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<journal-title><![CDATA[Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias]]></journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[Facultad de Ciencias Agrarias, Universidad de Antioquia]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[¿Por qué no ovulan los primeros folículos dominantes de las vacas cebú posparto en el trópico colombiano?]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Why first dominant follicles of postpartum zebu cattle do not ovulate in colombian tropic?]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Grupo de Fisiología y Biotecnología de la Reproducción  ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The efficiency of meat bovine production is strongly related to the reproductive capacity. The pospartum ovarian ciclicity is mainly influenced by suckling, energy balance (body condition) and cow-calf interaction. Restoring the energy homeostasis and reducing the suckling stimulus, could result in ovulation for some animals. However, cows that do not respond to these practices, are probably showing the individuality of follicular dynamics.Circulating growth factors and other hormones acting both at central and local level, can be determining this individuality. The adipose hormone, leptin, is an important link between body condition, energy balance and reproductive status of the animal. Similary, IGF factors are well known to excerce important effects on reproductive system at the hypothalamus-hypophisis-gonadal axis. The interaction between those two systems, leptin and IGF-I, is the focus of this review in order to contribute to the understanding of the nutrition-reproduction interface as main cause of the anovulation postpartum in zebu cattle.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p><b>&iquest;Por qu&eacute; no ovulan los primeros fol&iacute;culos dominantes de las vacas ceb&uacute; posparto en el tr&oacute;pico colombiano?</b></p>     <p>&nbsp;</p>     <P    >Erika L Monta&ntilde;o <Sup><I>1;, 2</I></Sup><I>, </I> MV; Zulma T Ruiz Cort&eacute;s <Sup><I>1</I></Sup><I>, </I>MV, MSc, PhD <I><sup>1</sup></I>Grupo de Fisiolog&iacute;a y Biotecnolog&iacute;a de la Reproducci&oacute;n, <sup>2</sup> Programa Maestr&iacute;a en Ciencias Animales,Facultad de Ciencias Agrarias,   Universidad de Antioquia, AA 1226, Medell&iacute;n, Colombia</P >     <P    >  <a href="mailto:elmomv@agronica.udea.edu.co">elmomv@agronica.udea.edu.co</a></P >     <P    >(Recibido: 12 junio, 2004; aceptado: 16 mayo, 2005)    <BR></P ><I>Resumen </I>    <P    ><I>La eficiencia en la producci&oacute;n bovina depende de la salud reproductiva del hato. La reactivaci&oacute;n ov&aacute;rica posparto est&aacute; determinada principalmente por el amamantamiento, el balance energ&eacute;tico reflejado en condici&oacute;n corporal y la interacci&oacute;n vaca-ternero. Mejorar las condiciones de manejo, ya sea restableciendo el balance energ&eacute;tico y reduciendo el est&iacute;mulo de amamantamiento, puede resultar una primera ovulaci&oacute;n posparto para algunas vacas. Sin embargo, algunos animales no responden a estas condiciones, lo que probablemente indica aspectos individuales de la din&aacute;mica folicular.  Los factores de crecimiento y otras hormonas circulantes act&uacute;an en diferentes niveles, local y central, lo cual puede ser determinante en la individualidad de la respuesta. La hormona adiposa, leptina, es un importante presentador de la condici&oacute;n corporal, del estado energ&eacute;tico y reproductivo del animal. De la misma manera, el factor de crecimiento insulinoide, IGF, es bien conocido por su papel en el sistema reproductivo a nivel del eje hipot&aacute;lamo-hip&oacute;fisis-g&oacute;nadas. La interacci&oacute;n entre estos dos sistemas, leptina e IGF,  es el objetivo de esta revisi&oacute;n para contribuir al entendimiento  de la interfase nutrici&oacute;n-reproducci&oacute;n como causa principal de la anovulaci&oacute;n posparto en ganado ceb&uacute;. </I></P >    <P    >Palabras clave: <I>anovulaci&oacute;n, factor de crecimiento insulinoide tipo I, leptina. </I></P >     <P    >&nbsp;</P > <b>Introducci&oacute;n</b>      <P    >En condiciones tropicales, las vacas ceb&uacute;, muestran     un patr&oacute;n de comportamiento reproductivo     caracterizado por anestro prolongado, debido a un     retorno tard&iacute;o a la ciclicidad, lo cual trae como     consecuencia un incremento en el n&uacute;mero de d&iacute;as     abiertos y disminuci&oacute;n de la eficiencia productiva     representada en cr&iacute;as por a&ntilde;o (21). </P >       ]]></body>
<body><![CDATA[<P    >El ciclo estral se reanuda entre 46 a 168 d&iacute;as     posparto (7) y la falla en la ovulaci&oacute;n del fol&iacute;culo es lo     que aumenta el per&iacute;odo de anestro posparto. La     actividad ov&aacute;rica de estas vacas presenta varios tipos de desarrollo folicular con ciclos cortos (10 &plusmn; 2 d&iacute;as) o     largos (50 &plusmn; 4 d&iacute;as) (40).</P >       <P    >    Los factores determinantes del anestro posparto     (pp) son: el amamantamiento, la relaci&oacute;n vaca-ternero     y la condici&oacute;n corporal, esta &uacute;ltima determinada por el    <br>     consumo, calidad y disponibilidad de alimento (20).     La alimentaci&oacute;n de vacas en pp es un factor     limitante, y las pr&aacute;cticas de suplementaci&oacute;n son     reducidas o no se utilizan. El consumo de materia seca     por estos animales, no supera el 2.5% del peso vivo.</P >       <P    >Adicionalmente, la vaca en el periodo de transici&oacute;n, periodo comprendido entre cuatro semanas preparto y ocho semanas posparto, presenta una disminuci&oacute;n de la ingesta por factores f&iacute;sicos (por ejemplo: el feto con la placenta ocupan espacio en la cavidad abdominal reduciendo la capacidad ruminal) y neuroendocrinos (basado en la interacci&oacute;n de neurop&eacute;ptidos con la condici&oacute;n corporal) (7, 26, 32). </P >    <P    >La condici&oacute;n corporal se define como una medida subjetiva de la grasa depositada a nivel subcut&aacute;neo (9). El tejido adiposo es considerado un &oacute;rgano endocrino, ya que dentro de sus productos de secreci&oacute;n se hallan gran variedad de hormonas, entre ellas la leptina, considerada una indicadora del estado metab&oacute;lico y energ&eacute;tico del animal (11, 30). </P >    <P    >La leptina lleva la informaci&oacute;n al sistema nervioso central (SNC), espec&iacute;ficamente al hipot&aacute;lamo, donde interact&uacute;a con diferentes neurop&eacute;ptidos (neurop&eacute;ptido Y-NPY-, orexinas, galanina, entre otros) y desencadena v&iacute;as de se&ntilde;alizaci&oacute;n que provocan respuestas fisiol&oacute;gicas complejas (anorexia, orexia), que pueden verse relacionadas con niveles circulantes del factor de crecimiento insulinoide tipo I (IGF-I) (24, 30). Ambos, leptina e IGF-I, ejercen efectos en las g&oacute;nadas, en la actividad esteroidog&eacute;nica y en el desarrollo folicular (14, 42). </P >       <P    >Esta revisi&oacute;n bibliogr&aacute;fica, pretende recopilar las posibles causas de la anovulaci&oacute;n en el periodo posparto y tratar de relacionar las caracter&iacute;sticas fisiol&oacute;gicas de las vacas en dicho periodo con los fen&oacute;menos moleculares que se describen a nivel ov&aacute;rico y que se constituyen en una serie de condiciones que repercuten en est&iacute;mulos y/o bloqueos de la din&aacute;mica folicular.  Se muestran as&iacute;, posibles &aacute;reas donde ser&iacute;a necesario profundizar investigaciones para contribuir con el entendimiento del periodo posparto de las vacas de carne en el tr&oacute;pico colombiano.</P >       <P    >&nbsp;</P >   <b>Condiciones fisiol&oacute;gicas de la ovulaci&oacute;n en las vacas </b>       <P    >La actividad reproductiva se determina y clasifica a partir del conocimiento de la din&aacute;mica de la funci&oacute;n ov&aacute;rica, de la concentraci&oacute;n de hormonas reproductivas circulantes, de la fisiolog&iacute;a molecular y celular, y de las interacciones fisiol&oacute;gicas que son el fundamento de las condiciones ovulatorias y anovulatorias (54). </P >       <P    >El crecimiento folicular en el ovario se realiza en forma de ondas, conformadas por cohortes de fol&iacute;culos que son seleccionados para crecer a partir de las reservas en reposo, estos inician un crecimiento r&aacute;pido bajo el est&iacute;mulo de la hormona fol&iacute;culo estimulante (FSH), evidenci&aacute;ndose en ellos un incremento del &aacute;cido ribonucleico mensajero (RNAm) para la enzima aromatasa P<Sub>450</Sub>, responsable de la biotransformaci&oacute;n de andr&oacute;genos en estradiol (E<Sub>2</Sub>) (15, 22, 54). </P >    ]]></body>
<body><![CDATA[<P    >Entre los fol&iacute;culos reclutados en cada onda, se establece una competencia por la dominancia, en la cual un solo fol&iacute;culo de la cohorte adquiere el desarrollo funcional y estructural que le permitir&aacute; seguir creciendo en un ambiente de bajas concentraciones de gonadotropinas, al tiempo en que sus compa&ntilde;eros de cohorte sufren atresia (22, 54). </P >    <P    >Para el establecimiento de la dominancia durante el desarrollo folicular, se requiere que ocurra divergencia o desviaci&oacute;n, que corresponde al tiempo durante el cual el fol&iacute;culo dominante y el subordinado m&aacute;s desarrollado crecen a una tasa diferente, antes de que el subordinado manifieste atresia (22). </P >    <P    >Dentro de los aspectos funcionales y estructurales que caracterizan las c&eacute;lulas del fol&iacute;culo dominante, est&aacute;n los altos niveles de RNAm para receptores de gonadotropinas, principalmente receptor de hormona luteinizante (LHR), prote&iacute;nas y enzimas involucradas en la s&iacute;ntesis de andr&oacute;genos y progest&aacute;genos: 17&alpha;hidroxilasa (17&alpha;OH), aromatasa P<Sub>450 </Sub>(P<Sub>450</Sub>), 3&beta; hidroxiesteroide deshidrogenasa (3&beta;HSD) y prote&iacute;na regulatoria esteroidog&eacute;nica aguda (StAR). El aumento de LHR en las c&eacute;lulas de la granulosa del fol&iacute;culo dominante, posiblemente incrementa la actividad aromatasa en respuesta a gonadotropinas, o provoca un cambio de dependencia de FSH a hormona luteinizante (LH). Esto aumenta o mantiene la capacidad del fol&iacute;culo dominante para producir m&aacute;s estradiol que los fol&iacute;culos subordinados (15). </P >    <P    >El fol&iacute;culo preovulatorio crece, gana gran tama&ntilde;o y produce estradiol suficiente para inducir el comportamiento del estro y el pico preovulatorio de LH, lo cual es seguido por la ovulaci&oacute;n entre 18-32 horas. El tama&ntilde;o de un fol&iacute;culo ovulatorio es altamente variable entre las vacas (22). </P >    <P    >El E<Sub>2 </Sub>y la inhibina producidos por el fol&iacute;culo dominante, son responsables del est&iacute;mulo atr&eacute;sico en los fol&iacute;culos subordinados; promueven la expresi&oacute;n de LHR en las c&eacute;lulas de la granulosa del fol&iacute;culo dominante y ejerce un est&iacute;mulo inhibitorio sobre la liberaci&oacute;n de FSH de la adenohip&oacute;fisis, haciendo que el crecimiento del fol&iacute;culo dominante sea dependiente de LH hasta alcanzar el tama&ntilde;o preovulatorio (15, 22). </P >    <P    >En el mecanismo molecular de la ovulaci&oacute;n, esta involucrado el pico preovulatorio de LH que provoca cambios en la estructura del fol&iacute;culo, en la actividad proliferativa y en la esteroidog&eacute;nesis de las c&eacute;lulas de la granulosa. Estos cambios ocurren entre el pico de LH y la ovulaci&oacute;n y se asocian con aumento en la cantidad de uniones GAP, expresi&oacute;n y s&iacute;ntesis de receptores para factores de crecimiento y abundante actividad mit&oacute;tica en las c&eacute;lulas de la granulosa (52). </P >    <P    >Despu&eacute;s de la ovulaci&oacute;n, se forma el cuerpo l&uacute;teo del remanente de las c&eacute;lulas foliculares las cuales comienzan a sintetizar progesterona (P<Sub>4</Sub>), con el est&iacute;mulo primario del pico preovulatorio de LH (31). Tan pronto como el cuerpo l&uacute;teo crece, ocurre un incremento en las concentraciones circulantes de P<Sub>4</Sub>. La concentraci&oacute;n de P<Sub>4</Sub> permanece elevada durante la permanencia del cuerpo l&uacute;teo, &eacute;sta a su vez, bloquea los pulsos de LH y la ovulaci&oacute;n de un nuevo fol&iacute;culo dominante que es generado a partir de una segunda onda folicular, que se da en la mitad del ciclo (22, 51, 52). </P >    <P    >El primer fol&iacute;culo dominante puede ser no funcional, y una segunda onda folicular comienza cerca de la mitad del ciclo. El fol&iacute;culo dominante de esta segunda onda puede continuar hasta la ovulaci&oacute;n en el tiempo de la regresi&oacute;n del cuerpo l&uacute;teo. Algunas vacas tienen ondas de crecimiento folicular donde el segundo fol&iacute;culo dominante sufre atresia, y se inicia una tercera onda folicular (22). </P >       <P    >&nbsp;</P >   <b>Recuperaci&oacute;n ov&aacute;rica posparto en vacas ceb&uacute; </b>       <P    >La especie <I>Bos indicus</I> manifiesta un anestro posparto m&aacute;s prolongado que la <I>Bos taurus, </I>alcanzando valores hasta de 150-210 d&iacute;as en condiciones tropicales (8). Sin embargo, Henao <I>et al </I>(21) reportan intervalos entre el parto y el primer estro de tan s&oacute;lo 20 a 30 d&iacute;as en vacas Gyr y cruzadas, lo cual hace pensar que las razas cebu&iacute;nas tienen capacidad para iniciar tempranamente la actividad reproductiva como lo hacen las vacas de las razas taurinas (23). </P >       ]]></body>
<body><![CDATA[<P    >Seg&uacute;n Short (41), la duraci&oacute;n del anestro pp est&aacute; determinada por factores como el amamantamiento, la nutrici&oacute;n y la interacci&oacute;n vaca- ternero (frecuencia de succi&oacute;n por d&iacute;a y edad al destete) (41). </P >    <P    >Las vacas en el pp presentan una din&aacute;mica ov&aacute;rica caracterizada por ondas foliculares (cohortes de fol&iacute;culos que crecen), con o sin formaci&oacute;n de fol&iacute;culo dominante desde el d&iacute;a 30 posparto (pp) que no alcanza a ovular. El n&uacute;mero de ondas foliculares es variable, lo que indica que las vacas ceb&uacute; en anestro, incluso prolongado, contin&uacute;an desarrollando ondas durante el tiempo que dure el anestro (21). Se conoce que el crecimiento de la cohorte folicular es dependiente del efecto que ejerce la FSH en el ovario. Luego de la desviaci&oacute;n, al establecerse la dominancia folicular, el crecimiento del fol&iacute;culo hasta el tama&ntilde;o preovulatorio es dependiente de LH, por lo tanto, el tama&ntilde;o alcanzado por esta estructura en el anestro pp se atribuye a una alteraci&oacute;n en la liberaci&oacute;n de LH (50). </P >    <P    >Durante unos pocos meses despu&eacute;s del parto, muchas de esas vacas presentan largos per&iacute;odos con fol&iacute;culos dominantes que regresan, transcurriendo un tiempo prolongado hasta la nueva aparici&oacute;n de otro fol&iacute;culo dominante. Esto se ha medido como intervalo de tiempo o interdominancia (38). </P >       <P    >&nbsp;</P >   <b>Factores que determinan el anestro posparto en vacas ceb&uacute; </b>       <P    >Seg&uacute;n Williams <I>et al </I>(49, 50) la caracter&iacute;stica endocrina m&aacute;s notable asociada con vacas en amamantamiento y baja condici&oacute;n corporal, es la alteraci&oacute;n de la liberaci&oacute;n de GnRH del hipot&aacute;lamo, o la existencia de una respuesta inadecuada de la hip&oacute;fisis al est&iacute;mulo de la GnRH (49, 50). </P >    <P    >El d&eacute;ficit endocrino primario en el restablecimiento de la actividad c&iacute;clica ov&aacute;rica est&aacute; dado por fallas en el patr&oacute;n de secreci&oacute;n de LH que es necesaria para el desarrollo y maduraci&oacute;n final de un fol&iacute;culo preovulatorio activo (18, 23, 36). </P >    <P    >Una serie de hormonas y neurop&eacute;ptidos relacionados con el amamantamiento, la relaci&oacute;n vacaternero y el impacto nutrici&oacute;n-condici&oacute;n corporal, se han propuesto como posibles mediadores de dichos eventos en el bovino. </P >    <P    ><I>Efecto del amamantamiento en la din&aacute;mica folicular </I></P >    <P    >En el ganado de carne que amamanta, se ha encontrado que un 10% ovula en sus primeras ondas foliculares. Los fol&iacute;culos de la primera onda, generalmente no alcanzan el tama&ntilde;o ovulatorio (6, 41). </P >    <P    >La prolactina se libera en grandes cantidades en respuesta a la lactancia, y se propone como el mayor factor antigonadotr&oacute;pico, que inhibe la secreci&oacute;n de GnRH y subsecuentemente la de LH (17, 21, 50). </P >    ]]></body>
<body><![CDATA[<P    >Otro factor modulador del eje hipot&aacute;lamo-hip&oacute;fisis en el puerperio, es el aumento de la sensibilidad a la retroalimentaci&oacute;n negativa del estradiol en el pulso generador de GnRH, lo cual se ve potencializado por el amamantamiento. Esto se ha confirmado por estudios realizados en vacas pp, donde el efecto supresor del amamantamiento en la liberaci&oacute;n puls&aacute;til de LH, es modulado tambi&eacute;n por los estr&oacute;genos ov&aacute;ricos. El amamantamiento, tiene un efecto inhibitorio en el pulso generador de GnRH, imputable a la retroalimentaci&oacute;n negativa del estradiol (12, 50). </P >    <P    ><I>Relaci&oacute;n Vaca-ternero </I></P >    <P    >El aparato vomeronasal es importante en la regulaci&oacute;n del anestro pp en las vacas de carne, debido no s&oacute;lo al est&iacute;mulo visual que ejerce el ternero en la vaca, sino tambi&eacute;n al acicalamiento, olfateo y n&uacute;mero de interacciones por d&iacute;a, todos estos est&iacute;mulos actuando como fuertes mediadores neuroendocrinos para liberaci&oacute;n de opioides end&oacute;genos en el tejido neural en la madre. Se bloquea as&iacute; el pulso generador de GnRH y la vaca permanece en estado anovulatorio. La reducci&oacute;n en el nivel de opioides puede darse al disminuir los efectos del amamantamiento, o al apartar la cr&iacute;a de la madre. Williams citado por Wiltbank, afirma que la relaci&oacute;n vaca - ternero y frecuencia de amamantamiento est&aacute;n involucrados en una posible v&iacute;a inhibitoria de GnRH (49, 50, 51). </P >    <P    >La condici&oacute;n anovulatoria se puede resolver con la implementaci&oacute;n de la interrupci&oacute;n temporal del amamantamiento (ITA). </P >    <P    >El ITA consiste en retirar el ternero de la presencia de la madre (alejarlo a una distancia prudencial, de tal forma que no pueden verse el uno al otro), por un tiempo no inferior a tres d&iacute;as, o intervalos de tiempo (horas al d&iacute;a). </P >       <P    >La finalidad de esta pr&aacute;ctica de manejo es la reactivaci&oacute;n el pulso generador de GnRH, al suspender los efectos bloqueadores de la prolactina, liberada por el est&iacute;mulo de la succi&oacute;n, e inhibir la liberaci&oacute;n de p&eacute;ptidos end&oacute;genos (17, 45, 49). </P >    <P    ><I>Impacto de la nutrici&oacute;n y la condici&oacute;n corporal en las vacas posparto. </I></P >    <P    ><I>Nutrici&oacute;n y balance energ&eacute;tico en vacas posparto</I>. La mayor&iacute;a de los problemas de salud y reproductivos en vacas de leche de alta selecci&oacute;n, ocurren en la lactancia temprana y han sido relacionados con el balance energ&eacute;tico negativo (BEN) (13). Este tambi&eacute;n puede causar alteraciones en vacas de carne que son subalimentadas en el periparto (6). </P >    <P    >En el pp temprano, la malnutrici&oacute;n puede disparar un estado similar al prepuberal en bovinos, en el cual, peque&ntilde;as cantidades de estradiol son inhibitorias para la secreci&oacute;n hipotal&aacute;mica de GnRH y LH (48, 51). </P >    <P    >El Ganado de carne pp tambi&eacute;n puede presentar BEN, provocado por un inadecuado consumo de energ&iacute;a (alimento) que no suple la demanda de lactancia. Esta restricci&oacute;n puede incrementar el per&iacute;odo para que se d&eacute; la primera ovulaci&oacute;n (34). Existe evidencia de que una baja nutrici&oacute;n, incrementa la sensibilidad del hipot&aacute;lamo al efecto de retroalimentaci&oacute;n negativa del estradiol (36, 41). </P >    ]]></body>
<body><![CDATA[<P    >El tiempo para la primera ovulaci&oacute;n posparto es variable entre los individuos, y esta relacionado con el tiempo que tardan en superar el BEN. El retorno a un balance energ&eacute;tico positivo lleva a un incremento en los pulsos de secreci&oacute;n de LH, generando el m&aacute;ximo tama&ntilde;o del fol&iacute;culo dominante y la producci&oacute;n de estradiol folicular (2, 35). </P >    <P    ><I>Condici&oacute;n corporal. </I>Uno de los par&aacute;metros m&aacute;s utilizado para estimar el estado nutricional en los bovinos es la condici&oacute;n corporal (CC), la cual consta de una evaluaci&oacute;n subjetiva de la grasa subcut&aacute;nea que el animal posee (8). </P >    <P    >En el momento del parto, la condici&oacute;n corporal es de suma importancia, ya que determina el per&iacute;odo que permanecer&aacute; el animal en anestro, ella afecta de forma significativa el intervalo entre partos (8). </P >       <P    >&nbsp;</P >   <b>Importancia del tejido adiposo en el control de la reproducci&oacute;n </b>       <P    >El tejido adiposo se considera un &oacute;rgano endocrino, entre sus principales productos de secreci&oacute;n, se destaca la hormona leptina (47). La leptina producto del gen ob, es una prote&iacute;na de 16 kDa, secretada primariamente por los adipocitos. Se propone que participa en la reproducci&oacute;n, probablemente modulando la acci&oacute;n del eje hipot&aacute;lamo-hip&oacute;fisis-g&oacute;nadas (4). </P >    <P    >Como hormona de la saciedad, la concentraci&oacute;n de leptina puede cambiar en respuesta a la toma cal&oacute;rica y suprimir el apetito, incrementar la tasa de metabolismo, regular la ganancia de peso y deposici&oacute;n grasa (3). En el hipot&aacute;lamo, juega un papel importante en la regulaci&oacute;n de la toma de alimento y home&oacute;stasis energ&eacute;tica (30). Se ha propuesto que el hipot&aacute;lamo ventromedial contiene el centro de la saciedad, y el hipot&aacute;lamo lateral el centro del hambre, lo que se encuentra muy relacionado con la presencia de receptores de leptina (27, 28). </P >    <P    >En rumiantes, se reporta que el gen que la codifica tiene funcionalidad relevante y puede contribuir con diferentes eventos reproductivos, incluyendo la pubertad (29), y como v&iacute;nculo se&ntilde;alizador del estado nutricional y reproductivo (4, 7, 9). </P >    <P    >La expresi&oacute;n del gen leptina (s&iacute;ntesis) y la leptina circulante, se incrementan marcadamente durante la maduraci&oacute;n sexual en novillas, y var&iacute;a de acuerdo con la estaci&oacute;n del a&ntilde;o en vacas adultas, relacionado con cambios en el tejido graso (16, 48). </P >       <P    >&nbsp;</P >   <b>Efectos centrales de la leptina </b>       <P    >La leptina es una se&ntilde;al metab&oacute;lica que controla el incremento en la secreci&oacute;n de GnRH en la pubertad. En la mayor&iacute;a de las especies ejerce un papel permisivo que incrementa la secreci&oacute;n de GnRH, despu&eacute;s que el pulso generador ha sido sensibilizado al balance energ&eacute;tico por otras se&ntilde;ales metab&oacute;licas o de desarrollo (7, 42). </P >    ]]></body>
<body><![CDATA[<P    >Se ha propuesto al NPY como el mediador primario de la acci&oacute;n de la leptina en el hipot&aacute;lamo regulando la LH y la somatotropina, lo cual es dependiente de la especie y del estado fisiol&oacute;gico. En condiciones de estr&eacute;s nutricional, la expresi&oacute;n de RNAm para leptina es suprimida y el NPY se eleva a nivel central. Todo esto resulta en la disminuci&oacute;n de la secreci&oacute;n de LH, por la interacci&oacute;n entre los receptores de los diferentes n&uacute;cleos neuronales hipotal&aacute;micos (3, 28). </P >    <P    >La leptina regula la disponibilidad de glucosa en el hipot&aacute;lamo, a trav&eacute;s de su acci&oacute;n en las mol&eacute;culas trasportadoras, o por mecanismos perif&eacute;ricos como la reducci&oacute;n en la liberaci&oacute;n de insulina e incremento en la sensibilidad insul&iacute;nica (24, 40). </P >       <P    >&nbsp;</P >   <b>Efectos ov&aacute;ricos de la leptina </b>       <P    >Los efectos locales de la leptina se han demostrado en las g&oacute;nadas, donde la hiperleptinemia suprime la esteroidog&eacute;nesis y potencialmente afecta la maduraci&oacute;n de gametos (42). </P >    <P    >Recientemente se propuso que las c&eacute;lulas de la granulosa y de la teca, en diferentes especies, pueden sintetizar y secretar leptina, de acuerdo a la fase de desarrollo folicular. La concentraci&oacute;n de leptina en el fluido folicular se relaciona directamente con los niveles s&eacute;ricos. Los mecanismos por los cuales la concentraci&oacute;n de la hormona aumenta durante el crecimiento folicular permanecen inciertos (5, 42). </P >    <P    >En bovinos, esta hormona suprime la producci&oacute;n de E<Sub>2</Sub> y P<Sub>4 </Sub>en las c&eacute;lulas de la granulosa de peque&ntilde;os y grandes fol&iacute;culos estimulados con FSH e insulina. Adem&aacute;s, el E<Sub>2</Sub> pero no la P<Sub>4</Sub> , producidos por las c&eacute;lulas de la granulosa de fol&iacute;culos peque&ntilde;os estimulados con FSH, es inhibido por dosis de leptina de 8ng/ml para primates no humanos, 15ng/ml para humanos y 8ng/ ml para ovejas (5). </P >    <P    >Ruiz-Cort&eacute;s <I>et al </I>(39), reportan que la expresi&oacute;n <I>in vitro</I> del receptor de leptina y de su RNA mensajero (RNAm), se incrementa en asocio con la luteinizaci&oacute;n (diferenciaci&oacute;n morfol&oacute;gica y durante la acumulaci&oacute;n logar&iacute;tmica de progesterona) y baja coincidencialmente con la regresi&oacute;n luteal. En dicho modelo se sugiere un efecto positivo de la leptina durante la funci&oacute;n luteal (39). Adicionalmente, se conoce que esta hormona induce angiog&eacute;nesis lo cual relaciona positivamente la luteinizaci&oacute;n y la expresi&oacute;n del receptor (39). </P >    <P    >Otros estudios, mostraron un efecto bif&aacute;sico de la leptina en el ovario, donde concentraciones fisiol&oacute;gicas (10ng/ml), estimularon la s&iacute;ntesis de P<Sub>4</Sub> en las c&eacute;lulas de la granulosa en cerdas, mientras que una dosis alta (1000ng/ml) gener&oacute; un efecto inhibitorio esteroidog&eacute;nico, sin haber afectado la viabilidad de las c&eacute;lulas (37). </P >    <P    >En el fol&iacute;culo ov&aacute;rico, la leptina en concentraciones fisiol&oacute;gicas, estimula actividad aromatasa por la enzima citocromo P<Sub>450 </Sub>, pero altas concentraciones de leptina en el fol&iacute;culo ov&aacute;rico y en el fluido folicular, pueden llegar a bloquear la esteroidog&eacute;nesis, y relacionarse con bajas concentraciones de ox&iacute;geno intrafolicular, impidiendo al oocito desarrollar competencia y/o clivaje temprano en el embri&oacute;n (5, 37).</P >       <P    >&nbsp;</P >   <b>El sistema de factores de crecimiento insulinoide: IGF </b>       ]]></body>
<body><![CDATA[<P    >Es un complejo proteico sintetizado principalmente en el h&iacute;gado, conformado por dos ligandos IGF-I e IGFII, sus respectivos receptores Tipo I y Tipo II y seis tipos de prote&iacute;nas transportadoras, las cuales son responsables de la bioactividad del IGF-I (26). </P >    <P    >Aparte del h&iacute;gado, IGF se sintetiza en el tejido adiposo, donde tambi&eacute;n tiene receptores. La acci&oacute;n y estructura de IGF son similares a la insulina en el tejido adiposo (lipog&eacute;nesis) y muscular. El ligando IGF-I act&uacute;a de forma asociada a la hormona del crecimiento (GH), lo que no ocurre con IGF II (26). </P >    <P    >En el posparto en el ganado, IGF-I muestra cambios tanto en vacas de carne como en vacas de leche. La magnitud de los cambios en las concentraciones circulantes de IGF-I esta influenciada por la condici&oacute;n corporal, consumo de alimento y balance energ&eacute;tico. A nivel s&eacute;rico, la mayor parte del IGF permanece unido a prote&iacute;nas transportadoras, las cuales prolongan su vida media, y su bioactividad esta dada cuando se presenta en forma libre (26, 44). </P >    <P    >Las concentraciones de IGF-I se ven aumentadas entre las semanas 2-7 pp, lo que esta asociado con un incremento en la toma de alimento y una mejora del balance energ&eacute;tico (44). </P >    <P    >Existe una variaci&oacute;n en las concentraciones s&eacute;ricas de IGF-I con respecto a la raza. Las vacas Brahman presentan altos niveles plasm&aacute;ticos y vacas Angus y Charolais, muestran bajos niveles. Vacas de leche, en el per&iacute;odo pp, tienen niveles m&aacute;s bajos de IGF-I que vacas de carne. Para los cruces se referencian concentraciones medias (44). </P >       <P    >Es posible afirmar que los cambios s&eacute;ricos de IGFI y leptina en pp temprano, pueden ayudar a predecir tanto el estado nutricional como reproductivo de las vacas. </P >    <P    >El IGF-I tiene efectos directos en el hipot&aacute;lamo, hip&oacute;fisis y ovario, pudiendo ser potencial regulador endocrino del retorno de la ciclicidad en las vacas posparto (3). En el hipot&aacute;lamo, IGF-I modula la respuesta de LH a GnRH durante la fase estral en rumiantes, lo cual se demostr&oacute; al observar su interacci&oacute;n con E<Sub>2</Sub>. Durante la fase estral, se observ&oacute; <I>in vivo</I> un efecto aditivo en la liberaci&oacute;n de GnRH cuando IGF-I y E<Sub>2</Sub> fueron administrados en bovinos. Al elevarse IGF-I durante la fase estral puede contribuir al aumento de la secreci&oacute;n de LH preovulatoria a nivel hipofisiario (20). </P >    <P    >En el ovario, el IGF-I estimula la proliferaci&oacute;n de c&eacute;lulas de la granulosa, promueve la esteroidog&eacute;nesis, la fol&iacute;culog&eacute;nesis, la ovulaci&oacute;n, la fertilizaci&oacute;n, la implantaci&oacute;n y el desarrollo embrionario. El receptor tipo I est&aacute; en estas c&eacute;lulas en fol&iacute;culos saludables o atr&eacute;sicos, ya sea de estados primarios o preovulatorios (14, 43). </P >    <P    >El IGF-I influencia la funci&oacute;n reproductiva promoviendo la s&iacute;ntesis de receptores de FSH y de LH seguido por la esteroidog&eacute;nesis y la producci&oacute;n de inhibina en las c&eacute;lulas foliculares. En la v&iacute;a esteroidog&eacute;nica, el IGF-I estimula el sistema aromatasa, e incrementa la sensibilidad de las c&eacute;lulas foliculares a FSH y LH (43, 53). </P >    <P    >El IGF-I puede mediar el efecto estimulador de FSH sobre la proliferaci&oacute;n de las c&eacute;lulas de la granulosa, produciendo un aumento gradual del crecimiento folicular hasta la formaci&oacute;n del antro (23). </P >    ]]></body>
<body><![CDATA[<P    >Las c&eacute;lulas de la granulosa de fol&iacute;culos no atr&eacute;sicos, producen IGF-I que act&uacute;a paracrinamente sobre las c&eacute;lulas de la teca de fol&iacute;culos antrales no atr&eacute;sicos, para estimular, en asocio con la LH, la s&iacute;ntesis de andr&oacute;geno. Esto parece ser importante en el potencial estrog&eacute;nico y en la diferenciaci&oacute;n de las c&eacute;lulas de la granulosa del fol&iacute;culo dominante seleccionado para ovular (1, 23, 33). </P >    <P    >La expresi&oacute;n espacial dentro del fol&iacute;culo de las prote&iacute;nas transportadoras (IGFBPs) de IGF, es especie espec&iacute;fica. Por lo general, est&aacute;n en la matriz extracelular y en la membrana celular. Se ha observado que el aumento en la concentraci&oacute;n de estas prote&iacute;nas en los fol&iacute;culos bovinos, aten&uacute;a la acci&oacute;n de los IGFs, y una baja en la producci&oacute;n de IGFBPs foliculares incrementa la actividad biol&oacute;gica de los IGFs en respuesta del fol&iacute;culo a las gonadotropinas. La liberaci&oacute;n de los IGFs de su uni&oacute;n con IGFBPs est&aacute; controlada por la acci&oacute;n de proteasas espec&iacute;ficas de IGFBPs que han sido detectadas en fluido folicular de ovejas (2, 20, 23). </P >    <P    >En s&iacute;ntesis, IGF-I y leptina potencializan la acci&oacute;n de las gonadotropinas en la fase folicular (principalmente FSH) para la producci&oacute;n de estr&oacute;genos inicial por las c&eacute;lulas de la granulosa del fol&iacute;culo, promueven la producci&oacute;n de inhibina y permiten a los fol&iacute;culos alcanzar caracter&iacute;sticas ovulatorias. A nivel central, ejercen su efecto en el hipot&aacute;lamo, como v&iacute;nculos se&ntilde;alizadores del balance energ&eacute;tico y condici&oacute;n corporal, reflejando su acci&oacute;n en la liberaci&oacute;n de GnRH y LH. </P >    <P    >En otras especies, se ha observado una fuerte correlaci&oacute;n, en los niveles circulantes de leptina e IGFI, con ciclos reproductivos normales, &iacute;ndice de masa corporal, y disfunci&oacute;n reproductiva (46). Por tanto es interesante elucidar el papel de estas sustancias en la especie bovina y su relaci&oacute;n con la reproducci&oacute;n, espec&iacute;ficamente su papel mediador en la ovulaci&oacute;n y como v&iacute;nculo con el estado metab&oacute;lico. </P >       <P    >&nbsp;</P >   <b>Conclusi&oacute;n y perspectivas de investigaci&oacute;n </b>       <P    >La actividad o din&aacute;mica ov&aacute;rica es caracter&iacute;stica de animales c&iacute;clicos pero tambi&eacute;n de ganado en el per&iacute;odo posparto considerado ac&iacute;clico o en anestro. La anovulaci&oacute;n que se presenta en este per&iacute;odo se atribuye a fallas en el nivel central, asociadas con el control de la secreci&oacute;n de GnRH, donde una serie de hormonas y neurop&eacute;ptidos se han propuesto como posibles mediadores de dichos eventos en el bovino. Cuando se suspenden los efectos bloqueadores centrales es de esperar la reactivaci&oacute;n de la ciclicidad ov&aacute;rica. Sin embargo, debe existir una sincron&iacute;a entre el nivel central, el nivel local, y el estado corporal general del animal, donde factores celulares y moleculares marcan la pauta en la variabilidad del potencial ovulatorio de los primeros fol&iacute;culos dominantes en el posparto. </P >       <P    >En el momento del parto, la condici&oacute;n corporal es de suma importancia ya que determina el per&iacute;odo que permanecer&aacute; el animal en anestro y afecta de forma significativa el intervalo entre partos. Los problemas reproductivos en los bovinos han sido estrechamente relacionados con el balance energ&eacute;tico. </P >    <P    >A su vez, se conoce ampliamente que la condici&oacute;n corporal y el balance energ&eacute;tico est&aacute;n en directa relaci&oacute;n con niveles de leptina. Esta hormona act&uacute;a en el ovario de manera compleja e &iacute;ntimamente ligada a la insulina, IGF-I y otros marcadores metab&oacute;licos y reproductivos. </P >    <P    >Es importante investigar si la aplicaci&oacute;n de estrategias de manejo que ayuden al reestablecimiento de la ciclicidad (ITA, nutrici&oacute;n y condici&oacute;n corporal adecuada), resultar&aacute;n siempre en una ovulaci&oacute;n, para observar si existe una dependencia del potencial ovulatorio de la estructura ov&aacute;rica formada. Se podr&iacute;an postular algunos factores celulares y moleculares como marcadores de la variabilidad del potencial ovulatorio de los primeros fol&iacute;culos dominantes en vacas en posparto como son la leptina, IGF-I, LH y la expresi&oacute;n de sus receptores en ovario. Estudios cient&iacute;ficos de la expresi&oacute;n local de estos factores y de sus interacciones contribuir&iacute;an grandemente al esclarecimiento del gran enigma de la anovulaci&oacute;n posparto en ganado de carne. </P >       <P    >&nbsp;</P >       ]]></body>
<body><![CDATA[<P    ><I>Summary </I></P >   <I>Why first dominant follicles of postpartum zebu cattle do not ovulate in colombian tropic? </I>    <P    ><I>The efficiency of meat bovine production is strongly related to the reproductive capacity. The pospartum ovarian ciclicity is mainly influenced by suckling, energy balance (body condition) and cow-calf interaction. Restoring the energy homeostasis and reducing the suckling stimulus, could result in ovulation for some animals. However, cows that do not respond to these practices, are probably showing the individuality of follicular dynamics.Circulating growth factors and other hormones acting both at central and local level, can be determining this individuality. The adipose hormone, leptin, is an important link between body condition, energy balance and reproductive </I><I>status of the animal. Similary, IGF factors are well known to excerce important effects on reproductive system at the hypothalamus-hypophisis-gonadal axis. The interaction between those two systems, leptin and IGF-I, is the focus of this review in order to contribute to the understanding of the nutrition-reproduction interface as main cause of the anovulation postpartum in zebu cattle. </I></P >    <P    >Key words:<I> anovulation, insulin growth factor, leptin.</I></P >       <P    >&nbsp;</P >       <p><b>Referencias</b></p>       <!-- ref --><p>1. Adashi EY. Intraovarian regulation: The IGF-I example.   Reprod Fertil Dev 1992; 4: 497-504.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-0690200500020000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 2. Armstrong DG, McEvoy TG, Baxter G, Robinson JJ, Hoggc     CO, et al. Effect of dietary energy and protein on bovine     follicular dynamics and embryo production In vitro:     associations with the ovarian insulin-like growth factor     system. Biol Reprod 2001; 64: 1624-1632.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-0690200500020000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 3. Baskin DG, Lattemann DF, Seeley RJ, Woods SC, Porte     DJr, et al. Insulin and leptin: dual adiposity signals to the     brain for the regulation of food intake and body weight.     Brain Res 1999; 848: 114-123&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-0690200500020000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 4. Brann DW, Wade MF, Dhandapani KM, Mahesh VB,     Buchanan CD. Leptin and reproduction. Steroids 2002; 67:     95-104.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-0690200500020000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 5. Brannian JD, Hansen KA. Leptin and ovarian folliculogenesis:     implications for ovulation induction and ART outcomes. Sem     Reprod Med 2002; 20-21: 103-112.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-0690200500020000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 6. Butler WR. Nutritional interactions whit reproductive     performance in dairy cattle. Anim Reprod Sci 2000; 60-61:     449-457.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-0690200500020000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 7. Caprio M, Fabbrini EF, Isidori AM, Aversa A, Fabbri A.     Leptin in reproduction. Trends Endocrinol Metab 2001; 12:     65-72.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-0690200500020000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 8. Castillo JH, Ruiz Cort&eacute;s ZT, Olivera &Aacute;ngel M, Jim&eacute;nez C.     Reactivaci&oacute;n ov&aacute;rica postparto en vacas ceb&uacute; Brahman con     relaci&oacute;n al peso y condici&oacute;n corporal. Rev Col Cienc Pec     1997; 10: 12-18.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-0690200500020000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 9. Castracane VD, Henson MC. When did leptin become a     reproductive hormone? Sem Reproductive Med 2002; 20:     289-292.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-0690200500020000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 10. Chilliard Y, Bonnet M, Delavaud C, Faulconnier Y, Leroux C,     et al. Leptin in ruminants: gene expression in adipose tissue     and mammary gland, and regulation of plasma concentration.     Domest Anim Endocrinol 2001; 21: 271-295.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-0690200500020000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 11. De La Sota RL, Simmen FA, Diaz T, Thatcher WW.     Insulin-like growth factor system in bovine first-wave     dominant and subordinate follicles. Biol Reprod 1995;     55: 803-812.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-0690200500020000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 12. Estienne MJ, Harper AF, Kozink DM, Knight JW. Serum     and milk concentrations of leptin in gilts fed a high- or lowenergy diet during gestation. Anim Reprod Sci 2003; 75: 95-     105.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-0690200500020000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 13. Ferguson JD. Diet, production and reproduction in dairy     cows. Anim. Feed Sci Technol 1996; 59: 173- 184&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-0690200500020000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 14. Ferreira JL, Toniolli R, Gra&ccedil;a-Duarte AB, Campagnari F,     Padovez BA, et al. Relative expression of insulin like     growth factor I(IGF-I) and follicle stimulating hormone     receptor (FSHR) in follicles and ovarian tissue from Bos     primigenius indicus (Nelore). Braz J Vet Res anim 2002; 39: 208-212.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-0690200500020000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 15. Fortune JE, Rivera GM, Evans ACO, Turzillo AM.     Differentiation of dominant versus subordinate follicles in     cattle. Biol Reprod 2001; 65: 648-654.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0120-0690200500020000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 16. Garcia MR, Amstalden M, Williams SW, Stanko RL,     Morrison CD, et al. Serum leptin and its adipose gene     expression during pubertal development, the estrous cycle,     and different seasons in cattle. J Anim Sci 2002; 80: 2158-     2167.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-0690200500020000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 17. Giraldo Echeverri CA, Bran Agudelo JA, Valencia L, Ruiz     Cort&eacute;s ZT, Olivera &Aacute;ngel M. Efecto de la interrupci&oacute;n     temporal del amamantamiento (ITA) y la inducci&oacute;n con     progest&aacute;geno en la din&aacute;mica folicular del primer calor posparto     en vacas ceb&uacute;. Rev Col Cienc Pec 2003; 16:82.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0120-0690200500020000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 18. Giraldo echeverri CA, Olivera &Aacute;ngel M. El anestro posparto.     Carta Fedegan 2002; 76: 158-160.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0120-0690200500020000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 19. Griffith MK, Williams GL. Roles of maternal vision and     olfaction in suckled-mediated inhibition of luteinizing     hormone secretion, expression of maternal selectivity, and     lactational performance of beef cows. Biol Reprod 1996; 54:     761-768.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0120-0690200500020000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 20. Hashizume T, Kumahara A, Fujino M, Okada K. Insulin-like     growth factor I enhances gonadotropin-releasing hormonestimulated     luteinizing hormone release from bovine anterior     pituitary cells. Anim Reprod Sci 2002; 70: 13-21.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0120-0690200500020000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 21. Henao G, Olivera &Aacute;ngel M, Maldonado Estrada JG. Follicular     dynamics during postpartum anestrus and the first estrous     cycle in suckled or non-suckled Brahman (Bos indicus) cows.     Anim Reprod Sci 2000; 63: 127-136.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0120-0690200500020000400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 22. Henao G, Trujillo LE. Establecimiento y desarrollo de la     dominancia folicular bovina. Rev Col Cienc Pec 2000; 13:     108-120.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0120-0690200500020000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. Henao G, Trujillo LE, V&aacute;squez JF. Cambios en la din&aacute;mica     folicular en vacas ceb&uacute; an&eacute;stricas sometidas a suspensi&oacute;n     temporal de la lactancia. Rev Col Cienc Pec 2000; 13: 121-129.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0120-0690200500020000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24. Hillebrand JJ, Wied D, Adan RA. Neuropeptides, food intake     and body weight regulation: a hypothalamic focus. Peptides     2002; 23: 2283-2306&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0120-0690200500020000400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 25. Houseknecht KL, Bauman DE, Vernon RG, Byatt JC, Collier     RJ. Insuline like-growth factors I and II, somatotropin,     prolactin, placental lactogen are not acute effectors of     lipolysis in ruminants. Domest Anim Endocrinol 1996; 13:     239-249.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0120-0690200500020000400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 26. Humbel RE. Insuline-like growth factors I and II. Eur J     Biochem 1990; 445-462.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0120-0690200500020000400026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27. Ingvartsen KL, Boisclair YR. Leptin and the regulation of     food intake, energy homeostasis and immunity with special     focus on periparturient ruminants. Domest Anim Endocrinol     2001; 21: 215-250.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0120-0690200500020000400027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 28. Leibowitz SF, Wortley KE. Hypothalamic control of energy     balance: different peptides, different functions. Peptides.     2004; 25: 473-504.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0120-0690200500020000400028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 29. Mann DR, Plant TM. Leptin and pubertad development.     Seminars in reproductive medicine 2002; 20: 93-102&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0120-0690200500020000400029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 30. Miner JL. Recent advances in the central control of intake in     ruminants. J Anim Sci 1992; 70: 1283-89&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0120-0690200500020000400030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 31. Murphy BD, Gevry N, Ruiz-Cortes T, Cote F, Downey     BR, et al. Formation and early development of the corpus     luteum in pigs. Reprod Suppl 2001; 58: 47-63    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0120-0690200500020000400031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>32. Oliveira JFC, Neves JP, Moraes JCF, Gon&ccedil;alves PBD, Bahr     JM, et al. Follicular development and steroid concentrations     in cows with different levels of fertility raised under nutritional stress. Anim Reprod Sci 2002; 73: 1-10.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0120-0690200500020000400032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 33. Pescador N, Stocco DM, Murphy BD. Growth factor     modulation of steroidogenic acute regulatory protein and     luteinization in the pig ovary. Biol reprod 1999; 60: 1453-     1461.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0120-0690200500020000400033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 34. Picton HM. Activation of follicle development: the primordial     follicle. Theriogenology 2001; 55: 1193-1210&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0120-0690200500020000400034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 35. Reksen O, Gr&ouml;hn YT, Havrevoll O, Bolstad T, Waldmann A,     et al. Relationships among milk progesterone, concentrate     allocation, energy balance, milk yield and conception rate in     norwegian cattle. Anim Reprod Sci 2002; 73: 169-184.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0120-0690200500020000400035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 36. Roche JF, Mackey D, Diskin MD. Reproductive     management of postpartum cows. Anim Reprod Sci 2000; 60- 61: 703-712.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0120-0690200500020000400036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 37. Ruiz-Cort&eacute;s ZT, Martel-Kenes Y, Gevry NY, Downey BR,     Palin MF, et al. Biphasic effects of leptin in porcine granulosa     cells. Biol Reprod 2003; 68: 789-96.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0120-0690200500020000400037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>38. Ruiz Cort&eacute;s ZT, Olivera &Aacute;ngel M. Ovarian follicular dynamics     in sucked zebu (Bos indicus) cows monitored by real time     ultrasonography. Anim Reprod Sci 1999; 54: 211-220.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0120-0690200500020000400038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>39. Ruiz Cort&eacute;s ZT, Men T, Palin MF, Downey BR, Lacroix DA,     et al. Porcine leptin receptor: molecular estructure and   expression in the ovary. Mol Reprod Dev 2000; 56: 465-474.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0120-0690200500020000400039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 40. Sahu A. Leptin signaling in the hypothalamus: emphasis on     energy homeostasis and leptin resistance. 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Relationship between     serum insulin-like growth factor-I and genotype during the     postpartum interval in beef cows. J Anim Sci 2002; 80: 716-     722.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0120-0690200500020000400044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 45. Stagg K, Spicer LJ, Sreenan JM, Roche JF, Diskin MG. Effect     of calf isolation on follicular wave dynamics, gonadotropin     and metabolic hormone changes, and interval to first ovulation     in beef cows fed either of two energy levels postpartum.     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Anim Reprod Sci 1996; 42: 289-297.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000146&pid=S0120-0690200500020000400049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>50. Williams GL, Griffith MK. Sensory and behavioral control     of gonadotrophin secretion during suckling-mediated     anovulation in cows. J Reprod Fertil 1995; 49: 463-475.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000147&pid=S0120-0690200500020000400050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>51. Wiltbank MC, Gtimen A, Sartori R. Physiological     classification of anovulatory conditions in cattle.     Theriogenology 2002; 57: 21-52.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000148&pid=S0120-0690200500020000400051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 52. Zeleznik AJ. Luteinization. In: Knobil E, academic press.     Encyclopedia of Reproduction. Vol 2 Ep-L; 1998. p. 1076-1083&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S0120-0690200500020000400052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 53. Zulu VC, Sawamukai Y, Nakada K, Kida K, Moriyoshi M.     Relationship among insulin-like growth factor I, blood     metabolites and postpartum ovarian function in dairy cows.     J Vet Med Sci 2002; 64-10: 879-885.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000150&pid=S0120-0690200500020000400053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p>&nbsp;</p>      ]]></body><back>
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