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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[DETERMINACIÓN DEL GEN aac(6')-aph(2") ASOCIADO CON RESISTENCIA A AMINOGLUCÓSIDOS EN CEPAS DE STAPHYLOCOCCUS COAGULASA NEGATIVA EN UNA UNIDAD NEONATAL EN BOGOTÁ]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Detection of gene aac(6')-aph(2") in associated with aminoglucosides resistance in Staphylococcus coagulase-negative strains isolates from one neonatal unit in Bogota]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Background. The most common cause of resistance to aminoglucosides is the acetilation and phosphorilation of the antibiotic by the enzyme AAC(6')APH(2"). Objetive. To determine the presence of the gene aac(6')-aph(2") in strains of coagulase-negative Staphylococci isolated from infected neonates and to investigate the concordance with the susceptibility tests in-vitro. Materials and methods. the aac(6')-aph(2") gene was determined in 63 coagulase-negative Staphylococci strains isolated from blood cultures and catheter tips obtained from the neonatal care unit at the Instituto Materno Infantil in Bogotá, Colombia. Results. Staphylococcus epidermidis was the most frequently identified microorganism. The aac(6')-aph(2") gene was detected in 55 out of 63 strains (73,43%), 42 strains (87,5%) isolated from blood cultures, and 13 strains (23,6%) isolated from catheter tips. Susceptibility to gentamycin was determined by minimum inhibitory concentration, and susceptibility to amikacin by the disk diffusion antibiotic sensitivity test. There was no a significant statistical association between the presence of the gene and the microbial susceptibility to either gentamycin or amikacin. Conclusion. The presence of the aac(6')-aph(2") gene in strains of Staphylococcus epidermidis is very high. Differences in the expression of the gene might explain some cases of inconsistency with the susceptibility tests.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[    <font face="verdana" size="2">                <p align="left">INVESTIGACI&Oacute;N ORIGINAL</p>          <p align="center"><font size="4"><b>DETERMINACI&Oacute;N DEL GEN aac(6')-aph(2") ASOCIADO CON RESISTENCIA A AMINOGLUC&Oacute;SIDOS EN CEPAS DE  STAPHYLOCOCCUS COAGULASA NEGATIVA EN UNA UNIDAD NEONATAL EN BOGOT&Aacute;</b></font></p>          <p align="center"><b><font size="3">Detection of gene aac(6')-aph(2") in associated with aminoglucosides resistance in  Staphylococcus coagulase-negative strains isolates from one neonatal unit in Bogota.</font></b></p>       <p align="center">Liliana Mu&ntilde;oz M.<sup>1</sup>, Gladys Pinilla B<sup>1</sup>,Ariel I. Ruiz-Parra<sup>2</sup>,Yolanda Cifuentes C<sup>3</sup>,Eva A. Gallego<sup>1</sup></p></p>   <sup>1</sup>	Profesora, Facultad de Ciencias de la Salud, programa de Bacteriolog&iacute;a y Laboratorio Cl&iacute;nico, Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca.</p>   <sup>2</sup>	Profesor Titular, Departamento de Obstetricia y Ginecolog&iacute;a e Instituto de Investigaciones Cl&iacute;nicas. Facultad de Medicina, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;.    <p> <sup>3</sup>Profesora Asociada, Departamento de Pediatr&iacute;a, Facultad de Medicina, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;. Correspondencia:<a href="mailto: airuizp@unal.edu.co">airuizp@unal.edu.co</a>     <p>Recibido para publicaci&oacute;n:25/11/09     <br>Aceptado para publicaci&oacute;n:01/12/09</br></p>      <hr>     	      <p><b>Resumen</b></p>       <p><b>Antecedentes</b>. La causa m&aacute;s com&uacute;n de resistencia a antibi&oacute;ticos aminogluc&oacute;sidos en bacterias Gram positivas, especialmente en S. epidermidis, es la enzima modificante AAC(6')-APH(2"), capaz de acetilar y fosforilar un amplio rango de antibi&oacute;ticos.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Objetivo</b>. Determinar la presencia del gen aac(6')-aph(2") en cepas de Staphylococcus coagulasa negativa aisladas en infecciones neonatales, e investigar la concordancia con las pruebas de sensibilidad in-vitro.</p>     <p><b>Material y m&eacute;todos</b>. Se determin&oacute; la presencia del gen aac(6')-aph(2") en 63 cepas de estafilococos coagulasa negativa provenientes de hemocultivos y puntas de cat&eacute;ter, de la Unidad de Neonatolog&iacute;a del Instituto Materno Infantil, en Bogot&aacute;.</p>      <p><b>Resultados</b>. Staphylococcus epidermidis fue el germen m&aacute;s frecuente y el gen aac(6')-aph(2") estaba presente en 55 (87,3%) cepas; de &eacute;stas, 42 (73,4%) cepas proven&iacute;an de hemocultivos y 13 (23,6%) cepas de punta de cat&eacute;ter. La susceptibilidad a gentamicina se determin&oacute; mediante concentraci&oacute;n inhibitoria m&iacute;nima y para  amikacina por difusi&oacute;n en disco. No se encontr&oacute; asociaci&oacute;n estad&iacute;sticamente significativa entre la presencia del gen aac(6')-aph(2") y la resistencia a gentamicina y amikacina. </p>     <p><b>Conclusi&oacute;n</b>. La presencia del gen aac(6')-aph(2") de resistencia a aminogluc&oacute;sidos es muy alta en cepas de Staphylococcus epidermidis. Diferencias en la expresi&oacute;n del gen pueden explicar parcialmente la falta de consistencia con las pruebas de susceptibilidad utilizadas en la cl&iacute;nica.</p>     <p><b>Palabras clave</b>: enzimas, infecciones estafiloc&oacute;cicas, Staphylococcus epidermidis, reci&eacute;n nacido, farmacorre¬sistencia bacteriana. </p>      <p><b>Mu&ntilde;oz-M L, Pinilla-B G, Ru&iacute;z-Parra AI, Cifuentes-Cifuentes Y, Gallego EA</b>. Determinaci&oacute;n del gen aac(6')-aph(2") asociado con resistencia a aminogluc&oacute;sidos en cepas de Staphylococcus coagulasa negativa en una unidad neonatal en Bogot&aacute;. rev.fac.med. 2009; 57: 326-333.</p>       <p><b>Summary</b></p>      <p><b>Background</b>. The most common cause of resistance to aminoglucosides is the acetilation and phosphorilation of the antibiotic by the enzyme AAC(6')APH(2").</p>     <p><b>Objetive</b>. To determine the presence of the gene aac(6')-aph(2") in strains of coagulase-negative Staphylococci isolated from infected neonates and to investigate the concordance with the susceptibility tests in-vitro. </p>      <p><b>Materials and methods</b>. the aac(6')-aph(2") gene was determined  in 63 coagulase-negative Staphylococci strains isolated from blood cultures and catheter tips obtained from the neonatal care unit at the Instituto Materno Infantil in Bogot&aacute;, Colombia. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Results</b>. Staphylococcus epidermidis was the most frequently identified microorganism. The aac(6')-aph(2") gene was detected in 55 out of 63 strains (73,43%), 42 strains (87,5%) isolated from blood cultures, and 13 strains (23,6%) isolated from catheter tips. Susceptibility to gentamycin was determined by minimum inhibitory concentration, and susceptibility to amikacin by the disk diffusion antibiotic sensitivity test. There was no a significant statistical association between the presence of the gene and the microbial susceptibility to either gentamycin or amikacin.</p>      <p><b>Conclusion</b>. The presence of the aac(6')-aph(2") gene in strains of Staphylococcus epidermidis is very high. Differences in the expression of the gene might explain some cases of inconsistency with the susceptibility tests.</p>     <p><b>Key words</b>: enzymes, staphylococcal infections,  Staphylococcus epidermidis, infant, newborn, drug resistance, bacterial. </p>      <p><b>Mu&ntilde;oz-M L, Pinilla-B G, Ru&iacute;z-Parra AI, Cifuentes-Cifuentes Y, Gallego EA</b>. Detection of gene aac(6')-aph(2") in associated with aminoglucosides resistance in  Staphylococcus coagulase-negative strains isolates from one neonatal unit in Bogota. rev.fac.med. 2009; 57: 326-333.  <hr>      <p><b>Introducci&oacute;n</b></p>      <p>Los aminogluc&oacute;sidos (AG) son antibi&oacute;ticos de amplio espectro, utilizados en la pr&aacute;ctica cl&iacute;nica para el tratamiento de infecciones causadas por bacterias Gram positivas y Gram negativas. Su mecanismo de acci&oacute;n  es la inhibici&oacute;n de la s&iacute;ntesis de prote&iacute;nas por la uni&oacute;n del antibi&oacute;tico a la subunidad peque&ntilde;a 30S de los ribosomas bacterianos (1,2). La forma m&aacute;s com&uacute;n de resistencia bacteriana a estos antibi&oacute;ticos es la adquisici&oacute;n de genes que codifican enzimas encargadas de modificar covalentemente los grupos amino e hidroxilo del antibi&oacute;tico, disminuyendo la afinidad de uni&oacute;n a la subunidad 30S (3,4). </p>      <p>El gen aac(6')-aph(2"), que se cree es el resultado de  la fusi&oacute;n de los genes aac y aph (5), se puede hallar tanto en pl&aacute;smidos como en el cromosoma bacteriano (6,7). El gen fue encontrado inicialmente en Staphylococcus aureus y Staphylococcus epidermidis (8,9) y luego en aislamientos cl&iacute;nicos de Enterococcus, Streptococcus y Staphylococcus coagulasa negativa (SCN) (10,11). Este gen codifica la enzima bifuncional ACC(6')-APH(2") (12) que inactiva los antibi&oacute;ticos aminogluc&oacute;sidos como gentamicina, tobramicina, neomicina y amikacina. La enzima  posee dos  actividades  diferentes que inactivan a los AG; una de ellas es un aminogluc&oacute;sido-acetiltransferasa (AAC) que acetila grupos amino en la posici&oacute;n 6', y la otra es un  aminogluc&oacute;sido-fosfotransferasa (APH) que fosforila el grupo hidroxilo en la posici&oacute;n 2" (13). </p>      <p>La resistencia a los AG en las infecciones nosocomiales causadas por SCN tiene una alta prevalencia en las unidades de neonatolog&iacute;a y se asocia con una elevada tasa de morbimor¬talidad (14-16). La determinaci&oacute;n de la suceptibilidad para los AG es usualmente realizada en los laboratorios de microbiolog&iacute;a por las pruebas difusi&oacute;n en disco o por la concentraci&oacute;n inhibitoria m&iacute;nima (CIM); sin embargo, es importante conocer tambi&eacute;n la presencia de genes que confieren resistencia a los AG. El objetivo de este estudio fue el de determinar la presencia del gen aac(6')-aph(2") en cepas de SCN aisladas en infecciones neonatales y establecer la concordancia con las pruebas de sensibilidad in-vitro, con el prop&oacute;sito de contribuir a la caracterizaci&oacute;n de la resistencia microbiana y el uso racional de los antibi&oacute;ticos.</p>       <p><b>Material y m&eacute;todos</b></p>      <p><b>Aislamientos</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se investigaron 63 cepas de SCN aisladas a partir de hemocultivos y cultivos de puntas de cat&eacute;ter provenientes de 57 reci&eacute;n nacidos admitidos en las unidades de neonatolog&iacute;a del IMI. La identificaci&oacute;n y la concentraci&oacute;n inhibitoria m&iacute;nima (CIM) a gentamicina de las especie de los SCN se llev&oacute; a cabo mediante el uso de  p&aacute;neles Gram positivos MIC/Combo MicroScan&reg; (P35) siguiendo las instrucciones del fabricante, y la lectura se hizo por el sistema automatizado MicroScan&reg; auto Scan-4 (Roche Biocare, Canad&aacute;). La prueba de susceptibilidad  a amikacina se determin&oacute; por el m&eacute;todo de difusi&oacute;n en disco (concentraci&oacute;n 30 &mu;g). Las cepas control fueron S. epidermidis ATCC 12228 y  S. aureus ATCC 29213; los resultados se interpretaron de acuerdo con las normas NCLSI (17). </p>      <p>Amplificaci&oacute;n de gen aac(6')aph(2")</p>      <p>La extracci&oacute;n de ADN se realiz&oacute; a partir de un cultivo puro, de acuerdo con el protocolo del fabricante (proDNA2003, CorpoGen-Colombia). La amplificaci&oacute;n se hizo por PCR m&uacute;ltiplex, usando para la detecci&oacute;n del gen aac(6')aph(2") los oligonucle&oacute;tidos  5'TTGGGAAGATGAAGTTTTTAGA3' 5'CCTTTACTCCAATAATTTGGCT3' (GenBank M13771), como control interno el RNA ribosomal 16S (16SrRNA) 5'GGAGGAAGGTGGGGATGACG3' 5'ATGGTGTGACGGGCGGTGTG3'(Gen Bank J01859), y para confirmar la presencia de S. epidermidis los oligo¬nucle&oacute;¬tidos¬  5'ATCAAAAAGTTGGCGAACCTTTTCA3' y 5'CAAAAGAGCGTGGAGAAAAGTATCA3 (GenBank N/A) (18).</p></p>      <p>En cada corrido como control positivo se utiliz&oacute; la cepa S. epidermidis Rescol 13, proporcionada  por el Instituto de Gen&eacute;tica Molecular Bacteriana de la Universidad del Bosque, Bogot&aacute;, como control negativo la cepa de S. epidermidis ATTC 12228 y como control ambiental la mezcla de reactivos, sin ADN diana.</p>       <p>Las condiciones de reacci&oacute;n fueron: dNTPs 200 &mu;M, Go Taq polimerasa 2,5 U (Promega), e iniciadores 0,4 &mu;M para la amplificaci&oacute;n del gen aac(6')aph(2"), y 0,1 &mu;M para el control interno y la determinaci&oacute;n espec&iacute;fica del microorganismo. Las reacciones se llevaron a cabo en el termociclador PTC-100 (MJ Research Inc. Alameda, EE.UU.). Las condiciones de amplificaci&oacute;n fueron: desnaturalizaci&oacute;n inicial a 96&deg; C por tres minutos, seguida de 34 ciclos de desnaturalizaci&oacute;n a 95&deg; C por 30 segundos, anillamiento a 55&deg; C por 30 segundos, extensi&oacute;n a 72&deg; C por 30 segundos y una extensi&oacute;n final a 72&deg; C por siete minutos. La detecci&oacute;n de los productos de amplificaci&oacute;n se efectu&oacute; mediante electroforesis en gel de agarosa al 2 por ciento, seguido de coloraci&oacute;n con bromuro de etidio 0,5 &mu;g/mL <a href="#f1">figura 1</a>.  </p>           <p align="center"><a name="f1"></a><img src="img/revistas/rfmun/v57n4/v57n4a05f1.jpg"></p>         <p><b>An&aacute;lisis</b></p>      <p>El an&aacute;lisis de los datos se hizo utilizando el programa STATA 8.0; se aplic&oacute; estad&iacute;stica descriptiva informando frecuencias absolutas y relativas y se utiliz&oacute; la prueba exacta de Fisher para  independencia de las variables categ&oacute;ricas.</p>        <p><b>Consideraciones &eacute;ticas</b></p>       <p>El protocolo fue aprobado por los comit&eacute;s de &eacute;tica de las instituciones participantes. Los aislamientos corresponden a muestras tomadas durante el manejo cl&iacute;nico est&aacute;ndar de los neonatos y no se tomaron muestras exclusivamente para los fines del estudio. </p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Resultados</b></p>        <p>Durante el per&iacute;odo comprendido entre el 21 de noviembre de 2003 y el 20 de mayo de 2004 se aislaron 48 (76,19%) cepas de SCN provenientes de aislamientos de hemocultivos y 15 (23,81%) cepas de SCN  obtenidas de aislamientos de puntas de cat&eacute;ter, de 57 reci&eacute;n nacidos en la Unidad de Neonatolog&iacute;a del Instituto Materno Infantil (IMI).</p>      <p>La mayor&iacute;a de los reci&eacute;n nacidos recibieron tratamiento con vancomicina asociada con gentamicina o amikacina. La <a href="#t1">tabla 1</a>  muestra la distribuci&oacute;n de frecuencias de los SCN aislados  de hemocultivo y cultivos de punta de cat&eacute;ter y los resultados de la prueba de susceptibilidad a gentamicina y amikacina. </p>      <p align="center"><a name="t1"></a><img src="img/revistas/rfmun/v57n4/v57n4a05t1.jpg"></p>         <p>La interpretaci&oacute;n de la prueba de sensibilidad para la gentamicina por el m&eacute;todo de CIM  fue: cepas sensibles (menor o igual a 4 mg/L), aislamientos con  susceptibilidad intermedia  (8 mg/L) y cepas resistentes (mayor de 8 mg/L), de acuerdo con las indicaciones del fabricante y las normas NCLSI (17). La interpretaci&oacute;n de las lecturas para sensibilidad a la amikacina por difusi&oacute;n en disco fue la siguiente: sensible mayor o igual a 17mm, sensibilidad intermedia: 16-15mm y resistente menor o igual a 14mm.</p>  Se busc&oacute; el gen aac(6')aph(2") en las cepas en estudio y se identific&oacute; en 42 (87,5%) de las 48 cepas de SCN provenientes de hemocultivos y en 13 (86,67%) de las 15 cepas provenientes de cultivos de puntas de cat&eacute;ter. Las <a href="#t2">tablas 2</a> y <a href="#t3">3</a> se&ntilde;alan los resultados de la prueba de susceptibilidad y la presencia o ausencia del gen en los aislamientos de hemocultivos y puntas de cat&eacute;ter, respectivamente. </p>          <p>No se encontr&oacute; asociaci&oacute;n estad&iacute;sticamente significativa entre la presencia del gen aac(6')-aph(2") y los resultados de las pruebas de resistencia a gentamicina en cepas de SCN obtenidas a partir de hemocultivos (p = 0,284) y cultivos de punta de cat&eacute;ter (p = 0,364)<a href="#t2">tabla 2</a>. Tampoco se hall&oacute; asociaci&oacute;n estad&iacute;sticamente significativa entre la presencia del gen y la resistencia a amikacina en cepas de SCN obtenidas a partir de muestras de hemocultivos (p = 0,179) y de puntas de cat&eacute;ter  (p = 0,486)<a href="#t3">tabla 3</a>.</p>      <p align="center"><a name="t2"></a><img src="img/revistas/rfmun/v57n4/v57n4a05t2.jpg"></p>     <p align="center"><a name="t3"></a><img src="img/revistas/rfmun/v57n4/v57n4a05t3.jpg"></p>     <p><b>Discusi&oacute;n</b></p>       <p>Los SCN, y entre ellos el S. epidermidis aislado con mayor frecuencia en muestras instituciones, son considerados pat&oacute;genos causantes de bacteremias e infecciones asociadas con cat&eacute;teres. Esta situaci&oacute;n es particularmente importante en pacientes inmunocomprometidos, como los neonatos (14-16), en quienes en la mayor&iacute;a de los casos se encuentran relacionados con multirresistencia a antibi&oacute;ticos, y pueden servir de reservorio a diversos genes que les confieren resistencia (19).  </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Aunque la vancomicina es el antibi&oacute;tico de elecci&oacute;n en este tipo de   infecciones neonatales, se ha reportado resistencia en Staphylococcus y Streptococcus, por lo cual se ha recomendado controlar su uso en las infecciones causadas por estos microorganismos (20). </p>       <p>El  estudio de la sensibilidad a los AG en muestras obtenidas de reci&eacute;n nacidos de la Unidad Neonatal del Instituto Materno Infantil evidenci&oacute; una alta tasa de resistencia a gentamicina  para las cepas aisladas de hemocultivos (56,3%)  y de cultivos de puntas de cat&eacute;ter (53,3 %). Estos resultados son similares a los reportados en un estudio que incluy&oacute; 19 hospitales europeos, donde los SCN presentaron un 54 por ciento de resistencia a gentamicina (21). La resistencia a amikacina fue menor de 20,8 por ciento para las cepas aisladas de hemocultivos y de 20 por ciento para las cepas aisladas de cultivos de punta de cat&eacute;ter); por lo tanto, en los casos de sepsis neonatal la amikacina deber&iacute;a ser considerada como terapia antimicrobiana inicial en asociaci&oacute;n con un antibi&oacute;tico ?-lact&aacute;mico.  </p>      <p>El gen aac(6')-aph(2") estuvo presente en 55 de las 63 cepas (87,3%) de SCN, prevalencia id&eacute;ntica a la informada para Staphylococcus por el grupo europeo de resistencia a antibi&oacute;ticos (ESGAR) (22). Udo E. y colaboradores, en el a&ntilde;o 2000 reportaron que sobre un total de 70 cepas de Staphylococcus estudiadas, 30 correspondieron a SCN y en 24 de &eacute;stas (80%) el gen      acc(6')-aph(2") estaba presente (23). Sin embargo, otros autores hallaron la presencia del gen en un porcentaje menor (68%) de todas las cepas de SCN (24). Las discrepancias en los resultados se pueden explicar por diferencias en el uso de antibi&oacute;ticos, por la dispersi&oacute;n y diseminaci&oacute;n de cepas intrahospitalarias resistentes y por el tipo de poblaci&oacute;n estudiada, puesto que la mayor&iacute;a de los trabajos realizados incluyen pacientes adultos con sepsis. </p>          <p>Las pruebas de susceptibilidad in-vitro pueden no reflejar apropiadamente la respuesta in-vivo, lo que supone la necesidad de correlacionar el resultado cl&iacute;nico con la presencia o ausencia del gen. La correlaci&oacute;n de los desenlaces cl&iacute;nicos neonatales con los perfiles de susceptibilidad antimicrobiana se dificultaron en nuestro estudio, pues los neonatos con cultivos positivos para SCN recibieron como tratamiento una asociaci&oacute;n de vancomicina m&aacute;s AG y no se encontraron cepas resistentes a este antibi&oacute;tico (16).  </p>      <p>La falta de asociaci&oacute;n entre la presencia del gen aac(6')-aph(2") y las pruebas de susceptibilidad puede indicar que la prueba microbiol&oacute;gica convencional no es suficientemente sensible ni espec&iacute;fica, ya que el 81,25 por ciento de las cepas sensibles a gentamicina presentaban el gen y en el 85,42 por ciento de las cepas sensibles para amikacina se encontr&oacute; el gen. Sin embargo, esto no implica su expresi&oacute;n ni la funci&oacute;n apropiada de la prote&iacute;na, y por lo tanto se requerir&iacute;a determinar tambi&eacute;n los perfiles de expresi&oacute;n del gen y la secuenciaci&oacute;n de &eacute;ste. </p>        <p>Las  cepas que presentaron resistencia y no presentaron  el gen  se podr&iacute;an explicar por la existencia de otros mecanismos de resistencia, tales como la presencia de integrones y genes cassettes, entre otros, los cuales han sido asociados a la resistencia de AG, y en las diferencias entre las caracter&iacute;sticas fenot&iacute;pica  y genot&iacute;picas  en cepas bacterianas (25). </p>       <p>Dado que los AG hacen parte de los protocolos de tratamiento para la sepsis neonatal la identificaci&oacute;n de genes que confieren resistencia a los AG en las cepas aisladas de los pacientes podr&iacute;a ser &uacute;til para racionalizar el uso de estos antibi&oacute;ticos.</p>        <p><b>Agradecimientos</b></p>        <p>A Mar&iacute;a Teresa Herrera, por sus aportes acad&eacute;micos a la realizaci&oacute;n de este trabajo, y al Instituto Materno Infantil de Bogot&aacute;.</p>       <p><b>Financiaci&oacute;n</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El trabajo fue realizado y financiado por la Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca y por la Universidad Nacional de Colombia.</p>        <p><b>Referencias</b></p>        <!-- ref --><p>1.	Kotra L, Haddad J, Mobashery S. Aminoglycoside: Perspectives on mechanisms of action and resistance and strategies to counter resistance. Antimicrob Agents Chemother. 2000; 44: 3249-3256.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0120-0011200900040000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>2.	Francois B, Rusell R, Murray J, Aboul-ela F, Masquida B, Vicens Q, Westhof E. Crystal structures of complexes between aminoglycosides and decoding A site oligonucleotides: role of the number of rings and positive charges in the specific binding leading to miscoding. Nucleic Acids Res. 2005; 33: 5677-5690.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0120-0011200900040000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>3.	Azucena E, Mobashery S. Aminoglycoside-modifying enzymes: mechanisms of catalytic processes and inhibition. Drug Resist Updat. 2001; 4: 106-117.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-0011200900040000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>4.	Boehr DD, Daigle DM, Wright GD.  Domain-domain interactions in the aminoglycoside antibiotic resistance enzyme AAC(6')-APH(2¨). Biochemistry. 2004; 43: 9846–9855.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-0011200900040000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>5.	Daikos GL, Bamias G, Kattamis C, Zervos MJ, Chow JW, Christakis G, et al. Structures, locations, and transfer frequencies of genetic elements conferring high-level gentamicin resistance in Enterococcus faecalis isolates in Greece. Antimicrob Agents Chemother. 2003; 47: 3950-3953.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-0011200900040000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>6.	Ferretti JJ, Gilmore KS, Courvalin P. Nucleotide sequence analysis of the gene specifying the bifunctional 6-aminoglycoside acetyltransferase 2-aminoglycoside phosphotransferase enzyme in Streptococcus faecalis and identification and cloning of gene regions specifying the two activities. J Bacteriol. 1986;167: 631-638.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-0011200900040000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>7.	Horaud T, de C&eacute;sp&egrave;des G, Trieu-Cuot P. Chromosomal gentamicin resistance transposon Tn3706 in Streptococcus agalactiae B128. Antimicrob Agents Chemother. 1996; 40: 1085-1090.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-0011200900040000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p> 8.	Ubukata K, Yamashita N, Gotoh A, Konno M. Purification and characterization of aminoglycoside-modifying enzymes from Staphylococcus aureus and Staphylococcus epidermidis. Antimicrob Agents Chemother. 1984; 25: 754-759.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-0011200900040000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>9. Chow JW, Kak V, You I, Kao SJ, Petrin J, Clewell DB, Lerner SA, Miller H, Shaw KJ. Aminoglycoside resistance genes aph(2")-Ib and aac(6')-Im detected together in strains of both Escherichia coli and Enterococcus faecium. Antimicrob Agents Chemother. 2001; 45: 2691-2694.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-0011200900040000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>10.	Galimand M, Lambert T, Gerbaud G, Courvalin P. High-level aminoglycoside resistance in the beta-hemolytic group G Streptococcus isolate BM2721. Antimicrob Agents Chemother. 1999; 43: 3008-3010.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-0011200900040000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>11.	Ardic N, Sareyyupoglu B, Ozyurt M, Haznedaroglu T, Ilga U. Investigation of aminoglycoside modifying enzyme genes in methicillin-resistant Staphylococci. Microbiol Res. 2006; 161: 49-54.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-0011200900040000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>12.	Wright G, Berghuis A, Mobashery S. Aminoglycoside antibiotics. Structures, functions and resistance. Adv Exp Med Biol. 1998; 456: 27-69.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-0011200900040000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>13.	Davies, J, Wright GD. Bacterial resistance to aminoglycoside  antibiotics. Trends Microbiol. 1997; 5: 234-240.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-0011200900040000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>14.	Cifuentes  Y, Ruiz A, Leal A, Mu&ntilde;oz L, Herrera M, Jim&eacute;nez L. Perfil microbiol&oacute;gico en asilamientos en Unidades neonatales en un hospital de tercer nivel de Bogot&aacute;, Colombia. Rev Salud P&uacute;blica Bogot&aacute;. 2005; 7: 191-205.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-0011200900040000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>15.	Leboucher B, Leblanc M, Berlie I, Savagner C, Lemarie Le Bouedec S. C, Effectiveness of an informative report on the prevention of nosocomial bloodstream infections in a neonatal intensive care unit. Arch Pediatr. 2006; 13: 436-441&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-0011200900040000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16.	Karlowicz M,  Buescher E, Surka A. Fulminat late-onset sepsis in a neonatal late-onset sepsis in a neonatal intensive care unit., 1988-1997 and the impact of avoiding empiric vancomycin therapy. Pediatrics. 2000; 106: 137-190.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-0011200900040000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>17.	Clinical and Laboratory Standards Institute. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing; sixteenth informational supplement. M100-S17. Wayne, PA: CLSI; 2007.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-0011200900040000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>18.	Martineau F, Picard F, Grenier L, Roy P, Ouellette M,  Bergeron M. Muliplex PCR assay for the detection of clinically relevant antibiotic resistance genes in Staphylococci isolated from patients infected after cardiac surgery. The ESPRIT Trial.  J Antimicrob Chemother. 2000;46:527-533.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-0011200900040000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>19.	Piette A, Verschraegen G. Role of coagulase-negative staphylococci in human disease. Vet Microbiol. 2009; 134: 45-54.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-0011200900040000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>20.	Karlowicz M,  Buescher E, Surka A. Fulminat late-onset sepsis in a neonatal late-onset sepsis in a neonatal intensive care unit., 1988-1997 and the impact of avoiding empiric vancomycin therapy. Pediatrics. 2000;106: 137-190.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-0011200900040000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>21.	Schmitz F-J,  Fluit A, Gondolf M , Beyraua  R,  Lindenlaufa E, Verhoef J, et al. The prevalence of aminoglycoside resistance and corresponding resistance genes in clinical isolates of Staphylococci from 19 European hospitals. J Antimicrob Chemother. 1999; 43: 253-259.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-0011200900040000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>22.	Dornbusch K, Miller G, Hare R, Shaw K. Resistance to aminoglycoside antibiotics in gram-negative bacilli and Staphylococci isolated from blood. Report from a European collaborative study. The ESGAR Study Group (European Study Group on Antibiotic Resistance). 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