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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de hongos entomopatógenos sobre la garrapata del ganado Boophilus microplus (Acari: Ixodida): uso de activadores de patogenicidad]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In arthropod-pathogen systems, the valué of using pathogenicity activators to improve growth, sporulation capacity and adherence of entomopathogenic fungi to arthropods has been demonstrated. The objective of the work was to study the biocontrol activity of two isolates of Metarhizium anisopliae (Mt019 and Mt020) on the tick Boophilus microplus, by examining the use of pathogenicity activators used during the fungal culture phase. A completely randomized design was used, testing three treatments applied by aspersión: culture on traditional agar (EM), media plus unspecific pathogenicity activator (S) and the same media with a tick-specific activator (SA). The experimental unit was a group of ten engorged ticks (five replícales) and fungal concentratlon was constant at 10(8) conidia ml-1. Analysis of the results was based on the parameters IEC (Conversión Efficiency Index) and ER (Reproductive Efficacy), indicators of reproductive capacity of the tick and PCIEC (Percentage Control of IEC), and PCONER (Percentage Control ER), associated with fungal efficacy. There was an effect of pathogenicity activators on the two fungi evaluated; the IEC valué was lower (p< 0,01) ¡n groups with activator. In the case of ER, valúes were lower for groups with activator but not statistically significant. Control levéis (PCIEC and PCONER) were significantly higher (p< 0.01) in the two treatments with activator for both parameters in the two fungal isolates. It was concluded that the use of pathogenicity activators during the culture phase is a process that ensures a better biocontrol effect of fungi on ticks.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <P align="center"><font size="4"><B>Efecto de hongos entomopat&oacute;genos sobre la  garrapata del ganado<I> Boophilus microplus</I> (Acari: Ixodida): uso de activadores de patogenicidad</b></font></P>     <P align="center"><font size="3"><b>Effect of entomopathogenic fungi on the cattle tick<I> Boophilus microplus</I> (Acari:  Ixodida): use of pathogenicity activators</b> </font></P>     <P align="center">&nbsp;</P>     <P><b>KARIM RAYMOMD C.<sup>1</sup>, FABIOLA ROJAS B.<sup>1</sup>, EFRA&Iacute;N BENAVIDES O.<sup>2</sup>, ALBA MARINA COTES <sup>3</sup>, LAURA VILLAMIZAR<sup>3</sup>, VAMIA RONDEROS J.<sup>4</sup> , PAOLA GARC&Iacute;A M.<sup>4</sup></b> <br />  <sup>1</sup> Estudiantes de Bacteriolog&iacute;a (Tesistas). Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca. Bogot&aacute;, D. C. E-mails: <a href="mailto:lisa70k@hotmail.com">lisa70k@hotmail.com</a>, <a href="mailto:fabbyross@hotmail.com">fabbyross@hotmail.com</a> <br /> <sup>2</sup> Autor para correspondencia: M&eacute;dico Veterinario, M. Se., Ph. D. Investigador Principal. Programa de Salud Animal, Centro de Investigaci&oacute;n en Salud Animal. Corporaci&oacute;n Colombiana de Investigaci&oacute;n Agropecuaria, CORPOICA. A. A. 59144. Bogot&aacute;, D. C., Colombia. Email: <a href="mailto:ebenavid@andinet.com">ebenavid@andinet.com</a> <br /> <sup>3</sup> Respectivamente, Ph. D. Fitopatolog&iacute;a. Investigadora Principal. E-mail: <a href="mailto:acotes@corpo¡ca.org.co">acotes@corpo&iexcl;ca.org.co</a>; Qu&iacute;mica Farmac&eacute;utica, M. Se. Investigadora. E-mail: <a href="mailto:laurafernandav@yahoo.es">laurafernandav@yahoo.es</a>. Laboratorio de Control Biol&oacute;gico CORPOICA, C. I. Tibaitat&aacute;. <br /> <sup>4</sup> Investigadores principiantes. Programa de Salud Animal, Centro de Investigaci&oacute;n en Salud Animal. Corporaci&oacute;n Colombiana de Investigaci&oacute;n Agropecuaria, CORPOICA.</P>  <hr size="1" /> </font>     <P><font size="2" face="verdana"><B><font size="3">Resumen.</font></B> En sistemas artr&oacute;podo-pat&oacute;geno se ha demostrado la bondad del uso de activadores de patogenicidad para favorecer el crecimiento, esporulaci&oacute;n y adherencia de hongos entomopat&oacute;genos sobre artr&oacute;podos. El objetivo del trabajo fue estudiar la actividad biocontroladora de dos aislamientos de<I> Metarhizium anisopliae</I> (Mt019 y Mt020) sobre la garrapata<I> Boophilus microplus,</I> examinado el uso de activadores de patogenicidad empleados durante la fase de cultivo del hongo. Se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o completamente al azar que evalu&oacute; tres tratamientos aplicados por aspersi&oacute;n: cultivo en agar tradicional (EM), medio m&aacute;s activador de patogenicidad inespec&iacute;fico (S) y este mismo medio adicionado de un activador espec&iacute;fico para la garrapata (SA). La unidad experimental fue un grupo de diez teleoginas (cinco r&eacute;plicas) y la concentraci&oacute;n del hongo fue constante a 10<sup>8</sup> conidios ml<sup>-1</sup>. El an&aacute;lisis de resultados se bas&oacute; en los par&aacute;metros IEC (&iacute;ndice de Eficiencia de la Conversi&oacute;n) y ER (Eficacia Reproductiva), que indican la capacidad reproductiva de la garrapata y del PCIEC (Porcentaje de Control de IEC) y del PCONER (Porcentaje Control del ER), asociados con la eficacia del hongo. Se demostr&oacute; efecto de los activadores de patogenicidad en los dos hongos evaluados; siendo el valor del IEC inferior (p&lt;0,01) en los grupos con activador. En el caso de ER los valores en grupos con activador fueron inferiores, pero no significativos estad&iacute;sticamente. El grado de control (PCIEC y PCONER) fue significativamente superior (p&lt; 0,01) en los dos tratamientos con activador en ambos par&aacute;metros para los dos aislamientos de hongo. Se concluye que el uso de activadores de patogenicidad durante la fase de cultivo es un proceso que asegura un mejor efecto biocontrolador de los hongos sobre la garrapata. </font></P> <font face="verdana" size="2"></font>     <P><font size="2" face="verdana"><B><font size="3">Palabras clave:</font></B><I> Metarhizium anisopliae.</I> Control biol&oacute;gico. Virulencia. Oviposici&oacute;n. </font></P> <font face="verdana" size="2"> <hr size="1" /> </font>     <P><font size="2" face="verdana"><B><font size="3">Summary.</font></B> In arthropod-pathogen systems, the valu&eacute; of using pathogenicity activators to improve growth, sporulation capacity and adherence of entomopathogenic fungi to arthropods has been demonstrated. The objective of the work was to study the biocontrol activity of two isolates of<I> Metarhizium anisopliae </I>(Mt019 and Mt020) on the tick<I> Boophilus microplus,</I> by examining the use of pathogenicity activators used during the fungal culture phase. A completely randomized design was used, testing three treatments applied by aspersi&oacute;n: culture on traditional agar (EM), media plus unspecific pathogenicity activator (S) and the same media with a tick-specific activator (SA). The experimental unit was a group of ten engorged ticks (five repl&iacute;cales) and fungal concentratlon was constant at 10<sup>8</sup> conidia ml<sup>-1</sup>. Analysis of the results was based on the parameters IEC (Conversi&oacute;n Efficiency Index) and ER (Reproductive Efficacy), indicators of reproductive capacity of the tick and PCIEC (Percentage Control of IEC), and PCONER (Percentage Control ER), associated with fungal efficacy. There was an effect of pathogenicity activators on the two fungi evaluated; the IEC valu&eacute; was lower (p&lt; 0,01) &iexcl;n groups with activator. In the case of ER, val&uacute;es were lower for groups with activator but not statistically significant. Control lev&eacute;is (PCIEC and PCONER) were significantly higher (p&lt; 0.01) in the two treatments with activator for both parameters in the two fungal isolates. It was concluded that the use of pathogenicity activators during the culture phase is a process that ensures a better biocontrol effect of fungi on ticks. </font></P>     <P><font size="2" face="verdana"><B><font size="3">Key words:</font></B><I> Metarhizium anisopliae.</I> Biological control. Virulence. Oviposition. </font></P> <font face="verdana" size="2"><hr size="1" />     <P><font size="3"><B>Introducci&oacute;n</B></font></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>La garrapata com&uacute;n del ganado<I> Boophilus microplus</I> es el ectopar&aacute;sito que provoca las p&eacute;rdidas econ&oacute;micas mayores en el sector ganadero del mundo. Se distribuye en Centro y Sudam&eacute;rica, Asia, Australia, el sur de Plorida, Tanganyika, Mozambique y Madagascar (Shaw 1966). Datos notificados por la FAO, en 1984   (Betancourt<i> et al.</i> 1992), indican que la   infestaci&oacute;n por garrapatas y los costos   involucrados en su control, significan una  p&eacute;rdida mundial para la ganader&iacute;a bovina   de cerca de U.S. $7.3 cabeza/a&ntilde;o. En las  condiciones colombianas, se ha calculado   que las p&eacute;rdidas asociadas con las garra  patas y moscas para la ganader&iacute;a asci&eacute;nden a 76.713 millones de pesos anuales (Benavides 2001). El da&ntilde;o se asocia de forma directa tanto con la capacidad hemat&oacute;faga de estos artr&oacute;podos, como con la transmisi&oacute;n de agentes causantes de enfermedad; tambi&eacute;n existen p&eacute;rdidas indirectas relacionadas con los costos del control. </P>      <P>El uso de acaricidas ha sido la principal estrategia para el control de garrapatas; sin embargo, &eacute;stas han desarrollado resistencia a todos los ingredientes activos existentes en el mercado, como arsenicales, clorados, organofosforados, diamidinas, piretroides sint&eacute;ticos y lactonas macroc&iacute;clicas, impidiendo su control efectivo en el &aacute;mbito mundial (Benavides<I> et al.</I> 1999); por este motivo se ha fomentado un gran inter&eacute;s en la evaluaci&oacute;n, desarrollo y uso de m&eacute;todos alternativos de control parasitario, que minimicen la utilizaci&oacute;n de pesticidas. Dentro de las principales alternativas que se han propuesto se incluyen, el desarrollo de planes de aplicaci&oacute;n estrat&eacute;gica o t&aacute;ctica del pesticida intentando disminuir la intensidad de aplicaci&oacute;n de los acaricidas, la rotaci&oacute;n de praderas, el empleo de animales resistentes a los par&aacute;sitos y la aplicaci&oacute;n de vacunas antigarrapatas. Se ha sugerido que estas alternativas sean integradas bajo Programas de Manejo Integrado de Plagas (MIP), los que investigan sobre la factibilidad del uso de diferentes m&eacute;todos no qu&iacute;micos de control y est&aacute;n basados en estudios de din&aacute;mica poblacional (Walker <I>et al.</I> 1988). Dentro de estas alternativas para el control se destaca el uso posible de hongos entomopat&oacute;genos (Camacho <I>et al.</I> 1998). </P>     <P>Investigaciones con hongos entomopat&oacute;genos demuestran que las diferentes condiciones de cultivo tienen un efecto sobre la virulencia de los conidios (La&ntilde;e y Trinci 1991). Incorporar varios componentes cuticulares de insectos al medio de cultivo de los hongos entomopat&oacute;genos produce un aumento significativo de la virulencia de dichos microorganismos, incrementando la actividad biol&oacute;gica, efecto posiblemente debido a la activaci&oacute;n de sistemas enzim&aacute;ticos en los hongos, los cuales son determinantes en su actividad biocontroladora sobre el insecto (Bidocha y Khachatourians 1991). </P>     <P>Se encontr&oacute; que adicionar activadores de patogenicidad al medio de cultivo de <I>Metharizium</I> spp., cuando &eacute;ste entra en contacto con la cut&iacute;cula del insecto, estimula la producci&oacute;n de enzimas extracelulares de actividad sin&eacute;rgica que degradan los componentes cuticulares (Clarkson y Charnley 1996). Villamizar<I> et al.</I> (2001) demostraron que la incorporaci&oacute;n al medio de cultivo de un homogeneizado de alas y patas de langosta y de salvado de trigo, increment&oacute; significativamente la actividad biocontroladora de<I> Metharizium an&iacute;sop&iacute;&iacute;ae</I> sobre<I> Rhammatocerus schistocercoides</I> (Orthoptera: Acrididae), adem&aacute;s establecieron una correlaci&oacute;n positiva entre la actividad de la enzima quimioelastasa proteasa PR1 y la virulencia de los conidios de<I> M. anisopliae. </I></P>     <P>Para el desarrollo del presente trabajo se consider&oacute; como aspecto prioritario la b&uacute;squeda de alternativas que mejorasen el desempe&ntilde;o de los biocontroladores, teniendo en cuenta que en un trabajo previo, Hern&aacute;ndez y Moreno (2001) seleccionaron las cepas de<I> M.anisopliae,</I> Mt019 y Mt020 por su mayor actividad biocontroladora contra<I> Bo. microplus,</I> pero tambi&eacute;n debido a los avances alcanzados en la definici&oacute;n de nuevos m&eacute;todos de aplicaci&oacute;n de los hongos (aspersi&oacute;n<I> vs.</I> inmersi&oacute;n). Por otra parte, trabajos realizados en el laboratorio de ectopar&aacute;sitos del CEISA evaluaron cambios en las t&eacute;cnicas de incubaci&oacute;n de las garrapatas adultas, luego de realizados las exposiciones al hongo, perfeccionando el manejo del bioensayo. </P>     <P>Por lo tanto, el objetivo del presente trabajo fue el evaluar el efecto de la adici&oacute;n de compuestos potencialmente activadores de patogenicidad al medio de cultivo del hongo, sobre la actividad biocontroladora de<I> M. anisopUae</I> contra la garrapata<I> Bo. microplus,</I> utilizando una prueba de evaluaci&oacute;n <i>in vitro. </i></P>     <P><font size="3"><B>Materiales y M&eacute;todos </b></font></P>     <P> El trabajo consisti&oacute; en el desarrollo de una prueba &iacute;n ui&iacute;ro donde el dise&ntilde;o experimental fue completamente al azar, con cinco r&eacute;plicas por tratamiento, siendo la unidad experimental de diez individuos por caja de Petri. Adem&aacute;s se emplearon dos controles: a) control tratado (individuos asperjados &uacute;nicamente con Ttoeen 80 al 0,1%; y b) control absoluto (individuos no asperjados). Despu&eacute;s del ensayo, las cepas de los hongos se mantuvieron a temperatura de 25&deg;C (&plusmn;2&deg;), HR 80% (&plusmn;10%) y un foto periodo de 24 h luz. </P>     <P><B>Hongos entomopat&oacute;genos </b></P>     <P> <B>Cepas.</b> Se evaluaron dos accesiones del hongo<I> M. anosopliae</I> codificadas como Mt019 y Mt020, que fueron suministradas por el Banco de Qermoplasma del Laboratorio de Control Biol&oacute;gico de CORPO1CA. El criterio para la elecci&oacute;n de &eacute;stas fue la evidencia de mayor efectividad contra la garrapata<I> Bo. microplus</I> como se detect&oacute; en estudios previos sobre el tema (Hern&aacute;ndez y Moreno 2001). </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><B>Proceso de reactivaci&oacute;n de las cepas. </b>Los hongos se reactivaron sobre 10 garrapatas adultas ingurgitadas, las que fueron infectadas mediante un proceso de inmersi&oacute;n en 20 mi de suspensi&oacute;n f&uacute;ngica, manteni&eacute;ndose a temperatura de 25&deg;C durante 10 d&iacute;as. El hongo fue aislado a partir de algunos individuos que presentaron completa esporulaci&oacute;n, mediante pasaje sobre el medio Saboureaud - Rosa de Bengala (S.R.B.), cuya composici&oacute;n por litro es de 2 g sacarosa, 6,4 g agar agar, 3 g neopeptona, 1,6 g gelatina, 0,15 g rosa de bengala. </P>     <P><B>Garrapatas </b></P>     <P> <B>Cepas.</b> Se trabaj&oacute; con garrapatas adultas ingurgitadas (teleoginas) de la cepa denominada Palma de Vino II- 02, suministrada por el Banco de Germoplasma del Laboratorio de Ectopar&aacute;sitos del Programa de Salud Animal de CORPOICA; esta cepa se considera resistente a compuestos organofosforados, piretroides sint&eacute;ticos y endectocidas, y se aisl&oacute; en el a&ntilde;o 1999 en Valledupar, Cesar; desde entonces se ha mantenido como colonia de laboratorio mediante pasajes sobre terneros susceptibles. </P>     <P><B>Teleoginas.</B> Las garrapatas adultas se obtuvieron a partir de infestaci&oacute;n artificial de un bovino susceptible mantenido en una unidad de aislamiento ubicada en las instalaciones del Centro de Investigaciones en Salud Animal de CEISA (Ciudad Universitaria, Bogot&aacute;, D. C.). La recolecci&oacute;n de individuos se<I> realiz&oacute; a partir</I> del d&iacute;a 21 post infestaci&oacute;n. </P>     <P><B>Desarrollo del bioensayo </b></P>     <P> Para la ejecuci&oacute;n del bioensayo se emplearon 400 garrapatas adultas ingurgitadas de<I> Bo. microplus:</I> 200 para el bioensayo con la cepa Mt019 y 200 para el ensayo con la cepa Mt020. El hongo crecido en cada medio de cultivo se consider&oacute; como un tratamiento, al igual que ambos controles. Cada tratamiento estuvo compuesto por cinco r&eacute;plicas. </P>     <P>El bioensayo se<I> realiz&oacute;</I> en las instalaciones del Laboratorio de Control Biol&oacute;gico de CORPOICA - Tibaitat&aacute; (Mosquera, Cundinamarca), mientras los controles se trabajaron en el Laboratorio de Salud Animal en CORPOICA- CEISA, para minimizar la posibilidad de exposici&oacute;n al hongo. Se requirieron 50 espec&iacute;menes por tratamiento, pes&aacute;ndose grupos de 10 individuos que se adhirierona cajas de Petri con ayuda de cinta doble faz. El inoculo se prepar&oacute; a partir de las cepas de<I> M. anisopliae, </I>previamente reactivadas en el medio S.R.B.; despu&eacute;s de diez d&iacute;as de crecimiento, se<I> realiz&oacute;</I> un precultivo l&iacute;quido en caldo Saboureaud que se mantuvo en agitaci&oacute;n constante durante 48 h; luego de lo cual el cultivo l&iacute;quido se utiliz&oacute; para inocular dos bandejas que conten&iacute;an una matriz s&oacute;lida de producci&oacute;n; una de ellas fue suplementada con un activador de patogenicidad inespec&iacute;fico (S), la otra fue adicionada de un activador espec&iacute;fico (SA). La concentraci&oacute;n del activador espec&iacute;fico fue de 3,3 x 10<sup>-3</sup>g cm<sup>-2</sup> y &eacute;ste fue disperso sobre el activador inespec&iacute;fico. Tambi&eacute;n se realiz&oacute; el cultivo del hongo sobre el medio tradicional extracto de malta (EM) en una tercera bandeja. </P>     <P>Despu&eacute;s de diez d&iacute;as del crecimiento y esporulaci&oacute;n del hongo sobre el medio de cultivo se realiz&oacute; una suspensi&oacute;n f&uacute;ngica a partir de cada uno de &eacute;stos, que conten&iacute;a una concentraci&oacute;n de 1 x 10<sup>8</sup> esporas ml<sup>-1</sup>; para verificar la concentraci&oacute;n requerida se realiz&oacute; un recuento de los conidios en la <I>c&aacute;mara</I> de Neubauer. El hongo se aplic&oacute; a las garrapatas mediante la aspersi&oacute;n de 0,4 mli de la suspensi&oacute;n a cada unidad experimental por medio de atomizadores que dispensaban un tama&ntilde;o de gota que vari&oacute; entre 150 - 250 &mu;m. Luego de este proceso, las cajas de Petri se ubicaron en recipientes pl&aacute;sticos que conten&iacute;an toallas de papel absorbente humedecido y permanecieron recubiertas con fibra de polietileno, por un per&iacute;odo de 14 d&iacute;as. </P>      <P>Se realiz&oacute; un registro visual diario del inicio de la postura de las garrapatas y del d&iacute;a en que fue evidente la esporulaci&oacute;n del hongo sobre las teleoginas. El d&iacute;a catorce despu&eacute;s del inicio del ensayo se retir&oacute; la totalidad de la oviposici&oacute;n por unidad experimental para ser pesada en una balanza anal&iacute;tica y despu&eacute;s ubicada en viales de vidrio con tap&oacute;n de gasa, para permitir la ventilaci&oacute;n de los huevos y observar su eclosi&oacute;n. </P>     <P><B>Par&aacute;metros evaluados </b></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P> Con los datos obtenidos se calcul&oacute; el &iacute;ndice de Eficiencia de la Conversi&oacute;n (IEC), un par&aacute;metro cuantitativo utilizado para determinar la conversi&oacute;n del peso de una hembra ingurgitada (Benavides<I> et al. </I>1989). Este par&aacute;metro se calcul&oacute; dividiendo el peso de los huevos producido por unidad experimental sobre el peso de las teleoginas, de acuerdo con la siguiente expresi&oacute;n (Drummond<I> et al.</I> 1971): </P>     <P>IEC = Peso de los huevos de la Unidad Experimental/ Peso de las hembras de la Unidad Experimental al inicio del ensayo </P>     <P>Posteriormente, se confinaron los viales en c&aacute;mara h&uacute;meda por catorce d&iacute;as m&aacute;s, registrando el inicio de la eclosi&oacute;n de larvas a partir de los huevos. Entonces, se calcul&oacute; el Porcentaje de Eclosi&oacute;n de larvas realizando un conteo de cascarones mediante la ayuda de un estereoscopio. Con estos datos se determin&oacute; la Eficiencia Reproductiva o ER; cuyo c&aacute;lculo se realiz&oacute; acorde con la f&oacute;rmula (Drummond et<I> al.</I> 1971; Benavides<I> et al.</I> 1989): </P>     <P>ER = ({IEC<I> x</I> Porcentaje de Eclosi&oacute;n<I> x </I>20.000}), donde 20.000 es una constante y equivale al n&uacute;mero de larvas obtenidas de un gramo de huevos </P>     <P>La Eficiencia Reproductiva (ER) de cada grupo de garrapatas tratado se compar&oacute; con la ER de los grupos control. Este par&aacute;metro, el Porcentaje de Control del ER denominado PCONER, se determin&oacute;, tal como se describe abajo. Del mismo modo se calcul&oacute; el PCIEC, el cual es el Porcentaje de Control del IEC: </P>     <P>PCOMER = {(ER Grupo control - ER del tratado) / ER Qrupo Control}<I> x</I> 100. </P>     <P>PCIEC = {(IEC Grupo control - IEC Grupo tratado) / IEC Qrupo Control)<I> x</I> 100 </P>     <P><B>An&aacute;lisis estad&iacute;stico </b></P>     <P> Los datos crudos del ensayo se estructuraron en una hoja de c&aacute;lculo en EXCEL, la que se utiliz&oacute; para la determinaci&oacute;n de los diversos par&aacute;metros. La informaci&oacute;n obtenida para cada par&aacute;metro se someti&oacute; a un an&aacute;lisis de estad&iacute;stica descriptiva para cada hongo y tratamiento, incluyendo el c&aacute;lculo de promedio, varianzay desviaci&oacute;n est&aacute;ndar; adem&aacute;s de la estad&iacute;stica no param&eacute;trica (medianay cuartiles). Los resultados se sometieron a un an&aacute;lisis de varianza de una v&iacute;a (Bailey 1981), mediante el paquete estad&iacute;stico Xlstat (<a href="http://www.xlstat.com/indexfr.html" target="_blank">http://www.xlstat.com/indexfr.html</a>). En este programa, una vez establecido mediante una prueba de Fischer que el tratamiento afecta las variables, los promedios de cada grupo son comparados entre s&iacute; mediante una prueba de rangos m&uacute;ltiples de Bonferroni. </P>     <P><font size="3"><B>Resultados y Discusi&oacute;n </b></font></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><b>Producci&oacute;n de masa f&uacute;ngica</b> </P>     <P>Al cultivar los aislamientos en el medio con activador espec&iacute;fico y con activador inespec&iacute;fico, se evidenci&oacute; que los conidios de la cepa Mt019 presentaron un color verde de una tonalidad m&aacute;s clara que los de la cepa Mt020, el crecimiento de ambos aislamientos fue abundante con presencia de un micelio firme, con alta esporulaci&oacute;n. El crecimiento micelial para ambos aislamientos se observ&oacute; a los cinco d&iacute;as y los conidios se evidenciaron a partir del d&iacute;a d&eacute;cimo. En cuanto al crecimiento sobre el medio Extracto de Malta, la aparici&oacute;n de micelio en las dos cepas ocurri&oacute; al sexto d&iacute;a y los conidios se apreciaron a partir del d&iacute;a doce. </P>     <P>Despu&eacute;s de realizado el bioensayo, para las garrapatas que fueron asperjadas con la suspensi&oacute;n de la cepa Mt019, el hongo present&oacute; un crecimiento parcial muy difuso con evidencia &uacute;nicamente de conidios; las teleoginas mostraron un aspecto seco. En contraste con lo anterior, el crecimiento de la cepa Mt020 sobre las teleoginas fue abundante y present&oacute; tanto micelio como conidios. El promedio de d&iacute;as de crecimiento del hongo despu&eacute;s del bioensayo, fue de 6 present&aacute;ndose con ambas cepas una inhibici&oacute;n de la oviposici&oacute;n a partir del d&iacute;a tres. </P>     <P><B>Efecto sobre los par&aacute;metros reproductivos de la garrapata </b></P>     <P> Al analizar el par&aacute;metro IEC de Mt019 (<a href="img/revistas/rcen/v30n1/v30n1a01t1.gif">Tabla 1</a>) se encontraron diferencias significativas entre tratamientos, form&aacute;ndose tres grupos estad&iacute;sticos; en el primero, en el que se ubicaron los valores menores para la variable, estaban los tratamientos S, con un valor de IEC de 0,018, y SA, con un IEC de 0,047; en el segundo grupo estad&iacute;stico, con un IEC de 0,141 estaba el tratamiento EM y por &uacute;ltimo se ubicaron los controles. La evaluaci&oacute;n del par&aacute;metro IEC para la cepa Mt020 present&oacute; diferencias estad&iacute;sticas entre los tratamientos y controles; S y SA se agruparon estad&iacute;sticamente con valores de 0,006 y 0,040 respectivamente; mientras que S y EM con un valor de 0,118 conformaron el segundo grupo; el tercer grupo lo constituyeron los controles, que para este bioensayo tuvieron los mismos valores tanto para el aislamiento Mt019 como para el Mt020 (C = 0,340, CA = 0,393) (<a href="img/revistas/rcen/v30n1/v30n1a01t1.gif">Tabla 1</a>). </P>      <P>Estos resultados demuestran el efecto ben&eacute;fico del uso de los activadores de patogenicidad durante la fase de cultivo del hongo; tanto cuando se us&oacute; el activador espec&iacute;fico, como con el inespec&iacute;fico, el valor del IEC fue significativamente menor, a cuando se aplic&oacute; el hongo cultivado en medio sint&eacute;tico y &eacute;stos a su vez estad&iacute;sticamente inferiores a los IEC de los controles. El valor menor del IEC indica que hubo una menor postura por parte de las garrapatas; es decir, que cuando se cultiv&oacute; el hongo con los dos activadores, el efecto del microorganismo sobre la oviposici&oacute;n de las garrapatas fue mayor que cuando se aplic&oacute; el hongo cultivado en medio extracto de malta, sugiriendo un aumento de la actividad biocontroladora de los activadores tanto espec&iacute;fico, como mespec&iacute;fico sobre las dos cepas de<I> M. anisopliae,</I> sin observarse diferencias entre los niveles de control alcanzados para los dos potenciales inductores de virulencia. Este aumento de la virulencia del hongo cultivado en presencia de los activadores, podr&iacute;a atribuirse a una estimulaci&oacute;n por parte de estos sustratos en alguno de los pasos determinantes en el mecanismo de acci&oacute;n del biocontrolador. </P>     <P>Los potenciales inductores de virulencia podr&iacute;an haber producido un incremento en la capacidad de germinaci&oacute;n de los conidios, aumentando la posibilidad de infecci&oacute;n de la garrapata, tal como lo se&ntilde;alaron Villamizar<I> et al.</I> (2001), quienes observaron un aumento en la capacidad de germinaci&oacute;n de los conidios de<I> N. anisopliae</I> cuando &eacute;ste fue cultivado en presencia de algunos potenciales inductores de virulencia y dicho aumento en la germinaci&oacute;n estuvo directamente relacionado con un aumento en la patogenicidad de los conidios. Por otro lado, los inductores pudieron aumentar la capacidad de producci&oacute;n de enzimas como la proteasa PR1 y las quitinasas que facilitan el proceso de penetraci&oacute;n por parte del microorganismo y cuya actividad puede ser mejorada cuando se adicionan determinados sustratos al medio de cultivo, como lo indicaron Villamizar y Cotes (2001), quienes hallaron un aumento en la virulencia de<I> M. anisoplie</I> contra la langosta llanera, cuando se adicion&oacute; al medio de cultivo un homogeneizado de alas y patas de langosta o salvado de trigo. Para la bacteria<I> Serratia</I> sp. tambi&eacute;n se encontr&oacute; una aumento en la actividad enzim&aacute;tica y biocontroladora contra la polilla guatemalteca de la papa<I> Teda solaniuora,</I> cuando la bacteria se cultiv&oacute; en presencia de un homogeneizado de larvas de la polilla y de salvado de trigo (Bosa<I> et al.</I> 2001). </P>     <P>Resultados similares a los obtenidos en el presente trabajo, fueron publicados por Bidocha y Khachatourians (1991) quienes determinaron que sustancias encontradas en la cut&iacute;cula de<I> M. sanguinipes</I> principalmente prote&iacute;nas ricas en alanina, prolina y amiono&aacute;cidos hidrof&oacute;bicos, incrementaron la germinaci&oacute;n conidial en el hongo <I>Beauueria bassiana y</I> la subsecuente penetraci&oacute;n hifal, aumentando la actividad biocontroladora. </P>     <P>Para el par&aacute;metro ER, en el cual se determina no s&oacute;lo la capacidad de postura de la garrapata, sino la eclosionabilidad de los huevos (<a href="img/revistas/rcen/v30n1/v30n1a01t2.gif">Tabla 2</a>), los tratamientos S y SA no presentaron diferencias estad&iacute;sticas entre s&iacute;, sugiriendo nuevamente que los dos activadores empleados en este estudio, tienen el mismo efecto inductor de patogenicidad sobre<I> M. anisopliae.</I> El tratamiento EM no present&oacute; diferencias estad&iacute;sticas con los tratamientos S, SA y los control, con asociaciones estad&iacute;sticas independientes hacia ambos extremos. Sin embargo, los resultados num&eacute;ricos indican que los conidios provenientes del cultivo en medio extracto de malta son menos virulentos que los cultivados en los medios con activador. Los valores para el ER de la cepa Mt019 producida en los diversos tratamientos fueron superiores a los obtenidos con la cepa Mt020, lo que sugiere que el aislamiento Mt020 es m&aacute;s virulento que el Mt019. </P>      <P><B>Efecto biocontrolador </b></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>El efecto biocontrolador definitivo de cada hongo y cada tratamiento se examin&oacute; mediante los par&aacute;metros PCIEC y PCONER. Para su c&aacute;lculo se utiliz&oacute; el valor de IEC y ER obtenido en cada r&eacute;plica, el cual fue cotejado contra el valor promedio de estos par&aacute;metros obtenido en todos los controles. Para el PCIEC en Mt019 (<a href="#f1">Fig. 1</a>), el nivel de control en el tratamiento sin activador (EM) fue de 61,35%; la adici&oacute;n de los activadores de patogenicidad increment&oacute; significativamente (P&lt; 0,05, prueba de Bonferroni) el grado de control hasta 87,09% para medio SA y hasta 94,97% en el medio S; no encontr&aacute;ndose diferencias entre los dos &uacute;ltimos. Similar situaci&oacute;n se observ&oacute; con el hongo Mt020, los valores de PCIEC fueron: SA= 98,34%y S= 89,16%; valores significativamente superiores del obtenido con el hongo cultivado en EM siendo de 67,68%. Estos resultados confirman nuevamente que para las dos cepas utilizadas en el estudio, los activadores s&iacute; tuvieron un efecto inductor de la virulencia contra la garrapata<I> Bo. microplus,</I> siendo factible su utilizaci&oacute;n en medios de producci&oacute;n masiva para producci&oacute;n industrial, que permitan obtener biomasa de alta calidad para el desarrollo de bioplaguicidas. </P>     <p align="center"><a name="f1"><img src="img/revistas/rcen/v30n1/v30n1a01f1.gif"></a></p>     <P>La <a href="#f2">figura 2 </a>presenta los valores de PCONER alcanzados para ambos hongos con y sin activadores. En el caso del hongo Mt019 con el activador &iexcl;nespec&iacute;fico (S) el PCONER fue del 94,68%, este valor no fue diferente estad&iacute;sticamente del &iacute;ndice obtenido con el activador espec&iacute;fico (SA= 87,06%). Estos tratamientos presentaron diferencias (p&lt; 0,05) respecto al PCONER del hongo crecido en EM (44,13%). En cuanto a la accesi&oacute;n Mt020, &eacute;sta present&oacute; mejor efecto entomopat&oacute;geno con relaci&oacute;n a la cepa Mt019, cuando ambas se cultivaron sin activador (EM= 73,13%), pero la adici&oacute;n de los activadores de patogenicidad al medio increment&oacute; significativamente el efecto biocontrolador (SA= 99,32%; S= 91,52%), no siendo estos &uacute;ltimos valores significativamente distintos entre s&iacute;. </P>     <p align="center"><a name="f2"><img src="img/revistas/rcen/v30n1/v30n1a01f2.gif"></a></p>      <P>Si se tiene en cuenta que el par&aacute;metro PCONER combina el efecto del biocontrolador sobre la postura de la garrapata (IEC) y sobre la capacidad de la eclosi&oacute;n de los huevos, cotejando los valores obtenidos contra los controles; los resultados obtenidos en el presente trabajo sugieren que los activadores, adem&aacute;s de tener un efecto significativo sobre la actividad biocontroladora de los conidios de<I> M. anisopliae,</I> pudieron haber potencializado los efectos subletales del hongo entomopat&oacute;geno, de la misma manera como lo describieron Hern&aacute;ndez y Moreno (2001), quienes observaron disminuci&oacute;n en la oviposici&oacute;n y eclosi&oacute;n de huevos de la garrapata Bo.,<I> microplus</I> cuando fue tratada con conidios de W.<I> anisopliae. Be, bassiana </I>y<I> Vertici&uuml;ium lecanii.</I> Este efecto tambi&eacute;n fue descrito para el trip de la flor de las leguminosas,<I> Megalurothrips sjostedti, </I>cuando al inocular larvas del insecto con conidios de<I> M. anisopliae,</I> en los adultos sobrevivientes se observ&oacute; una disminuci&oacute;n en las fecundidad, porcentaje de eclosi&oacute;n de huevos y longevidad (Ekesi y Man&iacute;anla 2000).</P>     <P><font size="3"><B>Conclusiones </b></font></P>      <p>&bull;  Utilizando un modelo<I> in vitro</I> de evaluaci&oacute;n, aplicando por aspersi&oacute;n el hongo entomopat&oacute;geno<I> Metarhizium anisopliae </I>sobre la garrapata del ganado<I> Boophilus microplus,</I> el aislamiento denominado Mt020 present&oacute; un mayor efecto biocontrolador; tanto en el par&aacute;metro PCIEC (Porcentaje de Control del &iacute;ndice de Eficiencia de la Conversi&oacute;n) como en el PCONER (Porcentaje de Control de la Eficiencia Reproductiva), en comparaci&oacute;n con el aislamiento Mt019.</p>     <p>&bull;El presente trabajo permiti&oacute; concluir que la utilizaci&oacute;n de activadores de patogenicidad en el medio de cultivo, tanto inespec&iacute;ficos como espec&iacute;ficos, aumenta notablemente la actividad biocontroladora de<I> Metarhizium anisopliae</I> sobre la garrapata<I> Boophilus microplus.</I></P>     <p><font size="3"><B>Agradecimientos </b></font></P>     <P>Los autores expresan sus sentimientos de gratitud hacia un sin n&uacute;mero de personas que de una u otra manera colaboraron en el &eacute;xito de este trabajo, particularmente al auxiliar Aldemar Z&uacute;&ntilde;iga por el manejo de animales experimentales en CEISA y a todos los profesionales y estudiantes del Laboratorio de Control Biol&oacute;gico del programa MIP en Tibaitat&aacute;. Este estudio fue financiado con recursos del convenio CORPOICA - Ministerio de Agricultura, recursos de inversi&oacute;n 2001. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font size="3"><B>Literatura citada </b></font></P>     <!-- ref --><P>BAJLEY, N. T. J. 1981. Statistical methods in biology. Second Edition. Hodder y Stoughton Ltd. 216 p. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0120-0488200400010000100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>BENAVIDES O., E. 2001. Control de las p&eacute;rdidas ocasionadas por los par&aacute;sitos del ganado. Carta Fedegan N&deg; 69, julio - agosto, (Anexo coleccionable &quot;Manejo Integrado de Plagas y Enfermedades en explotaciones ganaderas 6&quot;), p. 52-63. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0120-0488200400010000100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>BENAVIDES O., E.; ROMERO N., A.; RODR&Iacute;GUEZ B., J. 1999. Situaci&oacute;n actual de resistencia de la garrapata<I> Boophilus microplus a </I>acaricidas (Primera entrega). Carta FEDEGAN 59: 17-22. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0120-0488200400010000100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>BENAVIDES O., E.; GONZ&Aacute;LEZ, L. R.; MART&Iacute;NEZ, R. H.; PARRA, G. D.; VILLAR, C. C. 1989. Espectro de sensibilidad a acaricidas de una colonia de la garrapata<I> Boophilus microplus</I> establecida en el piedemonte Llanero. Revista ICA 24 (1): 24-31. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0120-0488200400010000100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P><font size="2" face="verdana">BETANCOURT, J. 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Growth of the entomopathogenic fungus <I>Beauveria bassiana</I> on cuticular components from the migratory grasshopper, <I>Melanoplus sanguinipes.</I> Journal of Invertebrate Pathology 5: 165-173. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-0488200400010000100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>BOSA, C. F.; COTES, A. M.; LUQUE, J. E. 2001. Efecto de la composici&oacute;n del medio de cultivo, los pases sucesivos y la actividad enzim&aacute;tica de<I> Serratia</I> sp., sobre su actividad biocontroladora hacia<I> Teda solinovora</I> Fovolny. Res&uacute;menes. XXVIII Congreso Sociedad Colombiana de Entomolog&iacute;a, p. 44-45. 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