David Dallos Corredor1 Jairo Arturo Guerrero Dallos1
1Departamento de Química, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia, Ciudad Universitaria, Bogotá, D. C., Colombia. Correo electrónico: jaguerrerod@unal.edu.co
RESUMEN
En este estudio se describe la implementación y validación de una metodología multirresiduo para la determinación de plaguicidas organoclorados, organofosforados y piretroides en café verde. Los plaguicidas se extrajeron con una mezcla de solventes acetona-agua (2:1) seguida de una partición con acetato de etilo- ciclohexano (1:1). Los extractos se limpiaron posteriormente por cromatografía de permeación en gel para eliminar principalmente grasa y cromatografía en minicolumna sobre silicagel para eliminar otros interferentes. La determinación analítica se realizó por cromatografia de gases de alta resolución con inyección splitless pulsada y detección simultánea por microcaptura electrónica (µ-ECD) y nitrógeno-fósforo (NPD) acoplados en paralelo. La metodología es específica, selectiva, precisa y exacta. Los porcentajes de recuperación de la mayoría de los compuestos estuvieron entre 70 y 110% al fortificar con mezcla de plaguicidas entre 0,038 y 1,536 mg/kg con límites de cuantificación entre 0,011 y 0,100 mg/kg.
Palabras Clave: plaguicidas, café,cromatografía de gases, limpieza, validación.
This study describes the implementation and validation of a multiresidue methodology for the determination of organochlorine, organophosphorus and pyrethroids pesticides in green coffee. Pesticides residues were extracted from green samples with an acetone-water (2:1) mixture followed by ethyl acetate-cyclohexane (1:1) partitioning. The clean up steps include gel permeation chromatography and mini column chromatography using silicagel. Final determination was carried out by high resolution gas chromatography with a pulsed splitless injection mode and simultaneous detection by µ-ECD and NPD coupled in parallel. The methodology is specific, selective precise and accurate. Recoveries of majority of pesticides from spiked samples range from 70 to 110% at fortification levels of 0.038 mg/kg-1.536 mg/kg with limit of quantitation between 0.011 mg/kg and 0.100 mg/kg.
Key words: pesticides, coffee, gas chromatography, clean up, validation.
INTRODUCCIÓN
En la actualidad Colombia es el tercer productor mundial de café, después de Brasil y Vietnam, y el primer productor de café suave; la producción total de acuerdo con el anuario estadístico del Ministerio de Agricultura para el año 2001 fue de 10.939.000 sacos de 60 kilos que corresponden a 656.160 toneladas, y una superficie plantada de 830.000 hectáreas con un rendimiento promedio de 791 kg/ha. La Figura 1 esquematiza la producción de café en Colombia en relación con la producción mundial en 2002 (1).
El café producido en el país no sólo satisface el consumo nacional sino que es el primer producto de exportación, el cual tiene como destino los mercados de Estados Unidos, algunos países europeos y Japón.
En el cultivo, almacenamiento y trasporte del café se usan plaguicidas, como insecticidas, herbicidas, nematicidas, fungicidas, que si no se aplican de manera controlada podrían quedar residuos en el producto final; estos residuos tienen unos límites máximos permitidos de acuerdo con parámetros internacionales, por encima de los cuales podrían afectar la salud humana. Los límites máximos de residuos (LMR) establecidos por cada país se basan en el Codex Alimentarius (2), la Environmental Protection Agency (3) o legislaciones propias de los países.
De esta manera se hace importante desarrollar metodologías confiables y reproducibles que garanticen que nuestro café no supere los LMR y que se produzcan productos inocuos y de buena calidad tanto para el consumidor nacional como para exportación.
]]> Existen en la actualidad metodologías para la determinación de residuos de plaguicidas en diferentes matrices (4, 5), pero éstas en su mayoría usan solventes de alta toxicidad, como diclorometano, tolueno, etc. Por eso en este documento se presenta la implementación y validación de una metodología usando solventes menos tóxicos y más amigables con el medio ambiente (6, 7, 8). Es importante destacar el hecho de que se trata de una metodología multirresiduo en la que se determinan 14 plaguicidas simultáneamente y que éstos son los de mayor importancia para el caso del café, pues son los más aplicados por nuestros caficultores.MATERIALES Y MÉTODOS
Materiales de referencia, reactivos y soluciones
Los materiales de referencia de plaguicidas con porcentajes de pureza entre 98 y 100% se obtuvieron del Dr. Ehrensthorfer (Augsburg, Alemania). El acetato de etilo, ciclohexano , acetona grado residuos de plaguicidas, bicarbonato de sodio, silica gel (60-200 mesh) grado analítico y sulfato de sodio anhidro grado residuos se obtuvieron de J. T. Beaker y Mallinckrodt. Se prepararon soluciones madre de los materiales de referencia en concentración cercana a 1.000 µg/mL en acetato de etilo, los cuales se almacenaron en congelador a -20 °C. Las mezclas de los plaguicidas se prepararon en concentraciones entre 2,56 y 102,40 µg/mL.
Obtención y preparación de la muestra blanco
La muestra de café blanco se adquirió en la Cooperativa de Caficultores del Alto Occidente de Caldas, ubicada en el municipio de Ríosucio, Caldas, Colombia; el café provenía de una finca certificada para la producción de café orgánico.
El proceso de molienda se llevó a cabo en un molino eléctrico convencional; sin embargo fue necesario utilizar hielo seco triturado en proporción 1:1 para evitar el calentamiento excesivo de la matriz y la posible degradación o pérdida de los plaguicidas. Posteriormente el café se pasó a través de una malla de 1mmcon el propósito de obtener un tamaño particulado bajo, ya que la eficiencia en el proceso de extracción depende del tamaño de la partícula, así el solvente de extracción tiene acceso a mayor cantidad de material cuando el tamaño de la partícula es inferior. La muestra se mantuvo refrigerada a 4 °C durante el tiempo de desarrollo de la metodología para evitar cualquier cambio en la matriz.
Plaguicidas a determinar
En la selección de los plaguicidas a analizar se tuvieron en cuenta los estándares internacionales de residuos de plaguicidas en café, como el Codex Alimentarius, la EPA y la legislación del Japón para límites máximos de residuos (LMR). También se tuvieron en cuenta los plaguicidas aplicados en el país al cultivo de café, los cuales se establecieron por medio de una encuesta a caficultores del municipio de Anserma y Ríosucio, Caldas, Colombia; se consultó también a los técnicos cafeteros del comité de cafeteros de los municipios mencionados, y se obtuvo información de los plaguicidas adquiridos por los campesinos en los almacenes del Cafetero.
La Tabla 1 muestra los plaguicidas utilizados por los caficultores en algunos municipios del Alto Occidente de Caldas, Colombia. Entre los plaguicidas aplicados en el cultivo de café se encuentra el endosulfan, el cual fue prohibido en Colombia mediante la resolución 1311 de 21 de junio de 2001 del ICA; sin embargo, su eficiencia en el control de la broca hace que aún se utilice.
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No es posible analizar por cromatografía de gases algunos de los plaguicidas referenciados en los estándares internacionales y aplicados en café, de manera que no fueron objeto de nuestro estudio. El fentión, un insecticida utilizado para el control de la broca, no se incluyó en el estudio ya que se degrada a fentión sulfóxido y fentión sulfona principalmente, por lo que su análisis y estudio requiere otro tipo de diseño experimental. La Tabla 2 muestra los plaguicidas involucrados en la metodología y su clasificación.
Instrumentación
Cromatógrafo de gases Hewlett-Packard 6890 Plus con inyector automático 7683 Agilent Technologies (Palo Alto, CA, EUA), con control electrónico de presión, equipado con un detector de microcaptura electrónica µ-ECD 63Ni y un detector de nitrógeno-fósforo NPD acoplados en paralelo mediante un divisor de flujo (Y) de borosilicato al final de una columna capilar HP-5 (30 m X 0,35 mm d.i., df 0,25 µm). Inyector automático 7683. Las condiciones cromatográficas utilizadas en el análisis de los plaguicidas fueron las siguientes: volumen de inyección 2 µL; inyección en modo splitless pulsado con presión de pulso de 60 psi durante 1,0 min; tiempo de purga de 1,0 min, flujo de purga de 50 mL/min y temperatura del inyector de 250 °C. El gas de transporte fue nitrógeno y se utilizó una rampa de flujo. El programa de temperatura se muestra en la Figura 2. La temperatura del detector µ-ECD fue 300 °C con flujo de nitrógeno de 10 mL/min como gas auxiliar. El detector NPD se trabajó a 310 °C con flujos de gas auxiliar de 10 mL/min, de H2 de 3 mL/min y de aire de 60 mL/min. En el proceso de extracción y limpieza se utilizaron un homogeneizador Stephan Blender 2010, un homogeneizador de alta velocidad Ultraturrax T25 (IKA), un evaporador rotatorio Buchi R-114 y un equipo de GPC KL-SX-3 de Redemend Bt, este último empacado con un polímero de estireno-divinilbenceno a 3% de entrecruzamiento. Las condiciones en este equipo fueron: solvente de elución acetato de etilo-ciclohexano (1:1); flujo de elución 1 mL/min.
Procedimiento de extracción
]]> Con el objetivo de desarrollar un procedimiento de extracción y limpieza adecuado, fue necesario considerar las características de la matriz, ya que dependiendo de la composición de ésta se selecciona el solvente de extracción y los métodos de limpieza (9); la Tabla 3 muestra la composición general del café verde (10).
En algunas metodologías se usan mezclas acetona-agua en diferentes proporciones para la extracción de plaguicidas en matrices sin grasa o con bajo contenido de ésta (11); en el desarrollo de este proceso se usó una mezcla acetona-agua (2:1). Posteriormente se realizó un proceso de partición entre la fase acuosa (acetona- agua) y una mezcla de acetato de etilo- ciclohexano (1:1) (12); para evitar la formación de emulsiones se evaporó primero la acetona y posteriormente se realizó la partición.
Procedimiento de limpieza
Para eliminar la grasa presente en la matriz se realizó primero una limpieza por cromatografía de permeación en gel (GPC), utilizando como solvente de elución una mezcla de acetato de etilo ciclohexano (1:1) a un flujo de 5 mL/min y se recogió la fracción de plaguicidas entre 50 y 90 mL. Posteriormente se realizó un proceso adicional mediante una minicolumna empacada con un gramo de silica gel (13) y se encontró que la elución con la mezcla ciclohexano-acetona-acetonitrilo (86:10:4) presentaba porcentajes de recuperación adecuados para los plaguicidas en estudio.
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
Extracción
Después de molido el café y pasado por la malla, se toman 20 g de muestra, se adicionan 48 mL de agua y se dejan reposar durante 15 minutos, posteriormente se adicionan 100 mL de acetona y se homogeniza durante 2 minutos a una velocidad de 14.000 rpm en ultraturrax. Se deja reposar el extraído durante 30 minutos y se filtran 80 mL medidos en probeta a través de un algodón, se pasa la solución a un balón y se concentra en evaporador rotatorio hasta que la acetona se haya evaporado completamente.
Partición
]]> Posteriormente se pasa la solución acuosa a un embudo de decantación de 250 mL y se adicionan 15 mL de solución de NaCl al 15%. Se extrae con tres porciones de mezcla acetato de etilo-ciclohexano (1:1). Se recogen las fracciones orgánicas y se pasan a través de una columna empacada con 20 g de Na2SO4 (anhidro), se lava la columna con 5 mL de mezcla acetato de etilo-ciclohexano, se concentra la solución en el evaporador rotatorio a una temperatura de 37 °C hasta aproximadamente 5 mL, se pasa cuantitativamente el contenido del balón a un matraz de 10 mL, se lava con mezcla acetato de etilociclohexano y se afora a volumen.Limpieza en GPC
Se inyectan 2,5 mL y se eluye a un flujo de 5 mL/min, se desecha la fracción de 0-50 mL, se toma la fracción de 50-90 mL, se concentra en evaporador rotatorio hasta casi sequedad.
Limpieza en silica gel
Se dispone una columna con 1,0 g silica gel desactivada (1,5% de agua) y 0,3 g de Na2SO4 anhidro, se acondiciona con una mezcla de ciclohexano-acetona-acetonitrilo (86:10:4), se transfiere la muestra a la columna y posteriormente se eluye con un volumen de la misma mezcla; se concentra en el evaporador rotatorio hasta casi sequedad, se transfiere cuantitativamente a un balón de 2,0 mL con acetato de etilo y se afora.
Validación de la metodología
Una vez se establecieron las condiciones adecuadas de separación cromatográfica, extracción y limpieza, se validaron los parámetros de especificidad-selectividad, precisión, linealidad, cantidad mínima detectable, cantidad mínima cuantificable, exactitud y robustez (9, 14, 15, 16).
Especificidad-selectividad
Se inyectaron extractos de café blanco y extractos de blanco fortificado al nivel dos de la curva de calibración. La Figura 3 y la Figura 4 muestran los cromatogramas de la matriz blanco y de la matriz blanco fortificada, respectivamente. Compuestos como dimetoato o diclorvos, en los cuales hubo pequeñas interferencias por µ-ECD, no presentaron ninguna interferencia por NPD. Por tanto, la metodología demuestra que es específica y selectiva puesto que permite separar adecuadamente las señales de los analitos de los interferentes de la matriz. La Tabla 4 muestra la resolución y el tiempo de retención de cada uno de los picos de los plaguicidas en extracto de matriz. Es importante ver que los plaguicidas que tienen una resolución menor de 1,5 por un detector, muestran una resolución mayor por el otro detector.
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Efecto matriz
El efecto matriz se evaluó determinando si las señales de los plaguicidas obtenidas en solvente y en matriz son significativamente diferentes. Este efecto se evaluó por el método de la regresión lineal graficando la señal del analito en matriz en función de la señal del analito en solvente (9). Se encontró que existe efecto matriz, por lo cual los compuestos se cuantificaron con curvas de calibración en extracto blanco de café.
Linealidad
Después del proceso de limpieza, tres réplicas del extracto blanco se fortificaron con mezcla de plaguicidas a cinco niveles de concentración, se inyectaron en el cromatógrafo de gases y se construyeron gráficas de área en función de la concentración.
Se encontró que en la mayoría de plaguicidas las curvas de calibración en extracto de matriz analizadas por ambos detectores presentan coeficientes de correlación mayores de 0,99, correlación significativa, pendientes estadísticamente diferentes de cero, regresión significativa, y linealidad, con una confiabilidad del 95%. Diclorvos, malation, clorpirifos , fentoato permetrina y cipermetrina presentaron interceptos estadísticamente diferentes de cero. La Figura 5 corresponde al diclorvos determinado por detector NPD y en la Tabla 4 aparece el rango de calibración de trabajo y los coeficientes de correlación obtenidos.
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Límite de detección (LOD) y límite de cuantificación (LOQ)
Los límites de detección y los límites de cuantificación se calcularon teniendo en cuenta 3 y 10 veces el ruido de la matriz blanco respectivamente (9). El experimento se realizó con cinco réplicas. La Tabla 5 presenta los valores correspondientes para cada uno de los plaguicidas en mg/kg, los cuales se verificaron experimentalmente. Estos resultados muestran que el método propuesto en este trabajo es apropiado para determinar residuos de plaguicidas al nivel de los LMR.
Precisión y exactitud
La precisión se evaluó como repetibilidad y como precisión intermedia al segundo nivel de concentración, el cual es el valor más cercano al LMR. En la evaluación de la repetibilidad se realizaron siete experimentos el mismo día bajo las mismas condiciones, mientras que para la evaluación de la precisión intermedia se realizaron cinco experimentos por duplicado en diferentes días.
La Tabla 6 y la Tabla 7 muestran el promedio, la desviación estándar y la dispersión de los resultados expresados como porcentaje de coeficiente de variación; también se muestra el porcentaje de recuperación para cada experimento.
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La variabilidad de los resultados depende de varios factores, entre los que se encuentran la concentración, la sensibilidad del detector al respectivo analito y la estabilidad de éste durante los diferentes pasos de la metodología. Los compuestos en los cuales se obtuvo mayor dispersión en el estudio de repetibilidad fueron clorotalonil, malation, α-endosulfan y cipermetrina, y en el estudio de precisión intermedia fueron fenitrotion por NPD y diclorvos por µ-ECD. Los resultados están dentro de los criterios de aceptación en análisis de residuos de plaguicidas (9). Otros plaguicidas, como el fenamifos, presentan alto % CV debido a su inestabilidad.
La exactitud se evaluó como el porcentaje de recuperación al segundo nivel de calibración. En la mayoría de los plaguicidas los recuperados están dentro de los criterios establecidos en la norma para validación de métodos en análisis de residuos de plaguicidas y drogas veterinarias, es decir, entre 70 y 120% en el rango de concentración estudiado (9). Se encontraron excepciones, como en monocrotofos, el cual se pierde durante el proceso analítico; el DDT, el fenamifos y la permetrina, los cuales presentaron porcentajes de recuperación menores de 70%. Como se aprecia en la Tabla 6 y en la Tabla 7, los resultados de los porcentajes de recuperación son consistentes tanto en el estudio de repetibilidad como de precisión intermedia.
Robustez
Siguiendo el modelo propuesto por Youden y Steiner (14, 17), se seleccionaron 7 factores determinantes que podrían ser críticos en el desarrollo del método y se hicieron variaciones a los valores nominales de estos factores. Este estudio se realizó al segundo nivel de calibración; para decidir si un parámetro tenía influencia significativa sobre el resultado, se comparó la diferencia de medias obtenida para el cambio efectuado para ese parámetro y el producto de la desviación estándar del estudio de precisión como repetibilidad y raíz de 2. Los resultados mostraron que ninguno de los factores influyó significativamente sobre todos los plaguicidas, lo cual indica robustez del método. La Tabla 8 muestra los factores evaluados en el estudio de robustez.
Análisis de muestras
]]> Se analizaron muestras suministradas por Café de la Fonda, Bogotá D. C., Colombia, y muestras tomadas en el municipio de Cajete, Cauca, Colombia. Los resultados de los análisis de las muestras aparecen en la Tabla 9.
En una de las fincas se encontraron residuos de clorotalonil por debajo del LMR reportado por la EPA, el cual es de 0,2 mg/kg, mientras que en las fincas donde cultivan café orgánico no se detectaron residuos de plaguicidas, lo que confirmó la autenticidad del cultivo. En el café suministrado por Café de la Fonda tipo consumo nacional se encontraron pequeñas concentraciones de clorpirifos y trazas de endosulfan; aunque este último es prohibido en Colombia, los agricultores todavía lo usan. En el café excelso de exportación y en el café orgánico suministrado por Café de la Fonda se encontraron trazas de clorpirifos. A pesar de que los resultados encontrados en estas muestras indican unas concentraciones bajas de residuos de plaguicidas y que en ninguna muestra se encontraron residuos que sobrepasaran los LMR, es necesario desarrollar programas de monitoreo de residuos de plaguicidas con el objeto de proteger al consumidor y asegurar la calidad del producto de exportación.
El trabajo desarrollado siguió el sistema de gestión de calidad implementado en el Laboratorio de Análisis de Residuos de Plaguicidas del Departamento de Química de la Universidad Nacional de Colombia, bajo la norma ISO 17025.
CONCLUSIONES
Se desarrolló una metodología multirresiduo para la determinación de residuos de plaguicidas en café verde; se usaron solventes de baja toxicidad y por ende de bajo impacto ambiental. La metodología es confiable y suficientemente sensible para la determinación de residuos de plaguicidas a nivel de los LMR. Esta metodología validada le ofrece al país una herramienta analítica para realizar programas de monitoreo y asegurar la inocuidad respecto al contenido de plaguicidas del café verde tanto de consumo nacional como de exportación.
Agradecimientos: Expresamos nuestros agradecimientos al Departamento de Química de la Universidad Nacional de Colombia, sede Bogotá, y al Organismo Internacional de Energía Atómica (IAEA), Viena, Austria, por la colaboración y financiación para este proyecto.
BIBLIOGRAFÍA
1. Documento de trabajo Nº 29. (2002). La cadena de café en Colombia. Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural. [ Links ]
2. Codex Alimentarius. (2000). FAO-OMS. 2B. [ Links ]
3. US Environmental Protection Agency (EPA). Pesticides and food. (2004). Code of Federal Regulation 40 CFR180. [ Links ]
4. Method development for multiresidues pesticide analysis. (1996). General Inspectorate for Healt Protection. Ministery of Public Health, Welfare and Sport. Netherlands. [ Links ]
5. Gelsomino, A. y otros. (1997). Multiresidue analysis of pesticides in fruits and vegetables by gas chromatography with electron-capture and mass spectrometric detection. J. Chromthogr. 782, 105-122. [ Links ]
6. Montaño, M.; Guerrero, J. A. (2001). Validación de una metodología multirresiduo para la determinación de residuos de plaguicidas en fresa (Fragraria spp.) por cromatografía de gases. Rev. Col .Quím. 30 (1) 37-46. [ Links ]
7. Moreno, M.; Guerrero, J. A. (2002). Validación de una metodología multirresiduo para la determinación de residuos de plaguicidas en repollo (Brassica Oleracea var.: Capitata) por cromatografía de gases. Rev. Col .Quím. 31 (1) 19-32. [ Links ]
8. Guerrero, J. A. (2003). Estudio de residuos de plaguicidas en frutas y hortalizas en áreas específicas de Colombia. Agronomía Colombiana 21 (3) 198-209. [ Links ]
9. Ambrus, A.; Fajgelj, A. (2000). Principles and practices of method validation. Royal Society of Chemistry. UK. [ Links ]
10. Belitz, Rosch. (1998). Química de Alimentos. Editorial Arabia S. A. 747-760. [ Links ]
11. Pesticide Analitical Manual. (1994). Vol. I, 3a. ed., U.S. Dept. of Health and Human Services, Food and Drug Administration, Washington D. C. Method for nonfatty foods. Section 302. [ Links ]
12. Specht, W. y otros (1995). Gaschromatographic determination of pesticide residues after clean-up by gel-permeation chromatography and mini-silica gel-column chromatography. Fresenius Anal. Chem. 353, 183-190. [ Links ]
13. Specht, W.; Tilkes, M. (1985). Gaschromatographische bestimmung von rücständen an pflanzanbnehandlungsmitteln nach clean-up über gel-chromatographie und mini-kieselgel- saülen-chromatographie. Fresenius Anal. Chem. 322, 443-445. [ Links ]
14. Quattrocchi, O.; Abelaira de Andrizzi, S.; Laba, R. (1992). Introducción a la HPLC: aplicación práctica. Argentina: Editorial Artes Gráficas Farro, pp. 154-173, 301-328. [ Links ]
15. Ospina de Nigrinis, L. S. (1994). El método de análisis para los estudios de estabilidad y de biodisponibilidad de medicamentos. Parte I. Revista Colombiana de Ciencias Químico- Farmacéuticas 22, 7-12. [ Links ]
16. Ospina de Nigrinis, L. S. (1995). El método de análisis para los estudios de estabilidad y de biodisponibilidad de medicamentos. Parte II. Revista Colombiana de Ciencias Químico Farmacéuticas 23, 95-100. [ Links ]
17. Asociación Española de Farmacéuticos de la Industria (AEFI). (2001). Validación de métodos analíticos. Sociedad de Validación de Sistemas, S. L. Barcelona. [ Links ] ]]>