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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de un bioplaguicida sobre algunos parámetros poblacionales del depredador Delphastus pusillus (Coleoptera: Coccinellidae)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In the design of pest management programs, an important aspect is to determine the compatibility between different control agents, for instance, between entomopathogenic fungi and the beneficial insects used for control of the same insect pest. Therefore the aim of this study was to establish the effect of a biopesticide based on the fungus Lecanicillium lecanii, an entomopathogen of the whitefly Trialeurodes vaporariorum, on some population parameters of the predator Delphastus pusillus. Through laboratory assays, we evaluated the effect of direct application of the biopesticide on survival of the adult stage of the predator. In a second experiment, life tables were constructed for the predator under two treatments: 1.Control, cohort of individuals fed healthy prey. 2. Cohort fed prey previously exposed to the biopesticide. In the direct application assay, it was determined that the biopesticide at the concentration recommended for whitefly control caused a mortality of 9.8% on the predators. In the life table experiment, results showed that the cohort of D. pusillus treated with the bioinsecticide had a significant reduction in longevity (49.0%) and fecundity (91.4%), with respect to the control. The results obtained suggest that application of the biopesticide could have moderate direct effects and important indirect effects on populations of D. pusillus.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="verdana">     <p align="right"><b>Secci&oacute;n Agr&iacute;cola</b></p>     <p align="CENTER">&nbsp;</p>     <p align="CENTER"><font size="4" face="verdana"><b>Efecto de un bioplaguicida    sobre algunos par&aacute;metros poblacionales del depredador <i>Delphastus pusillus</i>    (Coleoptera: Coccinellidae)</b></font></p>     <p align="CENTER"><b><font size="3" face="verdana">Effect of a biopesticide on    some population parameters of the predator <i>Delphastus pusillus</i> (Coleoptera:  Coccinellidae)</font></b></p> <font size="2" face="verdana">     <p>&nbsp;</p>     <p><b>RICARDO P&Eacute;REZ<sup>1</sup> , JAVIER GARC&Iacute;A-GONZ&Aacute;LEZ<sup>2</sup>  , ALBA MARINA COTES<sup>3</sup></b></p>     <p><sup>1</sup> Bi&oacute;logo, Universidad Nacional de Colombia. <a href="mailto:ricardo_perez_alvarez@yahoo.com">ricardo_perez_alvarez@yahoo.com</a></p>     <p><sup>2</sup> Autor para correspondencia: M. Sc. Entomolog&iacute;a. Investigador Master Asistente, &Aacute;rea de Entomolog&iacute;a, Programa de Investigaci&oacute;n en Manejo Integrado de Plagas MIP. C. I., Tibaitat&aacute;. Corpoica. <a href="mailto:javiggonzalez@yahoo.com">javiggonzalez@yahoo.com</a></p>     <p><sup>3</sup> Ph. D. Investigador principal. Laboratorio de Control biol&oacute;gico. C. I., Tibaitat&aacute;. Corpoica. <a href="mailto:acotes@corpoica.org.co">acotes@corpoica.org.co</a></p> <hr size="1"> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3" face="verdana"><b>Resumen</b>: </font><font size="2" face="verdana">En el dise&ntilde;o de programas de manejo integrado de plagas, un aspecto importante es determinar la compatibilidad   entre los diferentes agentes de control, por ejemplo entre los hongos entomopat&oacute;genos y los insectos ben&eacute;ficos que se   utilicen para el control de un mismo insecto plaga. Por tal motivo, el objetivo del presente trabajo fue determinar el   efecto de un bioplaguicida con base en el hongo <i>Lecanicillium lecanii</i>, entomopat&oacute;geno de la mosca blanca Trialeurodes   vaporariorum, sobre algunos par&aacute;metros de la poblaci&oacute;n del depredador <i>Delphastus pusillus</i>. Mediante ensayos en   laboratorio, se evalu&oacute; el efecto de la aplicaci&oacute;n directa del bioplaguicida en la supervivencia del estado adulto del   depredador. En un segundo experimento, se construy&oacute; la tabla del vida del depredador para dos tratamientos: 1. Control,   una cohorte de individuos alimentados con presas sanas 2. Seguimiento de una cohorte alimentada con presas donde   previamente se aplic&oacute; el bioplaguicida. En la prueba de aplicaci&oacute;n directa, se determin&oacute; que el bioplaguicida a la   concentraci&oacute;n recomendada para el control de moscas blanca, ocasion&oacute; una mortalidad del 9,8% sobre los depredadores.   En el experimento de la tabla de vida, los resultados mostraron que la cohorte de D. pusillus tratada con el bioplaguicida   present&oacute; una reducci&oacute;n significativa en la longevidad (49,0%) y en la fecundidad (91,4%), con respecto al control. Los   resultados obtenidos sugieren que la aplicaci&oacute;n del bioplaguicida podr&iacute;a tener un efecto moderado a trav&eacute;s de su acci&oacute;n directa y efectos indirectos negativos de importancia sobre las poblaciones de D. pusillus.</font></p> <font size="2" face="verdana"></font>     <p>  <font size="3" face="verdana"><b>Palabras clave</b>:</font><font size="2" face="verdana"> Compatibilidad. Entomopat&oacute;geno. <i>Lecanicillium lecanii</i>. Tabla de vida. <i>Trialeurodes vaporariorum</i>.</font></p> <font size="2" face="verdana"> <hr size="1"> </font>     <p><font size="3" face="verdana"><b>Abstract</b>:</font><font size="2" face="verdana"> In the design of pest management programs, an important aspect is to determine the compatibility between   different control agents, for instance, between entomopathogenic fungi and the beneficial insects used for control of the   same insect pest. Therefore the aim of this study was to establish the effect of a biopesticide based on the fungus   Lecanicillium lecanii, an entomopathogen of the whitefly <i>Trialeurodes vaporariorum</i>, on some population parameters   of the predator <i>Delphastus pusillus</i>. Through laboratory assays, we evaluated the effect of direct application of the   biopesticide on survival of the adult stage of the predator. In a second experiment, life tables were constructed for the   predator under two treatments: 1.Control, cohort of individuals fed healthy prey. 2. Cohort fed prey previously exposed   to the biopesticide. In the direct application assay, it was determined that the biopesticide at the concentration recommended   for whitefly control caused a mortality of 9.8% on the predators. In the life table experiment, results showed that the   cohort of D. pusillus treated with the bioinsecticide had a significant reduction in longevity (49.0%) and fecundity   (91.4%), with respect to the control. The results obtained suggest that application of the biopesticide could have moderate direct effects and important indirect effects on populations of D. pusillus.</font></p> <font size="2" face="verdana"></font>     <p>  <font size="2" face="verdana"><b><font size="3">Key words</font></b><font size="3">:</font> Compatibility. Entomopathogen. <i>Lecanicillium lecanii</i>. Life table. <i>Trialeurodes vaporariorum</i>.</font></p> <font size="2" face="verdana"> <hr size="1">     <p><b><font size="3">Introducci&oacute;n</font></b></p>     <p>La mosca blanca de los invernaderos <i>Trialeurodes   vaporariorum</i> (Westwood, 1856) (Hemiptera: Aleyrodidae),   es una plaga de importancia econ&oacute;mica debido a su amplia   distribuci&oacute;n geogr&aacute;fica, al da&ntilde;o que ocasiona y al gran n&uacute;mero   de cultivos que afecta. En Colombia, cultivos como el tomate,   habichuela, fr&iacute;jol y flores son gravemente afectados por esta   plaga, fundamentalmente debido al da&ntilde;o mec&aacute;nico y a la   excreci&oacute;n de melazas (Byrne<i> et al</i>. 1990; Rodr&iacute;guez <i>et al</i>.   1996).  </p>     <p>Durante a&ntilde;os, se ha empleado una amplia variedad de   insecticidas para el control de <i>T. vaporariorum</i>, muchos de   los cuales producen una marcada influencia negativa sobre los   organismos ben&eacute;ficos que coexisten con la plaga. La gran   capacidad para desarrollar resistencia a los plaguicidas   empleados para su control, as&iacute; como problemas de   contaminaci&oacute;n ambiental, de seguridad y salud p&uacute;blica   inherentes al uso inadecuado e indiscriminado de los   agroqu&iacute;micos, han conducido a la b&uacute;squeda y desarrollo de   alternativas para el manejo de la plaga (Rodr&iacute;guez y Cardona   2001; Torres <i>et al</i>. 2003).</p>     <p>En este contexto, el desarrollo y aplicaci&oacute;n de agentes de   control biol&oacute;gico, adquiere importancia relevante como   alternativa ambiental segura para el manejo de la plaga, ya   que son componentes naturales del ambiente y usualmente son   m&aacute;s selectivos que los plaguicidas qu&iacute;micos. De los tres   principales grupos de enemigos naturales de la mosca blanca,   parasitoides, depredadores y hongos entomopat&oacute;genos, es en   estos &uacute;ltimos donde quiz&aacute; existen las mejores perspectivas para   su uso con &eacute;xito en planes de manejo integrado. Esto debido a caracter&iacute;sticas espec&iacute;ficas y a la tecnolog&iacute;a desarrollada en m&eacute;todos de producci&oacute;n masiva del in&oacute;culo, facilidad de la formulaci&oacute;n y forma de aplicaci&oacute;n similar a la de los insecticidas qu&iacute;micos, lo cual le da ventajas a la adopci&oacute;n por parte de los agricultores (L&oacute;pez-&Aacute;vila 1994). En consecuencia, el desarrollo de bioplaguicidas con base en hongos entomopat&oacute;genos ha tenido una gran aceptaci&oacute;n en los &uacute;ltimos a&ntilde;os, con lo cual, ha habido un gran auge en su comercializaci&oacute;n (Zambrano et al. 2002).</p>     <p>No obstante, la introducci&oacute;n de cualquier organismo en el   ambiente es a menudo un paso irreversible por lo que debe   hacerse con cautela, para evitar que se convierta en una plaga   por s&iacute; misma, interfiera con el funcionamiento natural de otros   agentes de control de plagas o cause problemas en las especies   no blanco, incluyendo al hombre y otros organismos. De ah&iacute;   que, el uso seguro de los hongos en el control biol&oacute;gico debe   ser considerada a todos los niveles, ya sean efectos directos e   indirectos (Hajek y Goettel 2000; Garc&iacute;a <i>et al</i>. 2004).</p>     <p> Por otra parte, ha sido ampliamente reconocido que el   empleo de un solo agente de control biol&oacute;gico no puede proveer   una regulaci&oacute;n suficiente o satisfactoria sobre las poblaciones   plaga (Roselyne 2005; Liu y Stansly 1999). Pero cuando dos o   m&aacute;s especies con propiedades reconocidas en el control   biol&oacute;gico son seleccionadas para interactuar juntas, las   deficiencias o limitaciones de las especies individuales podr&iacute;an   ser compensadas por otros miembros del gremio de enemigos   naturales.Sin embargo, el desarrollo de una estrategia de   control biol&oacute;gico efectiva, en la cual varios agentes sean   integrados, requiere de un profundo conocimiento de sus   interacciones.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> En tal sentido, en el programa de manejo integrado de   plagas de Corpoica se desarroll&oacute; un bioplaguicida con base en   el hongo <i>Lecanicillium</i> (<i>= Verticillium</i>) <i>lecanii</i> (Zimm.) (Zare   y Gams 2001), para el control de <i>T. vaporariorum</i>. Dicho   producto ha demostrado ser promisorio en la regulaci&oacute;n de las   poblaciones de mosca blanca, alcanzando niveles superiores   al 70% en el control de la plaga (Jim&eacute;nez 2002).  </p>     <p>As&iacute; mismo, se han adelantado estudios con el depredador   de moscas blancas <i>Delphastus pusillus</i> (Le Conte, 1852)   (Coleoptera: Coccinellidae), con miras a su utilizaci&oacute;n dentro   de una estrategia de manejo integrado de la plaga. Este enemigo   natural se encuentra distribuido en la mayor&iacute;a de las regiones   agr&iacute;colas del pa&iacute;s, consumiendo estados inmaduros de la mosca   blanca (L&oacute;pez-&Aacute;vila et al. 2001). Ciertas caracter&iacute;sticas de<i> D.   pusillus</i> soportan su potencial como agente de control de <i>T.   vaporariorum</i>: a) Altas tasas de consumo de presas (Garc&iacute;a-   Gonz&aacute;lez 2003; Heinz y Parrella 1994; Hoelmer et al. 1993); b)   Hembras altamente fecundas (Heinz et al. 1994; Garc&iacute;a-Gonz&aacute;lez   et al. 2005); c) Compatibilidad con parasitoides y cultivares de   plantas resistentes (Heinz y Parrela 1994; Heinz y Zalom 1996;   Hoelmer et al. 1994) y, d) Alta adaptabilidad ecol&oacute;gica, frecuencia   y abundancia en campo (L&oacute;pez-&Aacute;vila et al. 2001).</p>     <p> A la fecha, se tiene conocimiento de la interacci&oacute;n que hay   entre el bioplaguicida y la plaga y adem&aacute;s se ha explorado la   interacci&oacute;n entre <i>T. vaporariorum</i> y el depredador <i>D. pusillus</i>.   Sin embargo, se desconoce la interacci&oacute;n entre el   entomopat&oacute;geno y el depredador. Por lo tanto, el objetivo del   presente trabajo fue evaluar los efectos directos e indirectos   producidos por el bioplaguicida sobre los par&aacute;metros   biol&oacute;gicos y demogr&aacute;ficos de <i>D. pusillus</i>. Con este trabajo se   intenta generar informaci&oacute;n que permita conducir a la   utilizaci&oacute;n &oacute;ptima y eficiente de estos enemigos naturales en   el control de <i>T. vaporariorum.</i></p>     <p><font size="3"><b>Materiales y M&eacute;todos</b></font></p>     <p>El trabajo se llev&oacute; a cabo en el centro de investigaci&oacute;n   &ldquo;Tibaitat&aacute;&rdquo; de la Corporaci&oacute;n Colombiana de Investigaci&oacute;n   Agropecuaria &ndash;Corpoica&ndash;, localizado en el municipio de   Mosquera (Cundinamarca). El mantenimiento de las colonias   de los insectos <i>T. vaporariorum</i> y <i>D. pusillus</i> y la fase   experimental se realizaron en los laboratorios e invernaderos   del Programa de Manejo Integrado de Plagas de dicho centro.  </p>     <p><b>Colonias de insectos</b>. Una colonia de <i>T. vaporariorum</i> se   mantuvo en condiciones de invernadero sobre plantas de fr&iacute;jol   (<i>Phaseolus vulgaris</i> L., 1753) variedad ICA- Pijao sembradas   en materas. En estas plantas se obtuvieron los diferentes estados   de la mosca blanca, los cuales sirvieron de alimento al insecto   depredador en el proceso de cr&iacute;a y en los experimentos   propuestos.</p>     <p>La colonia de D. <i>pusillus</i> se inici&oacute; con adultos colectados   en cultivos de algod&oacute;n (<i>Gossypium hirsutum</i> L., 1763) del   municipio de Espinal (Tolima). Estos adultos se ubicaron por   parejas en cajas de Petri que conten&iacute;an papel-toalla humedecido   y trozos de hojas de fr&iacute;jol infestadas con estados inmaduros de   la mosca blanca. Las hojas se renovaron peri&oacute;dicamente, con   el fin de retirar las posibles posturas as&iacute; como para proporcionarle alimento fresco a las parejas de adultos. Una   vez emergidas las larvas del depredador, se separaron y se   ubicaron en nuevas cajas de Petri hasta que alcanzaron el estado   adulto. Con los adultos se continu&oacute; el ciclo de vida del   depredador. La cr&iacute;a de <i>D. pusillus</i> se mantuvo a 21 &plusmn; 4&deg;C, 50-   70% H. R. y un fotoper&iacute;odo de 14:10 h (luz: oscuridad).  </p>     <p><b>Bioplaguicida</b>. La producci&oacute;n del bioplaguicida se realiz&oacute; en   el laboratorio de control biol&oacute;gico de Corpoica seg&uacute;n   metodolog&iacute;a estandarizada por Villamizar y Cotes (2006). El   bioplaguicida consiste en un polvo mojable dise&ntilde;ado para   reconstituirse en la emulsi&oacute;n resultante de la mezcla de una   base autoemulsificable y agua. Dentro del polvo se encuentran   los conidios del hongo entomopat&oacute;geno, que se aplica para el   control de T. vaporariorum a una concentraci&oacute;n de 1x107   conidios/ml. Por su parte, la base autoemulsificable contiene   una mezcla de aceite vegetal (80%), un agente emulgente (10%)   y una mezcla de tensioactivos (10%), todos ellos com&uacute;nmente   empleados en la industria cosm&eacute;tica y de alimentos. Para   garantizar la estabilidad de la emulsi&oacute;n, la base autoemulsificable   y el agua se combinan en relaci&oacute;n 1:200 (v/v)   respectivamente, independiente de la concentraci&oacute;n del   entomopat&oacute;geno. En su composici&oacute;n el bioplaguicida tambi&eacute;n   incluye un protector solar que absorbe la luz UV y adherentes   que le proporcionan protecci&oacute;n en el momento de su aplicaci&oacute;n   en campo.</p>     <p><b>Bioensayos</b></p>     <p><b>Efecto del bioplaguicida en la supervivencia de adultos de     <i>D. pusillus</i></b>. Los insectos depredadores proven&iacute;an de la colonia   establecida en laboratorio, donde se seleccionaron individuos   activos, sanos y de la misma edad para garantizar la homogeneidad   del material biol&oacute;gico. Inicialmente se tomaron foliolos de fr&iacute;jol que se dispusieron   individualmente en cajas de Petri de 10 cm de di&aacute;metro y sobre   cada uno de &eacute;stos se ubicaron diez adultos de <i>D. pusillus</i>. Posteriormente, en cada caja de Petri se realiz&oacute; la aplicaci&oacute;n del bioplaguicida con un microaspersor, a raz&oacute;n de 1 ml de producto por foliolo y a una presi&oacute;n de 4,22 kg/cm2. Una hora despu&eacute;s de la aplicaci&oacute;n, los insectos se transfirieron a una nueva caja de Petri donde se les suministraron foliolos infestados con ninfas de mosca blanca. Los insectos permanecieron bajo condiciones controladas (20 &plusmn; 5&deg;C; 50- 60% H. R., y 12 horas luz) donde se renov&oacute; peri&oacute;dicamente el alimento. Durante 12 d&iacute;as se registr&oacute; diariamente la mortalidad   de los insectos y los individuos muertos se ubicaron en c&aacute;maras   h&uacute;medas con el prop&oacute;sito de hacer evidente la posible infecci&oacute;n   por el entomopat&oacute;geno.  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Mediante un dise&ntilde;o completamente aleatorio se evaluaron   cuatro tratamientos que consistieron en la aplicaci&oacute;n del   bioplaguicida a las concentraciones de 1x10<sup>7</sup> y 1x10<sup>8</sup> conidios/   ml (una y diez veces la concentraci&oacute;n aplicada en campo,   respectivamente), la aplicaci&oacute;n de la base autoemulsificable   sin el ingrediente activo y un testigo donde se aplic&oacute; agua   destilada. Cada tratamiento se realiz&oacute; por triplicado empleando   diez insectos por r&eacute;plica.</p>     <p><b>Efecto del bioplaguicida sobre los par&aacute;metros biol&oacute;gicos y   demogr&aacute;ficos de <i>D. pusillus</i></b><i>.</i> Se construyeron tablas de vida   para dos cohortes del depredador, cada una de ellas de 30   adultos (15 hembras y 15 machos) provenientes de una tercera   generaci&oacute;n de la colonia establecida en laboratorio. Las parejas   de depredadores se ubicaron en cajas de Petri de 10 cm de   di&aacute;metro, que en su interior conten&iacute;an una capa de agar-agua   al 5% y sobre ella foliolos de fr&iacute;jol infestados con ninfas de   mosca blanca. Los foliolos se renovaron cada tres d&iacute;as con el   fin de retirar las nuevas posturas y proporcionarle nuevo alimento al depredador. Cuando se observ&oacute; la emergencia de   las larvas, &eacute;stas se ubicaron en nuevas unidades de cr&iacute;a donde   se les suministraron presas hasta que completaron su desarrollo.   En los casos donde el macho muri&oacute; antes que la hembra, &eacute;ste   fue sustituido por otro macho.  </p>     <p>Se consideraron dos tratamientos: 1. Seguimiento de una   cohorte de individuos alimentados con ninfas sanas, empleado   como control y 2. Seguimiento de una cohorte alimentada con   ninfas a las que previamente (24 h) se les aplic&oacute; el bioplaguicida   a la concentraci&oacute;n de 1x107 conidios/ml.</p>     <p>En cada uno de los tratamientos se realiz&oacute; el seguimiento   peri&oacute;dico de los adultos sometidos a experimentaci&oacute;n, al igual   que a la cohorte de huevos que resultaron de las posturas de   las parejas de depredadores. En cada tratamiento se registraron   las siguientes variables: tiempo de preoviposici&oacute;n (intervalo   entre la emergencia del adulto y la colocaci&oacute;n de la primera   postura), per&iacute;odo de oviposici&oacute;n (n&uacute;mero de d&iacute;as entre la   primera y la &uacute;ltima postura), longevidad de la hembra y   fecundidad. A partir de estos registros se estimaron los   par&aacute;metros de la poblaci&oacute;n: tasa neta reproductiva (Ro), tasa   intr&iacute;nseca de crecimiento natural (r), tasa finita de crecimiento   (&euml;), tiempo generacional (Tg) y tiempo de duplicaci&oacute;n de la poblaci&oacute;n inicial (Dt).</p>     <p><b>An&aacute;lisis de la informaci&oacute;n</b>. En la prueba de aplicaci&oacute;n directa,   los porcentajes de mortalidad luego de 12 d&iacute;as de evaluaci&oacute;n   se corrigieron por medio de la f&oacute;rmula de Abott (Villamizar y   Cotes 2003) y los datos generados se sometieron a un an&aacute;lisis   de varianza y a la prueba de diferencia m&iacute;nima significativa   (LSD).</p>     <p>En el experimento de la tabla de vida, se realiz&oacute; la prueba   de Shapiro-Wilk para cada una de las variables, con el fin de   comprobar la normalidad de los datos. Los promedios de los   per&iacute;odos de preoviposici&oacute;n, oviposici&oacute;n y la longevidad se   transformaron con Log10 (x) para posteriormente analizarlos   con un an&aacute;lisis de varianza de una v&iacute;a. Debido a que los datos   de fecundidad (huevos/hembra/d&iacute;a y huevos /hembra) no se   comportaron como una normal, la comparaci&oacute;n se realiz&oacute;   mediante la prueba no param&eacute;trica de Kruskal-Wallis. Estos   an&aacute;lisis estad&iacute;sticos se realizaron empleando el Software SAS   versi&oacute;n 8 (SAS Institute 1999). Por su parte, los par&aacute;metros   <i>Ro, r</i>, &lambda;, Tg y Dt se estimaron siguiendo los procedimientos propuestos por Rossing (2004).</p>     <p><font size="3"><b>Resultados</b></font></p>     <p><b>Aplicaci&oacute;n directa del bioplaguicida sobre adultos de <i>D.   pusillus</i></b>. El an&aacute;lisis de varianza para la variable mortalidad   determin&oacute; diferencias significativas entre los tratamientos (F   = 6,12; g. l. = 3, 8; P = 0,0038). Los resultados mostraron que   la aplicaci&oacute;n del bioplaguicida a las concentraciones de 1x107   y 1x108 conidios/ml ocasion&oacute; mortalidades del 9,8 y del 24,3%   respectivamente, que fueron significativamente diferentes a la   registrada en el control, el cual mostr&oacute; una mortalidad del 3,3%.   En el tratamiento donde se aplic&oacute; la base autoemulsificable   sin ingrediente activo se registr&oacute; una mortalidad del 17,2%,   valor que no present&oacute; diferencias significativas con los   tratamientos donde se aplic&oacute; el bioplaguicida, pero s&iacute; con el   control (<a href="#fig1">Fig. 1</a>). En todos los casos, los individuos muertos no   presentaron signos del entomopat&oacute;geno. Al ser ubicados en   c&aacute;maras h&uacute;medas, en los cad&aacute;veres de los insectos no se   observ&oacute; desarrollo micelial.</p>     <p>    <center><a name="fig1"></a><img src="img/revistas/rcen/v33n2/v33n2a05fig1.gif"></center> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Efecto del bioplaguicida sobre par&aacute;metros biol&oacute;gicos de     <i>D. pusillus</i></b>. Los valores de los per&iacute;odos de preoviposici&oacute;n y   oviposici&oacute;n para las hembras de la cohorte control fueron   significativamente diferentes a los registrados en la cohorte   tratada con el bioplaguicida (preoviposici&oacute;n: F = 22,86; g. l.   =1, 15; P = 0,0002; oviposici&oacute;n: F = 13,49; g. l. = 1, 15; P =   0,0023). La cohorte control present&oacute; un per&iacute;odo de   preoviposici&oacute;n y oviposici&oacute;n de 13,2 &plusmn; 5,0 y 55,2 &plusmn; 39,4 d&iacute;as   respectivamente, mientras que en la cohorte tratada se   estimaron valores de 36,7 &plusmn; 8,8 y 33,5 &plusmn; 13,9 d&iacute;as para los   per&iacute;odos de preoviposici&oacute;n y oviposici&oacute;n respectivamente (<a href="img/revistas/rcen/v33n2/v33n2a05tab1.gif">Tabla 1</a>).</p>      <p>Del mismo modo, la longevidad de las hembras de D.   pusillus en la cohorte control, se registr&oacute; como significativamente   diferente de la longevidad de las hembras de la   cohorte tratada con el bioplaguicida (F = 6,13; g. l. = 1, 28; P   = 0,0190). Las hembras del tratamiento control presentaron   una longevidad promedio de 64,7 &plusmn; 44,0 d&iacute;as, frente a un   promedio de 33,0 &plusmn; 30,5 d&iacute;as para las hembras de la cohorte   tratada (<a href="img/revistas/rcen/v33n2/v33n2a05tab1.gif">Tabla 1</a>).  </p>     <p>En lo referente a la supervivencia se encontraron diferencias   marcadas entre las cohortes evaluadas. En el tratamiento donde   se aplic&oacute; el bioplaguicida, se observ&oacute; una fuerte disminuci&oacute;n   de la supervivencia durante los primeros 22 d&iacute;as de vida de las   hembras, donde la proporci&oacute;n de individuos vivos pas&oacute; de 1,0   a 0,22. Despu&eacute;s del d&iacute;a 22, la probabilidad de hembras vivas   present&oacute; disminuciones progresivas con 0,17 hembras vivas   el d&iacute;a 63, 0,11 hembras vivas en el d&iacute;a 95, hasta ser cero el d&iacute;a   98 de vida de las hembras (<a href="#fig2">Fig. 2A</a>).</p>     <p>    <center><a name="fig2"></a><img src="img/revistas/rcen/v33n2/v33n2a05fig2.gif"></center> </p>     <p>En el tratamiento control, la reducci&oacute;n en la supervivencia   fue m&aacute;s moderada en comparaci&oacute;n a las hembras de la cohorte   tratada. En los primeros 36 d&iacute;as, la probabilidad de vida de la   cohorte control se redujo de 1,0 a 0,73. Posteriormente, se   observ&oacute; otra disminuci&oacute;n en la supervivencia de la cohorte al   pasar a una probabilidad de vida de 0,47 en el d&iacute;a 40 de   emergencia de las hembras. A partir de esta fecha, la   probabilidad de vida sigui&oacute; reduci&eacute;ndose a 0,33 hembras vivas   en el d&iacute;a 92, 0,20 hembras vivas en el d&iacute;a 114, hasta el d&iacute;a 131 donde todas las hembras de la cohorte murieron (<a href="#fig2">Fig. 2B</a>).</p>     <p>Con respecto a la fecundidad, la cohorte tratada present&oacute;   una producci&oacute;n total de huevos significativamente menor que   el control (P = 0,0001), con un promedio de 18,5 &plusmn; 38,0 huevos/   hembra, frente a un promedio de 216,2 &plusmn; 246,6 huevos/hembra en la cohorte control. De la misma forma, la cantidad de huevos   puestos/hembra/d&iacute;a present&oacute; diferencias significativas siendo   su valor m&aacute;s alto en el control con respecto al tratamiento   bioplaguicida (P = 0,0003). La cohorte tratada present&oacute; un   promedio de 0,62 &plusmn; 1,4 huevos puestos/hembra/d&iacute;a, mientras   que el tratamiento control present&oacute; un promedio de 3,95 &plusmn; 2,7 huevos puestos/hembra/d&iacute;a (<a href="img/revistas/rcen/v33n2/v33n2a05tab1.gif">Tabla 1</a>).</p>     <p>La oviposici&oacute;n hembra/d&iacute;a para la cohorte tratada mostr&oacute;   un pico de oviposici&oacute;n al d&iacute;a 47, con un promedio de 2,9   huevos/hembra/d&iacute;a (<a href="#fig2">Fig. 2A</a>). Para la cohorte control se   registraron cuatro picos importantes de oviposici&oacute;n. Los dos   primeros se presentaron en los d&iacute;as 36 y 44, con promedios de   10,9 y 12,9 huevos/hembra/d&iacute;a respectivamente. Los otros dos   picos se observaron en los d&iacute;as 79 y 87, con promedios de 10,8 y de 9,2 huevos/hembra/d&iacute;a respectivamente (<a href="#fig2">Fig. 2B</a>).</p>     <p><b>Efecto del bioplaguicida sobre par&aacute;metros demogr&aacute;ficos   de <i>D. pusillus</i></b>. Los par&aacute;metros de la tabla de vida estimados   para las dos poblaciones presentaron diferencias para las dos cohortes evaluadas. La tasa de reproducci&oacute;n neta (Ro) para el grupo control se estim&oacute; en 13,97 hembras hija/hembra y 3,34 hembras hija/hembra para la cohorte tratada. Estos valores indican que bajo condiciones normales, una hembra de D. pusillus es reemplazada aproximadamente por 14 hembras al cabo de una generaci&oacute;n, pero cuando se aplica el bioplaguicida este valor se puede reducir aproximadamente a tres hembras.</p>     <p>De otro lado, la tasa intr&iacute;nseca de crecimiento natural (r<sub>m</sub>)   para la poblaci&oacute;n control se estim&oacute; en 0,0788 hembras/hembra/   d&iacute;a y 0,0261 hembras/hembra/d&iacute;a para la cohorte tratada. Estos   valores muestran que las dos poblaciones crecen, aunque la   cohorte control lo hace con mayor celeridad. La tasa finita de   multiplicaci&oacute;n (&euml;) present&oacute; valores similares en las dos   poblaciones. La poblaci&oacute;n control de <i>D. pusillus</i> se increment&oacute;   en 1,082 individuos por d&iacute;a, mientras que en la cohorte tratada   correspondi&oacute; a 1,026 individuos por d&iacute;a.  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En cuanto al tiempo generacional (Tg) y el tiempo de   duplicaci&oacute;n (D<sub>t</sub>), estos par&aacute;metros fueron mayores para la   poblaci&oacute;n expuesta a las ninfas infectadas por el bioplaguicida.   El tiempo generacional en la cohorte control correspondi&oacute; a   33,5 d&iacute;as, lo cual determina que desde que un huevo de <i>D. pusillus</i> es puesto, se requiere de 33,5 d&iacute;as para que una hembra   proveniente del mismo inicie su reproducci&oacute;n. Este valor es   inferior al registrado para la cohorte tratada, donde se estim&oacute;   un valor de 51,4 d&iacute;as. Por su parte, en el tratamiento control,   <i>D. pusillus</i> requiri&oacute; 8,8 d&iacute;as para duplicar su poblaci&oacute;n, tiempo   menor al estimado para el tratamiento donde se aplic&oacute; el   bioplaguicida, que necesit&oacute; de 26,6 d&iacute;as para duplicar su   poblaci&oacute;n.</p>     <p><font size="3"><b>Discusi&oacute;n y Conclusiones</b></font></p>     <p>Los resultados indican que la aplicaci&oacute;n directa del bioplaguicida   sobre el depredador <i>D. pusillus</i> produce un efecto   moderado en su supervivencia. Sin embargo, en los insectos   muertos no se evidenci&oacute; la presencia del micelio t&iacute;pico o   esporulaci&oacute;n de <i>L. lecanii </i>cuando los individuos se ubicaron   en c&aacute;maras h&uacute;medas.</p>     <p>No se puede desconocer que la mortalidad causada por<i> L.   lecanii </i>sobre el hu&eacute;sped, lleva un componente bioqu&iacute;mico   consistente en las toxinas (Claydon y Grove 1982). &Eacute;stas   pueden producir la muerte del hospedero sin que se presenten   s&iacute;ntomas evidentes de la acci&oacute;n del entomopat&oacute;geno (Kershaw et al. 1999). No obstante, la aplicaci&oacute;n de toxinas de <i>L. lecanii</i>  a la concentraci&oacute;n efectiva contra mosca blanca, parecen ser   completamente inofensivas para los adultos depredadores del   g&eacute;nero Delphastus. As&iacute; lo sugiere un estudio efectuado por   Wang et al. (2005) quienes probaron el efecto de toxinas   aisladas de <i>L. lecanii</i> sobre el depredador Delphastus catalinae   (Horn, 1895) (Coleoptera: Coccinellidae). Dichos autores   encontraron que las toxinas de <i>L. lecanii</i> aplicadas directamente   sobre el integumento de los adultos depredadores, no afectan   su supervivencia.</p>     <p>Una posible explicaci&oacute;n a la mortalidad registrada, es que   el efecto adverso sea originado por algunos de los excipientes   de la formulaci&oacute;n del bioplaguicida. El bioplaguicida est&aacute;   dise&ntilde;ado para reconstituirse en una base autoemulsificable que contiene una mezcla de aceites vegetales. En general, los aceites   son preferidos para la formulaci&oacute;n de los hongos empleados   en el control de insectos (Moore y Caudwell 1997) debido a   que facilitan la adhesi&oacute;n y dispersi&oacute;n de los conidios en el   &aacute;rea blanco (Inglis et al. 2000; Wraight et al. 2001) mejorando   la eficacia y rapidez del producto (Prior et al. 1988; Langewald   et al. 1999). En virtud de estas propiedades, los aceites por s&iacute;   mismos, se han registrado produciendo mortalidad sobre   insectos, fundamentalmente a trav&eacute;s de una acci&oacute;n f&iacute;sica al   bloquear el sistema respiratorio (espir&aacute;culos) y causando la asfixia de los individuos (Tavainer 2002). De acuerdo con ello,   es posible que la aplicaci&oacute;n del bioplaguicida genere   taponamiento de los espir&aacute;culos de los adultos de D. pusillus,   lo que se facilita por el tama&ntilde;o del insecto (&lt; 1,5mm de   longitud).</p>     <p>Aunque dentro del an&aacute;lisis planteado se esperaba que la   concentraci&oacute;n del hongo entomopat&oacute;geno no tuviera un efecto   en la supervivencia del depredador, se encontr&oacute; que la   aplicaci&oacute;n del bioplaguicida a una mayor concentraci&oacute;n del   hongo (i.e. 1x108 conidios/ml) s&iacute; ocasion&oacute; una mayor   mortalidad. Este resultado no se podr&iacute;a explicar de forma   certera, pero se plantea la posibilidad de que otros factores   ajenos a la acci&oacute;n del bioplaguicida pudieran afectar al   depredador, tales como diferencias en la presi&oacute;n de aplicaci&oacute;n   o en la densidad de cobertura (gotas / cm2) del bioplaguicida   debido a una falla humana, o relacionado con la calibraci&oacute;n del equipo empleado en la aplicaci&oacute;n. Esto sugiere la necesidad de realizar otras pruebas en laboratorio y campo para evaluar que otros factores pueden aumentar o disminuir la respuesta de los agentes involucrados en este estudio. Sin embargo, cabe   resaltar que en todos los casos la muerte de los depredadores   se present&oacute; durante las primeras 24 h despu&eacute;s de la aplicaci&oacute;n   y evidenciando una pel&iacute;cula formada por el bioplaguicida   adherida al exoesqueleto de los individuos muertos. Estas   observaciones tambi&eacute;n podr&iacute;an ser un indicativo de que la   muerte del depredador se produjo por una acci&oacute;n f&iacute;sica del   bioplagicida, ya que se ha observado que L. lecanii requiere   de un tiempo de entre tres a siete d&iacute;as para ejercer su acci&oacute;n   (Wang <i>et al</i>. 2004).  </p>     <p>Estos resultados podr&iacute;an se&ntilde;alar que la aplicaci&oacute;n directa   del componente activo del bioplaguicida, es decir del hongo   L. lecanii, no produce efectos adversos sobre el depredador.   Lo anterior concuerda con estudios realizados por Osborne y   Landa (1992), Steimberg y Prag (1994) y Wraight et al. (1998),   quienes encontraron que los hongos entomopat&oacute;genos   Paecilomyces fumosoroseus (Wize) Brown y Smith 1957,   Beauveria bassiana (Balsamo) Vuillemin 1912 y Aschersonia   aleyrodis Webber 1897, no ocasionaron efectos negativos sobre   D. pusillus. </p>     <p>Adicionalmente y en correspondencia con el   planteamiento mencionado, Pach&oacute;n y Cotes (1997) en el   estudio realizado para evaluar el efecto de la cepa no formulada   del bioplaguicida sobre el parasitoide de moscas blancas Amitus   fuscipennis MacGown y Nebeker, 1978 (Hymenoptera:   Platygastridae), encontraron que el insecto ben&eacute;fico no se vio   afectado por la acci&oacute;n directa de <i>L. lecanii.</i> </p>     <p>Con respecto a los efectos del bioplaguicida sobre los   par&aacute;metros biol&oacute;gicos y demogr&aacute;ficos del depredador, los   resultados de este estudio indican que la aplicaci&oacute;n del   bioplaguicida reduce la longevidad y el per&iacute;odo de oviposici&oacute;n,   incrementa el per&iacute;odo de preoviposici&oacute;n, reduce dr&aacute;sticamente   la fecundidad y en consecuencia afecta la tasa de crecimiento   de la poblaci&oacute;n de <i>D. pusillus</i>. Se plantean tres posibles   hip&oacute;tesis para explicar el efecto del bioplaguicida sobre los   par&aacute;metros biol&oacute;gicos del depredador: (i) infecci&oacute;n subletal   del depredador a trav&eacute;s del consumo de presas infectadas; (ii)   disminuci&oacute;n de la calidad y cantidad de presas consumidas; y   (iii) percepci&oacute;n del depredador por la &ldquo;calidad&rdquo; del h&aacute;bitat, la   cual es determinada por la presencia de ninfas sanas.  </p>     <p>El consumo de presas infectadas con <i>L. lecanii</i> podr&iacute;a haber   ocasionado una infecci&oacute;n subletal del depredador. En este   sentido, se conoce que los hongos entomopat&oacute;genos normalmente   invaden al insecto a trav&eacute;s de la cut&iacute;cula y no necesitan   ser ingeridos para iniciar el proceso infectivo (Ferron 1978);   sin embargo, existe evidencia que algunas especies de hongos   entomopat&oacute;genos pueden infectar sus hospederos por el tracto   alimenticio (Gabriel 1959; Proprawsky et al.1998). Una vez   adentro, el hongo entomopat&oacute;geno afecta a sus hospederos a   trav&eacute;s de una combinaci&oacute;n de eventos que incluyen da&ntilde;o   mec&aacute;nico por el crecimiento de sus hifas, disminuci&oacute;n de   nutrientes y producci&oacute;n de toxinas. Alguno de estos procesos   a un nivel subletal podr&iacute;a afectar negativamente el sistema   reproductivo y supervivencia del hospedero. As&iacute; por ejemplo,   el per&iacute;odo de preoviposici&oacute;n para <i>D. pusillus</i> fue calculado   en 13,2 d&iacute;as para la cohorte control. Durante este per&iacute;odo, el   primer grupo de huevos se est&aacute; madurando dentro de las   ovariolas de la hembra. Una infecci&oacute;n f&uacute;ngica iniciada en   este momento y el resultante estr&eacute;s fisiol&oacute;gico podr&iacute;an   interferir con el desarrollo de los huevos. A este respecto,   algunos estudios han registrado hongos entomopat&oacute;genos de   las especies B. bassiana, Aspergillus ochraceus Wilhelm, 1877 y Metharhizium anisopliae (Metsch.) Sorokin, 1883,   como causantes de alteraciones en la fecundidad, y en los   per&iacute;odos de preoviposici&oacute;n y oviposici&oacute;n de sus hospederos   (Hornbostel et al. 2004). Del mismo modo, Proprawsky et   al. (1998) encontraron que el consumo de moscas blancas   infectadas con B. bassiana tuvo un impacto negativo en la   supervivencia del coccin&eacute;lido depredador <i>Serangium   parcesetosum </i>Sicard, 1929.  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los par&aacute;metros biol&oacute;gicos y demogr&aacute;ficos del depredador   tambi&eacute;n podr&iacute;an ser alterados por la disminuci&oacute;n en la cantidad   y en la calidad de presas consumidas. El hongo entomopat&oacute;geno   <i>L. lecanii</i> produce modificaciones f&iacute;sicas y fisiol&oacute;gicas sobre   las ninfas de mosca blanca las cuales pueden interferir en el   reconocimiento y detecci&oacute;n de la presa por parte del   depredador. Estudios preliminares mostraron que los adultos   de <i>D. pusillus</i> presentaron una reducci&oacute;n en el consumo de   presas entre el 38,2 y el 93,2% cuando se le suministraron   presas infectadas con <i>L. lecanii</i>, respecto al consumo de presas   sanas (R. P&eacute;rez, datos no publ.). De esta forma, una disminuci&oacute;n   en el consumo de presas por las hembras de <i>D. pusillus</i> se   podr&iacute;a manifestar en la reducci&oacute;n de la fecundidad, puesto que   una hembra gr&aacute;vida debe consumir m&aacute;s presas que ning&uacute;n otro   estado de desarrollo para sostener los niveles de oviposici&oacute;n   (Sabelis 1985). Adicionalmente, las presas infectadas pueden   ser nutricionalmente deficientes para el depredador o contener   ciertos metabolitos secundarios producidos por el pat&oacute;geno   con propiedades t&oacute;xicas sobre el insecto ben&eacute;fico. As&iacute; por   ejemplo, Wang et al. (2005) demostraron que una concentraci&oacute;n   de 400 ppm de toxinas aisladas de cepas de <i>L. lecanii</i>  redujo significativamente la capacidad de consumo,   reproducci&oacute;n y longevidad de adultos de <i>D. catalinae</i>.  </p>     <p>En cuanto a la percepci&oacute;n del depredador por la &ldquo;calidad&rdquo;   del h&aacute;bitat, Garc&iacute;a-Gonz&aacute;lez y L&oacute;pez-&Aacute;vila (1998) observaron   que la hembra de <i>D. pusillus</i> presenta diversos h&aacute;bitos de   oviposici&oacute;n que dependen de la cantidad y del estado de los   individuos de la presa. Este comportamiento est&aacute; relacionado   con la disponibilidad de alimento para las larvas del depredador   reci&eacute;n emergidas, las cuales salen en busca de presas. Si en el   transcurso de 20 a 30 minutos no encuentran alimento, mueren.   De esta forma, la hembra invertir&aacute; mayor esfuerzo reproductivo   en &aacute;reas donde tiene una mayor probabilidad de que su   descendencia sobreviva (Garc&iacute;a-Gonz&aacute;lez 2003). Es probable   que las hembras de <i>D. pusillus</i> disminuyan la oviposici&oacute;n sobre   los foliolos con ninfas infectadas, debido a la ausencia de   reconocimiento de &eacute;stas como presas, &oacute; al rechazo de las   mismas. Evidencias similares son registradas por Meyling y   Pell (2006), quienes encontraron que las hembras del   depredador <i>Anthocoris nemorum </i>(L., 1761) (Heteroptera:   Anthocoridae), diminuyen la oviposici&oacute;n en &aacute;reas tratadas con   el entomopat&oacute;geno <i>B. bassiana</i>.  </p>     <p>En funci&oacute;n de los resultados, se podr&iacute;a decir que el   bioplaguicida es un agente que potencialmente produce efectos   perjud&iacute;cales sobre las poblaciones del depredador. No obstante,   en condiciones de campo es de esperarse un menor impacto   sobre el ben&eacute;fico, lo cual puede ser explicado por varias   razones. Primero, la mayor movilidad de los adultos del   depredador en condiciones de campo podr&iacute;a reducir el riesgo   derivado de la exposici&oacute;n directa al bioplaguicida, como ha   sido demostrado para otros depredadores (Smith y Krischik   2000). Segundo, <i>D. pusillus</i> se alimenta principalmente del   estado de huevo de la mosca blanca, mientras que el   bioplaguicida infecta los estados ninfales de la plaga, por lo   que se podr&iacute;a plantear liberaciones del insecto y aplicaciones del hongo intercaladas en el tiempo (Fransen 1990; Liu y   Stansly 1999; Garc&iacute;a-Gonz&aacute;lez 2003; Hoelmer et al. 1993).   Tercero, estudios preliminares demostraron que <i>D. pusillus</i>  presenta la habilidad de discriminar entre presas sanas e   infectadas con <i>L. lecanii</i> (R. P&eacute;rez, datos no publ.), este   comportamiento podr&iacute;a permitir la distribuci&oacute;n de los   coccin&eacute;lidos en &aacute;reas no tratadas del cultivo, donde lograr&iacute;a   encontrar mayor cantidad de presas sanas. Finalmente, las   moscas blancas t&iacute;picamente infestan cultivos de r&aacute;pido   crecimiento y prefieren las hojas j&oacute;venes para ovipositar   (Lenteren y Noldus 1990). La r&aacute;pida aparici&oacute;n de nuevo follaje   y de presas no tratadas podr&iacute;a facilitar la utilizaci&oacute;n del   bioplaguida junto con D. pusillus, en un programa para el   control de la mosca blanca donde se involucren estos dos   agentes biol&oacute;gicos.</p>     <p><b><font size="3">Agradecimientos</font></b></p>     <p>A la Sociedad Colombiana de Entomolog&iacute;a (SOCOLEN) por   el apoyo otorgado al primer autor como ganador de la &ldquo;Beca   de incentivo a la investigaci&oacute;n entomol&oacute;gica en las   universidades colombianas&rdquo;, versi&oacute;n 2005. Este trabajo hace   parte de los resultados del proyecto &ldquo;Incorporaci&oacute;n de un   Bioplaguicida en el manejo integrado de la mosca blanca&rdquo;   financiado por COLCIENCIAS. Los autores del trabajo   agradecen a esta entidad el apoyo financiero. A Jimena S&aacute;nchez,   profesora de la Universidad Nacional de Colombia, por su invaluable apoyo cient&iacute;fico.</p>     <p><font size="3"><b>Literatura Citada</b></font></p>     <!-- ref --><p>BYRNE, D. N.; BELLOWS, T. S.; PARRELA, M. P. 1990. Whiteflies   in agricultural systems, pp. 227-251. En: Gerling, D. (ed.).   Whiteflies: Their bionomics, pest status and Management. Intercept, Ltd., Andover, Hants., UK. 348 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-0488200700020000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  CLAYDON, N.; GROVE, J. F. 1982. Insecticidal secondary metabolic   products from the entomopatogenous fungus <i>Verticillium lecanii</i>.   Journal of Invertebrate Pathology 40: 413-418.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-0488200700020000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  FERRON, P. 1978. Biological control of insect pest by   entomopathogenous fungi. Annual Review of Entomology 23:   409-442.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-0488200700020000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  FRANSEN, J. 1990.Natural enemies of Whiteflies: Fungi, p. 187-   211. En: Gerling, D. (ed.). Whiteflies: their bionomics, pest status   and management. Intercept, Ltd., Andover, Hants., UK. 348 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-0488200700020000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  GABRIEL, B. P. 1959. Fungus infection via alimentary tract. Journal   of Insect Pathology 1: 319-330.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-0488200700020000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  GARC&Iacute;A, L.; GLEIBY, M.; MONTES DE OCA, N.; HIDALGO, L.   2004. Estudio de la irritaci&oacute;n ocular y d&eacute;rmica de Polchonia   chlamydosporia var. Catanulata. Revista de Toxicolog&iacute;a 12: 103-   107.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-0488200700020000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  GARC&Iacute;A-GONZ&Aacute;LEZ, J. 2003. Estudio de los componentes de   depredaci&oacute;n para el sistema Delphastus pusillus (Le Conte)   (Coleoptera: Coccinellidae) y su presa la mosca blanca de los   invernaderos Trialeurodes vaporariorum (Westwood)   (Homoptera: Aleyrodidae). Tesis de grado en M. Sc. en   entomolog&iacute;a Posgrado Ciencias Agrarias. Facultad de Agronom&iacute;a.   Universidad Nacional de Colombia. Bogot&aacute;. Colombia. 108 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-0488200700020000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  GARC&Iacute;A-GONZ&Aacute;LEZ, J.; BEN&Iacute;TEZ, E. R.; L&Oacute;PEZ-&Aacute;VILA, A.   2005. Tabla de vida de Delphastus pusillus (Coleoptera:   Coccinellidae) en la mosca blanca Trialeurodes vaporariorum   (Hemiptera: Aleyrodidae). Revista Colombiana de Entomolog&iacute;a   31 (2): 155-160.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0120-0488200700020000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  GARC&Iacute;A-GONZ&Aacute;LEZ, J.; L&Oacute;PEZ-&Aacute;VILA, A. 1998. Biolog&iacute;a y   h&aacute;bitos alimenticios de Delphastus pusillus (Coleoptera:   Coccinellidae) depredador de moscas blancas. Revista   Colombiana de Entomolog&iacute;a 24 (3-4): 95-102.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-0488200700020000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>HAJEK, A. E.; GOETTEL, M. S. 2000. Guidelines for evaluating   effects of entomopathogens on non-target organisms, p. 847-868.   En: Lacey, L. A.; Kaya, H. K. (eds.). Manual of Field Techniques   in Insect Pathology. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht Netherland. 492 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-0488200700020000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  HEINZ, K. M.; PARRELA, M. P. 1994. Biological control of Bemisia   argentifolii (Gennadius) (Homoptera: Aleyrodidae) infesting   Euphorbia pulcherrima: evaluations of releases of Encarsia   luteola (Hymenoptera: Aphelinidae) and Delphastus pusillus   (Coleoptera: Coccinellidae). Environmental Entomology 88:   1494-1502.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-0488200700020000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  HEINZ, K. M.; BRAZZLE, J. R.; PICKETT, C. H.; NATWICK, E.   T.; NELSON, J. M. ; PARRELA, M. P. 1994. Predatory beetle   may suppress silverleaf whitefly. California Agriculture 48 (2):   35-40.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-0488200700020000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  HEINZ, K. M.; ZALOM, F. G. 1996. Performance of the predator   Delphastus pusillus on Bemisia resistant and susceptible tomato   lines. Entomologia Experimentalis et Applicatta 81: 345-352.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-0488200700020000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  HOELMER, K. A.; OSBORNE, L.; YOKOMI, R. 1993.   Reproduction and feeding behavior of Delphastus pusillus   (Coleoptera: Coccinellidae), a predator of Bemisia tabaci   (Homoptera: Aleyrodidae). Journal of Economic Entomology 86   (2): 322-329.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-0488200700020000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  HOELMER, K. A.; OSBORNE, L. S.; YOKOMI, R. K. 1994.   Interactions of the whithefly predator Delphastus pusillus   (Coleoptera: Coccinellidae) with parasitized sweetpotato   whithefly (Homoptera: Aleyrodidae). Environmental Entomology   23 (1): 136-139.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-0488200700020000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  HORNBOSTEL, V. L.; OSTFELD, R. S.; ZHIOVA, E.; BENJAMIN,   M. A. 2004. Sublethal effects of Metarhizium anisopliae   (Deuteromycetes) on Engorged larval, Nymphal, and adult Ixodes   scapularis (Acari: Ixodidae). Journal of Medical Entomology 41   (5): 922-929.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-0488200700020000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  INGLIS, G. D.; IVIE, T. J.; DUKE, G. M.; GOETTEL, M. S. 2000.   Influence of rain and conidial formulation on persistence of   Beauveria bassiana on potato leaves and Colorado potato beetle   larvae. Biological Control 18: 55-64.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-0488200700020000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  JIM&Eacute;NEZ, L. G. 2002. Evaluaci&oacute;n de t&eacute;cnicas de aplicaci&oacute;n de un   bioplaguicida a base de Verticillium lecanii, para el control de la   mosca blanca de los invernaderos Trialeurodes vaporariorum en   un cultivo de fr&iacute;jol. Trabajo de grado Ingenier&iacute;a Agron&oacute;mica.   Facultad de Agronom&iacute;a. Universidad Nacional de Colombia.   Bogot&aacute;. Colombia. 72 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-0488200700020000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  KERSHAW, M. J.; MOORHOUSE, E. R.; BATEMAN, R.;   REYNOLDS, S. E.; CHARNLEY, A. K. 1999. The role of   dextruxins in the pathogenicity of Metarhizium anisopliae for   three species of insects. Journal of Invertebrate Pathology 74:   213-233.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-0488200700020000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  LANGEWALD, J.; OUAMBAMA, Z.; MAMADOU, A.;   PEVELING, R.; STOL, I.; BATEMAN, R.; ATTIGNON, S.;   BLANDFORD, S.; ARTHURS, S.; LOWER, C.J. 1999.   Comparison of an organophosphate insecticide with a   mycoinsecticide for the control of Oedaleus senegalensis   (Orthoptera: Acrididae) and other sahelian grasshopper at an   operational scale. Biocontrol Science and Technology 9 (2): 199-   214.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-0488200700020000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  LENTEREN, J. C.; NOLDUS, P. J. J. 1990. Whitefly-Plant   Relationships: Behavioural and Ecological Aspects, pp. 47-88.   En: Gerling, D. (ed.). Whiteflies: their bionomics, pest status and   management. Intercept, Ltd., Andover, Hants., UK. 348 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-0488200700020000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  LIU, T.-X.; STANSLY, P. A. 1999. Searching and feeding behaviour   of Nephaspis oculatus and Delphastus catalinae (Coleoptera:   Coccinellidae), predator of Bemisia argentifolii (Homoptera:   Aleyrodidae). Environmental Entomology 28 (5): 901-906.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-0488200700020000500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  L&Oacute;PEZ-&Aacute;VILA, A. 1994. Avance y perspectivas del control biol&oacute;gico   de las moscas blancas. p. 43-53. En: Manejo integrado de mosca   blanca y t&eacute;cnicas de aplicaci&oacute;n de pesticidas. Socolen, mayo 18.   Bogot&aacute;. Colombia. 108 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-0488200700020000500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  L&Oacute;PEZ-&Aacute;VILA, A.; CARDONA, C.; GARC&Iacute;A, J.; REND&Oacute;N, F.;   HERN&Aacute;NDEZ, P. 2001. Reconocimiento e identificaci&oacute;n de   enemigos naturales de moscas blancas (Homoptera: Aleyrodidae)   en Colombia y Ecuador. Revista Colombiana de Entomolog&iacute;a 27   (3-4): 137-141.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-0488200700020000500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  MEYLING, N.; PELL, J. K. 2006. Detection and avoidance of an   entomopathogenic fungus by a generalist insect predator.   Ecological Entomology 31: 162-171.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-0488200700020000500025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  MOORE, D.; CAUDWELL, R. W. 1997. Formulations of   entomopathogens for the control of grasshoppers and locust.   Memoirs of Entomological Society of Canada 171: 49-67.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-0488200700020000500026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  OSBORNE, L. S.; LANDA, Z. 1992. Biological control of whiteflies   with entomopathogenic fungi. Florida Entomologist 75 (4): 456-   471.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-0488200700020000500027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  PACH&Oacute;N, M. P.; COTES, A. M. 1997. Efecto de Verticillium lecanii   entomopat&oacute;geno de la mosca blanca Trialeurodes vaporariorum   sobre la actividad paras&iacute;tica de Amitus fuscipennis en un cultivo   de fr&iacute;jol. Revista Colombiana de Entomolog&iacute;a 23 (3-4): 171-175.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-0488200700020000500028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  PRIOR, C.; JOLLANDS, P.; Le PATOUREL, G. 1988. Infectivity of   oil and water formulations of Beauveria bassiana   (Deuteromycotina: Hyphomicetes) to the cocoa weevil pest   Pantorhytes (Coleoptera: Curculionidae). Journal of Invertebrate   Pathology 52: 66-72.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-0488200700020000500029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  PROPRAWSKY, T.; LEGASPI, J.C.; PARKER, P. 1998. Influence   of entomopathogenic fungi on Serangium parcesetosum   (Coleoptera: Coccinellidae), an important predator of whiteflies   (Homoptera: Aleyrodidae). Environmental Entomology 27 (3):   785-795.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-0488200700020000500030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  RODR&Iacute;GUEZ, I.; CARDONA, C. 2001. Problem&aacute;tica de   Trialeurodes vaporariorum y Bemisia tabaci (Homoptera:   Aleyrodidae) como plagas de cultivos semestrales en el valle del   cauca. Revista Colombiana de Entomolog&iacute;a 27 (1-2): 21-26.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-0488200700020000500031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  RODR&Iacute;GUEZ, A.; HILLER, M.; WILLIAMS, E. 1996. Umbrales   de acci&oacute;n para la mosca blanca de los invernaderos, Trialeurodes   vaporariorum (Westwood) (Homoptera: Aleyrodidae), en tomate.   Revista Colombiana de Entomolog&iacute;a 22 (1): 87-92.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-0488200700020000500032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> ROSELYNE, L. 2005. Intraguild interactions of the greenhouse whithefly natural    enemies, predator Dicyphus hesperus, pathogen Beauveria bassiana and parasitoid    Encarsia formosa. Ma&icirc;trise en biologie v&eacute;g&eacute;tale (M.Sc.).    Facult&eacute; des sciences DE L' agriculture et DE L' alimentation. Universit&eacute;    Laval.Qu&eacute;bec. Canada. 99 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-0488200700020000500033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> ROSSING, W. H. A. 2004. IPM Technology: Crop growth and epidemiology, pp.    32-35. En: Memoirs training course &quot;'Integrated pest management and food    safety&quot;, modulo IPM tools and Implementation. Wageningen. Netherlands.    65 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-0488200700020000500034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> SABELIS, M. W. 1985. Development, pp. 73-82. En: Helle, W.; Sabelis W. (eds.).    Spider mites: Their biology, natural enemies and control. Vol. 1B. Elsevier,    Amsterdam, Netherlands. 458 p. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-0488200700020000500035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>SAS INSTITUTE. 1999. SAS Language. Reference. Version 8. Sas Institute. Cary    NC.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-0488200700020000500036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  SMITH, S. F.; KRISCHIK, V. A. 2000. Effects of biorational   pesticides on four coccinellid species (Coleoptera: Coccinellidae)   having potential as biological control agents in interiorscapes.   Journal of Economic Entomology 93 (3): 732-736.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-0488200700020000500037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  STEIMBERG, S.; PRAG, H. 1994. Efficacy of the fungus   Aschersonia aleyrodis and the coccinellid predator Delphastus   pusillus, used to control Bemisia tabaci in greenhouse cucumber.   Bemisia Newsletter (special issue) 8: 3.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-0488200700020000500038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  TAVAINER, P. 2002. Drowning or just waving?: A perspective on   the ways petroleum-derived oils kill arthropod pest of plants,   pp.78-87. En: Beattie, G. A. C.; Watson, P. M.; Stevens, M. L.;   RAE, D. J.; Spooner-Hard, R. N. (eds.). Spray oils beyond 2000,   25-29 October 1999. Sydney, NSW, Australia. University of   Western Sydney, Australia.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-0488200700020000500039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  TORRES, J. S.; SILVA-TORRES, C. S. A.; VARGAS, J. 2003.   Toxicity of pymetrozine and thiamethoxam to Aphelinus gossypii   and Delphastus pusillus. Pesquisa Agropecu&aacute;ria. Brasileira,   Brasilia 38 (4): 459-466.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-0488200700020000500040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>VILLAMIZAR, L. F.; COTES, A. M. 2003. Efecto de las condiciones   de cultivo sobre par&aacute;metros del modo de acci&oacute;n de Metarhizium anisopliae. Revista Colombiana de Entomolog&iacute;a 29 (2): 121-126.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-0488200700020000500041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  VILLAMIZAR, L. F.; COTES, A. M. 2006. Desarrollo de un   bioplaguicida a base de Lecanicillium lecanii para el control de   la mosca blanca Trialeurodes vaporariorum, pp. 12-13. En: D&iacute;az,   A. (ed.). Resumen de investigaciones en el control biol&oacute;gico de   las moscas blancas. Publicaci&oacute;n Corpoica-Colciencias.   Produmedios. Bogot&aacute; D.C. Colombia. 20 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-0488200700020000500042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  WANG, L.; HUANG, J.; YOU, M; LIU, B. 2004. Time-dose mortality   modelling and virulence indices for six strains of Verticillium   lecanii against sweetpotato whitefly Bemisia tabaci (Gennadius).   Journal of Applied Entomology 128 (7): 494-500.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-0488200700020000500043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  WANG, L.; HUANG, J.; YOU, M.; GUAN, X.; LIU, B. 2005. Effects   of toxins from two strains of Verticillium lecanii (Hyphomicetes)   on bioattributes of a predatory ladybeetle, Delphastus catalinae   (Col.,Coccinellidae). Journal of Applied Entomology 129 (1):   32-38.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0120-0488200700020000500044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  WRAIGHT, S. P.; CARRUTHERS, R. I.; BRADLEY, C. A.;   JARONSKY, S. T.; LACEY, L. A.; WOOD, P.; GALAINIWRAIGHT,   S. 1998. Pathogenicity of the entomopathogenic   fungi Paceilomyces spp. and Beauveria bassiana against the silver   whitefly Bemisia argentifolii. Journal of Invertebrate Pathology   71: 217-226.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-0488200700020000500045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  WRAIGHT, S. P.; JACKSON, M. A.; KOCK, S. L. 2001. Production,   stabilization and formulation of fungal biocontrol agents, p. 253-   288. En: Butt, T. M.; Jackson, C.; Magan, N. Fungal as biocontrol   agents: Progress, problems and potential. CABI publishing. New   York. USA. 416 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0120-0488200700020000500046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  ZAMBRANO, K.; D&Aacute;VILA, M.; CASTILLO, M. A. 2002. Detecci&oacute;n   de fragmentos de ADN de hongos y su posible relaci&oacute;n con   sistemas de prote&iacute;nas de actividad entomopat&oacute;gena. Revista   Facultad de Agronom&iacute;a (Luz) 19: 185-193.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0120-0488200700020000500047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  ZARE, R.; GAMS W. 2001. A revision of Verticillium section   Prostrata. IV. The genera Lecanicillium and Simplicillium gen.   nov. Nova Hedwigia 73: 1-50.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0120-0488200700020000500048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p>Recibido: 15-jun-2006 - Aceptado: 7-sep-2007</p> </font>      ]]></body><back>
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