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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación de extractos de fique, coquito, sorgo y ruda como posibles bio-herbicidas]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Evaluation of cuban hemp, nut sedge, johnson grass and herb of grace extracts in weed control]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad Nacional de Colombia Facultad de Ciencias Agropecuarias ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The objective of this work was to evaluate the effect of the extracts of the species Macrophylla furcraea Baker (cuban hemp), Cyperus rotundus L (nut sedge), Sorghum bicolor L (johnson grass) and Ruta graveolens L (herb of grace) on seed germination of two weeds and one crop. The extracts were obtained by the Soxhlet method, using water, ethanol and chloroform as solvents. Each extract was evaluated in three dilutions (0, 5 and 10 % v/v) and was applied to Bidens pilosa L (spanish needle), Amaranthus dubius Mart (spleen amaranth) and Coriandrum sativum L (coriander) seeds. Three replications of 50 seeds each one were used and the control was watered only with destilled water. The results showed that the ethanolics and chlorofórmics extracts of nut sedge and cuban hemp at two evaluated dilutions presented high inhibiting effect on the seed germination of the three species at 21 days. The field test verified the inhibiting effect on seed germination of the ethanolics extracts of cuban hemp and nut sedge on coriander. The secondary metabolites test showed the presence of great amount of compounds reported like highly toxic in fique and in smaller amounts in coquito although this specie inhibited the seed germination highly.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p><b>    <center><font face="verdana" size="4">Evaluaci&oacute;n de extractos de fique, coquito, sorgo y ruda como posibles bio-herbicidas</font></center></b></p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">Evaluation of cuban hemp, nut sedge, johnson grass and herb of grace extracts in weed control</font></center></b></p>     <p><b>    <center>Liliana Osorio Salazar<sup>1</sup>, Francisco Antonio Valverde<sup>1</sup>, Carmen Rosa Bonilla Correa<sup>2</sup>, Manuel Salvador S&aacute;nchez Orozco<sup>2</sup>, Carmen Elena Mier Barona<sup>1</sup></center></b></p>     <p>    <center><sup>1</sup>Facultad de Ingenier&iacute;a y Administraci&oacute;n, <sup>2</sup>Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad Nacional de Colombia. AA 237. Palmira, Valle. Colombia. Autor para correspondencia: <a href="mailto:mssanchezo@palmira.unal.edu.co">mssanchezo@palmira.unal.edu.co</a>; <a href="mailto:crbonillac@palmira.unal.edu.co">crbonillac@palmira.unal.edu.co</a></center></p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center>REC: 05-03-08  ACEPT.: 05-03-09</center></p> <hr size="1">     <p><b>RESUMEN</b></p>     <p><b>En experimentos completamente al azar en condiciones de laboratorio y campo, en Palmira, Valle del Cauca, se evalu&oacute; el efecto de extractos de <i>Macrophylla furcraea</i> Baker (fique), <i>Cyperus rotundus</i> L (coquito), <i>Sorghum bicolor</i> L (sorgo), y <i>Ruta graveolens</i> L (ruda) sobre la germinaci&oacute;n de semillas de las arvenses <i>Bidens pilosa</i> L (papunga) y <i>Amaranthus dubius</i> Mart (bledo) y del cilantro <i>Coriandrum sativum</i> L. Se obtuvieron los extractos por el m&eacute;todo Soxhlet, utilizando agua, etanol y cloroformo como solventes. Los extractos obtenidos se evaluaron en tres diluciones (0, 5 y 10 %) en pruebas de germinaci&oacute;n de semillas de las arvenses y del cultivo. Se emplearon tres repeticiones de 50 semillas cada una y el testigo se reg&oacute; con agua destilada. Los extractos etan&oacute;licos y clorof&oacute;rmicos de coquito y fique en las diluciones al 5 y 10 % presentaron el mayor efecto inhibitorio en la germinaci&oacute;n a los 21 d&iacute;as. El ensayo de campo demostr&oacute; el efecto inhibitorio de los extractos etan&oacute;licos de fique y coquito en la emergencia de las semillas del cilantro. El an&aacute;lisis de metabolitos secundarios comprob&oacute; la presencia de compuestos reportados como altamente t&oacute;xicos en fique y en menor cantidad en coquito, aunque los extractos de &eacute;ste fueron los que m&aacute;s inhibieron la germinaci&oacute;n.</b></p>     <p><b>Palabras claves:</b> Alelopat&iacute;a; <i>Macrophylla furcraea</i>; <i>Cyperus rotundus</i>; <i>Sorghum bicolor</i>; <i>Ruta graveolens</i>; <i>Bidens pilosa</i>; <i>Amaranthus dubius</i>; <i>Coriandrum sativum</i>; germinaci&oacute;n; control arvenses.</p> <hr size="1">     <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p><b>The objective of this work was to evaluate the effect of the extracts of the species <i>Macrophylla furcraea</i> Baker (cuban hemp), <i>Cyperus rotundus</i> L (nut sedge), <i>Sorghum bicolor</i> L (johnson grass) and <i>Ruta graveolens</i> L (herb of grace) on seed germination of two weeds and one crop. The extracts were obtained by the Soxhlet method, using water, ethanol and chloroform as solvents. Each extract was evaluated in three dilutions (0, 5 and 10 % v/v) and was applied to <i>Bidens pilosa</i> L (spanish needle), <i>Amaranthus dubius</i> Mart (spleen amaranth) and <i>Coriandrum sativum</i> L (coriander) seeds. Three replications of 50 seeds each one were used and the control was watered only with destilled water. The results showed that the ethanolics and chlorof&oacute;rmics extracts of nut sedge and cuban hemp at two evaluated dilutions presented high inhibiting effect on the seed germination of the three species at 21 days. The field test verified the inhibiting effect on seed germination of the ethanolics extracts of cuban hemp and nut sedge on coriander. The secondary metabolites test showed the presence of great amount of compounds reported like highly toxic in fique and in smaller amounts in coquito although this specie inhibited the seed germination highly.</b></p>     <p><b>Key words:</b> Allelopathic; <i>Macrophylla furcraea</i>; <i>Cyperus rotundus</i>; <i>Ruta graveolens</i>; <i>Sorghum bicolor</i>; <i>Bidens pilosa</i>; <i>Amaranthus dubius</i>; <i>Coriandrum sativum</i>; germination; weed control.</p> <hr size="1">     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></center></b></p>     <p>En los sistemas de cultivo las malezas y la resistencia de &eacute;stas a los herbicidas son limitantes y constituyen un factor importante a tener en cuenta en el empleo de m&eacute;todos combinados de control.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La alelopat&iacute;a, proceso qu&iacute;mico utilizado por las plantas para disminuir la competencia en su entorno, ofrece una herramienta natural y ambientalmente amigable para el manejo de malezas. La investigaci&oacute;n brinda posibilidades para el control directo de malezas y para el desarrollo de nuevos herbicidas (Azim <i>et al</i>., 2005).</p>     <p>Un amplio rango de especies presenta potencial de utilizaci&oacute;n como herbicidas naturales por poseer grupos qu&iacute;micos alelop&aacute;ticos que incluyen los flavonoides, poliacetilenos, quinonas y terpenos (mono y sesquiterpenos) (Kaufman <i>et al</i>., 1999; Putman, 1988). Entre estas especies se reportan <i>Sorghum bicolor</i> con amplio poder autot&oacute;xico y con capacidad de controlar varias arvenses como <i>Amaranthus retroflexus</i> (Putnam <i>et al</i>., 1983); <i>Cajanus cajan</i> y <i>Mucuna deeringiana</i> redujeron la poblaci&oacute;n de malezas como <i>Cyperus rotundus</i> hasta un nivel donde los productores no necesitaron aplicar pr&aacute;cticas de control (Hepperly <i>et al</i>., 1992) y los extractos acuosos de exudados de ra&iacute;ces de pasto bermuda inhibieron significativamente la germinaci&oacute;n y crecimiento del algod&oacute;n y las malezas prosopis <i>Lagongchium farctum</i>, pasto Johnson y <i>Xanthium strumarium</i> (Abdul-Rahman y Al-Naib, 1986).</p>     <p>En condiciones de laboratorio los monoterpenos, constituyentes qu&iacute;micos de aceites esenciales en algunas plantas, inhibieron significativamente la germinaci&oacute;n y el crecimiento de las pl&aacute;ntulas de <i>Amaranthus retroflexus</i>, <i>Chenopodium album</i> y <i>Rumex crispus</i> (Kordali <i>et al</i>., 2007). Efectos similares se reportaron con el aceite esencial de ruda <i>Ruta graveolens</i> (De Feo <i>et al</i>., 2002).</p>     <p>Al comparar Chen y Leather (1990) el efecto aleloqu&iacute;mico de la artemisinina, aislada de <i>Artemisia annua</i>, con herbicidas comerciales en semilleros de <i>Phaseolus aureus</i>, concluyeron que tiene el mismo nivel de inhibici&oacute;n que el glifosato.</p>     <p>Basado en lo anterior, el presente trabajo plantea la evaluaci&oacute;n del efecto bioherbicida de extractos de <i>Macrophylla furcraea</i> Baker (fique), <i>Cyperus rotundus</i> L (coquito), <i>Sorghum bicolor</i> L (sorgo) y <i>Ruta graveolens L</i> (ruda) sobre la germinaci&oacute;n de las semillas del cilantro <i>Coriandrum sativum</i> L y de las malezas <i>Bidens pilosa</i> L (papunga) y <i>Amaranthus dubius</i> Mart (bledo).</p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">MATERIALES Y M&Eacute;TODOS </font></center></b></p>     <p>El trabajo se realiz&oacute; en los laboratorios de Fisiolog&iacute;a y Fitoqu&iacute;mica y en el Centro Experimental (CEUNP) de la Universidad Nacional de Colombia Sede Palmira. El material vegetal recolectado (planta adulta sin flor de <i>R. graveolens</i>, planta adulta completa (con bulbos) de <i>C. rotundus</i>, residuos de cosecha de <i>S. bicolor</i> y penca de <i>M. furcraea</i>) se pic&oacute; y se moli&oacute; una vez obtuvo el 10% de humedad (50 &deg;C durante 72 horas). Los extractos crudos para muestra de 20g se obtuvieron mediante extracci&oacute;n tipo Soxhlet.</p>     <p>Se evaluaron tres factores: extractos (fique, coquito, ruda y sorgo) ; m&eacute;todos de extracci&oacute;n (etan&oacute;lica y clorof&oacute;rmica) y diluciones ( 2, 5 y 10%). Para evaluar el efecto inhibitorio en la germinaci&oacute;n de semillas de <i>A. dubius</i> (bledo) y <i>C. sativum</i> (cilantro) se utilizaron los extractos de <i>M. furcraea</i> y <i>C. rotundus</i> ya que fueron los tratamientos con mayor efecto inhibitorio en <i>B. pilosa</i>. El testigo se reg&oacute; con agua destilada.</p>     <p>Las pruebas de germinaci&oacute;n se realizaron en cajas petri esterilizadas con 50 semillas en un diseño experimental completamente al azar con tres repeticiones; las semillas se desinfectaron con soluci&oacute;n de etanol-agua al 75 % durante un minuto, sumergidas en igual tiempo en soluci&oacute;n de hipoclorito-agua al 2 %; se reg&oacute; con 2 ml de los respectivos tratamientos y se altern&oacute; con agua. Se hicieron conteos peri&oacute;dicos del n&uacute;mero de semillas germinadas y no germinadas a los 14, 16 y 21 d&iacute;as y diferenciando pl&aacute;ntulas normales (PN) de anormales (PA) (ISTA, 1999). Con el n&uacute;mero de semillas germinadas se calcul&oacute; el porcentaje de germinaci&oacute;n.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La informaci&oacute;n se proces&oacute; mediante el Sistema S.A.S (Statistical Analysis System). Versi&oacute;n 8.2 de 2002. Las dos especies con mejores resultados se analizaron para la detecci&oacute;n cualitativa de metabolitos secundarios (Palomino y Mier, 1995).</p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</font></center></b></p>     <p>La germinaci&oacute;n de las semillas de <i>B. pilosa</i> present&oacute; diferencias altamente significativas en comparaci&oacute;n con el testigo para los extractos de <i>M. furcraea</i> y <i>C. rotundus</i>, <i>S. bicolor</i> y <i>R. graveolens</i>, al reducir la proporci&oacute;n de pl&aacute;ntulas normales e incrementar la de anormales; los extractos de <i>M. furcraea</i> y <i>C. rotundus</i> presentaron mayor inhibici&oacute;n (55.2%) de la germinaci&oacute;n de semillas y alta proporci&oacute;n de pl&aacute;ntulas anormales (10.3 y 23 %, respectivamente), comprobando el efecto fitot&oacute;xico. En semillas de <i>A. dubius</i>, el efecto inhibitorio de los metabolitos de <i>M. furcraea</i> y <i>C. rotundus</i> en la germinaci&oacute;n promedia fue altamente significativo, siendo los extractos de <i>C. rotundus</i> los de mayor efecto inhibitorio (<a href="img/revistas/acag/v58n2/v58n2a07t1.gif" target="blank">Tabla 1</a>).</p>     <p>El mayor efecto inhibitorio (baja proporci&oacute;n de pl&aacute;ntulas normales y/o alta de pl&aacute;ntulas anormales) sobre la germinaci&oacute;n promedia de <i>B. pilosa</i> y <i>A. dubius</i> lo presentaron los extractos con el solvente etanol, lo que se explica por la naturaleza qu&iacute;mica polar de los compuestos inhibitorios extraidos (saponinas y cumarinas). En el caso del cloroformo puede deberse a la acci&oacute;n de compuestos de naturaleza no polar extra&iacute;dos, o a la alta toxicidad del solvente. En los extractos acuosos o hidrolatos, aunque presentaron diferencia estad&iacute;stica en comparaci&oacute;n con el testigo, el efecto inhibitorio fue menor (<a href="img/revistas/acag/v58n2/v58n2a07t2.gif" target="blank">Tabla 2</a>), lo cual puede deberse a la baja concentraci&oacute;n de los metabolitos extra&iacute;dos.</p>     <p>Las diluciones evaluadas no presentaron diferencias significativas entre s&iacute;, aunque fue el factor que m&aacute;s inhibi&oacute; la germinaci&oacute;n (<a href="img/revistas/acag/v58n2/v58n2a07t3.gif" target="blank">Tabla 3</a>). Los efectos diferenciales de sustratos y solventes en la germinaci&oacute;n son atribuibles a diferencias en concentraci&oacute;n y composici&oacute;n qu&iacute;mica de compuestos de reconocida actividad inhibitoria, como las cumarinas, saponinas y fenoles, entre otros, que inhiben la mitosis, la elongaci&oacute;n celular y la absorci&oacute;n del ox&iacute;geno (Dom&iacute;nguez, 1973; Besnier, 1989).</p>     <p>Los extractos, solventes y diluciones mostraron efectos altamente significativos en la germinaci&oacute;n promedia y pl&aacute;ntulas anormales de semillas de cilantro; el mayor efecto inhibitorio en la germinaci&oacute;n lo presentaron los tratamientos en los cuales se emple&oacute; etanol como solvente.</p>     <p>El an&aacute;lisis fitoqu&iacute;mico comprob&oacute; que el fique present&oacute; gran cantidad de compuestos (<a href="img/revistas/acag/v58n2/v58n2a07t4.gif" target="blank">Tabla 4</a>), algunos altamente t&oacute;xicos para animales y vegetales, y a los que posiblemente se les puede atribuir el efecto inhibitorio que tambien registraron Besnier (1989), S&aacute;enz y Bernal (2000) y por Forero (2000).</p>     <p>Aunque el coquito present&oacute; menor variedad y diferencia de compuestos que los extra&iacute;dos en <i>M. furcraea</i>, fue m&aacute;s notorio el efecto inhibitorio en la germinaci&oacute;n de las semillas, lo cual puede atribuirse a la acci&oacute;n o mayor concentraci&oacute;n de algunos metabolitos (Besnier, 1989; Dom&iacute;nguez, 1973).</p>     <p><b>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><font face="verdana" size="3">CONCLUSIONES</font></center></b></p>     <p>Los extractos de <i>Macrophylla furcraea</i> Baker (Fique) y <i>Cyperus rotundus</i> L (Coquito) en diluciones de 5 y 10%,presentaron mayor poder inhibitorio sobre la germinaci&oacute;n de las semillas de <i>Bidens pilosa</i> L.</p>     <p>El etanol fue el solvente que present&oacute; mayor efectividad en la extracci&oacute;n de los compuestos capaces de inhibir la germinaci&oacute;n de las semillas de las especies evaluadas.</p>     <p>Todos los tratamientos evaluados afectaron la germinaci&oacute;n de las semillas de <i>Coriandrum sativum</i> L (cilantro).</p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">AGRADECIMIENTOS</font></center></b></p>     <p>A la Divisi&oacute;n de Investigaciones (DIPAL), al Programa de Investigaci&oacute;n en recursos gen&eacute;ticos de plantas medicinales, arom&aacute;ticas y condimentarias de la Universidad Nacional Sede Palmira y a Colciencias, por la financiaci&oacute;n del trabajo de investigaci&oacute;n.</p>     <p><b>    <center><font face="verdana" size="3">BIBLIOGRAF&Iacute;A </font></center></b></p>     <!-- ref --><p>1. Abdul-Rahman, A. S.; Al-Naib, F.A.G. 1986. The effects of Bermuda grass <i>Cynodon dactylon</i> (L.) Pers. on the germination and seedling growth of cotton and three weed species. <i>J Agr Water Resource Res</i> 5(1): 115–128.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000052&pid=S0120-2812200900020000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Azim K. M.; Bahadar M. K.; Hassan,G.; Hussain, Z. 2005. Bioherbicidal effects of tree extracts on seed germination and growth of crops and weeds.<i>Pak J Weed Sci Res 11(3-4): 89 - 94</i>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000053&pid=S0120-2812200900020000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Besnier, F. 1989. Semillas: Biolog&iacute;a y Tecnolog&iacute;a. Madrid: Mundi-Prensa. 637 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000054&pid=S0120-2812200900020000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Chen, P. K.; Leather, G. R. 1990. Plant growth regulatory activities of artemisinin and its related compounds. <i>J Chem Ecol</i> 16 (6):1867-1876.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000055&pid=S0120-2812200900020000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. De Feo, V.; De Simone, F. ; Senatore, F. 2002. Potential allelochemicals from the essential oil of <i>Ruta graveolens.</i> <i>Phytochemistry</i> 61(5): 573-578.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000056&pid=S0120-2812200900020000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Dom&iacute;nguez, X.A. 1973. M&eacute;todos de investigacion fitoqu&iacute;mica. 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A.; Perez, R.; Diaz, M.; Reyes, C. 1992.Pigeon pea and velvet bean allelopathy. p 357-369. <i>In</i>: Rizvi, S. J. H.; Rizvi, V. Allelopathy: Basic and applied aspects. London: Chapman and hall.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0120-2812200900020000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Ista 1999. Reglas Internacionales para Ensayos de Semillas. Ensayo topogr&aacute;fico al tetrazolio. España: Secretar&iacute;a de Estado de Agricultura y Ganaderia.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000060&pid=S0120-2812200900020000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Kaufman, B. P.; Cseke, L. J.; Warber, S.; Duke, J.A.; Brielmann, H. L. 1999. Natural products from plants. Boca Raton, Florida: CRC Press. 343 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0120-2812200900020000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Kordali, S.; Cakirb, A.; Sutaya, S. 2007. Inhibitory effects of monoterpenes on seed germination and seedling growth. <i>J Biosc</i> 62(3-4): 207-214.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S0120-2812200900020000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Palomino, M; Mier B, C. 1995. Detecci&oacute;n de metabolitos secundarios. Palmira: Universidad Nacional de Colombia. 3 –15 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0120-2812200900020000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Putnam, A. R.; Defrank, J.; Barnes, J. B. 1983. Explotation of allelopathy for weed control in annual and perennial cropping systems. <i>J Chem Ecol</i> 9 (8):101-111.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0120-2812200900020000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Putman, A. 1988. 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Palmira: Universidad Nacional de Colombia. p 22-60.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0120-2812200900020000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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