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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Nuevo papel de los radicales libres de oxígeno en el ejercicio: ¿otra paradoja?]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: Physical activity conduces to oxidative stress, which produces undesirable effects. However, it is well known that free radicals, when present in low concentrations, also have physiological effects in the exercise adaptation process. In addition, the majority of antioxidant supplementation studies, in spite of the fact of decreases oxidative stress, have failed to show a performance improving. Objectives: The goals of this review are to reinterpret the available evidence about the role of free radicals in exercise, and to analyze why antioxidant supplementation have not shown the expectable ergogenic effect. Methods: The following topics were reviewed: i) the free radical biology; ii) antioxidant systems; iii) exercise induced-oxidative stress; iv) oxidative stress and physical performance; and v) antioxidant supplementation and physical performance. Results: There is evidence that physical exercise is associated with excessive free radical production. Deleterious effects of free radicals in physical performance have been shown by in situ studies, although evidence in humans is also available. Physical exercise results in muscular hypoxia, which conduces to adaptative responses, probably through free radical-mediated HIF-1&#945; stabilization. Moreover, a certain level of free radicals is necessary for optimal muscle contractility. Conclusions: Free radicals are necessary for exercise-induced hypoxia adaptation and muscle contraction, for that reason long term antioxidant supplementation interfere with its physiological role. This, explain why antioxidants decrease oxidative stress markers but fail to improve physical performance.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Radicales libres]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  <font face="Arial" size="+1">    <p align="center"><b>Nuevo papel de los radicales libres de ox&iacute;geno en el ejercicio: &iquest;otra paradoja?</b></p></font> <font face="Arial">    <p align="center"><b>Adriana del Pilar Urbina-Bonilla, MD*</b></p></font> <font face="Arial" size="-1">    <p>* Profesora Unidad de Fisiolog&iacute;a, Departamento de Ciencias B&aacute;sicas, Facultad de Medicina, Universidad del Rosario, Bogot&aacute; DC, Colombia. e-mail: <a href="mailto:adriana.urbina38@urosario.edu.co">adriana.urbina38@urosario.edu.co</a>    <br> Recibido para publicaci&oacute;n septiembre 14, 2007 Aceptado para publicaci&oacute;n junio 26, 2008</p></font> <font face="Arial">    <p><b>RESUMEN</b></p>     <p><b>Introducci&oacute;n:</b> La actividad f&iacute;sica genera estr&eacute;s oxidativo que produce efectos indeseados. Sin embargo, se sabe que los radicales libres de ox&iacute;geno (RLO) en bajas concentraciones, tambi&eacute;n tienen efectos fisiol&oacute;gicos que median la adaptaci&oacute;n misma al ejercicio. Adicionalmente, la mayor&iacute;a de los estudios sobre suplementaci&oacute;n antioxidante muestra disminuci&oacute;n del estr&eacute;s oxidativo inducido por el ejercicio pero no mejoran el desempe&ntilde;o f&iacute;sico.    <br> <b>Objetivos:</b>  Reinterpretar la evidencia disponible acerca del papel de los RLO en el ejercicio, y analizar por qu&eacute; la suplementaci&oacute;n antioxidante no ha mostrado el efecto ergog&eacute;nico esperado.    <br> <b>Metodolog&iacute;a:</b> Se revisaron los siguientes puntos: a) biolog&iacute;a de los radicales libres de ox&iacute;geno; b) sistemas antioxidantes; c) estr&eacute;s oxidativo inducido por el ejercicio; d) estr&eacute;s oxidativo y desempe&ntilde;o f&iacute;sico; e) suplementaci&oacute;n antioxidante y desempe&ntilde;o f&iacute;sico.    <br> <b>Hallazgos:</b> Existe clara evidencia de que el ejercicio se asocia con la producci&oacute;n excesiva de RLO. Los efectos indeseados de los RLO sobre el desempe&ntilde;o se han observado en su mayor&iacute;a en estudios in situ, aunque tambi&eacute;n existe evidencia en seres humanos. Se ha demostrado que el ejercicio f&iacute;sico resulta en hipoxia muscular y que &eacute;sta desencadena respuestas adaptativas mediadas por el HIF-1&alpha;, probablemente a trav&eacute;s de la generaci&oacute;n de peque&ntilde;as cantidades de RLO que estabilizan este factor de transcripci&oacute;n. Asimismo, se sabe que se requiere de cierto nivel de RLO para que la contractilidad muscular sea &oacute;ptima.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> <b>Conclusiones:</b> Como los RLO son necesarios para la adaptaci&oacute;n a la hipoxia inducida por el ejercicio y la &oacute;ptima contractilidad muscular, la suplementaci&oacute;n antioxidante a largo t&eacute;rmino interfiere con su papel fisiol&oacute;gico. Esto explica por qu&eacute; si bien diminuye los marcadores de estr&eacute;s oxidativo, no mejora el desempe&ntilde;o f&iacute;sico.</p>     <p align="center"><b>Palabras clave:</b> Radicales libres; Estr&eacute;s oxidativo; Ejercicio; Entrenamiento; Antioxidantes; Hipoxia.</p>     <p><b>New role of free radicals in exercise: another paradox?</b></p>     <p><b>SUMMARY</b></p>     <p><b>Introduction:</b> Physical activity conduces to oxidative stress, which produces undesirable effects. However, it is well known that free radicals, when present in low concentrations, also have physiological effects in the exercise adaptation process. In addition, the majority of antioxidant supplementation studies, in spite of the fact of decreases oxidative stress, have failed to show a performance improving.    <br> <b>Objectives:</b> The goals of this review are to reinterpret the available evidence about the role of free radicals in exercise, and to analyze why antioxidant supplementation have not shown the expectable ergogenic effect.    <br> <b>Methods:</b> The following topics were reviewed: i) the free radical biology; ii) antioxidant systems; iii) exercise induced-oxidative stress; iv) oxidative stress and physical performance; and v) antioxidant supplementation and physical performance.    <br> <b>Results:</b> There is evidence that physical exercise is associated with excessive free radical production. Deleterious effects of free radicals in physical performance have been shown by in situ studies, although evidence in humans is also available. Physical exercise results in muscular hypoxia, which conduces to adaptative responses, probably through free radical-mediated HIF-1&alpha; stabilization. Moreover, a certain level of free radicals is necessary for optimal muscle contractility.    <br> <b>Conclusions:</b> Free radicals are necessary for exercise-induced hypoxia adaptation and muscle contraction, for that reason long term antioxidant supplementation interfere with its physiological role. This, explain why antioxidants decrease oxidative stress markers but fail to improve physical performance.</p>     <p align="center"><b>Keywords:</b> Free radicals; Oxidative stress; Exercise; Training; Antioxidants; Hypoxia.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>IMPORTANCIA BIOL&Oacute;GICA DE LOS RADICALES LIBRES DE OX&Iacute;GENO</b></p>     <p>El ox&iacute;geno como elemento es altamente t&oacute;xico para muchas formas de vida; sin embargo, los organismos de vida aerobia son capaces de utilizarlo como aceptor final de electrones alcanzando una mayor eficiencia en la producci&oacute;n de energ&iacute;a a partir de los combustibles metab&oacute;licos. A pesar de ello, el ox&iacute;geno puede causarle da&ntilde;o aun a las c&eacute;lulas aerobias.</p>     <p>El ox&iacute;geno molecular (O<sub>2</sub>) es altamente reactivo y de manera r&aacute;pida genera una serie de compuestos denominados radicales libres de ox&iacute;geno (RLO), los cuales, en condiciones normales existen en concentraciones bajas en las c&eacute;lulas y tejidos. En cantidades excesivas producen da&ntilde;o a los componentes celulares mediante una serie de reacciones en cadena. Los organismos vivos se han adaptado a los RLO de dos maneras: pueden mitigar sus efectos indeseados a trav&eacute;s de su remoci&oacute;n por parte de los sistemas antioxidantes y pueden utilizarlos de forma ventajosa como mensajeros en la se&ntilde;alizaci&oacute;n celular y en la regulaci&oacute;n de las funciones corporales. Dentro de las funciones fisiol&oacute;gicas ventajosas de los RLO se encuentra la regulaci&oacute;n del tono vascular, detecci&oacute;n y adaptaci&oacute;n a la hipoxia, e incluso la misma respuesta al estr&eacute;s oxidativo<sup><a href="#1">1</a></sup>.</p>     <p>Las cantidades de RLO est&aacute;n determinadas por el balance entre su producci&oacute;n y su remoci&oacute;n, y un cambio en dicho balance en favor de su acumulaci&oacute;n (estr&eacute;s oxidativo) genera a su vez respuestas adaptativas en los sistemas antioxidantes manteniendo lo que se denomina &laquo;homeostasis r&eacute;dox&raquo; (<a href="#g1">Gr&aacute;fica 1</a>)<sup><a href="#1">1</a></sup>. En condiciones basales, existe una peque&ntilde;a concentraci&oacute;n de RLO; sin embargo, cuando dicho nivel se ve sobrepasado se activan las v&iacute;as de se&ntilde;alizaci&oacute;n sensibles al estado r&eacute;dox. Este cambio en el balance obedece a la producci&oacute;n end&oacute;gena regulada de RLO o a condiciones ambientales generadoras de estr&eacute;s oxidativo, pero en ambos casos, si el aumento en la concentraci&oacute;n de RLO es transitorio y/o de baja magnitud, los sistemas antioxidantes pronto son capaces de restaurar el estado inicial. De otro lado, bajo ciertas condiciones la producci&oacute;n de RLO aumenta m&aacute;s fuerte y persistentemente y las respuestas antioxidantes pueden no ser suficientes para reestablecer el balance hacia el nivel original, gener&aacute;ndose un nuevo nivel de equilibrio, en donde las concentraciones de RLO son m&aacute;s elevadas y el patr&oacute;n de expresi&oacute;n g&eacute;nica se modifica debido a la estimulaci&oacute;n sostenida de las v&iacute;as de se&ntilde;alizaci&oacute;n sensibles al estado r&eacute;dox, incluyendo la del Factor Nuclear Kappa Betha (NF-KB) y MAP-quinasa (MAPK) (Para una revisi&oacute;n detallada ver referencia<sup><a href="#2">2</a></sup>). Cantidades excesivas de radicales libres est&aacute;n involucradas en la patog&eacute;nesis de muchas enfermedades, incluyendo ateroesclerosis<sup><a href="#3">3</a></sup>, falla renal cr&oacute;nica<sup><a href="#4">4</a></sup>, y diabetes mellitus<sup><a href="#5">5</a></sup>, entre otras. Tambi&eacute;n es sabido que la actividad f&iacute;sica en s&iacute; misma es una fuente adicional de radicales libres.</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/cm/v39n3/v39n3a8g1.jpg"><a name="g1"></a></p>     <p><b>SISTEMAS ANTIOXIDANTES</b></p>     <p>Las concentraciones de radicales libres dependen del balance entre su producci&oacute;n y su eliminaci&oacute;n por parte de sustancias y enzimas antioxidantes. Halliwell y Gutteridge<sup><a href="#6">6</a></sup> han definido los antioxidantes como &laquo;sustancias que son capaces, a concentraciones relativamente bajas, de competir con otros sustratos oxidables (por ejemplo, los componentes celulares) y as&iacute;, inhibir o retardar significativamente la oxidaci&oacute;n de dichos sustratos&raquo;. Los sistemas antioxidantes pueden ser clasificados en: 1) enzimas antioxidantes, 2) sustancias antioxidantes, y 3) prote&iacute;nas fijadoras de hierro y cobre<sup><a href="#6">6</a></sup>.</p>     <blockquote>1.<b>Enzimas antioxidantes.</b> Las enzimas antioxidantes poseen especificidad de sustrato y catalizan la conversi&oacute;n de un RLO en compuestos menos reactivos, deteniendo la cadena de reacciones de oxidaci&oacute;n. En el <a href="#c1">Cuadro 1</a> se resumen las caracter&iacute;sticas principales de las enzimas antioxidantes.     <p align="center"><img src="img/revistas/cm/v39n3/v39n3a8c1.jpg"><a name="c1"></a></p>     <p>2. <b>Sustancias antioxidantes.</b> Las sustancias antioxidantes son mol&eacute;culas de bajo peso que pueden recibir un electr&oacute;n proveniente de un radical libre o bien, donar un electr&oacute;n a un radical con la formaci&oacute;n de un bioproducto estable, por lo que detienen la cadena de reacciones oxidativas. Las sustancias antioxidantes se clasifican en aquellas de fase lip&iacute;dica y de fase acuosa (<a href="#c2">Cuadro 2</a>). Las primeras, importantes a nivel de las membranas celulares y las segundas a nivel extracelular. Como cada sustancia antioxidante es capaz de neutralizar varios tipos de RLO se consideran sistemas de car&aacute;cter inespec&iacute;fico.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img src="img/revistas/cm/v39n3/v39n3a8c2.jpg"><a name="c2"></a></p>     <p><b>Capacidad antioxidante total del plasma.</b> Es la capacidad que tiene el plasma para detener una reacci&oacute;n oxidativa, la cual es el resultado de todas las sustancias antioxidantes que &eacute;ste contiene. De hecho, el plasma se considera una soluci&oacute;n heterog&eacute;nea de antioxidantes de naturaleza diversa. El &aacute;cido &uacute;rico es el compuesto cuantitativamente m&aacute;s importante en la capacidad antioxidante total del plasma (contribuyendo en 60%) seguido por la vitamina C y las prote&iacute;nas plasm&aacute;ticas (15% y 10% respectivamente); tambi&eacute;n contribuyen el&alpha;-tocoferol y las bilirrubinas<sup><a href="#7">7</a></sup>.     <p>3.<b>Prote&iacute;nas fijadoras de hierro y cobre.</b> Tanto el hierro (Fe2+) como el cobre (Cu1+) catalizan la formaci&oacute;n de RLO y la peroxidaci&oacute;n de l&iacute;pidos, mediante su reacci&oacute;n con el per&oacute;xido de hidr&oacute;geno, en una reacci&oacute;n que originalmente fue llamada reacci&oacute;n de Fenton: </blockquote>    <p align="center"><b><img src="img/revistas/cm/v39n3/v39n3a8f1.jpg"><a name="g1"></a></b></p>     <p>A partir de esta reacci&oacute;n se genera una serie de reacciones que amplifica la producci&oacute;n de RLO. De esta manera, las prote&iacute;nas que poseen la capacidad de unir y fijar estos metales de transici&oacute;n exhiben actividad antioxidante porque limitan la ocurrencia de dichas reacciones in vivo<sup><a href="#8">8</a></sup> (<a href="#c3">Cuadro 3</a>).     <p align="center"><img src="img/revistas/cm/v39n3/v39n3a8c3.jpg"><a name="c3"></a></p>     <p><b>ESTR&Eacute;S OXIDATIVO INDUCIDO POR EL EJERCICIO</b></p>     <p>El ejercicio se considera como una condici&oacute;n de generaci&oacute;n excesiva de RLO (<a href="#c4">Cuadro 4</a>), que resulta asimismo en respuestas compensatorias por parte de los sistemas antioxidantes<sup><a href="#9">9</a></sup>, y aunque los mecanismos de su generaci&oacute;n no est&aacute;n completamente claros, algunas de sus posibles fuentes incluyen: 1) procesos de isquemia-reperfusi&oacute;n; 2) oxidaci&oacute;n de hemoglobina y mioglobina; 3) formaci&oacute;n programada por las c&eacute;lulas del sistema inmune y 4) formaci&oacute;n durante el metabolismo oxidativo. Estos mecanismos pueden actuar de forma sin&eacute;rgica y tambi&eacute;n es probable que algunos de ellos contribuyan en magnitud diferente seg&uacute;n el tipo de ejercicio realizado y su intensidad<sup><a href="#10">10</a></sup>.</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/cm/v39n3/v39n3a8c4.jpg"><a name="c4"></a></p>     <p><b>Procesos de isquemia-reperfusi&oacute;n.</b> El ejercicio induce hipoxia transitoria en varios &oacute;rganos, e incluso isquemia. A trav&eacute;s de la medici&oacute;n de la saturaci&oacute;n de la hemoglobina por espectroscopia por resonancia nuclear magn&eacute;tica, se ha podido determinar que el ejercicio f&iacute;sico realizado en condiciones de normoxia ambiental disminuye la pO<sub>2</sub> muscular desde un valor de 34 mmHg en reposo hasta 2-5 mmHg a intensidades de 60% a 100% de la carga m&aacute;xima<sup><a href="#11">11</a></sup>, y cuando se realiza en condiciones de hipoxia ambiental, el ejercicio resulta en hipoxia muscular a&uacute;n m&aacute;s intensa<sup><a href="#12">12</a></sup>. Las condiciones isqu&eacute;micas generan la conversi&oacute;n de la xantina deshidrogenasa en xantina oxidasa, probablemente mediante un trastorno en la homeostasis del calcio y la activaci&oacute;n de proteasas dependientes del calcio que degradan la porci&oacute;n terminal de la deshidrogenasa. Esta &uacute;ltima cataliza la conversi&oacute;n de hipoxantina en xantina generando ani&oacute;n super&oacute;xido como producto secundario. Es sabido que la reoxigenaci&oacute;n de los tejidos hip&oacute;xicos despu&eacute;s del ejercicio, aumenta la actividad<sup><a href="#13">13</a></sup> y la expresi&oacute;n<sup><a href="#14">14</a></sup> de xantina oxidasa, y que el tratamiento con alopurinol protege contra la acumulaci&oacute;n de super&oacute;xido despu&eacute;s del ejercicio intenso en humanos<sup><a href="#15">15</a></sup>.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b> Oxidaci&oacute;n de hemoglobina y mioglobina.</b> Las hemoprote&iacute;nas pueden auto-oxidarse y generar tanto ani&oacute;n super&oacute;xido como per&oacute;xido de hidr&oacute;geno. Vollaard et al.<sup><a href="#16">16</a></sup> han informado del aumento inducido por el ejercicio en la concentraci&oacute;n intraeritrocitaria de hemoglobina oxidada in vivo. La magnitud del incremento es significativa y similar en sujetos entrenados (triatletas) y no entrenados, con ejercicio m&aacute;ximo y subm&aacute;ximo. En todas estas condiciones la concentraci&oacute;n de hemoglobina oxidada retorn&oacute; a los valores iniciales al cabo de una hora<sup><a href="#16">16</a></sup>. Se desconocen las implicaciones fisiol&oacute;gicas de este fen&oacute;meno; sin embargo, el hecho de que sea controlado r&aacute;pidamente sugiere la existencia de sistemas espec&iacute;ficos de control del da&ntilde;o potencial, involucrando los sistemas enzim&aacute;ticos de defensa antioxidante intraeritrocitarios (catalasa, super&oacute;xido dismutasa)<sup><a href="#16">16</a></sup>. Adicionalmente, se sabe que el ejercicio moderado a exhaustivo genera hem&oacute;lisis<sup><a href="#17">17</a></sup>, por lo cual es factible inferir que tambi&eacute;n puede ocurrir oxidaci&oacute;n de la hemoglobina plasm&aacute;tica liberada en el proceso de hem&oacute;lisis; sin embargo, esta hip&oacute;tesis necesita verificaci&oacute;n experimental.</p>     <p><b>Formaci&oacute;n por las c&eacute;lulas del sistema inmune.</b> Se ha informado que el ejercicio f&iacute;sico modifica tanto el n&uacute;mero como la funci&oacute;n de los gl&oacute;bulos blancos. El ejercicio f&iacute;sico aumenta la liberaci&oacute;n y movilizaci&oacute;n de neutr&oacute;filos<sup><a href="#18">18</a></sup>, teniendo estas c&eacute;lulas una mayor capacidad de producci&oacute;n de ani&oacute;n super&oacute;xido y de per&oacute;xido de hidr&oacute;geno, as&iacute; como mayor actividad fagoc&iacute;tica<sup><a href="#19">19</a></sup>.</p>     <p><b>Formaci&oacute;n durante el metabolismo oxidativo: La &laquo;paradoja del ox&iacute;geno&raquo;.</b> Durante muchos a&ntilde;os se crey&oacute; que el aumento en el flujo de ox&iacute;geno mitocondrial para suplir las demandas de ATP durante el ejercicio era suficiente para explicar la producci&oacute;n excesiva de RLO a nivel mitocondrial<sup><a href="#20">20</a></sup>. Sin embargo, actualmente se sabe que la hipoxia muscular que se desarrolla durante el trabajo f&iacute;sico<sup><a href="#11">11</a>,<a href="#12">12</a></sup> tambi&eacute;n puede resultar en la producci&oacute;n de RLO, aunque en peque&ntilde;as cantidades<sup><a href="#21">21</a></sup>. A continuaci&oacute;n se profundizar&aacute; un poco m&aacute;s en esta aparente paradoja. Guzy et al.<sup><a href="#22">22</a></sup> informaron que la mitocondria puede actuar como sensor de ox&iacute;geno y que en respuesta a la hipoxia produce de manera controlada ani&oacute;n super&oacute;xido en el complejo III de la cadena de transporte de electrones (espacio intermembranal mitocondrial), el cual se libera hacia el citosol donde estabiliza el factor inducible por la hipoxia (HIF-1&alpha;), de manera que puede mediar indirectamente a trav&eacute;s de este &uacute;ltimo las respuestas adaptativas a la hipoxia<sup><a href="#22">22</a></sup>.</p>     <p>Los factores inducibles por la hipoxia (HIF-1 y HIF-2) son los mediadores de muchas de las respuestas a la hipoxia, incluyendo la activaci&oacute;n transcripcional de los genes de eritropoyetina (EPO), factor de crecimiento endotelial vascular VEGF, enzimas glicol&iacute;ticas, transferrina y mioglobina, entre otros<sup><a href="#23">23</a></sup>. El HIF-1&alpha; se transcribe y traduce constitutivamente. Sin embargo, en condiciones de normoxia e hiperoxia es degradado luego de su hidroxilaci&oacute;n por un grupo de hidroxilasas de prolina. La actividad de este grupo de enzimas es m&aacute;xima a FiO<sub>2</sub> 45%)<sup><a href="#24">24</a></sup>, lo que facilita su reconocimiento por el sistema de ubiquitina-proteasoma<sup><a href="#25">25</a></sup>. La hidroxilaci&oacute;n y la degradaci&oacute;n del HIF-1&alpha; se inhiben en condiciones de hipoxia por la generaci&oacute;n de RLO<sup><a href="#22">22</a></sup>, y aunque tambi&eacute;n se generan cantidades adicionales de RLO durante la hiperoxia, se cree que &eacute;stas no son suficientes para inhibir las hidroxilasas de prolina cuando ellas se encuentran a un nivel cercano a su actividad m&aacute;xima (FiO2 45%)<sup><a href="#26">26</a></sup>. Esto explica por qu&eacute; s&oacute;lo la hipoxia (y no la hiperoxia) resulta en la estabilizaci&oacute;n del HIF-1&alpha;.</p>     <p>Teniendo en cuenta lo anterior, se puede replantear la teor&iacute;a de la producci&oacute;n mitocondrial de RLO durante el ejercicio. Ya no se tratar&iacute;a de una simple acci&oacute;n de masas en donde el aumento en la actividad en la cadena de transporte de electrones conducir&iacute;a a una elevaci&oacute;n en la producci&oacute;n de RLO, sino que puede tratarse tambi&eacute;n de una producci&oacute;n &laquo;controlada&raquo; de RLO, en la cual la mitocondria actuando como sensor de ox&iacute;geno ser&iacute;a capaz de detectar la disminuci&oacute;n en la pO<sub>2</sub> muscular (mitocondrial) que ocurre durante el ejercicio<sup><a href="#12">12</a></sup>, en respuesta a la cual producir&iacute;a y liberar&iacute;a m&aacute;s ani&oacute;n super&oacute;xido<sup><a href="#22">22</a></sup> hacia el citosol, generando respuestas adaptativas a la hipoxia inducida por el ejercicio a trav&eacute;s de la estabilizaci&oacute;n del HIF-1&alpha;. A este respecto, en humanos una carga aguda de ejercicio aumenta las concentraciones tanto de la prote&iacute;na HIF-1&alpha;, como del mRNA de la EPO y el VEFG en la c&eacute;lula muscular<sup><a href="#27">27</a></sup>. Vale la pena enfatizar en que la producci&oacute;n &laquo;adaptativa y controlada&raquo; de i&oacute;n super&oacute;xido durante la hipoxia inducida por el ejercicio ser&iacute;a ventajosa dentro de cierto rango de concentraciones, m&aacute;s all&aacute; del cual no se observar&iacute;an las respuestas adaptativas ben&eacute;ficas mediadas por el HIF-1&alpha;, y predominar&iacute;an en cambio, los efectos indeseados sobre los diferentes componentes celulares (estr&eacute;s oxidativo)<sup><a href="#21">21</a></sup>.</p>     <p><b>ESTR&Eacute;S OXIDATIVO Y DESEMPE&Ntilde;O F&Iacute;SICO</b></p>     <p>La generaci&oacute;n de RLO inducida por el ejercicio y la adaptaci&oacute;n consiguiente en los sistemas de defensa antioxidantes es similar a otras respuestas fisiol&oacute;gicas al ejercicio en las que una sobre carga altera la homeostasis y genera cambios reparativos y adaptativos que facultan al organismo para suplir esta sobre carga. Durante mucho tiempo se consider&oacute; que los RLO inducidos por el ejercicio eran delet&eacute;reos y se deb&iacute;an evitar.</p>     <p>A nivel celular, el da&ntilde;o oxidativo de los componentes celulares puede afectar las propiedades fisiol&oacute;gicas b&aacute;sicas de la fibra muscular: la excitabilidad causada por el da&ntilde;o de la bomba Na/K ATPasa sarcolemal<sup><a href="#28">28</a></sup>, que afecta la capacidad para desarrollar potenciales de acci&oacute;n, el acoplamiento excitaci&oacute;n-contracci&oacute;n<sup><a href="#29">29</a></sup> y la contractilidad<sup><a href="#29">29</a></sup>, por el da&ntilde;o de la bomba calcio ATPasa del ret&iacute;culo sarcopl&aacute;smico. Adem&aacute;s, las prote&iacute;nas contr&aacute;ctiles y las enzimas del metabolismo energ&eacute;tico tambi&eacute;n son susceptibles de da&ntilde;o oxidativo<sup><a href="#30">30</a></sup>.</p>     <p>De otro lado, la evidencia del efecto de los RLO sobre el desempe&ntilde;o mismo, proviene en su mayor&iacute;a de experimentos in situ en modelos animales usando fibras musculares aisladas tratadas con sustancias oxidantes, los cuales han mostrado una alteraci&oacute;n de la contractilidad, disminuci&oacute;n de la fuerza m&aacute;xima y aumento de la fatigabilidad, fen&oacute;menos que son revertidos por la adici&oacute;n de sustancias antioxidantes o reductoras. Sin embargo, algunos de estos experimentos<sup><a href="#31">31</a>,<a href="#32">32</a></sup> pusieron en evidencia que es necesario un nivel basal de sustancias oxidantes para un &oacute;ptimo funcionamiento de la maquinaria contr&aacute;ctil, hecho que sirvi&oacute; de fundamento para desarrollar una nueva teor&iacute;a del papel de los RLO en el ejercicio<sup><a href="#31">31</a>,<a href="#32">32</a></sup> seg&uacute;n la cual es necesario un cierto nivel de RLO para que la contractilidad muscular sea &oacute;ptima. En condiciones basales los m&uacute;sculos en reposo tienen una tasa muy baja de producci&oacute;n de RLO, por lo cual el balance r&eacute;dox se encuentra en un estado relativamente &laquo;reducido&raquo;, y esto aten&uacute;a la contractilidad del m&uacute;sculo. De otro lado, la actividad muscular intensa aumenta la producci&oacute;n de RLO y mueve el balance r&eacute;dox a un estado &laquo;oxidado&raquo;, lo cual tambi&eacute;n disminuye la fuerza. En un punto intermedio entre estos extremos, hay un estado r&eacute;dox que optimiza la producci&oacute;n de fuerza en el m&uacute;sculo esquel&eacute;tico, por medio de la sensibilizaci&oacute;n miofibrilar al calcio (<a href="#g2">Gr&aacute;fica 2</a>)<sup><a href="#33">33</a></sup>.</p>     <p><b>SUPLEMENTACI&Oacute;N ANTIOXIDANTE Y DESEMPE&Ntilde;O F&iacute;SICO</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Est&aacute; bien documentado que la suplementaci&oacute;n con antioxidantes previene o mitiga el estr&eacute;s oxidativo inducido por el ejercicio en varios tejidos, tanto en humanos como en animales<sup><a href="#34">34</a>,<a href="#35">35</a></sup>; sin embargo, teniendo en cuenta que los RLO tambi&eacute;n pueden desempe&ntilde;ar funciones fisiol&oacute;gicas, vale la pena considerar que su producci&oacute;n durante el ejercicio puede, en realidad, estar mediando algunas de las respuestas adaptativas a la actividad f&iacute;sica. Esta hip&oacute;tesis permitir&iacute;a explicar por qu&eacute; muchos de tales estudios de suplementaci&oacute;n antioxidante muestran cambios en los marcadores de estr&eacute;s oxidativo, pero fallan para demostrar cambios significativos en el desempe&ntilde;o f&iacute;sico.</p>     <p>De hecho, varios datos experimentales demuestran que la suplementaci&oacute;n antioxidante a largo t&eacute;rmino afecta negativamente la adaptaci&oacute;n muscular al ejercicio<sup><a href="#36">36</a>-<a href="#39">39</a></sup>. La suplementaci&oacute;n oral con vitamina C mitiga el incremento adaptativo en la actividad de super&oacute;xido dismutasa, catalasa y en el contenido de prote&iacute;nas de choque t&eacute;rmico que se observa en respuesta al ejercicio en sujetos humanos no suplementados<sup><a href="#36">36</a></sup>. Otro estudio<sup><a href="#37">37</a></sup> de suplementaci&oacute;n con vitamina C durante un ciclo de 8 semanas, mostr&oacute; que el grupo de sujetos suplementados no tuvo la mejor&iacute;a esperada de la capacidad aer&oacute;bica, y adem&aacute;s present&oacute; disminuci&oacute;n de algunos factores de transcripci&oacute;n (coactivador del receptor activado por el proliferador del peroxisoma-1, el factor respiratorio nuclear-1 y el factor de transcripci&oacute;n mitocondrial-A), en comparaci&oacute;n con los sujetos controles sin suplementaci&oacute;n<sup><a href="#37">37</a></sup>. De otro lado, el ejercicio caus&oacute; activaci&oacute;n de MAP kinasas y del factor nuclear Kappa betha, tanto en humanos como en animales, pero estos cambios fueron abolidos por la disminuci&oacute;n en la producci&oacute;n de RLO que se produjo tras la administraci&oacute;n de alopurinol<sup><a href="#38">38</a>,<a href="#39">39</a></sup>. Con base en estos hallazgos y los de otros estudios, antes de la publicaci&oacute;n de este art&iacute;culo Jackson ha advertido sobre la necesidad de tener precauci&oacute;n en deportistas con el uso de suplementaci&oacute;n antioxidante en altas dosis, por cuanto parecen interferir con el proceso mismo de adaptaci&oacute;n al ejercicio<sup><a href="#40">40</a></sup>.</p>     <p>Seg&uacute;n las teor&iacute;as del estado r&eacute;dox &oacute;ptimo para la contractilidad muscular y de la homeostasis r&eacute;dox (<a href="#g1">Gr&aacute;fica 1</a>), se podr&iacute;a pensar que la suplementaci&oacute;n antioxidante aguda, en contraste con la de largo t&eacute;rmino s&iacute; podr&iacute;a llegar a tener un efecto ben&eacute;fico sobre el desempe&ntilde;o f&iacute;sico mitigando los efectos adversos de cantidades excesivas de RLO por un lado y simult&aacute;neamente, mediante un r&aacute;pido corrimiento hacia la izquierda en la curva de radicales libres vs contractilidad, llevar el estado r&eacute;dox de la c&eacute;lula al nivel &oacute;ptimo para el desempe&ntilde;o f&iacute;sico (<a href="#g2">Gr&aacute;fica 2</a>). Estos cambios ben&eacute;ficos potenciales no ser&iacute;an esperables con la suplementaci&oacute;n antioxidante a largo plazo, porque con el paso del tiempo, el estado r&eacute;dox de la c&eacute;lula podr&iacute;a retornar a su nivel homeost&aacute;tico inicial, en el cual la capacidad contr&aacute;ctil no es la &oacute;ptima. Es tal vez por este motivo que los estudios de suplementaci&oacute;n a largo t&eacute;rmino en humanos no han podido mostrar una clara mejor&iacute;a en el desempe&ntilde;o<sup><a href="#41">41</a>-<a href="#43">43</a></sup>.</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/cm/v39n3/v39n3a8g2.jpg"><a name="g2"></a></p>     <p>A favor de esta posibilidad, est&aacute;n los resultados de estudios de suplementaci&oacute;n antioxidante aguda con N-acetilciste&iacute;na (NAC)<sup><a href="#44">44</a>,<a href="#45">45</a></sup>, la cual tras ser administrada intravenosamente a humanos, tanto entrenados como no entrenados, quienes se ejercitaron en un cicloerg&oacute;metro hasta la fatiga, result&oacute; en disminuci&oacute;n de la fatigabilidad muscular (aumento en el tiempo transcurrido hasta la fatiga)<sup><a href="#44">44</a>,<a href="#45">45</a></sup>. El mecanismo de acci&oacute;n es al parecer la protecci&oacute;n de la actividad de la Na/K ATPasa de la c&eacute;lula muscular<sup><a href="#45">45</a></sup>. En estos estudios no se hicieron determinaciones de actividad de enzimas antioxidantes ni de concentraciones de factores de transcripci&oacute;n. Como los efectos ben&eacute;ficos del medicamento fueron mayores en los sujetos entrenados que en los no entrenados, es necesario estudiar concienzudamente la contribuci&oacute;n del grado de entrenamiento sobre el efecto observado<sup><a href="#45">45</a></sup>. No obstante, a pesar del factor de confusi&oacute;n que constituye el efecto del entrenamiento, es pertinente formularse la siguiente pregunta: &iquest;cu&aacute;l es el efecto que la NAC tiene sobre otros marcadores de la adaptaci&oacute;n muscular al ejercicio, como por ejemplo, la actividad de algunas enzimas antioxidantes o las concentraciones de algunos factores de transcripci&oacute;n, incluyendo el HIF-1&alpha;. En la actualidad no existen datos experimentales que permitan responder esta pregunta, por lo cual se analizar&aacute;n los resultados provenientes de un estudio que eval&uacute;a el efecto de la NAC sobre la adaptaci&oacute;n a la hipoxia ambiental simulada.</p>     <p>Se trata de un estudio de suplementaci&oacute;n a largo plazo, realizado en seres humanos, voluntarios sanos, no entrenados, quienes se sometieron a hipoxia normob&aacute;rica (FiO<sub>2</sub> 12%)<sup><a href="#46">46</a></sup>. Los sujetos se evaluaron primero en condiciones de normoxia y luego asignados aleatoriamente a un grupo placebo o a un grupo al cual se le administr&oacute; NAC 200 mg/d&iacute;a v&iacute;a oral durante 5 d&iacute;as, al cabo de los cuales se examinaron la cantidad de tioles (sulfidrilos) plasm&aacute;ticos y la concentraci&oacute;n de EPO<sup><a href="#46">46</a></sup>. Ambos par&aacute;metros se encontraron significativamente m&aacute;s elevados en los sujetos suplementados que en los controles sin suplementaci&oacute;n, mientras que en este &uacute;ltimo grupo fue m&aacute;s elevada la concentraci&oacute;n de per&oacute;xidos. Dicho en otros t&eacute;rminos, el grupo suplementado mostr&oacute; un estado r&eacute;dox reducido y el grupo control un estado r&eacute;dox oxidado. Luego, todos los sujetos se sometieron a hipoxia normob&aacute;rica (FiO<sub>2</sub> 12%) por espacio de 6 horas, y se encontr&oacute; que en el grupo suplementado las concentraciones de per&oacute;xidos eran menores y las de EPO mayores con respecto a los controles<sup><a href="#46">46</a></sup>, es decir, que se mantuvo un estado r&eacute;dox relativamente m&aacute;s reducido en el grupo suplementado. Estos resultados sugieren que la concentraci&oacute;n plasm&aacute;tica de tioles (y por tanto el estado r&eacute;dox) puede modular la funci&oacute;n de los sensores de ox&iacute;geno implicados en la respuesta a la hipoxia. La NAC, por su parte aumenta directamente la concentraci&oacute;n de tioles (por su misma estructura qu&iacute;mica) y por tanto parece modular la respuesta de EPO, mientras que de forma simult&aacute;nea mitiga el estr&eacute;s oxidativo (medido como concentraci&oacute;n de per&oacute;xidos). Aunque no se hayan realizado mediciones directas, es esperable que el aumento en la secreci&oacute;n de EPO haya sido mediado por un incremento del HIF-1&alpha;, es decir que es factible que la NAC directamente o a trav&eacute;s de los tioles plasm&aacute;ticos estabilicen el HIF-1&alpha;, por ejemplo por interferencia en la hidroxilaci&oacute;n de sus residuos de prolina<sup><a href="#46">46</a></sup>.</p>     <p>En resumen, parece existir un efecto ben&eacute;fico potencial de la suplementaci&oacute;n aguda con NAC sobre el desempe&ntilde;o deportivo que se sabe involucra la protecci&oacute;n de la actividad de la bomba Na/K ATPasa muscular; sin embargo, la evidencia disponible sugiere que tambi&eacute;n podr&iacute;a involucrar la adaptaci&oacute;n a la hipoxia. A la luz del conocimiento actual sobre el papel de los radicales libres en el ejercicio, su efecto estar&iacute;a mediado por una acci&oacute;n directa sobre la estabilizaci&oacute;n del HIF-1&alpha;, es decir que imitar&iacute;a los efectos fisiol&oacute;gicos ben&eacute;ficos de los radicales libres en la adaptaci&oacute;n al ejercicio, pero mitigando simult&aacute;neamente el estr&eacute;s oxidativo, esto es, conseguir&iacute;a una especie de efecto de cortocircuito. Esta especulaci&oacute;n suena estimulante, por lo que es necesario estudiar el efecto de la NAC en la respuesta adaptativa a la hipoxia inducida por el ejercicio, en particular la respuesta eritropoy&eacute;tica (HIF-1&alpha;, concentraciones de EPO, per&oacute;xidos), teniendo la precauci&oacute;n de controlar el posible efecto del entrenamiento, e incluyendo un grupo experimental adicional que reciba suplementaci&oacute;n (tambi&eacute;n aguda) con otras sustancias antioxidantes. Este tipo de dise&ntilde;o permitir&aacute; adem&aacute;s determinar si otra sustancia antioxidante (por ejemplo, un antioxidante fisiol&oacute;gico, y por tanto menos t&oacute;xico) puede tener efectos similares.</p>     <p><b>CONCLUSIONES</b></p>     <p>Tradicionalmente los RLO han recibido gran atenci&oacute;n para quienes estudian la fisiolog&iacute;a del esfuerzo f&iacute;sico porque se les ha considerado delet&eacute;reos. Sin embargo, en la actualidad se sabe que pueden ser producidos de manera controlada en respuesta a la hipoxia y activar genes inducibles por la hipoxia mediante la estabilizaci&oacute;n del HIF-1&alpha;. Teniendo en cuenta que el ejercicio f&iacute;sico desde moderado a intenso, ya sea isot&oacute;nico o isom&eacute;trico, realizado en condiciones de normoxia o hipoxia ambiental, disminuye significativamente la pO<sub>2</sub> intracelular muscular, se ha planteado que los RLO pueden en realidad estar mediando las respuestas adaptativas al ejercicio. Asimismo, se sabe que los RLO pueden modificar la capacidad contr&aacute;ctil del m&uacute;sculo, y que de hecho existe un nivel &oacute;ptimo de RLO donde la capacidad contr&aacute;ctil es m&aacute;xima. Por encima o por debajo de dicho nivel la contractilidad se encuentra disminuida.</p>     <p>Lo anterior ayuda a explicar por qu&eacute; la suplementaci&oacute;n antioxidante no mejora el desempe&ntilde;o, porque en realidad estar&iacute;a interfiriendo con la respuesta fisiol&oacute;gica al ejercicio y porque es dif&iacute;cil que lleve la concentraci&oacute;n de RLO justo al nivel &oacute;ptimo para la contractilidad. No obstante, un conocido medicamento antioxidante, la NAC, s&iacute; parece tener efectos favorables sobre el desempe&ntilde;o: disminuye la fatigabilidad muscular cuando es administrado por v&iacute;a endovenosa. El mecanismo de su acci&oacute;n es la protecci&oacute;n de la actividad de la bomba Na/K ATPasa muscular, pero m&aacute;s all&aacute; de esto, es posible inferir que sea capaz de promover la estabilizaci&oacute;n del HIF-1&alpha;, y simult&aacute;neamente mitigar el estr&eacute;s oxidativo; dicho en otras palabras imitar los efectos fisiol&oacute;gicos de los RLO, pero sin producir sus efectos indeseados. Por tanto, es necesario estudiar detalladamente los efectos de la NAC sobre el HIF-1&alpha;, sobre los genes que &eacute;l activa y que son importantes en la adaptaci&oacute;n al ejercicio, y sobre los marcadores de estr&eacute;s oxidativo. Tambi&eacute;n es necesario determinar si alguna otra sustancia antioxidante (preferiblemente fisiol&oacute;gica, en lugar de un f&aacute;rmaco como la NAC) puede ejercer este efecto ben&eacute;fico con miras a dise&ntilde;ar una estrategia de suplementaci&oacute;n antioxidante ergog&eacute;nica efectiva y poco t&oacute;xica.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>REFERENCIAS</b></p></font> <font face="Arial" size="-1">    <!-- ref --><p><a name="1"></a>1. Dr&ouml;ge W. Free radicals in the physiological control of cell function. Physiol Rev. 2002; 82: 47-95.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S1657-9534200800030000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="2"></a>2. Allen RG, Trensini M. Oxidative stress and gene regulation. Free Radic Biol Med. 2000; 28: 463-99.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S1657-9534200800030000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="3"></a>3. Harrison DG, Griendling KK, Landmesser U, Hornig B, Drexler H. Role of oxidative stress in atherosclerosis. Am J Cardiol. 2003; 91: 7A-11A.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S1657-9534200800030000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="4"></a>4. Hasselwander O, Young IS. Oxidative stress in chronic renal failure. Free Radic Res. 1998; 29: 1-11.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S1657-9534200800030000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="5"></a>5. Brownlee M. A radical explanation for glucose-induced beta cell dysfunction. 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Colomb Med. 2005; 36: 275-80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S1657-9534200800030000800017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="18"></a>18. Peake, J Suzuki K. Neutrophil activation, antioxidant supplements and exercise-induced oxidative stress. Exerc Immunol Rev. 2004; 10: 129-41.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S1657-9534200800030000800018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="19"></a>19. Suzuki K, Sato H, Kikuchi T, Abe T, Nakaji S, Sugawara K, et al. Capacity of circulating neutrophils to produce reactive oxygen species alter exhaustive exercise. J Appl Physiol. 1996; 81: 1213-22.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S1657-9534200800030000800019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="20"></a>20. Di Meo S, Venditti P. Mitochondria in exercise-induced oxidative stress. Biol Signals Recept. 2001; 10: 125-40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S1657-9534200800030000800020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="21"></a>21. Chandel NS, Budinger GR. The cellular basis for diverse responses to oxygen. Free Radic Biol Med. 2007; 42: 165-74.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S1657-9534200800030000800021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="22"></a>22. Guzy RD, Schumacker PT. Oxygen sensing by mitochondria at complex III: the paradox of increased reactive oxygen species during hypoxia. Exp Physiol. 2006; 91: 807-19.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S1657-9534200800030000800022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="23"></a>23. Ke Q, Costa M. Hipoxia-inducible factor 1 (HIF-1). Mol Pharmacol. 2006; 70: 1469-80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S1657-9534200800030000800023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="24"></a>24. Hirsila M, Koivunen P, Gunzler V, Kivirikko KI, Myllyharju J. Characterization of the human prolyl-4-hydroxylases that modify the hypoxia.inducible factor. J Biol Chem. 2003; 278: 30772-80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S1657-9534200800030000800024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="25"></a>25. Huang LE, Gu J, Schau M, Bunn HF. Regulation of hypoxia-inducible factor 1 alpha is mediated by an O<sub>2</sub>-dependent degradation domain via the ubiquitin-proteasome pathway. Proc Natl Acad Sci USA. 1998; 95: 7987-92.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S1657-9534200800030000800025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="26"></a>26. Asikainen TM, Schneider BK, Waleh NS, Clyman RI, Ho WB, Flippin LA, et al. Activation of Hypoxia-inducible factors in hyperoxia through prolyl-4-hydroxylases blockade in cells and explants of primate lung. Proc Natl Acad Sci USA. 2005; 102: 10212-17.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S1657-9534200800030000800026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="27"></a>27. Ameln H, Gustafsson T, Sundberg CJ, Okamoto K, Jansson E, Poellinger L, et al. Physiological activation of hypoxia inducible factor-1 in human skeletal muscle. FASEB J. 2005; 19: 1009-11.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S1657-9534200800030000800027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="28"></a>28. Xu KY, Zweier JL, Becker LC. Oxygen-free radicals directly attack the ATP binding site of the cardiac Na/K-ATPase. Ann NY Acad Sci. 1997; 834: 680-3.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S1657-9534200800030000800028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="29"></a>29. Xu KY, Zweier JL, Becker LC. Hydroxyl radicals inhibits sarcoplasmic reticulum Ca(2+)ATPase function by direct attack on the ATP binding site. Circ Res. 1997; 80: 76-81.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S1657-9534200800030000800029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="30"></a>30. K&ouml;ncz&ouml;l F, Lorinczy D, Belagyi J. Effect of oxygen free radicals on myosin in muscle fibers. FEBS Lett. 1998; 427: 341-4.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S1657-9534200800030000800030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="31"></a>31. Andrade FH, Reid MB, Allen DG, Westerblad H. Effect of hydrogen peroxide and dithiothreitol on contractile function of single skeletal muscle fibers from the mouse. J Physiol. 1998; 509: 567-75.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S1657-9534200800030000800031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="32"></a>32. Reid MB. Redox modulation of skeletal muscle contraction: what we know and what we don&acute;t. J Appl Physiol. 2001; 90: 724-31.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S1657-9534200800030000800032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="33"></a>33. Andrade FS, Reid MB, Westerblad H. Contractile response to low peroxide concentrations: myofibrillar calcium sensivity as a likely target for redox-modulation os skeletal muscle function. FASEB J. 2000; 15: 309-11.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S1657-9534200800030000800033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="34"></a>34. Tiidus PM, Houston ME. Vitamin E status and response to exercise training. Sports Med. 1995; 20: 12-23.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S1657-9534200800030000800034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="35"></a>35. Beaton LJ, Allan DA, Tarnopolsky MA, Tiiuds PM, Phillips SM. Contraction-induced muscle damage is unaffected by vitamin E supplementation. Med Sci Sports Exerc. 2002; 34: 798-805.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S1657-9534200800030000800035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="36"></a>36. Khassaf M, McArdle A, Esanu C, Vasilaki A, McArdle F, Griffiths RD, et al. Effect of vitamin C supplements on antioxidant defence and stress proteins in human lymphocytes and skeletal muscle. J Physiol. 2003; 549(Pt 2): 645-52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S1657-9534200800030000800036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="37"></a>37. G&oacute;mez-Cabrera MC, Dom&eacute;nech E, Romagnoli M, Arduini A, Borras C, Pallardo FV, et al. Oral administration of vitamin C decreases muscle mitochondrial biog&eacute;nesis and ampres training-induced adaptations in endurance performance. Am J Clin Nutr. 2008; 87: 142-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S1657-9534200800030000800037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="38"></a>38. G&oacute;mez-Cabrera MC, Mart&iacute;nez A, Santangelo G, Pallardo FV, Sastre J, Vi&ntilde;a J. Oxidative stress in marathon runnners: interest of antioxidant supplmentation. Br J Nutr. 2006; 96 Suppl 1: 31-3.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S1657-9534200800030000800038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="39"></a>39. G&oacute;mez-Cabrera MC, Borras C, Pallardo FV, Sastre J, Li JJ, Vi&ntilde;a J. Decreasing xanthine-oxidase-mediated oxidative stress prevents useful cellular adaptations to exercise in rats. J Physiol. 2005; 567 (pt 1): 113-20.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S1657-9534200800030000800039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="40"></a>40. Jackson ML. Free radicals generated by contracting muscle: By-products of metabolism or key regulators of muscle function? Free Radic Biol Med. 2008; 44: 132-41.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S1657-9534200800030000800040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="41"></a>41. Braun B, Clarkson PM, Freedson PS, Kohl RL. Effects of coenzyme Q10 supplementation on exercise performance, VO<sub>2</sub> max, and lipid peroxidation in trained cyclists. Int J Sport Nutr. 1991; 1: 353-65.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S1657-9534200800030000800041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="42"></a>42. Bryant RJ, Ryder J, Martino P, Kim J, Carig BW. Effects of vitamin E and C supplementation alone or in combination on exercise-induced lipid peroxidation in trained cyclists. J Strength Cond Res. 2003; 17: 792-800.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S1657-9534200800030000800042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="43"></a>43. Zhou S, Zhang Y, Davie A, Marshall-Gradisnik S, Hu H, Wang J, Brushett D. Muscle and plasma coenzyme Q10 concentration, aerobic power and exercise economy of healthy men in response to four weeks of supplementation. J Sports Med Phys Fitness. 2005; 45: 337-46.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S1657-9534200800030000800043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="44"></a>44. Medved I, Brown MJ, Bjorksten AR, McKenna MJ. Effects of intravenous N-acetylcysteine infussion on time to fatigue and potassium regulation during prolonged cycling exercise. J Appl Physiol. 2004; 96: 211-17.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S1657-9534200800030000800044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="45"></a>45. McKenna MJ, Medved I, Goodman CA, Brown MJ, Bjorksten AR, Murphy KT, et al. N-acetylcysteine attenuates the decline in muscle Na, K puma activity and delays fatigue during prolonged exercise in humans. J Appl Physiol. 2006; 576: 279-88.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S1657-9534200800030000800045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="46"></a>46. Hildebrandt W, Alexander S, B&auml;rtsch P, Dr&ouml;ge W. Effect of N-acetyl-cysteine on the hypoxic ventilatory response and erythropoietin production: linkage between plasma thiol redox state and O<sub>2</sub> chemosensitivity. Blood. 2002; 99: 1552-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S1657-9534200800030000800046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="47"></a>47. 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