<?xml version="1.0" encoding="ISO-8859-1"?><article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance">
<front>
<journal-meta>
<journal-id>0120-4157</journal-id>
<journal-title><![CDATA[Biomédica]]></journal-title>
<abbrev-journal-title><![CDATA[Biomédica]]></abbrev-journal-title>
<issn>0120-4157</issn>
<publisher>
<publisher-name><![CDATA[Instituto Nacional de Salud]]></publisher-name>
</publisher>
</journal-meta>
<article-meta>
<article-id>S0120-41572005000100014</article-id>
<title-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Utilidad de la detección de células citomegálicas circulantes en pacientes inmunosuprimidos VIH negativos en el control de la infección por citomegalovirus]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Utility of detection of circulating cytomegalic cells in HIV negative immunosuppressed individuals to follow up cytomegalovirus infection]]></article-title>
</title-group>
<contrib-group>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Castaño]]></surname>
<given-names><![CDATA[María Eugenia]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sarmiento]]></surname>
<given-names><![CDATA[Mauricio]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Lázaro]]></surname>
<given-names><![CDATA[Vélez]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A02"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[González]]></surname>
<given-names><![CDATA[Juan Carlos]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Cuéllar]]></surname>
<given-names><![CDATA[Francisco]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A03"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Rugeles]]></surname>
<given-names><![CDATA[María Teresa]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Bedoya]]></surname>
<given-names><![CDATA[Victoria Inés]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
</contrib-group>
<aff id="A01">
<institution><![CDATA[,Universidad de Antioquia Corporación Biogénesis Grupo de Inmunovirología]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Medellín ]]></addr-line>
<country>Colombia</country>
</aff>
<aff id="A02">
<institution><![CDATA[,Universidad de Antioquia Facultad de Medicina Grupo de Inmunovirología]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Medellín ]]></addr-line>
<country>Colombia</country>
</aff>
<aff id="A03">
<institution><![CDATA[,Universidad de Antioquia Facultad de Medicina Unidad de Trasplantes de Médula Ósea]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Medellín ]]></addr-line>
<country>Colombia</country>
</aff>
<pub-date pub-type="pub">
<day>00</day>
<month>03</month>
<year>2005</year>
</pub-date>
<pub-date pub-type="epub">
<day>00</day>
<month>03</month>
<year>2005</year>
</pub-date>
<volume>25</volume>
<numero>1</numero>
<fpage>129</fpage>
<lpage>135</lpage>
<copyright-statement/>
<copyright-year/>
<self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0120-41572005000100014&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0120-41572005000100014&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0120-41572005000100014&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Objetivo. Buscar la correlación entre la presencia de células citomegálicas circulantes con la antigenemia pp65 para citomegalovirus y el desarrollo de complicaciones clínicas inherentes a infección y enfermedad por citomegalovirus. Materiales y métodos. Entre diciembre de 2002 y julio de 2003 se procesaron 110 muestras de sangre periférica, obtenidas de 46 pacientes inmunosuprimidos. La antigenemia pp65 y la presencia de células citomegálicas circulantes se determinaron mediante inmunofluorescencia indirecta utilizando un estuche comercial para la detección del antígeno pp65 de citomegalovirus. En leucocitos de sangre periférica, la antigenemia fue positiva cuando se encontró una o más células con tinción fluorescente, multilobulada y homogénea en el núcleo celular. Se determinó la presencia de células citomegálicas circulantes cuando se observaron células de gran tamaño (35 a 50 mym) con un patrón de tinción fluorescente extendido en todo el citoplasma celular en células mononucleares de sangre periférica. Resultados. Se encontraron ocho pruebas con antigenemia positiva, procedentes de siete pacientes (15%). De éstos, cuatro (57%) también presentaron células citomegálicas circulantes, tres habían recibido un trasplante renal y uno un trasplante hepático. El número de células positivas en la antigenemia fue mayor en los pacientes con trasplante renal que en el resto de pacientes inmunosuprimidos (457 vs.1,96; p<0,005). No se encontró asociación entre la presencia de células citomegálicas circulantes, la morbilidad, la mortalidad y el desarrollo de enfermedad injerto contra huésped (GVHD) (p<0,001). Discusión. No encontramos correlación entre la detección de células citomegálicas circulantes, la antigenemia y la mortalidad en estos pacientes. Sin embargo, es necesario realizar estudios prospectivos con un mayor número de individuos para determinar mejor dicha correlación y definir su utilidad clínica en pacientes inmunosuprimidos.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Objective. To correlate the presence of circulating citomegalic cells (CCC) with CMV pp65 antigenemia with the development of clinical complications as a result of cytomegalovirus (CMV) infection and disease. Materials and methods. Between December-2002 and July-2003, 110 peripheral blood samples obtained from 46 immunosupressed patients were processed. pp65 antigenemia and the presence of CCC were determined by indirect immunofluorescence using a commercial kit to detect CMV pp65 antigen. In peripheral blood leukocytes, antigenemia was positive when there was one or more cells with multilobulated, homogenous fluorescent stain in the nucleus. The presence of CCC in peripheral blood mononuclear cells was determined when an extended pattern of fluorescent stain in all the cytoplasm was observed in cells of 35 to 50 micrometers from. Results. 8 antigenemias from 7 patients (15%) were positive. Out of these, 4 (57%) were also positive for CCC, corresponding to 3 kidney transplant recipients and to 1 liver transplant recipient. The number of positive cells in antigenemia was greater in kidney-transplant recipients than in the rest of immunosupressed patients (457 vs.1.96, p< 0.005). There was not association between the presence of CCC, morbidity, mortality and the development of GVHD (p<0.001). Discussion. There was not any correlation between the detection of CCC, antigenemia and mortality in these patients. Nevertheless, further prospective studies with a greater number of individuals are required to rule out this correlation and to define the clinical used of this CCC in immunosupressed patients.]]></p></abstract>
<kwd-group>
<kwd lng="es"><![CDATA[citomegalovirus]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[antigenemia]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[células citomegálicas circulantes]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[inmunosupresión]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[cytomegalovirus]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[antigenemia]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[cytomegalic circulating cells]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[immunosuppression]]></kwd>
</kwd-group>
</article-meta>
</front><body><![CDATA[   <B><FONT FACE="Arial,Helvetica" SIZE=4>    <P ALIGN="CENTER">Utilidad de la detecci&oacute;n de c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes en</P>     <P ALIGN="CENTER">pacientes inmunosuprimidos VIH negativos en el control de la</P>     <P ALIGN="CENTER">infecci&oacute;n por citomegalovirus</P> </B></FONT><FONT FACE="Arial,Helvetica">    <P ALIGN="CENTER">Mar&iacute;a Eugenia Casta&ntilde;o <SUP>1</SUP>, Mauricio Sarmiento <SUP>1</SUP>, L&aacute;zaro V&eacute;lez <SUP>2</SUP>, Juan Carlos Gonz&aacute;lez <SUP>1</SUP>,</P>     <P ALIGN="CENTER">Francisco Cu&eacute;llar <SUP>3</SUP>, Mar&iacute;a Teresa Rugeles <SUP>1</SUP>,Victoria In&eacute;s Bedoya <SUP>1</P>     <P>1</SUP> Grupo de Inmunovirolog&iacute;a, Corporaci&oacute;n Biog&eacute;nesis, Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n, Colombia.</P> <SUP>    <P>2</SUP> Grupo Investigador de Problemas en Enfermedades Infecciosas (GRIPE), Facultad de Medicina, Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n, Colombia.</P> <SUP>    <P>3</SUP> Unidad de Trasplantes de M&eacute;dula &Oacute;sea, Facultad de Medicina, Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n, Colombia</FONT>.</P> <B><FONT FACE="Arial,Helvetica">    <P>Objetivo. </B>Buscar la correlaci&oacute;n entre la presencia de c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes con la antigenemia pp65 para citomegalovirus y el desarrollo de complicaciones cl&iacute;nicas inherentes a infecci&oacute;n y enfermedad por citomegalovirus.</P> <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Materiales y m&eacute;todos. </B>Entre diciembre de 2002 y julio de 2003 se procesaron 110 muestras de sangre perif&eacute;rica, obtenidas de 46 pacientes inmunosuprimidos. La antigenemia pp65 y la presencia de c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes se determinaron mediante inmunofluorescencia indirecta utilizando un estuche comercial para la detecci&oacute;n del ant&iacute;geno pp65 de citomegalovirus. En leucocitos de sangre perif&eacute;rica, la antigenemia fue positiva cuando se encontr&oacute; una o m&aacute;s c&eacute;lulas con tinci&oacute;n fluorescente, multilobulada y homog&eacute;nea en el n&uacute;cleo celular. Se determin&oacute; la presencia de c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes cuando se observaron c&eacute;lulas de gran tama&ntilde;o (35 a 50 mm) con un patr&oacute;n de tinci&oacute;n fluorescente extendido en todo el citoplasma celular en c&eacute;lulas mononucleares de sangre perif&eacute;rica.</P> <B>    <P>Resultados. </B>Se encontraron ocho pruebas con antigenemia positiva, procedentes de siete pacientes (15%). De &eacute;stos, cuatro (57%) tambi&eacute;n presentaron c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes, tres hab&iacute;an recibido un trasplante renal y uno un trasplante hep&aacute;tico. El n&uacute;mero de c&eacute;lulas positivas en la antigenemia fue mayor en los pacientes con trasplante renal que en el resto de pacientes inmunosuprimidos (457 vs.1,96; p&lt;0,005). No se encontr&oacute; asociaci&oacute;n entre la presencia de c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes, la morbilidad, la mortalidad y el desarrollo de enfermedad injerto contra hu&eacute;sped (GVHD) (p&lt;0,001).</P> <B>    <P>Discusi&oacute;n. </B>No encontramos correlaci&oacute;n entre la detecci&oacute;n de c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes, la antigenemia y la mortalidad en estos pacientes. Sin embargo, es necesario realizar estudios prospectivos con un mayor n&uacute;mero de individuos para determinar mejor dicha correlaci&oacute;n y definir su utilidad cl&iacute;nica en pacientes inmunosuprimidos.</P> <B>    <P>Palabras clave: </B>citomegalovirus, antigenemia, c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes, inmunosupresi&oacute;n.</P> <B>    <P>Presence of circulating cytomegalic cells in HIV negative immunosuppressed individuals following cytomegalovirus infection</P>     <P>Objective. </B>Immunofluorenscence methods to detect pp65 antigenemia were implemented for identifying the circulating virus-infected cells in individuals known to have cytomegalovirus infection and disease symptoms.</P> <B>    <P>Material and methods. </B>Between December-2002 and July-2003, 110 peripheral blood samples were obtained from 46 immunosuppressed patients. pp65 antigenemia and the presence of circulating cells were determined by indirect immunofluorescence using a commercial kit to detect CMV pp65 antigen in peripheral blood leukocytes. Antigenemia was positive when one or more cells was observed with multilobulated, homogenous fluorescent stain in the nucleus. The presence of infected circulating cells (peripheral blood mononuclear cells) was determined when an extended pattern of fluorescent stain was observed throughout the cytoplasm in cells of 35 to 50 µm.</P>     <P>&nbsp;<B>Results. </B>Eight antigenemias from 7 patients (15%) were positive. Of these, 4 (57%) were also positive for circulating infected cells and consisted of 3 kidney transplant recipients and 1 liver transplant recipient. The number of positive cells in antigenemia was greater in kidney-transplant recipients than in the rest of immunosupressed patients (457 vs.1.96, p&lt; 0.005). No association was seen between the presence of infected circulating cells, morbidity, mortality or the development of GVHD (p&lt;0.001).</P> <B>    <P>Conclusion. </B>No correlation was observed between the presence of infected cells, antigenemia and mortality. To substantiate the lack of correlation amongst these factors, prospective studies with larger sample sizes are necessary. These studies will aid in better defining the clinical application in immunosupressed patients.</P> <B>    <P>Keywords: </B>cytomegalovirus, antigenemia, cytomegalic circulating cells, immunosuppression.</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>La infecci&oacute;n por citomegalovirus (CMV) es altamente prevalente en los pa&iacute;ses en desarrollo; se calcula que 70% a 100% de sus adultos tienen evidencia serol&oacute;gica de haberse infectado con anterioridad pero, generalmente, se asocia con enfermedad s&oacute;lo en los individuos inmunodeficientes. La infecci&oacute;n primaria por CMV ocurre por contacto directo con l&iacute;quidos corporales de un individuo infectado, como tambi&eacute;n por las v&iacute;as transplacentaria, perinatal y sexual. En los individuos competentes inmunol&oacute;gicamente, los virus permanecen en estado latente o persisten como una infecci&oacute;n cr&oacute;nica con bajo nivel de replicaci&oacute;n (1,2). Sin embargo, en los pacientes inmunosuprimidos, como en los trasplantados de m&eacute;dula &oacute;sea y de &oacute;rganos s&oacute;lidos y en pacientes con el s&iacute;ndrome de inmunodeficiencia adquirida, el CMV es uno de los pat&oacute;genos oportunistas que ocasiona mayores tasas de morbilidad y mortalidad (1-3). Quienes enferman por CMV, generalmente, sufren de neumonitis grave, pero tambi&eacute;n pueden presentar gastroenteritis, hepatitis y retinitis (1). A pesar de que la terapia para tratar los pacientes con enfermedad por CMV es a menudo efectiva (ganciclovir e inmunoglobulina anti-CMV), la morbimortalidad contin&uacute;a siendo alta.</P>     <P>Como no es posible hacer un diagn&oacute;stico cl&iacute;nico preciso de infecci&oacute;n y enfermedad por CMV, se utilizan pruebas virol&oacute;gicas sensibles y r&aacute;pidas para el diagn&oacute;stico oportuno de la infecci&oacute;n activa. Entre &eacute;stas se encuentran la viremia, la antigenemia pp65, la PCR y la detecci&oacute;n de c&eacute;lulas endoteliales citomeg&aacute;licas (4-7). Para evaluar la presencia de replicaci&oacute;n activa del virus en receptores de trasplantes y en pacientes con neoplasias y otras enfermedades hematol&oacute;gicas inmunosupresoras, se han definido puntos de corte para cada una de las diferentes pruebas, por encima de los cuales es m&aacute;s probable que aparezca la enfermedad: 10 c&eacute;lulas infectadas por cada 150.000 leucocitos de sangre perif&eacute;rica inoculados en cultivo celular para la viremia; 100 leucocitos infectados por cada 150.000 leucocitos para la antigenemia pp65, y 1.000 copias de ADN viral en leucocitos para la concentraci&oacute;n de ADN viral en sangre, determinada por PCR, mientras que la presencia de una sola c&eacute;lula endotelial citomeg&aacute;lica es suficiente para sugerir enfermedad activa diseminada por CMV con compromiso de &oacute;rganos (6).</P>     <P>Los pacientes con infecci&oacute;n activa por CMV pueden presentar da&ntilde;os en el funcionamiento de los &oacute;rganos afectados, a&uacute;n sin s&iacute;ntomas cl&iacute;nicos de la enfermedad. Aunque los mecanismos fisiopatol&oacute;gicos inducidos por el virus no son claros, se cree que las c&eacute;lulas endoteliales est&aacute;n implicadas pues, por estudios histopatol&oacute;gicos, se ha determinado que estas c&eacute;lulas son blanco importante del CMV, junto con las c&eacute;lulas epiteliales y las c&eacute;lulas de m&uacute;sculo liso (8-10); adem&aacute;s, se han encontrado en sangre perif&eacute;rica durante el pico de antigenemia pp65 -o un poco despu&eacute;s- en pacientes con infecci&oacute;n activa por CMV (1,4,9,11-14).</P>     <P>&nbsp;</P>     <P>En c&eacute;lulas endoteliales citomeg&aacute;licas se han identificado prote&iacute;nas virales de origen temprano, inmediatamente temprano y tard&iacute;as, lo que indica infecci&oacute;n activa (4,12,15). La presencia de estas c&eacute;lulas en sangre perif&eacute;rica puede tambi&eacute;n estar relacionada con la gravedad de la enfermedad por CMV y el compromiso de &oacute;rganos (4,12,16,17). Aunque no se ha podido confirmar la relaci&oacute;n entre los s&iacute;ntomas cl&iacute;nicos y la presencia de c&eacute;lulas endoteliales citomeg&aacute;licas en sangre (4,17), se ha demostrado que su presencia se asocia con ausencia o insuficiencia del tratamiento anti-CMV, o con la aparici&oacute;n de cepas resistentes al tratamiento antiviral. Tambi&eacute;n se asocia con la duraci&oacute;n de la enfermedad en el &oacute;rgano afectado (4,5).</P>     <P>Por todo lo anterior, se ha propuesto que la detecci&oacute;n de c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes sirve como un nuevo par&aacute;metro disponible para determinar la actividad de la enfermedad y la gravedad de la misma, para diagnosticar compromiso de &oacute;rganos por CMV y para el estudio temprano de la patog&eacute;nesis de infecciones diseminadas por CMV (4,12). El objetivo de este estudio fue correlacionar la presencia de c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes en sangre perif&eacute;rica con el resultado de la antigenemia pp65 y la presencia de enfermedad o complicaciones asociadas a CMV en pacientes inmunosuprimidos.</P> <B>    <P>Materiales y m&eacute;todos</P> <I>    <P>Pacientes</P> </B></I>    <P>Entre diciembre de 2002 y julio de 2003 se procesaron en el Laboratorio de Virolog&iacute;a de la Facultad de Medicina de la Universidad de Antioquia, 110 muestras de sangre perif&eacute;rica para la detecci&oacute;n de c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes y antigenemia pp65 para CMV. Estas muestras se obtuvieron de 46 pacientes inmunosuprimidos que, de acuerdo con el criterio del m&eacute;dico tratante, requer&iacute;an evaluaci&oacute;n de la infecci&oacute;n por CMV. Estos pacientes aceptaron voluntariamente participar en el estudio seg&uacute;n consta en el consentimiento informado; el estudio fue aprobado por el Comit&eacute; de &Eacute;tica de la Facultad de Medicina de la Universidad de Antioquia.</P>     <P>Seg&uacute;n el resultado de la antigenemia se evaluaba la necesidad de realizar pruebas de seguimiento Los datos demogr&aacute;ficos y de evoluci&oacute;n de los pacientes se obtuvieron de las historias cl&iacute;nicas. El tratamiento farmacol&oacute;gico para los pacientes con infecci&oacute;n activa por CMV fue determinado por el equipo m&eacute;dico a cargo, de acuerdo con los protocolos establecidos para el manejo de cada enfermedad.</P> <B><I>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Prueba de antigenemia para CMV</P> </B></I>    <P>Las muestras se procesaron con un estuche comercial (CMV Brite&Ocirc;, IQ Corporation, Netherlands) para la detecci&oacute;n del ant&iacute;geno pp65 de CMV en leucocitos de sangre perif&eacute;rica seg&uacute;n las instrucciones de los fabricantes. Los polimorfonucleares neutr&oacute;filos (PMN) se obtuvieron a partir de muestras de 5 ml de sangre venosa tratadas con EDTA, luego de separarlos por sedimentaci&oacute;n con dextrano. Para asegurar la pureza de las c&eacute;lulas blancas, se realiz&oacute; lisis de eritrocitos con cloruro de amonio al 0,8%; los leucocitos se lavaron dos veces con soluci&oacute;n salina amortiguada con fosfatos (PBS); luego, las c&eacute;lulas se cuantificaron en hemocit&oacute;metro y se ajust&oacute; su concentraci&oacute;n a 1,5x10</FONT><SUP><FONT FACE="Arial,Helvetica" SIZE=1>6</SUP></FONT><FONT FACE="Arial,Helvetica"> c&eacute;lulas por mililitro; de la diluci&oacute;n anterior se tomaron 100 ml (150.000 c&eacute;lulas) y se procesaron en citocentr&iacute;fuga (Cytospin 3, Shandon Corporation, USA) a 900 revoluciones por minuto durante 3 minutos en placas recubiertas con tefl&oacute;n (Shandon Corporation, USA); las muestras se dejaron secar a temperatura ambiente, se fijaron con paraformaldeh&iacute;do al 20% durante 10 minutos y se lavaron con PBS durante 5 minutos; luego, fueron permeabilizadas con Nonidet P-40 y lavadas con PBS durante 5 minutos; posteriormente, se a&ntilde;adieron 35 µl de anticuerpo monoclonal de rat&oacute;n contra la prote&iacute;na pp65 a los pozos de tefl&oacute;n que conten&iacute;an las muestras; todas las muestras se procesaron por duplicado. Las placas se incubaron durante 30 minutos a 37°C y se lavaron dos veces con PBS durante 2 minutos en cada lavado, para retirar los restos de anticuerpo no utilizado. Despu&eacute;s de esto, se a&ntilde;adieron 35 ml del anticuerpo antiglobulina de carnero conjugado con FITC y azul de Evans a cada pozo. Las placas se incubaron durante 30 minutos a 37°C y se lavaron dos veces con PBS por 2 minutos cada lavado. A cada placa se le agreg&oacute; glicerol como medio de montaje y se observaron en un microscopio de epifluorescencia (Nikon&reg;, Jap&oacute;n) a 250x.</P>     <P>El resultado se consider&oacute; positivo cuando se encontraron una o m&aacute;s c&eacute;lulas con tinci&oacute;n amarillo-verdosa (fluorescente), multilobuladas y homog&eacute;neas en el n&uacute;cleo celular (</FONT><A HREF="#figura1"><FONT FACE="Arial,Helvetica">figura 1</FONT></A><FONT FACE="Arial,Helvetica">), y negativo cuando las c&eacute;lulas no presentaron esta tinci&oacute;n. Como control positivo se utilizaron las placas suministradas por el fabricante del estuche, que contienen c&eacute;lulas pp65 positivas mezcladas con leucocitos ant&iacute;geno-negativos.</P>     <P><A NAME="figura1"></A></P> </FONT>    <P ALIGN="CENTER"><IMG SRC="/img/revistas/bio/v25n1/1a14i1.jpg"></P> <B><I><FONT FACE="Arial,Helvetica">    <P>Detecci&oacute;n de c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes</P> </B></I>    <P>La detecci&oacute;n de las c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes se realiz&oacute; seg&uacute;n la t&eacute;cnica descrita previamente (5). Brevemente, se obtuvo la fracci&oacute;n de c&eacute;lulas mononucleares a partir de 10 ml de sangre total, mediante gradiente de Fycoll- Hypaque (densidad 1.077, Sigma-Aldrich Corporation, St. Louis, MO, USA). Una vez obtenidas las c&eacute;lulas, se ajust&oacute; su concentraci&oacute;n a 1,5x10</FONT><SUP><FONT FACE="Arial,Helvetica" SIZE=1>6</SUP></FONT><FONT FACE="Arial,Helvetica"> c&eacute;lulas por mililitro; de la diluci&oacute;n anterior se tomaron 100 ml (150.000 c&eacute;lulas) y se procesaron en citocentr&iacute;fuga. Luego, se contin&uacute;o el proceso de lavado, tinci&oacute;n con anticuerpos, incubaci&oacute;n y montaje, de la misma manera como se describi&oacute; para la prueba de antigenemia.</P>     <P>La prueba se consider&oacute; positiva cuando se observ&oacute;, en c&eacute;lulas de gran tama&ntilde;o (aproximadamente, 35 a 50 µm), un patr&oacute;n de tinci&oacute;n fluorescente de color verde extendido en todo el citoplasma celular (</FONT><A HREF="#figura1"><FONT FACE="Arial,Helvetica">figura 1</FONT></A><FONT FACE="Arial,Helvetica">).</P> <B><I>    <P>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</P> </B></I>    <P>Los datos se almacenaron en una base de datos elaborada con el programa Microsoft Excel&reg; y se analizaron con el programa EpiInfo 2000&reg;. Los resultados se expresaron como medias, frecuencias y porcentajes. Para los an&aacute;lisis de cruces de las variables categ&oacute;ricas se utilizaron la prueba exacta de Fisher y la prueba de ji al cuadrado. Se aceptaron valores de <I>p</I>&lt;0,05 como estad&iacute;sticamente significantes.</P> <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Resultados</P> </B>    <P>Durante el per&iacute;odo de estudio se determin&oacute; la presencia del ant&iacute;geno pp65 de CMV en leucocitos de sangre perif&eacute;rica y la presencia de c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes en 46 pacientes inmunosuprimidos atendidos en el Hospital Universitario San Vicente de Pa&uacute;l y de la Cl&iacute;nica Las Am&eacute;ricas de Medell&iacute;n. La edad promedio fue de 28 a&ntilde;os (rango, 2 a 69) y la relaci&oacute;n de sexo (masculino/femenino) fue de 25/21. Los trasplantes, tanto de &oacute;rgano s&oacute;lido (25 pacientes) como de m&eacute;dula &oacute;sea (16 pacientes), fueron las condiciones inmunosupresoras m&aacute;s comunes. Cinco pacientes sufr&iacute;an leucemia linfoide aguda y uno, anemia apl&aacute;stica.</P>     <P>Se realizaron 110 ensayos de laboratorio para establecer la presencia de ant&iacute;geno pp65 y c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes (promedio de muestras por paciente: 2,37; rango: 1 a 14). Se encontraron ocho pruebas de antigenemia positivas que proced&iacute;an de siete pacientes (15,2%). De &eacute;stos, cuatro (57%) tambi&eacute;n presentaron c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes. No se present&oacute; ning&uacute;n caso de hallazgo de c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes en ausencia de antigenemia positiva (</FONT><A HREF="#cuadro1"><FONT FACE="Arial,Helvetica">cuadro 1</FONT></A><FONT FACE="Arial,Helvetica">).</P>     <P><A NAME="cuadro1"></A></P> </FONT>    <P ALIGN="CENTER"><IMG SRC="/img/revistas/bio/v25n1/1a14t1.gif"></P> <FONT FACE="Arial,Helvetica">    <P>Se observ&oacute; que los pacientes con trasplante renal presentaron mayores niveles de c&eacute;lulas positivas por la antigenemia que los pacientes con otro tipo de trasplante o inmunosupresi&oacute;n debida a otra enfermedad (promedio de c&eacute;lulas positivas: 457 vs.1,96; p&lt;0,005). Aunque todos los pacientes que presentaron c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes tambi&eacute;n presentaron antigenemia positiva, no todos los pacientes con antigenemia positiva presentaron c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes (p&gt;0,05). No se observ&oacute; asociaci&oacute;n estad&iacute;stica entre la presencia de c&eacute;lulas endoteliales y el n&uacute;mero de c&eacute;lulas positivas en la antigenemia.</P>     <P>Ninguno de los pacientes present&oacute; enfermedad por CMV. Si bien algunos pacientes presentaron procesos febriles y compromiso pulmonar, gastrointestinal o neurol&oacute;gico, siempre se demostr&oacute; otra causa, como infecciones bacterianas y f&uacute;ngicas, o complicaciones propias de los tratamientos realizados como la enfermedad de injerto contra hospedero, toxicidad gastrointestinal por f&aacute;rmacos o estados delirantes asociados con la medicaci&oacute;n m&uacute;ltiple (no se muestran los datos). </P>     <P>Al realizar el an&aacute;lisis bivariado no se encontr&oacute; asociaci&oacute;n entre la presencia de c&eacute;lulas endoteliales y la mortalidad, desarrollo de enfermedad de injerto contra hospedero ni enfermedad por CMV. Tampoco se encontr&oacute; asociaci&oacute;n entre los s&iacute;ntomas que presentaban los pacientes y la presencia de c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes. Todos los pacientes con antigenemia positiva recibieron terapia antiviral.</P> <B>    <P>Discusi&oacute;n</P> </B>    <P>El trasplante de &oacute;rganos s&oacute;lidos y de m&eacute;dula &oacute;sea se ha convertido en tratamiento vital para muchas enfermedades consideradas antes como fatales en nuestro medio. El uso de inmunosupresores es esencial para mantener la funci&oacute;n de los trasplantes pero predispone a infecciones por CMV. Por lo tanto, la prevenci&oacute;n de la infecci&oacute;n por CMV y el manejo oportuno de la enfermedad por CMV se han enfocado en el desarrollo de m&eacute;todos de diagn&oacute;stico, sensibles y espec&iacute;ficos, para identificar y tratar oportunamente a los pacientes con la enfermedad establecida o con riesgo de sufrirla.</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>En un estudio realizado por nuestro grupo, se logr&oacute; establecer que la antigenemia es una herramienta &uacute;til para el seguimiento y el diagn&oacute;stico temprano de los pacientes con trasplante de m&eacute;dula &oacute;sea. El tratamiento con terapia antiviral preventiva de dichos pacientes con infecci&oacute;n activa por CMV, demostrada por 1 c&eacute;lula pp65 positiva, redujo notablemente las complicaciones relacionadas con el CMV (18). Infortunadamente, esta conducta no se puede aplicar por igual a otros grupos de inmunosuprimidos, debido a factores inherentes a cada condici&oacute;n cl&iacute;nica tales como el grado de inmunosupresi&oacute;n, el compromiso endotelial variable y la necesidad de terapia antiviral agresiva. Adem&aacute;s, como no se ha logrado establecer la gravedad de la infecci&oacute;n por medio de la antigenemia, es necesario evaluar otros m&eacute;todos que permitan precisar la necesidad de tratamiento de acuerdo con la actividad de la infecci&oacute;n viral.</P>     <P>La detecci&oacute;n de c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes ha sido &uacute;til para establecer con mayor precisi&oacute;n la relaci&oacute;n entre infecci&oacute;n por CMV, actividad de la enfermedad y aspectos cl&iacute;nicos asociados. Una vez infectadas, las c&eacute;lulas endoteliales, blanco de la infecci&oacute;n aguda por CMV en pacientes inmunosuprimidos, se desprenden de la membrana basal y entran al torrente sangu&iacute;neo, en donde pueden encontrarse durante el pico de antigenemia pp65 (7-9).</P>     <P>Nuestro estudio trat&oacute; de establecer una posible correlaci&oacute;n entre la antigenemia y la detecci&oacute;n de c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes para diagnosticar actividad de la infecci&oacute;n y la enfermedad por CMV. Estudiados 46 pacientes inmunosuprimidos, se encontraron 7 (15%) con antigenemia positiva y 4 (9%) con c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes concomitantes. No encontramos asociaci&oacute;n estad&iacute;stica entre la presencia de c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes y el n&uacute;mero de c&eacute;lulas positivas por antigenemia, la mortalidad, la enfermedad de injerto contra hospedero y la enfermedad por CMV.</P>     <P>Otros autores como Kas Deelen <I>et al. </I>(4) estudiaron la interrelaci&oacute;n entre la presencia de c&eacute;lulas endoteliales citomeg&aacute;licas y la evoluci&oacute;n cl&iacute;nica en 314 muestras de 54 pacientes con trasplante renal. Reportaron la detecci&oacute;n de c&eacute;lulas endoteliales citomeg&aacute;licas en el 25% de los pacientes con infecci&oacute;n por CMV y una alta correlaci&oacute;n entre la presencia de altos recuentos de c&eacute;lulas endoteliales citomeg&aacute;licas y el rechazo agudo del &oacute;rgano trasplantado. De otro lado, Percivalle <I>et al. </I>(12) detectaron altos niveles de c&eacute;lulas endoteliales citomeg&aacute;licas en pacientes con trasplante de coraz&oacute;n-pulm&oacute;n con inmunosupresi&oacute;n farmacol&oacute;gica intensiva, y Slazbeger <I>et al. </I>(13) demostraron bajos niveles de c&eacute;lulas endoteliales citomeg&aacute;licas en pacientes con trasplante de m&eacute;dula &oacute;sea.</P>     <P>Una de las limitaciones de nuestro estudio fue el n&uacute;mero muy bajo de pacientes con transplante renal con antigenemia positiva, apenas 5 de 22; en s&oacute;lo 3 de ellos (14%) se detect&oacute; la presencia concomitante de c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes, por lo cual es dif&iacute;cil correlacionar &eacute;stas con antigenemia positiva y evoluci&oacute;n cl&iacute;nica de los pacientes. Sin embargo, en nuestros resultados fue obvio que la antigenemia fue mayor en los pacientes con trasplante renal, en los cuales la presencia de c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes pareci&oacute; asociarse, al menos, en 3 de 4 pacientes, con valores altos de antigenemia (cuadro 1).</P>     <P>En este estudio no se pudo demostrar asociaci&oacute;n entre la detecci&oacute;n de c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes, la presencia de antigenemia y la mortalidad. Consideramos que la heterogeneidad de los pacientes incluidos y el bajo tama&ntilde;o de la muestra son aspectos que influyeron en los resultados encontrados. Adem&aacute;s, factores tales como el tipo de trasplante, el grado de inmunosupresi&oacute;n y el tratamiento antiviral pudieron influir no s&oacute;lo en el curso de la infecci&oacute;n citomeg&aacute;lica, sino tambi&eacute;n en el compromiso endotelial y, por tanto, en el n&uacute;mero de c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes detectadas.</P>     <P>Aunque existe correlaci&oacute;n entre la gravedad de la enfermedad y la carga viral medida por los niveles de antigenemia o ADN viral por PCR, se puede presentar enfermedad con bajos niveles de carga viral, y pueden existir viremias altas en ausencia de enfermedad (19,20). En estos casos, es cuando la detecci&oacute;n de c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes pudiera tener un impacto significativo en el manejo de los pacientes con trasplante. Los resultados de nuestro trabajo obligan a desarrollar estudios prospectivos con grupos uniformes de pacientes delimitados por su tipo de inmunosupresi&oacute;n, para poder definir en cada grupo los puntos de corte (de c&eacute;lulas citomeg&aacute;licas circulantes y antigenemia pp65) relacionados con infecci&oacute;n, enfermedad activa y mortalidad por CMV. Ello contribuir&iacute;a significativamente al mejor cuidado de nuestros pacientes.</P> <B>    <P>Agradecimientos</P> </B>    <P>Los autores deseamos expresar nuestro agradecimiento a Amado Karduss de la Cl&iacute;nica Las Am&eacute;ricas por su valiosa colaboraci&oacute;n para llevar a cabo este estudio.</P> <B>    <P>Conflicto de intereses</P> </B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Los autores manifiestan que no existe ning&uacute;n conflicto de inter&eacute;s en el desarrollo y publicaci&oacute;n de este manuscrito.</P> <B>    <P>Financiaci&oacute;n</P> </B>    <P>Esta investigaci&oacute;n fue financiada por el Comit&eacute; para el Desarrollo de la investigaci&oacute;n (CODI) de la Universidad de Antioquia.</P>     <P>Correspondencia:</P>     <P>Victoria In&eacute;s Bedoya, Carrera 53 No. 61-30, piso 5, torre 2, laboratorio 532, Laboratorio de Inmunovirolog&iacute;a, Facultad de Medicina, Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n. Colombia.</P>     <P>Tel&eacute;fono: 210 6485; fax: 510 6047.</P> </FONT>    <P><A HREF="mailto:victoriabedoya@eudoramail.com">victoriabedoya@eudoramail.com</A></P> <FONT FACE="Arial,Helvetica">    <P ALIGN="JUSTIFY">Recibido: 27/07/04; aceptado: 09/12/04</P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">Referencias</P> <OL>      <P ALIGN="JUSTIFY">    ]]></body>
<body><![CDATA[<LI>Sia I, Patel R.</B> New strategies for prevention and therapy of cytomegalovirus infection and disease in solid-organ transplant recipients. Clin Microbiol Rev 2000;13:83-121.</LI></P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">    <LI>Crumpacker C.</B> Cytomegalovirus. En: Mandell G, Benett J, Dolin R, editors. Principles and practice of infectious diseases. New York: Churchill, Livingstone; 2000. p.1586-99.</LI></P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">    <LI>Meyers JD, Flournoy N, Thomas ED.</B> Risk factors for cytomegalovirus infection after human marrow transplantation. J Infect Dis 1986;153:478-88.</LI></P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">    <LI>Kas-Deelen AM, de Maar EF, Harmsen M, Driessen C, van Son WJ, The TH.</B> Uninfected and cytomegalic endothelial cells in blood during cytomegalovirus infections: effect of acute rejection. J Infect Dis 2000;181:721-4.</LI></P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">    <LI>Gerna G, Zavattoni M, Baldanti F, Furione M, Chezzi L, Revello MG <I>et al.</I> </B>Circulating cytomegalic endothelial cells are associated with high human cytomegalovirus (HCMV) load in AIDS patients with late-stage disseminated HCMV disease. J Med Virology<I> </I>1998;55:64-74.</LI></P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">    ]]></body>
<body><![CDATA[<LI>Gerna G, Percivalle E, Baldanti F, Sarasini A, Zavattoni M, Furione M <I>et al.</B></I> Diagnostic significance and clinical impact of quantitative assays for diagnosis of human cytomegalovirus infection/disease in immunocompromised patients. New Microbiol 1998;21:293-308.</LI></P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">    <LI>Razonable R, Paya CV, Smith TF.</B> Role of the laboratory in diagnosis and management of cytomegalovirus infection in hematopoietic stem cell and solid-organ transplant recipients. J Clin Microbiol 2002;40:746-52.</LI></P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">    <LI>Sinzger C, Grefter R, Plachter B, Gouw A, The TH, Jahn G</B>. Fibroblasts, epithelial cells, endothelial cells and smooth muscle cells are major targets of human cytomegalovirus infection in lung and gastrointestinal tissues. J Gen Virol 1995;76:741-50.</LI></P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">    <LI>Grefte A, Blom N, van der Giessen M, van Son W, The TH.</B> Ultraestructural analysis of circulating cytomegalic cells in patients with active CMV infection. J Infect Dis 1993;168:1110-8.</LI></P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">    <LI>Fish KN, Soderberg-Naucler C, Mills LK, Stenglein S, Nelson JA.</B> Human cytomegalovirus persistently infects aortic endothelial cells. J Virol 1998;72:5661-8.</LI></P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">    ]]></body>
<body><![CDATA[<LI>Boeckh M, Boivin G.</B> Quantitation of cytomegalovirus: methodologic aspects and clinical applications. Clin Microbiol Rev 2000;11:533-54.</LI></P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">    <LI>Percivalle E, Revello L, Vago F, Morini G, Gerna G.</B> Circulating endothelial giant cells permissive for human cytomegalovirus (HCMV) are detected in disseminated HCMV infections with organ involvement. J Clin Inv 1993;92:663-70.</LI></P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">    <LI>Slazbeger B, Myerzon D, Boeckh M.</B> Circulating CMV infected endothelial cells in marrow transplant patients with CMV disease and CMV infection. J Infect Dis 1997;176:778-81.</LI></P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">    <LI>Bek B, Boeckh M, Lepenies J, Bieniek B, Arasteh K, Heise W <I>et al.</B></I> High-level sensitivity of quantitative pp65 cytomegalovirus (CMV) antigenemia assay for diagnosis of CMV disease in AIDS patients and following up. J Clin Microbiol 1996;34:457-9.</LI></P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">    <LI>Grefte A, van der Giessen M, van Son W, The TH.</B> Circulating cytomegalovirus (CMV)-infected endothelial cells in patients with active CMV infection. J Infect Dis 1993;167:270-7.</LI></P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">    ]]></body>
<body><![CDATA[<LI>Bein G, Bitsch A, Hoyer J, Kirchner H.</B> The detection of human cytomegalovirus immediate early antigen in peripheral blood leukocytes. J Immunol Methods 1991;137:175-80.</LI></P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">    <LI>Gerna G, Revello E, Percivalle E, Morini F.</B> Correlation of quantitative human cytomegalovirus pp65, p72 and p150 antigenemia, viremia and circulating endothelial giant cells with clinical symptoms and antiviral treatment in immunocompromised patients. Clin Diagnos Virology 1993;1:47-59.</LI></P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">    <LI>Sarmiento-Maldonado M, Casta&ntilde;o-Orozco M, Bedoya-Escobar VI, Calle-Fernandez S, Velasquez-Lopera M, Gomez-Wolff R <I>et al.</B></I> Utility of antigenemia test for cytomegalovirus detection in hematopoietic transplant recipients: report of experiences from Medell&iacute;n, Colombia<I>. </I>Bone Marrow Transplant 2003;32:119-20.</LI></P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">    <LI>Boeckh M, Bowden RA, Goodarich J, Pettinger M, Meyers JD.</B> Cytomegalovirus antigen detection in peripheral blood leukocytes after allogenic bone marrow transplantation. Blood 1992;80:1358-64.</LI></P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">    <LI>Gerna G, Furione M, Baldanti F, Percivalle E, Comoli P, Locatelli F.</B> Quantitation of human cytomegalovirus DNA in bone marrow transplant recipients. Br J Hematol 1995;91:674-83</FONT><FONT FACE="Arial,Helvetica" SIZE=1>.</LI></P>    </OL> </FONT>    ]]></body>
<body><![CDATA[ ]]></body><back>
<ref-list>
<ref id="B1">
<label>1</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sia]]></surname>
<given-names><![CDATA[I]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Patel]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[New strategies for prevention and therapy of cytomegalovirus infection and disease in solid-organ transplant recipients.]]></article-title>
<source><![CDATA[Clin Microbiol Rev]]></source>
<year>2000</year>
<volume>13</volume>
<page-range>83-121</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B2">
<label>2</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Crumpacker]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Cytomegalovirus]]></article-title>
<person-group person-group-type="editor">
<name>
<surname><![CDATA[Mandell]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Benett]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Dolin]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Principles and practice of infectious diseases.]]></source>
<year>2000</year>
<page-range>1586-99</page-range><publisher-loc><![CDATA[New York ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Churchill, Livingstone]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B3">
<label>3</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Meyers]]></surname>
<given-names><![CDATA[JD]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Flournoy]]></surname>
<given-names><![CDATA[N]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Thomas]]></surname>
<given-names><![CDATA[ED]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Risk factors for cytomegalovirus infection after human marrow transplantation]]></article-title>
<source><![CDATA[J Infect Dis]]></source>
<year>1986</year>
<volume>153</volume>
<page-range>478-88</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B4">
<label>4</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Kas-Deelen]]></surname>
<given-names><![CDATA[AM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[de Maar]]></surname>
<given-names><![CDATA[EF]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Harmsen]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Driessen]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[van Son]]></surname>
<given-names><![CDATA[WJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[The]]></surname>
<given-names><![CDATA[TH]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Uninfected and cytomegalic endothelial cells in blood during cytomegalovirus infections: effect of acute rejection]]></article-title>
<source><![CDATA[J Infect Dis]]></source>
<year>2000</year>
<volume>181</volume>
<page-range>721-4</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B5">
<label>5</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Gerna]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Zavattoni]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Baldanti]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Furione]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Chezzi]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Revello]]></surname>
<given-names><![CDATA[MG]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Circulating cytomegalic endothelial cells are associated with high human cytomegalovirus (HCMV) load in AIDS patients with late-stage disseminated HCMV disease]]></article-title>
<source><![CDATA[J Med Virology]]></source>
<year>1998</year>
<volume>55</volume>
<page-range>64-74</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B6">
<label>6</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Gerna]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Percivalle]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Baldanti]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sarasini]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Zavattoni]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Furione]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Diagnostic significance and clinical impact of quantitative assays for diagnosis of human cytomegalovirus infection/disease in immunocompromised patients.]]></article-title>
<source><![CDATA[New Microbiol]]></source>
<year>1998</year>
<volume>21</volume>
<page-range>293-308</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B7">
<label>7</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Razonable]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Paya]]></surname>
<given-names><![CDATA[CV]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Smith]]></surname>
<given-names><![CDATA[TF]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Role of the laboratory in diagnosis and management of cytomegalovirus infection in hematopoietic stem cell and solid-organ transplant recipients]]></article-title>
<source><![CDATA[J Clin Microbiol]]></source>
<year>2002</year>
<volume>40</volume>
<page-range>746-52</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B8">
<label>8</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sinzger]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Grefter]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Plachter]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gouw]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[The]]></surname>
<given-names><![CDATA[TH]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Jahn]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Fibroblasts, epithelial cells, endothelial cells and smooth muscle cells are major targets of human cytomegalovirus infection in lung and gastrointestinal tissues.]]></article-title>
<source><![CDATA[J Gen Virol]]></source>
<year>1995</year>
<volume>76</volume>
<page-range>741-50</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B9">
<label>9</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Grefte]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Blom]]></surname>
<given-names><![CDATA[N]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[van der Giessen]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[van Son]]></surname>
<given-names><![CDATA[W]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[The]]></surname>
<given-names><![CDATA[TH]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Ultraestructural analysis of circulating cytomegalic cells in patients with active CMV infection.]]></article-title>
<source><![CDATA[J Infect Dis]]></source>
<year>1993</year>
<volume>168</volume>
<page-range>1110-8</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B10">
<label>10</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Fish]]></surname>
<given-names><![CDATA[KN]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Soderberg-Naucler]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Mills]]></surname>
<given-names><![CDATA[LK]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Stenglein]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Nelson]]></surname>
<given-names><![CDATA[JA]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Human cytomegalovirus persistently infects aortic endothelial cells.]]></article-title>
<source><![CDATA[J Virol]]></source>
<year>1998</year>
<volume>72</volume>
<page-range>5661-8</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B11">
<label>11</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Boeckh]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Boivin]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Quantitation of cytomegalovirus: methodologic aspects and clinical applications.]]></article-title>
<source><![CDATA[Clin Microbiol Rev]]></source>
<year>2000</year>
<volume>11</volume>
<page-range>533-54</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B12">
<label>12</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Percivalle]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Revello]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Vago]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Morini]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gerna]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Circulating endothelial giant cells permissive for human cytomegalovirus (HCMV) are detected in disseminated HCMV infections with organ involvement.]]></article-title>
<source><![CDATA[J Clin Inv]]></source>
<year>1993</year>
<volume>92</volume>
<page-range>663-70</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B13">
<label>13</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Slazbeger]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Myerzon]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Boeckh]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Circulating CMV infected endothelial cells in marrow transplant patients with CMV disease and CMV infection.]]></article-title>
<source><![CDATA[J Infect Dis]]></source>
<year>1997</year>
<volume>176</volume>
<page-range>778-81</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B14">
<label>14</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Bek]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Boeckh]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Lepenies]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bieniek]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Arasteh]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Heise]]></surname>
<given-names><![CDATA[W]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[High-level sensitivity of quantitative pp65 cytomegalovirus (CMV) antigenemia assay for diagnosis of CMV disease in AIDS patients and following up.]]></article-title>
<source><![CDATA[J Clin Microbiol]]></source>
<year>1996</year>
<volume>34</volume>
<page-range>457-9</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B15">
<label>15</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Grefte]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[van der Giessen]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[van Son]]></surname>
<given-names><![CDATA[W]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[The]]></surname>
<given-names><![CDATA[TH]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Circulating cytomegalovirus (CMV)-infected endothelial cells in patients with active CMV infection.]]></article-title>
<source><![CDATA[J Infect Dis]]></source>
<year>1993</year>
<volume>167</volume>
<page-range>270-7</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B16">
<label>16</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Bein]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bitsch]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hoyer]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kirchner]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The detection of human cytomegalovirus immediate early antigen in peripheral blood leukocytes.]]></article-title>
<source><![CDATA[J Immunol Methods]]></source>
<year>1991</year>
<volume>137</volume>
<page-range>175-80</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B17">
<label>17</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Gerna]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Revello]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Percivalle]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Morini]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Correlation of quantitative human cytomegalovirus pp65, p72 and p150 antigenemia, viremia and circulating endothelial giant cells with clinical symptoms and antiviral treatment in immunocompromised patients.]]></article-title>
<source><![CDATA[Clin Diagnos Virology]]></source>
<year>1993</year>
<volume>1</volume>
<page-range>47-59</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B18">
<label>18</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sarmiento-Maldonado]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Castaño-Orozco]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bedoya-Escobar]]></surname>
<given-names><![CDATA[VI]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Calle-Fernandez]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Velasquez-Lopera]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gomez-Wolff]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Utility of antigenemia test for cytomegalovirus detection in hematopoietic transplant recipients: report of experiences from Medellín, Colombia]]></article-title>
<source><![CDATA[Bone Marrow Transplant]]></source>
<year>2003</year>
<volume>32</volume>
<page-range>119-20</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B19">
<label>19</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Boeckh]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bowden]]></surname>
<given-names><![CDATA[RA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Goodarich]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Pettinger]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Meyers]]></surname>
<given-names><![CDATA[JD]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Cytomegalovirus antigen detection in peripheral blood leukocytes after allogenic bone marrow transplantation]]></article-title>
<source><![CDATA[Blood]]></source>
<year>1992</year>
<volume>80</volume>
<page-range>1358-64</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B20">
<label>20</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Gerna]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Furione]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Baldanti]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Percivalle]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Comoli]]></surname>
<given-names><![CDATA[P]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Locatelli]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Quantitation of human cytomegalovirus DNA in bone marrow transplant recipients.]]></article-title>
<source><![CDATA[Br J Hematol]]></source>
<year>1995</year>
<volume>91</volume>
<page-range>674-83</page-range></nlm-citation>
</ref>
</ref-list>
</back>
</article>
