<?xml version="1.0" encoding="ISO-8859-1"?><article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance">
<front>
<journal-meta>
<journal-id>0120-0488</journal-id>
<journal-title><![CDATA[Revista Colombiana de Entomología]]></journal-title>
<abbrev-journal-title><![CDATA[Rev. Colomb. Entomol.]]></abbrev-journal-title>
<issn>0120-0488</issn>
<publisher>
<publisher-name><![CDATA[Sociedad Colombiana de Entomología]]></publisher-name>
</publisher>
</journal-meta>
<article-meta>
<article-id>S0120-04882011000100002</article-id>
<title-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Resistencia genética al Virus del Arrugamiento Foliar del Fríjol transmitido por Bemisia tabaci (Hemiptera: Aleyrodidae)]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Genetic resistance to Bean Leaf Crumple Virus transmitted by Bemisia tabaci (Hemiptera: Aleyrodidae)]]></article-title>
</title-group>
<contrib-group>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[CUÉLLAR J.]]></surname>
<given-names><![CDATA[MARÍA ELENA]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[MORALES]]></surname>
<given-names><![CDATA[FRANCISCO J]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A02"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[LERMA]]></surname>
<given-names><![CDATA[JAMES MONTOYA]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A03"/>
</contrib>
</contrib-group>
<aff id="A01">
<institution><![CDATA[,Centro Internacional de Agricultura Tropical  ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Cali ]]></addr-line>
<country>Colombia</country>
</aff>
<aff id="A02">
<institution><![CDATA[,Centro Internacional de Agricultura Tropical  ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[ ]]></addr-line>
<country>Colombia</country>
</aff>
<aff id="A03">
<institution><![CDATA[,Universidad del Valle  ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Cali ]]></addr-line>
<country>Colombia</country>
</aff>
<pub-date pub-type="pub">
<day>00</day>
<month>06</month>
<year>2011</year>
</pub-date>
<pub-date pub-type="epub">
<day>00</day>
<month>06</month>
<year>2011</year>
</pub-date>
<volume>37</volume>
<numero>1</numero>
<fpage>8</fpage>
<lpage>15</lpage>
<copyright-statement/>
<copyright-year/>
<self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0120-04882011000100002&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0120-04882011000100002&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0120-04882011000100002&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Desde 2002, los cultivos de fríjol habichuela (Phaseolus vulgaris) de la parte plana del Valle del Cauca han sido afectados por el Virus del Arrugamiento Foliar del Fríjol (Begomovirus: Geminiviridae) agente causal de una nueva y severa enfermedad, transmitido por el biotipo B de la mosca blanca, Bemisia tabaci. Se investigó la relación virus-vector utilizando genotipos de fríjol común seleccionados como posibles fuentes de resistencia. Se determinó la eficiencia de transmisión del virus usando diferente número de insectos adultos, hembras y machos, por planta. En la variedad susceptible Top Crop, se logró la transmisión del virus a partir de un adulto por planta y el porcentaje de plantas infectadas aumentó con el número de adultos por planta. Sin embargo, a partir de 15 individuos, el incremento en la incidencia del virus no fue significativo. Las hembras y machos del biotipo A fueron más eficientes en la transmisión del virus que los del biotipo B. Los genotipos evaluados exhibieron diferentes niveles de resistencia, siendo los materiales de fríjol negro los más resistentes. Se confirma la existencia de fuentes de resistencia al Virus del Arrugamiento Foliar del Fríjol lo que permitiría introducir resistencia genética a este virus en el fríjol habichuela cultivado en el Valle del Cauca.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Since 2002, snap bean (Phaseolus vulgaris) plantings in the Cauca Valley department of Colombia have been severely affected by Bean Leaf Crumple Virus (Begomovirus: Geminiviridae) transmitted by the biotype B whitefly, Bemisia tabaci. The virus-vector relationship was studied using common bean genotypes selected as potential sources of resistance. Transmission efficiency of the virus was determined using different numbers of adult insects, males and females, per plant. In the susceptible variety Top Crop, virus transmission was achieved by a single adult per plant and the proportion of infected plants increased with the number of adults per plant. Above 15 adults per plant, however, increase in the incidence of the virus was not significant. Males and females of B. tabaci biotype A were more efficient in transmission of the virus than those of biotype B. The genotypes evaluated exhibited different levels of resistance, with the black bean materials being the most resistant. The existence of sources of resistance to Bean Leaf Crumple Virus is confirmed, which will permit the introduction of genetic resistance to this virus in snap bean varieties grown in the Cauca Valley.]]></p></abstract>
<kwd-group>
<kwd lng="es"><![CDATA[Mosca blanca]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[Begomovirus]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[Biotipos]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[Colombia]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[Eficiencia de transmisión]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[Whitefly]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[Begomovirus]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[Biotypes]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[Colombia]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[Transmission efficiency]]></kwd>
</kwd-group>
</article-meta>
</front><body><![CDATA[  <font face="Verdana" size="2"></font>     <p align="center"><font size="4" face="Verdana"><b>Resistencia gen&eacute;tica al Virus del Arrugamiento Foliar del Fr&iacute;jol transmitido por <i>Bemisia</i> <i>tabaci</i> (Hemiptera: Aleyrodidae)</b></font></p>     <p align="center"><font size="3" face="Verdana"><b>  Genetic resistance to Bean Leaf Crumple Virus transmitted by <i>Bemisia</i> <i>tabaci</i> (Hemiptera: Aleyrodidae)</b></font></p> <font face="Verdana" size="2">     <p align="center">&nbsp;</p>     <p><b> MAR&Iacute;A ELENA CU&Eacute;LLAR J.<sup>1</sup>, FRANCISCO J. MORALES<sup>2</sup> y JAMES MONTOYA LERMA<sup>3</sup></b></p>     <p><sup>1</sup> M.Sc. Centro Internacional de Agricultura Tropical, km 17 recta Cali-Palmira, Palmira, Colombia. Direcci&oacute;n actual, Laboratorio de Salud P&uacute;blica Departamental,   carrera 76 No. 4-30, Cali, Colombia. <a href="mailto:mariaelenacuellar@graffiti.net">mariaelenacuellar@graffiti.net</a>. Autor para correspondencia. </p>     <p><sup>2</sup> Ph.D. Centro Internacional de Agricultura   Tropical, km 17 recta Cali-Palmira, Palmira, Colombia. <a href="mailto:fmorales@cgiar.org">fmorales@cgiar.org</a> </p>     <p><sup>3</sup> Ph.D. Universidad del Valle, carrera 100 No. 13-00 Cali, Colombia.     <a href="mailto:james.montoya@correounivalle.edu.co">james.montoya@correounivalle.edu.co</a></p>     <p> <b>Recibido</b>: 9-dic- 2009 - <b>Aceptado</b>: 21- ene-2011</p> <hr /> </font>     <p> <font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">Resumen: </font></b>Desde 2002, los cultivos de fr&iacute;jol habichuela (<i>Phaseolus</i> <i>vulgaris</i>) de la parte plana del Valle del Cauca   han sido afectados por el Virus del Arrugamiento Foliar del Fr&iacute;jol (<i>Begomovirus</i>: Geminiviridae) agente causal de una   nueva y severa enfermedad, transmitido por el biotipo B de la mosca blanca, <i>Bemisia</i> <i>tabaci</i>. Se investig&oacute; la relaci&oacute;n   virus-vector utilizando genotipos de fr&iacute;jol com&uacute;n seleccionados como posibles fuentes de resistencia. Se determin&oacute; la   eficiencia de transmisi&oacute;n del virus usando diferente n&uacute;mero de insectos adultos, hembras y machos, por planta. En la   variedad susceptible Top Crop, se logr&oacute; la transmisi&oacute;n del virus a partir de un adulto por planta y el porcentaje de plantas   infectadas aument&oacute; con el n&uacute;mero de adultos por planta. Sin embargo, a partir de 15 individuos, el incremento en la   incidencia del virus no fue significativo. Las hembras y machos del biotipo A fueron m&aacute;s eficientes en la transmisi&oacute;n del   virus que los del biotipo B. Los genotipos evaluados exhibieron diferentes niveles de resistencia, siendo los materiales   de fr&iacute;jol negro los m&aacute;s resistentes. Se confirma la existencia de fuentes de resistencia al Virus del Arrugamiento Foliar   del Fr&iacute;jol lo que permitir&iacute;a introducir resistencia gen&eacute;tica a este virus en el fr&iacute;jol habichuela cultivado en el Valle del Cauca.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>  <font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">Palabras clave:</font></b> Mosca blanca. <i>Begomovirus</i>. Biotipos. Colombia. Eficiencia de transmisi&oacute;n.</font></p> <font face="Verdana" size="2"> <hr /> </font>     <p>  <font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">Abstract: </font></b>Since 2002, snap bean (<i>Phaseolus</i> <i>vulgaris</i>) plantings in the Cauca Valley department of Colombia have been   severely affected by Bean Leaf Crumple Virus (<i>Begomovirus</i>: Geminiviridae) transmitted by the biotype B whitefly,   <i>Bemisia</i> <i>tabaci</i>. The virus-vector relationship was studied using common bean genotypes selected as potential sources   of resistance. Transmission efficiency of the virus was determined using different numbers of adult insects, males and   females, per plant. In the susceptible variety Top Crop, virus transmission was achieved by a single adult per plant and   the proportion of infected plants increased with the number of adults per plant. Above 15 adults per plant, however,   increase in the incidence of the virus was not significant. Males and females of B. <i>tabaci</i> biotype A were more efficient   in transmission of the virus than those of biotype B. The genotypes evaluated exhibited different levels of resistance,   with the black bean materials being the most resistant. The existence of sources of resistance to Bean Leaf Crumple   Virus is confirmed, which will permit the introduction of genetic resistance to this virus in snap bean varieties grown   in the Cauca Valley.</font></p>     <p>  <font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">Key words: </font></b>Whitefly. <i>Begomovirus</i>. Biotypes. Colombia. Transmission efficiency.</font></p> <font face="Verdana" size="2"> <hr /> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p> <font face="Verdana" size="2">     <p>  La mosca blanca <i>Bemisia</i> <i>tabaci</i> (Gennadius, 1889) (Hemiptera:   Aleyrodidae) es una plaga importante que causa grandes   da&ntilde;os directos e indirectos en varios cultivos (Brown 1990).   Los da&ntilde;os directos obedecen principalmente a des&oacute;rdenes fisiol&oacute;gicos   causados por su alimentaci&oacute;n a expensas de los   nutrimentos de la planta, y de manera indirecta al crecimiento   de hongos sobre la excreci&oacute;n de melaza de la mosca blanca y,   m&aacute;s importante a&uacute;n, debido a su habilidad de transmitir virus (Byrne <i>et al</i>. 1990; Oliveira <i>et al</i>. 2001; Perring 2001).</p>     <p>  Am&eacute;rica Latina es la regi&oacute;n del mundo m&aacute;s afectada por   la transmisi&oacute;n de <i>Begomovirus</i> por B. <i>tabaci</i>, as&iacute; como por el   n&uacute;mero de cultivos atacados, las p&eacute;rdidas en rendimiento y &aacute;rea agr&iacute;cola devastada por estos pat&oacute;genos. Las situaciones m&aacute;s cr&iacute;ticas se han presentado en M&eacute;xico, Centro Am&eacute;rica, el Caribe, Venezuela, Argentina y Brasil (Morales y Anderson 2001). No obstante, debido al rango de adaptaci&oacute;n clim&aacute;tica del insecto vector, los <i>Begomovirus</i> son tambi&eacute;n importantes en regiones agr&iacute;colas tropicales y subtropicales de &Aacute;frica y sudeste de Asia (Brown 1994).</p>     <p>  En Colombia los <i>Begomovirus</i> se hab&iacute;an presentado en   brotes aislados y espor&aacute;dicos en mel&oacute;n (<i>Cucumis melo</i> L., 1753) y badea (<i>Passiflora quadrangularis</i> L., 1759) en los   departamentos de Atl&aacute;ntico y C&oacute;rdoba, respectivamente;   adem&aacute;s en tabaco en el Huila y en fr&iacute;jol y soya en el Valle   del Cauca (Morales <i>et al</i>. 2000; Morales y Anderson 2001)   sin alcanzar niveles cr&iacute;ticos para la producci&oacute;n. Sin embargo,   en 2002, se presentaron brotes de <i>Begomovirus</i>, con car&aacute;cter   epid&eacute;mico, en fr&iacute;jol habichuela en los municipios de Bugalagrande,   Pradera, Rozo y Roldanillo del Valle del Cauca.   A este &uacute;ltimo, se dio el nombre de Virus del Arrugamiento   Foliar del Fr&iacute;jol (VAFF) debido a que las hojas presentan un   arrugamiento foliar severo y amarillamiento moderado (Morales   <i>et al</i>. 2002). Seg&uacute;n estos autores, este virus se present&oacute;   con caracter&iacute;sticas epid&eacute;micas y una alta incidencia (superior   al 80%), sin precedentes en la historia del pa&iacute;s hecho que   fue asociado con la aparici&oacute;n del biotipo B de B. <i>tabaci</i> en   esta regi&oacute;n y a factores que favorecen su reproducci&oacute;n, como   la sequ&iacute;a, acompa&ntilde;ados por altas temperaturas diurnas. Adem&aacute;s,   se ha puesto en evidencia que el biotipo B presenta una   mayor ventaja reproductiva con respecto al biotipo A nativo   (Bethke <i>et al</i>. 1991; Costa y Brown 1991; Romberg 1998),   al punto de desplazarlo (Idris <i>et al</i>. 2001; Rodr&iacute;guez <i>et al</i>. 2005).</p>     <p>Ante la incidencia de estas nuevas enfermedades, el   manejo dado al problema de los <i>Begomovirus</i> en fr&iacute;jol y   otros cultivos ha enfatizado principalmente el desarrollo   de variedades resistentes (Morales 2001). En este sentido,   las fuentes de resistencia desarrolladas contra el Virus del   Mosaico Dorado y el Virus del Mosaico Dorado Amarillo   del Fr&iacute;jol e identificadas en P. <i>vulgaris</i> han resultado efectivas   contra otros <i>Begomovirus</i> de fr&iacute;jol com&uacute;n (Morales   2000a). Consecuentemente, estas fuentes de resistencia se   evaluaron por su reacci&oacute;n al nuevo Virus del Arrugamiento Foliar del Fr&iacute;jol.</p>     <p>  En el presente estudio tambi&eacute;n se determin&oacute; la eficiencia   relativa de la transmisi&oacute;n del VAFF en la variedad susceptible &ldquo;Top Crop&rdquo; por los biotipos A y B de B. <i>tabaci</i> usando diferente n&uacute;mero de adultos por planta. Igualmente, se investig&oacute; si exist&iacute;an diferencias entre hembras y machos de los dos biotipos, en cuanto a su capacidad vectorial y, finalmente, se determin&oacute; la reacci&oacute;n de diferentes genotipos de fr&iacute;jol al VAFF transmitido por los biotipos A y B de B. <i>tabaci</i>.</p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><b> Materiales y M&eacute;todos</b></font></p>  <font face="Verdana" size="2">      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><i><b>Bemisia</b></i> <b><i>tabaci</i>.</b> Los biotipos A y B de B. <i>tabaci</i> se obtuvieron   de las cr&iacute;as masivas de la Secci&oacute;n de Entomolog&iacute;a del   Proyecto Fr&iacute;jol del CIAT. Los adultos utilizados en los ensayos   se criaron en cabinas separadas en plantas de fr&iacute;jol de   la variedad ICA-Pijao en jaulas de tul (1 x 1 x 1cm) en condiciones   controladas de 25&plusmn;2&deg;C, 65&plusmn;5% HR y 12 horas de   fotoperiodo, seg&uacute;n la metodolog&iacute;a propuesta por Eichelkraut   y Cardona (1989).</p>     <p>  <b>Adquisici&oacute;n e inoculaci&oacute;n del Virus por los insectos.</b> El   VAFF se aisl&oacute; en julio de 2003 de plantas de fr&iacute;jol habichuela   de la variedad Lago Azul procedentes del corregimiento   de Rozo (3&deg;34&rsquo;23,8N 76&deg;24&rsquo;6,2W) a 963 msnm,   perteneciente al municipio de Palmira (Valle del Cauca)   y fue mantenido en plantas de fr&iacute;jol de la variedad &ldquo;Top   Crop&rdquo;, material susceptible a varias especies de virus que   infectan fr&iacute;jol (Morales y Singh 1993). Las plantas fuentes   de in&oacute;culo se infectaron 13 d&iacute;as antes de los ensayos. Para   esto, se dispusieron en los trifolios jaulas pinza (2,5 cm de   di&aacute;metro y 2 cm de profundidad) que conten&iacute;an cada una   60 adultos sin discriminar por sexo de B. <i>tabaci</i> de m&aacute;ximo   ocho d&iacute;as de edad. (<a href="#(fig1)">Figs. 1A, B</a>). Pasadas 48 horas, tiempo   para adquirir el virus, los insectos se transfirieron a jaulas   pinza colocadas en plantas sanas por otras 48 horas para garantizar   la transmisi&oacute;n (<a href="#(fig1)">Figs. 1C, D</a>). Finalmente, los adultos   se retiraron y eliminaron.</p>          <p align="center"><a name="(fig1)"><img src="img/revistas/rcen/v37n1/v37n1a02fig1.gif"></a></p>        <p>  Con el fin de evitar escapes de adultos infectados, durante   los procesos de adquisici&oacute;n y transmisi&oacute;n, las plantas   se mantuvieron al interior de jaulas (1,10 x 1,0 x 0,80m)   forradas en tul a prueba del escape de moscas blancas. A excepci&oacute;n   de las plantas fuente del virus, las de los diferentes   tratamientos se retiraron de las jaulas y se distribuyeron en   mesas del invernadero de la Unidad de Virolog&iacute;a del CIAT   para su posterior evaluaci&oacute;n. Todos los ensayos se realizaron   en el invernadero donde permanecieron a 27&deg;C&plusmn;5 y 75&plusmn;5%   de humedad relativa.</p>     <p>  <b>Efecto del n&uacute;mero de adultos y eficiencia de transmisi&oacute;n   del virus. </b>Siguiendo el m&eacute;todo descrito, las plantas se expusieron   al ataque de adultos, sin sexar, putativamente infectivos   en un n&uacute;mero de uno, tres, cinco, 10, 15, 20 y 25 insectos   por planta; para un total de 14 tratamientos. La unidad experimental   consisti&oacute; de cinco plantas por tratamiento. Se evalu&oacute;   el porcentaje de plantas infectadas hasta un mes despu&eacute;s de   inoculaci&oacute;n. Se realizaron seis repeticiones, con un dise&ntilde;o de   parcelas divididas, donde el biotipo fue el bloque principal y   el bloque secundario fue el n&uacute;mero de adultos.</p>     <p>  Se calcul&oacute; la eficiencia o probabilidad de transmisi&oacute;n de   un insecto (p) para cada uno de los tratamientos mediante la   f&oacute;rmula:</p>     <p>  Probabilidad de plantas enfermas = 1- (1 - p)<sup>n</sup></p>     <p>  donde,</p>     <p>  p = probabilidad o eficiencia de transmisi&oacute;n</p>     <p>  n = n&uacute;mero de adultos utilizados para realizar la infecci&oacute;n</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>  Esta f&oacute;rmula, basada en la distribuci&oacute;n binomial y propuesta   originalmente por Morales y Zattler (1977) para estimar   la eficiencia de transmisi&oacute;n de virus por &aacute;fidos fue adaptada,   en este estudio, para virus transmitidos por B. <i>tabaci</i> por   Myriam Cristina Duque, de la Unidad de Biotecnolog&iacute;a y   Biodiversidad del CIAT (com. pers.).</p>     <p><b> Transmisi&oacute;n del VAFF por hembras y machos de B. <i>tabaci</i></b>   Los adultos que hab&iacute;an adquirido el virus, se sexaron bajo   el estereoscopio y se individualizaron hembras y machos   en jaulas pinza ubicando un individuo por planta de los dos   biotipos para un total de cuatro tratamientos. La unidad experimental consisti&oacute; de 20 plantas y se realizaron cinco repeticiones   con un dise&ntilde;o de parcelas divididas. Se registr&oacute;   el n&uacute;mero de plantas infectadas hasta un mes despu&eacute;s de   realizado el proceso de inoculaci&oacute;n y se calcul&oacute; el porcentaje   de infecci&oacute;n.</p>     <p><b> Reacci&oacute;n de genotipos a la infecci&oacute;n viral.</b> Con el objeto de   evaluar la respuesta de diferentes genotipos del fr&iacute;jol al VAFF   se emplearon los genotipos: Porrillo Sint&eacute;tico, ICTA Ligero,   EAP 9510-77, Red Kloud, BAT 304, Rojo Brasil, Garrapato,   Red Mexican 35 (RM-35), Redlands Greenleaf C (RGLC) y   Great Northern 31 (GN-31). Estos genotipos fueron desarrollados   previamente en la b&uacute;squeda de fuentes de resistencia   al Virus del Mosaico Dorado y al Virus del Mosaico Dorado   Amarillo del Fr&iacute;jol (Morales 2000b). Algunos de ellos representan   la base gen&eacute;tica del mejoramiento de las variedades   que han sido exitosas para el control de los <i>Begomovirus</i> en   fr&iacute;jol (Morales 2000b).</p>     <p>  Los tratamientos consistieron en la inoculaci&oacute;n de los genotipos   con un n&uacute;mero determinado de insectos previamente   expuestos al virus. Se realizaron cuatro experimentos, iniciando   con 25 insectos por planta para el biotipo A para infectar   los 11 genotipos, seguidamente se realizaron dos ensayos   con todos los genotipos, disminuyendo a ocho y 15 insectos   por planta para el biotipo A y B respectivamente. El &uacute;ltimo   ensayo se realiz&oacute; con todos los genotipos utilizando seis moscas   de los dos biotipos por planta. En todos los casos se us&oacute;   como material susceptible o control a la variedad Top Crop.   La unidad experimental consisti&oacute; de entre 10 a 12 plantas y se   realizaron tres repeticiones para un dise&ntilde;o de parcelas divididas   donde el biotipo fue el bloque principal y el secundario   el genotipo. Se registr&oacute; el n&uacute;mero de plantas infectadas hasta   un mes despu&eacute;s de realizado el proceso de inoculaci&oacute;n y se   calcul&oacute; el porcentaje de infecci&oacute;n.</p>     <p><b> An&aacute;lisis de datos.</b> Los datos de porcentaje de infecci&oacute;n de   virus de ambos biotipos se transformaron con el arcoseno de   la ra&iacute;z cuadrada del porcentaje de infecci&oacute;n dividido por cien   (Steel y Torrie 1992). Una vez transformados se realiz&oacute; un   an&aacute;lisis de varianza y cuando se presentaron diferencias significativas,   la separaci&oacute;n de medias se realiz&oacute; con la prueba   de Rayan-Einot-Gabriel-Welsh (SAS Institute 2002).</p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><b> Resultados y Discusi&oacute;n</b></font></p> <font face="Verdana" size="2">     <p>  <b>Efecto del n&uacute;mero de adultos y eficiencia de transmisi&oacute;n   del virus.</b> Aunque los resultados muestran que un individuo   de B. <i>tabaci</i>, independiente del biotipo, est&aacute; en capacidad de   transmitir el VAFF a un genotipo susceptible de fr&iacute;jol, como   la variedad Top Crop, el porcentaje de transmisi&oacute;n o incidencia   de la enfermedad fue significativamente diferente dependiendo   del biotipo de B. <i>tabaci</i>, siendo del 27 y 6% para los   biotipos A y B, respectivamente (<a href="#(tab1)">Tabla 1</a>). Esta diferencia se   mantuvo hasta que el aumento de individuos alcanz&oacute; 15 y 20   moscas blancas por planta para los biotipos A y B, respectivamente,   momento en el cual, independiente del incremento   en el n&uacute;mero de individuos potencialmente virul&iacute;feros, la incidencia   del virus no sigui&oacute; una relaci&oacute;n lineal. Al comparar   los promedios de los porcentajes de infecci&oacute;n (<a href="#(tab1)">Tabla 1</a>), se   encontr&oacute; que difieren significativamente (P&lt; 0,0001), donde   el biotipo A es m&aacute;s eficiente que el B al transmitir el VAFF a   plantas de fr&iacute;jol de la variedad Top Crop. Este resultado coincide   con aquellos obtenidos por Idris <i>et al</i>. (2001) quienes registran   una mayor eficiencia del biotipo A con respecto del B   en la transmisi&oacute;n del Virus del Chino del Tomate, empleando   un adulto por planta y, adem&aacute;s, da soporte a las observaciones   de otros investigadores quienes hacen referencia al biotipo   B como un vector menos competente en la transmisi&oacute;n   de <i>Begomovirus</i> (Duffus <i>et al</i>. 1992; Duffus y Cohen 1992).</p>     <p align="center"><a name="(tab1)"><img src="img/revistas/rcen/v37n1/v37n1a02tab1.gif" /></a></p>     <p>  Los valores estimados de p o eficiencia de transmisi&oacute;n del   VAFF por un individuo de los biotipos A y B de B. <i>tabaci</i> (<a href="#(tab1)">Tabla   1</a>), permiten establecer que el biotipo A es por lo menos   cuatro veces m&aacute;s eficiente que el B como vector del VAFF   (<a href="#(tab2)">Tabla 2</a>). A pesar de que el c&aacute;lculo de p en este caso corresponde   a un valor observado (e.g. 0,27 para el biotipo A), su   estimaci&oacute;n a partir de los valores obtenidos con un n&uacute;mero   mayor (&gt;1) de individuos, muestra una tendencia a subestimar   la eficiencia de transmisi&oacute;n p a medida que aumenta el   n&uacute;mero de vectores potenciales colocados en una planta sana.   Este comportamiento sugiere que la incidencia de un virus   como el VAFF no es lineal, y que a partir de un cierto n&uacute;mero   de moscas blancas por planta se genera una curva con una   pendiente positiva pero decreciente. Una posible explicaci&oacute;n   a este resultado recae en el estr&eacute;s por confinamiento generado por las condiciones experimentales que, posiblemente, incide   en la alimentaci&oacute;n de las moscas blancas y, en consecuencia,   en la transmisi&oacute;n. Por el contrario, en condiciones de campo,   los eventos de transmisi&oacute;n del virus ser&iacute;an relativamente independientes,   lo que permitir&iacute;a la inoculaci&oacute;n del virus por   diferentes individuos en un tiempo relativamente corto.</p>       <p align="center"><a name="(tab2)"><img src="img/revistas/rcen/v37n1/v37n1a02tab2.gif" /></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b> Transmisi&oacute;n del VAFF por hembras y machos de B. <i>tabaci</i>.</b>   Los an&aacute;lisis estad&iacute;sticos revelaron una interacci&oacute;n biotipo   por sexo (P = 0,028), lo cual indica, en primer lugar, que la   capacidad de infectar un mayor o menor n&uacute;mero de plantas   con hembras o con machos puede depender del biotipo y, en   segunda instancia, que la eficiencia de transmisi&oacute;n de un biotipo   puede depender del sexo (<a href="#(tab3)">Tabla 3</a>). Al respecto, tanto   hembras como machos del biotipo A de B. <i>tabaci</i> transmitieron   el VAFF a plantas de Top Crop con la misma eficiencia.   Los porcentajes de infecci&oacute;n no variaron significativamente y   fueron m&aacute;s eficientes para transmitir el pat&oacute;geno que el biotipo   B. Por el contrario, en el caso de este biotipo, el porcentaje   de plantas infectadas por las hembras fue significativamente   mayor que el causado por los machos (<a href="#(tab3)">Tabla 3</a>). De otra parte,   debido a que por cada planta se utiliz&oacute; un adulto, el porcentaje   de plantas infectadas es equivalente al porcentaje de   individuos que infectaron plantas. De este modo, el 92 y 69%   de hembras de los biotipos A y B, respectivamente, lograron   transmitir el VAFF. En contraste, el 85% de los machos del   biotipo A transmitieron el virus, frente a solo el 34% de los   machos del B. En ambos casos se presentaron diferencias significativas   (<a href="#(tab3)">Tabla 3</a>).</p>     <p align="center"><a name="(tab3)"><img src="img/revistas/rcen/v37n1/v37n1a02tab3.gif" /></a></p>     <p>  Aunque en la literatura se reporta que las hembras de B.   <i>tabaci</i> son vectores m&aacute;s eficientes que los machos (Cohen y   Nitzany 1966; Costa y Bennett 1950; Czosnek <i>et al</i>. 2001;   Muniyapa <i>et al</i>. 2000; Nateshan <i>et al</i>. 1996) en nuestro estudio,   esto fue v&aacute;lido solo para el biotipo B, en cuanto que no   se presentaron diferencias en los porcentajes de transmisi&oacute;n   del VAFF entre hembras y machos del biotipo A (<a href="#(tab3)">Tabla 3</a>).   Esto coincide en cierta forma con los estudios de Polston et   al. (1990) quienes mostraron que las tasas de detecci&oacute;n de   ADN (n&uacute;mero de insectos con cantidad detectable de acido   nucleico viral/ n&uacute;mero de insectos evaluados) no fueron diferentes   entre hembras y machos de B. <i>tabaci</i> despu&eacute;s de la   ingesti&oacute;n con el Virus del encrespamiento de la hoja de la   calabaza, aunque los machos conten&iacute;an mayor cantidad de   ADN/mg del peso del cuerpo que las hembras. Sin embargo,   Costa (1969) sugiere que cuando hay diferencias, la mayor   habilidad de las hembras de transmitir virus respecto de los   machos se debe a que ellas tienen una mayor actividad metab&oacute;lica   debido a la producci&oacute;n de huevos, lo que conduce a   una mayor tasa de adquisici&oacute;n y, por tanto, de transmisi&oacute;n de   virus durante el proceso de alimentaci&oacute;n en las plantas.</p>     <p><b> Reacci&oacute;n de genotipos a la infecci&oacute;n viral. </b>Con el n&uacute;mero   de moscas blancas empleadas se logr&oacute; obtener infecci&oacute;n en   todos los materiales (<a href="#(tab4)">Tabla 4</a>) demostrando que ninguno de   ellos posee inmunidad. Sin embargo, se presentaron diferencias   significativas en el porcentaje de plantas infectadas de   acuerdo con el genotipo (P&lt;0,0001), siendo Top Crop y Red   Kloud los m&aacute;s susceptibles mientras que los materiales de fr&iacute;jol   negro BAT-304 y Porrillo Sint&eacute;tico fueron los m&aacute;s resistentes.   Sin embargo, estos &uacute;ltimos no presentaron diferencias   significativas con respecto a ICTA Ligero y Red Mexican-35.   Esto sugiere la existencia de diferentes niveles de resistencia   al virus en diversos genotipos de fr&iacute;jol com&uacute;n. Es de destacar   que los porcentajes de infecci&oacute;n en RGLC y Garrapato no   difieren significativamente de otro grupo de genotipos con   respuesta moderada o intermedia a la infecci&oacute;n como EAP-   951077, Rojo Brasil y GN-31, lo que est&aacute; indicando que   todos estos materiales presentan escapes a la infecci&oacute;n del   VAFF (<a href="#(tab4)">Tabla 4</a>).</p>       <p align="center"><a name="(tab4)"><img src="img/revistas/rcen/v37n1/v37n1a02tab4.gif" /></a></p>     <p>  Cuando los genotipos se sometieron a la infecci&oacute;n con el   virus utilizando ocho adultos por planta del biotipo A y 15 del   B, se presentaron diferencias significativas en el porcentaje   de infecci&oacute;n de acuerdo con el genotipo (P&lt;0,0001). Los porcentajes   m&aacute;s altos se obtuvieron con el material susceptible   Top Crop, seguido de Red Kloud. A diferencia del ensayo con   25 moscas por planta, con ocho y 15 moscas de los biotipos   A y B no se obtuvo infecci&oacute;n en los genotipos de fr&iacute;jol negro   ICTA Ligero, BAT-304 y Porrillo Sint&eacute;tico y, adem&aacute;s, con   Red Mexican -35 para el biotipo B (<a href="#(tab5)">Tablas 5</a> y <a href="#(tab6)">6</a>). Los valores   m&aacute;s bajos de incidencia (29,0-3,0%) en estos ensayos se presentaron   para GN 31, EAP-951077, Rojo Brasil con los dos   biotipos y Red Mexican-35 para el biotipo A.</p>       <p align="center"><a name="(tab5)"><img src="img/revistas/rcen/v37n1/v37n1a02tab5.gif" /></a></p>       <p align="center"><a name="(tab6)"><img src="img/revistas/rcen/v37n1/v37n1a02tab6.gif" /></a></p>     <p>  En los resultados de infecci&oacute;n de los once genotipos con   el VAFF por los biotipos A y B, usando seis moscas por planta,   se present&oacute; interacci&oacute;n biotipo por genotipo (P&lt;0,0002)   (<a href="#(tab7)">Tabla 7</a>). Lo anterior significa que los diferentes niveles de   resistencia de los genotipos afectan la capacidad de infecci&oacute;n   de los biotipos. A su vez, dependiendo del biotipo, las plantas   de un genotipo dado tienen mayor o menor probabilidad   de ser infectadas. Es as&iacute; como Top Crop por ser un material   susceptible, fue infectado por los dos biotipos contrastando   con los genotipos de fr&iacute;jol negro que no se infectaron conel mismo n&uacute;mero de moscas blancas utilizadas. Sin embargo,   materiales como Red Kloud, RGLC, Garrapato y GN-31   presentaron valores de infecci&oacute;n significativamente m&aacute;s altos   con el biotipo A que con el B.</p>       <p align="center"><a name="(tab7)"><img src="img/revistas/rcen/v37n1/v37n1a02tab7.gif" /></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>  Teniendo en cuenta que la totalidad de las plantas de Top   Crop fueron infectadas por el VAFF transmitido por los dos   biotipos, al igual que la variedad Red Kloud utilizando el biotipo   A, estos materiales se constituyeron en los genotipos de   fr&iacute;jol m&aacute;s susceptibles entre los seleccionados en esta investigaci&oacute;n,   presentando diferencias significativas con respecto   de los otros materiales (P&lt;0,0001). Los valores m&aacute;s bajos de   infecci&oacute;n fueron para EAP-951077 y RM-35 inoculados con   los dos biotipos, y RGL-C y GN-31 inoculados mediante el   biotipo B. Se obtuvieron valores desde intermedios a altos de   infecci&oacute;n en los genotipos Rojo Brasil, Garrapato y RGLC   infectados con el biotipo A y Red Kloud con el biotipo B. Los   resultados con el resto de materiales se pueden ubicar en un   nivel de infecci&oacute;n bajo (<a href="#(tab5)">Tabla 5</a>).</p>     <p>  Considerando que EAP-951077 es un cultivar que combina   diferentes fuentes de resistencia (MD3075 x DICTA   105) contra el Virus del Mosaico Dorado Amarillo del Fr&iacute;jol,   a diferencia de otros evaluados en esta investigaci&oacute;n y   que se constituyen por s&iacute; mismos en fuentes de resistencia   (Morales y Niessen 1988), se decidi&oacute; establecer la eficiencia   de transmisi&oacute;n p de un individuo y el n&uacute;mero de insectos   requeridos para obtener valores esperados del 25, 50, 75 y   95% de plantas infectadas con los biotipos A y B de B. <i>tabaci</i>   con esta variedad. Es necesario aclarar que los ensayos   con genotipos no fueron dise&ntilde;ados para poner en ejercicio   la f&oacute;rmula de probabilidad. Los resultados de este ensayo se   presentan en el <a href="img/revistas/rcen/v37n1/v37n1a02anex.gif" target="_blank">anexo 1</a>. En contraste con lo ocurrido con Top   Crop (<a href="#(tab2)">Tabla 2</a>), la eficiencia de transmisi&oacute;n p de un individuo   de ambos biotipos fue proporcional al aumento en n&uacute;mero   de moscas empleadas para inocular las plantas (Anexo). En   este caso particular, parece ser que el aumento de individuos   por planta no afect&oacute; la transmisi&oacute;n del VAFF, lo que pone en   duda la hip&oacute;tesis del estr&eacute;s inducido en las moscas blancas a   medida que se aumenta el n&uacute;mero de individuos por planta.   De otra parte, haciendo una proyecci&oacute;n a partir de la f&oacute;rmula   de probabilidad, se observa que los adultos requeridos para   lograr valores esperados del 25 y 50% de plantas infectadas   de EAP-951077, est&aacute;n dentro de un rango m&aacute;s estrecho para   los dos biotipos, en relaci&oacute;n con los requeridos para alcanzar   un 75 y 95%. Lo que significa que es m&aacute;s factible acercarse   al n&uacute;mero requerido de insectos que puede infectar el 50%   de las plantas o menos. Es interesante observar c&oacute;mo, a diferencia   de lo que ocurre con un genotipo altamente susceptible   como Top Crop, EAP-951077 se ubica entre los materiales   que responden con una infecci&oacute;n baja al VAFF y, por   la misma raz&oacute;n, el n&uacute;mero de moscas blancas que podr&iacute;an   requerirse para lograr porcentajes de infecci&oacute;n del 75 y 95%   son bastante altos, lo que demuestra la existencia de un nivel   importante de resistencia en este material (<a href="img/revistas/rcen/v37n1/v37n1a02anex.gif" target="_blank">Anexo</a>).</p>     <p>  Vale la pena reiterar que cuando se habla de &ldquo;resistencia&rdquo;   a los <i>Begomovirus</i> que afectan el fr&iacute;jol en Am&eacute;rica Latina, se   hace en el sentido amplio de la palabra e incluye un rango de   niveles de resistencia (Morales 2000b). En este sentido, los   materiales que se usaron en este trabajo, hab&iacute;an sido evaluados   previamente en condiciones de campo para el VAFF en   el corregimiento de La Tupia, municipio de Pradera, Valle   del Cauca, Colombia (CIAT 2004). Dichos ensayos revelaron   que genotipos como ICTA Ligero, Porrillo Sint&eacute;tico y   BAT-304 presentaban niveles altos de resistencia al virus,   mientras que, EAP-951077 present&oacute; un nivel de resistencia   intermedia y que materiales como Garrapato, Rojo Brasil   y RM-35 registraron niveles bajos. RGLC fue catalogado   como un material susceptible y Red Kloud y GN-31 se evaluaron   una sola vez pues no presentaron una respuesta aceptable   en el campo.</p>     <p>  Para el Virus del Arrugamiento Foliar del Fr&iacute;jol, es evidente   que, con excepci&oacute;n del genotipo susceptible Top Crop,   y en el caso particular de Red Kloud cuando es infectado con   el biotipo A, todos los materiales evaluados exhibieron diferentes   niveles de resistencia contra el pat&oacute;geno. Estos resultados   corroboran aquellos obtenidos en La Tupia (CIAT   2004), en los cuales los materiales de fr&iacute;jol negro como ICTA   Ligero, BAT-304 y Porrillo Sint&eacute;tico presentaron los m&aacute;s   altos niveles de resistencia. Aunque, en el caso de esta investigaci&oacute;n,   no solamente EAP-951077 present&oacute; niveles de   resistencia intermedia, sino tambi&eacute;n Rojo Brasil, GN-31 y   RM-35. Interesantemente, RGLC no se comport&oacute; como un material susceptible, sino de baja resistencia a la infecci&oacute;n.</p>     <p>Garrapato fue ambivalente en su respuesta a la infecci&oacute;n con   el virus, presentando bajos niveles de resistencia cuando se   evalu&oacute; con el biotipo A y niveles intermedios con el B. Seg&uacute;n   Morales y Niessen (1988) y Morales (2000b) Porrillo sint&eacute;tico   ha sido la fuente de resistencia m&aacute;s usada en Am&eacute;rica   Latina para el desarrollo del 95% de las l&iacute;neas de resistencia   al mosaico dorado. Es en este tipo de materiales negros que   se encuentra t&iacute;picamente un porcentaje relativamente bajo de   plantas infectadas por el virus y otro porcentaje que ha escapado   a la infecci&oacute;n especialmente cuando &eacute;sta se retrasa   bajo condiciones de incidencia tard&iacute;a o moderada de mosca   blanca. En la presente investigaci&oacute;n, la infecci&oacute;n de los materiales   negros solo se logr&oacute; con el biotipo A, lo que sugiere un   mejor desempe&ntilde;o de estos materiales cuando son expuestos a   la infecci&oacute;n con el biotipo B. No obstante, de acuerdo con lo   mencionado por Morales (2000b), la presi&oacute;n de las poblaciones   de la mosca blanca en el campo determinan la incidencia del virus.</p>     <p>  Morales y Niessen (1988) y Singh (1989), indican que   genotipos como GN-31, RGLC y RM-35 fueron desarrollados   para zonas de climas templados y crecen mejor en condiciones   de invernadero (Morales y Niessen 1988). En este   estudio, estos materiales presentaron un mejor desempe&ntilde;o   en su respuesta al virus, que lo presentado antes en condiciones   de campo (CIAT 2004). Lo anterior es importante   en cuanto que estos genotipos presentan resistencia a otros   virus de fr&iacute;jol com&uacute;n que han sido empleados en el mejoramiento   de materiales contra el Virus del Mosaico Dorado   y el Virus del Mosaico Dorado Amarillo (Morales 2000b).   Adem&aacute;s porque, al igual que los genotipos de fr&iacute;jol negro,   GN-31 y RM-35 presentan una tendencia al escape especialmente   cuando se retrasa la infecci&oacute;n con el virus (Morales   y Niessen 1988; Morales 2000b). En el caso de RGLC   a pesar infectarse sist&eacute;micamente, produce vainas con poca   deformaci&oacute;n (Morales y Niessen 1988), a este material se   le ha descubierto el gen Bgp asociado a esta caracter&iacute;stica   (Blair y Beaver 1993).</p>     <p>  De otra parte, Morales y Niessen (1988) indican que Garrapato   y Red Kloud son genotipos que se infectan sist&eacute;micamente   con el Virus del Mosaico Dorado Amarillo del Fr&iacute;jol.   Sin embargo, los autores mencionan que cuando estos materiales   fueron usados como parentales incluyendo a Porrillo   Sint&eacute;tico, los descendientes presentaron niveles de resistencia   m&aacute;s altos que sus padres. Este es el caso de A429, un   material con color de semilla diferente al negro, que demostr&oacute;   poseer un alto nivel de resistencia al Virus del Mosaico   Dorado Amarillo en condiciones de campo y en el cual uno   de sus parentales es Garrapato. En consecuencia, as&iacute; Garrapato   presente niveles bajos e intermedios de resistencia contin&uacute;a,   seg&uacute;n Morales (2000b), es una de las mejores fuentes   de resistencia descubiertas hasta el presente. Se ha descrito   el gen recesivo <i>bgm</i>-1 como responsable de la resistencia al   amarillamiento de este genotipo y sus descendientes (Blair y   Beaver 1993; Singh <i>et al</i>. 2000).</p>     <p>  Individuos de B. <i>tabaci</i> del biotipo B fueron colectados   en campos de fr&iacute;jol infectados con el VAFF, en el corregimiento   de La Tupia (municipio de Candelaria, Valle del   Cauca) y determinados por RAPDs (PCR) (Unidad de Virolog&iacute;a-   CIAT, datos sin publicar). Esto sugiere que el virus   es transmitido en condiciones naturales por el biotipo B, ya   que el biotipo A aparentemente fue desplazado (Rodr&iacute;guez   <i>et al</i>. 2005). Es posible que como vector, el biotipo B no sea   tan eficiente como el A en transmitir <i>Begomovirus</i> (Duffus   <i>et al</i>. 1992; Idris <i>et al</i>. 2001; Markham y Bedford 1993), tal   como se pone en evidencia en la presente investigaci&oacute;n. Sin   embargo, la alta fecundidad de este biotipo (Cuellar <i>et al</i>. en   preparaci&oacute;n), se refleja en las grandes poblaciones del biotipo   B en campo. Seg&uacute;n Morales (2006), se han encontrado   poblaciones que exceden 2000 individuos de mosca blanca   por planta en fr&iacute;jol com&uacute;n, hecho que compensa lejos las   diferencias en la eficiencia de transmisi&oacute;n presentada en   los biotipos. Adicionalmente, en este trabajo se demostr&oacute;   que en condiciones experimentales cuando el biotipo B comienza   a adquirir y a transmitir <i>Begomovirus</i>, su capacidad   de infectar un mayor n&uacute;mero de plantas incrementa con el   tiempo.</p>     <p>  Este trabajo permite concluir que existen fuentes de resistencia   al Virus del Arrugamiento Foliar del Fr&iacute;jol que pueden   ser usadas para implementar un programa de mejoramiento   gen&eacute;tico de fr&iacute;jol habichuela por su resistencia a este virus en   el Valle del Cauca.</p> </font>     <p>  <font size="3" face="Verdana"><b>Agradecimientos</b></font></p> <font face="Verdana" size="2">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>  Al Proyecto de Mosca Blanca Tropical por la financiaci&oacute;n del   trabajo; a Myriam Cristina Duque, Unidad de Biotecnolog&iacute;a   y Biodiversidad del CIAT, por el an&aacute;lisis estad&iacute;stico; al personal   del Proyecto Fr&iacute;jol del CIAT por el suministro de los insectos procedentes de las cr&iacute;as para los ensayos.</p> </font>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Literatura citada</b></font></p> <font face="Verdana" size="2">     <!-- ref --><p>  BETHKE, J. A.; PAINE, T. D.; NUESSLY, G. S. 1991. Comparative   biology, morphometrics and development of two populations of   <i>Bemisia</i> <i>tabaci</i> (Homoptera: Aleyrodidae) on cotton and poinsettia.   Annals of the Entomological Society of America 84: 407-   411.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0120-0488201100010000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  BLAIR, M.W.; BEAVER, J.S. 1993. Inheritance of bean golden mosaic   resistance from bean genotype A429. Pag. 143 en: Annual   Report Beam Improvement. Centro Internacional de Agricultura   Tropical, Cali, Colombia.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0120-0488201100010000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  BROWN, J. K. 1990. An update on the whitefly-transmitted geminivirus   in the Americas and the Caribbean basin. FAO Plant Protection   Bulletin 39: 5-23.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0120-0488201100010000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  BROWN, J. K. 1994. Current status of <i>Bemisia</i> <i>tabaci</i> as a plant   pest and virus vector in agroecosystems worldwide. FAO Plant   Protection Bulletin 42: 3-32.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0120-0488201100010000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  BYRNE, D.; BELLOWS, T.; PARRELLA, M. 1990. Whiteflies in   agricultural systems. P&aacute;gs. 227-251 en: D. Gerling (ed.). Whiteflies:   Their Bionomics, Pest Status and Management. Intercept,   Andover UK.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-0488201100010000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  CIAT, 2004. Annual Report Project IP-1 Bean Improvement for the   tropics. Centro Internacional de Agricultura Tropical, Cali, Colombia.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-0488201100010000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  COHEN, S.; NITZANY, F.E. 1966. Transmission and host range of   the tomato yellow leaf curl virus. Phytopathology 56(10): 1127-   1131.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-0488201100010000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  COSTA, A.S.; BENNETT, C.W. 1950. White-fly-transmitted mosaic   of <i>Euphorbia prunifolia</i>. Phytopathology 40(3): 266-283.   COSTA, A.S. 1969. Whiteflies as virus vectors. Pags. 95-119. En   K. Maramorosch: Viruses, Vectors and Vegetation. Interscience   Press. New York.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-0488201100010000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref -->    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-0488201100010000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  COSTA, H.S.; BROWN, J. K. 1991. Variation in biological characteristics   and esterase patterns among populations of <i>Bemisia</i>   <i>tabaci</i>, and the association of one population with silverleaf   symptom induction. Entomologia Experimentalis et Aplicatta   61: 211-219.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-0488201100010000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  CZOSNEK, H.; GHANIM, M.; GHANIM, M. 2001. The circulative   pathway of <i>Begomovirus</i>es in the whitefly vector <i>Bemisia</i> <i>tabaci</i> - insights from studies with <i>Tomato yellow leaf curl</i> virus. Annals of Applied Biology 140: 215-231.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-0488201100010000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  DUFFUS, J.E. 1992. Whitefly vectors: increasing threat to world   agriculture. Proceedings XIX International Congress of Entomology,   Beijing. China. 352 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0120-0488201100010000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  DUFFUS, J.E. ; COHEN, S. 1992. Whitefly-borne viruses and their   vectors in the sub-tropical environment. Proceedings 5<sup>th</sup> International   Plants Virus Epidemiology Symposium: Viruses, Vectors   and the Environment. Valenzano (Bari). Italia. Pp. 7-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-0488201100010000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  EICHELKRAUT, K.; CARDONA, C. 1989. Biolog&iacute;a, cr&iacute;a masal y   aspectos ecol&oacute;gicos de la mosca blanca <i>Bemisia</i> <i>tabaci</i> (Gennadius)   (Homoptera: Aleyrodidae), como plaga de fr&iacute;jol com&uacute;n.   Turrialba 39(1): 51-55.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-0488201100010000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  IDRIS, A. M.; SMITH S. E.; BROWN J. K. 2001. Ingestion, transmission,   and persistence of Chino del tomate virus (CdTV), a   New World <i>Begomovirus</i>, by Old and New World biotypes of   the whitefly vector <i>Bemisia</i> <i>tabaci</i>. Annals of Applied Biology   139(1):145-154.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-0488201100010000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  MORALES, F.J.; ZETTLER, F.W. 1977. Aphid transmission characteristics   of dasheen mosaic virus. Revista Colombiana de   Fitopatolog&iacute;a 6(2):141.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-0488201100010000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  MARKHAM, P. G.; BEDFORD, I. D. 1993. Comportamiento y   modos de acci&oacute;n de <i>Bemisia</i> <i>tabaci</i> (Gennadius): capacidad de   transmitir virosis. 4&ordm; Symposium, Las Virosis en los Cultivos   Hort&iacute;colas Mediterr&aacute;neos. Phytoma Espa&ntilde;a 50: 47-52.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-0488201100010000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  MORALES, F. J.; SINGH., S. P. 1993. Breeding for resistance to   bean golden mosaic virus in an interracial population of <i>Phaseolus</i>   <i>vulgaris</i> L. Euphytica 67: 59-63.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-0488201100010000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  MORALES, F.J.; NIESSEN, A. 1988. Comparative responses of selected   <i>Phaseolus</i> <i>vulgaris</i> germplasm inoculated artificially and   naturally with bean golden mosaic virus. Plant Disease 72(12):   1020-1023.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-0488201100010000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  MORALES, F. J. 2000a. El Mosaico Dorado y otras enfermedades   del fr&iacute;jol com&uacute;n causadas por geminivirus transmitidos por   mosca blanca en la Am&eacute;rica Latina. Palmira, Valle del Cauca,   Colombia, Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT).   169 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-0488201100010000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  MORALES, F. J. 2000b. M&eacute;todos de control de <i>Begomovirus</i> del   fr&iacute;jol. P&aacute;gs. 133-154 en F. J. Morales (ed.). El Mosaico Dorado   y otras enfermedades del fr&iacute;jol com&uacute;n causadas por geminivirus   transmitidos por mosca blanca en la Am&eacute;rica Latina. Palmira,   Valle del Cauca, Colombia, Centro Internacional de Agricultura   Tropical (CIAT). 169 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-0488201100010000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  MORALES, F. J.; MU&Ntilde;OZ, C.; CASTA&Ntilde;O, M.; VELASCO, A. C.   2000. Geminivirus transmitidos por mosca blanca en Colombia.   Fitopatolog&iacute;a Colombiana 24(2): 95-98.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-0488201100010000200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  MORALES, F.J. 2001. Conventional breeding for resistance to   <i>Bemisia</i> <i>tabaci</i>-transmited geminiviruses. Crop Protection 20:   825-834.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-0488201100010000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  MUNIYAPPA V.; VENKATESH, H.M.; RAMAPPA, H.K.;   KULKARNI, R.S.; ZEIDAN, M.; TARBA C.Y.; GHANIM,   M.; CZOSNEK H. 2000. Tomato leaf curl virus from Bangalore   (ToLCV-Ban4): sequence comparison with Indian ToLCV isolates,   detection in plants and insects, and vector relationships.   Archives of Virology 145: 1583-1598.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-0488201100010000200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  NATESHAN, H.M.; MUNIYAPPA, V.; SWANSON, M.M.; HARRISON,   BD. 1996. Host range, vector relations and serological   relationships of cotton leaf curl virus from southern India.   Annals of Applied Biology 1289: 233-244.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-0488201100010000200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  OLIVEIRA, M. R.V.; HENNEBERRY, T. J.; ANDERSON, P. 2001.   History, current status, and collaborative research projects. Crop   Protection 20: 709-723.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-0488201100010000200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  PERRING, T. M. 2001. The <i>Bemisia</i> <i>tabaci</i> species complex. Crop   Protection 20: 725-737.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-0488201100010000200027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  POLSTON, J.E.; AL-MUSA, A.; PERRING, T.M.; DODDS, J.A.   1990. Association of the nucleic acid of squash leaf curl geminivirus   with the whitefly <i>Bemisia</i> <i>tabaci</i>. Phytopathology 80:   850-856.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-0488201100010000200028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  RODRIGUEZ, I.; MORALES, H.; BUENO, J. M.; CARDONA, C.   2005. El biotipo B de <i>Bemisia</i> <i>tabaci</i> (Homoptera: Aleyrodidae)   adquiere mayor importancia en el Valle del Cauca. Revista Colombiana   de Entomolog&iacute;a 31(1): 21-28.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-0488201100010000200029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  ROMBERG, M. 1998. Caracterizaci&oacute;n biol&oacute;gica de dos biotipos de   la mosca blanca <i>Bemisia</i> <i>tabaci</i> (Genn) (Homoptera: Aleyrodidae).   Tesis de Grado en Biolog&iacute;a. Pontificia Universidad Javeriana,   Bogot&aacute;. 80 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-0488201100010000200030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  SAS (Statistical Analytical Institute). 2002. Version 8.2. SAS Institute   Inc. Cary, N.C.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-0488201100010000200031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  SINGH, S.P. 1989. Patterns of variation in cultivated common bean   (<i>Phaseolus</i> <i>vulgaris</i>, Fabaceae). Economic Botany 43: 39-57.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-0488201100010000200032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  SINGH, S.P.; MORALES, F.J.; MIKLAS, P.N.; TERAN, H. 2000.   Selection for bean golden mosaic resistance in intra and interracial   bean populations. Crop Science 40: 1565-1572.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-0488201100010000200033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  STEEL R.G.D.; TORRIE J.H. 1992. Bioestad&iacute;stica: Principios y Procedimientos. McGraw-Hill. M&eacute;xico. 622 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-0488201100010000200034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
<ref-list>
<ref id="B1">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[BETHKE]]></surname>
<given-names><![CDATA[J. A.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[PAINE]]></surname>
<given-names><![CDATA[T. D.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[NUESSLY]]></surname>
<given-names><![CDATA[G. S.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Comparative biology, morphometrics and development of two populations of Bemisia tabaci (Homoptera: Aleyrodidae) on cotton and poinsettia]]></article-title>
<source><![CDATA[Annals of the Entomological Society of America]]></source>
<year>1991</year>
<numero>84</numero>
<issue>84</issue>
<page-range>407- 411</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B2">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[BLAIR]]></surname>
<given-names><![CDATA[M.W.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[BEAVER]]></surname>
<given-names><![CDATA[J.S.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Inheritance of bean golden mosaic resistance from bean genotype A429]]></article-title>
<source><![CDATA[Annual Report Beam Improvement]]></source>
<year>1993</year>
<page-range>143</page-range><publisher-loc><![CDATA[Cali ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Centro Internacional de Agricultura Tropical]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B3">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[BROWN]]></surname>
<given-names><![CDATA[J. K.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[An update on the whitefly-transmitted geminivirus in the Americas and the Caribbean basin]]></article-title>
<source><![CDATA[FAO Plant Protection Bulletin]]></source>
<year>1990</year>
<numero>39</numero>
<issue>39</issue>
<page-range>5-23</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B4">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[BROWN]]></surname>
<given-names><![CDATA[J. K.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Current status of Bemisia tabaci as a plant pest and virus vector in agroecosystems worldwide]]></article-title>
<source><![CDATA[FAO Plant Protection Bulletin]]></source>
<year>1994</year>
<numero>42</numero>
<issue>42</issue>
<page-range>3-32</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B5">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[BYRNE]]></surname>
<given-names><![CDATA[D.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[BELLOWS]]></surname>
<given-names><![CDATA[T]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[PARRELLA]]></surname>
<given-names><![CDATA[M.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Whiteflies in agricultural systems]]></article-title>
<person-group person-group-type="editor">
<name>
<surname><![CDATA[Gerling]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Whiteflies: Their Bionomics, Pest Status and Management]]></source>
<year>1990</year>
<page-range>227-251</page-range><publisher-loc><![CDATA[Andover ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Intercept]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B6">
<nlm-citation citation-type="book">
<collab>CIAT</collab>
<source><![CDATA[Annual Report Project IP-1 Bean Improvement for the tropics]]></source>
<year>2004</year>
<publisher-loc><![CDATA[Cali ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Centro Internacional de Agricultura Tropical]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B7">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[COHEN]]></surname>
<given-names><![CDATA[S.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[NITZANY]]></surname>
<given-names><![CDATA[F.E.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Transmission and host range of the tomato yellow leaf curl virus]]></article-title>
<source><![CDATA[Phytopathology]]></source>
<year>1966</year>
<volume>56</volume>
<numero>10</numero>
<issue>10</issue>
<page-range>1127- 1131</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B8">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[COSTA]]></surname>
<given-names><![CDATA[A.S.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[BENNETT]]></surname>
<given-names><![CDATA[C.W.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[White-fly-transmitted mosaic of Euphorbia prunifolia]]></article-title>
<source><![CDATA[Phytopathology]]></source>
<year>1950</year>
<volume>40</volume>
<numero>3</numero>
<issue>3</issue>
<page-range>266-283</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B9">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[COSTA]]></surname>
<given-names><![CDATA[A.S.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Whiteflies as virus vectors]]></article-title>
<person-group person-group-type="editor">
<name>
<surname><![CDATA[Maramorosch]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Viruses, Vectors and Vegetation]]></source>
<year>1969</year>
<page-range>95-119</page-range><publisher-name><![CDATA[Interscience Press]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B10">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[COSTA]]></surname>
<given-names><![CDATA[H.S.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[BROWN]]></surname>
<given-names><![CDATA[J. K.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Variation in biological characteristics and esterase patterns among populations of Bemisia tabaci, and the association of one population with silverleaf symptom induction]]></article-title>
<source><![CDATA[Entomologia Experimentalis et Aplicatta]]></source>
<year>1991</year>
<numero>61</numero>
<issue>61</issue>
<page-range>211-219</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B11">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[CZOSNEK]]></surname>
<given-names><![CDATA[H.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[GHANIM]]></surname>
<given-names><![CDATA[M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[GHANIM]]></surname>
<given-names><![CDATA[M.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The circulative pathway of Begomoviruses in the whitefly vector Bemisia tabaci - insights from studies with Tomato yellow leaf curl virus]]></article-title>
<source><![CDATA[Annals of Applied Biology]]></source>
<year>2001</year>
<numero>140</numero>
<issue>140</issue>
<page-range>215-231</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B12">
<nlm-citation citation-type="confpro">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[DUFFUS]]></surname>
<given-names><![CDATA[J.E.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Whitefly vectors: increasing threat to world agriculture]]></source>
<year>1992</year>
<conf-name><![CDATA[ Proceedings XIX International Congress of Entomology]]></conf-name>
<conf-loc>Beijing </conf-loc>
<page-range>352</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B13">
<nlm-citation citation-type="confpro">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[DUFFUS]]></surname>
<given-names><![CDATA[J.E.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[COHEN]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Whitefly-borne viruses and their vectors in the sub-tropical environment]]></source>
<year>1992</year>
<conf-name><![CDATA[ Proceedings 5th International Plants Virus Epidemiology Symposium: Viruses, Vectors and the Environment.]]></conf-name>
<conf-loc>Valenzano </conf-loc>
<page-range>7-8</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B14">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[EICHELKRAUT]]></surname>
<given-names><![CDATA[K.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[CARDONA]]></surname>
<given-names><![CDATA[C.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Biología, cría masal y aspectos ecológicos de la mosca blanca Bemisia tabaci (Gennadius) (Homoptera: Aleyrodidae), como plaga de fríjol común]]></article-title>
<source><![CDATA[Turrialba]]></source>
<year>1989</year>
<volume>39</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>51-55</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B15">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[IDRIS]]></surname>
<given-names><![CDATA[A. M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[SMITH]]></surname>
<given-names><![CDATA[S. E.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[BROWN]]></surname>
<given-names><![CDATA[J. K.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Ingestion, transmission, and persistence of Chino del tomate virus (CdTV), a New World Begomovirus, by Old and New World biotypes of the whitefly vector Bemisia tabaci]]></article-title>
<source><![CDATA[Annals of Applied Biology]]></source>
<year>2001</year>
<volume>139</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>145-154</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B16">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[MORALES]]></surname>
<given-names><![CDATA[F.J.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[ZETTLER]]></surname>
<given-names><![CDATA[F.W.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Aphid transmission characteristics of dasheen mosaic virus]]></article-title>
<source><![CDATA[Revista Colombiana de Fitopatología]]></source>
<year>1977</year>
<volume>6</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>141</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B17">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[MARKHAM]]></surname>
<given-names><![CDATA[P. G.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[BEDFORD]]></surname>
<given-names><![CDATA[I. D.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Comportamiento y modos de acción de Bemisia tabaci (Gennadius): capacidad de transmitir virosis. 4º Symposium, Las Virosis en los Cultivos Hortícolas Mediterráneos]]></article-title>
<source><![CDATA[Phytoma España]]></source>
<year>1993</year>
<numero>50</numero>
<issue>50</issue>
<page-range>47-52</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B18">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[MORALES]]></surname>
<given-names><![CDATA[F. J.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[SINGH.]]></surname>
<given-names><![CDATA[S. P.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Breeding for resistance to bean golden mosaic virus in an interracial population of Phaseolus vulgaris L]]></article-title>
<source><![CDATA[Euphytica]]></source>
<year>1993</year>
<numero>67</numero>
<issue>67</issue>
<page-range>59-63</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B19">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[MORALES]]></surname>
<given-names><![CDATA[F.J.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[NIESSEN]]></surname>
<given-names><![CDATA[A.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Comparative responses of selected Phaseolus vulgaris germplasm inoculated artificially and naturally with bean golden mosaic virus]]></article-title>
<source><![CDATA[Plant Disease]]></source>
<year>1988</year>
<volume>72</volume>
<numero>12</numero>
<issue>12</issue>
<page-range>1020-1023</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B20">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[MORALES]]></surname>
<given-names><![CDATA[F. J.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[El Mosaico Dorado y otras enfermedades del fríjol común causadas por geminivirus transmitidos por mosca blanca en la América Latina. Palmira, Valle del Cauca, Colombia]]></source>
<year>2000</year>
<page-range>169</page-range><publisher-name><![CDATA[Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT)]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B21">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[MORALES]]></surname>
<given-names><![CDATA[F. J.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Métodos de control de Begomovirus del fríjol]]></article-title>
<person-group person-group-type="editor">
<name>
<surname><![CDATA[Morales]]></surname>
<given-names><![CDATA[F. J.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[El Mosaico Dorado y otras enfermedades del fríjol común causadas por geminivirus transmitidos por mosca blanca en la América Latina]]></source>
<year>2000</year>
<page-range>133-154</page-range><page-range>169</page-range><publisher-loc><![CDATA[Palmira^eValle del Cauca Valle del Cauca]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT)]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B22">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[MORALES]]></surname>
<given-names><![CDATA[F. J.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[MUÑOZ]]></surname>
<given-names><![CDATA[C.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[CASTAÑO]]></surname>
<given-names><![CDATA[M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[VELASCO]]></surname>
<given-names><![CDATA[A. C.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Geminivirus transmitidos por mosca blanca en Colombia]]></article-title>
<source><![CDATA[Fitopatología Colombiana]]></source>
<year>2000</year>
<volume>24</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>95-98</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B23">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[MORALES]]></surname>
<given-names><![CDATA[F.J.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Conventional breeding for resistance to Bemisia tabaci-transmited geminiviruses]]></article-title>
<source><![CDATA[Crop Protection]]></source>
<year>2001</year>
<numero>20</numero>
<issue>20</issue>
<page-range>825-834</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B24">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[MUNIYAPPA]]></surname>
<given-names><![CDATA[V.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[VENKATESH]]></surname>
<given-names><![CDATA[H.M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[RAMAPPA]]></surname>
<given-names><![CDATA[H.K.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[KULKARNI]]></surname>
<given-names><![CDATA[R.S.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[ZEIDAN]]></surname>
<given-names><![CDATA[M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[TARBA]]></surname>
<given-names><![CDATA[C.Y.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[GHANIM]]></surname>
<given-names><![CDATA[M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[CZOSNEK]]></surname>
<given-names><![CDATA[H.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Tomato leaf curl virus from Bangalore (ToLCV-Ban4): sequence comparison with Indian ToLCV isolates, detection in plants and insects, and vector relationships]]></article-title>
<source><![CDATA[Archives of Virology]]></source>
<year>2000</year>
<numero>145</numero>
<issue>145</issue>
<page-range>1583-1598</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B25">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[NATESHAN]]></surname>
<given-names><![CDATA[H.M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[MUNIYAPPA]]></surname>
<given-names><![CDATA[V.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[SWANSON]]></surname>
<given-names><![CDATA[M.M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[HARRISON]]></surname>
<given-names><![CDATA[BD.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Host range, vector relations and serological relationships of cotton leaf curl virus from southern India]]></article-title>
<source><![CDATA[Annals of Applied Biology]]></source>
<year>1996</year>
<numero>1289</numero>
<issue>1289</issue>
<page-range>233-244</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B26">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[OLIVEIRA]]></surname>
<given-names><![CDATA[M. R.V.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[HENNEBERRY]]></surname>
<given-names><![CDATA[T. J.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[ANDERSON]]></surname>
<given-names><![CDATA[P.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[History, current status, and collaborative research projects]]></article-title>
<source><![CDATA[Crop Protection]]></source>
<year>2001</year>
<numero>20</numero>
<issue>20</issue>
<page-range>709-723</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B27">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[PERRING]]></surname>
<given-names><![CDATA[T. M.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The Bemisia tabaci species complex]]></article-title>
<source><![CDATA[Crop Protection]]></source>
<year>2001</year>
<numero>20</numero>
<issue>20</issue>
<page-range>725-737</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B28">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[POLSTON]]></surname>
<given-names><![CDATA[J.E.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[AL-MUSA]]></surname>
<given-names><![CDATA[A.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[PERRING]]></surname>
<given-names><![CDATA[T.M.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[DODDS]]></surname>
<given-names><![CDATA[J.A.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Association of the nucleic acid of squash leaf curl geminivirus with the whitefly Bemisia tabaci.]]></article-title>
<source><![CDATA[Phytopathology]]></source>
<year>1990</year>
<numero>80</numero>
<issue>80</issue>
<page-range>850-856</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B29">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[RODRIGUEZ]]></surname>
<given-names><![CDATA[I.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[MORALES]]></surname>
<given-names><![CDATA[H.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[BUENO]]></surname>
<given-names><![CDATA[J.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[CARDONA]]></surname>
<given-names><![CDATA[C.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[El biotipo B de Bemisia tabaci (Homoptera: Aleyrodidae) adquiere mayor importancia en el Valle del Cauca]]></article-title>
<source><![CDATA[Revista Colombiana de Entomología]]></source>
<year>2005</year>
<volume>31</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>21-28</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B30">
<nlm-citation citation-type="">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[ROMBERG]]></surname>
<given-names><![CDATA[M.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Caracterización biológica de dos biotipos de la mosca blanca Bemisia tabaci (Genn) (Homoptera: Aleyrodidae)]]></source>
<year>1998</year>
<page-range>80</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B31">
<nlm-citation citation-type="book">
<collab>Statistical Analytical Institute</collab>
<source><![CDATA[Version 8.2.]]></source>
<year>2002</year>
<publisher-name><![CDATA[SAS Institute Inc]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B32">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[SINGH]]></surname>
<given-names><![CDATA[S.P.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Patterns of variation in cultivated common bean (Phaseolus vulgaris, Fabaceae)]]></article-title>
<source><![CDATA[Economic Botany]]></source>
<year>1989</year>
<numero>43</numero>
<issue>43</issue>
<page-range>39-57</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B33">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[SINGH]]></surname>
<given-names><![CDATA[S.P.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[MORALES]]></surname>
<given-names><![CDATA[F.J.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[MIKLAS]]></surname>
<given-names><![CDATA[P.N.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[TERAN]]></surname>
<given-names><![CDATA[H.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Selection for bean golden mosaic resistance in intra and interracial bean populations]]></article-title>
<source><![CDATA[Crop Science]]></source>
<year>2000</year>
<numero>40</numero>
<issue>40</issue>
<page-range>1565-1572</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B34">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[STEEL]]></surname>
<given-names><![CDATA[R.G.D.]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[TORRIE]]></surname>
<given-names><![CDATA[J.H.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Bioestadística: Principios y Procedimientos]]></source>
<year>1992</year>
<page-range>622</page-range><publisher-loc><![CDATA[México ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[McGraw-Hill]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
</ref-list>
</back>
</article>
