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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Caracterización molecular de 43 accesiones de uchuva de seis departamentos de Colombia]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The RAM's technique (Random Amplified Microsatellites) was used to assess the genetic diversity of 43 accesions of Cape gooseberry collected in six regions of Colombia (Nariño, Valle del Cauca, Cauca, Caldas, Quindío and Cundinamarca), property of the National University of Colombia at Palmira's campus collection. This analysis was based on the data from 42 polymorphic loci generated with seven primers. The results showed high genetic distance among accessions from Valle del Cauca and low genetic distance among accessions from Nariño, Cauca, Quindío, Caldas and Cundinamarca departments.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p><b>    <center><font face="verdana" size="4">Caracterizaci&oacute;n molecular de 43 accesiones de uchuva de seis departamentos de Colombia</font></center></b></p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">Molecular characterization of 43 accesions of Cape gooseberry from six departments of Colombia</font></center></b></p>     <p><b>    <center>Martha Liliana Bonilla Betancourt, Katherine Espinosa Piedrah&iacute;ta, Andr&eacute;s Mauricio Posso Terranova, Herney Dar&iacute;o V&aacute;squez Amariles, Jaime Eduardo Muñoz Fl&oacute;rez.</center></b></p>     <p>    <center>Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad Nacional de Colombia, AA 237, Palmira, Valle del Cauca, Colombia. (Autor para correspondencia: <a href="mailto:jemunozf@palmira.unal.edu.co">jemunozf@palmira.unal.edu.co</a>; <a href="mailto:ampossot@palmira.unal.edu.co">ampossot@palmira.unal.edu.co</a>; <a href="mailto:hdvasqueza@palmira.unal.edu.co">hdvasqueza@palmira.unal.edu.co</a>)</center></p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center>REC: 04-05-07. ACEPT.: 31-03-08</center></p> <hr size="1">     <p><b>RESUMEN</b></p>     <p><b>La t&eacute;cnica RAM (Random Amplified Microsatellites) se us&oacute; para el an&aacute;lisis de diversidad gen&eacute;tica de 43 accesiones de uchuva recolectadas en seis regiones de Colombia (Nariño, Valle del Cauca, Cauca, Caldas, Quind&iacute;o y Cundinamarca), pertenecientes a la colecci&oacute;n establecida en la Universidad Nacional de Colombia sede Palmira. El an&aacute;lisis se realiz&oacute; sobre 42 loci polim&oacute;rficos obtenidos con siete cebadores, encontr&aacute;ndose baja diversidad para las introducciones de Nariño, Cauca, Quind&iacute;o, Caldas y Cundinamarca. La poblaci&oacute;n del Valle del Cauca reuni&oacute; la mayor diversidad de los materiales recolectados.</b></p>     <p><b>Palabras claves:</b> <i>Solanaceae</i>; loci polim&oacute;rficos; cebadores; RAM.</p> <hr size="1">     <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p><b>The RAM&#39;s technique (Random Amplified Microsatellites) was used to assess the genetic diversity of 43 accesions of Cape gooseberry collected in six regions of Colombia (Nariño, Valle del Cauca, Cauca, Caldas, Quind&iacute;o and Cundinamarca), property of the National University of Colombia at Palmira&#39;s campus collection. This analysis was based on the data from 42 polymorphic loci generated with seven primers. The results showed high genetic distance among accessions from Valle del Cauca and low genetic distance among accessions from Nariño, Cauca, Quind&iacute;o, Caldas and Cundinamarca departments.</b></p>     <p><b>Key words:</b> <i>Solanaceae</i>; Polymorphic loci; primers; RAM.</p> <hr size="1">     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></center></b></p>     <p>El g&eacute;nero <i>Physalis</i> se encuentra distribuido desde Estados Unidos, M&eacute;xico y Centro Am&eacute;rica hasta Sudam&eacute;rica y las Antillas, con pocos representantes nativos del Viejo Mundo. La mayor&iacute;a de las especies se encuentran en M&eacute;xico, considerado como el centro de diversidad del g&eacute;nero. <i>P. peruviana</i> L. ha sido la especie m&aacute;s utilizada en cultivos comerciales por su fruto azucarado (Quir&oacute;s, 1984). La uchuva ha tenido gran auge en los mercados mundiales dadas sus caracter&iacute;sticas nutricionales y de fruta tropical ex&oacute;tica que la hacen llamar la fruta de oro (Fischer <i>et al</i>., 2000).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La caracterizaci&oacute;n y documentaci&oacute;n de las introducciones de un banco de germoplasma permite evitar duplicados e identificar accesiones promisorias para procesos de selecci&oacute;n, mejoramiento gen&eacute;tico o procesos agroindustriales (Fisher, <i>et al</i>., 2000). Zietkiewicz, <i>et al</i>., 1994, propusieron un novedoso m&eacute;todo de medici&oacute;n de la diversidad gen&eacute;tica en plantas y animales utilizando una t&eacute;cnica molecular que combina el uso de cebadores que contienen secuencias microsat&eacute;lites y un extremo 5&#39; degenerado. Esta t&eacute;cnica combina los beneficios de los an&aacute;lisis microsat&eacute;lites con el an&aacute;lisis RAPD (Random Amplified Polymorphic DNA) y se ha denominado microsat&eacute;lites amplificados aleatoriamente (RAM). La t&eacute;cnica se basa en la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR), el m&eacute;todo es reproducible y permite la detecci&oacute;n de polimorfismo entre especies y dentro de ellas. Los marcadores obtenidos por los RAM se pueden usar para estudios de poblaciones, no requiere el conocimiento previo de secuencias ni el uso de is&oacute;topos radioactivos (Hantula <i>et al</i>., 1996). Los fragmentos de ADN amplificados est&aacute;n compuestos de dos microsat&eacute;lites suficientemente cercanos para ser amplificados por PCR (Zietkiewicz <i>et al</i>., 1994). La fuente de variabilidad en los fragmentos obtenidos puede deberse a una inserci&oacute;n o supresi&oacute;n entre el fragmento amplificado que podr&iacute;a originar un amplio polimorfismo o ausencia de un producto, tambi&eacute;n la variabilidad en el n&uacute;mero de repeticiones del microsat&eacute;lite puede determinar el nivel de polimorfismo (Hantula, <i>et. al</i>., 1996).</p>     <p>Estudios de diversidad gen&eacute;tica realizados en especies vegetales (Morillo <i>et al</i>., 2005) y animales (Oslinger <i>et al</i>., 2006) en el Laboratorio de Biolog&iacute;a Molecular de la Universidad Nacional de Colombia sede Palmira sugieren que la t&eacute;cnica es una herramienta eficiente para este tipo de estudios. Muñoz <i>et al</i>. (2007) señalan entre las ventajas de la t&eacute;cnica RAM que no se necesita informaci&oacute;n previa, que es reproducible debido a la longitud del cebador, que es sencilla y de bajo costo, que se puede obtener gran n&uacute;mero de bandas utilizando geles de alta resoluci&oacute;n, que hay concordancia entre las caracter&iacute;sticas biol&oacute;gicas y los grupos gen&eacute;ticos formados y que diferencia al interior de las especies, entre especies y entre familias. El objetivo del trabajo fue evaluar la diversidad gen&eacute;tica del Banco de Germoplasma de Uchuva de la Universidad Nacional de Colombia sede Palmira.</p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</font></center></b></p>     <p>Semillas de 46 accesiones de uchuva (43 de <i>P. peruviana</i> y 3 de especies relacionadas) del Banco de Germoplasma de la Universidad Nacional de Colombia sede Palmira (<a href="img/revistas/acag/v57n2/v57n2a05t1.jpg" target=”_blank”>Tabla 1</a>), se sembraron en medio l&iacute;quido (Murashige & Skoog 0.44 g L<sup>-1</sup>, tiamina 0.1g L<sup>-1</sup>, sacarosa 20g L<sup>-1</sup>), se incubaron a 18&deg;C y humedad relativa de 70% durante tres meses.</p>     <p>La extracci&oacute;n de ADN de las hojas se realiz&oacute; siguiendo la metodolog&iacute;a descrita por Dellaporta <i>et al</i>. (1983). Las concentraciones se estimaron por comparaci&oacute;n con patrones conocidos de ADN del bacteri&oacute;fago lambda en un gel de agarosa al 0.8% corrido en buffer TBE 0.5X (Tris-borato 0045M; EDTA 0.001M) teñido con bromuro de etidio a una concentraci&oacute;n final de 0.5 ug mL<sup>-1</sup>. El ADN cuantificado se diluy&oacute; en agua grado HPLC hasta una concentraci&oacute;n de 5 ng uL<sup>-1</sup> y se almacen&oacute; a –20&deg;C.</p>     <p>Para la amplificaci&oacute;n se seleccionaron siete cebadores (<a href="#Tabla 2">Tabla 2</a>), teniendo en cuenta la habilidad para revelar polimorfismo, el n&uacute;mero de bandas polim&oacute;rficas y la reproducibilidad. Para estandarizar las condiciones de cada cebador se determinaron las concentraciones &oacute;ptimas de cloruro de magnesio, cebador y buffer de Taq. Tambi&eacute;n se determin&oacute; la temperatura de hibridaci&oacute;n para cada cebador (<a href="#Tabla 3">Tabla 3</a>). Para todos los cebadores se utilizaron 200 uM de cada DNTP, 1U de Taq polimerasa (Fermentas &#174;), en un volumen total de reacci&oacute;n de 12.5 uL. La amplificaci&oacute;n se realiz&oacute; en un termociclador PTC-100 Programmable Termal Controller (MJ Research Inc&#174;), con las siguientes condiciones: 95&deg;C por 5 minutos, seguido de 37 ciclos de 95&deg;C por 30 segundos, 50-58&deg;C por 45 segundos (de acuerdo con el cebador utilizado, Tabla 3), 72&deg;C por 2 minutos y una extensi&oacute;n final de 72&deg;C por 7 minutos.</p>     <p>    <center><a name="Tabla 2"><img src="img/revistas/acag/v57n2/v57n2a05t2.jpg"></a></center></p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="Tabla 3"><img src="img/revistas/acag/v57n2/v57n2a05t3.gif"></a></center></p>     <p>Los productos amplificados se separaron por electroforesis en geles de agarosa al 1.2%, teñidos con  bromuro de etidio a una concentraci&oacute;n final de 0.5 ug mL<sup>-1</sup>, y se visualizaron bajo luz ultravioleta. La longitud de los productos de amplificaci&oacute;n se estim&oacute; por comparaci&oacute;n con un marcador de peso molecular de 100pb (Promega&#174;).</p>     <p>La informaci&oacute;n suministrada se registr&oacute; en una matriz binaria de presencia (1) o ausencia (0). Para la selecci&oacute;n de bandas polim&oacute;rficas se consider&oacute; como locus polim&oacute;rfico aquel en el cual la frecuencia del alelo m&aacute;s com&uacute;n es menor al 99%. Para el registro no se tuvieron en cuenta aquellas bandas de dif&iacute;cil lectura. A partir de esta matriz, utilizando los programas SIMQUAL&#174; del paquete Numerical Taxonomy System for Personal Computer NTSYS- pc versi&oacute;n 1.8 y el programa TFPGA&#174; (Miller 1997), se realizaron los an&aacute;lisis estad&iacute;sticos.</p>     <p>La similitud gen&eacute;tica se calcul&oacute; con el coeficiente de Nei- Li, S= 2a/ (2a+b+c) donde a = bandas compartidas por ambos individuos, b = bandas presentes en el individuo (1) pero no en (2), y C = bandas presentes en el individuo (2) pero no en (1). El an&aacute;lisis de agrupamiento se realiz&oacute; con el programa SAHN de NTSYS –pc utilizando el m&eacute;todo UPGMA, m&eacute;todo gr&aacute;fico de agrupamiento por parejas que usa el promedio aritm&eacute;tico no ponderado (Unweighted pair- group arithmetic mean). El dendrograma se construy&oacute; con el programa TREE de NTSYS –pc versi&oacute;n 1.80.</p>     <p>Se realizaron dos an&aacute;lisis de correspondencia m&uacute;ltiple (ACM), el primero para las 43 accesiones de <i>P. peruviana</i> de los diferentes departamentos y el segundo para las accesiones del Valle del Cauca. Este an&aacute;lisis permite asociar columnas y filas de la matriz binaria determinando el nivel de asociaci&oacute;n o proximidad (Joseph <i>et al</i>., 1992).</p>     <P>Para estimar la diversidad gen&eacute;tica se consideraron los par&aacute;metros de heterocigosidad promedio (H) y el porcentaje de loci polim&oacute;rficos (P), los cuales se estimaron sobre todos los loci y el promedio de los mismos de acuerdo con la f&oacute;rmula no sesgada de Nei (1973) as&iacute;:</p>     <p><b>H= 1 -<font face="symbol" size="2">&#229;</font>f (i)2</b></p>     <p>f(i): Frecuencia del alelo i en la poblaci&oacute;n.</p>     <p><font face="symbol" size="2">&#229;</font>f (i)<sup>2</sup> : Probabilidad de que dos individuos tomados al azar tengan el alelo i.</p>     <p>H: Probabilidad de que dos individuos tomados al azar tengan diferente alelo, H, es el valor con el que se representa la diversidad de la poblaci&oacute;n.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>    <center><font face="verdana" size="3">RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</font></center></b></p>     <p><b>An&aacute;lisis descriptivo</b></p>     <p>Los siete cebadores RAM generaron 50 patrones de bandas distinguibles en un rango de longitud de 250 a 1.000 pares de bases. El n&uacute;mero de loci polim&oacute;rficos por cebador vari&oacute; entre 1 para CCA y 10 para GT. El porcentaje de loci polim&oacute;rficos fue 97.61%. El patr&oacute;n de amplificaci&oacute;n generado por el cebador CGA se muestra en la <a href="#Figura 1">Figura 1</a>.</p>     <p>    <center><a name="Figura 1"><img src="img/revistas/acag/v57n2/v57n2a05f1.jpg"></a></center></p>     <p>Las introducciones UNPU048, UNPU053, UNPU076, UNPU081, UNPU096 y UNPU077 procedentes del departamento del Valle presentaron mayor polimorfismo. Estos materiales presentaron fruto rojo (l&iacute;neas 14 y 16 de la Figura 1) y corroboraron los resultados obtenidos en la caracterizaci&oacute;n morfol&oacute;gica (Bonilla <i>et al</i>., 2007). La introducci&oacute;n UNPU 018 (Juntas, Valle) present&oacute; un patr&oacute;n de bandas diferente; tambi&eacute;n las introducciones UNPU053 y UNPU048 (fruto rojo) presentaron cinco alelos &uacute;nicos con los cebadores GT, CT, CGA y TG con tamaños de 680, 950, 420, 530 y 1.000 pares de bases, correspondiendo los dos &uacute;ltimos al cebador TG. Las diferencias morfol&oacute;gicas en color de fruto y semilla, en m&aacute;culas, hojas, tricomas y la separaci&oacute;n en un grupo gen&eacute;tico diferente de los materiales mencionados, sugieren que deben separarse taxon&oacute;micamente de las otras accesiones. Para ello est&aacute; en proceso un trabajo de investigaci&oacute;n.</p>     <p>El coeficiente de similitud de Nei-Li, a nivel de 86%, diferenci&oacute; cuatro grupos (A, B, C y D) y 24 haplotipos (individuos con estructura gen&eacute;tica id&eacute;ntica y que se diferencian de otro por lo menos en la presencia o ausencia de una banda al utilizar t&eacute;cnicas moleculares) (<a href="img/revistas/acag/v57n2/v57n2a05f2.jpg" target=”_blank”>Figura 2</a>). Los agrupamientos no se relacionaron estrictamente con el origen geogr&aacute;fico; sin embargo, los materiales de Cundinamarca tendieron a agruparse de la misma manera que los materiales de Nariño y Cauca, debido posiblemente a que fueron recolectados en sitios donde se encuentran cultivos comerciales a pequeña escala y es posible que haya ocurrido flujo de semilla entre regiones.</p>     <p>La localizaci&oacute;n en un mismo haplotipo de individuos de Cundinamarca (UNPU004, UNPU001, UNPU002), Cauca (UNPU110), Caldas (UNPU106) y Quind&iacute;o (UNPU219) podr&iacute;a explicarse porque parte importante de la uchuva consumida en el departamento de Caldas proviene de Cundinamarca y al encontrarse al borde de carretera posiblemente puede provenir de semillas de frutos comerciales. De los materiales del Quind&iacute;o y Cauca no se conoce con certeza su procedencia. Cinco materiales del Cauca (UNPU045, UNPU143, UNPU079, UNPU080 y UNPU042) tuvieron el mismo haplotipo, lo cual puede explicarse por el intercambio de semilla entre cultivadores comerciales (<a href="img/revistas/acag/v57n2/v57n2a05f2.jpg" target=”_blank”>Figura 2</a>).</p>     <p>Los materiales (UNPU021) del Valle y (UNPU113) de Nariño presentaron tambi&eacute;n el mismo haplotipo. En las cuatro agrupaciones hubo materiales del departamento del Valle, lo cual indica que la mayor parte de la variabilidad de la colecci&oacute;n de germoplasma de la Universidad Nacional Sede Palmira est&aacute; representada por materiales silvestres recolectados en un bosque secundario en la cuenca del r&iacute;o Guabas del municipio de Ginebra, Valle. Adem&aacute;s, la muestra (17 accesiones) para este departamento fue la de mayor tamaño. Los materiales se encuentran en peligro de desaparecer debido a la deforestaci&oacute;n que se presenta en esta zona.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La baja diversidad del resto de los materiales puede explicarse porque fueron recolectados cerca de cultivos comerciales, a orillas de carretera, en jardines y huertos.</p>     <p>El dendrograma, a nivel de similitud de 40%, diferenci&oacute; dos grupos, el primero conformado por introducciones de <i>P. peruviana</i> y el segundo por especies relacionadas (<a href="img/revistas/acag/v57n2/v57n2a05f3.jpg" target=”_blank”>Figura 3</a>). Dentro de los grupos no se present&oacute; clara diferenciaci&oacute;n por procedencia geogr&aacute;fica.</p>     <p>El an&aacute;lisis de correspondencia m&uacute;ltiple (ACM) (<a href="#Figura 4">Figura 4</a>) separ&oacute; los materiales en cuatro grupos con coeficiente de similitud de 86%. El grupo 1 estuvo conformado por 39 introducciones, el grupo 2 lo integraron las introducciones de fruto rojo (UNPU048 y UNPU053), en los grupos 3 y 4 se encontraron las introducciones UNPU018 (Juntas-Valle) y UNPU096 (Las Hermosas-Valle) respectivamente.</p>     <p>    <center><a name="Figura 4"><img src="img/revistas/acag/v57n2/v57n2a05f4.jpg"></a></center></p>     <p>El an&aacute;lisis de similitud gen&eacute;tica y de agrupamiento de las introducciones recolectadas en el departamento del Valle del Cauca (<a href="img/revistas/acag/v57n2/v57n2a05f5.jpg" target=”_blank”>Figura 5</a>), a nivel de similitud de 69%, form&oacute; dos grupos. El primero correspondi&oacute; a las introducciones de <i>P. peruviana</i> y el segundo estuvo conformado por las introducciones UNPU048 y UNPU053 (fruto rojo).</p>     <p>UNPU096 (Las Mirlas), UNPU051 (La Selva) y UNPU018 (Juntas) se diferenciaron de las dem&aacute;s introducciones a nivel de similitud de 86%. Estas introducciones aportaron la mayor diversidad y se recolectaron en la cuenca del r&iacute;o Guabas (Valle). El an&aacute;lisis de correspondencia m&uacute;ltiple realizado para las accesiones del Valle del Cauca separ&oacute; los individuos en cuatro grupos (<a href="#Figura 6">Figura 6</a>).</p>     <p>    <center><a name="Figura 6"><img src="img/revistas/acag/v57n2/v57n2a05f6.jpg"></a></center></p>     <p><b>Diversidad gen&eacute;tica</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En las 43 introducciones se encontraron grupos de individuos con estructura gen&eacute;tica id&eacute;ntica que difer&iacute;an de los otros por la presencia o ausencia de al menos una banda, identific&aacute;ndose 24 haplotipos.</p>     <p>El valor de heterocigosidad calculado para toda la poblaci&oacute;n fue de 0.2559, valor no muy alto teniendo en cuenta que fluct&uacute;a entre 0 y 1. Sin embargo, en un estudio de <i>Lycopersicon sculentum</i> perteneciente a la misma familia se report&oacute; un valor de heterocigosidad H=0.18 (Restrepo, 2003). Si se compara este valor con el obtenido en este estudio, &eacute;ste fue considerablemente alto y puede estar asociado con la naturaleza al&oacute;gama de la especie. Algunas introducciones recolectadas en estado silvestre en la cuenca del r&iacute;o Guabas y las introducciones UNPU048 y UNPU053 (de fruto rojo) est&aacute;n gen&eacute;ticamente m&aacute;s distantes de las dem&aacute;s introducciones. La poca diversidad que se observa en las introducciones de Cauca, Cundinamarca Nariño, Caldas y algunas del departamento del Valle, con similitud mayor de 90%, indican la posible homogenizaci&oacute;n de este recurso gen&eacute;tico por la diseminaci&oacute;n de materiales comerciales.</p>     <p>Se ha reportado que los estimativos de diversidad gen&eacute;tica basados en marcadores de herencia dominante como los RAPD y los RAM est&aacute;n asociados con las estrategias de muestreo (n&uacute;mero de plantas por poblaci&oacute;n, distancia geogr&aacute;fica entre las poblaciones muestreadas y n&uacute;mero de poblaciones estudiadas) y el n&uacute;mero de bandas polim&oacute;rficas (Nybom y Bartish, 2000).</p>     <p>La estructura gen&eacute;tica poblacional de las especies se debe realizar con criterio de agrupamiento geogr&aacute;fico, edafo-clim&aacute;tico o morfol&oacute;gico. En este estudio no se analiz&oacute; la estructura poblacional debido a que en las introducciones el agrupamiento no se relacion&oacute; con la distribuci&oacute;n geogr&aacute;fica, por lo cual este criterio no ser&iacute;a pertinente para calcular los estimativos de diferenciaci&oacute;n poblacional. Para realizar este an&aacute;lisis se debe hacer un muestreo m&aacute;s amplio dirigido a zonas de bosques o lugares donde la influencia del componente antr&oacute;pico sea m&iacute;nimo y se encuentren materiales silvestres o establecer otro criterio de agrupamiento. Sin embargo, hubo un agrupamiento que discrimin&oacute; entre especies y dentro de especies del g&eacute;nero <i>Physalis</i> que permite concluir que la t&eacute;cnica RAM puede ser &uacute;til para caracterizar las poblaciones de <i>Physalis</i> a&uacute;n no estudiadas.</p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">AGRADECIMIENTOS</font></center></b></p>     <p>La informaci&oacute;n hace parte del trabajo de grado de Ing. Agr. de M. Bonilla B. y K. Espinosa P. financiado por la Direcci&oacute;n de Investigaciones de la Universidad Nacional sede Palmira, DIPAL. Los autores expresan sus agradecimientos al Instituto Alexander von Humboldt, al laboratorio de Fitopatolog&iacute;a de Fr&iacute;jol del CIAT y a los integrantes del Laboratorio de Biolog&iacute;a Molecular de la Universidad Nacional de Colombia sede Palmira.</p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">BIBLIOGRAF&Iacute;A</font></center></b></p>     <!-- ref --><p>1.Bonilla, M.; Espinosa, K.; Posso A., V&aacute;squez, H., Muñoz J. 2007. Caracterizaci&oacute;n morfol&oacute;gica de 24 accesiones de uchuva del Banco de Germoplasma de la Universidad Nacional de Colombia sede Palmira. <i>Acta Agron</i> (Palmira) 57(2):101-108.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-2812200800020000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2.Dellaporta S. L.; Wood, J.; Hicks, J. B. 1983. A plant DNA minipreparation: Versi&oacute;n II. <i>Plant Molec Biol Rep</i> 14: 19-21.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-2812200800020000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3.Fischer, G.; Fl&oacute;rez, R.; &aacute;ngel, D.; Sora, R. 2000. Producci&oacute;n, poscosecha y exportaci&oacute;n de la uchuva <i>Physalis peruviana</i> L. Universidad Nacional de Colombia sede Santaf&eacute; de Bogot&aacute;. 175p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-2812200800020000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4.Hantula, J.; Dusabenyagasani, M.; Hamelin, R. C. 1996. Randon Amplified Microsatellites (RAM) a novel method for characterizing genetic variation within fungi. <i>Eur J Path</i> 26:159-166.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-2812200800020000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5.Joseph, H.; Anderson, R.; Tatham, R.; Black, W. 1992. Multivariate data Analysys with Readings. 3<sup>rd</sup> ed. Riverside. 554 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0120-2812200800020000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6.Miller, M. 1997 Tfpga (Tools for Population Genetics Analysis). Northern Arizona University, Flagstaff, Arizona. 102 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-2812200800020000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7.Morillo, A.; Morillo, Y.; V&aacute;squez H.; Muñoz, J. 2005. Caracterizaci&oacute;n molecular con Microsat&eacute;lites aleatorios RAM de la Colecci&oacute;n de mora <i>Rubus spp</i>, de la Universidad Nacional de Colombia, Sede Palmira. <i>Acta Agron</i> (Palmira) 54 (2):15-24.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-2812200800020000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8.Muñoz, J. E.; Morillo, A.; Morillo, Y. 2007. Uso de la t&eacute;cnica Microsat&eacute;lites Amplificados al Azar (RAM) para estudios de diversidad gen&eacute;tica en vegetales. <i>En prensa. 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V. 2000 Effects of life history traits and sampling strategies on genetic diversity estimates obtained with RAPD markers in plants. <i>Persp Plant Ecol Evol Syst</i> 3: 93-114.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-2812200800020000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11.Oslinger, A.; Muñoz J. E.; Alvarez L. A.; Moreno, F.; Posso, A. 2006. Caracterizaci&oacute;n de cerdos criollos colombianos mediante la t&eacute;cnica molecular RAM. <i>Acta Agron</i> (Palmira) 55 (4): 45-50.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-2812200800020000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12.Quir&oacute;s, C. 1984. Overview of the genetics and breeding of husk tomato. <i>Hort Sci</i> 19(6):872-874.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-2812200800020000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13.Restrepo, S. E. 2003. Estudio de la diversidad gen&eacute;tica del tomate cultivado tipo chonto <i>Lycopersicon esculentum</i> en las zonas productoras de Colombia. Trabajo de grado (M. Sc.). Universidad Nacional de Colombia sede Palmira. 182p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-2812200800020000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14.Zietkiewicz, E.; Rafalski, A.; Labuda, D. 1994. Genome Fingerprinting by Simple Sequence Repeat (SSR-Anchored) Polymerase Chain Reaction Amplification. <i>Genomics</i> 20:176-183.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-2812200800020000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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