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<journal-title><![CDATA[Revista Colombiana de Química]]></journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[Departamento de Química,  Universidad Nacional de Colombia.]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[CARACTERIZACIÓN BIOLÓGICA DE VARIANTES DE PLACA DE LA CEPA VACUNAL 17D CONTRA LA FIEBRE AMARILLA]]></article-title>
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<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[CARACTERIZAÇÃO BIOLÓGICA DAS VARIANTES DA PLACA CEPA DA VACINA 17D CONTRA A FEBRE AMARELA]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad Nacional de Colombia Programa de Maestría en Microbiología ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The Colombian 17D vaccine contains at least four phenotypes denominated small (0.3 - 1.2 mm), medium (1.3 - 2.1 mm) large (2.2 - 3.0 mm) and extra-large (>3.1 mm). These phenotypes composition and percentage distribution vary between different production lots and between ampoules from a particular lot. Each variant was cloned by diluting the vaccine and its virulent effect was analysed in young mice. The small plaque phenotype was slightly under represented in the lots analysed and showed similar virulence to the neurotropic French wild strain (LD50 >10-6), whilst the medium- sized phe-notype predominated and was the most attenuated (LD50:10-4). The large and extra-large phenotypes showed intermediate virulence (LD50:10-5) regarding the others. Sequence analysis of variants within the region between the 3'NS5 end and the beginning of 3'NCR showed the closeness between those variants having some degree of virulence and between the attenuated variant and the Colombian vaccine. The 17D vaccine's heterogeneity constitutes evidence of RNA virus quasi-specie structure and shows how adverse yellow fever vaccine reaction can be associated with applying vaccines produced from attenuated viral strains.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[A vacina colombiana 17D, contém pelo menos quatro fenótipos, denominados pequeno (0.3 - 1.2 mm), médio (1.3 -2.1mm), grande (2.2 - 3.0mm) e extra grande (>3.1 mm). A composição e distribuição percentual destes fenótipos, variou entre lotes e ampolas do mesmo lote. Cada variante foi clonada por diluição da vacina e seu efeito viral foi analisado em ratos; o fenótipo da placa pequena, esteve ligeiramente sub-representado nos lotes analisados e mostrou uma virulência similar a da cepa silvestre neurotrópica francesa (LD50 >10-6), enquanto que, o fenótipo predominante e mais atenuado foi o médio (LD50:10-4). Os fenótipos grande e extra grande mostraram um estado viral intermediário (LD50:10-5) com relação aos anteriores. As análises da seqüência das variantes sobre uma região compreendida entre o extremo 3'NS5 e o início de 3'NCR, mostrou a proximidade entre aquelas variantes com algum grau de virulência, e entre a variante atenuada e a vacina colombiana. A heterogeneida-de da vacina 17D, constitui uma evidência da estrutura de qualquer espécie própria do vírus RNA e assinala como os casos de reações pós vacinação adversas, podem estar associadas com a aplicação das vacinas fabricadas a partir das cepas virais atenuadas.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p align="center"><font size="4"><b>CARACTERIZACI&Oacute;N BIOL&Oacute;GICA DE VARIANTES DE PLACA DE LA CEPA VACUNAL 17D CONTRA LA FIEBRE AMARILLA</b></font></p>     <p align="center"><font size="3"><b>BIOLOGICAL CHARACTERISATION OF YELLOW FEVER 17D STRAIN PLAQUE VARIANTS</b></font></p>     <p align="center"><font size="3"><b>CARACTERIZA&Ccedil;&Atilde;O BIOL&Oacute;GICA DAS VARIANTES DA PLACA CEPA DA VACINA 17D CONTRA A FEBRE AMARELA</b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p><i>Mar&iacute;a O. Rojas<sup>1,2</sup>, Marcela Camacho<sup>1,3</sup>, Mar&iacute;a V. Grosso<sup>1 </sup></i></p>     <p>1&nbsp;Facultad de Medicina, Universidad Militar Nueva Granada, Bogot&aacute;, Colombia. <a href="mailto:mariaorfarojas@yahoo.com">mariaorfarojas@yahoo.com</a></p>     <p>2&nbsp;Grupo de Bioqu&iacute;mica, Facultad de Medicina y de Ciencias Naturales y Matem&aacute;ticas, Universidad del Rosario, Bogot&aacute;, Colombia.</p>     <p>3&nbsp;Estudiante Programa de Maestr&iacute;a en Microbiolog&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia, sede Bogot&aacute;.</p> Recibido: 25/06/08 - Aceptado: 04/03/09     <p>&nbsp;</p> <hr>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>RESUMEN</b></p>     <p>La vacuna colombiana 17D contiene por lo menos cuatro fenotipos, denominados peque&ntilde;o (0,3-1,2 mm), mediano (1,3 -2,1 mm), grande (2,2 - 3,0 mm) y extra-grande (&gt;3,1 mm). La composici&oacute;n y distribuci&oacute;n porcentual de esos fenotipos variaron entre lotes y entre ampolletas de un mismo lote. Cada variante fue clonada por diluci&oacute;n de la vacuna y su efecto virulento fue analizado en ratones; el fenotipo de placa peque&ntilde;o estuvo ligeramente sub representado en los lotes analizados y mostr&oacute; una virulencia similar a la de la cepa silvestre neurotr&oacute;pica francesa (DL<sub>50</sub> &gt;10<sup>-6</sup>), mientras que el fenotipo predominante y m&aacute;s atenuado fue el mediano (DL<sub>50</sub>:10<sup>-4</sup>). Los fenotipos grande y extragrande mostraron una virulencia intermedia (DL <sub>50</sub>:10<sup>-5</sup>) con relaci&oacute;n a los anteriores. Los an&aacute;lisis de secuencia de las variantes sobre una regi&oacute;n comprendida entre el extremo 3'NS5 y el inicio de 3'NCR mostr&oacute; la cercan&iacute;a entre aquellas variantes con alg&uacute;n grado de virulencia, y entre la variante atenuada y la vacuna colombiana. La heterogeneidad de la vacuna 17D constituye una evidencia de la estructura de cuasiespecies propia de los virus RNA, y se&ntilde;ala c&oacute;mo los casos de reacciones pos vacunales adversas pueden estar asociados con la aplicaci&oacute;n de vacunas fabricadas a partir de cepas virales atenuadas.</p>     <p><b>Palabras clave: </b>virus <i>fiebre amarilla, </i>vacuna 17D, <i>flavivirus, </i>efectos adversos de la vacuna.</p> <hr>     <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p>The Colombian 17D vaccine contains at least four phenotypes denominated small (0.3 - 1.2 mm), medium (1.3 - 2.1 mm) large (2.2 - 3.0 mm) and extra-large (&gt;3.1 mm). These phenotypes composition and percentage distribution vary between different production lots and between ampoules from a particular lot. Each variant was cloned by diluting the vaccine and its virulent effect was analysed in young mice. The small plaque phenotype was slightly under represented in the lots analysed and showed similar virulence to the neurotropic French wild strain (LD<sub>50 </sub>&gt;10<sup>-6</sup>), whilst the medium- sized phe-notype predominated and was the most attenuated (LD<sub>50</sub>:10<sup>-4</sup>). The large and extra-large phenotypes showed intermediate virulence (LD<sub>50</sub>:10<sup>-5</sup>) regarding the others. Sequence analysis of variants within the region between the 3'NS5 end and the beginning of 3'NCR showed the closeness between those variants having some degree of virulence and between the attenuated variant and the Colombian vaccine. The 17D vaccine's heterogeneity constitutes evidence of RNA virus quasi-specie structure and shows how adverse yellow fever vaccine reaction can be associated with applying vaccines produced from attenuated viral strains.</p>     <p><b>Key words: </b><i>yellow fever virus, </i>17D vaccine, <i>Flavivirus, </i>adverse vaccine events.</p> <hr>     <p><b>RESUMO</b></p>     <p>A vacina colombiana 17D, cont&eacute;m pelo menos quatro fen&oacute;tipos, denominados pequeno (0.3 - 1.2 mm), m&eacute;dio (1.3 -2.1mm), grande (2.2 - 3.0mm) e extra grande (&gt;3.1 mm). A composi&ccedil;&atilde;o e distribui&ccedil;&atilde;o percentual destes fen&oacute;tipos, variou entre lotes e ampolas do mesmo lote. Cada variante foi clonada por dilui&ccedil;&atilde;o da vacina e seu efeito viral foi analisado em ratos; o fen&oacute;tipo da placa pequena, esteve ligeiramente sub-representado nos lotes analisados e mostrou uma virul&ecirc;ncia similar a da cepa silvestre neurotr&oacute;pica francesa (LD<sub>50</sub> &gt;10<sup>-6</sup>), enquanto que, o fen&oacute;tipo predominante e mais atenuado foi o m&eacute;dio (LD<sub>50</sub>:10<sup>-4</sup>). Os fen&oacute;tipos grande e extra grande mostraram um estado viral intermedi&aacute;rio (LD<sub>50</sub>:10<sup>-5</sup>) com rela&ccedil;&atilde;o aos anteriores. As an&aacute;lises da seq&uuml;&ecirc;ncia das variantes sobre uma regi&atilde;o compreendida entre o extremo 3'NS5 e o in&iacute;cio de 3'NCR, mostrou a proximidade entre aquelas variantes com algum grau de virul&ecirc;ncia, e entre a variante atenuada e a vacina colombiana. A heterogeneida-de da vacina 17D, constitui uma evid&ecirc;ncia da estrutura de qualquer esp&eacute;cie pr&oacute;pria do v&iacute;rus RNA e assinala como os casos de rea&ccedil;&otilde;es p&oacute;s vacina&ccedil;&atilde;o adversas, podem estar associadas com a aplica&ccedil;&atilde;o das vacinas fabricadas a partir das cepas virais atenuadas.</p>     <p><b>Palavras-chave: </b>v&iacute;rus <i>febre amarela, </i>vacina 17D, <i>flavivius, </i>efeitos adversos da vacina.</p> <hr>     <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La fiebre amarilla es una enfermedad viral que produce disfunci&oacute;n hep&aacute;tica y renal, choque circulatorio y hemorragia. El virus pertenece a la familia <i>flaviridae</i>,y su transmisi&oacute;n selv&aacute;tica y urbana en &aacute;reas subtropicales la efect&uacute;an mosquitos de los g&eacute;neros <i>hemagogus y Aedes aegypty, </i>respectivamente (1).</p>     <p>El virus parental de la fiebre amarilla fue aislado en Ghana en 1928 (2, 3) y atenuado por pases sucesivos en cultivo de tejidos de rat&oacute;n y de pollo, dando lugar a la cepa vacunal 17D (4), a partir de la cual se derivaron las subcepas 17D 204 y 17D.</p>     <p>Colombia fue uno de los pa&iacute;ses autorizados por la Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud (OMS) para producir la vacuna. Inicialmente, utiliz&oacute; como semilla la subcepa Colombia 88 derivada de la 17D 204; sin embargo, posteriormente el Instituto Nacional de Salud estuvo produciendo la vacuna hasta el a&ntilde;o 2003 a partir de una semilla importada de Biomanguin-hos, Brasil.</p>     <p>La vacuna viva atenuada desarrollada en 1937 por Theiler y Smith en la Fundaci&oacute;n Rockefeller (5) ha sido considerada como una de las m&aacute;s seguras y eficaces, con algunos casos espor&aacute;dicos de reacciones adversas (6) y un solo caso fatal en 1966 (7); sin embargo, entre 1996 y 2001 se reportaron 16 casos reconocidos como falla multisist&eacute;-mica asociada a la vacunaci&oacute;n (8-13); dos casos adicionales de enfermedad viscero-tr&oacute;pica (YEL-VD) y cuatro casos de enfermedad neurotr&oacute;pica (YEL-ND) fueron reportados en el a&ntilde;o 2002 (14); desde finales de los noventa hasta 2006, se han registrado en el mundo 36 casos de enfermedad visce-rotr&oacute;pica asociada a la aplicaci&oacute;n de la vacuna producida en diferentes pa&iacute;ses (15, 16), y como consecuencia la seguridad de la vacuna se comenz&oacute; a cuestionar (9, 12, 15, 17, 18).</p>     <p>El an&aacute;lisis de los informes de vigilancia pos-vacunal en Europa despu&eacute;s de la distribuci&oacute;n de m&aacute;s de tres millones de dosis de ARILVAX<sup>TM</sup> permiti&oacute; conocer que entre 1991 y 2001 se presentaron cuatro casos de efectos adversos relacionados con viscerotropismo y cuatro con neurotropismo (19); posteriormente, se inform&oacute; un caso de enfermedad vis-cerotr&oacute;pica en una mujer joven, quien muri&oacute; despu&eacute;s de haber sido vacunada con la subcepa 17D 204 en Espa&ntilde;a (18).</p>     <p>Mientras la enfermedad neurotr&oacute;pica asociada a la vacunaci&oacute;n ha sido reconocida desde hace 60 a&ntilde;os, la enfermedad viscerotr&oacute;pica s&oacute;lo lo ha sido muy recientemente (15, 18-20).</p>     <p>Lo anterior sugiere que no se puede desconocer una relaci&oacute;n directa entre la vacuna misma y sus efectos adversos, y que el n&uacute;mero de casos muy seguramente est&aacute; subestimado por falta de control pos-vacunal.</p>     <p>La mayor&iacute;a de los investigadores considera que los efectos adversos asociados a la vacuna est&aacute;n ligados a factores gen&eacute;ticos o a reacciones idiosincr&aacute;ticas del hu&eacute;sped (9, 12, 21, 22); sin embargo, nosotros pensamos que la heterogeneidad de la vacuna (23-26) es un factor importante que debe ser considerado.</p>     <p>Aunque Liprandi mencion&oacute; que la cepa utilizada en Suram&eacute;rica era homog&eacute;nea en cuanto a sus caracter&iacute;sticas fenot&iacute;picas (23), no hay datos reportados hasta la fecha. En este estudio, se caracteriz&oacute; biol&oacute;gicamente (tama&ntilde;o en placa, virulencia en ratones y secuencia gen&oacute;mica) la vacuna producida en Colombia, como un primer paso para validar la hip&oacute;tesis que se plantea sobre el compromiso de la preparaci&oacute;n vacunal con los problemas que est&aacute; produciendo.</p>     <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS </b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>C&eacute;lulas y virus</b></p>     <p>Para el cultivo del virus se utilizaron c&eacute;lulas Vero (ATCC - CCL 81); paralos an&aacute;lisis morfol&oacute;gicos del virus se parti&oacute; de ampolletas liofilizadas procedentes de los lotes 685 y 771 producidos en el Instituto Nacional de Salud (INS) en los a&ntilde;os 1998 y 2000, respectivamente. La vacuna procedente del lote 685, considerada como de referencia por el INS, ten&iacute;a un t&iacute;tulo de 1,7x10<sup>6</sup> UFP/mL y la del lote 771, 1,9x10<sup>4</sup>UFP/mL.</p>     <p>Las cepas silvestres Neurotr&oacute;pica francesa (B-569) y Asibi (B-570) se emplearon como controles positivos de crecimiento e infecci&oacute;n viral, tanto en los experimentos de an&aacute;lisis morfol&oacute;gicos como en los de virulencia en ratones.</p>     <p><b>Infecci&oacute;n y detecci&oacute;n del virus</b></p>     <p>B&aacute;sicamente se utiliz&oacute; el mismo m&eacute;todo recomendado por la Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud para probar la potencia de la vacuna (27). Brevemente, los cultivos confluentes de c&eacute;lulas Vero (c&eacute;lulas de ri-&ntilde;&oacute;n de mono), se crecieron en cajas de Petri de 90 mm<sup>2</sup> o en cajas de cultivo de 24 pozos, y se inocularon con la suspensi&oacute;n viral (1 mL y 100 ,&laquo;L, respectivamente). Despu&eacute;s de permitir la adsorci&oacute;n del virus por 1 h a 37 <sup>o</sup>C en una atm&oacute;sfera de 5% de CO2, la monocapa de c&eacute;lulas se cubri&oacute; con 10 mL de 0,5% de agarosa (Sigma A4018) en medio M-199 (Gibco- BRL) suplementado con 4% de suero fetal bovino (SFB). Despu&eacute;s de 8 d&iacute;as de incubaci&oacute;n, las c&eacute;lulas se fijaron por 30 minutos con formal-dehido al 8% y se ti&ntilde;eron con cristal violeta al 1% en metanol al 70%.</p>     <p><b>An&aacute;lisis morfol&oacute;gico de la subcepa vacunal colombiana</b></p>     <p>De cada lote de producci&oacute;n constituido por 10.000 ampolletas, se analizaron 25 escogidas aleatoriamente (n = 25) mediante el programa estad&iacute;stico Statistical Analisis System (SAS), fijando un nivel de confianza de 90% y una prevalencia de 0,9. Cada ampolleta se resuspendi&oacute; en 1 mL de medio M-199, se diluy&oacute; hasta 1024 (factor 1:4) con el mismo medio, y se inocul&oacute; sobre c&eacute;lulas Vero confluentes en cajas de Petri de 90 mm, las cuales se cultivaron como se describi&oacute; anteriormente. Como control positivo de infecci&oacute;n se utiliz&oacute; la cepa silvestre Asibi (B-570), y como control de crecimiento celular se utilizaron monocapas de c&eacute;lulas Vero sin infectar. El di&aacute;metro en mm de las placas virales se midi&oacute; a trav&eacute;s de un estereoscopio Zeiss (Stem 2006, objetivo 10X, zoom 1X) equipado con una re-glilla en el ocular; para el an&aacute;lisis de los datos se utiliz&oacute; el programa SAS.</p>     <p><b>Aislamiento de las variantes y confirmaci&oacute;n de tama&ntilde;os</b></p>     <p>El aislamiento de las variantes de placa a partir de la vacuna se hizo por diluci&oacute;n l&iacute;mite hasta obtener placas individuales; la vacuna fue resuspendida en 1 mL de medio M-199, y diluida serialmente (factor 1:4), como recomienda el protocolo de la OMS para la determinaci&oacute;n de la potencia de la vacuna (27). De la diluci&oacute;n 1:4096, se utilizaron por duplicado 25, 50 y 100 <i>&micro;</i>L en cada ensayo.</p>     <p>Despu&eacute;s de 8 d&iacute;as de cultivo, se separ&oacute; el sobrenadante de cada pozo y se mantuvo en hielo hasta definir la presencia de una sola placa, por coloraci&oacute;n con cristal violeta. Los sobrenadantes de los cultivos con placas individuales (<a href="#f1">Figura 1</a>), fueron crio-preservados en DMSO al 7%, FSB al 10%, por 1 hora a 4 <sup>o</sup>C, seguido de 1 hora a -20 <sup>o</sup>C, y finalmente almacenados a -70 <sup>o</sup>C. Siguiendo el criterio de Liprandi (23), cuando la infectividad de los cultivos mostr&oacute; placas individuales (<a href="#f1">Figura 1</a>), los sobrenadantes se consideraron &quot;variantes purificadas&quot;. Para confirmar los rangos de tama&ntilde;o, cada variante se pas&oacute; una vez en cultivo siguiendo el procedimiento ya descrito.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="f1"><img src="img/revistas/rcq/v38n1/v38n1a01-1.jpg"></a></p>     <p><b>Pruebas de virulencia</b></p>     <p>Siguiendo las recomendaciones de la OMS, se utilizaron familias de seis ratones (cepa ICR Swiss albino), hembras de cuatro semanas, las cuales fueron inoculadas intracranealmente y por duplicado con 0,02 mL de las diluciones 10<sup>-4</sup>,10<sup>-5</sup> y 10<sup>-6</sup> de cada variante. Se utilizaron t&iacute;tulos del orden de 10<sup>6</sup> UFP/mL. Adem&aacute;s de los controles de infecci&oacute;n, se utiliz&oacute;, como control de inocuidad, una mezcla del medio criopreservante (DMSO, SFB, medio M-199) y BSA (diluyente de la cepa silvestre liofilizada), y como control negativo se mantuvo una familia de seis ratones sin infectar.</p>     <p>Durante 21 d&iacute;as se control&oacute; la aparici&oacute;n de s&iacute;ntomas de la enfermedad (postraci&oacute;n, adinamia, p&eacute;rdida de peso, temblor, incordinaci&oacute;n motora y par&aacute;lisis de miembros posteriores), as&iacute; como el n&uacute;mero de ratones muertos. Se calcul&oacute; la dosis letal 50 (DL<sub>50</sub>) utilizando el m&eacute;todo de Reed and Muench (28), y se estableci&oacute; la significancia estad&iacute;stica de los resultados mediante la prueba de comparaci&oacute;n de medias de Tukey (29).</p>     <p><b>Obtenci&oacute;n de RNA viral</b></p>     <p>La extracci&oacute;n y purificaci&oacute;n del RNA viral se hizo utilizando el Kit High Pure Viral Nucleic Acid (ROCHE), de acuerdo con las recomendaciones del fabricante. Brevemente, se tomaron 200 <i>&micro;</i>L de la preparaci&oacute;n viral y se mezclaron con 200 <i>&micro;</i>L de soluci&oacute;n de lisis (6 M guanidina HCl, urea 10 mM, Tris-HCl 10 mM, triton X100 20%, 4mg/mL poli A-RNA) y 1,8 mg/mL de proteinasa K. La mezcla, se incub&oacute; a 72 <sup>o</sup>C por 10 minutos, se mezcl&oacute; con 100<i>&micro;</i>L de isopropanol al 100% y se filtr&oacute; a trav&eacute;s de una membrana de fibra de vidrio permitiendo un tiempo de contacto de un minuto. Se centrifug&oacute; a 8000xg por 1 minuto y se lav&oacute; una vez con 500 <i>&micro;</i>L<i> de </i>tris-HCl 20 mM, guanidina HCl 5 M, pH 6,6, y dos veces con 450 <i>&micro;</i>L de NaCl 20 mM, Tris HCl 2 mM, pH 7,5. El RNA, se eluy&oacute; con agua libre de nucleasas y se congel&oacute; a -70 <sup>o</sup>C.</p>     <p><b>Amplificaci&oacute;n y an&aacute;lisis de secuencias espec&iacute;ficas</b></p>     <p>Los genes completos de las prote&iacute;nas E y NS4A, y parte de la prote&iacute;na NS5 y de la regi&oacute;n 3' no codificadora (fragmento CS2), se amplificaron utilizando las secuencias iniciadoras que aparecen en la <a href="#t2">Tabla 2</a>. Para la transcripci&oacute;n reversa y la s&iacute;ntesis de cDNA, se us&oacute; el Kit ThermoS-cript<sup>TM</sup> RT-PCR System (Invitrogen). Se tomaron 0,5 <i>&micro;</i>L de la preparaci&oacute;n de RNA obtenida a partir de 10<sup>6</sup> UFP/mL; para la prote&iacute;na E, se us&oacute; como iniciador un E antisentido, y para NS4A y el fragmento CS2, hex&aacute;meros construidos al azar (provistos por el kit).</p>     <p align="center"><a name="t1"><img src="img/revistas/rcq/v38n1/v38n1a01-2.jpg"></a></p>     <p align="center"><img src="img/revistas/rcq/v38n1/v38n1a01-3.jpg"></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="t2"><img src="img/revistas/rcq/v38n1/v38n1a01-4.jpg"></a></p>     <p>Las reacciones de PCR se realizaron utilizando 2 <i>&micro;</i>L de la preparaci&oacute;n de cDNA, 1,5u DNA polimerasa (High Platinum Taq Polimerasa, Invitrogen), 2,5 mM de MgSO<sub>4</sub>,0,2 <i>&micro;</i>M de cada uno de los iniciadores espec&iacute;ficos y 5 <i>&micro;</i>Lde soluci&oacute;n tamp&oacute;n (600 mM Tris-SO4 pH 8,9, 180 mM sulfato de amonio). La de-naturaci&oacute;n inicial fue a 94 <sup>o</sup>C por 5 minutos, seguida de 30 ciclos de amplificaci&oacute;n (95 <sup>o</sup>Cpor1min,54o62<sup>o</sup>C, por 1 miny72<sup>o</sup>C por 1,5 min) y de una extensi&oacute;n a 72 &deg;C por 5 minutos. Los productos de amplificaci&oacute;n se separaron por electroforesis en geles de agarosa (sigma 9539) al 1%, se purificaron y se secuen-ciaron en ambos sentidos con los mismos iniciadores utilizados en las reacciones de PCR y mediante un sistema comercial (MACROGEN Inc.).</p>     <p>Las secuencias de nucle&oacute;tidos de los genes E, NS4A y la regi&oacute;n 3'NCR fueron comparadas con las reportadas para cepas prototipo de fiebre amarilla: Asibi (Gen Bank K02749) y 17DD (Gen Bank U17066) por alineamientos m&uacute;ltiples con el programa Clustal W 1.6 (30). Los par&aacute;metros de alineamiento fueron por defecto, de acuerdo con lo preestablecido por el programa. La secuencia deducida de amino&aacute;cidos se obtuvo mediante el programa TransSeq de EMBOSS, e igualmente se compararon con las reportadas para las cepas parentales.</p>     <p>Las diferencias de secuencia entre las poblaciones derivadas de la vacuna con las cepas Asibi y 17D original, se analizaron mediante algoritmos UPGMA (Mega 2 program) (31) construidos con base en una secuencia de 302 nucle&oacute;tidos del extremo 3'terminal del gen NS5, seguida de 375 nucle&oacute;tidos de la regi&oacute;n 3' no codificadora (fragmento CS2) para las cuatro variantes de placa.</p>     <p>La distancia gen&eacute;tica se determin&oacute; por el m&eacute;todo de la distancia proporcional (Dis-tancia-p) dando igual peso a las transiciones y transversiones para las tres posiciones del cod&oacute;n. La construcci&oacute;n de los &aacute;rboles filogen&eacute;ticos se hizo de acuerdo con Saitou, 1987 (32).</p>     <p><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></p>     <p><b>Caracterizaci&oacute;n morfol&oacute;gica de la semilla vacunal 17D</b></p>     <p>El cultivo <i>in vitro </i>del virus procedente de los dos lotes de vacuna producidos en Colombia mostr&oacute; placas de lisis de tama&ntilde;os diferentes, lo cual indica la presencia de por lo menos cuatro variantes fenot&iacute;picas; el di&aacute;metro en mm de las placas vari&oacute; entre 0,3 y 4,0 mm. Seg&uacute;n los an&aacute;lisis estad&iacute;sticos, la distribuci&oacute;n por tama&ntilde;o de esas variantes en la vacuna fue heterog&eacute;nea y permiti&oacute; distinguir placas peque&ntilde;as (0,3-1,2 mm), medianas (1,3-2,1 mm), grandes (2,2-3,0 mm) y extra-grandes (&gt;3,1 mm). La composici&oacute;n porcentual de cada variante fue diferente por lote, entre lotes y aun entre ampolletas del mismo lote (<a href="#f2">Figuras 2</a> y <a href="#f3">3</a>).</p>     <p align="center"><a name="f2"><img src="img/revistas/rcq/v38n1/v38n1a01-5.jpg"></a></p>     <p align="center"><a name="f3"><img src="img/revistas/rcq/v38n1/v38n1a01-6.jpg"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El tama&ntilde;o de cada variante fue confirmado por re-infecci&oacute;n de c&eacute;lulas Vero. Con las variantes peque&ntilde;as y extra-grandes, el tama&ntilde;o de las variantes obtenidas despu&eacute;s de un solo pase en cultivo correspondi&oacute; al establecido previamente (<a href="#t1">Tabla 1</a>). Con las placas grandes, la progenie correspondi&oacute; a una mezcla de placas medianas y peque&ntilde;as, y a su vez el fenotipo de placas medianas origin&oacute; una mezcla de placas grandes y peque&ntilde;as, cuyo porcentaje fue variable en los diferentes ensayos (<a href="#t1">Tabla 1</a>); sin embargo, en todos los casos hubo un predominio superior al 50% del fenotipo inicialmente definido.</p>     <p>En 1981, Liprandi hab&iacute;a reportado la presencia de variantes de placa en las preparaciones 17D Inglesa y Surafricana, las cuales difer&iacute;an en virulencia, y hab&iacute;a se&ntilde;alado que la cepa usada en Suram&eacute;rica ten&iacute;a una distribuci&oacute;n homog&eacute;nea en cuanto al tama&ntilde;o de placa (23). Sin embargo, en este estudio, en dos lotes de la vacuna que se produjo en Colombia con una diferencia de dos a&ntilde;os, se demostr&oacute; que existen por lo menos cuatro variantes fenot&iacute;picas representadas por diferentes tama&ntilde;os de placa producidos en cultivo <i>in vitro, </i>que van desde muy peque&ntilde;as a extra-grandes de acuerdo con los rangos establecidos.</p>     <p>Los rangos de tama&ntilde;o reportados por Liprandi para la subcepa 17D son similares a los encontrados en la vacuna colombiana, mas no la composici&oacute;n porcentual, la cual es diferente entre los dos lotes analizados (<a href="#t3">Tabla 3</a>); el fenotipo predominante en las cepas 17D analizadas por Li-prandi fue el grande (23), mientras que en la vacuna colombiana fue el mediano.</p>     <p align="center"><a name="t3"><img src="img/revistas/rcq/v38n1/v38n1a01-7.jpg"></a></p>     <p>Adicionalmente, en la vacuna colombiana se advirti&oacute; la presencia de un fenotipo de mayor tama&ntilde;o (&gt;3,1 mm) no reportado anteriormente, que se reconoci&oacute; como tal bajo un estricto control de las condiciones de cultivo, para descartar la posibilidad de artefactos experimentales.</p>     <p>Despu&eacute;s de casi tres d&eacute;cadas desde las primeras observaciones de Liprandi, y a pesar de los reportes de estabilidad de las cepas vacunales, no se puede descartar que esta poblaci&oacute;n corresponda a una variante seleccionada del virus o a un producto de mutaciones en el genoma (23, 33), que desde luego tendr&iacute;a que comprobarse por otros estudios.</p>     <p>La gran variabilidad encontrada en la distribuci&oacute;n y composici&oacute;n viral entre ampolletas de un mismo lote (<a href="#f3">Figura 3</a>), fue evidente en 84% de las ampolletas analizadas. Es importante se&ntilde;alar que aunque en los dos lotes predomin&oacute; ligeramente la variante de placa m&aacute;s atenuada (fenotipo mediano) (<a href="#f2">Figuras 2</a> y <a href="#f3">3</a>), en algunas ampolletas (Nos. 1, 3, 7, 8 y 12) (<a href="#f3">Figura 3</a>) la variante m&aacute;s virulenta (fenotipo de placa peque&ntilde;a) mostr&oacute; el mayor crecimiento con respecto a las otras. Estos resultados establecen la posibilidad de que en el hu&eacute;sped pueda llevarse a cabo una selecci&oacute;n preferencial de alguna de esas poblaciones que por sus caracter&iacute;sticas biol&oacute;gicas potencie la enfermedad, lo cual explicar&iacute;a por qu&eacute; con los mismos lotes se pueden obtener respuestas diferentes en individuos susceptibles vacunados con &quot;la misma preparaci&oacute;n&quot;. Sin embargo, para confirmar esta hip&oacute;tesis es preciso continuar con la caracterizaci&oacute;n de las subcepas virales utilizadas en la fabricaci&oacute;n de la vacuna.</p>     <p>En el proceso de aislamiento y confirmaci&oacute;n de tama&ntilde;os de las variantes, en algunos casos aparecieron poblaciones mezcladas, posiblemente como resultado de fallas en el procedimiento de aislamiento m&aacute;s que de mutaciones ocurridas durante la amplificaci&oacute;n en cultivo (<a href="#t1">Tabla 1</a>).</p>     <p><b>Neurovirulencia en ratones de las variantes de placa</b></p>     <p>Para los ensayos de virulencia se utilizaron aquellas placas que en el primer pase en cultivo dieron una progenie fenot&iacute;pica-mente igual a la de origen (<a href="#t1">Tabla 1</a>, sombreados en gris). Las variantes virales presentaron t&iacute;tulos en un rango entre 10<sup>6</sup>y 10<sup>8</sup> UFP/mL, correspondiendo los m&aacute;s bajos al fenotipo de placa peque&ntilde;a y el m&aacute;s alto al mediano. Para los otros dos fenotipos, los t&iacute;tulos fueron similares (10<sup>6</sup> a 10<sup>8</sup> UFP/mL). Espor&aacute;dicamente se obtuvieron t&iacute;tulos por debajo de 10<sup>4</sup> UFP/mL o por encima de 10<sup>9</sup> UFP/mL.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La obtenci&oacute;n de t&iacute;tulos mayores en la poblaci&oacute;n atenuada con respecto a la virulenta, en la cual el crecimiento mostr&oacute; un orden de magnitud menor, puede estar relacionada con la generaci&oacute;n de part&iacute;culas defectuosas durante la replicaci&oacute;n.</p>     <p>En los ratones inoculados con la cepa silvestre, al cuarto d&iacute;a se observaron los primeros s&iacute;ntomas de decaimiento, inactividad, postraci&oacute;n, p&eacute;rdida del apetito, erizado del pelaje (pilorizaci&oacute;n), en algunos casos temblores, incoordinaci&oacute;n motora, afecci&oacute;n de los ojos y hasta par&aacute;lisis de uno de los miembros posteriores. Al quinto d&iacute;a, empezaron a producirse las muertes, y al octavo, ya hab&iacute;an fallecido todos.</p>     <p>Generalmente, al sexto d&iacute;a de inoculaci&oacute;n, se presentaron los primeros s&iacute;ntomas de enfermedad, como inapetencia y pilorizaci&oacute;n; el fenotipo de placa peque&ntilde;a exacerb&oacute; los s&iacute;ntomas al s&eacute;ptimo d&iacute;a, generando postraci&oacute;n, temblor e incoordinaci&oacute;n motora, y produciendo las primeras muertes al octavo d&iacute;a, en una mayor proporci&oacute;n que para las otras variantes. Esta tendencia de mayor letalidad (83%) se mantuvo durante los d&iacute;as siguientes, hasta que pr&aacute;cticamente se elimin&oacute; 80% de los animales. Los fenotipos de tama&ntilde;o grande y extra-grande mostraron un comportamiento muy similar (58% y 51%, respectivamente) mientras que el de placa mediana fue el m&aacute;s benigno permitiendo s&iacute;ntomas leves y una menor letalidad (35%). La comprobaci&oacute;n de estos resultados mediante un segundo experimento mostr&oacute; tendencias similares.</p>     <p>Los ratones de los controles negativos, una vez terminado el experimento, fueron retados con la cepa silvestre para confirmar su susceptibilidad al virus de la fiebre amarilla, obteni&eacute;ndose una mortalidad de 100% entre el d&iacute;a quinto y octavo despu&eacute;s del reto. Los controles de inocuidad permanecieron normales.</p>     <p>En la <a href="#t4">Tabla 4</a> se muestran los valores calculados de DL<sub>50</sub>. Los m&aacute;s altos (10<sup>-4</sup>) correspondieron a la variante de tama&ntilde;o mediano, y los m&aacute;s bajos (10<sup>-6</sup>) a la de tama&ntilde;o peque&ntilde;o, mientras que para el extra-grande y el grande estuvieron en el mismo orden de magnitud (10<sup>-5</sup>). Las diferencias en la virulencia as&iacute; calculadas (m&eacute;todo de Reed and Muench) fueron estad&iacute;sticamente significativas, lo cual permiti&oacute; establecer tres categor&iacute;as de virulencia: atenuada (variante mediana), virulenta (variante peque&ntilde;a) y medianamente virulenta (variantes grande y extragrande).</p>     <p align="center"><a name="t4"><img src="img/revistas/rcq/v38n1/v38n1a01-8.jpg"></a></p>     <p>Puesto que los virus del g&eacute;nero <i>flavivirus, </i>familia <i>Flaviviridae, </i>son generalmente neurotr&oacute;picos y exhiben varios grados de neurovirulencia en roedores y en primates (33, 34), es posible distinguir diferencias entre las cepas del virus de la fiebre amarilla, precisamente con base en esas caracter&iacute;sticas. La Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud apoyada en esos criterios, establece los procedimientos para los estudios de potencia y la determina-ci&oacute;ndelaDL50delavacuna, dentrodelos cuales, la utilizaci&oacute;n de familias de animales, as&iacute; como el n&uacute;mero para utilizar por experimento est&aacute;n indicados; aqu&iacute;, se establecieron las diferencias en virulencia entre las variantes encontradas en la vacuna colombiana, siguiendo esas directrices (27, 33, 34).</p>     <p>Con la utilizaci&oacute;n de las progenies que en un solo pase en cultivo generaron los tama&ntilde;os predeterminados para cada una de ellas, se busc&oacute; asegurar que la patolog&iacute;a provocada en el hu&eacute;sped correspondiera a cada variante espec&iacute;fica, y con el manteniendo de los mismos t&iacute;tulos para todas se quiso asegurar que el efecto virulento no estuviera influido por la cantidad de virus inoculado.</p>     <p>Los resultados de dos experimentos permitieron establecer que el fenotipo de placa mediana se comport&oacute; en forma similar al virus vacunal, el de placa peque&ntilde;a a la cepa silvestre, mientras que los grandes y extra-grandes tuvieron un comportamiento intermedio entre los anteriores.</p>     <p>En los dos lotes analizados hubo un ligero predominio del fenotipo atenuado; sin embargo, es importante tener en cuenta que la variante m&aacute;s virulenta, aunque solo represent&oacute; 20% de la poblaci&oacute;n viral total, no se debe considerar despreciable, m&aacute;xime si se tiene en cuenta que laposibi-lidad de selecci&oacute;n preferencial durante la replicaci&oacute;n del virus puede ser favorecida por el hu&eacute;sped en virtud de su idiosincrasia. Esto podr&iacute;a ser una causa potencial de los problemas adversos de la aplicaci&oacute;n de una vacuna heterog&eacute;nea como la que se tiene hasta el momento.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Amplificaci&oacute;n de regiones espec&iacute;ficas y an&aacute;lisis de secuencia</b></p>     <p>El an&aacute;lisis de secuencia de cada variante de placa se hizo sobre tres regiones del genoma, en las cuales se han reportado eventos de mutaci&oacute;n asociados con atenuaci&oacute;n/virulencia (35-40). Los tres fragmentos de DNA amplificados para los genes de las prote&iacute;nas E, NS4 y la regi&oacute;n NS5-3'NCR (CS2) correspondieron en tama&ntilde;o a lo esperado para las variantes analizadas. Las comparaciones de secuencia de nucle&oacute;tidos y su respectiva secuencia de amino&aacute;cidos, deducida de la secuencia de las prote&iacute;nas E y NS4A, no evidenciaron cambios entre la vacuna colombiana y las cuatro variantes fenot&iacute;picas aisladas. La regi&oacute;n denominada CS2, constituida por la porci&oacute;n terminal del gen de la prote&iacute;na no estructural NS5 y parte de la regi&oacute;n 3'no codificadora (41), permiti&oacute; encontrar diferencias en el agru-pamiento de las variantes derivadas de la vacuna colombiana, que se muestran en la <a href="#f4">Figura 4</a>.</p>     <p align="center"><a name="f4"><img src="img/revistas/rcq/v38n1/v38n1a01-9.jpg"></a></p>     <p>Los alineamientos m&uacute;ltiples para los genes E y NS4, no mostraron mutaciones que pudieran asociarse con reversi&oacute;n a virulencia, como se hubiera esperado especialmente para las variantes de placa peque&ntilde;a.</p>     <p>El hecho de que la secuencia de la vacuna colombiana, al igual que la de otras vacunas, corresponda al promedio de todas las variantes que contienen, disminuye la posibilidad de encontrar diferencias entre ellas despu&eacute;s de su aislamiento. Sin embargo, no se puede descartar que haya cambios en otras regiones del genoma que expliquen el comportamiento virulento o atenuado de las variantes, y por ello proponemos continuar los estudios sobre otros genes y sobre el material aislado de los ratones despu&eacute;s de la infecci&oacute;n.</p>     <p>Los an&aacute;lisis de distancias gen&eacute;ticas obtenidos para las variantes de placa, las cepas parentales (Asibi y 17D) y la vacuna colombiana (<a href="#f4">Figura 4A</a>), muestran un agrupamiento entre ellas de acuerdo con su efecto virulento en ratones y la cercan&iacute;a con la vacuna colombiana. La separaci&oacute;n entre la cepa parental Asibi y la vacuna 17D original (tomada de la literatura) se mantiene como era de esperarse. El an&aacute;lisis molecular de las cuatro variantes de placa presentes en la vacuna colombiana basado en el fragmento CS2 muestra las distancias que existen entre ellas, el agrupamiento alrededor de la vacuna colombiana analizada y la lejan&iacute;a que han ido ganando con respecto a la preparaci&oacute;n original (<a href="#f4">Figura 4</a>), lo cual podr&iacute;a asociarse con la aparici&oacute;n de nuevos fenotipos.</p>     <p>Vale la pena destacar que en los dos casos, la variante atenuada est&aacute; m&aacute;s cerca de la cepa vacunal que aquella que present&oacute; la mayor virulencia en ratones. El hecho de que los fenotipos atenuados (CS2-63-1 y CS2- 79-1) est&eacute;n m&aacute;s cercanos a la vacuna que aquellos con alg&uacute;n grado de virulencia, establece la posibilidad de trabajar en la selecci&oacute;n de variantes con caracter&iacute;sticas &oacute;ptimas que puedan sustituir la semilla heterog&eacute;nea actual y evitar posiblemente los problemas que est&aacute; originando. Desde luego, debe tenerse especial cuidado en escoger variantes que conserven la eficacia de la vacuna actual, de tal forma que pueda obviarse el argumento de mantener la heterogeneidad para preservar la eficacia de acuerdo con lo expuesto por Barret (42).</p>     <p><b>CONCLUSIONES</b></p>     <p>1. Sedemostr&oacute;quelacepavacunaluti-lizada para la fabricaci&oacute;n de la vacuna colombiana contra la fiebre amarilla posee por lo menos cuatro variantes fenot&iacute;pica-mente diferenciadas por el tama&ntilde;o de placa producido en cultivo <i>in vitro.</i></p>     <p>2. Se defini&oacute; un fenotipo de gran tama&ntilde;o (placas extra-grandes) presente en los dos lotes analizados, no reportado anteriormente.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>3. Se demostr&oacute; una correlaci&oacute;n con significancia estad&iacute;stica entre las variantes aisladas y su efecto de virulencia en ratones, lo cual sugiere que la heterogeneidad de la vacuna puede ser un factor determinante en la aparici&oacute;n de efectos adversos, debido a la posibilidad de amplificaci&oacute;n selectiva de una variante por un hu&eacute;sped determinado.</p>     <p><b>AGRADECIMIENTOS</b></p>     <p>Este trabajo fue financiado por la Universidad Militar Nueva Granada, el Banco de la Rep&uacute;blica (Contrato No. 200229), la Universidad del Rosario y Aventis Pasteur Colombia.</p>     <p><b>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</b></p>     <!-- ref --><p>1. Burke, D. S.; Monath, T. P. Flavivi-ruses. In: D. M. Knipe, P. M. How-ley, D. E. Griffin, R. A. Lamb, M. A. Martin, B. Roizman, S. E. Straus (Eds.). Fields Virology. 2001. pp. 1043-1126.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-2804200900010000100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Stokes, A.; Bauer, J. H.; Hudson, N. P. The transmition of yellow fever to <i>Macacus rhesus, </i>preliminary note. <i>J. A. Med Assoc. </i>1928. <b>90: </b>253-254.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-2804200900010000100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Mathis, C.; Sellards, A. W.; Lai-gret, J. Sensibilit&eacute; du <i>Macaca rhesus </i>au virus de la fi&egrave;vre jaune. <i>Comptes Rendus deL'Academie des Sciences. </i>1928. <b>188: </b>604-606.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-2804200900010000100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Lloyd, W.; Theiler, M.; Ricci, N. I. Modification of the virulence of yellow fever virus by cultivation in tissues. <i>Trans. R. Soc. Trop. Med. and Hygiene. </i>1936. <b>29: </b>481-529.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-2804200900010000100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Theiler, M.; Smith, H. H. The use of yellow fever virus modified by <i>in vitro </i>cultivation for human immunization. <i>J. Exp. Med. </i>1937. <b>65: </b>787-800.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-2804200900010000100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Stuart, T. Reactions following vaccination against yellow fever. <i>Yellow fever vaccination. World Health Organization Monograph Series </i>No. 30. 1956. pp. 143-189.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-2804200900010000100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Anonymus. Fatal virus encephalitis following 17D yellow fever vaccine inoculation. <i>J. Am. Med. Assoc. </i>1966. <b>198: </b>671-672.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-2804200900010000100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Adhiyaman, V.; Oke, A.; Cefai, C. Effects of yellow fever vaccination. <i>Lancet </i>2001. <b>358: </b>1907-1908.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-2804200900010000100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Chang, R. C.; Penny, D. J.; Little, D.; Caarter, I. W.; Roberts, J. A. et al. Hepatitis and death following vaccination with 17D-204 yellow fever vaccine. <i>Lancet </i>2001. <b>358:</b> 121-126.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-2804200900010000100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Martin, M.; Tsai, T. F.; Cropp, B.; Chang, G.-J. J.; Holmes, D. A. etal. Fever and multisystem organ failure associated with 17D-204 yellow fever vaccination: a report of four cases. <i>Lancet </i>2001. <b>358: </b>98-104.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-2804200900010000100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Troillet, N.; Laurencet, F. Effects of yellow fever vaccination. <i>Lancet </i>2001. <b>358: </b>1908-1909.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-2804200900010000100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Vasconcelos, P. F. C.; Luna, E. J.; Galler, R.; Silva, L. J.; Coimbra, T. L. et al. Serious adverse events associated with yellow fever 17D vaccine in Brazil: a report of two cases. <i>Lancet </i>2001. <b>358: </b>91-97.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-2804200900010000100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Werfel, U.; Popp, W. Effects of yellow fever vaccination. <i>Lancet </i>2001 <i>. </i><b>358: </b>1909.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-2804200900010000100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Levy, S.; Mullane, K.; Millar, M. et al. Adverse events associated with 170 derived yellow fever vaccination. <i>United Status, MMWR. </i>2002. <b>51: </b>983-989.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-2804200900010000100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Belsher J.; Gay, P.; Brinton, M.; Della Valla, J.; Didenour, R. et al. Fatal multiorgan failure due to yellow fever vaccine-associated visce-rotropic disease. <i>Vaccine. </i>2007. <b>25:</b> 8480-8485.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-2804200900010000100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. Vellozzi, C.; Mitchell, T.; Miller, E. et al. Yellow fever vaccine associated viscetropic disease (YEL-AVD) and corticosteroid therapy: eleven United States case, 1996-2004. <i>Am. J. Trop. Med. Hyg.</i> 2006. <b>75</b>(2): 333-336.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0120-2804200900010000100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. Marianneau, P.; Georges-Courbot, M.-C.; Deubel, V. Rarity ofadverse effects of 17D yellow fever vaccination. <i>Lancet. </i>2001. <b>358: </b>84-85.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-2804200900010000100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. Doblas, A.; Domingo, C.; Bae, H. G.; Boh&ocirc;rquez, C. L.; Ory, F. de; Niedrig, M.; Mora, D.; Carrasco, F. J.; Tenorio, A. Yellow fever vaccine-associated viscerotropic disease and death in Spain. <i>Journal of Clinical Virology. </i>2006. <b>36</b>(2): 156-158.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0120-2804200900010000100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Kitchener, S. Viscerotropic and neurotropic disease following vaccination with the 17D yellow fever vaccine, ARILVAX. <i>Vaccine. </i>2004. <b>22: </b>2103-2105.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0120-2804200900010000100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. Engel, A.; Vasconcelos, F.; McArthur, M. and Barret, A. Characterization of a viscerotropic yellow fever vaccine variant from a patient in Brazil. <i>Vaccine. </i>2006. <b>24</b>(15): 2803-2809.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0120-2804200900010000100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. Galler, K. V.; Pugachev, et &aacute;l. Phe-notypic and molecular analysis ofye-llow fever 17D vaccine viruses associated with seriuos adverse events in Brazil. <i>Virology. </i>2001. <b>290:</b> 309-319.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0120-2804200900010000100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22. Monat, T. P.; Cetron, M. S.; McCarthy, K. et &aacute;l. Yellow fever vaccine safety an immunogenicity in the eldery. <i>Human vaccine. </i>2005. <b>1</b>(15): 207-214.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0120-2804200900010000100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. Liprandi, F. Isolation of plaque variants differing in virulence from the 17D strain of yellow fever virus. <i>J. Gen. Virol. </i>1981. <b>56: </b>363-370.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0120-2804200900010000100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24. Post, P.; Santos, C.; Carvalho, R.; Lopes, O.; Galler, R. Molecular analisis of yellow fever virus 17D vaccine strain. <i>Mem. Inst. Oswaldo Cruz. </i>1991. <b>86</b>(2): 239-246.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0120-2804200900010000100024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25. Galler, R.; Post, P.; Santos, C.; Ferreira, I. Genetic variability among yellow fever virus 17D substrain. <i>Vaccine. </i>1998. <b>16 </b>(9/10): 1024-1028.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0120-2804200900010000100025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26. Pugachev, K.; Ocran, S.; Guirakoo, F.; Furby. D.; Monath, T. Heterogeneous nature of the genome of the ARILVAX yellow fever 17D vaccine revealed by consensus sequencing. <i>Vaccine. </i>2002. <b>20: </b>996-999.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0120-2804200900010000100026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27. WHO. Expert committee on biological standardization. Requirements for yellow fever vaccine. 1976. <i>Tech. Rep. Ser. </i>No. 594.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0120-2804200900010000100027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28. Reed, L. 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Clustal W: Improving the sensitivity of progressive multiple sequence alignment through sequence weighting, position-specific gap penalties and weight matrix choice. <i>Nucleic Acids Res. </i>1994. <b>22:</b> 4673-4680.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0120-2804200900010000100030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>31. Kumar, S.; Tamura, K.; Jakobsen, I.; Nei, M. MEGA2: Molecular Evolutionary Genetics Analysis software. 2001. Arizona State University, USA.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0120-2804200900010000100031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>32. Saitou, N.; Nei, M. The heigh-bor-joining method: a new method for reconstruction phylogenetic trees. <i>Mol. Biol. Evol. </i>1987. <b>4:</b> 406-425.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0120-2804200900010000100032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>33. Fitzgeorge, R.; Bradish, C. J. The <i>in vivo </i>differentiation of strains of yellow fever virus in mice. <i>J. Gen. Virol. </i>1980. 46: 1-1337.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0120-2804200900010000100033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>34. Barrett, A.; Gould, E. Comparison of the neurovirulence of different strains of yellow fever virus in mice. <i>J. Gen. Virol. </i>1986. <b>67: </b>631-637.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0120-2804200900010000100034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>35. Galler, R.; Freire, M.; Jabor, A.; Mann, G. F. The yellow fever 17D vaccine virus: molecular bases ofvi-ral attenuation and its use as an expression vector. <i>Brazilian Journal of Medical and Biological Research.</i> 1997. <b>30: </b>157-168.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0120-2804200900010000100035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>36. Xie, H.; Tyman, K. D.; Campbell, G. A.; Barret, A. Mutation in NS5 protein attenuates mouse neurovirulence of yellow fever 17D vaccine virus. <i>J.   Gen.   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The French neurotropic vaccine strain of yellow fever virus accumulates mutations slowly during passage in cell culture. <i>Virus Research. </i>2000. <b>69: </b>31-39.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0120-2804200900010000100038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>39. Arroyo, J.; Guirakoo, F.; Fenner, S.; Zhang, Z.; Monath, Th.; Chambers, T. Molecular bases for attenuation of neurovirulence of a yellow fever virus Japanese encephalitis virus chimera vaccine (ChimeriVax-JE). <i>J. 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Single mutation in the flavivirus envelope protein hinge region increases neurovirulence for mice and monkeys but decreasse vis-cerotropism for monkeys: relevance to development and safety testing of live, attenuated vaccines. <i>Journal of Virology. </i>2002. <b>76</b>(4): 1932-1943.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0120-2804200900010000100040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>41. Fulop, L. D.; Barret, A. D. T. Rapid identification of flavivirus based on conserved NS5 gene sequences. <i>J. Virol. 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