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<journal-title><![CDATA[Revista Colombiana de Química]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[METABOLITOS SECUNDARIOS AISLADOS DE LA CORTEZA DE Dugandiodendron argyrotrichum Lozano (MAGNOLIACEAE)]]></article-title>
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<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[METABOLITOS SECUNDARIOS ISOLADOS DA CASCA DA Dugandiodendron argyrotrichum Lozano (MAGNOLIACEAE)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[From the ethanolic extract of the bark of the colombian endangered tree Dugan- diodendron argyrotrichum (Magnoliaceae) was isolated an oil in which major compounds were sesquiterpenes. Two sesquiterpenoids torreyol and parthenolide and the aporphine alkaloid N-acetylanonaine were isolated by column chromatography (CG-EM) and characterized by 1H and 13C nuclear magnetic resonance (NMR) spectroscopy. The isolated substances were subjected to brine shrimp lethality bioassay. The most toxic compounds were sesquiterpene oil (LC50 = 4,49 mg/ml) and dibenzylbutane lignans (1) (LC50 ~ 50 mg/ml).]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[A partir do extracto etanólico da casca da árvore colômbiano em perigo de extinção Dugandiodendron argyrotrichum (Magnoliaceae) isolou-se um óleo composte maioritariamente por sesquiterpenos. Duos sesquiterpenoides, torreyol e partenólido e o alcalóide N-acetilanonaina se isolaram por cromatografía de coluna e foram caracterizados por meio de espectroscopía de resonância magnêtica nuclear (RMN) 1H e 13C. Os compostos foram evaluados en el bioensaio letalidade do Artemia salina. Os compostos que resultaron mais tóxicos foram o oléo de sesquiterpenos (CL50=4,49 mg/ml) e os lignanos dibencilbutanicos (CL50 ~ 50 mg/ml).]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="verdana">     <p><font size="4"><b>    <center>METABOLITOS SECUNDARIOS AISLADOS DE LA CORTEZA   DE <i>Dugandiodendron argyrotrichum Lozano</i>   (MAGNOLIACEAE) </center></b></font></p>       <p><font size="3"><b>    <center>SECONDARY METABOLITES ISOLATED FROM THE BARK   OF <i>Dugandiodendron argyrotrichum Lozano</i>   (MAGNOLIACEAE)   </center></b></font></p>       <p><font size="3"><b>    <center>METABOLITOS SECUNDARIOS ISOLADOS DA CASCA   DA <i>Dugandiodendron argyrotrichum Lozano</i>   (MAGNOLIACEAE)   </center></b></font></p>     <p>Juan D. Guzm&aacute;n V., Luis E. Cuca S.<sup>1</sup></p>     <p><sup>1</sup> Departamento de Qu&iacute;mica, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia, sede Bogot&aacute;, Bogot&aacute;, Colombia. <a href="mailto:lecucas@unal.edu.co">lecucas@unal.edu.co</a></p>     <p>  Recibido: 9/05/08 &ndash; Aceptado: 7/10/08</p> <hr size="1">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>RESUMEN</b></p>     <p>A partir del extracto etan&oacute;lico de la corteza   del &aacute;rbol colombiano en peligro de extinci&oacute;n   Dugandiodendron argyrotrichum   (Magnoliaceae) se aisl&oacute; por cromatograf&iacute;a   en columna un aceite compuesto mayoritariamente   por sesquiterpenos, as&iacute; como dos   sesquiterpenoides, torreyol y parten&oacute;lido, y   el alcaloide aporf&iacute;nico N-acetilanonaina.   Los compuestos se identificaron por cromatograf&iacute;a   de gases acoplada a espectrometr&iacute;a   de masas CG-MS y resonancia magn&eacute;tica   nuclear (RMN) de 1H y 13C. Los   sustancias aisladas se sometieron al ensayo   de letalidad en Artemia salina.Aquellos que   resultaron m&aacute;s t&oacute;xicos fueron el aceite de   sesquiterpenos (CL50 = 4,49 mg/ml) y los   lignanos dibencilbut&aacute;nicos (1) (CL50.~ 50 mg/ml).</p>     <p><b>Palabras Clave:</b> sesquiterpenos, lignanos, alcaloides, citotoxicidad.</p> <hr size="1">     <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p>From the ethanolic extract of the bark of   the colombian endangered tree Dugan-   diodendron argyrotrichum (Magnoliaceae)   was isolated an oil in which major   compounds were sesquiterpenes. Two   sesquiterpenoids torreyol and parthenolide   and the aporphine alkaloid N-acetylanonaine   were isolated by column chromatography   (CG-EM) and characterized by   1H and 13C nuclear magnetic resonance   (NMR) spectroscopy. The isolated substances   were subjected to brine shrimp   lethality bioassay. The most toxic compounds   were sesquiterpene oil (LC50 =   4,49 mg/ml) and dibenzylbutane lignans (1) (LC50 ~ 50 mg/ml).</p>     <p><b>Key Words:</b> sesquiterpenes, lignans, alkaloids, citotoxicity.</p> <hr size="1">     <p><b>RESUMO</b></p>     <p>A partir do extracto etan&oacute;lico da casca da   &aacute;rvore col&ocirc;mbiano em perigo de extin&ccedil;&atilde;o   Dugandiodendron argyrotrichum (Magnoliaceae)   isolou-se um &oacute;leo composte   maioritariamente por sesquiterpenos.   Duos sesquiterpenoides, torreyol e parten&oacute;lido   e o alcal&oacute;ide N-acetilanonaina se   isolaram por cromatograf&iacute;a de coluna e   foram caracterizados por meio de espectroscop&iacute;a   de reson&acirc;ncia magn&ecirc;tica nuclear   (RMN) <sup>1</sup>H e <sup>13</sup>C. Os compostos foram   evaluados en el bioensaio letalidade   do Artemia salina. Os compostos que resultaron   mais t&oacute;xicos foram o ol&eacute;o de sesquiterpenos   (CL50=4,49 mg/ml) e os lignanos   dibencilbutanicos (CL50 ~ 50 mg/ml).</p>     <p><b>Palavras-Chave:</b> sesquiterpenos, lignanos, alcal&oacute;ides, citotoxicidad.</p> <hr size="1">     <p><b>INTRODUCCION</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Desde 1983, se llam&oacute; la atenci&oacute;n hacia la   urgente necesidad &ldquo;para la toma de medidas   efectivas que detengan la acelerada   destrucci&oacute;n de los recursos naturales antes   de su p&eacute;rdida irreversible&rdquo; (2). En   efecto, el panorama, para algunas especies   maderables de reconocida distribuci&oacute;n   en el pasado, como el Arenillo caobo   (Ocotea caparrapi), el Palo de rosa (Ani-   ba roseadora), elMolinillo (Talauma gil-   bertoi), el Canelo de los Andaqu&iacute;es (Oco-   tea quixos), el Cedro (Cedrela odorata) o   el Amarillo (Nectandra sp.), es desolador   (3). El aprovechamiento insostenible de   los recursos maderables ha degradado y   fragmentado los bosques nativos a tal   punto que la extinci&oacute;n de ciertas especies   es una amenaza real. Hoy en d&iacute;a, aunque   ubicados en el lugar donde son end&eacute;micas,   encontrar individuos de algunas especies puede ser dif&iacute;cil.</p>     <p>El uso principal de las especies de la   familia Magnoliaceae es maderable. La   madera de las magnoli&aacute;ceas es generalmente   blanda, de textura fina, generalmente   granulada, f&aacute;cil de trabajar, y por   tanto apropiada para enchapes y trabajo   general de carpinter&iacute;a (2). En Tumaco y   Barbacoas (Nari&ntilde;o) son muy apreciadas   para la fabricaci&oacute;n de muebles especies   conocidas como Cucharillo (Dugandio-   dendron calophyllum, Dugandiodendron   striatifolium, Taluma narinensis), y en   las zonas aleda&ntilde;as al r&iacute;o Cauca, el Molinillo   (Talauma hernandezii, Talauma gil-   bertoi) (2). En cuanto al fit&oacute;nimo &ldquo;Alma   negra&rdquo; (Dugandiodendron sp.), este se   refiere al veteado de color negro que presenta   el centro del tronco de estas especies, apreciadas por su belleza (2).</p>     <p>Gustavo Lozano Contreras estudi&oacute; las   plantas colombianas de la familia Magnoliaceae   durante m&aacute;s de dos d&eacute;cadas e   identific&oacute; los g&eacute;neros Talauma y Dugan-   diodendron (2, 4). El g&eacute;nero Dugandio-   dendron posee una distribuci&oacute;n restringida,   y la mayor&iacute;a de especies son   end&eacute;micas de Colombia (4). Su clasificaci&oacute;n   taxon&oacute;mica ha sido controversial (5,   6). Recientemente, Nooteboom y Figlar   (7) incluyen a las especies de g&eacute;nero Ta-   lauma y Dugandiodendron como subsecciones   de la secci&oacute;n Talauma, incluida   dentro del g&eacute;nero Magnolia. En este trabajo   se utiliza la clasificaci&oacute;n original   propuesta por el tax&oacute;nomo colombiano G. Lozano Contreras (2, 4).</p>     <p>A diferencia de Magnolia, las especies   americanas Talauma y Dugandiodendron   poseen carpelos dehiscentes circunc&iacute;siles.   Talauma posee una cicatriz en el pec&iacute;olo,   y Dugandiodendron (como Mag-   nolia) no la posee (2). Los &uacute;ltimos   reportes describen 33 especies nativas   (Talauma y Dugandiodendron) de la familia   Magnoliaceae en el territorio colombiano,   de las cuales 29 son end&eacute;micas   (8, 9). Todas las especies poseen alg&uacute;n   grado de amenaza (8, 9). Once especies   se encuentran en peligro cr&iacute;tico (CR):   Dugandiodendron calimaensis y D. cara-   rensis y Talauma chimatensis, T. cespe-   desii, T. espinalii, T. katiorum, T.   polyhypsophylla, T. narinensis, T. viroli-   nensis, y T. wolfii y una especie aparentemente   no nombrada (8, 9). En peligro   (EN) se encuentran 19 especies: Dugan-   diodendron argyrotrichum, D. ca-   lophylla, D. colombianum, D. guatapen-   sis, D. lenticellata, D. magnifolia, D.   mahechae, D. urraoense y D. striatifolia   y Talauma arcabucoana, T. caricifra-   grans, T. chocoensis, T. georgii, T. gil-   bertoi, T. henaoii, T. hernandezii, T. san-   tanderiana, T. silvioi y T. yarumalensis   (8, 9). Vulnerable (VU) es la especie Ta-   lauma neilli y la especie de la zona fronteriza   con Panam&aacute;, Talauma sambuensis,   se registra dentro de la categor&iacute;a de amenaza cercana (NT) (8, 9).</p>     <p>La familia Magnoliaceae se caracteriza   por poseer alcaloides, lignanos y neolignanos   y sesquiterpenoides. Se han reportado   alcaloides aporf&iacute;nicos y   oxoaporf&iacute;nicos en Magnolia obovata (10)   y en Talauma gitingensis (11). Tambi&eacute;n   se han descrito bencilisoquinolinas y   bis-bencilisoquinolinas (12). Los neolignanos   de tipo bifenilo, honokiol y magnolol,   aislados de la corteza de Magnolia of-   ficinalis, son importantes por su marcada   actividad biol&oacute;gica (13). Se han reportado,   en especies de g&eacute;nero Magnolia, lignanos   ciclobut&aacute;nicos, fur&aacute;nicos, furofur&aacute;nicos,   arilnaftal&eacute;nicos y neolignanos   benzofur&aacute;nicos, 1,2-diarilprop&aacute;nicos y   de tipo de la espirociclohexadienona, as&iacute;   como neolignanos h&iacute;bridos con unidades   terp&eacute;nicas y olig&oacute;meros de neolignano   (14). De la corteza de la especie americana   Talauma ovata se han aislado lignanos   dibencilbut&aacute;nicos y algunos derivados   oxigenados (14). Los terpenos aislados   de la familia Magnoliaceae son en su mayor&iacute;a   sesquiterpenoides. Se han reportado   sesquiterpenoides ac&iacute;clicos, como las   kobusiminas A y B de Magnolia kobus   (15), sesquiterpenoides c&iacute;clicos como ciclocolorenona   de Magnolia grandiflora   (16) y sesquiterpenlactonas, siendo el   costun&oacute;lido y el parten&oacute;lido ampliamente distibuidos en la familia (17, 18).</p>     <p>De las especies colombianas Talauma   hernadezii y Dugandiodendron yaruma-   lense se ha reportado la actividad antioxidante   de los extractos dicloromet&aacute;nicos   (19). Las fracciones m&aacute;s polares de la &uacute;ltima de ellas poseen la mayor actividad.</p>     <p>Este es el segundo reporte del aislamiento   y caracterizaci&oacute;n de metabolitos   secundarios de una magnoli&aacute;cea colombiana   (1). Se incluye la evaluaci&oacute;n de citotoxicidad contra Artemia salina.</p>     <p><b>MATERIALES Y METODOS</b></p>     <p><b>General</b></p>     <p>Los puntos de fusi&oacute;n se determinaron en   un fusi&oacute;metro Fischer-Johns. Los espectros   infrarrojo IR fueron registrados en el   equipo Perkin Elmer FTIR Panagon 500 serie 1000 en pastilla de KBr. Los espectros de resonancia magn&eacute;tica nuclear RMN 1H, 13C, experimentos DEPT y bidimensionales COSY, HMQC y HMBC, fueron registrados en el equipo Bruker Avance 400, a 400 MHz para 1H y a 100 MHz para 13C, utilizando cloroformo deuterado (CDCl3) como disolvente y est&aacute;ndar interno. Para la cromatograf&iacute;a de gases acoplada a la espectrometr&iacute;a de masas se us&oacute; el equipo Shimadzu GCMS-QP2010. Se emple&oacute; la columna WCOT Restek RTX-5Sil Ms (5% difenil 95% dimetilpolisiloxano) 30 m x 0,25 mm x 0,50 mm. La fase m&oacute;vil fue helio, y el disolvente usado cloroformo. El flujo de la fase m&oacute;vil se mantuvo a 1 ml/min. El split ratio fue de 100:1. Para la cromatograf&iacute;a en columna (CC) se emple&oacute; s&iacute;lica gel 60 (Merck) y al&uacute;mina neutra (Riedel- de-Ha&euml;n). En la cromatograf&iacute;a en capa fina (CCF) se utiliz&oacute; s&iacute;lica gel 60 GF254, 0,3 mm de espesor (Merck), al&uacute;mina neutra (Merck) y se us&oacute; luz UV de l 254, 365 nm y vapores de yodo como reveladores.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Material Vegetal</b></p>     <p>El material vegetal de la especie Dugan-   diodendron argyrotrichum Lozano fue   colectado en el municipio de Arcabuco   (Boyac&aacute;), cerca de la reserva Rogitama,   por Juan David Guzm&aacute;n en febrero de   2007. La muestra fue identificada y clasificada   con el n&uacute;mero de colecci&oacute;n   COL-510518 por el bot&aacute;nico Adolfo Jara   Mu&ntilde;oz del Instituto de Ciencias Naturales   de la Universidad Nacional de Colombia (sede Bogot&aacute;).</p>     <p><b>Extracci&oacute;n y aislamiento</b></p>     <p>Por percolaci&oacute;n con EtOH al 96%, a partir   de 1974,8 g de corteza seca y molida,   se obtuvieron 304,8 g de extracto etan&oacute;lico.   Usando 200 g de extracto, se realiz&oacute;   un fraccionamiento por reparto con agua   y extracci&oacute;n exhaustiva con disolventes   de polaridad creciente. Se obtuvieron extractos   benc&eacute;nico (25,0 g), acetato de isopropilo   (5,70 g), clorof&oacute;rmico (1,00 g) y   butan&oacute;lico (95 g). Tambi&eacute;n se obtuvo un   extracto alcaloidal (1,07 g) por extracci&oacute;n   &aacute;cido base a partir de 54,5 g de extracto   etan&oacute;lico. El extracto benc&eacute;nico se   someti&oacute; a cromatograf&iacute;a en columna   (CC) en s&iacute;lica gel (420 g) en una columna   de 6,1 cm de di&aacute;metro y 86 cm de largo.   La eluci&oacute;n se realiz&oacute; con tolueno inicialmente,   y luego se aument&oacute; paulatinamente   la polaridad usando mezclas de tolueno-   AcOiPr (9:1 v/v), (8:2), (7:3), (6:4) y   (1:1). Se colectaron 76 fracciones de 50   ml que fueron reunidas en 19 fracciones   finales de acuerdo con su perfil en CCF.   La fracci&oacute;n 1, menos polar, se someti&oacute; a   CC en Al2O3 neutra y eluci&oacute;n con una   mezcla de n-hexano/tolueno (3:1 v/v)   para obtener un aceite transparente   (1,163 g) con olor frutal caracter&iacute;stico   que se denomin&oacute; aceite . A partir de la   fracci&oacute;n 6 del extracto benc&eacute;nico, se purificaron   los compuestos (25 - 26) y (25 - 26). Una   fracci&oacute;n obtenida de la CC de la fracci&oacute;n   6 se someti&oacute; a CC en s&iacute;lica gel y eluci&oacute;n   con n-hexano-acetona (8:2 v/v) para purificar   un s&oacute;lido blanco (18,1 mg) que cristaliza   en agujas con p.f. 128-130 &ordm;C, denominado   compuesto (25 - 26). De la fracci&oacute;n   9 se aislaron los compuestos (25 - 26) y (25 - 26) (1).   A partir de la fracci&oacute;n 13 de la primera   columna de fraccionamiento, se realiz&oacute;   una CC en s&iacute;lica gel y eluci&oacute;n con   CH2Cl2-acetona (25:1 v/v). Una subfracci&oacute;n   se purific&oacute; por CC en s&iacute;lica gel y eluci&oacute;n   con CH2Cl2-acetona (50:1 v/v), obteniendo algunos cristales que fueron finalmente purificados por CC en Sephadex LH-20 y eluci&oacute;n con metanol para obtener cristales transparentes en forma de agujas (14,3 mg) de p.f. 226-228 &ordm;C, que corresponde al compuesto (25 - 26). A partir de 15 g de extracto etan&oacute;lico y por CC en s&iacute;lica gel y eluci&oacute;n con CH2Cl2 en primera instancia y luego con CH2Cl2-acetona (99:1 v/v) se purific&oacute; un s&oacute;lido blanco (22,8 mg) con p.f. 108-110 &ordm;C, denominado compuesto (25 - 26).</p>     <p><b>Ensayo de letalidad con Artemia Salina</b></p>     <p>El ensayo de letalidad en A. salina se realiz&oacute;   de acuerdo con el protocolo de   McLaughlin (20). Los huevos de A. sali-   na se incubaron durante 24 horas a una   temperatura de 28 &ordm;C en un medio de cultivo   oxigenado artificialmente y salino   (38 g/l de salmarina en agua). Los extractos   se solubilizaron inicialmente en   DMSO (500 &mu;l) y se prepararon soluciones   a concentraciones de 1000, 500, 250,   100 y 10 &mu;g/ml usando medio de cultivo.   Las concentraciones empleadas para evaluar   los compuestos fueron 100, 50, 10 y   1 &mu;g/ml. Se realiz&oacute; un control negativo   empleandoDMSOa la concentraci&oacute;n m&aacute;xima   2% en medio de cultivo. El ensayo   se realiz&oacute; por triplicado empleando 10   nauplios por pozo. Al cabo de 24 horas se   hicieron las lecturas anotando el n&uacute;mero   de sobrevivientes en cada pozo. Los datos   obtenidos fueron procesados con el programa   estad&iacute;stico EPA Probit Analysis   Program con el fin de determinar la concentraci&oacute;n   letal 50 (CL50) con un intervalo de confianza de 95%.</p>     <p><b>RESULTADOS Y DISCUSION</b></p>     <p>Por m&eacute;todos cromatogr&aacute;ficos se obtuvo   el aceite , que corresponde a la fracci&oacute;n   menos polar del extracto benc&eacute;nico, dada   su eluci&oacute;n con el frente de disolvente   n-hexano-tolueno (3:1) en Al2O3. La caracterizaci&oacute;n   se realiz&oacute; por CG-MS (21).   El cromatograma TIC (Total Ion Cu-   rrent) present&oacute; la separaci&oacute;n de 19 componentes.   Se obtuvieron los espectros de   masas por impacto electr&oacute;nico (70 eV)   para cada componente. Por medio de una   comparaci&oacute;n con los espectros de la biblioteca   Wiley7N2 y teniendo en cuenta   el orden de eluci&oacute;n, seg&uacute;n los &iacute;ndices de   Kovats reportados para la columna DB-5   (22, 23), fue posible identificar 10 compuestos   (82,63% del aceite) (<a href="#tab1">Tabla 1</a>). El   87,3% del aceite corresponde a hidrocarburos   sesquiterp&eacute;nicos, y el resto,   12,6%, a sesquiterpenoides mono y   poli-oxigenados. Los compuestos m&aacute;s   abundantes son el a-santaleno (18,1%)   (<a href="#fig1">Figura 1</a>), a-muuroleno (15,6%) y   g-muuroleno (11,5%). Los sesquiterpenos   obtenidos presentan una estructura   particular con sustituci&oacute;n C-prenilo unida   a un biciclo (bergamotenos) o a triciclo (a-santaleno, <a href="#fig1">Figura 1</a>).</p>     <p>    <center><a name="tab1"></a><img src="img/revistas/rcq/v37n3/v37n3a02tab1.gif"></center></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="fig1"></a><img src="img/revistas/rcq/v37n3/v37n3a02fig1.gif"></center></p>     <p>Se purific&oacute; una mezcla de is&oacute;meros   treo (25 - 26) y eritro (25 - 26) de austrobailignano-6   (1). El alcohol sesquiterp&eacute;nico, torreyol   (25 - 26), se purific&oacute; por cromatograf&iacute;a en columna   y se estableci&oacute; su estructura por   medio de la espectroscop&iacute;a de RMN 1H,   13C, experimentos DEPT y bidimensionales   COSY, HMBC, HMQC. Las se&ntilde;ales   experimentales coinciden con las se&ntilde;ales   reportadas en la literatura (24). Se purific&oacute;   una mezcla de is&oacute;meros treo (25 - 26) y   meso (25 - 26) del &aacute;cido dihidroguaiar&eacute;tico (1).   El alcaloide aporf&iacute;nico (Z)-N-acetil-anona&iacute;na   (25 - 26) tambi&eacute;n se obtuvo por m&eacute;todos   cromatogr&aacute;ficos a partir del extracto benc&eacute;nico.   La elucidaci&oacute;n estructural se realiz&oacute; por medio de la RMN 1H y 13C. Los datos experimentales coinciden con las se&ntilde;ales reportadas para los is&oacute;mero (E) y (Z), que se encuentran en equilibrio conformacional en soluci&oacute;n (10). A partir del extracto etan&oacute;lico y por medio de t&eacute;cnicas cromatogr&aacute;ficas se obtuvo la lactona sesquiterp&eacute;nica, parten&oacute;lido (25 - 26). Se estableci&oacute; su estructura por comparaci&oacute;n de las se&ntilde;ales de RMN 1H y 13C experimentales con las reportadas en la literatura (25, 26). Los datos de RMN experimentales de los compuestos (25 - 26), (25 - 26) y (25 - 26) se resumen en la <a href="#tab2">Tabla 2</a>. En la <a href="#fig2">Figura 2</a> se presentan las estructuras qu&iacute;micas de las sustancias (25 - 26), (25 - 26), (25 - 26), (25 - 26), (25 - 26), (25 - 26), y (25 - 26). El extracto etan&oacute;lico posee una concentraci&oacute;n letal 50 (CL50) de 167,7 mg/ml (<a href="#tab3">Tabla 3</a>). En general, valores inferiores a 100 &igrave;g/ml son considerados promisorios en la b&uacute;squeda de sustancias citot&oacute;xicas (27). Este resultado indica la existencia de compuestos t&oacute;xicos, y hace suponer la presencia de metabolitos inactivos y abundantes. Al realizar el fraccionamiento del extracto etan&oacute;lico fue posible observar, efectivamente, la presencia de compuestos t&oacute;xicos que se disolvieron en la fase benc&eacute;nica (CL50 = 72,62 mg/ml). La fracci&oacute;n enriquecida en alcaloides (CL50 = 327 mg/ml) y la fracci&oacute;n en acetato de isopropilo (CL50=316 mg/ml) resultaron moderamente activas. El extracto clorof&oacute;rmico fue poco activo (CL50 = 513 mg/ml). El extracto butan&oacute;lico fue inactivo a la mayor concentraci&oacute;n (CL50 &gt;1000 mg/ml). No se evalu&oacute; la letalidad del residuo acuoso.</p>     <p>    <center><a name="tab2"></a><img src="img/revistas/rcq/v37n3/v37n3a02tab2.gif"></center></p>     <p>    <center><a name="fig2"></a><img src="img/revistas/rcq/v37n3/v37n3a02fig2.gif"></center></p>     <p>    <center><a name="tab3"></a><img src="img/revistas/rcq/v37n3/v37n3a02tab3.gif"></center></p>     <p>Se estim&oacute; la letalidad del aceite y de   los compuestos en Artemia salina. Los   resultados se presentan en la <a href="#tab3">Tabla 3</a>. El   aceite , compuesto principalmente por   sesquiterpenos, mostr&oacute; ser la fracci&oacute;n   m&aacute;s potente frente a Artemia salina   (CL50 = 4,50 mg/ml). La mezcla de los   is&oacute;meros treo (25 - 26) y eritro (25 - 26) de austrobailignano-   6 mostr&oacute; una letalidad alta   (CL50 = 44,0 mg/ml). El compuesto (25 - 26)   present&oacute; una letalidad moderada (CL50   = 109 mg/ml). La mezcla de los is&oacute;meros   treo (25 - 26) y meso (25 - 26) de austrobailignano-   6 mostr&oacute; una alta letalidad (CL50   = 54,4 mg/ml). El alcaloide aporf&iacute;nico   N-acetilado, N-acetilanonaina (25 - 26), present&oacute;   una baja letalidad (CL50 = 288   mg/ml). El compuesto (25 - 26), la lactona   sesquiterp&eacute;nica parten&oacute;lido, mostr&oacute;   una letalidad moderada (CL50 = 105 mg/ml).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La colchicina fue el primer antimit&oacute;tico   descubierto que act&uacute;a inhibiendo la polimerizaci&oacute;n   de la tubulina (28). Es una   mol&eacute;cula que ha sido considerada promisoria   como medicamento anticancer&iacute;geno,   a pesar de su alta toxicidad (28). La   CL50 de la colchicina en Artemia salina es   de 25 mg/ml (29). El aceite compuesto   principalmente por santalenos, bergamotenos   y muurolenos es alrededor de cinco   veces m&aacute;s activo que la colchicina frente   a Artemia salina. Se ha reportado la actividad   antitumoral de sesquiterpenoides   de tipo santalano (30); sin embargo, no se   poseen reportes de la actividad citot&oacute;xica   de los sesquiterpenos mayoritarios a-santaleno,   a-muuroleno y g-muuroleno. Los   lignanos de tipo dibencilbutano presentan   una letalidad considerable frente a Arte-   mia salina (CL50~50 mg/ml). Poseen la   mitad de la potencia de la colchicina.   Estos metabolitos presentan una tendencia   de toxicidad que indica la existencia   de un mecanismo de acci&oacute;n particular.   Puede ser interesante explorar la manera   como act&uacute;an estos lignanos dibencilbut&aacute;nicos.   Los sesquiterpenoides, el alcohol   torreyol y la lactona parten&oacute;lido presentan   una letalidad moderada frente a Arte-   mia salina (CL50~110 mg/ml). Cabe se&ntilde;alar   que, aunque el parten&oacute;lido es muy   activo frente a Leishmania amazonesis   (26) y Mycobacterium tuberculosis (31),   presenta una actividad moderada frente al   microcrust&aacute;ceo. Hay que precisar que el   parten&oacute;lido no ha presentado toxicidad en   m&aacute;crofagos de murino (26), lo que indica   que posiblemente exista una correlaci&oacute;n   positiva entre citotoxicidad en macr&oacute;fagos   y letalidad en Artemia salina. El alcaloide   aporf&iacute;nico N-acetilanonaina present&oacute;   una baja letalidad (CL50~290 mg/ml)   a pesar de su actividad ictiot&oacute;xica reportada   frente al pez Pimephales promelas (32).</p>     <p><b>AGRADECIMIENTOS</b></p>     <p>Agradecemos a los profesores Jos&eacute; Hip&oacute;lito   Isaza Mart&iacute;nez y Wilman Antonio   Delgado &Aacute;vila por su colaboraci&oacute;n en el   an&aacute;lisis CG-EM y en los bioensayos.   Igualmente a Fernando Echeverri, investigador   principal del proyecto B&uacute;squeda   de mol&eacute;culas antituberculosas de la   flora colombiana (Colciencias 1115-12- 17822) que financi&oacute; esta investigaci&oacute;n.</p>     <p><b>REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS</b></p>     <!-- ref --><p>1. Guzm&aacute;n, J. D.; Cuca, L. E.; Isaza, J. H. Fragmentaci&oacute;n diastereoespec&iacute;fica en NCI de dos lignanos dibencilbut&aacute;nicos de la corteza de Dugan diodendron argyrotrichum (Magnoliaceae). Revista Productos Natura- les. 2008. (1): 6-12.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000057&pid=S0120-2804200800030000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Lozano C., G. Flora de Colombia 1.   Magnoliaceae. Bogot&aacute;: Instituto de   Ciencias Naturales, Universidad Nacional   de Colombia. 1983. pp. 3-104.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000058&pid=S0120-2804200800030000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  3. C&aacute;rdenas, D.; Salinas, N. R. editores.   Libro rojo de las plantas de Colombia.   Especies maderables amenazadas   Volumen 4. Bogot&aacute;: Instituto   Humboldt. 2007. pp.11-232.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0120-2804200800030000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  4. Lozano C., G. Dugandiodendron y   Talauma (Magnoliaceae) en el Neotr&oacute;pico.   Bogot&aacute;: Academia Colombiana   de Ciencias Exactas, F&iacute;sicas y   Naturales, Colecci&oacute;n Jorge &Aacute;lvarez   Lleras. 1994. No. 3.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000060&pid=S0120-2804200800030000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  5. Nooteboom, H. P. Dugandioden-   dron (Magnoliaceae) erroneously   described. Taxon. 1984. (4):   696-698.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0120-2804200800030000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  6. Lozano C., G. Consideraciones sobre   el g&eacute;nero Dugandiodendron   (Magnoliaceae). Taxon. 1984.   (4): 691-696.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S0120-2804200800030000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  7. Nooteboom,H. P.; Figlar, R. B.Notes   of Magnoliaceae IV. Blumea.   2004. : 87-100.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0120-2804200800030000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  8. Cicuzza, D.; Newton, A.; Oldfield,   S. Red list of Magnoliaceae. Fauna   and Flora International. UK. 2007.   pp. 17-52.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0120-2804200800030000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  9. Calder&oacute;n, E.; Cogollo, A.; Vel&aacute;squez   R&uacute;a, C.; Serna Gonz&aacute;lez, M.;   Garc&iacute;a, N. Las magnoli&aacute;ceas.   Nestor Garc&iacute;a Editor. Libros rojos   de plantas de Colombia. Volumen 5.   Bogot&aacute;. 2007. pp.45-154.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0120-2804200800030000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  10. Pyo, M. K.; Yun-Choi, H. S.;   Hong, Y. J. Antiplatelet activities of   aporphine alkaloids isolated from   leaves of Magnolia obovata. Planta   med. 2003. : 267-269.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0120-2804200800030000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  11. Nonato, M. G.; Garson, M. J.;   Truscott, R. J. W.; Carver, J. A.   1H-NMR assignments of anonaine   and xylopine derivatives from Talau-   ma gitingensis. J. Nat. Prod. 1990.   (6): 1623-1627.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0120-2804200800030000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  12. Shamma, M.; Slusarchyk, W. A.   The aporphine alkaloids. Chemical   Reviews. 1964. : 59-79.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0120-2804200800030000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  13. Song, Q.; Fischer, N. H.; Biologically   active lignans and neolignans   from Magnolia species. Rev. Soc.   Quim. Mex. 1999. (6): 211-218.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-2804200800030000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  14. Stefanello,M. A. A.;Alvarenga,M.   A.; Toma, I. N. New neolignans   from Talauma ovata. Fitoterapia.   2002. : 135-139.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-2804200800030000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  15. Iida, T.; Nakano, M.; Ito, K.   Hydroxyperoxysesquiterpene and   lignans constituents of Magnolia ko-   bus. Phytochemistry. 1982. (3):   673-675.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-2804200800030000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  16. Jacyno, J.M.;Montemurro, N.; Bates,   A. D.; Cutler, H. G. Phytotoxic   and antimicrobial properties of   cyclocolorenone from Magnolia   grandiflora L. J. Agric. Food.   Chem. 1991. : 1166-1168.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-2804200800030000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. Jacobsson, U.; Kumar, V.; Saminathan,   S. Sesquiterpene lactones from   Michelia champaca. Phytoche- mistry. 1995. (4): 839-843.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-2804200800030000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  18. Song, Q.; G&oacute;mez Barrios, M.;   Fronczec, F. R.; Vargas, D.; Thien,   L. B.; Fischer, N. H. Sesquiterpenes   from southern Magnolia virginiana.   Phytochemistry. 1998. (2):   221-226.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-2804200800030000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  19. Puertas, M. A.; Mesa, A. M.; S&aacute;ez   J. A. In vitro radical scavenging activity   of two columbian Magnoliaceae.   Naturwissenschaften. 2005. :   381-384.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-2804200800030000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  20. McLaughlin, J.; Rogers, L.; Anderson,   J. The use of biological assays to   evaluate botanicals. Drug Inf. J.   1998. : 513-524.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0120-2804200800030000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  21. Guzm&aacute;n, J. D. Estudio fitoqu&iacute;mico y   b&uacute;squeda de compuestos de inter&eacute;s   terape&uacute;tico de Dugandiodendron   argyrotrichum (Magnoliaceae). MSc   Thesis, Universidad Nacional de Colombia,   Bogot&aacute;, 2008.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-2804200800030000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  22. Adams, R. P. Identification of essential   oil components by gas-chromatography/   mass spectrometry. Chicago:   Allured Publishing Corporation.   1995.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-2804200800030000200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  23. Joulain, D.; K&ouml;nig,W. A. The Atlas   of spectral data of sesquiterpene   hydrocarbons. Hamburg, Germany:   E.B.-Verlag. 1998.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-2804200800030000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  24. Egli, V. S.; Gfeller, H.; Bigler, P.;   Schlunegger, U. P. Isolierung und   identifikation des sesquiterpenalkohols   torreyol aus reinkulturen des   ektomykorrhizapilzes Cortinarius   odorifer Britz. Eur. J. For. Path.   1988. (6): 351-356.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-2804200800030000200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  25. Tiuman, T. S.; Ueda N., T.; Garc&iacute;a,   D. A.; Dias, B. 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