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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[EVALUACIÓN DE LA PRODUCCIÓN DE ETANOL UTILIZANDO CEPAS RECOMBINANTES DE Saccharomyces cerevisiae A PARTIR DE MELAZA DE CAÑA DE AZÚCAR]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The Ethanol production, cellular growth and substrate consumption of three Saccharomyces cerevisiae strains: CBS8066 (control) and two recombinant CIB, GG570-CIBI and GG570-CIBII were evaluated under the effect of two sucrose concentrations (170 and 250g/L) and two substrates: industrial with sugar cane molasses and synthetic with sucrose. During the fermentative process on industrial substrate the major ethanol production was obtained at a sucrose concentration of 250g/L. Under these conditions, strain GG570-CIBII produced greater ethanol concentrations than control strain, reaching an average of 2,34 g/L, in addition, at 10h of fermentation, GG570-CIBII strain produced 8,02 g/L ethanol above control strain. On the other hand, strain GG570-CIBI produced 3,46 g/L ethanol less than control strain. In this way, strain GG570-CIBII cultivated on sugar cane molasses at a sucrose concentration of 250 g/L was tolerant to high sucrose concentration, and besides, this strain was capable of producing greater ethanol concentrations than control strain.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>EVALUACIÓN DE LA PRODUCCIÓN DE ETANOL UTILIZANDO CEPAS  RECOMBINANTES DE <i>Saccharomyces cerevisiae</i> A PARTIR DE MELAZA DE CAÑA DE  AZÚCAR</b></font></p>     <p align="center"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><i>EVALUATION OF ETHANOL  PRODUCTION USING RECOMBINANT STRAINS OF Saccharomyces cerevisiae FROM SUGAR CANE MOLASSES</i></b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>CAROLINA PEÑA </b>    <br>   </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Corporación para     Investigaciones Biológicas-CIB, investigador Unidad Biotecnología Vegetal, <a href="mailto:cpena@cib.org.co">cpena@cib.org.co</a></i></font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <b>RAFAEL ARANGO</b>    <br> </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Médico, PhD, Corporación para Investigaciones Biológicas-CIB, Jefe Unidad Biotecnología Vegetal, <a href="mailto:rarango@cib.org.co">rarango@cib.org.co</a></i></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Recibido para revisar mayo 29 de 2008, aceptado noviembre 21 de 2008, versión final diciembre  12 de 2008</b></font></p>     <p>&nbsp;</p> <hr>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>RESUMEN: </b>Se evaluó la producción de etanol, el crecimiento celular y el consumo  de sustrato de tres cepas de <i>Saccharomyces  cerevisiae</i>: CBS8066 (control) y dos recombinantes desarrolladas en  la Unidad de Biotecnología  Vegetal de CIB, GG570-CIBI y GG570-CIBII. Dichas cepas estuvieron bajo el  efecto de dos concentraciones de sacarosa (170 y 250g/L) y dos sustratos  (industrial con melaza caña azúcar y sintético con sacarosa).</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Durante la fermentación en sustrato  industrial se obtuvo mayor producción de etanol a concentración de 250g sacarosa/L.  Bajo estas condiciones, la cepa GG570-CIBII produjo en promedio 2,34g etanol/L  mas con respecto a la cepa control y en adición, a las 10h, produjo 8,02g/L por  encima de la cepa control. Por otro lado, la cepa GG570-CIBI produjo 3,46g  etanol/L menos que la cepa control.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">De esta forma,  se encontró que la cepa GG570-CIBII  es tolerante a alta concentración de sacarosa, y  además, es capaz de producir una concentración mayor de etanol con respecto a  la cepa control en melaza caña azúcar con 250g/L sacarosa.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>PALABRAS CLAVE</b>: <i>Saccharomyces cerevisiae</i> recombinante, gen <i>pdc</i>, gen <i>adhII</i>, <i>Zymomonas mobilis</i>, etanol.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>ABSTRACT: </b>The Ethanol  production, cellular growth and substrate consumption of three <i>Saccharomyces cerevisiae</i> strains:  CBS8066 (control) and two recombinant CIB, GG570-CIBI and GG570-CIBII were  evaluated under the effect of two sucrose concentrations (170 and 250g/L) and  two substrates: industrial with sugar cane molasses and synthetic with sucrose.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">During the  fermentative process on industrial substrate the major ethanol production was  obtained at a sucrose concentration of 250g/L. Under these conditions, strain  GG570-CIBII produced greater ethanol concentrations than control strain,  reaching an average of 2,34 g/L, in addition, at 10h of fermentation,  GG570-CIBII strain produced 8,02 g/L ethanol above control strain. On the other  hand, strain GG570-CIBI produced 3,46 g/L ethanol less than control strain.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">In this  way, strain GG570-CIBII cultivated on sugar cane molasses at a sucrose  concentration of 250 g/L was tolerant to high sucrose concentration, and  besides, this strain was capable of producing greater ethanol concentrations  than control strain.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>KEYWORDS</b>: recombinant <i>Saccharomyces cerevisiae</i>, <i>pdc</i> gene, <i>adhII</i> gene, <i>Zymomonas mobilis</i>,  ethanol.</font></p> <hr>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>1. INTRODUCCIÓN</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Actualmente, el bioetanol es producido por fermentación alcohólica de los  azúcares presentes en materiales renovables [1, 2]. Dicha fermentación está influenciada  por factores como la concentración de azúcares del sustrato y el microorganismo  fermentador que se emplee.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">De acuerdo con reportes  previos [3, 4] cuando <i>S. cerevisiae</i> se encuentra cultivada a altas concentraciones de azúcar (menores a 30 &#8211;  40%) se incrementa la producción de etanol. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Adicionalmente, cuando <i>S. cerevisiae</i> se encuentra bajo  condiciones de alta concentración de oxígeno disuelto [5] y la concentración de  azúcares supera 0,16g/L [6] o 9g/L [7], la levadura convierte su metabolismo  oxidativo a oxidoreductivo o fermentativo incrementandose la producción de  etanol. Dicho fenómeno se conoce como efecto Crabtree.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las enzimas piruvato  descarboxilasa (pdc) y alcohol deshidrogenasa (adh) están presentes en  microorganismos etanologénicos como <i>Saccharomyces cerevisiae</i> y <i>Zymomonas  mobilis</i>. Dichas enzimas son claves en la producción de etanol [8] y  presentan algunas diferencias de acuerdo con el microorganismo. Se ha  encontrado que las enzimas de <i>Z. mobilis</i> presentan mayor afinidad por  sus respectivos sustratos [9], por lo cual <i>Z. mobilis</i> produce mayor  rendimiento de etanol comparado con <i>S. cerevisiae</i> con valores de 0,49 y  0,46g/g respectivamente, en medio de cultivo con 100g/L de glucosa, 200rpm, pH  5 y 30ºC  [10]. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Aún cuando el  rendimiento de etanol de <i>Z. mobilis</i> es mayor, la presencia de sales en medios de uso industrial como la melaza de  caña de azúcar inhibe la producción de etanol [8]. Por tal razón, <i>S. cerevisiae</i> continua siendo el  microorganismo usado industrialmente pero para mejorar su rendimiento, se ha  explorado la posibilidad de crear cepas modificadas genéticamente que  permitan incrementar el rendimiento de etanol.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En este trabajo, se  evaluó la producción de etanol de dos cepas de <i>S. cerevisiae</i> modificadas  genéticamente por inserción de genes optimizados <i>pdc </i>y <i>adhII </i>de <i>Z. mobilis</i> creadas en  la Unidad  de Biotecnología Vegetal de la CIB,  cultivadas bajo el efecto de dos sustratos y dos concentraciones de sacarosa. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En un trabajo previo, la cepa GG570-CIBII mostró un incremento del 40% (con respecto a la cepa control) en la  producción de etanol en un sustrato sintético con glucosa como fuente de  carbono [11].</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>2. MATERIALES Y MÉTODOS</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>2.1</b> <b>Microorganismo  de estudio    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> </b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Saccharomyces cerevisiae</i>, cepa CBS8066 (parental) la cual será  nombrada como cepa control, cepa GG570-CIBI (con gen<i> pdc</i> de <i>Z. mobilis</i>) llamada como cepa 4,2 y cepa GG570-CIBII (con genes<i> pdc</i> y <i>adhII</i> de <i>Z. mobilis</i>) denominada como cepa 9,1.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>2.2 Medios  de cultivo    <br> </b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se utilizó como sustrato sintético el medio de  cultivo YPS modificado con: sacarosa 170 ó 250g/L, KH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub> (99.3%, Sigma®, Japón) 1 g/L, MgSO<sub>4</sub>.7H<sub>2</sub>O (99%, J.T.Baker,  Deventer, Holanda) 0.5 g/L, Bacto TM peptona (Becton, Dickinson and company, Le  Pont de Claix, France) 10 g/L y extracto de levadura (Oxoid, Hampshire,  England) 5 g/L.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Como sustrato industrial se usó melaza de caña  de azúcar (35% sacarosa, Ingenio Central Tumaco, Palmira, Colombia) diluida  hasta la concentración de sacarosa requerida, filtrada y suplementada con: 1g/L  (NH<sub>4</sub>)<sub>2</sub>SO<sub>4</sub> (99.1%, J.T.Baker, Deventer,  Holanda) 0.5g/L MgSO<sub>4</sub>.7H<sub>2</sub>O (99%, J.T.Baker, Deventer,  Holanda) 1g/L KH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub> (99.3%, Sigma®, Japón) [12 &#8211;  14].</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>2.3 Condiciones  de cultivo y preparación de preinóculo</b>    <br> </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se realizaron fermentaciones sin  suplementación de oxígeno, por un período de 30h, con toma de muestra cada 5h, en erlenmeyer de 500mL con 300mL de medio de  cultivo, en agitador orbital a  30°C, 150rpm y pH inicial 5.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se preparó un preinóculo tomando  una colonia de la caja petri, se cultivó en 50mL de medio de cultivo YPD 10%  glucosa anhidra (99.5%, Sigma®,  St. Louis, USA) y  se dejó incubando por 24h a  30ºC,  150rpm y pH 5. Posteriormente, se midió DO<sub>660</sub> hasta alcanzar 1.6 y  se procedió a inocular los erlenmeyers de fermentación con 2% v/v [15, 16]. Las variables estudiadas  fueron:</font></p> <ul>       <li><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Cepa de <i>S. cerevisiae</i>: CBS8066, GG570-CIBI     y GG570-CIBII.</font></li>       <li><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Concentración     inicial de sacarosa: 170 y 250g/L</font></li>       <li><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Sustrato:     industrial (melaza de caña de azúcar) y sintético (medio YPS).</font></li>     ]]></body>
<body><![CDATA[</ul>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>2.4 Evaluación  del crecimiento celular]    <br> </b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se hizo seguimiento al  crecimiento celular por el método de peso seco, el cual se desarrollo en la  forma que a continuación se explica.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se tomó 1mL de suspensión  celular de cada erlenmeyer, en un tubo eppendorff de 1,5mL, posteriormente se  sometió a centrifugación a 12000rpm a 4ºC durante 6min, luego se descartó el  sobrenadante y se procedió a resuspender el pellet en agua destilada para  repetir el proceso de centrifugación a las mismas condiciones. La resuspensión  del pellet se repitió dos veces. Finalmente, se eliminó el sobrenadante y se  sometió el pellet húmedo a secado en horno a 80ºC por 24h o hasta  que el peso fuera constante.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>2.5 Evaluación del consumo de  sustrato    <br> </b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El contenido de azúcares  reductores se determinó por el método del Ácido Dinitro Salicílico (DNS) [17], el  cual cuantifica de forma indirecta el consumo de sustrato.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La cuantificación de sacarosa  se realizó luego de la hidrólisis con HCl al 10% a 95ºC usando DNS [18].</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>2.6 Evaluación de la concentración de etanol    <br> </b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El seguimiento a la producción de etanol se  llevó a cabo mediante cuantificación por cromatografía de gases [16, 19, 20],  en un equipo marca Agilent modelo 6890 con detector de masas modelo 5973 y automuestreador.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las condiciones del equipo  fueron establecidas así: volumen de inyección de 1mL, temperatura del inyector:  150ºC y split 50:1,  flujo de columna: 1,1mL/min, temperatura de columna: 70ºC/5min, columna DBwax  30m x 0,25mm x 0,25mm, temperatura del detector:  200ºC y gas de arrastre helio.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>2.7 Determinación de parámetros cinéticos    <br> </b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Tasa específica de crecimiento (m<sub>x</sub>) en la fase exponencial de crecimiento, el cual será aproximadamente igual a m<sub>max</sub> [21]:</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">m es constante cuando se encuentra en la  fase de crecimiento exponencial, por tanto, la ecuación se puede integrar.</font></p>     <p></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><sub><img width=156 height=82 src="../img/a16eq002.gif" v:shapes="_x0000_i1025"></sub> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Donde</font></p>     <blockquote>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> X=concentración celular en tiempo (t)    <br> </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">X<sub>0</sub>=concentración celular tiempo   (t=0)    <br> </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">m = tasa específica de crecimiento celular,   considerada m<sub>max</sub> en fase de crecimiento   exponencial.</font></p> </blockquote>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los rendimientos observados de sustrato en biomasa  (Y&#8217;<sub>x/s</sub>) y de sustrato en producto (Y&#8217;<sub>p/s</sub>) se  calcularon mediante la gráfica crecimiento celular vs consumo de sustrato y  producción de etanol vs consumo de sustrato, cuyas pendientes son Y&#8217;<sub>x/s</sub> y Y&#8217;<sub>p/s</sub> respectivamente [21].</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>2.8 Análisis estadístico    <br> </b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se utilizó un diseño tipo  factorial completamente aleatorio 3x2<sup>2</sup>. Cada tratamiento se realizó  por triplicado. Los resultados de los experimentos fueron evaluaron mediante  análisis de varianza (ANOVA) con el paquete estadístico SAS para windows,  versión  8 a un nivel de confianza del 95%.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>3. RESULTADOS</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>3.1 Evaluación del crecimiento celular</b>    <br> </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los valores máximos de crecimiento a 170g/L de  sacarosa se encontraron entre 8,5 &#8211; 11,5g/L para</font> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">melaza  y 10,2 &#8211; 11,9g/L para medio YPS. De igual forma a  250g/L los mayores crecimientos </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">fueron 9 &#8211; 14,8g/L en melaza y entre 15 &#8211; 16,5g/L para el medio YPS (<a href="#fig01">Figura 1</a>).</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><a name="fig01"></a><img src="../img/a16fig01.gif" width="580" height="371">    <br>   Figura 1</b>. Evaluación de la  cinética de crecimiento celular. Crecimiento celular a 170g sacarosa/L en  melaza (a), 250g sacarosa/L en melaza (b), 170g sacarosa/L en YPS (c) y 250g  sacarosa/L en YPS (d)    <br> </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Figure 1</b>. Evaluation of the cellular  growth kinetic. Cellular growth in molasses 170g sucrose/L (a), molasses 250g sucrose/L  (b), YPS 170g sucrose/L (c) and YPS 250g sucrose/L (d)</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>3.2 Evaluación  del consumo de sustrato</b>    <br> </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los resultados obtenidos no  mostraron diferencia significativa en el consumo de azúcar en las tres cepas de <i>S. cerevisiae </i>evaluadas (<a href="#fig02">Figura 2</a>).  Sin embargo, cuando se comparó el consumo a 170 y 250g/L de sacarosa se  determinó mayor consumo bajo la influencia de la primera condición que en la  segunda, ya que a 170g/L la sacarosa residual estuvo alrededor de 30g/L  mientras a 250g/L fue superior a 180g/L.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><a name="fig02"></a><img src="../img/a16fig02.gif" width="605" height="388">    <br>   Figura 2</b>. Evaluaci&oacute;n de la cin&eacute;tica de consumo de   sustrato. Consumo de sustrato a 170g sacarosa/L en melaza (a), 250g sacarosa/L   en melaza (b), 170g sacarosa/L en YPS (c) y 250g sacarosa/L en YPS (d)    <br>   </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Figure 2</b>.     Evaluation of the substrate consumption kinetic. Substrate consumption in     molasses 170g sucrose/L (a), molasses 250g sucrose/L (b), YPS 170g sucrose/L (c) and YPS 250g sucrose/L (d)</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>3.3 Evaluación  de la producción de etanol</b>    <br> </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En las Gráfica 1 se puede  observar que cuando hay mayor concentración de sacarosa (<a href="#fig03">Figura 3b</a> y <a href="#fig03">3d</a>) hay  incremento en la producción de etanol para las cepas evaluadas.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><a name="fig03"></a><img src="../img/a16fig03.gif" width="576" height="386">    <br>   Figura 3</b>. Evaluaci&oacute;n de la cin&eacute;tica de producci&oacute;n de   etanol. Producci&oacute;n de etanol a 170g sacarosa/L en melaza (a), 250g sacarosa/L   en melaza (b), 170g sacarosa/L en YPS (c) y 250g sacarosa/L en YPS (d)    <br>   </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Figure 3</b>. Evaluation of the ethanol     production kinetic. Ethanol production in molasses 170g sucrose/L (a), molasses 250g sucrose/L (b), YPS 170g sucrose/L (c) and YPS 250g sucrose/L (d)</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Cuando <i>S. cerevisiae</i> estuvo cultivada en melaza, la mayor producción fue  de 25g etanol/L a 170g/L de sacarosa con la cepa 9.1 (<a href="#fig03">Figura 3a</a>). En el mismo  sustrato a 250g/L de sacarosa (<a href="#fig03">Figura 3b</a>) dicha cepa produjo 31g/L de etanol.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">De igual forma, bajo el efecto  del sustrato sintético y una concentración de sacarosa de 170g/L (<a href="#fig03">Figura 3c</a>) la  cepa 9.1 produjo la mayor concentración de etanol (39,36g/L). En este mismo  medio a una concentración de 250g sacarosa/L (<a href="#fig03">Figura 3d</a>) la cepa más productora  fue la 4.2 con 39,89g etanol/L.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El análisis de varianza  realizado mostró que todos los factores evaluados y sus respectivas  interacciones tienen efecto estadísticamente significativo sobre la producción  de etanol.</font></p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>3.4 Parámetros cinéticos    <br> </b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Según los resultados mostrados en  la <a href="#tab01">Tabla 1</a>, se encontraron  mayores m<sub>max</sub> cuando las cepas estuvieron cultivadas en medio YPS,  con excepción de la cepa  9.1 a 250g sacarosa/L. Además, a menor concentración inicial de azúcar, m<sub>max</sub> fue mayor, exceptuando la cepa 9.1 cultivada en melaza.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><a name="tab01"></a>Tabla 1</b>. Par&aacute;metros cin&eacute;ticos calculados para <i>S. cerevisiae    <br>   </i></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Table 1</b>. Calculated kinetic     parameters for <i>S. cerevisiae</i></font>    <br>     <img src="../img/a16tab01.gif" width="558" height="257"></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se determinó mayor rendimiento de azúcar en  biomasa en el medio de cultivo melaza y también, cuando la concentración de  azúcar fue 250g/L los Y&#8217;<sub>x/s</sub> estuvieron por encima de 0,085g  biomasa/g azúcar comparado con los rendimientos inferiores a 0,07g/g obtenidos  a 170g/L de sacarosa.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se encontró que en cualquiera de los dos medios  de cultivo utilizados, los rendimientos de etanol fueron superiores a 0,41g  etanol/g sacarosa cuando la concentración de azúcar fue mayor, comparado con  los Y&#8217;<sub>p/s</sub> por debajo de 0,25g/g a 170g sacarosa/L. También se  puede ver que los rendimientos de etanol son mayores cuando se emplea medio YPS  independientemente de la concentración inicial de sacarosa. Sin embargo, la  cepa recombinante 9.1 presentó mayor rendimiento en melaza con un valor de  0,5316g/g. Se encontró que una concentración de sacarosa mayor hace mucho más  eficiente la producción de etanol a partir de las cepas recombinantes de <i>S. cerevisiae</i> con eficiencias </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">superiores a 76% para cualquiera de los  sustratos evaluados, mientras a 170g azúcar/L la eficiencia no supera el 47%.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>4. DISCUSIÓN</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En le presente trabajo, se  evaluó la influencia de la concentración de azúcar y el sustrato de </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">fermentación sobre el  crecimiento celular, el consumo de sustrato y la producción de etanol </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">de tres cepas de <i>S. cerevisiae,</i> CBS 8066, G570-CIBI y  GG570-CIBII.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>4.1 Evaluación  de la producción de etanol    <br> </b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Si se comparan los sustratos  utilizados, melaza (Gráfica 1a y 1b) y sacarosa comercial (Gráfica 1c y 1d) se  puede observa que hubo mayor concentración de etanol cuando se utilizó sustrato  sintético. Sin embargo, se podría sugerir que este comportamiento es debido a  la mejor suplementación del medio sintético o como consecuencia de alguna  sustancia inhibitoria presente en la melaza [6] que afecte a <i>S. cerevisiae</i>.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Adicionalmente, con ambos  sustratos la producción de etanol incrementa con el aumento en la concentración  de azúcar (Gráfica 1b y 1d), por ello se descarta una inhibición en la  producción de etanol de las cepas recombinantes por exceso de sustrato y se  sugiere, que bajo condiciones de alta concentración de azúcar y en presencia de  oxigeno (efecto Crabtree) [4, 22, 23], estas cepas convierten su metabolismo  respiratorio a metabolismo fermentativo.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En un estudio previo realizado  por [4] con la cepa GR203 de <i>S. cerevisae</i> en medio sintético se  encontró que la producción de etanol fue de 31,5g/L (a las 28,5h) y 21,25g/L (a  las 25h) a 200 y 300g sacarosa/L respectivamente. Esto muestra una disminución  en la producción al incrementar la concentración de azúcar. Las cepas  recombinantes evaluadas en este trabajo mostraron un efecto contrario al  reportado para la cepa GR203, a las 30h de fermentación en medio de cultivo YPS  con 170g/L de sacarosa, en el cual, la cepa 9.1 produjo una concentración de  etanol de 39,36g/L, la cual es mayor que la obtenida por la cepa GR203 de  31,5g/L. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">De igual forma a 250g/L de sacarosa y 25h de  fermentación las cepas 4.2 y 9.1 produjeron etanol en concentraciones de 39,88  y 37,37g/L valores que son mayores al producido por la cepa GR203. Estos datos  sugieren que las cepas recombinantes 4.2 y 9.1 son tolerantes a altas  concentraciones de sacarosa y además, bajo condiciones similares producen  mayores concentraciones de etanol.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">[13] reportaron para la cepa ATCC 29191 de <i>Z. mobilis</i> cultivada en melaza de caña  de azúcar una concentración de etanol de 2,94 y 12,2g/L a 150 y 250g/L de  sacarosa respectivamente, a las 24h de fermentación, 180rpm y 25°C. Por otro lado,  cuando la cepa recombinante 4,2 estuvo cultivada en melaza produjo a las 25h  11,86 y 22,18g etanol/L a 170 y 250g sacarosa/L respectivamente, mientras la  cepa 9,1 presentó 18,4 y 28,67g etanol/L a 170 y 250g sacarosa/L respectivamente.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Lo anterior demuestra una mayor producción de  etanol por parte de <i>S. cerevisiae </i>recombinante  que<i> Z. mobilis</i> al estar cultivadas en  melaza, sin embargo, ambos microorganismos mostraron incrementar la producción  de etanol al aumentar la concentración de sacarosa. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>4.2 Evaluación de parámetros cinéticos    <br> </b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se ha reportado [22] que cuando la cepa NRRL Y132 de <i>S. cerevisiae</i> fue cultivada en medio  sintético con glucosa, los Y&#8217;<sub>x/s</sub> alcanzados fueron  aproximadamente 0,095 y 0,06g biomasa/g glucosa a 170 y 250g glucosa/L  respectivamente, indicando que a mayor concentración inicial de glucosa el  microorganismo disminuye la conversión de sustrato en biomasa. Este  comportamiento es contrario al presentado por las cepas recombinantes 4.2 y 9.1  dado que a mayor concentración de azúcar hubo mayor rendimiento, según lo  reportado en  la <a href="#tab01">Tabla 1</a>.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los rendimientos de etanol de las cepas  recombinantes de <i>S. cerevisiae</i> bajo  la influencia de sustrato melaza y 250g/L de sacarosa fueron 0,4105g/g para la  cepa 4.2 y 0,5316g/g para la cepa 9.1. Dichos Y&#8217;<sub>p/s</sub> son  superiores a los reportados por [13] para <i>Z.  mobilis</i> con un valor de 0,29g/g al estar cultivada en melaza y 270g/L de  fuente de carbono.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Adicionalmente, se pudo observar que cuando  hubo una concentración de 170g sacarosa/L las cepas evaluadas disminuyen la  eficiencia en la conversión de sacarosa a etanol cuando están cultivadas en  medio melaza. Ésto podría explicarse a través del cambio a metabolismo  fermentativo sufrido por <i>S. cerevisiae</i> al incrementar la concentración de azúcar como consecuencia del efecto Crabtree.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">De igual forma, bajo una condición de alta concentración  de sacarosa (250g/L) la eficiencia alcanzada por las cepas es mayor en YPS, con  excepción de la cepa 9.1.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La cepa recombinante 9.1 presentó la mayor  eficiencia, bajo todas las condiciones evaluadas (con excepción del tratamiento  YPS, 250g sacarosa/L), siendo la máxima eficiencia de 98.81% en melaza, 250g/L  sacarosa, que es significativa e indica que la cepa casi  logra alcanzar la conversión teórica de sacarosa en etanol.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>5. </b> <b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En sustrato industrial se obtuvo mayor  producción de etanol a una concentración de sacarosa de 250g/L. Bajo estas  condiciones, la cepa recombinante 9.1 produjo en promedio 2,34 g/L mas con  respecto a la cepa control y en adición, a las 10h de fermentación, dicha cepa  produjo 8,02 g/L etanol por encima de la cepa control.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Cuando se utilizó sustrato sintético (medio YPS) se encontró que a 250g/L  de fuente de carbono hubo mayor producción de etanol con valores máximos de  32 a 40g etanol/L.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se alcanzaron rendimientos de sustrato en etanol más altos a 250g  azúcar/L, obteniéndose mayor rendimiento con la cepa recombinante 9.1 cultivada  en melaza, seguida de la cepa recombinante 4.2 en medio YPS. Bajo estas  condiciones, las eficiencias alcanzadas por las cepas fueron 98.81% y 97.94%,  respectivamente.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>REFERENCIAS</b></font></p>     <!-- ref --><p>   <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>[1]</b> FEDERACIÓN NACIONAL DE BIOCOMBUSTIBLES. ABC de los Alcoholes Carburantes. Disponible en: <a href="mailto:http://www.minminas.gov.co/minminas/sectores.nsf/2a84e89f4d73f130052567be0052c75a/ffdff1b298ac766a052571720071cfad?OpenDocument">http://www.minminas.gov.co/minminas/sectores.nsf/2a84e89f4d73f130052567be0052c75a/ffdff1b298ac766a052571720071cfad?OpenDocument</a>. [Citado 27 Mayo de 2007]     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0012-7353200900030001600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>[2]</b> SOLICLIMA ENERGÍA SOLAR. El etanol como biocombustible. Disponible en: <a href="http://news.soliclima.com/modules.php?name=Content&pa=showpage&pid=118">http://news.soliclima.com/modules.php?name=Content&pa=showpage&pid=118</a>. [Citado 20 Mayo de 2007]     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0012-7353200900030001600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>[3]</b> HOLCBERG, I. B. AND MARGALITH, P. Alcoholic Fermentation by Immobilized Yeast at High Sugar Concentrations. European J Appl Microbiol Biotechnol, 13, 133 – 140, 1981.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0012-7353200900030001600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>[4]</b> CONVERTI, A. PEREGO, P. LODI, A. PARISI, F. AND DEL BORGHI, M. A Kinetic Study of Saccharomyces Strains: Performance at High Sugar Concentrations. Biotechnology and Bioengineering, 27, 1108 – 1114, 1985.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0012-7353200900030001600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>[5]</b> GONZÁLEZ, R. BARCENILLA, J Y TABERA, L. Cepas vínicas de Saccharomyces cerevisiae con bajo rendimiento en etanol. Revista de Enología, 86, 2007.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0012-7353200900030001600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>[6]</b> ERTOLA, R. YANTORNO, O. AND MIGONE, C. Programa Regional de Desarrollo Científico y Tecnológico de la OEA. Disponible en: <a href="http://fai.unne.edu.ar/biologia/microind/levaduras.htm">http://fai.unne.edu.ar/biologia/microind/levaduras.htm</a>. [Citado 20 Mayo de 2007]     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0012-7353200900030001600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>[7]</b> HIDALGO, J. Tratado de enología, tomo I. Ediciones Mundi-Prensa, Madrid, 2003.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0012-7353200900030001600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>[8]</b> GUNASEKARAN, P. AND CHANDRA RAJ, K. Ethanol fermentation technology – Zymomonas mobilis. Current Science, 77, 56-68, 1999.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0012-7353200900030001600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>[9]</b> BRENDA–The Comprehensive Enzyme Information System. Disponible en: <a href="http://www.brenda.uni-koeln.de">http://www.brenda.uni-koeln.de</a>. [Citado 16 Mayo de 2007]     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0012-7353200900030001600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>[10]</b> DAVIS, L. ROGERS, P. PEARCE, J. AND PEIRIS, P. Evaluation of Zymomonas based ethanol production from a hydrolysed waste starch stream. Biomass and Bioenergy, 30, 809-814, 2006.        &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0012-7353200900030001600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>[11]</b> VÁSQUEZ, J. CASTAÑO, H. MARÍN, P. RODRIGUEZ, E Y ARANGO, R. Ingeniería genética en rutas metabólicas de Saccharomyces cerevisiae para incrementar la productividad de etanol. Memorias 6° Simposio Internacional de Alcoholes y Levaduras, 2007. Bogotá, Colombia, Junio 2007.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0012-7353200900030001600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>[12]</b> NAVARRA, A. SEPULVEDA, M. AND RUBIO, M. Bioconcentration of vinasse from the alcoholic fermentation of sugar cane molasses. Waste Management 20, 581-585, 2000.       &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0012-7353200900030001600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>[13]</b> CAZETTA, M. CELLIGOI, M. BUZATO, J. AND SCARMINO, J. 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Kinetics of growth and ethanol production on different carbon substrates using genetically engineered xylose-fermenting yeast. Bioresource Technology, 98, 677-685, 2007.       &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0012-7353200900030001600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>[17]</b> MILLER, G.L. Use of dinitrosalicylic acid reagent for determination of reducing sugar. Anal. Chem. 1959. 31, 426±428     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0012-7353200900030001600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>[18]</b> ERGUN, M AND MUTLU, S.F. Application of a statistical technique to the production of ethanol from sugar beet molasses by Saccharomyces cerevisiae. Bioresource Technology, 73, 251 – 255, 2000.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0012-7353200900030001600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>[19]</b> ZHU, S. WU, Y. YU, Z. ZHANG, X. WANG, C. YU, F. JIN, S. Production of ethanol from microwave-assisted alkali pretreated wheat straw. 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Londres, Inglaterra. 1995.       &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0012-7353200900030001600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>[22]</b> THATIPAMALA, R. ROHANI, S. AND HILL, G.A. Effects of high product and substrate inhibition on the kinetics and biomass and products yields during ethanol batch fermentation. Biotechnology and bioengineering, 40, 289 – 297, 1992.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0012-7353200900030001600022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   <b>[23]</b> LEI, F. ROTBOLL, M. AND JORGENSEN, S. B. A biochemically structured model for Saccharomyces cerevisiae. Journal of Biotechnology 88, 205 – 221, 2001. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S0012-7353200900030001600023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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