTIGACI&Oacute;N</b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="4"><b>ESTUDIO MORFOM&Eacute;TRICO Y TOPOL&Oacute;GICO DEL CEREBRO DEL PEZ   NE&Oacute;N CARDENAL, <i><i><i>Paracheirodon axelrodi</i></i></i> (CHARACIFORMES: CHARACIDAE)</b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="3"><b> MORPHOMETRICAL AND TOPOLOGICAL STUDY OF CARDINAL NEON BRAIN, <i><i><i>Paracheirodon axelrodi</i></i></i> (CHARACIFORMS: CHARACIDAE)</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b> Martha J. Obando-Bulla<sup>1, 2</sup>; Edwin G&oacute;mez-Ram&iacute;rez<sup>1,3</sup>; Mario O. Tovar-Bohorquez<sup>1</sup>; Laura Rinc&oacute;n<sup>1</sup>; Mar&iacute;a L. Caldas-Mart&iacute;nez<sup>1</sup>; Hern&aacute;n Hurtado-Giraldo<sup>1,4</sup></b></p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>1  Laboratorio de Embriolog&iacute;a, Programa de Biolog&iacute;a Aplicada, Facultad de Ciencias B&aacute;sicas, Universidad Militar Nueva   Granada. Campus Rio Grande. Cajic&aacute;, Colombia.  </p>     <p>Correos electr&oacute;nicos: 2 <a href="mailto:martha.obando@unimilitar.edu.co">martha.obando@unimilitar.edu.co</a>; 3 <a href="mailto:edwin.gomez@unimilitar.edu.co">edwin.gomez@unimilitar.edu.co</a>; 4 <a href="mailto:hernan.hurtado@unimilitar.edu.co">hernan.hurtado@unimilitar.edu.co</a>.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p>Recibido: marzo de 2012; aceptado: enero de 2013.</p>     <p>&nbsp;</p> <hr noshade size="1">     <p><b> Resumen</b></p>     <p>Este trabajo consisti&oacute; en identificar y describir la anatom&iacute;a externa e interna del cerebro de <i><i>Paracheirodon axelrodi</i></i>   (Schultz, 1956, Characiformes: Characidae). Se emplearon 28 individuos los cuales fueron sacrificados de acuerdo   a protocolos de &eacute;tica para investigaci&oacute;n con animales. Las cabezas fueron conservadas en formaldeh&iacute;do al 4%.   Posteriormente se realiz&oacute; la disecci&oacute;n de estas para la descripci&oacute;n morfol&oacute;gica del cerebro y obtenci&oacute;n de im&aacute;genes.   Asimismo, se cuantificaron medidas de longitud y &aacute;rea de algunos l&oacute;bulos cerebrales (bulbos olfativos, hemisferios   telencef&aacute;licos, l&oacute;bulos &oacute;pticos y cerebelo) y se realiz&oacute; una ANOVA para comprobar si exist&iacute;an diferencias de tama&ntilde;o   en estas regiones. Para la topolog&iacute;a del cerebro se sigui&oacute; el protocolo para la obtenci&oacute;n de cortes en parafina y   se realiz&oacute; tinci&oacute;n de Nissl. El cerebro de <i>P. axelrodi</i> est&aacute; conformado por varios l&oacute;bulos conservando el patr&oacute;n   general descrito para otros tele&oacute;steos, sin embargo como caracter&iacute;sticas particulares se encontr&oacute; que los bulbos   olfativos son s&eacute;siles; el cerebelo present&oacute; un tama&ntilde;o moderado y no se evidenci&oacute; la presencia de l&oacute;bulos faciales.   En el an&aacute;lisis morfom&eacute;trico tanto en longitud como en &aacute;rea se encontraron diferencias altamente significativas   entre las estructuras evaluadas (p &lt; 0,001), siendo los l&oacute;bulos &oacute;pticos la regi&oacute;n de mayor tama&ntilde;o, sugiriendo una   dependencia mayor del sentido de la vista. En cuanto a la topolog&iacute;a, el cerebro de <i>P. axelrodi</i> presenta caracter&iacute;sticas similares en la disposici&oacute;n de n&uacute;cleos a las descritas en otros grupos de tele&oacute;steos.</p>     <p> <i>Palabras claves: cerebro, morfometr&iacute;a, neuroanatom&iacute;a, n&uacute;cleos neuronales, <i><i>Paracheirodon axelrodi</i></i>.</i></p> <hr noshade size="1">     <p> <b>Abstract</b></p>     <p>This work identified and described external and internal brain anatomy of <i><i>Paracheirodon axelrodi</i></i> (Schultz, 1956,   Characiformes: Characidae). 28 individuals were sacrificed using bioethical protocols for research animal use.   Heads were stored in 4% formaldehyde. The brains were later removed and dissected for anatomical description and   digital image capture. In addition, length and area of some brain lobes (olfactory bulbs, telencephalic hemispheres,   optic lobes and cerebellum) were obtained and an ANOVA was carried out to determine if statistical differences in   size existed between these structures. For brain internal topology a protocol was followed for the preparations of   paraffin sections and Nissl staining was performed. The brain of <i>P. axelrodi</i> exhibited several lobes in agreement   with the general teleost brain pattern. However, as special characteristics, olfactory bulbs were sesil, the cerebellum   was intermediate in size, and no facial lobes were observed. In the morphometrical analysis, for both length and   area, highly significant differences were observed between the evaluated structures (p &lt; 0.001), with optic lobes   being the larger structures, suggesting a mayor role of vision. Internal topology of <i>P. axelrodi</i> brains was similar to other teleosts in terms of main nuclei location.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><i> Key words: brain, morphometry, neuroanatomy, neuronal nuclei, <i><i>Paracheirodon axelrodi</i></i>.</i></p> <hr noshade size="1">     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p>Los tele&oacute;steos son el grupo m&aacute;s numeroso   de vertebrados, comprendiendo alrededor de   25.000 especies y se ha encontrado que existe   una gran diversidad inter e intra-espec&iacute;fica   en la morfolog&iacute;a y tama&ntilde;o de los cerebros de   estos organismos (Ishikawa et al. 1999a, b,   Kotrschal et al. 1998). Asimismo, han sido   empleados en muchos estudios para demostrar   que la estructura de los cerebros refleja algunas   especializaciones en los sistemas sensoriales   y han sido empleados para investigaciones neurobiol&oacute;gicas (Wagner 2001a, b).</p>     <p> El cerebro se divide en tres partes principales:   el cerebro anterior, el cerebro medio y el   cerebro posterior (Roberts 2001, Takashima   y Hibiya 1995, Wullimann 1998). El cerebro   anterior comprende los bulbos olfativos, los   hemisferios telenc&eacute;falicos, el tracto olfativo,   y el dienc&eacute;falo (Butler 2000, Chiason y Radke   1991, Grizzle y Rogers 1976, Wingerd 1988).   Los bulbos olfativos son los encargados de   recibir las se&ntilde;ales olfativas. Los hemisferios   telencef&aacute;licos son importantes en la recepci&oacute;n   y transmisi&oacute;n de impulsos olfativos (Schilling   2002); sin embargo, tambi&eacute;n est&aacute;n involucrados   en aspectos reproductivos, alimentaci&oacute;n, visi&oacute;n a color y aprendizaje (Grizzle y Rogers 1976).</p>     <p> El dienc&eacute;falo comprende seis regiones: el   epit&aacute;lamo, t&aacute;lamo dorsal, t&aacute;lamo ventral,   hipot&aacute;lamo, &aacute;rea pre&oacute;ptica, pretectum y   tub&eacute;rculo posterior. Dentro de las funciones   de estas regiones se encuentran la recepci&oacute;n de   est&iacute;mulos relacionadas con el gusto, el olfato y   la visi&oacute;n; adicionalmente, algunas regiones est&aacute;n   involucradas con el sistema nervioso auton&oacute;mico   y el sistema endocrino (Butler 2000, Butler y   Hodos 1996, Chiason y Radke 1991, Evans 1992, Roberts 2001, Schilling 2002, Wingerd 1988).</p>     <p> El cerebro medio incluye el tectum &oacute;ptico y el   tegmentum. El tectum &oacute;ptico de los tele&oacute;steos   es el principal centro visual en el cerebro y   tambi&eacute;n ha sido considerado un centro de   integraci&oacute;n multimodal. El tegmentum tiene   un papel dominante en las funciones motoras   (Butler 2000, Butler y Hodos 1996, Grizzle y   Rogers 1976, Schilling 2002, Springer et al.   1977, Takashima y Hibiya 1995, Wingerd 1988, Wullimann 1998).</p>     <p> El cerebro posterior est&aacute; constituido por el cerebelo   y por la m&eacute;dula oblongata. En peces tele&oacute;steos,   el cerebelo var&iacute;a considerablemente en tama&ntilde;o y   morfolog&iacute;a entre especies (Evans 1992, Roberts   2001) y la funci&oacute;n principal del cerebelo radica   en coordinar el balance, los movimientos y la   orientaci&oacute;n (Butler 2000, Butler y Hodos 1996, Grizzle y Rogers 1976).</p>     <p> <i><i>Paracheirodon axelrodi</i></i> (Schultz, 1956,   Characiformes: Characidae) es una de las   especies m&aacute;s comercializadas en Colombia,   Brasil y Venezuela, como pez ornamental de   exportaci&oacute;n (CCI 2010, COPESCAL 2009).   Considerando lo anterior, y con el fin de lograr   un mayor entendimiento de su biolog&iacute;a, como   paso importante hacia un aprovechamiento   sostenible, se han adelantado algunos estudios   en esta especie (Anjos y Anjos, 2006, Brito y   Bazzoli, 2009, G&oacute;mez et al. 2011, Oliveira et al.   2008, Tovar et al. 2009). Sin embargo, a pesar   de lo informado hasta ahora poco o nada se   conoce sobre la organizaci&oacute;n neuroanat&oacute;mica de   su cerebro, lo cual podr&iacute;a servir como base para   estudios posteriores en neuroendocrinolog&iacute;a y reproducci&oacute;n en esta especie.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> De acuerdo a lo anterior se realiz&oacute; un   estudio sobre la morfolog&iacute;a y topolog&iacute;a del   cerebro de <i>P. axelrodi</i> lo cual es esencial   para establecer estudios relacionados con el   desarrollo, neuroanatom&iacute;a, neurofisiolog&iacute;a y   comportamiento (Ishikawa et al. 1999b, Mukada   y Ando 2003). Asimismo, se llev&oacute; a cabo un   an&aacute;lisis morfom&eacute;trico de algunas regiones   del cerebro relacionadas con la recepci&oacute;n de   est&iacute;mulos de los &oacute;rganos de los sentidos, con   el fin de comprobar si hay o no diferencias   significativas en cuanto al tama&ntilde;o de estas regiones entre s&iacute;.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"> <b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p> <b>Espec&iacute;menes del estudio</b>. Se emplearon 28   individuos adultos de la especie <i>Paracheirodon axelrodi</i> (Schultz, 1956, Characiformes:   Characidae) con una longitud total promedio   de 2,7 &plusmn; 0,19 cm y un peso promedio de 0,19 &plusmn; 0,07 g. Los individuos fueron adquiridos en tiendas acuaristas de Bogot&aacute; y para este trabajo no se realiz&oacute; distinci&oacute;n de sexos entre individuos. Una vez adquiridos los individuos, estos fueron anestesiados con benzoca&iacute;na (0,1 g/l) y posteriormente se realiz&oacute; un corte en la m&eacute;dula espinal en la parte posterior de la cabeza para su sacrificio teniendo en cuenta las gu&iacute;as para el manejo &eacute;tico de peces para la investigaci&oacute;n (ASIH et al. 1988; AVMA 2000; CCAC 2003).</p>     <p> <b>Procesamiento del material biol&oacute;gico</b>. Una   vez sacrificados los individuos, se separaron las   cabezas del cuerpo y &eacute;stas se introdujeron en el   fijador formaldeh&iacute;do al 4%, pH de 7,2-7,3 a 4 &ordm;C   durante 4 d&iacute;as. Luego se realiz&oacute; la disecci&oacute;n de   todas las cabezas con el fin de extraer el cerebro   para la descripci&oacute;n morfol&oacute;gica, topol&oacute;gica y   para realizar las medidas respectivas de &aacute;rea   y longitud. La identificaci&oacute;n de las estructuras   externas del cerebro se realiz&oacute; por medio de   im&aacute;genes de las partes dorsal, ventral y lateral de   18 cerebros. La captura de im&aacute;genes se realiz&oacute;   con un estereoscopio (Carl Zeiss, Stemi DV4), y su sistema de c&aacute;mara digital.</p>     <p> <b>An&aacute;lisis morfom&eacute;trico</b>. Una vez se obtuvieron   las im&aacute;genes para la identificaci&oacute;n de las   estructuras externas, estas fueron procesadas   y con el uso del <i>Software ImageJ</i> (<a href="http://rsbweb.nih.gov/ij/" target="_blank">http://rsbweb.nih.gov/ij/</a>) se midi&oacute; la longitud de   tres estructuras del cerebro: bulbos olfativos,   hemisferios telencef&aacute;licos y l&oacute;bulos &oacute;pticos; y   el &aacute;rea de cuatro estructuras: bulbos olfativos,   hemisferios telencef&aacute;licos, l&oacute;bulos &oacute;pticos y   cerebelo. Para realizar las medidas de longitud   se tomaron im&aacute;genes laterales del cerebro y se   sigui&oacute; la metodolog&iacute;a propuesta por Marchetti   y Nevitt (2003); mientras que para la obtenci&oacute;n   de los datos de &aacute;rea se usaron im&aacute;genes dorsales   del cerebro. Las mediciones del cerebro fueron   realizadas por una misma persona, esto con el fin   de disminuir el error en las medidas, y de cada   regi&oacute;n del cerebro se tomaron tres medidas y se   promediaron. Los datos promedio se utilizaron para realizar el an&aacute;lisis estad&iacute;stico.</p>     <p> <b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b>. Se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de   varianza (ANOVA) y pruebas de Tukey para   comprobar si existen diferencias significativas   en &aacute;rea y longitud de las estructuras cerebrales   evaluadas (l&oacute;bulos &oacute;pticos, hemisferios   telencef&aacute;licos, bulbos olfatorios y cerebelo).   Se consider&oacute; el nivel de significancia del 5% (p &gt; 0,05 error tipo I) (Zar 1999).</p>     <p> <b>Procesamiento histol&oacute;gico.</b> Para la   caracterizaci&oacute;n topol&oacute;gica se sigui&oacute; el protocolo   de deshidrataci&oacute;n para la obtenci&oacute;n de cortes en   parafina a 5 &mu;m (Hinton 1990) y se realiz&oacute; la tinci&oacute;n de Nissl (Gridley 1960).</p>     <p> Una vez obtenidos los montajes permanentes se   llev&oacute; a cabo la respectiva observaci&oacute;n y captura   de im&aacute;genes de las diferentes secciones del   cerebro para la caracterizaci&oacute;n topol&oacute;gica. La   captura de im&aacute;genes se realiz&oacute; con un microscopio &oacute;ptico (Carl Zeiss, Axioskop 2 mot plus) equipado con una c&aacute;mara digital. Posteriormente, se realizaron los esquemas con la ayuda del <i>Software ImageJ</i> (<a href="http://rsbweb.nih.gov/ij/" target="_blank">http://rsbweb.nih.gov/ij/</a>).</p>     <p> La identificaci&oacute;n de los n&uacute;cleos se llev&oacute; a cabo   teniendo en cuenta los planos transversales. Para   esto se realiz&oacute; un mapa (<a href="#f1">figuras 1</a> y <a href="#f4">4</a>) indicando   los niveles de los cortes. La designaci&oacute;n de los   n&uacute;cleos de cada una de las regiones del cerebro   se llev&oacute; a cabo teniendo en cuenta los trabajos   realizados por Wulliman et al. (1996) en el   pez zebra (Danio rerio) y por Anken y Bourrat (1998) en el pez medaka (Oryzias latipes).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="f1"></a><img src="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f1.jpg"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>Abreviaturas de las estructuras morfol&oacute;gicas</b>. Abreviaturas de estructuras morfol&oacute;gicas presentadas en las <a href="#f2">figuras 2</a> a <a href="#f7">7</a>, en orden alfab&eacute;tico: <b>A</b> = n&uacute;cleo tal&aacute;mico anterior; <b>AON</b> = n&uacute;cleo octaval anterior; AP = n&uacute;cleo pretectal anterior; <b>ATN</b> = n&uacute;cleo tuberal anterior; <b>BO</b> = bulbos olfativos; <b>Cans</b> = commissura ansulata; <b>CC</b> = crista cerebelar; <b>CCe</b> = corpus cerebelar; Ccer = commissura cerebelar; <b>CE</b> = Cerebelo; <b>CIL</b> = n&uacute;cleo central del l&oacute;bulo inferior; <b>CM</b> = corpus mamillare; <b>CO</b> = quiasma &oacute;ptico; <b>COM</b> = n&uacute;cleo octavolateral caudal; <b>CPN</b> =   n&uacute;cleo pretectal central; <b>Cpop</b> = commissura   post&oacute;ptica; <b>Ctec</b> = commissura tecti; <b>Cven</b>  = commissura ventralis rhombencephali;   <b>DAO</b> = n&uacute;cleo &oacute;ptico accesorio dorsal; <b>Dc</b>  = zona central del &aacute;rea dorsal telencef&aacute;lica   D; <b>Dd</b> = zona dorsal de D; <b>Die</b> = Dienc&eacute;falo;   <b>DIL</b> = n&uacute;cleo difuso del l&oacute;bulo inferior; <b>DiV</b>  = ventr&iacute;culo diencef&aacute;lico; <b>Dl</b> = zona lateral   de D; <b>Dm</b> = zona media de D; <b>DON</b> = n&uacute;cleo   octaval descendente; <b>DOT</b> = tracto &oacute;ptico   dorsomedial; <b>Dp</b> = zona posterior de D; <b>DTN</b>  = n&uacute;cleo tegmental dorsal; <b>DV</b> = descending   trigeminal root; <b>ECL</b> = capa celular externa   del bulbo olfativo; <b>EG</b> = eminencia granular;   <b>ENd</b> = n&uacute;cleo entopeduncular, parte dorsal;   <b>ENv</b> = n&uacute;cleo entopeduncular, parte ventral;   <b>ep</b> = ep&eacute;ndimo; <b>GC</b> = griseum central; <b>GL</b>  = capa glomerular del bulbo olfativo; <b>Gm</b> =   n&uacute;cleo preglomerular medial; <b>H</b> = hip&oacute;fisis;   Had = n&uacute;cleo habenular dorsal; <b>Hav</b> = n&uacute;cleo   habenular ventral; <b>Hc</b> = zona caudal del   hipot&aacute;lamo periventricular; <b>Hd</b> = zona   dorsal del hipot&aacute;lamo periventricular; <b>HTel</b> =   Hemisferios telencef&aacute;licos; <b>Hv</b> = zona ventral   del hipot&aacute;lamo periventricular; <b>I</b> = n&uacute;cleo   tal&aacute;mico interm&eacute;dio; <b>ICL</b> = Capa celular interna   del bulbo olfativo; <b>III</b> = nervio oculomotor;   <b>IO</b> = oliva inferior; <b>IRF</b> = formaci&oacute;n reticular   inferior; <b>LCa</b> = l&oacute;bulo caudal cerebelar; <b>LH</b>  = n&uacute;cleo hipotal&aacute;mico lateral; <b>LI</b> = L&oacute;bulos   inferiores; <b>LO</b> = L&oacute;bulos &oacute;pticos; <b>LR</b> = receso   lateral del ventr&iacute;culo diencef&aacute;lico; <b>LLF</b> =   fasc&iacute;culo longitudinal lateral; <b>MA</b> = axon de   Mauthner; <b>MAC</b> = c&eacute;lula de Mauthner; <b>ME</b> =   m&eacute;dula espinal; <b>MLF</b> = fasc&iacute;culo longitudinal   medial; <b>MO</b> = M&eacute;dulaoblongata; <b>MON</b> =   n&uacute;cleo octavolateral medial; nI = nerviocraneal   olfativo; <b>nII</b> = nervio craneal &oacute;ptico; <b>NIII</b> =   n&uacute;cleo oculomotor; <b>NIV</b> = n&uacute;cleo delnervio   troclear; <b>Nln</b> = n&uacute;cleo interpeduncular; <b>NLV</b>  = n&uacute;cleo lateralisvalvulae; <b>NT</b> = n&uacute;cleo   taeniae; <b>OT</b> = tracto &oacute;ptico; <b>PC</b> = comisura   posterior; <b>PG</b> = n&uacute;cleo preglomerular; <b>PGZ</b>  = zona gris periventricular del tectum &oacute;ptico;   <b>PL</b> = n&uacute;cleo perilemniscal, <b>PM</b> = n&uacute;cleo   pre&oacute;ptico magnocelular; <b>PPa</b> = n&uacute;cleo pre&oacute;ptico   parvocellular, parte anterior; <b>PPp</b> = n&uacute;cleo   pre&oacute;ptico parvocellular, parte posterior; <b>PPv</b> =   n&uacute;cleo pretectal periventricular, parte ventral; <b>PR</b>  = receso posterior del ventr&iacute;culo diencef&aacute;lico;   <b>PSm</b> = n&uacute;cleo pretectal superficial magnocelular;   <b>PTN</b> = n&uacute;cleo tuberal posterior; <b>RF</b> = fasciculus   retroflexus; <b>RT</b> = n&uacute;cleo tegmental rostral; <b>RV</b>  = ventr&iacute;culo rombo encef&aacute;lico; <b>SC</b> = n&uacute;cleo   supraquiasm&aacute;tico; <b>SD</b> = saccus dorsalis; <b>SRF</b>  =formaci&oacute;n reticular superior; <b>Tel</b> = hemisferios   telencef&aacute;licos; <b>TeO</b> = tectum opticum; <b>TeV</b> =   ventr&iacute;culo tectal; <b>TL</b> = torus longitudinalis;   <b>TLa</b> = toruslateralis; <b>TPM</b> = tracto pretectu   mamillaris; <b>TPp</b> = n&uacute;cleo periventricular del   tuberculum posterior; <b>TS</b> = torus semicircularis;   <b>TTB</b> = tracto tecto bulbaris; <b>TTBr</b> = tracto   tecto bulbaris rectus; Val = divisi&oacute;n lateral de   la v&aacute;lvula cerebelar; Vam = divisi&oacute;n medial   de la v&aacute;lvula cerebelar; <b>Vd</b> = n&uacute;cleo dorsal   del &aacute;rea ventral telencef&aacute;lica V; <b>VIII</b> = nervio   octaval; <b>Vl</b> = n&uacute;cleo lateral de V; <b>VL</b> = n&uacute;cleo   tal&aacute;mico ventrolateral; <b>VM</b> = n&uacute;cleo tal&aacute;mico   ventromedial; <b>VOT</b> = tracto &oacute;ptico ventrolateral;   <b>Vp</b> =n&uacute;cleo post-commissural de V; <b>Vs</b> = n&uacute;cleo   supra-commissural de V; <b>Vv</b> = n&uacute;cleo ventral de V; <b>X</b> = nervio vagal; <b>ZL</b> = zona limitans).</p>     <p align="center"><a name="f2"></a><img src="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f2.jpg"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><a name="f3"></a><img src="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f3.jpg"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><a name="f4"></a><img src="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f4.jpg"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"> <b>RESULTADOS</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <b>Morfolog&iacute;a del cerebro de <i>P. axelrodi</i>. </b>Realizadas observaciones macrosc&oacute;picas del   cerebro de <i>P. axelrodi</i> en tres orientaciones   (dorsal, ventral y lateral) fue posible identificar   algunas estructuras. Cabe anotar que en el   presente estudio no se identificaron los nervios   craneales, sino solo aquellos cuya vista fue aparente como el nervio olfativo y el &oacute;ptico.</p>     <p> En una vista dorsal (<a href="#f1">figura 1</a>) se identificaron los   bulbos olfativos (BO), hemisferios telencef&aacute;licos   (HTel), l&oacute;bulos &oacute;pticos (LO) y el cerebelo (Ce).   Los bulbos olfativos se localizan en la parte m&aacute;s   rostral del cerebro, son pareados y peque&ntilde;os   en relaci&oacute;n a los dem&aacute;s l&oacute;bulos; son s&eacute;siles   ya que se encuentran unidos a los hemisferios   telencef&aacute;licos. Unidos a los bulbos olfativos   en una posici&oacute;n m&aacute;s anterior se encuentran los   nervios olfativos. Los hemisferios telencef&aacute;licos   se ubican caudales a los bulbos olfativos, son   pareados y alargados. Los l&oacute;bulos &oacute;pticos   se encuentran adyacentes al telenc&eacute;falo, son   pareados y circulares. El cerebelo es una   estructura de forma circular que se encuentra   alojada en medio de la parte caudal de los l&oacute;bulos &oacute;pticos.</p>     <p>  En una vista ventral y lateral; adicionalmente   fue posible identificar los l&oacute;bulos inferiores (LI)   que se encuentran debajo de los l&oacute;bulos &oacute;pticos,   los LI son pareados, alargados, dispuestos en   forma de ''v'' y alojada en medio de &eacute;stos se   encuentra la hip&oacute;fisis. La m&eacute;dula oblongata   (MO) es la estructura m&aacute;s caudal del cerebro,   presenta una forma alargada y es contin&uacute;a con la m&eacute;dula espinal (<a href="#f3">figuras 3</a> y <a href="#f4">4</a>).</p>     <p><b>Morfometr&iacute;a del cerebro de <i>P. axelrodi</i>.</b> Para los datos morfom&eacute;tricos de longitud y &aacute;rea obtenidos se utiliz&oacute; el test de Shapiro- Wilk (Zar 1999), sin embargo los valores de &aacute;rea no fueron normales por lo que tuvieron que ser transformados; para ello se utiliz&oacute; la transformaci&oacute;n ''box.cox''. Caso contrario ocurri&oacute; con los valores de longitud, los cuales arrojaron normalidad.</p>     <p> De acuerdo a los resultados morfom&eacute;tricos   obtenidos, los l&oacute;bulos &oacute;pticos fueron la   regi&oacute;n del cerebro que present&oacute; un mayor   valor promedio de longitud seguido por los   hemisferios telencef&aacute;licos y por &uacute;ltimo los   bulbos olfativos. Al cerebelo no se le cuantific&oacute;   medida de longitud debido a que la anatom&iacute;a   lateral del cerebelo del <i>P. axelrodi</i> no permite   tener un valor significativo de esta estructura lo   que llevar&iacute;a a subestimar el tama&ntilde;o relativo de   la misma. Con respecto al &aacute;rea el mayor valor   promedio lo obtuvieron los l&oacute;bulos &oacute;pticos   seguidos por el cerebelo, los hemisferios   telencef&aacute;licos y por &uacute;ltimo los bulbos olfatorios (<a href="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5t1.jpg" target="_blank">tabla 1</a>).</p>     <p>  <b>Topolog&iacute;a del cerebro de <i>P. axelrodi</i></b><i></i>. La   <a href="#f4">figura 4</a> representa el mapa de los planos   correspondientes a las secciones transversales del cerebro que corresponden a las <a href="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f5.jpg" target="_blank">figuras 5</a> a <a href="#f8">8</a>.</p>     <p align="center"><a name="f8"></a><img src="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f8.jpg"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p> Cerebro anterior. Los bulbos olfativos est&aacute;n   conformados por tres capas: capa celular interna   (ICL), capa celular externa conformada por las   c&eacute;lulas mitrales (ECL) y la capa glomerular (GL) (<a href="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f5.jpg" target="_blank">figura 5A</a>).</p>     <p> En los hemisferios telencef&aacute;licos se identificaron   las dos zonas principales en que se dividen:   el &aacute;rea dorsalis telencephali (D) y el &aacute;rea   ventralis telencephali (V) las cuales a su vez   se subdividieron en varios n&uacute;cleos <a href="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f5.jpg" target="_blank">(figuras 5B</a>  a <a href="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f5.jpg" target="_blank">5F</a>). En D se encontraron cinco zonas: zona   central del &aacute;rea dorsal telencef&aacute;lica (Dc), zona   dorsal de D (Dd), zona lateral de D (Dl), zona   media de D (Dm) y la zona posterior de D (Dp).   Adicionalmente, se encuentra en esta regi&oacute;n   el n&uacute;cleo taeniae (NT) ubic&aacute;ndose ventral a la   zona Dp. En la regi&oacute;n V se identificaron cuatro   n&uacute;cleos ubicados periventricularmente: n&uacute;cleo   dorsal del &aacute;rea ventral telencef&aacute;lica (Vd), n&uacute;cleo   post-commissural de V (Vp), n&uacute;cleo supracommissural   de V (Vs) y el n&uacute;cleo ventral de V   (Vv). Vd y Vv se encuentran hacia la parte rostral   de la comissura anterior (Cant). Por otro lado,   el n&uacute;cleo lateral del &aacute;rea ventral telencef&aacute;lica   (Vl) junto con el n&uacute;cleo entopeduncular, parte   dorsal (ENd) y el n&uacute;cleo entopeduncular, parte   ventral (ENv) se ubican hacia la periferia del cerebro en la regi&oacute;n m&aacute;s caudal del telenc&eacute;falo.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> El dienc&eacute;falo se ubica caudal al telenc&eacute;falo y en   este fue posible identificar algunos n&uacute;cleos de las   seis divisiones que se describen en vertebrados:   el &aacute;rea pre&oacute;ptica, epit&aacute;lamo, hipot&aacute;lamo, el   t&aacute;lamo, el pretectum y el tuberculum posterior   (<a href="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f5.jpg" target="_blank">figuras 5E</a> a <a href="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f5.jpg" target="_blank">6L</a>). El &aacute;rea pre&oacute;ptica abarca la   parte m&aacute;s rostral del ventr&iacute;culo dincef&aacute;lico   (DiV) y alrededor de &eacute;ste se ubica hacia la parte   ventral el n&uacute;cleo pre&oacute;ptico parvocelular (PP)   en el cual la parte anterior (PPa) est&aacute; hacia la   zona ventral del telenc&eacute;falo y en el dienc&eacute;falo es   reemplazado por n&uacute;cleo pre&oacute;ptico parvocelular,   parte posterior (PPp). Hacia la parte dorsal de   PPp se ubica el n&uacute;cleo pre&oacute;ptico magnocelular   (PM). Hacia la parte ventral de PPp se encuentra el   n&uacute;cleo supraquiasm&aacute;tico (SC) (<a href="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f5.jpg" target="_blank">figuras 5D</a> a <a href="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f5.jpg" target="_blank">6G</a>).   En el epit&aacute;lamo se identific&oacute; la ep&iacute;fisis (EP) la   cual se localiza hacia la parte rostral en medio   de los hemisferios telencef&aacute;licos, mientras que   hacia la zona caudal se identific&oacute; el saccus   dorsalis (SD); los n&uacute;cleos habenulares dorsal   (Hd) y ventral (Hv) se ubican hacia la parte lateral de la ep&iacute;fisis (<a href="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f5.jpg" target="_blank">figuras 5D</a> a <a href="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f5.jpg" target="_blank">6G</a>).</p>     <p> El pretectum superficial incluye el n&uacute;cleo   pretectal superficial magnocelular (PSm),   mientras que en el pretectum central est&aacute; el n&uacute;cleo   pretectal central (CPN). Adicionalmente el n&uacute;cleo &oacute;ptico accesorio dorsal (DAO) es considerado parte del pretectum y se ubica adyacente hacia la zona ventral de PSm (<a href="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f6.jpg" target="_blank">figura 6G</a>).</p>     <p> El hipot&aacute;lamo incluye zonas ventrales, dorsales   y caudales. La zona dorsal incluye los n&uacute;cleo   difuso del l&oacute;bulo inferior (DIL), adicionalmente   se encuentra el receso lateral del ventr&iacute;culo   diencef&aacute;lico (LR) el cual est&aacute; rodeado por la zona   dorsal del hipot&aacute;lamo periventricular (Hd). La   zona ventral incluye hacia la parte rostral el n&uacute;cleo   periventricular (Hv) y hacia la parte lateral de este   se ubican el n&uacute;cleo tuberal anterior (ATN) y el   n&uacute;cleo hipotal&aacute;mico lateral (LH). Hacia la zona   caudal del hipot&aacute;lamo se encuentra el n&uacute;cleo del   hipot&aacute;lamo periventricular (Hc) el cual rodea al   receso posterior del ventriculo (PR). La pituitaria   (Pit) se encuentra unida ventralmente a las zonas del hipot&aacute;lamo caudal y ventral (<a href="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f6.jpg" target="_blank">figuras 6H</a> a <a href="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f7.jpg" target="_blank">7M</a>).</p>     <p> El t&aacute;lamo se ubica en la parte caudal al epit&aacute;lamo   y se diferencia en t&aacute;lamo dorsal y t&aacute;lamo   ventral. El t&aacute;lamo dorsal consiste del n&uacute;cleo   tal&aacute;mico (A) y en el t&aacute;lamo ventral se ubica el   n&uacute;cleo tal&aacute;mico ventromedial (VM) y el n&uacute;cleo tal&aacute;mico ventrolateral (VL) (<a href="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f6.jpg" target="_blank">figuras 6H</a> y <a href="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f6.jpg" target="_blank">6I</a>).</p>     <p>  En el tuberculum posterior se incluye una   regi&oacute;n periventricular la cual consiste de   dos n&uacute;cleos: el n&uacute;cleo periventricular del   tuberculum posterior (TPp) y el n&uacute;cleo tuberal   posterior (PTN). Por otro lado est&aacute; el n&uacute;cleo   preglomerular (PG) y el n&uacute;cleo preglomerular   medial (PGm). Adicionalmente se encuentra el   corpus mamillare (CM) y el toruslateralis (TLa) (<a href="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f6.jpg" target="_blank">figuras 6J</a> a <a href="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f6.jpg" target="_blank">6L</a>).</p>     <p> Dentro de los tractos y fribras que se ubican en   el dienc&eacute;falo se encontraron: el quiasma &oacute;ptico   (CO), el tracto &oacute;ptico (OT), el tracto &oacute;ptico   dorsomedial (DOT), el tracto &oacute;ptico ventrolateral   (VOT), el tracto pretectu mamillaris (TPM), el   fasciculus retroflexus (RF) y la commissura post&oacute;ptica (Cpop),</p>     <p> <i>Cerebro medio</i>. El tectum &oacute;ptico (TeO) se ubica   en la parte dorsal distingui&eacute;ndose a su vez la capa   gris de la zona periventricular (PGZ). Tambi&eacute;n se   encuentra la commissura tecti (Ctec) en medio del   tectum &oacute;ptico; y unido al tectum se encuentra el   torus longitudinalis (TL) el cual es una estructura   pareada compuesta por c&eacute;lulas granulares. El torus   semicircularis (TS) se ubica en la parte lateral del tegmento (<a href="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f6.jpg" target="_blank">figuras 6G</a> a <a href="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f7.jpg" target="_blank">7N</a>).</p>     <p> La regi&oacute;n del tegmento se encuentra separada   de la regi&oacute;n dorsal por el ventr&iacute;culo tectal; en el   tegmento se encuentran algunos n&uacute;cleos motores   como el n&uacute;cleo oculomotor (NIII), el n&uacute;cleo   del nervio troclear (NIV), la regi&oacute;n rostral de la   formaci&oacute;n reticular superior ( SRF), el n&uacute;cleo   tegmental dorsal (DTN), el n&uacute;cleo tegmental   rostral (RT), el n&uacute;cleo perilemniscal (PL) y el n&uacute;cleo interpeduncular (NI n) (<a href="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f6.jpg" target="_blank">figuras 6J</a> a <a href="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f7.jpg" target="_blank">7N</a>).</p>     <p> <i>Cerebro posterior</i>. El cerebelo (Ce) se dividi&oacute;   en tres estructuras: el corpus cerebelar, el   l&oacute;bulo vest&iacute;bulo lateral, y la v&aacute;lvula cerebelar.   El l&oacute;bulo vest&iacute;bulo lateral se subdivide en el   l&oacute;bulo caudal cerebelar (LCa) y la eminencia   granular (EG); la v&aacute;lvula cerebelar contiene   subdivisiones mediales y laterales (Vam) y   (Val). Adicionalmente se identific&oacute; la comisura cerebelar (Ccer) (<a href="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f6.jpg" target="_blank">figuras 6K</a> a <a href="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f7.jpg" target="_blank">7P</a>).</p>     <p> En la m&eacute;dula oblongata se encuentran los n&uacute;cleos   de los nervios sensores y motores dentro de los que   se identificaron el nervio octaval (VIII), y el nervio   vagal (X). Por otro lado tambi&eacute;n se encuentran   los nervios de la l&iacute;nea lateral y el n&uacute;cleo octaval   descendente (DON), el n&uacute;cleo octaval anterior   (AON), el n&uacute;cleo octavolateral medial (MON),   la crista cerebelar (CC) y el n&uacute;cleo octavolateral caudal (CON) (<a href="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f7.jpg" target="_blank">figuras 7N</a> a <a href="#f8">8S</a>).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>  En cuanto a los n&uacute;cleos que hacen parte de la   formaci&oacute;n reticular en <i>P. axelrodi</i>se identific&oacute; el   n&uacute;cleo de la formaci&oacute;n reticular inferior (IRF); y   dentro de los n&uacute;cleos medulares adicionales se   encuentran el griseum central (GC), el nucleus   lateralis valvulae (NLV), las c&eacute;lulas de Mauthner   (MAC), el ax&oacute;n de Mauthner (MA) y el fasc&iacute;culo longitudinal medial (MLF) (<a href="/img/revistas/acbi/v35n98/v35n98a5f6.jpg" target="_blank">figuras 6K</a> a <a href="#f8">8T</a>).</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"> <b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p> La morfolog&iacute;a y disposici&oacute;n de los bulbos   olfativos de <i>P. axelrodi</i> es similar a la descrita en   peces como <i>Danio rerio</i> (Wulliman et al. 1996)   y la <i>Anguilla japonica</i> (Mukada y Ando, 2003),   a diferencia de aquellos peces como <i>Ariopsis   seemanni</i> perteneciente a los sil&uacute;ridos en los cuales   los bulbos olfativos se encuentran unidos a los   hemisferios telencef&aacute;licos por un tracto olfativo   largo (Londo&ntilde;o y Hurtado 2010), &oacute; como <i>Oryzias   latipes</i> (Anken y Bourrat 1998, Ishikawa et al.   1999b) en el cual los bulbos olfativos se ubican   por debajo de los hemisferios telencef&aacute;licos.   La topolog&iacute;a de esta regi&oacute;n, es similar a lo   comunicado para las especies anteriormente   mencionadas, siendo la funci&oacute;n &uacute;nica de los bulbos   olfativos la recepci&oacute;n de est&iacute;mulos relacionados   con el sentido del olfato y a su vez la proyecci&oacute;n   de entradas olfativas a otras regiones del cerebro   como la regi&oacute;n ventral del telenc&eacute;falo y algunos n&uacute;cleos del dienc&eacute;falo (Wullimann et al. 1996).</p>     <p> La regi&oacute;n dorsal de los hemisferios telencef&aacute;licos   de <i>P. axelrodi</i> presenta la forma e vertida descrita   para los peces de aleta radiada (Butler y Hodos   1996). En cuanto a los n&uacute;cleos identificados en   esta regi&oacute;n, se ha descrito que la zona posterior de   D y la zona central de D son los principales blancos   del bulbo olfativo. La zona media de D, junto con   la zona dorsal de D, la zona lateral de D y la   zona central de D reciben entradas sensoriales   retrasmitidas de varios n&uacute;cleos del dienc&eacute;falo   como por ejemplo del n&uacute;cleo preglomerular   lateral (Striedter 1991). Por otro lado, estudios en   <i>Carassius auratus</i> (Dur&aacute;n et al. 2002, Portavella   y Vargas 2005, Saito y Watanabe 2004) proponen   que Dm o Dl podr&iacute;an tener una funci&oacute;n espec&iacute;fica   en el aprendizaje espacial. Sin embargo, G&oacute;mez   et al. (2006) propone que Dm es el hom&oacute;logo al   hipocampo en vertebrados terrestres, mientras que   Saito y Watanabe (2006) propone que el hom&oacute;logo al hipocampo de vertebrados terrestres es Dl.</p>     <p> Por otro lado, los n&uacute;cleos de la regi&oacute;n ventral del   telenc&eacute;falo reciben entradas olfativas del bulbo olfativo (Butler 2000).</p>     <p> Los l&oacute;bulos &oacute;pticos de <i>P. axelrodi</i> hacia la   regi&oacute;n dorsal presentaron el tectum &oacute;ptico como   un par de l&oacute;bulos expandidos lateralmente al   igual que lo descrito para otros tele&oacute;steos.   El tectum &oacute;ptico es una corteza laminada   que recibe entradas multimodales de varias   fuentes, incluyendo la retina y centros visuales   adicionales como el t&aacute;lamo, el pretectum y   el n&uacute;cleo isthmi. Adicionalmente, el tectum &oacute;ptico en tele&oacute;steos recibe entradas no visuales del torus semicircularis y del telenc&eacute;falo. La organizaci&oacute;n cito-arquitect&oacute;nica del tectum &oacute;ptico, sus entradas multimodales segregadas, y la representaci&oacute;n topogr&aacute;fica de sus entradas provee una maquinaria neural dise&ntilde;ada para las tareas de orientaci&oacute;n integrativa, tales como la identificaci&oacute;n y ubicaci&oacute;n de objetos, y el control de la coordinaci&oacute;n motora (Wullimann et al. 1996).</p>     <p> Adicionalmente, en tele&oacute;steos se ha descrito   otras &aacute;reas del sistema nervioso central que   reciben entradas retinales diferentes al tectum &oacute;ptico y los cuales se identificaron en <i>P. axelrodi.</i> Estos n&uacute;cleos corresponden a regiones del dienc&eacute;falo como son: los n&uacute;cleos tal&aacute;mico anterior, tal&aacute;mico intermedio y tal&aacute;mico ventrolateral; el n&uacute;cleo pretectal central, los n&uacute;cleos dorsal y ventral involucrados en los reflejos oculomotores optocin&eacute;ticos y el n&uacute;cleo supraquiasm&aacute;tico. Adicionalmente, este &uacute;ltimo n&uacute;cleo puede estar involucrado en peces en la generaci&oacute;n y control del ritmo circadiano teniendo en cuenta su rol en otros vertebrados (Butler y Saidel 1991, Northcutt y Butler 1993, Wullimann et al. 1996).</p>     <p> Dentro de los otros n&uacute;cleos identificados   en los l&oacute;bulos &oacute;pticos se plantea que el   torus longitudinalis juega un papel en las   funciones orientadas visualmente tales como   el movimiento en respuesta a un est&iacute;mulo   espec&iacute;fico de varios puntos en el espacio visual   (Butler y Hodos 1996, Kotrschal et al. 1998). El   torus lateralis es una regi&oacute;n &uacute;nica de peces de   aleta radiada, y debido a que no se ha encontrado   en otros taxones no hay estudios que revelen una   homolog&iacute;a de esta estructura con alguna otra en   los dem&aacute;s vertebrados, por lo que sus funciones no son muy claras (Butler y Hodos 1996).</p>     <p> El torus semicircularis est&aacute; involucrado en el   sistema mecano sensorial recibiendo proyecciones   secundarias de los n&uacute;cleos de la l&iacute;nea lateral y   proyect&aacute;ndolos hacia el n&uacute;cleo preglomerular   lateral (Striedter 1991). En <i>P. axelrodi</i> el torus   semicircularis presenta un tama&ntilde;o moderado,   caracter&iacute;stica de tele&oacute;steos no electro-receptivos   como <i>Carassius auratus</i>; a diferencia de los   morm&iacute;ridos y los gymnotiformes que presentan   un torus semicircularis enorme debido a que han   desarrollado un sistema electro-sensorial (Butler y Hodos 1996, Wulliman 1998).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> El cerebelo de <i>P. axelrodi</i> presenta la forma   tripartita t&iacute;pica de los tele&oacute;steos, a diferencia de   los peces morm&iacute;ridos cuya forma del cerebelo   es m&aacute;s elaborada presentando un aspecto   hiperplegado e hipertrofiado cubriendo la   superficie dorsal de los hemisferios telencef&aacute;licos   y los l&oacute;bulos &oacute;pticos debido a su funci&oacute;n el&eacute;ctrica   en este grupo de peces. En la topolog&iacute;a cerebelar,   el l&oacute;bulo vestibulateral comprende la eminencia   granularis y el l&oacute;bulo caudal, el cual, podr&iacute;a ser   hom&oacute;logo al vest&iacute;bulo cerebellum presente en   todos los vertebrados, ya que &eacute;ste recibe entradas   octavales primarias, as&iacute; como proyecciones de la l&iacute;nea lateral (Butler y Hodos 1996).</p>     <p> La v&aacute;lvula cerebelar en <i>P. axelrodi</i> se encuentra   alojada dentro del espacio del ventr&iacute;culo del   tectum &oacute;ptico no siendo visible en la morfolog&iacute;a   externa del cerebro, caso contrario en los   morm&iacute;ridos los cuales presentan una v&aacute;lvula   cerebelar enorme que sobresale caudalmente   entre los hemisferios telencef&aacute;licos (Butler y   Hodos 1996). La v&aacute;lvula cerebelar, al igual que   la eminencia granular est&aacute; involucrada con el sistema de la l&iacute;nea lateral (Butler 2000)</p>     <p> En la m&eacute;dula oblongata, se ubican los n&uacute;cleos   involucrados en la audici&oacute;n y en el gusto. En   peces con un sistema del gusto bien desarrollado   como es el caso de<i> Cyprinus carpio</i> y <i>Carassius   auratus</i>, en el grupo de cipr&iacute;nidos, e <i>Ictalirus</i>  puntactus en el grupo de los sil&uacute;ridos, presentan   centros gustativos primarios separados por   cada nervio: l&oacute;bulo facial (LVII), l&oacute;bulo   gloso faringeal (LIX) y l&oacute;bulo vagal (LX).   Sin embargo, el l&oacute;bulo facial es m&aacute;s grande   y complejo en sil&uacute;ridos y el l&oacute;bulo vagal es   m&aacute;s grande y complejo en cipr&iacute;nidos (Kanwal   y Caprio 1987, Wullimann et al. 1996). El   nervio vagal de los tele&oacute;steos tambi&eacute;n codifica   est&iacute;mulos viscero-sensores generales desde   las v&iacute;sceras hacia el sistema nervioso central,   notablemente hacia el n&uacute;cleo comisural de   Cajal (NC). Sin embargo, la extensi&oacute;n de &eacute;ste   l&oacute;bulo en <i>P. axeroldi </i>es mucho m&aacute;s peque&ntilde;a   en comparaci&oacute;n a lo registrado en cipr&iacute;nidos   (Kotrschal et al. 1998), lo que podr&iacute;a indicar que   en P. axeroldi solo se llevar&iacute;a a cabo la funci&oacute;n   del est&iacute;mulo viscero-sensorial. Adicionalmente el l&oacute;bulo facial no se identific&oacute; en <i>P. axeroldi.</i></p>     <p> Por otro lado, la m&eacute;dula oblongata junto con   el tegmentum (regi&oacute;n ventral del mesenc&eacute;falo)   constituye una red neuronal muy compleja   denominada la formaci&oacute;n reticular. La formaci&oacute;n   reticular tiene conexiones rec&iacute;procas con   el tectum &oacute;ptico y tambi&eacute;n con el cerebelo   (Wullimann et al. 1996). Hay neuronas da la   formaci&oacute;n reticular que se proyectan a la m&eacute;dula   espinal y otras que se proyectan hacia el telenc&eacute;falo   (Lee et al. 1993, Murakami et al. 1983, Prasada-   Rao et al. 1987, Wullimann y Meyer 1993). Por   otro lado, algunas estructuras medulares podr&iacute;an   ser consideradas parte de la formaci&oacute;n reticular   como las c&eacute;lulas de Mauthner&oacute; el locus coeruleus   (LC). El fasc&iacute;culus de Mauthner en <i>P. axelrodi</i>   como en otras especies se caracteriz&oacute; por su gran   tama&ntilde;o; este n&uacute;cleo se ha descrito que influye en   las respuestas r&aacute;pidas de evasi&oacute;n y escape (Butler y Hodos 1996).</p>     <p> Con respecto a estudios morfom&eacute;tricos, varios   autores han relacionado la composici&oacute;n y   el tama&ntilde;o de algunas regiones del cerebro   (principalmente las encargadas de recibir   informaci&oacute;n de los &oacute;rganos de los sentidos) en   tele&oacute;steos con los h&aacute;bitos de vida de cada uno   as&iacute; como las caracter&iacute;sticas de los cuerpos de agua donde habitan.</p>     <p> Por lo anterior y teniendo en cuenta los resultados   morfom&eacute;tricos de las regiones cerebrales   evaluadas en <i>P. axelrodi</i> se tiene que los l&oacute;bulos &oacute;pticos son m&aacute;s grandes que los bulbos olfativos lo que corrobora que frecuentemente hay una oposici&oacute;n entre el sentido del olfato y el visual (Ridet y Bauchot 1990) y de acuerdo con lo publicado con Chiason y Radke (1991) los peces que viven en lagunas o lagos con poca corriente presentan un modesto sentido del olfato y son dependientes de la visi&oacute;n y del gusto para ubicar el alimento, seria de suponerse, entonces, que <i>P. axelrodi</i> quien habita en aguas de bajo flujo de corriente (Walker 2004) presente esta caracter&iacute;stica. Por otro lado, se ha encontrado que especies de ciprinidos (Huber y Rylander 1992) que habitan aguas claras se caracterizan por presentar estructuras grandes relacionadas con la visi&oacute;n como ojos y casi el doble de fibras en el nervio &oacute;ptico; caracter&iacute;stica que ha de sugerirse en <i>P. axelrodi</i>, el cual habita en zonas sombreadas de aguas claras de los r&iacute;os; contrario a las especies asociadas a h&aacute;bitos turbios, que se destacan por presentar estructuras olfativas y gustativas m&aacute;s desarrolladas. De igual forma, especies epib&eacute;nticas de la familia Liparidae que habitan profundidades de 500-650 m en la Ant&aacute;rtida (Eastmon y Lannoo 1998), y en algunas especies de la familia Gadidae que se encuentran en profundidades de 80-600 m como<i> Gadus morhua</i> (Delfini y Diagne 1985), se ha encontrado bulbos olfativos y nervios olfativos grandes y una lamela olfativa bien desarrollada, en contraste con un tectum &oacute;ptico peque&ntilde;o al igual que los nervios &oacute;pticos.</p>     <p> En relaci&oacute;n al tipo de dieta, en un estudio de   cipr&iacute;nidos (Kotrschal y Junger 1988, Kotrschal   y Palzenberger 1992), especies que se alimentan   de plancton en la superficie fueron caracterizadas   por presentar la l&iacute;nea lateral y los l&oacute;bulos visuales   bien desarrollados, pero con tallos cerebrales y   l&oacute;bulos gustativos peque&ntilde;os. Teniendo en cuenta   lo anterior y de acuerdo a lo que se conoce   de la dieta de <i>P. axelrodi</i>, es decir peque&ntilde;os   invertebrados y microcrust&aacute;ceos (Walker 2004),   el cerebro de este organismo se asemejar&iacute;a a este   grupo de Cipr&iacute;nidos; adicionalmente teniendo en   cuenta un estudio realizado de la composici&oacute;n   histol&oacute;gica y morfom&eacute;trica del ojo de <i>P. axelrodi</i>   se determin&oacute; que este individuo presenta algunas   adaptaciones en este &oacute;rgano tales como el <i>areae   centrales</i> y una c&oacute;rnea delgada lo que muestra   las necesidades visuales de este organismo que   le permitan tener mejor sensibilidad y resoluci&oacute;n   visual para adaptarse al h&aacute;bitat (Tovar et al. 2009).</p>     <p> Con relaci&oacute;n a los hemisferios telencef&aacute;licos   algunos estudios de c&iacute;clicos sugieren que el   tama&ntilde;o de los hemisferios telencef&aacute;licos podr&iacute;a   estar relacionado con la habilidad de subsistir en   un ambiente espacialmente estructurado, es decir   ambientalmente complejo (Huber et al. 1997).   Esta interpretaci&oacute;n es consistente con los datos   de aves (Riddell y Corl 1977) y mam&iacute;feros   (Cluttonn-Brock y Harvey 1980, Jolicoeur et   al. 1984), en el cual el volumen de los altos   centros de procesamiento indica la habilidad   de una especie para persistir en situaciones   complejas. Sin embargo, hay que tener en cuenta   que es muy poco el conocimiento que se tiene   acerca de la composici&oacute;n social, estrategias   de reproducci&oacute;n, territorialidad y otra serie de   comportamientos que determinar&iacute;an el grado   de complejidad en cuanto al comportamiento y   h&aacute;bitats de los peces, incluyendo a <i>P. axelrodi</i>.</p>     <p> En conclusi&oacute;n, el cerebro de <i>P. axelrodi</i> est&aacute;   conformado por varios l&oacute;bulos conservando el   patr&oacute;n general descrito para otros tele&oacute;steos,   sin embargo como caracter&iacute;sticas propias se   encontr&oacute; que los bulbos olfativos son s&eacute;siles,   no presenta tracto olfativo, el cerebelo present&oacute;   un tama&ntilde;o moderado en contraste con peces   el&eacute;ctricos y no se evidenci&oacute; la presencia de   l&oacute;bulos faciales. En el an&aacute;lisis morfom&eacute;trico   tanto en longitud como en &aacute;rea se encontraron   diferencias altamente significativas entre las   estructuras evaluadas (p &lt; 0,001), siendo los   l&oacute;bulos &oacute;pticos la regi&oacute;n de mayor tama&ntilde;o,   sugiriendo una dependencia mayor del sentido   de la vista, teniendo en cuenta la presencia de   los n&uacute;cleos tanto principales como accesorios   que reciben entradas visuales; situaci&oacute;n similar   a la observada en la trucha arcoiris (Rose 2002),   as&iacute; como en algunas especies mesopel&aacute;gicas   (Wagner 2001a, b). En cuanto a la topolog&iacute;a   del cerebro de <i>P. axelrodi</i> aunque presenta   caracter&iacute;sticas similares a las descritas en otros   grupos de tele&oacute;steos, en algunas regiones no   fue posible identificar algunos n&uacute;cleos. Por   ejemplo, en el &aacute;rea pre&oacute;ptica, el n&uacute;cleo PM   no se subdividi&oacute; en los n&uacute;cleos pre&oacute;ptico   magnocelular gigantocelular (PMg) y n&uacute;cleo   pre&oacute;ptico magnocelular parvocelular (PMp).   Asimismo, en el pretectum se reconocen solo   dos regiones el pretectum superficial y el   pretectum central. En el t&aacute;lamo ventral no se   identific&oacute; el n&uacute;cleo rostrolateral (R) como si   ocurre en<i> Danio rerio</i> (Wulliman et al. 1996).   El n&uacute;cleo preglomerular (PG) en <i>Danio rerio</i>  presenta varias subdivisiones (PGa, PGl,   PGm y PGc), sin embargo en <i>P. axelrodi</i> solo   se identific&oacute; el n&uacute;cleo preglomerular medial   (PGm). De acuerdo a lo anterior, se sugiere el   uso de otras metodolog&iacute;as m&aacute;s apropiadas para   corroborar la presencia o ausencia de estos   n&uacute;cleos en <i>P. axelrodi</i>.</p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <font size="3"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>     <p>  A la Universidad Militar Nueva Granada por la   financiaci&oacute;n de este trabajo. Proyecto CIAS 549.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"> <b>REFERENCIAS</b></font></p>     <!-- ref --><p> Anjos HDB, Anjos CR. 2006. Biologia reprodutiva e   desenvolvimento embrion&aacute;rio e larval do cardinal tetra,   <i><i>Paracheirodon axelrodi</i></i> Schultz, 1956 (Characiformes:   Characidae), em laborat&oacute;rio. Boletim do Instituto de   Pesca, 32 (2): 151-160.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0304-3584201300010000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Anken R, Bourrat F. 1998. Brain Atlas of the Medaka fish<i> Oryzias latipes.</i> Paris (Francia): Institut National de la   Recherche Agronomique (INRA). p. 29.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0304-3584201300010000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> ASIH (American Society of Ichthyologists and Herpetologists,   American Fisheries Society, American Institute of   Fisheries Research Biologists). 1988. Guidelines for   use of fishes in field research. Fisheries, 13 (2): 16-23.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0304-3584201300010000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>AVMA (American Veterinary Medical Association). 2000.   Report of the AVMA panel on euthanasia. JAVMA,   218 (5): 669-696.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0304-3584201300010000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Brito MFG, Bazzoli N. 2009. Oog&eacute;nesis of the cardinal   tetra <i><i>Paracheirodon axelrodi</i></i> Schultz (1956): a   histological and histochemical study. Brazilian Journal   of Morphological Sciences, 26 (1): 14-18.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0304-3584201300010000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Butler A. 2000. Nervous system. En: Ostrander GK, editor.   The Laboratory Fish (Handbook of Experimental   Animals). Part 4<sup>th</sup> California (U. S. A.): Academic   Press. p. 678.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0304-3584201300010000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Butler AB, Hodos W. 1996. Comparative vertebrate   neuroanatomy evolution and adaptation. New York (U.   S. A.): Wiley-Liss. p. 514.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0304-3584201300010000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Butler AB, Saidel WM. 1991. Retinal projections in   the freshwater butterfly fish, <i>Pantodon buchholzi</i>  (Osteoglossoidei). I. Cytoarchitectonic analysis   and primary visual pathways. Brain, Behavior and   Evolution, 38 (2-3): 127-140.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0304-3584201300010000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p> CCAC (Canada Council on Animal Care) &#91;Internet&#93;. 2005.   Guidelines on the care and use of fish in research,   teaching and testing.Fecha de acceso: 1 de agosto   de 2011. Disponible en: <a href="http://www.ccac.ca/en_/ standards/guidelines" target="_blank">http://www.ccac.ca/en_/   standards/guidelines</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0304-3584201300010000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> CCI (Corporaci&oacute;n Colombiana Internacional) &#91;Internet&#93;.   2010. Informe de pesca y acuicultura. Sistema   de Informaci&oacute;n de la Corporaci&oacute;n Colombiana   Internacional (CCI). Fecha de acceso: 25 de agosto   de 2011. Disponible en:<a href="http://www.cci.org.co/cci/cci_x/datos/BoletinesIncoder/Publicaciones/Informecompleto2010.pdf" target="_blank">http://www.cci.org.co/cci/cci_x/datos/BoletinesIncoder/Publicaciones/Informecompleto2010.pdf</a> .    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0304-3584201300010000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Chiason R, Radke W. 1991. Laboratory anatomy of the perch.   4<sup>th</sup> ed. Boston (U. S. A.): McGraw-Hill. p. 112.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0304-3584201300010000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Clutton-Brock TH, Harvey PH. 1980. Primates, brain and   ecology. Journal of Zoology, 190 (3): 309-323.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0304-3584201300010000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> COPESCAL &#91;Internet&#93;. 2009. Pesca ornamental en   Am&eacute;rica Latina: Estado, tendencias y desaf&iacute;os   futuros. Comisi&oacute;n de Pesca Continental para Am&eacute;rica   Latina (COPESCAL). Fecha de acceso: 3 de mayo de   2012. Disponible en: <a href="http://www.ibcperu.org/doc/isis/11159.pdf" target="_blank">http://www.ibcperu.org/doc/isis/11159.pdf</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0304-3584201300010000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p> Delfini C, Diagne M. 1985. Brain of the cod (<i>Gadus morhua   morhua</i>, Linne 1758) (Pisces, Paracanthopterygii).   Qualitative and quantitative analysis of major   subdivisions. Journal f&uuml;r Hirnforschung, 26 (4):   439-449.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0304-3584201300010000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Dur&aacute;n-Garc&iacute;a E, Oca&ntilde;a-Campos FM, G&oacute;mez-Garc&iacute;a AM,   Broglio C, Jim&eacute;nez-Moya F, Rodr&iacute;guez F, Salas C.   2002. Place learning and hippocampal pallium in   teleost fish. Annual Meeting of the JB Johnston Club   of Comparative Neurology. Orlando (U. S. A.): JB   Johnston Club. Orlando.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0304-3584201300010000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Eastmon J, Lanoo M. 1998. Morphology of the brain and   sense organs in the snail fish <i>Paraliparis devriesi</i>: neural   convergence and sensory compensation on the Antartic   shelf. Journal of Morphology, 237 (3): 213-236.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0304-3584201300010000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Evans H. 1992. Anatomy, genetics and breeding, anatomy of   Tropical fishes. En: Gratzek JB, Matthews JR, editores.   Aquarology: The science of fish health management.   Nueva York (U. S. A.): Tetra Press. p. 330.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0304-3584201300010000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> G&oacute;mez-Ram&iacute;rez E, Obando MJ, Tovar MO, Caldas ML,   Hurtado H. 2011. Estudio histol&oacute;gico del tracto   digestivo del ne&oacute;n cardenal <i><i>Paracheirodon axelrodi</i></i>   (Characidae). International Journal of Morphology,   29 (3): 782-786.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0304-3584201300010000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p> G&oacute;mez Y, Vargas JP, Portavella M, L&oacute;pez JC. 2006. Spatial   learning and goldfish telencephalon NMDA receptors.   Neurobiology of Learning and Memory, 85 (3): 252-262.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0304-3584201300010000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Grizzle J, Rogers W. 1976. Anatomy and histology of the   channel catfish. Alabama (U. S. A.): Auburn Printing,   Inc. p. 100.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0304-3584201300010000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Gridley MF. 1960. Manual of histologic and special staining   techniques. 2<sup>nd</sup> ed. New York (U. S. A.): McGraw Hill   Book Company, Inc. p. 207.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0304-3584201300010000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Hinton DE. 1990. Histological techniques. En: Schreck CB,   Moyle PB, editores. Methods for fish biology Bethesda   (U. S. A.): American Fisheries Society. p. 684.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0304-3584201300010000500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Huber R, Rylander M. 1992. Quantitative histological study   of the optic nerve in species of minnows (Cyprinidae,   Teleostei) inhabiting clear and turbid water. Brain,   Behavior and Evolution, 40: 250-255.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0304-3584201300010000500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p> Huber R, Van Staaden M, Kaufman L, Liem K. 1997.   Microhabitat use, trophic patterns, and the evolution   of brain structures in African Cichlids. Brain, Behavior   and Evolution, 50: 167-182.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0304-3584201300010000500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> ImageJ &#91;Internet&#93;. 2011. National Institutes of Health. Fecha   de acceso: 19 de agosto de 2011. Disponible en: <a href="http://rsbweb.nih.gov/ij/download.html" target="_blank">http://rsbweb.nih.gov/ij/download.html</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S0304-3584201300010000500025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Ishikawa Y, Yoshimoto M, Yamamoto M, Ito H. 1999a.   Different brain morphologies from different genotypes   in a single teleost species, the medaka (<i>Oryzias latipes</i>).   Brain, Behavior and Evolution, 53 (2): 74.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000147&pid=S0304-3584201300010000500026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Ishikawa Y, Yoshimoto M, Ito H. 1999b. A brain atlas of a   wild-type inbred strain of the medaka, <i>Oryzias latipes</i>.   The Fish Biology Journal MEDAKA, 10: 1-26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S0304-3584201300010000500027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Jolicoeur P, Pirlot P, Baron G, Stephan H. 1984. Brain structure   and correlation patterns in Insectivora, Chiroptera and   Primates. Systematic Zoology, 33 (1): 14-29.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000151&pid=S0304-3584201300010000500028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p> Kanwal JS, Caprio J. 1987. Central projections of the glosso   fharyngeal and vagal nerves in the channel catfish,   <i>Ictalurus punctatus</i>: clues to differential processing   of visceral inputs. Journal of Comparative Neurology,   264 (2): 216-230.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000153&pid=S0304-3584201300010000500029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Kotrschal K, Junger H. 1988. Patterns of brain morphology   in mid-European Cyprinidae (Pisces, Teleostei):   a quantitative histological study. Journal f&uuml;r   Hirnforschung, 29 (3): 341-352.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000155&pid=S0304-3584201300010000500030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Kotrschal K, Palzenberger M, 1992. Neuroecology of   cyprinids: comparative, quantitative histology reveals   diverse brain patterns. Environmental Biology of   Fishes, 33: 135-152.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000157&pid=S0304-3584201300010000500031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Kotrschal K, Van Staaden M, Huber R. 1998. Fish brain:   evolution and environmental relationship. Reviews in   Fish Biology and Fisheries, 8: 373-408.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000159&pid=S0304-3584201300010000500032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Lee RKK, Eaton RC, Zottoli SJ. 1993. Segmental arrangement   of reticule spinal neurons in the goldfish hindbrain.   Journal of Comparative Neurology, 329 (4): 539-556.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000161&pid=S0304-3584201300010000500033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p> Londo&ntilde;o L, Hurtado H. 2010. Estudio preliminar morfol&oacute;gico   y morfom&eacute;trico del enc&eacute;falo del pez tiburoncito   <i>Ariopsis seemanni</i>, (Pisces: Ariidae). Universitas.   Scientiarum, 15 (2): 101-109.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000163&pid=S0304-3584201300010000500034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Marchetti M, Nevitt G. 2003. Effects of hatchery rearing on   brain structures of rainbow trout, <i>Oncorhynchus mykiss</i>.   Environmental Biology of Fishes, 66 (1): 9-14.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000165&pid=S0304-3584201300010000500035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Mukada T, Ando M. 2003. Brain atlas of the Japanese   Eel: comparison to other fishes. Memoirs of the   Faculty of Integrated Arts and Sciences, Hiroshima   University, 29: 1-25.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000167&pid=S0304-3584201300010000500036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Murakami T, Morita Y, Ito H. 1983. Extrinsic and intrinsic   fiber connections of the telencephalon in a teleost,   <i>Sebastiscus marmoratus</i>. Journal of Comparative   Neurology, 216 (2): 115-131.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000169&pid=S0304-3584201300010000500037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Nortcutt RG, Butler AB. 1993. The diencephalon of   the Pacific herring, <i>Clupea harengus</i>: retinofugal   proyections to the diencephalon and optic tectum.   Journal of Comparative Neurology, 328 (4): 547-561.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000171&pid=S0304-3584201300010000500038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p> Oliveira S, Souza RTY, Nunes ES, Carvalho CSM, Menezes   GC, Marcon JL, Roubach R, Ono EA, Affons EG. 2008.   Tolerance to temperature, pH, ammonia and nitrite in   cardinal tetra, <i><i>Paracheirodon axelrodi</i></i>, an Amazonian   ornamental fish. Acta Amazonica, 38 (4): 773-780.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000173&pid=S0304-3584201300010000500039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Portavella M, Vargas J. 2005. Emotional and spatial learning   in goldfish is dependent on different telencephalic   pallial systems. European Journal of Neuroscience, 21   (10): 2800-2806.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000175&pid=S0304-3584201300010000500040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Prasada Rao PD, Jadhao AG, Sharma SC. 1987. Descending   projection neurons to the spinal cord of the goldfish,   <i>Carassius auratus</i>. Journal of Comparative Neurology,   265 (1): 96-108.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000177&pid=S0304-3584201300010000500041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Riddell WI, Corl KG. 1977. Comparative investigation and   relationship between cerebral indices and learning   abilities. Brain, Behavior and Evolution, 14 (6): 385-398.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000179&pid=S0304-3584201300010000500042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Ridet JM, Bauchot R. 1990. Quantitative analysis of the   teleost brain: evolutionary and adaptive features of   encephalization. II. Primary brain subdivisi&oacute;n. Journal   f&uuml;r Hirnforschung, 31 (4): 433-458.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000181&pid=S0304-3584201300010000500043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p> Roberts RJ. 2001. Fish pathology. 3<sup>rd</sup> ed. Toronto (U. S. A.).   Elsevier Health Sciences. p. 472.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000183&pid=S0304-3584201300010000500044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Saito K, Watanabe S. 2004. Spatial learning deficits after the   development of dorsomedial telencephalon lesions in   goldfish. Neuro Report, 15 (18): 2695-2699.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000185&pid=S0304-3584201300010000500045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Saito K, Watanabe S. 2006. Deficits in acquisition of spatial   learning after dorsomedial telencephalon lesions in   goldfish. Behavioural Brain Research, 172 (2): 187-194.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000187&pid=S0304-3584201300010000500046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Schillling TF. 2002. The morphology of larval and adult   zebrafish. En: N&uuml;sslein-Volhard C, Dahm R, editores.   Zebrafish: a practical approach. New York (U. S. A.):   Oxford University Press. p. 303.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000189&pid=S0304-3584201300010000500047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Springer AD, Easter SS, Agranoff BW. 1977. The role of the   optic tectum in various visually mediated behaviors of   goldfish. Brain Research, 128 (3): 393-404.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000191&pid=S0304-3584201300010000500048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p> Striedter GF 1991. Auditory, electro sensory, and mechano   sensory lateral line pathways through the forebrain in   cannel catfishes. Journal of Comparative Neurology,   312 (2): 311-331.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000193&pid=S0304-3584201300010000500049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Takashima F, Hibiya T. 1995. An atlas of fish histology   normal and pathological features. 2<sup>nd</sup> ed. Tokio (Japan):   Kodansha Ltda. p. 213.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000195&pid=S0304-3584201300010000500050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Tovar O, Obando M, G&oacute;mez E, Caldas ML,   Hurtado H. Histolog&iacute;a y morfometr&iacute;a del ojo   del pez dulceacu&iacute;cola <i><i>Paracheirodon axelrodi</i></i>   (Characiformes: Characidae). Revista de Biolog&iacute;a   Tropical, 57 (4): 1107-1118.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000197&pid=S0304-3584201300010000500051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Wagner H. 2001a. Sensory brain areas in mesopelagic fishes.   Brain, Behavior and Evolution, 57: 117-133.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000199&pid=S0304-3584201300010000500052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Wagner H. 2001b. Brain areas in abyssal demersal fishes.   Brain, Behavior and Evolution, 57: 301-316.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000201&pid=S0304-3584201300010000500053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p> Walker I. 2004. The food spectrum of the cardinal tetra   (<i><i>Paracheirodon axelrodi</i></i>, Characidae) in its natural   habitat. Acta Amaz&oacute;nica, 34 (1): 69-73.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000203&pid=S0304-3584201300010000500054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Wingerd B. 1988. Dogfish dissection manual. California   (U. S. A.). The Johns Hopkins University Press. p. 72.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000205&pid=S0304-3584201300010000500055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Wullimann M. 1998. The central nervous system. En: Evans   DDH, Claiborne JB, editores. The physiology of fishes.   Florida (U. S. A.). CRC Press. p. 516.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000207&pid=S0304-3584201300010000500056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Wullimann MF, Meyer DL. 1993. Possible multiple evolution   of indirect telencephalo-cerebellar pathways in teleosts:   studies in <i>Carassius auratus</i> and <i>Pantodon buchholzi</i>.   Cell and Tissue Research, 274 (3): 447-455.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000209&pid=S0304-3584201300010000500057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> Wullimann M, Rupp B, Relchert H. 1996. Neuroanatomy of   the Zebrafish Brain: a topological atlas. Basilea (Suiza).   Birkhauser Verlag. p.144.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000211&pid=S0304-3584201300010000500058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p> Zar JH. 1999. Biostatistical analysis. 4<sup>th</sup> ed. New Jersey, (U.   S. A.): Prentice-Hall. p. 929.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000213&pid=S0304-3584201300010000500059&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <p>&nbsp;</p> </font>      ]]></body><back>
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