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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Aislamiento de Cryptococcus gattii serotipo B a partir de detritos de Eucalyptus spp. en Colombia]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Isolation of Cryptococcus gattii serotype B from detritus of Eucalyptus trees in Colombia]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Recinto Universitario de Mayagüez Universidad de Puerto Rico ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction. Cryptococcus gattii serotype B has been associated with several species of trees in tropical and subtropical regions. Serotype B has been found to be the second most frequently isolated from patients in Colombia, but it has not been isolated from the environment. Therefore, a study was designed to sample plant material from a forest in the province of Cundinamarca, with the aim of establishing the presence and distribution of the C. neoformans complex, specially serotype B. In addition, isolates were evaluated for several phenotypic characteristics associated with virulence. Methodology. During February and March, 2003, 4 separate sample collections were made. One hundred sixty-seven samples were collected from detritus of eucalyptus and 28 samples from other species of trees. All were processed using the conventional procedure and plated on selective media. The following parameters were measured: cellular and capsular sizes in the filtrates, growth at 37°C, virulence in a mouse animal model system, and mating type as detected by PCR. Results. Cryptococcus gattii serotype B was isolated from 46 eucalyptus samples (27.5%). The cellular size in the filtrates ranged from 3.10 to 4.15 µm and the capsular size from 0.30 and 0.46 µm. The 46 isolates grew at 37°C, but none of them caused the death in the animals during 70-day observation period. All isolates were of mating type a. Conclusions. This constitutes the first report of the isolation of serotype B, mating type a, from eucalyptus detritus in Colombia.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[fenotipo, virulencia]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[   <B><FONT FACE="Arial" SIZE=4>    <P ALIGN="CENTER">Aislamiento de <I>Cryptococcus gattii</I> serotipo B</P>     <P ALIGN="CENTER">a partir de detritos de <I>Eucalyptus</I> spp. en Colombia</P> </B></FONT><FONT FACE="Arial">    <P ALIGN="CENTER">Patricia Escand&oacute;n </FONT><SUP><FONT FACE="Arial" SIZE=1>1</SUP></FONT><FONT FACE="Arial">, Elizabeth Quintero <SUP>2</SUP>, Diana Granados <SUP>1</SUP>, Sandra Hu&eacute;rfano <SUP>1</SUP>,</P>     <P ALIGN="CENTER">Alejandro Ruiz <SUP>2</SUP>, Elizabeth Casta&ntilde;eda <SUP>1</P>     <P>1</SUP> Grupo de Microbiolog&iacute;a, Instituto Nacional de Salud, Bogot&aacute;, D. C., Colombia. </P> <SUP>    <P>2</SUP> Universidad de Puerto Rico, Recinto Universitario de Mayag&uuml;ez, Puerto Rico.</P> <B>    <P>Introducci&oacute;n. </B><I>Cryptococcus</I> <I>gattii</I> serotipo B ha sido asociado con diferentes especies de &aacute;rboles en regiones tropicales y subtropicales. Este serotipo es el segundo de mayor importancia cl&iacute;nica en Colombia, pero no se hab&iacute;a recuperado del ambiente en ninguno de los estudios realizados por nuestro grupo. </P> <B>    <P>Objetivo. </B>Para establecer la presencia y distribuci&oacute;n de las especies del complejo <I>C. neoformans</I>, especialmente del serotipo B, y determinar algunas caracter&iacute;sticas fenot&iacute;picas relacionadas con la virulencia de los aislamientos recuperados, se dise&ntilde;&oacute; un muestreo de material vegetal en un bosque de piso t&eacute;rmico fr&iacute;o del departamento de Cundinamarca. </P> <B>    <P>Materiales y m&eacute;todos. </B>Durante febrero y marzo de 2003 se realizaron 4 muestreos en el bosque y se tomaron 167 muestras de detritos de eucaliptos y 28 muestras de otras especies de &aacute;rboles, las cuales se procesaron empleando el m&eacute;todo convencional de extracci&oacute;n y siembra en medio selectivo. Se determin&oacute; el tama&ntilde;o celular y capsular en los filtrados, el crecimiento a 37°C, la virulencia en un modelo animal y la pareja sexual por PCR. </P> <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Resultados. </B>Se aisl&oacute; <I>C. gattii</I> serotipo B de 46 muestras de eucaliptos (27,5%). El tama&ntilde;o celular en el extracto estuvo entre 3,10 y 4,15 µm y el tama&ntilde;o capsular entre 0,30 y 0,46 µm. Los 46 aislamientos crecieron a 37°C, pero ninguno de los dos aislamientos empleados caus&oacute; la muerte de los animales inoculados durante los 70 d&iacute;as de observaci&oacute;n. Todos los aislamientos fueron pareja sexual a. </P> <B>    <P>Conclusiones. </B>Este estudio es el primer informe sobre el aislamiento de <I>C. gattii,</I> serotipo B, pareja sexual a, en Colombia a partir de detritos de eucaliptos. </P> <B>    <P>Palabras clave: </B><I>Cryptococcus,</I> h&aacute;bitat, Eucalyptus, fenotipo, virulencia.</P> <B>    <P>Isolation of <I>Cryptococcus</I> <I>gattii</I> serotype B from detritus of <I>Eucalyptu</I>s trees in Colombia</P>     <P>Introduction. </B><I>Cryptococcus gattii</I> serotype B has been associated with several species of trees in tropical and subtropical regions. Serotype B has been found to be the second most frequently isolated from patients in Colombia, but it has not been isolated from the environment. Therefore, a study was designed to sample plant material from a forest in the province of Cundinamarca, with the aim of establishing the presence and distribution of the <I>C. neoformans </I>complex, specially serotype B. In addition, isolates were evaluated for several phenotypic characteristics associated with virulence. </P> <B>    <P>Methodology. </B>During February and March, 2003, 4 separate sample collections were made. One hundred sixty-seven samples were collected from detritus of <I>eucalyptus</I> and 28 samples from other species of trees. All were processed using the conventional procedure and plated on selective media. The following parameters were measured: cellular and capsular sizes in the filtrates, growth at 37°C, virulence in a mouse animal model system, and mating type as detected by PCR. </P> <B>    <P>Results. </B><I>Cryptococcus gattii</I> serotype B was isolated from 46 <I>eucalyptus</I> samples (27.5%). The cellular size in the filtrates ranged from 3.10 to 4.15 µm and the capsular size from 0.30 and 0.46 µm. The 46 isolates grew at 37°C, but none of them caused the death in the animals during 70-day observation period. All isolates were of mating type a. </P> <B>    <P>Conclusions. </B>This constitutes the first report of the isolation of serotype B, mating type a, from <I>eucalyptus</I> detritus in Colombia.</P> <B>    <P>Key words: </B>habitat, <I>Cryptococcus</I>, <I>Eucalyptus</I>, phenotype, virulence.</P>     <P>El complejo <I>Cryptococcus</I> <I>neoformans</I> est&aacute; conformado por cepas pat&oacute;genas para el hombre y los animales, las que ocasionan la criptococosis, entidad que es causa importante de morbilidad y mortalidad en pacientes inmunosuprimidos e inmunocompetentes (1). La infecci&oacute;n es adquirida por la inhalaci&oacute;n de los prop&aacute;gulos infectantes presentes en el ambiente y, por esta raz&oacute;n, es de gran importancia el estudio del h&aacute;bitat de este hongo (1-3). El complejo <I>C. neoformans</I> fue recientemente clasificado en 2 especies y 5 serotipos con base en sus caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas, bioqu&iacute;micas y gen&eacute;ticas, como sigue: <I>C. neoformans</I> variedad <I>grubi</I>i, serotipo A; <I>C. neoformans</I> variedad <I>neoformans,</I> serotipo D; C. <I>gattii,</I> serotipos B y C, y el h&iacute;brido serotipo AD (4-6).</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>La variedad <I>grubii </I>tiene una distribuci&oacute;n mundial y su h&aacute;bitat se asocia con excrementos de aves y detritos de diferentes especies de &aacute;rboles (3,7,8). La variedad <I>neoformans</I> est&aacute; restringida, especialmente, a pa&iacute;ses europeos y su h&aacute;bitat tambi&eacute;n se ha asociado con excrementos de aves (9). Por otra parte, <I>C. gattii</I> parec&iacute;a restringido a regiones tropicales y subtropicales; sin embargo, recientemente el serotipo B se asoci&oacute; con un brote de criptococosis ocurrido en la isla de Vancouver en Canad&aacute;, demostrando as&iacute; la habilidad de esta especie para establecer su h&aacute;bitat en regiones templadas (2,10). El serotipo B se asocia principalmente con diferentes especies de eucaliptos en Australia, California y Papua, Nueva Guinea (2,11). El serotipo C s&oacute;lo ha sido recuperado a partir de detritos de almendros ( <I>Terminalia cattapa</I>) en Colombia (12) y en Puerto Rico (E. Quintero, comunicaci&oacute;n personal).</P>     <P>En Colombia, la frecuencia de los serotipos recuperados de pacientes con criptococosis es similar a la informada a nivel mundial: serotipo A, 95%; serotipo B, 4,1%, y serotipos D y C, 0,2% y 0,8%, respectivamente (Grupo Colombiano de Trabajo en Criptococosis. Abstracts, Sixth International Conference in <I>Cryptococcus</I> and <I>Cryptococcosis <U>,</I></U> Boston, Massachusetts, June 24-28, 2005. Abstract E5). Sin embargo, s&oacute;lo los serotipos A y C han sido recuperados a partir de fuentes ambientales (12-15).</P>     <P>Por este motivo, se dise&ntilde;&oacute; un estudio con el objeto de determinar la presencia y la distribuci&oacute;n de los serotipos del complejo <I>C. neoformans</I> en el ambiente, mediante un muestreo amplio en un piso t&eacute;rmico fr&iacute;o. Adem&aacute;s, se evaluaron algunas caracter&iacute;sticas fenot&iacute;picas de los aislamientos recuperados, relacionadas con la virulencia.</P>     <P>Los datos presentados son el resultado de la b&uacute;squeda del hongo en un bosque secundario localizado en La Calera, departamento de Cundinamarca (16). Se logr&oacute; recuperar por primera vez en Colombia aislamientos de <I>C. gattii</I>, serotipo B, a partir de detritos de eucaliptos. Adem&aacute;s, los estudios de virulencia realizados con dos aislamientos sugieren que &eacute;stos pueden ser clasificados como de baja virulencia y, tambi&eacute;n, que todos pertenecen a la pareja sexual a, constituy&eacute;ndose este &uacute;ltimo dato en otro marcador de la baja virulencia de los aislamientos (1).</P> <B>    <P>Materiales y m&eacute;todos</P>     <P>&Aacute;rea de estudio</P> </B>    <P>La Calera es un municipio ubicado en el departamento de Cundinamarca, a 28 kil&oacute;metros al noroeste de Bogot&aacute;, la capital de Colombia. Este municipio est&aacute; localizado a una latitud de 4°43 N y una longitud de 73°58 O y se caracteriza por tener dos pisos t&eacute;rmicos: fr&iacute;o y templado. La Calera est&aacute; ubicada a una altitud de 2.718 metros sobre el nivel del mar, su temperatura promedio es de 12,7°C y su precipitaci&oacute;n anual de 250 mm (16).</P> <B>    <P>Muestras</P> </B>    <P>Entre los meses de febrero y marzo de 2003, se realizaron 4 visitas al &aacute;rea, en las cuales se recogieron 195 muestras de detritos de &aacute;rboles. Cuatro de estas muestras de eucaliptos, se tomaron empleando la t&eacute;cnica del hisopo humedecido en soluci&oacute;n salina est&eacute;ril y frot&aacute;ndolo en los detritos (17). Las otras muestras se recogieron con una pala tomando 10 g, aproximadamente, que se colocaron en bolsas pl&aacute;sticas con cierre herm&eacute;tico.</P> <B>    <P>Procesamiento de las muestras</P> </B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Las muestras recolectadas con la t&eacute;cnica del hisopo se inocularon directamente en agar <I>Guizotia abyssinica</I> con suplemento de bifenil (0,1%), y se sembr&oacute; una caja por muestra (18). Las muestras recolectadas en bolsas se procesaron de la siguiente manera: se resuspendieron 5 g de cada una en 25 ml de soluci&oacute;n tamp&oacute;n fosfato salino pH 7,4; se mezclaron durante 30 minutos y se filtraron a trav&eacute;s de una gasa est&eacute;ril. Posteriormente, al filtrado se le adicionaron 50 µl de una soluci&oacute;n con 20U de penicilina y 40U de estreptomicina; se inocularon 100 µl de este filtrado en el medio <I>G. abyssinica</I> con suplemento de bifenil y antibi&oacute;ticos a las concentraciones ya mencionadas. El medio se incub&oacute; a 25°C durante 10 d&iacute;as y, posteriormente, se realiz&oacute; el recuento de las unidades formadoras de colonia por gramo de muestra (UFC/g) (18).</P>     <P>Adem&aacute;s, los filtrados se usaron para realizar una observaci&oacute;n directa al microscopio, con tinta china, y con el objetivo de 40X se determin&oacute; la presencia de c&eacute;lulas capsuladas. En dos de los filtrados que fueron positivos por observaci&oacute;n directa se determin&oacute;, tambi&eacute;n, el tama&ntilde;o celular y capsular de las levaduras; la lectura del di&aacute;metro se realiz&oacute; con el empleo de un micr&oacute;metro ocular con resoluci&oacute;n de 1 µm y con el objetivo 100X. En cada uno de los filtrados se realizaron 20 mediciones del tama&ntilde;o celular y capsular, las cuales fueron promediadas (19). El pH de las muestras recolectadas en bolsas se determin&oacute; resuspendiendo 1 g de cada muestra en 10 ml de soluci&oacute;n de CaCl</FONT><SUB><FONT FACE="Arial" SIZE=1>2</SUB></FONT><FONT FACE="Arial"> (0,1M) (20).</P> <B>    <P>Identificaci&oacute;n</P> </B>    <P>Las colonias que mostraran color caf&eacute; en el medio de <I>G. abyssinica</I> por la acci&oacute;n de la enzima fenol oxidasa sobre el sustrato, se inocularon en agar glucosado de Sabouraud. Posteriormente, se realiz&oacute; la observaci&oacute;n microsc&oacute;pica en preparaciones con agua destilada y tinta china (19). Tambi&eacute;n se evalu&oacute; la producci&oacute;n de ureasa (21), se determin&oacute; la variedad empleando el medio canavanina, glicina, azul de bromotimol (CGB) (22) y el serotipo mediante aglutinaci&oacute;n con anticuerpos policlonales espec&iacute;ficos para el polisac&aacute;rido capsular (Crypto-Check, Iatron Laboratories, Tokyo, Japan). Los aislamientos recuperados se conservaron a -70°C en glicerol al 10% en la colecci&oacute;n del Grupo de Microbiolog&iacute;a. </P> <B>    <P>Caracter&iacute;sticas fenot&iacute;picas asociadas con la virulencia</P> </B>    <P>Se evalu&oacute; el crecimiento de los aislamientos en agar glucosado de Sabouraud a 37°C (19) y se estudi&oacute; la virulencia en un modelo animal (23). Se usaron ratones BALB/c machos de 3 a 5 semanas, obtenidos en el bioterio del INS. Durante el estudio se mantuvieron en la sala de alta seguridad del bioterio, con una humedad relativa entre 40% y 60% y una temperatura entre 18 y 22°C. El manejo de los animales se realiz&oacute; de acuerdo con las recomendaciones nacionales (Ley 84 de 1989, Resoluci&oacute;n 8430 de 1993), internacionales (Consejo de Comunidades Europeas y del Concilio Canadiense sobre el cuidado de animales de 1998) y el protocolo de uso de animales del INS. Se emplearon 5 ratones BALB/c para cada uno de los dos aislamientos evaluados, recuperados de las muestras que presentaron el mayor n&uacute;mero de UFC/g de muestra (INS H0058-1690 e INS H0058-1706) y dos controles: INS H0058-579 (serotipo A), que causa la muerte de los animales en 2 semanas, aproximadamente, e INS H0058-1320 (serotipo B) que no causa la muerte en los animales durante el per&iacute;odo de observaci&oacute;n establecido en este estudio (24). Cada animal fue inoculado con 5x10</FONT><SUP><FONT FACE="Arial" SIZE=1>5</SUP></FONT><FONT FACE="Arial"> UFC del aislamiento en la vena lateral de la cola, con observaci&oacute;n diaria durante 70 d&iacute;as; a los animales que murieron se les practic&oacute; la autopsia, al igual que a los que se encontraron adin&aacute;micos o erizados, previa eutanasia con CO</FONT><SUB><FONT FACE="Arial" SIZE=1>2</SUB></FONT><FONT FACE="Arial">. Los sobrevivientes se sacrificaron el d&iacute;a 70 posinoculaci&oacute;n, empleando eutanasia con CO</FONT><SUB><FONT FACE="Arial" SIZE=1>2</SUB></FONT><FONT FACE="Arial">. Se obtuvieron el cerebro, el bazo y el pulm&oacute;n de cada animal, los cuales se procesaron para determinar el n&uacute;mero de UFC/g de &oacute;rgano en agar glucosado de Sabouraud (23, 24).</P> <B>    <P>Pareja sexual</P> </B>    <P>Se determin&oacute; la pareja sexual mediante PCR con iniciadores espec&iacute;ficos dise&ntilde;ados para amplificar una regi&oacute;n del gen de la feromona a con un tama&ntilde;o de 109 pb (25) y el gen de la feromona a con un tama&ntilde;o de 213 pb (26). Las secuencias de los iniciadores empleados fueron:</P>     <P>MF</FONT><FONT FACE=Symbol>a</FONT><FONT FACE="Arial">U 5´TTCACTGCCATCTTCACCACC3´, MF</FONT><FONT FACE=Symbol>a</FONT><FONT FACE="Arial">L 5´TCTAGGCGATGACACAAAGGG3´, MF</FONT><FONT FACE=Symbol>a</FONT><FONT FACE="Arial">2U 5’ACACCGCCTG TTACAATGGAC3' y MF</FONT><FONT FACE=Symbol>a</FONT><FONT FACE="Arial">2L 5’CAGCGTTTGAAGATGGACTTT3'.</P>     <P>Primero se realiz&oacute; la PCR para la amplificaci&oacute;n del gen de la feromona a y en aquellos aislamientos que no amplificaron se realiz&oacute; la PCR para amplificar el gen de la feromona a. Las condiciones de la PCR para la amplificaci&oacute;n del gen de la feromona </FONT><FONT FACE=Symbol>a</FONT><FONT FACE="Arial">, para un volumen final de 50 µl, fueron: 1X de tamp&oacute;n de PCR, 200 mM de cada dNTP, 15 mM de MgCl</FONT><SUB><FONT FACE="Arial" SIZE=1>2</SUB></FONT><FONT FACE="Arial">, 0,2 µm de cada iniciador, 2,5 U de Taq polimerasa (Invitrogen) y 1 µl de ADN (extra&iacute;do por la t&eacute;cnica de ebullici&oacute;n o por la t&eacute;cnica de extracci&oacute;n con perlas de vidrio) (25,27,28). Para la amplificaci&oacute;n del gen de la feromona a se emplearon las condiciones anteriormente descritas, excepto que la concentraci&oacute;n de los iniciadores fue de 50 ng/ml (26). Se emplearon como cepas control los aislamientos INS H0058-1962 (CBS 884), serotipo A, pareja sexual a e INS H0058-1971 (CBS 6998), serotipo B, pareja sexual a (suministrados por Dee Carter de la Universidad de Sydney, Australia). Los productos de amplificaci&oacute;n se separaron en geles de agarosa al 2% durante 1 hora a 100 voltios y se visualizaron en un transiluminador de luz ultravioleta para la posterior toma de la fotograf&iacute;a.</P> <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Resultados</P>     <P>Recuperaci&oacute;n de <I>Cryptococcus gattii</P> </B></I>    <P>Entre febrero 6 y marzo 12 se obtuvieron 167 muestras de <I>Eucalyptus</I> spp. y 28 de otras especies de &aacute;rboles que se encontraban en la zona, incluidos pinos ( <I>Pinus sp.</I>), &aacute;rbol blanco de ra&iacute;z de serpiente ( <I>Ageratina altissima</I>), laurel ( <I>Laurus nobilis</I>), raque ( <I>Vallea stipularis</I>) y guaba ( <I>Phytolacca bogotensis</I>). De algunos de los &aacute;rboles se obtuvieron muestras en m&aacute;s de una ocasi&oacute;n. <I>C. gattii</I>, serotipo B se recuper&oacute; a partir de 46 (27,5%) de las 167 muestras de eucaliptos procesadas. Dos de las muestras positivas se recuperaron por la t&eacute;cnica del hisopo humedecido en soluci&oacute;n salina est&eacute;ril. El porcentaje de muestras positivas en las diferentes fechas fue: febrero 6, 3/40 (7,5%), marzo 6, 32/40 (80%) y marzo 12, 11/87 (12,5%). El hongo no se aisl&oacute; de las muestras recolectadas a partir de otras especies de &aacute;rboles. La temperatura ambiental promedio en el sitio de muestreo, en los meses de febrero y marzo, estuvo entre 12,8 y 13,1°C.</P>     <P>La densidad de la poblaci&oacute;n de <I>C. gattii </I>en las muestras positivas estuvo entre 50 y 15x10</FONT><SUP><FONT FACE="Arial" SIZE=1>6 </SUP></FONT><FONT FACE="Arial">UFC/g </FONT><A HREF="#cuadro1"><FONT FACE="Arial">. (cuadro 1) </FONT></A><FONT FACE="Arial">La observaci&oacute;n microsc&oacute;pica realizada en los filtrados de las 46 muestras de las que se hab&iacute;a recuperado el hongo, confirm&oacute; la presencia de levaduras con c&aacute;psulas peque&ntilde;as en 30 (65,2%) de &eacute;stas. Dos de los filtrados que presentaron el mayor n&uacute;mero de levaduras en la preparaci&oacute;n con tinta china (15x10</FONT><SUP><FONT FACE="Arial" SIZE=1>3</SUP></FONT><FONT FACE="Arial"> 15x10</FONT><SUP><FONT FACE="Arial" SIZE=1>6</SUP></FONT><FONT FACE="Arial"> UFC/ g), se seleccionaron para determinar el tama&ntilde;o celular y capsular de las mismas. El tama&ntilde;o celular en los dos filtrados estuvo entre 3,10±0,83 µm y 4,15±0,67 µm y el tama&ntilde;o capsular entre 0,46±0,29 µm y 0,30±0,10 µm, respectivamente.</P>     <P><A NAME="cuadro1"></A></P> </FONT>    <P ALIGN="CENTER"><IMG SRC="../img/revistas/bio/v25n3/3a14t1.gif"></P> <FONT FACE="Arial">    <P>El pH de las muestras oscil&oacute; entre 3,3 y 7,2, tanto en las muestras positivas como en las negativas.</P> <B>    <P>Caracter&iacute;sticas fenot&iacute;picas asociadas con la virulencia</P> </B>    <P>Los 46 aislamientos de <I>C. gattii</I> crecieron a 37°C.</P>     <P>Los dos aislamientos seleccionados para evaluar la virulencia en el modelo animal no fueron letales para los animales durante el per&iacute;odo de observaci&oacute;n de 70 d&iacute;as; sin embargo, en la autopsia realizada se observ&oacute; la aparici&oacute;n de criptococomas en el pulm&oacute;n y la diseminaci&oacute;n del hongo a cerebro, bazo y pulm&oacute;n, como se observa en la </FONT><A HREF="#figura1"><FONT FACE="Arial">figura 1</FONT></A><FONT FACE="Arial">. Los 5 animales inoculados con el aislamiento control serotipo A presentaron s&iacute;ntomas de letargia 12 d&iacute;as posinoculaci&oacute;n, por lo que fueron sacrificados inmediatamente; en la autopsia se observ&oacute; la diseminaci&oacute;n del hongo a cerebro, pulmones y bazo (</FONT><A HREF="#figura1"><FONT FACE="Arial">figura 1</FONT></A><FONT FACE="Arial">). En cuanto a los animales inoculados con el serotipo B, en la autopsia a los 70 d&iacute;as se observ&oacute; la aparici&oacute;n de hidrocefalia y diseminaci&oacute;n a cerebro, bazo y pulm&oacute;n (</FONT><A HREF="#figura1"><FONT FACE="Arial">figura 1</FONT></A><FONT FACE="Arial">).</P> <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P><A NAME="figura1"></A></P> </B></FONT>    <P ALIGN="CENTER"><IMG SRC="/img/revistas/bio/v25n3/3a14g1.jpg"></P> <FONT FACE="Arial">    <P>Determinaci&oacute;n de la pareja sexual</P>     <P>Todos los aislamientos amplificaron para el gen de la pareja sexual a, y generaron un fragmento de 213 pb, como se observa en la </FONT><A HREF="#figura2"><FONT FACE="Arial">figura 2</FONT></A><FONT FACE="Arial">, en la cual, igualmente, se ve la amplificaci&oacute;n del AND de la cepa INS H0058 1971 (CBS 6998), serotipo B, pareja sexual a, empleada como control. En ninguno de los aislamientos se obtuvo amplificaci&oacute;n con los iniciadores espec&iacute;ficos para la pareja sexual a.</P>     <P><A NAME="figura2"></A></P> </FONT>    <P ALIGN="CENTER"><IMG SRC="/img/revistas/bio/v25n3/3a14i1.jpg"></P> <FONT FACE="Arial">    <P>Discusi&oacute;n</P>     <P>El presente estudio se destaca como el primer informe acerca del aislamiento de <I>C. gattii</I>, serotipo B, pareja sexual a, a partir de detritos de eucaliptos en Colombia.</P>     <P>Actualmente, existen muchos interrogantes en cuanto a la ecolog&iacute;a del complejo <I>C. neoformans</I>, especialmente en cuanto a su ciclo de vida. Ellis, basado en sus hallazgos (2), propuso en 1990 que los eucaliptos eran el h&aacute;bitat primario de <I>C. gattii</I>, serotipo B; sin embargo, estudios posteriores indicaron que los eucaliptos no eran el &uacute;nico nicho ambiental del hongo, que la madera en descomposici&oacute;n podr&iacute;a servir como substrato para que se lleve a cabo una propagaci&oacute;n clonal y que el nicho ecol&oacute;gico primario pudiera estar asociado con otro tipo de material vegetal (29). Es as&iacute; como en Brasil se ha reportado el aislamiento del serotipo B de detritos de &aacute;rboles como <I>Moquilea tomentosa</I> (30) y en Colombia se public&oacute; el aislamiento del serotipo C a partir de detritos de almendros ( <I>Terminalia cattapa</I>) en C&uacute;cuta, Norte de Santander (12). As&iacute; mismo, se ha logrado recuperar el serotipo B a partir de &aacute;rboles diferentes a los eucaliptos en Buenos Aires, Argentina (31). Los aislamientos responsables del brote en la isla de Vancouver, Canad&aacute; fueron recuperados a partir del enebro ( <I>Juniperus virginiana</I>), del madro&ntilde;o <I>( Arbutus spp</I>.) y del arce ( <I>Acer sp</I>.), lo cual sugiere que este serotipo tambi&eacute;n se puede encontrar asociado con otras especies de &aacute;rboles (10). Por lo tanto, la frecuente recuperaci&oacute;n del hongo a partir de detritos sugiere que los &aacute;rboles son un elemento importante en el ciclo de vida de <I>C.</I> <I>gattii</I> (32), lo que se podr&iacute;a explicar por su capacidad de producir lacasa, enzima involucrada en el proceso de la degradaci&oacute;n de la lignina, y que la madera en descomposici&oacute;n sea un substrato adecuado para el crecimiento del hongo (1,2,8,29,32). Nuestros resultados sugieren que <I>C. gattii</I> puede, efectivamente, tener una asociaci&oacute;n con los eucaliptos, y los convirtierta en un nicho ecol&oacute;gico apropiado para su supervivencia en el ambiente colombiano. </P>     <P>Por otra parte, el peque&ntilde;o tama&ntilde;o de las levaduras (3,10 a 4,15 µm) en las muestras que permitieron la recuperaci&oacute;n del hongo en este estudio, tiene gran importancia debido a que los prop&aacute;gulos de menor tama&ntilde;o (&lt;3 µm) pueden llegar hasta los alv&eacute;olos pulmonares e iniciar la infecci&oacute;n en el humano. Lo anterior parece indicar que estos &aacute;rboles representan un reservorio que sirve como foco de infecci&oacute;n para el hombre y los animales (1,29,33).</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Los resultados obtenidos en relaci&oacute;n a la medici&oacute;n del pH de las muestras sugieren que esta variable no es un determinante del h&aacute;bitat del hongo, debido al amplio rango de pH que presentaron las muestras (3,3 a 7,2).</P>     <P>En cuanto a la virulencia, se sabe que el crecimiento a 37°C es una condici&oacute;n b&aacute;sica para la patogenicidad (1,34). Los aislamientos recuperados en este estudio mostraron esta caracter&iacute;stica. Los dos aislamientos serotipo B recuperados y utilizados en la evaluaci&oacute;n de la virulencia en el modelo animal no produjeron la muerte de los animales durante el per&iacute;odo de observaci&oacute;n, lo cual concuerda con estudios realizados previamente donde se demostr&oacute; que la virulencia es menor para <I>C. gattii</I> que para <I>C. neoformans</I> var. <I>grubii</I> (33, 34).</P>     <P>La pareja sexual de los aislamientos del complejo <I>C. neoformans</I> ha sido tradicionalmente determinada mediante apareamientos <I>in vitro</I> con cepas control en medios de cultivo pobres en fuentes de nitr&oacute;geno (1); sin embargo, este m&eacute;todo presenta algunos problemas ya que el apareamiento es sensible a una gran variedad de condiciones ambientales como temperatura, disponibilidad de nutrientes y humedad (1,35). Por lo tanto, se han desarrollado nuevos m&eacute;todos para determinar los alelos de la pareja sexual de este hongo, como la PCR con iniciadores espec&iacute;ficos empleada en este estudio. La amplificaci&oacute;n del gen de la pareja sexual a en todos los aislamientos pudiera indicar la presencia de una poblaci&oacute;n clonal, sugiriendo que esta clonalidad puede influenciar, o ser influenciada, por la ausencia de la pareja sexual opuesta en la naturaleza y limitar as&iacute; su recombinaci&oacute;n (36,37). Se ha encontrado que la prevalencia de la pareja sexual a sobre la pareja sexual a se debe a la gran capacidad de la primera de llevar a cabo el proceso de fructificaci&oacute;n haploide en ausencia de la pareja sexual opuesta (1,38,39). Sin embargo, esta prevalencia de la pareja sexual a sobre la a var&iacute;a seg&uacute;n lo han reportado diversos autores en varias regiones australianas; en Adelaida, al sur de Australia, se ha encontrado una proporci&oacute;n a:a de 26:0; en Queensland (sureste de Australia), 15:0; en New South Wales 2:27, lo cual sugiere en todos ellos que se est&aacute; llevando a cabo una reproducci&oacute;n clonal; mientras que en Renmark (noroeste de Australia), la proporci&oacute;n fue 10:6, lo que indica la posibilidad de que se est&eacute; presentando recombinaci&oacute;n sexual entre los aislamientos (37). El hallazgo de la pareja sexual a en todos los aislamientos recuperados en el presente estudio difiere de lo encontrado en los aislamientos del brote de criptococosis en Vancouver, los cuales correspondieron todos a la pareja sexual a (40), por lo que ser&iacute;a de gran inter&eacute;s realizar estudios colaborativos que nos permitieran comparar fenot&iacute;pica y genot&iacute;picamente estos dos grupos de aislamientos.</P>     <P>Los estudios posteriores realizados por el Grupo de Microbiolog&iacute;a, que no han sido publicados todav&iacute;a, han demostrado que todos los aislamientos de <I>C. gattii</I>, serotipo B, recuperados en La Calera, al ser tipificados molecularmente mediante PCR huella digital y RFLP, pertenecen al patr&oacute;n molecular VGII, lo cual sugiere nuevamente la presencia de una poblaci&oacute;n clonal, y se relaciona con el hecho de que todos los aislamientos causantes del brote en la isla de Vancouver, Canad&aacute;, tambi&eacute;n fueron agrupados dentro de este mismo patr&oacute;n molecular (40).</P>     <P>Este hallazgo constituye el primer informe del aislamiento de <I>C. gattii</I>, serotipo B, a partir de fuentes ambientales en Colombia y, por lo tanto, es la primera vez que se obtienen datos en cuanto a sus caracter&iacute;sticas fenot&iacute;picas como el tama&ntilde;o celular y capsular en la naturaleza, el crecimiento a 37°C y la pareja sexual, caracter&iacute;sticas que, aparentemente, est&aacute;n asociadas con la baja virulencia de los aislamientos evaluados en el modelo animal. Estos hallazgos corresponden con lo informado en la literatura y se&ntilde;alan el desconocimiento que tenemos sobre la patog&eacute;nesis de la criptococosis ocasionada por esta especie y serotipo y que se manifiesta en el hospedero inmunocompetente.</P>     <P>Financiaci&oacute;n</P>     <P>Del Instituto Colombiano para el Desarrollo de la Ciencia y la Tecnolog&iacute;a "Francisco Jos&eacute; de Caldas", Colciencias (c&oacute;digo 2104-04-11802), el Instituto Nacional de Salud y la Universidad de Puerto Rico.</P>     <P>Conflictos de intereses</P>     <P>Los autores declaran que no existe conflicto de inter&eacute;s en esta publicaci&oacute;n.</P>     <P>Correspondencia:</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Patricia Escand&oacute;n, Grupo de Microbiolog&iacute;a, Instituto Nacional de Salud, Avenida Calle 26 # 51–60, zona 6, CAN, Bogot&aacute;, D. C., Colombia.</P>     <P>Tel&eacute;fono: + (57) 1 220-7700, extensi&oacute;n 445, 446; fax: + (57) 1 220-7700, extensi&oacute;n 445</P> </FONT>    <P><A HREF="mailto:pescandon@ins.gov.co">pescandon@ins.gov.co</A></P> <FONT FACE="Arial">    <P>Recibido: 02/05/05; aceptado: 01/08/05</P>     <P>Referencias</P>     <!-- ref --><P>1. <B>Casadevall A, Perfect JR</B>. <I>Cryptococcus neoformans</I>. Washington, D. C.: American Society for Microbiology Press; 1998. p.541.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-4157200500030001400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>2. <B>Ellis DH, Pfeiffer TJ</B>. Natural habitat <I>of Cryptococcus</I> neoformans var. <I>gattii.</I> J Clin Microbiol 1990;28:1642-4.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-4157200500030001400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>3. <B>Sorrel TC, Ellis DH</B>. Ecology of <I>Cryptococcus neoformans</I>. Rev Iberoam Micol 1997;14:42-3.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-4157200500030001400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>4. <B>Franzot S, Salkin I, Casadevall A</B>. <I>Cryptococcus neoformans</I> var. <I>grubii</I>: separate varietal status for Cryptococcus neoformans serotype A isolates. J Clin Microbiol 1999;37:838-40.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-4157200500030001400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>5. <B>Boekhout T, Theelen B, Diaz M, Fell J, Hop W, Abeln E <I>et al</B></I>. Hybrid genotypes in the pathogenic yeast <I>Cryptococcus neoformans</I>. Microbiology 2001;147: 891-907.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-4157200500030001400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>6. <B>Kwon-Chung K, Boekhout T, Fell J, Diaz M</B>. Proposal to conserve the name <I>Cryptococcus gattii</I> against <I>C</I>. <I>hondurianus </I>and <I>C. bacillisporus</I> ( <I>Basidiomycota, Hymenomycetes, Tremellomycetidae</I>). Taxon 2002;51: 804-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-4157200500030001400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>7. <B>Emmons C</B>. Isolation of <I>Cryptococcus</I> <I>neoformans</I> from soil. J Bacteriol 1951;62:685-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-4157200500030001400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>8. <B>Lazera MS, Pires FDA, Coura C, Nishikawa MM, Bezerra CCF, Trilles L <I>et al</B></I>. Natural habitat of <I>Cryptococcus neoformans</I> in decaying wood forming hollows in living trees. J Med Vet Mycol 1996;34:127-31.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-4157200500030001400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>9. <B>Garcia-Hermoso D, Mathoulin-Pelissier S, Couprie B, Ronin O, Dupont B, Dromer F</B>. DNA typing suggest pigeon droppings as a source of pathogenic <I>Cryptococcus </I>neoformans serotype D. J Clin Microbiol 1997;35:2683-5.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-4157200500030001400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>10. <B>Stephen C, Lester S, Black W, Fyfe M, Raverty S</B>. Multispecies outbreak of <I>cryptococcosis</I> on southern Vancouver Island, British Columbia. Can Vet J 2002; 43:792-4.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-4157200500030001400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>11. <B>Sorrell T</B>. <I>Cryptococcus</I> <I>neoformans</I> variety <I>gattii</I>. Med Mycol 2001;39:155-68.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-4157200500030001400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>12. <B>Callejas A, Ordo&ntilde;ez N, Rodriguez MC, Casta&ntilde;eda E</B>. First isolation of <I>Cryptococcus neoformans</I> var. <I>gattii </I>serotype C, from the environment in Colombia. Med Mycol 1998;36:341-4.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-4157200500030001400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>13. <B>Quintero E, Casta&ntilde;eda E, Ruiz A</B>. Distribuci&oacute;n ambiental de <I>Cryptococcus</I> <I>neoformans</I> en el departamento de Cundinamarca, Colombia. Rev Iberoam Micol 2005;22:93-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-4157200500030001400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>14. <B>Caicedo LD, Alvarez MI, Delgado M, C&aacute;rdenas A.</B> <I>Cryptococcus neoformans</I> in bird excreta in the city zoo of Cali, Colombia. Mycopathologia 1991;147:121-4.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-4157200500030001400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>15. <B>Duarte A, Ord&oacute;&ntilde;ez N, Casta&ntilde;eda E</B>. Asociaci&oacute;n de levaduras del g&eacute;nero <I>Cryptococcus</I> con especies de <I>Eucalyptus</I> en Santaf&eacute; de Bogot&aacute;. Rev Inst Med Trop Sao Paulo 1994;36:125-30.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-4157200500030001400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>16. <B>Instituto Geogr&aacute;fico Agust&iacute;n Codazzi, Subdirecci&oacute;n de Investigaci&oacute;n y Divulgaci&oacute;n Geogr&aacute;fica</B>. Diccionario Geogr&aacute;fico de Colombia. Segunda edici&oacute;n. Bogot&aacute;, D. 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Phenotypic switching of <I>Cryptococcus neoformans</I> occurs in vivo and influences the outcome of infection. J Clin Invest 2001;108:1639-48.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-4157200500030001400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>24. <B>Hu&eacute;rfano S, Cepero MC, Casta&ntilde;eda E</B>. Caracterizaci&oacute;n fenot&iacute;pica de aislamientos ambientales de <I>Cryptococcus neoformans</I>. 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Isolation of both varieties of <I>Cryptococcus neoformans</I> from saprophytic sources in the city of Rio de Janeiro, Brazil. J Med Vet Mycol 1993;31:449-54.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-4157200500030001400030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>31. <B>Davel G, Abrantes R, Brudny M, Cordoba S, Rodero L, Canteros CE <I>et al</B></I>. 1st environmental isolation of <I>Cryptococcus neoformans</I> var. <I>gattii</I> in Argentina. 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Emerg Infect Dis 1998;4:71-83.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-4157200500030001400033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>34. <B>Casta&ntilde;eda E</B>. En b&uacute;squeda del h&aacute;bitat de <I>Cryptococcus neoformans</I> var. <I>gattii </I>en Colombia. Rev Acad Colomb Ciencias 2001;25:105-14.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-4157200500030001400034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>35. <B>Yan Z, Li X, Xu J</B>. Geographic distribution of mating type alleles of <I>Cryptococcus neoformans</I> in four areas of the United States. J Clin Microbiol 2002;40:965-72.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0120-4157200500030001400035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>36. <B>Kwon Chung KJ, Edman J, Wickes B</B>. Genetic association of mating types and virulence in <I>Cryptococcus neoformans.</I> Infect Immun 1992;60: 602-5.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-4157200500030001400036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><P>37. <B>Halliday C, Bui T, Krockenberger M, Malik R, Ellis D, Carter D</B>. 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