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<journal-title><![CDATA[CES Medicina Veterinaria y Zootecnia]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Diseño y evaluación de una prueba de PCR para detección de Brucella spp. y Brucella abortus]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Design and evaluation of a PCR test for detection of Brucella spp. and Brucella abortus]]></article-title>
<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[Desenho e avaliação de um teste de PCR para a detecção de Brucella spp. e Brucella abortus]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Abstract Problem: brucelosis is a zoonosis that affects livestock and livestock workers. This disease is characterized by the difficulties for its early diagnosis. Sensitivity of marrow and blood cultures as well as serological tests (Rose Bengal and ELISA) ranges between 15 and 70%, depending on the stage of infection. Development of rapid, sensitive, and specific diagnostic methods using molecular techniques such as PCR would allow timely diagnose and treatment of the disease. Objective: To develop and evaluate two PCR tests for detection of Brucella spp. and B. abortus. Materials and methods: primers to detect ugpA gene were designed and evaluated using Primer3 and others reported in the literature. Sensitivity and specificity were calculated for 3 groups (G) of human and bovine samples using Bayes' theorem. G1 consisted of healthy human and healthy bovine samples (30 serum and 30 blood samples of each species); bovine blood samples were inoculated with Brucella abortus. G2 consisted of healthy human and healthy bovine samples (30 serum and 30 blood samples of each); bovine blood samples were inoculated with Salmonella typhi, Escherichia coli, Klebsiella sp., Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus, Streptococcus pneumonia, and Enterococcus sp. G3 consisted of 60 serum and 60 blood samples from asymptomatic bovines, as well as 60 serum and 60 blood samples from asymptomatic humans. Results: sensitivity and specificity of the PCR test to detect Brucella sp. and Brucella abortus reached 100% in human and bovine samples. Conclusiones: considering the high sensitivity and specificity observed in the PCR tests studied, we recommend doing a follow up of the test in a clinical trial to evaluate its performance in infected humans and animals.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[Resumo Problema: é difícil o diagnostico oportuno da brucelose, zoonose que afeta o gado e os trabalhadores pecuários. Os testes serológicos Rosa de Bengala e ELISA, e a hemocultura e mielocultura têm sensibilidades entre 15 e 70% dependendo do estádio da infecção. O desenvolvimento de métodos diagnósticos rápidos, sensíveis e específicos utilizando técnicas moleculares como a PCR, permite diagnosticar e tratar oportunamente esta doença. Objetivo: desenvolver e avaliar dois testes de PCR para a detecção de Brucella spp. e B. abortus. Materiais e métodos. Desenharam-se e avaliaram-se iniciadores utilizando o software Primer3 para detectar o gene ugpA, também se avaliaram outros iniciadores reportados previamente na literatura. Calculou-se a sensibilidade e especificidade do teste por PCR usando três grupos (G) de amostras humanas e bovinas utilizando o teorema de Bayes: G1: 30 amostras de soro e 30 de sangue de humanos sãos e 30 de soro e 30 de sangue de bovinos sãos, inoculadas com Brucella abortus; G2: 30 amostras de soro e 30 de sangue de humanos sãos e 30 de soro e de 30 sangue de bovinos sãos inoculadas com Salmonella Typhi, Escherichia coli, Klebsiella sp., Psudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus, Streptococcus pneumoniae e Enterococcus sp. G3: 60 amostras de soro e 60 de sangue de bovinos e 60 amostras de soro e 60 sangue de humanos assintomáticos. Resultados. Obteve-se uma sensibilidade e especificidade de detecção da Brucella spp. e Brucella abortus de 100% em amostras humanas e bovinas. Conclusões: pela alta sensibilidade e especificidade encontrada com o teste de PCR estudado, recomenda-se continuar um estudo clínico de aplicação para avaliar seu comportamento em amostras de pacientes e animais infetados.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="verdana">      <p align="center"><font size="4"><b>Dise&ntilde;o y evaluaci&oacute;n de una prueba de PCR para detecci&oacute;n de Brucella spp. y Brucella abortus</b></font></p>      <p align="center"><font size="3"><b><i>Design and evaluation of a PCR test for detection of <i>Brucella spp. and Brucella abortus</i><Sup>*</Sup></i></b></font></p>      <p align="center"><font size="3"><b><i>Desenho e avalia&ccedil;&atilde;o de um teste de PCR para a detec&ccedil;&atilde;o de Brucella spp. e Brucella abortus</i></b></font></p>      <p align="center">*Miryan Margot S&aacute;nchez-Jim&eacute;nez<Sup>1</Sup>, Bact, MSc; Nora Cardona-Castro<Sup>1*</Sup>, MD, MSc</p>      <p>* Autor para correspondencia: Nora Cardona-Castro. Universidad CES. E-mail: <a href="mailto:ncardona@ces.edu.co">ncardona@ces.edu.co</a>.</p>      <p><Sup>1</Sup>Grupo Medicina Tropical, Instituto Colombiano de Medicina Tropical - Universidad CES. Carrera 43&ordf; # 52 Sur 99, Sabaneta, Antioquia.</p>      <p>(Recibido: 1 de marzo, 2013; aceptado: 26 de octubre, 2013)</p>      <p>*Para citar este art&iacute;culo: S&aacute;nchez-Jim&eacute;nez MM, Cardona-Castro N. Dise&ntilde;o y evaluaci&oacute;n de una prueba de PCR para detecci&oacute;n de Brucella spp. y Brucella abortus. Rev CES Med Zootec. 2013; Vol 8 (2): 73-82.    <br> <i>*Basado en el n&uacute;mero de casos humanos reportados y depende de una combinaci&oacute;n de exposici&oacute;n al pat&oacute;geno e infectividad.</i></p>  <hr>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Resumen</b></p>      <p><i>Problema:</i> el diagn&oacute;stico oportuno de la brucelosis, zoonosis que afecta ganado y trabajadores pecuarios, es dif&iacute;cil. Las pruebas serol&oacute;gicas Rosa de Bengala y ELISA, el hemocultivo y mielocultivo, tienen sensibilidades entre 15-70% dependiendo del estad&iacute;o de la infecci&oacute;n. El desarrollo de m&eacute;todos diagn&oacute;sticos r&aacute;pidos, sensibles y espec&iacute;ficos utilizando t&eacute;cnicas moleculares como la PCR, permite diagnosticar y tratar oportunamente esta enfermedad. <i>Objetivo:</i> Desarrollar y evaluar dos pruebas de PCR para detecci&oacute;n de <i>Brucella spp</i>. y <i>B. abortus. Materiales y m&eacute;todos:</i> se dise&ntilde;aron y evaluaron iniciadores para detectar el gen <i>ugpA</i> utilizando Primer3, y otros reportados en la literatura. Se calcul&oacute; sensibilidad y especificidad, usando 3 grupos (G) de muestras humanas y bovinas utilizando el teorema de Bayes: G1:30 muestras de suero y 30 de sangre de humanos sanos y 30 de suero y 30 de sangre de bovinos sanos, inoculadas con <i>Brucella abortus</i>; G2: 30 muestras de suero y 30 de sangre de humanos sanos y 30 de suero y de 30 sangre de bovinos sanos inoculadas con <i>Salmonella Typhi, Escherichia coli, Klebsiella sp., Psudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus, Streptococcus pneumoniae y Enterococcus sp.</i> G3: 60 muestras de suero y 60 sangre de bovinos y 60 muestras de suero y 60 sangre de humanos asintom&aacute;ticos. Resultados: se obtuvo una sensibilidad y especificidad de detecci&oacute;n de <i>Brucella sp.</i> y <i>Brucella abortus</i> del 100% en muestras humanas y bovinas. Conclusiones: por la alta sensibilidad y especificidad encontradas en las pruebas de PCR estudiadas, se recomienda continuar un estudio cl&iacute;nico de aplicaci&oacute;n para evaluar su comportamiento en muestras de pacientes y animales infectados.</p>      <p><b>Palabras clave:</b> <i>Brucella spp, B. abortus, PCR, zoonosis.</i></p>  <hr>     <p><b>Abstract</b></p>      <p><i>Problem:</i> brucelosis is a zoonosis that affects livestock and livestock workers. This disease is characterized by the difficulties for its early diagnosis. Sensitivity of marrow and blood cultures as well as serological tests (Rose Bengal and ELISA) ranges between 15 and 70%, depending on the stage of infection. Development of rapid, sensitive, and specific diagnostic methods using molecular techniques such as PCR would allow timely diagnose and treatment of the disease. Objective: To develop and evaluate two PCR tests for detection of <i>Brucella</i> spp. and <i>B. abortus. Materials and methods:</i> primers to detect <i>ugpA</i> gene were designed and evaluated using Primer3 and others reported in the literature. Sensitivity and specificity were calculated for 3 groups (G) of human and bovine samples using Bayes' theorem. G1 consisted of healthy human and healthy bovine samples (30 serum and 30 blood samples of each species); bovine blood samples were inoculated with <i>Brucella abortus</i>. G2 consisted of healthy human and healthy bovine samples (30 serum and 30 blood samples of each); bovine blood samples were inoculated with <i>Salmonella typhi, Escherichia coli, Klebsiella sp., Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus, Streptococcus pneumonia,</i> and <i>Enterococcus sp</i>. G3 consisted of 60 serum and 60 blood samples from asymptomatic bovines, as well as 60 serum and 60 blood samples from asymptomatic humans. Results: sensitivity and specificity of the PCR test to detect <i>Brucella sp</i>. and <i>Brucella abortus</i> reached 100% in human and bovine samples. <i>Conclusiones:</i> considering the high sensitivity and specificity observed in the PCR tests studied, we recommend doing a follow up of the test in a clinical trial to evaluate its performance in infected humans and animals.</p>      <p><b>Key words:</b> <i>Brucella spp, B. abortus, PCR, zoonoses</i>.</p>   <hr>      <p><b>Resumo</b></p>      <p><i>Problema:</i> &eacute; dif&iacute;cil o diagnostico oportuno da brucelose, zoonose que afeta o gado e os trabalhadores pecu&aacute;rios. Os testes serol&oacute;gicos Rosa de Bengala e ELISA, e a hemocultura e mielocultura t&ecirc;m sensibilidades entre 15 e 70% dependendo do est&aacute;dio da infec&ccedil;&atilde;o. O desenvolvimento de m&eacute;todos diagn&oacute;sticos r&aacute;pidos, sens&iacute;veis e espec&iacute;ficos utilizando t&eacute;cnicas moleculares como a PCR, permite diagnosticar e tratar oportunamente esta doen&ccedil;a. <i>Objetivo:</i> desenvolver e avaliar dois testes de PCR para a detec&ccedil;&atilde;o de <i>Brucella spp</i>. e <i>B. abortus.</i> Materiais e m&eacute;todos. Desenharam-se e avaliaram-se iniciadores utilizando o software Primer3 para detectar o gene <i>ugpA</i>, tamb&eacute;m se avaliaram outros iniciadores reportados previamente na literatura. Calculou-se a sensibilidade e especificidade do teste por PCR usando tr&ecirc;s grupos (G) de amostras humanas e bovinas utilizando o teorema de Bayes: G1: 30 amostras de soro e 30 de sangue de humanos s&atilde;os e 30 de soro e 30 de sangue de bovinos s&atilde;os, inoculadas com <i>Brucella abortus</i>; G2: 30 amostras de soro e 30 de sangue de humanos s&atilde;os e 30 de soro e de 30 sangue de bovinos s&atilde;os inoculadas com <i>Salmonella Typhi, Escherichia coli, Klebsiella sp., Psudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus, Streptococcus pneumoniae e Enterococcus sp.</i> G3: 60 amostras de soro e 60 de sangue de bovinos e 60 amostras de soro e 60 sangue de humanos assintom&aacute;ticos. <i>Resultados.</i> Obteve-se uma sensibilidade e especificidade de detec&ccedil;&atilde;o da <i>Brucella spp. e Brucella abortus</i> de 100% em amostras humanas e bovinas. <i>Conclus&otilde;es:</i> pela alta sensibilidade e especificidade encontrada com o teste de PCR estudado, recomenda-se continuar um estudo cl&iacute;nico de aplica&ccedil;&atilde;o para avaliar seu comportamento em amostras de pacientes e animais infetados.</p>      <p><b>Palavras chave:</b> <i>Brucella spp, B. abortus, PCR, zoonose.</i></p>  <hr>      <p><font size="3"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La brucelosis es una importante zoonosis de impacto econ&oacute;mico, que produce graves complicaciones en animales y humanos. Es causada por bacilos Gram negativos del g&eacute;nero <i>Brucella</i>, al que pertenecen 10 especies descritas en la <a href="#tab1">tabla 1</a>. La especie de mayor patogenicidad en el humano es <i>B. melitensis</i>.</p>      <p align="center"><a name="tab1"></a><img src="img/revistas/cmvz/v8n2/v8n2a07t1.jpg"></p>      <p>La brucelosis es una enfermedad granulomatosa cr&oacute;nica causada por una bacteria intracelular<Sup>(2)</Sup>. En el ser humano la infecci&oacute;n se da por el consumo de productos derivados de animales como leche sin pasteurizar, a trav&eacute;s del contacto directo con partes de animales infectados y a trav&eacute;s de la inhalaci&oacute;n de part&iacute;culas aerosoles infectadas<Sup>(3)</Sup>. El periodo de incubaci&oacute;n var&iacute;a entre dos a 4 semanas y se clasifica desde el punto de vista cl&iacute;nico en aguda, subaguda y cr&oacute;nica<Sup>(4)</Sup>.</p>      <p>Entre los s&iacute;ntomas m&aacute;s frecuentes se encuentran decaimiento f&iacute;sico, fiebre, escalofr&iacute;os, sudoraci&oacute;n, mialgias, artralgias y cefaleas, dolor de piernas y articulaciones, irritabilidad, depresi&oacute;n e insomnio y alteraciones vasomotoras y taquicardia entre otros, que dependen del sitio anat&oacute;mico donde se ubique la bacteria<Sup>(5)</Sup>.</p>      <p>La brucelosis humana se considera una enfermedad ocupacional en trabajadores pecuarios, orde&ntilde;adores, obreros de salas de beneficio, m&eacute;dicos veterinarios y en general de todas aquellas personas que manipulan animales o material proveniente de estos sin adecuadas medidas de bioseguridad.</p>      <p>Aproximadamente medio mill&oacute;n de nuevos casos de brucelosis humana, son reportados cada a&ntilde;o en todo el mundo<Sup>(6)</Sup>, aunque se considera que este dato es un sub registro del n&uacute;mero real de casos, debido a la falta de un adecuado diagn&oacute;stico de esta enfermedad.</p>      <p>En el mundo predomina <i>B. melitensis</i> pero en Colombia se ha identificado hasta el momento solo la presencia de B. <i>abortus</i> como la principal causante de infecci&oacute;n en ganado bovino, pero no se tienen datos exactos sobre el n&uacute;mero de casos en humanos<Sup>(7)</Sup>.</p>      <p>En nuestro pa&iacute;s, la brucelosis bovina se diagnostica a trav&eacute;s de pruebas serol&oacute;gicas como la Rosa de Bengala y el Ensayo Inmunoabsorbente Ligado a Enzimas (ELISA). La brucelosis humana, adem&aacute;s de las dos pruebas anteriores, se puede diagnosticar tambi&eacute;n por cl&iacute;nica, hemocultivo y mielocultivo en medio Ruiz-Casta&ntilde;eda, siendo los cultivos las pruebas de oro<Sup>(8)</Sup>, con sensibilidades que var&iacute;an dependiendo de las pr&aacute;cticas de cada laboratorio, entre un 15 a un 70%<Sup>(9)</Sup>.</p>      <p>El desarrollo de un m&eacute;todo diagn&oacute;stico definitivo para brucelosis permanece todav&iacute;a pendiente.</p>      <p>La utilizaci&oacute;n de t&eacute;cnicas moleculares como la prueba de reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa, PCR, permiten en forma r&aacute;pida, sensible y espec&iacute;fica determinar la infecci&oacute;n en muestras cl&iacute;nicas, pues detectan directamente ADN circulante de la bacteria y no requiere que este intacta. Esta prueba se convierte en una t&eacute;cnica innovadora de f&aacute;cil realizaci&oacute;n y de m&aacute;s bajo costo y rapidez que el cultivo bacteriol&oacute;gico convencional<Sup>(10)</Sup>.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En Colombia, no se conoce con certeza el problema de salud p&uacute;blica que representa la brucelosis debido a las dificultades diagn&oacute;sticas ya que no se encuentran disponibles a&uacute;n comercialmente m&eacute;todos r&aacute;pidos, sensibles y espec&iacute;ficos. Se evidencia as&iacute; la necesidad de disponer de un m&eacute;todo de diagn&oacute;stico con las caracter&iacute;sticas mencionadas, para detectar directamente de la muestra cl&iacute;nica a <i>Brucella sp</i>.</p>      <p>En este trabajo se dise&ntilde;aron y evaluaron iniciadores para la detecci&oacute;n del g&eacute;nero <i>Brucella</i> y para <i>B. abortus</i> directamente de muestras de sangre total y suero humanas y bovinas inoculadas experimentalmente, con el fin de calcular la sensibilidad y especificidad bajo condiciones de laboratorio, en los diferentes grupos de muestras.</p>      <p><font size="3"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>      <p><i><b>Tipo de Estudio</b></i></p>      <p>Este estudio se dise&ntilde;&oacute; de acuerdo a las normas para evaluar una prueba (Prueba de una prueba)<Sup>(11)</Sup>.</p>      <p><i><b>Muestra</b></i></p>      <p>La muestra para probar la sensibilidad (S), la especificidad (E), el valor predictivo positivo (VPP) y el valor predictivo negativo (VPN) de la PCR, se determin&oacute; utilizando una prevalencia de la enfermedad del 50%. Se seleccionaron tres grupos de muestras, cada uno de ellos con diferentes caracter&iacute;sticas:</p>      <blockquote>     <p>Grupo 1: 30 muestras de suero y 30 de sangre total de bovinos y 30 muestras de suero y 30 de sangre total de voluntarios humanos sanos, que se inocularon con <i>B. abortus</i> en diferentes concentraciones conocidas. En total en este grupo tuvimos 120 muestras, 60 de humanos y 60 de bovinos sanos.</p>      <p>Grupo 2: 30 muestras de suero y 30 de sangre total de bovinos y 30 muestras de suero y 30 de sangre total de voluntarios humanos sanos, que se contaminaron con in&oacute;culos controlados de las bacterias: <i>S. Typhi, E. coli, Klebsiella spp., P. aeruginosa, S. aureus, S. pneumoniae y Enterococcus sp.</i> Total 120 muestras, 60 de bovinos y 60 de humanos sanos.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Grupo 3: 60 muestras de suero y 60 de sangre total de bovinos asintom&aacute;ticos y 60 muestras de suero y 60 de sangre total de voluntarios humanos asintom&aacute;ticos para brucelosis y quienes no presentaban ning&uacute;n reporte de problemas de salud. Total 240 muestras.</p> </blockquote>      <p>Las muestras de sangre total y suero contaminadas fueron evaluadas por hemocultivo y PCR.</p>      <p><i><b>Aspectos &eacute;ticos</b></i></p>      <p>Este proyecto se someti&oacute; al Comit&eacute; de &eacute;tica del Instituto Colombiano de Medicina Tropical, el cual lo consider&oacute; de m&iacute;nimo riesgo. Las muestras bovinas utilizadas pertenecen al banco de muestras del Instituto Colombiano de Medicina Tropical - CES. Todas las personas participantes en el estudio, firmaron un consentimiento informado que cumple con los lineamientos de la resoluci&oacute;n 008430 de 1993 del Ministerio de Salud de Colombia.</p>      <p>Las bacterias que se usaron para contaminar las muestras pertenecen al cepario del ICMT-CES. La cepa de <i>B. abortus</i> se extrajo de la vacuna <i>Brucella abortus</i> cepa 19.</p>      <p><i><b>Contaminaci&oacute;n de las muestras</b></i></p>      <p>Los aislamientos bacterianos empleados, fueron cepas confirmadas por m&eacute;todos bacteriol&oacute;gicos convencionales. Cada muestra se infect&oacute; con un in&oacute;culo de 106 Unidades Formadoras de Colonias/ml (UFC/ml) obtenido de la siguiente manera: en el caso de las bacterias <i>S. Typhi, E. coli, Klebsiella spp., P. aeruginosa, S. aureus, S. pneumoniae y Enterococcus sp</i> , se tom&oacute; una colonia aislada en agar sangre o MacConkey y se sembr&oacute; en soluci&oacute;n salina, se ley&oacute; a 650 nm en espectrofot&oacute;metro, para determinar el n&uacute;mero de colonias, este in&oacute;culo se prepar&oacute; de acuerdo al manual de la Asociaci&oacute;n Americana de Microbiolog&iacute;a (12). Con base en este in&oacute;culo se realizaron 3 diluciones seriadas y se contaminaron las muestras de sangre y suero con 10 &micro;l; estas se incubaron a 37 &ordm;C por 12 horas. Se realiz&oacute; un control de in&oacute;culo sembrando 10 &micro;l de la muestra infectada para recuento en agar Sangre o MacConkey.</p>      <p>Para infectar las muestras con B. abortus se inocularon las muestras de sangre y suero con 25 &mu;l de la vacuna <i>Brucella abortus</i> cepa 19, la cual contiene 10<Sup>10</Sup> UFC/ml vivas. (<a href="http://www.vecol.com.co/sitio/index.php?tipoDoc=FinalProducto&amp;idProducto=94&amp;categoria=15" target="_blank">http://www.vecol.com.co/sitio/index.php?tipoDoc=FinalProducto&amp;idProducto=94&amp;categoria=15</a>)</p>      <p><b><i>Hemocultivos</i></b></p>      <p>Cinco mililitros de las muestras de sangre inoculadas con <i>B. abortus</i>, se sembraron en el medio bif&aacute;sico Ruiz-Casta&ntilde;eda (tripticasa soya agar y tripticasa soya caldo). Los cultivos se incubaron a 37 &ordm;C en atm&oacute;sfera de CO<Sub>2</Sub> al 5% y se revisaron peri&oacute;dicamente para detectar crecimiento por turbidez o hem&oacute;lisis, momentos en los que se repicaron en agar sangre. Si los cultivos despu&eacute;s de una semana permanec&iacute;an negativos, se realizaban repiques ciegos a los 10, 20 y 30 d&iacute;as.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los hemocultivos para las muestras infectadas con <i>S. Typhi, E. coli, Klebsiella spp., P. aeruginosa, S. aureus, S. pneumoniae y Enterococcus sp,</i> se realizaron de la siguiente forma: cada muestra de sangre total se sembr&oacute; en 3 frascos de tripticasa soya caldo, estos se incubaron a 37 &ordm;C hasta observar crecimiento y posteriormente se repicaron en agar sangre y agar Macconkey.</p>      <p><b><i>Extracci&oacute;n del ADN bacteriano</i></b></p>      <p>Para realizar el proceso de extracci&oacute;n se probaron tres protocolos: el descrito por Miller y colaboradores<Sup>(13) </Sup>con modificaciones de Morata y colaboradores<Sup>(14)</Sup>, el estuche comercial Wizard&reg; (Promega Research) y el m&eacute;todo de buffer de lisis descrito por Haque y colaboradores<Sup>(15)</Sup>. Los tres m&eacute;todos presentaron buenos resultados, pero por facilidad y menor consumo de tiempo se decidi&oacute; utilizar el m&eacute;todo propuesto por Haque (datos no mostrados).</p>      <p>Brevemente, cada muestra fue centrifugada a 12,000 rpm por cinco minutos a temperatura ambiente para separar el plasma o suero. Un ml de buffer de lisis (0.2% Triton X100 en Tris HCL mas EDTA pH 8.0) se adicion&oacute; al sedimento. La mezcla se aspiro varias veces y se centrifug&oacute; a 12,000 rpm a temperatura ambiente por seis minutos, el sobrenadante fue descartado y el procedimiento se repiti&oacute; nuevamente. El sedimento fue lavado una vez con agua destilada y centrifugado a 12,000 rpm a temperatura ambiente por 1 minuto. El sobrenadante se descart&oacute; y el sedimento fue resuspendido en 100 &mu;l de agua destilada ultra pura est&eacute;ril. Los tubos fueron sellados y se pusieron en agua en ebullici&oacute;n por 20 minutos y se dejaron enfriar a temperatura ambiente antes de realizar la PCR.</p>      <p>Se determin&oacute; la concentraci&oacute;n de ADN de cada muestra por espectrofotometr&iacute;a. Cada muestra de ADN se almacen&oacute; a -20 &ordm;C hasta ser usada para la amplificaci&oacute;n.</p>      <p><b><i>Iniciadores</i></b></p>      <p>Se dise&ntilde;aron iniciadores espec&iacute;ficos del g&eacute;nero <i>Brucella sp</i>. utilizando el software Primer3, disponible en <a href="http://frodo.wi.mit.edu/cgi-bin/primer3/primer3_www.cgi" target="_blank">http://frodo.wi.mit.edu/cgi-bin/primer3/primer3_www.cgi</a>. Los iniciadores se desarrollaron con base en la secuencia del gen <i>ugpA</i> (n&uacute;mero de acceso GenBank L28044.1), que es una lipoprote&iacute;na de membrana externa de <i>Brucella sp</i>. Las secuencias de los iniciadores dise&ntilde;ados son:</p>      <blockquote>     <p><i>ugpA</i> Forward: 5'-TTGTTTTGTCGCATTTTCCA-3'</p>      <p><i>ugpA</i> Reverse: 5'-GGATCGAGAAACCATTTCCA-3'</p> </blockquote>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Estos cebadores amplifican una regi&oacute;n de 461 pares de bases.</p>      <p>Para identificar la especie <i>B. abortus</i> se usaron los iniciadores dise&ntilde;ados por Ratushna <i>et al.</i>, previamente publicados<Sup>(16)</Sup> y espec&iacute;ficos para <i>B. abortus:</i></p>      <blockquote>     <p>BruAb2_0168 Fw: TGCAGCTCACGGATAATTTG </p>      <p>BruAb2_0168 Rv: ACACCTTGTCCACGCTCAC</p> </blockquote>      <p>Estos iniciadores amplifican una regi&oacute;n espec&iacute;fica de 783 pares de bases en el ORF BruAb2_0168 (n&uacute;mero de acceso GenBank: AE017224.1) que codifica para una prote&iacute;na transportadora de membrana externa.</p>      <p><i>Condiciones de la amplificaci&oacute;n.</i> Para la PCR, se utilizaron 40 ml de supermix (Invitrogen<sup>&reg;</sup>) 0,5 ml de cada iniciador a una concentraci&oacute;n de 10 &mu;M y 9 &mu;l de ADN, independientemente de la concentraci&oacute;n de ADN, para un volumen final de reacci&oacute;n de 50 &mu;l.</p>      <p>Se utiliz&oacute; un Primus 96 plus Termal Cycler (MWG AG Biotech, Germany) para amplificar el ADN sometiendo las muestras al siguiente protocolo: ciclo 1, desnaturalizaci&oacute;n inicial a 94 &ordm;C por 5 minutos; ciclo 2, paso 1 a 94 &ordm;C por 1 minuto; ciclo 2, paso 2 a una temperatura de 56 &ordm;C por 1 minuto; ciclo 2, paso 3, a 72 &ordm;C por 1 minuto; el ciclo dos se repiti&oacute; 35 veces; ciclo 3, extensi&oacute;n final, a 72 &ordm;C por 10 minutos y 4 &ordm;C indefinidamente. Cada muestra se amplific&oacute; por duplicado. Se procesaron adicionalmente un control positivo (<i>Brucella</i> cepa vacunal 19) y dos controles negativos que no inclu&iacute;an ADN.</p>      <p><i><b>Detecci&oacute;n de productos de amplificaci&oacute;n</b></i></p>      <p>Se fraccionaron por electroforesis a 100 Voltios por una hora, 12 &mu;l de cada producto de amplificaci&oacute;n en geles de agarosa al 1% te&ntilde;ida con Sybr Safe (Invitrogen), en soluci&oacute;n TAE 1X. En las muestras positivas para el gen <i>ugpA</i> se observ&oacute; una banda de 461 pb y en las positivas para B. abortus se observ&oacute; una banda de 783 pb.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><i><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></i></p>      <p>La evaluaci&oacute;n de la PCR (prueba de una prueba) se determin&oacute; con la sensibilidad (S), especificidad (E), valor predictivo positivo (VPP) y valor predictivo negativo (VPN) aplicando el teorema de Bayes<Sup>(17)</Sup>. <a href="#tab2">La tabla 2</a> muestra c&oacute;mo se evaluaron los aspectos ya enunciados.</p>      <p align="center"><a name="tab2"></a><img src="img/revistas/cmvz/v8n2/v8n2a07t2.jpg"></p>      <p><font size="3"><b>Resultados</b></font></p>      <p><b><i>Grupo 1:</i></b></p>      <p>Las 30 muestras de sangre y suero tanto de bovinos como de humanos contaminadas con <i>Brucella abortus,</i> las 30 fueron positivas tanto por cultivo en medio Ruiz Casta&ntilde;eda como para las PCR del gen <i>ugpA</i> y el ORF BruAb2_0168.</p>      <p><b><i>Grupo 2:</i></b></p>      <p>Las 30 muestras de suero y sangre total de bovinos y las 30 muestras de suero y sangre total de voluntarios humanos sanos infectadas con otras bacterias fueron positivas por cultivo para el crecimiento de las bacterias con las que fueron contaminadas y PCR negativas para <i>Brucella sp</i> y <i>B. abortus</i>, no se observ&oacute; ninguna banda, ni se presentaron reacciones inespec&iacute;ficas para ninguna de las dos pruebas de PCR.</p>      <p><b><i>Grupo 3:</i></b></p>      <p>Las 60 muestras de suero y sangre total de bovinos y 60 muestras de suero y sangre total de voluntarios humanos asintom&aacute;ticos, fueron hemocultivo y PCR negativas.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En la <a href="#fig1">Figura 1</a> se puede observar la amplificaci&oacute;n para muestras positivas para <i>Brucella sp</i>. y <i>Brucella abortus</i> y en la Figura 2 la ausencia de amplificaci&oacute;n en  muestras del grupo 2 ( infectadas con otras enterobacterias).</p>      <p align="center"><a name="fig1"></a><img src="img/revistas/cmvz/v8n2/v8n2a07f1.jpg"></p>      <p>Con base en estos datos, las dos pruebas de PCR evaluadas comparadas con el hemocultivo (prueba de oro), mostr&oacute; a nivel de estandarizaci&oacute;n en el laboratorio S, E, VPP y VPN del 100%, respectivamente (<a href="#tab3">Tablas 3</a> y <a href="#tab4">4</a>).</p>      <p align="center"><a name="tab3"></a><img src="img/revistas/cmvz/v8n2/v8n2a07t3.jpg"></p>      <p align="center"><a name="tab4"></a><img src="img/revistas/cmvz/v8n2/v8n2a07t4.jpg"></p>      <p><font size="3"><b>Discusi&oacute;n</b></font></p>      <p>El diagn&oacute;stico de brucelosis requiere la confirmaci&oacute;n a trav&eacute;s de pruebas serol&oacute;gicas o el aislamiento de la bacteria. El cultivo presenta problemas de sensibilidad y rapidez del resultado, dependiendo de la fase de la enfermedad, la especie de <i>Brucella,</i> el medio de cultivo utilizado, la cantidad de la bacteria circulando en el torrente sangu&iacute;neo que determina el in&oacute;culo, y el tipo de t&eacute;cnica de cultivo utilizado<Sup>(10)</Sup>.</p>      <p>La utilizaci&oacute;n de t&eacute;cnicas de PCR ha mejorado la rapidez y el diagn&oacute;stico de <i>Brucella</i>, pero la sensibilidad y especificidad de las diferentes pruebas var&iacute;a entre laboratorios por problemas como la estandarizaci&oacute;n de la preparaci&oacute;n de la muestra, los genes blancos y los iniciadores seleccionados y los m&eacute;todos de detecci&oacute;n empleados<Sup>(10)</Sup>.</p>      <p>Con la prueba de PCR para el gen <i>ugpA</i> probada en esta investigaci&oacute;n, las 30 muestras de sangre y 30 de suero de humanos tanto como las 30 muestras de sangre y 30 de suero de bovinos, infectadas con <i>B. abortus,</i> fueron positivas (100%) por PCR.</p>      <p>La PCR para detecci&oacute;n a nivel de g&eacute;nero presenta la misma sensibilidad (100%) pero diferente especificidad que la desarrollada por Queipo-Ortu&ntilde;o <i>et al.</i><Sup>(18)</Sup>, quienes reportan una especificidad del 98.3%, por la presencia de un falso positivo, esto se puede explicar a que la prueba de Queipo-Ortu&ntilde;o fue aplicada directamente en muestras cl&iacute;nicas y la de este trabajo en muestras contaminadas bajo condiciones de laboratorio. En casos de enfermedad real, se podr&iacute;an presentar falsos negativos en los resultados de PCR, en muestras de pacientes que hayan recibido antibi&oacute;ticos o por la presencia de sustancias interferentes en las muestras como la misma hemoglobina, que puede inhibir la prueba.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En un estudio posterior realizado por Morata <i>et al.</i><Sup>(14) </Sup>realizaron el proceso de optimizaci&oacute;n de esta prueba y obtuvieron una sensibilidad y especificidad del 100% y 98% respectivamente, pero al intentar ser reproducida por Navarro y colaboradores <i>(19)</i>, esta prueba solo present&oacute; un 50% de sensibilidad y un 60% de especificidad, lo que evidencia las diferencias entre laboratorios que es com&uacute;n para este tipo de pruebas.</p>      <p>En esta investigaci&oacute;n se utilizaron los iniciadores reportados por Ratushna<i> et al.</i><Sup>(16)</Sup> con los cuales se puede identificar tambi&eacute;n la especie <i>B. abortus,</i> a diferencia del estudio realizado por Padilla y colaboradores<Sup>(20)</Sup> en Per&uacute; y Nimri en Jordania<Sup>(21)</Sup>, quienes estandarizaron dos pruebas de PCR diferentes para la detecci&oacute;n del g&eacute;nero <i>Brucella</i> bajo condiciones de laboratorio pero que no diferencia entre B. abortus y otras especies como <i>B. melitensis</i>.</p>      <p>Las PCR probadas en este estudio presentan varias ventajas sobre el m&eacute;todo de diagn&oacute;stico convencional para el diagn&oacute;stico de brucelosis, tales como la rapidez, seguridad, alta sensibilidad y especificidad bajo condiciones de laboratorio.</p>      <p>Se debe realizar una segunda fase del trabajo en la cual se lleve a cabo la aplicaci&oacute;n cl&iacute;nica de estas pruebas para determinar la sensibilidad y especificidad cuando se trabaja a partir de muestras de humanos y bovinos enfermos y no en muestras contaminadas, pues el n&uacute;mero de UFC/ml presente en la muestra y otras caracter&iacute;sticas como la presencia de interferentes y haber recibido antibi&oacute;ticos previamente pueden influir en los resultados de la PCR.</p>      <p>Adem&aacute;s, ampliar la aplicaci&oacute;n cl&iacute;nica de las dos pruebas a otro tipo de muestras como aspirados de m&eacute;dula, biopsias de h&iacute;gado, l&iacute;quido cefalorraqu&iacute;deo o cultivos primarios de pocos d&iacute;as, para detectar no solo casos de infecci&oacute;n aguda si no tambi&eacute;n subagudos o cr&oacute;nicos que son los de mayor problema diagn&oacute;stico en el caso  de los humanos; debido a que la bacteria es intracelular y se encuentra en los tejidos y no circulando en el torrente sangu&iacute;neo<Sup>(22)</Sup>.</p>      <p>En el caso de los bovinos las muestras analizadas se podr&iacute;an extender a muestras de leche y fetos abortados. Se planea realizar tambi&eacute;n la uni&oacute;n de la PCR de g&eacute;nero y la de especie <i>B. abortus</i> en una PCR m&uacute;ltiple que confirme directamente la presencia de <i>B. abortus</i>.</p>      <p><b>Agradecimientos</b></p>      <p>Este proyecto fue financiado por la Direcci&oacute;n de Investigaciones de la Universidad CES y por el Instituto Colombiano de Medicina Tropical - Universidad CES.</p>  <hr>      <p><font size="3"><b>Referencias</b></font></p>      <!-- ref --><p>1. Atluri VL, Xavier MN, de Jong MF, den Hartigh AB, Tsolis RM. Interactions of the Human Pathogenic <i>Brucella</i> Species with Their Hosts. Annu Rev Microbiol 2011; 65:523-541.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S1900-9607201300020000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>2. Pappas G, Akritidis N, Bosilkovski M, Tsianos E. Brucellosis. N Engl J Med. 2005; 352: 2325-36.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S1900-9607201300020000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>3. Von Bargen K, Gorvel JP, Salcedo SP. Internal affairs: investigating the <i>Brucella</i> intracellular lifestyle. FEMS Microbiol Rev 2012; 36: 533-562.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S1900-9607201300020000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>4. Sauret JM, Vilissova N. Human brucellosis. JABFP. 2002; 15: 401-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S1900-9607201300020000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>5. Godfroid J, Cloeckaert A, LiautardJP, Kohler S, Fretin D, Walravens K, Garin-Bastuji B, Letesson JJ. From the discovery of the Malta fever's agent to the discovery of a marine mammal reservoir, brucellosis has continuously been a re-emerging zoonosis. Vet. Res. 2005; 36: 313-326.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S1900-9607201300020000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>6. Purwar S. Human brucellosis: a burden pf half-million cases per year. Sout Med J. 2007; 100:1074.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S1900-9607201300020000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>7. Rivera DY, Rueda OE, Calder&oacute;n CP, Mari&ntilde;o OC, Gall D, Nielsen K. Evaluaci&oacute;n comparativa del m&eacute;todo inmunoenzim&aacute;tico indirecto en leche para la detecci&oacute;n de bovinos infectados con <i>Brucella abortus</i>, en hatos del departamento de Cundinamarca, Colombia. Rev Sci Tech Off int Epiz. 2003; 22: 1065-75&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S1900-9607201300020000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Corbel M, Brucellosis in humans and animals, WHO Disponible en: <a href="http://www.who.int/csr/resources/publications/Brucellosis.pdf" target="_blank">http://www.who.int/csr/resources/publications/Brucellosis.pdf</a>. &#91;Fecha de acceso&#93;: Noviembre 2011.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S1900-9607201300020000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>9. Pappas, G., 2010. The changing <i>Brucella</i> ecology: novel reservoirs, new threats. Int. J. Antimicrob. Agents 36 Suppl 1, S8-11.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S1900-9607201300020000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>10. Navarro E, Casao MA, Solera J. Diagnosis of human brucellosis using PCR. Expert Rev Mol Diagn. 2004; 4: 115-23.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S1900-9607201300020000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>11. Riegelman RK, Hirsch RP. Como estudiar un estudio y probar una prueba: lectura cr&iacute;tica de la literatura m&eacute;dica. 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