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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación del método ELISA de punto para el diagnóstico de la cisticercosis humana y para estimar valores de prevalencia en una región endémica en Colombia]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction. Cysticercosis is a worldwide public health problem. Currently it is diagnosed by detection of specific antibodies or by imaging techniques. Objective. To evaluate an alternative diagnostic tool, a simple antibody detection assay, called Dot ELISA, for immunological diagnosis of patients with neurocysticercosis as well as for endemic population screening. Materials and methods. The test was applied to cysticercosis patients, as well as to healthy controls and individuals with other parasitic infections. A total of 45 serum, 41 plasma and 23 cerebrospinal fluid samples were obtained from patients meeting clinical, surgical, imaging and laboratory criteria for cysticercosis. Samples were processed by enzyme-linked immuneelectro- transfer blot assay and by Dot ELISA. Controls included 37 serum, 64 plasma and 17 cerebrospinal fluid samples from healthy individuals without epidemiological history for taeniosiscysticercosis. Similarly, 43 plasma samples from patients with parasitic infections different from cysticercosis and 663 samples from population survey for cysticercosis were also evaluated. Results. A total of 933 samples were analyzed. In samples from cysticercosis patients and healthy control individuals, the Dot ELISA test showed an overall sensitivity of 80.7% (CI95%=80.2%-81.2%) and a specificity of 92.4% (CI95%=91.9%-92.8%). The Dot ELISA performed in serum had a sensitivity of 91.1%, in plasma 85.4%, and in cerebrospinal fluid 52.2%. Similarly, the same test performed in serum, plasma and cerebrospinal fluid, had a specificity of 100%, 85.9% and 100% respectively. The Dot ELISA was applied as a screening test for the diagnosis of cysticercosis in an endemic population in which 1.8% (12/663) of individuals had T. solium antibodies detected by Enzyme-linked immune-electro-transfer blot assay and showed a sensitivity of 58.3% (CI95% 54.0 - 62.7) and a specificity of 100% (CI95% 99.9 - 100.0) with a positive predictive value of 100% and a negative predictive value of 99.2%. All 43 samples from patients with parasitic infections different from cysticercosis were negative for both tests. Conclusions. These results indicated that Dot ELISA is a promising tool for the diagnosis of cysticercosis as a screening test, as well as for field epidemiological studies.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <B><FONT FACE="Arial" SIZE=4>    <P ALIGN="CENTER">Evaluaci&oacute;n del m&eacute;todo ELISA de punto para el diagn&oacute;stico de</P>     <P ALIGN="CENTER">la cisticercosis humana y para estimar valores de prevalencia</P>     <P ALIGN="CENTER">en una regi&oacute;n end&eacute;mica en Colombia</P> </B></FONT><FONT FACE="Arial">    <P ALIGN="CENTER">Piedad Agudelo <SUP>1</SUP>, David Botero <SUP>1</SUP> Luis Guillermo Palacio <SUP>2</P>     <P>1</SUP> Instituto Colombiano de Medicina Tropical-Instituto de Ciencias de la Salud, Medell&iacute;n, Colombia.</P> <SUP>    <P>2</SUP> Instituto Neurol&oacute;gico de Antioquia, Medell&iacute;n, Colombia</FONT><FONT FACE="Arial" SIZE=2>.</P> </FONT><B><FONT FACE="Arial">    <P>Introducci&oacute;n . </B>La cisticercosis contin&uacute;a siendo un problema de salud p&uacute;blica a nivel mundial. El diagn&oacute;stico de esta enfermedad se hace por medio de la detecci&oacute;n de anticuerpos espec&iacute;ficos y de t&eacute;cnicas de imaginolog&iacute;a.</P> <B>    <P>Objetivo. </B>Evaluar la ELISA de punto, m&eacute;todo inmunoenzim&aacute;tico, en la detecci&oacute;n de anticuerpos contra <I>Taenia solium</I> para ser usado tanto en pacientes con neurocisticercosis como en poblaciones donde es end&eacute;mica.</P> <B>    <P>Materiales y m&eacute;todos . </B>Se utilizaron 45 muestras de suero, 41 de plasma y 23 de l&iacute;quido cefalorraqu&iacute;deo de pacientes con cisticercosis confirmada seg&uacute;n criterios cl&iacute;nicos, quir&uacute;rgicos, imaginol&oacute;gicos y de laboratorio. Adem&aacute;s, se estudiaron 37 muestras de suero, 64 de plasma y 17 de l&iacute;quido cefalorraqu&iacute;deo de personas que no presentaban cisticercosis y que no ten&iacute;an antecedentes epidemiol&oacute;gicos de teniosis-cisticercosis. Se evaluaron tambi&eacute;n 43 muestras de suero de personas con parasitosis diferentes a cisticercosis y 663 muestras de suero de un estudio de seroprevalencia de cisticercosis en una comunidad rural colombiana. Las muestras se procesaron tanto por inmunoelectrotransferencia como por la ELISA de punto. La inmunoelectrotransferencia se utiliz&oacute; como prueba de oro para establecer la sensibilidad y la especificidad de la ELISA de punto. Se analizaron 933 muestras.</P> <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Resultados. </B>Con las 109 muestras de los individuos afectados por cisticercosis y las 118 muestras de controles sanos se hicieron los an&aacute;lisis estad&iacute;sticos de validaci&oacute;n de la prueba diagn&oacute;stica y se obtuvo para la ELISA de punto una sensibilidad total de 80,7% (IC95%: 80,2% a 81,2%) y una especificidad de 92,4% (IC95%: 91,9% a 92,8%). La ELISA de punto realizado con suero, plasma y l&iacute;quido cefalorraqu&iacute;deo tuvo una sensibilidad de 91,1%, 85,4% y 52,12%, respectivamente. La misma prueba evaluada en suero, plasma y l&iacute;quido cefalorraqu&iacute;deo tuvo una especificidad de 100%, 85,9% y 100%, respectivamente. Las 43 muestras de personas con otras parasitosis diferentes de cisticercosis fueron negativas para ambas pruebas.</P>     <P>Cuando la ELISA de punto se utiliz&oacute; para el diagn&oacute;stico de la cisticercosis en una poblaci&oacute;n end&eacute;mica colombiana en la que 1,81% (12/663) de las personas present&oacute; anticuerpos para <I>T. solium</I> por inmunoelectrotransferencia, la ELISA de punto present&oacute; una sensibilidad de 58,3% (IC95%: 54,0% a 62,7%) y una especificidad de 100% (IC95%: 99,9% a 100,0%) con un valor diagn&oacute;stico positivo de 100% y un valor diagn&oacute;stico negativo de 99,2%.</P> <B>    <P>Conclusi&oacute;n. </B>La ELISA de punto es una prueba promisoria como herramienta diagn&oacute;stica en estudios epidemiol&oacute;gicos de tamizaje.</P> <B>    <P>Palabras clave: </B>test de ELISA, <I>western blot</I>, <I>Taenia solium</I>, cisticercosis.</P> <B>    <P>Evaluation of the ELISA method for diagnosis of human cysticercosis in an endemic region</P>     <P>Introduction. </B>Cysticercosis is a worldwide public health problem. Currently it is diagnosed by detection of specific antibodies or by imaging techniques.</P> <B>    <P>Objective. </B>To evaluate an alternative diagnostic tool, a simple antibody detection assay, called Dot ELISA, for immunological diagnosis of patients with neurocysticercosis as well as for endemic population screening.</P> <B>    <P>Materials and methods. </B>The test was applied to cysticercosis patients, as well as to healthy controls and individuals with other parasitic infections. A total of 45 serum, 41 plasma and 23 cerebrospinal fluid samples were obtained from patients meeting clinical, surgical, imaging and laboratory criteria for cysticercosis. Samples were processed by enzyme-linked immuneelectro- transfer blot assay and by Dot ELISA. Controls included 37 serum, 64 plasma and 17 cerebrospinal fluid samples from healthy individuals without epidemiological history for taeniosiscysticercosis.</P>     <P>Similarly, 43 plasma samples from patients with parasitic infections different from cysticercosis and 663 samples from population survey for cysticercosis were also evaluated.</P> <B>    <P>Results. </B>A total of 933 samples were analyzed. In samples from cysticercosis patients and healthy control individuals, the Dot ELISA test showed an overall sensitivity of 80.7% (CI95%=80.2%-81.2%) and a specificity of 92.4% (CI95%=91.9%-92.8%). The Dot ELISA performed in serum had a sensitivity of 91.1%, in plasma 85.4%, and in cerebrospinal fluid 52.2%. Similarly, the same test performed in serum, plasma and cerebrospinal fluid, had a specificity of 100%, 85.9% and 100% respectively. The Dot ELISA was applied as a screening test for the diagnosis of cysticercosis in an endemic population in which 1.8% (12/663) of individuals had <I>T. solium</I> antibodies detected by Enzyme-linked immune-electro-transfer blot assay and showed a sensitivity of 58.3% (CI95% 54.0 - 62.7) and a specificity of 100% (CI95% 99.9 - 100.0) with a positive predictive value of 100% and a negative predictive value of 99.2%. All 43 samples from patients with parasitic infections different from cysticercosis were negative for both tests.</P> <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Conclusions. </B>These results indicated that Dot ELISA is a promising tool for the diagnosis of cysticercosis as a screening test, as well as for field epidemiological studies.</P> <B>    <P>Key words: </B>enzyme-linked immunosorbent assay, <I>western blot</I>, <I>Taenia solium</I>, cysticercosis. </P>     <P>La cisticercosis es una enfermedad parasitaria producida por la larva <I>Taenia solium</I> que afecta tanto al hombre como a los cerdos. Se adquiere al ingerir los huevos producidos por los adultos de este par&aacute;sito. Debido a que el ser humano es el &uacute;nico hospedero definitivo del par&aacute;sito adulto, esta parasitosis intestinal es el factor m&aacute;s importante de contaminaci&oacute;n (1).</P>     <P>Tanto en el hombre como en el cerdo, los huevos se desarrollan en cisticercos y alcanzan diferentes localizaciones tisulares. El sistema nervioso central (SNC) es el sitio de localizaci&oacute;n m&aacute;s frecuente, y all&iacute; se presenta la neurocisticercosis humana (1).</P>     <P>Esta parasitosis, conocida desde la antig&uuml;edad, es la m&aacute;s frecuente del SNC. Es considerada como un problema de salud p&uacute;blica en los pa&iacute;ses end&eacute;micos, y emerge como un importante problema de salud de dimensiones globales, debido a la migraci&oacute;n de individuos con la parasitosis intestinal desde las regiones consideradas end&eacute;micas. La Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud estima en 50.000 las muertes debidas a cisticercosis cada a&ntilde;o en el mundo (2-5).</P>     <P>El diagn&oacute;stico de la cisticercosis se hace con base en la informaci&oacute;n cl&iacute;nica y epidemiol&oacute;gica, en pruebas imaginol&oacute;gicas como la tomograf&iacute;a axial computarizada (TC) y la resonancia magn&eacute;tica (RM), y en pruebas serol&oacute;gicas como el inmunoensayo enzim&aacute;tico (ELISA) y la inmunoelectrotransferencia (EITB). La prueba de ELISA permite la detecci&oacute;n tanto de anticuerpos como de ant&iacute;genos. El EITB es la prueba m&aacute;s sensible y espec&iacute;fica de todas las de tipo inmunol&oacute;gico de las que se dispone actualmente (6-10).</P>     <P>Las pruebas diagn&oacute;sticas, a pesar de lo efectivas que pueden ser, presentan dificultades t&eacute;cnicas porque requieren una compleja implementaci&oacute;n que dif&iacute;cilmente esta disponible en centros de atenci&oacute;n en salud de primero y segundo nivel, ya que requieren personal altamente capacitado y tecnolog&iacute;a costosa.</P>     <P>Por las razones expuestas, el presente estudio busc&oacute; evaluar una prueba serol&oacute;gica r&aacute;pida y de f&aacute;cil aplicaci&oacute;n, el ELISA de punto (EP) o inmunopunto, para complementar el diagn&oacute;stico de la cisticercosis sin necesidad de tecnolog&iacute;a costosa. Se eval&uacute;o tambi&eacute;n la muestra biol&oacute;gica m&aacute;s apropiada para llevar a cabo la prueba. Una vez la prueba estuvo validada en condiciones de laboratorio, se determin&oacute; su sensibilidad y especificidad como m&eacute;todo de tamizaje para la identificaci&oacute;n de individuos con cisticercosis en una poblaci&oacute;n end&eacute;mica a trav&eacute;s de un estudio epidemiol&oacute;gico.</P> <B>    <P>Materiales y m&eacute;todos</P> </B>    <P>La recolecci&oacute;n de muestras para la evaluaci&oacute;n de la prueba se hizo en diferentes regiones de Antioquia y Choc&oacute;, departamentos localizados en la regi&oacute;n noroccidental de Colombia. Se obtuvieron 933 muestras con las que se conformaron los siguientes grupos de estudio: a) 109 muestras de pacientes con diagn&oacute;stico de cisticercosis, de las cuales 45 fueron de suero, 41 de plasma y 23 de LCR; b) 118 muestras de personas negativas para cisticercosis que no presentaban antecedentes cl&iacute;nicos y epidemiol&oacute;gicos de teniosiscisticercosis. De ellas, 37 eran de suero, 64 de plasma y 17 de LCR; c) 43 muestras de suero de pacientes con parasitosis diferentes a cisticercosis, y d) 663 muestras de suero de un estudio de seroprevalencia de cisticercosis (10).</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Las muestras positivas para cisticercosis fueron seleccionadas de acuerdo con criterios cl&iacute;nicos, quir&uacute;rgicos e imaginol&oacute;gicos; algunas fueron donadas por el Instituto Neurol&oacute;gico de Antioquia y otras remitidas para diagn&oacute;stico serol&oacute;gico al Instituto Colombiano de Medicina Tropical (ICMT). El diagn&oacute;stico cl&iacute;nico depende del n&uacute;mero, localizaci&oacute;n y viabilidad de los quistes. Todos los pacientes positivos presentaron signos y s&iacute;ntomas de neurocisticercosis, especialmente epilepsia de inicio despu&eacute;s de los 10 a&ntilde;os de edad que fue confirmada mediante estudio imaginol&oacute;gico (resonancia magn&eacute;tica o escanograf&iacute;a) para detectar al menos dos quistes viables localizados en el par&eacute;nquima cerebral. Algunas muestras pertenec&iacute;an a pacientes que fueron intervenidos quir&uacute;rgicamente por presentar neurocisticercosis y en quienes se confirm&oacute; la presencia del quiste mediante estudio histopatol&oacute;gico.</P>     <P>Las muestras negativas para cisticercosis y las muestras positivas para parasitosis diferentes a cisticercosis, utilizadas para determinar reacciones cruzadas, fueron obtenidas en el laboratorio del ICMT. Todas las muestras fueron conservadas a -20oC hasta su uso. Con el fin de determinar reacciones cruzadas con otras parasitosis se incluyeron 43 muestras de individuos con diagn&oacute;sticos diferentes a cisticercosis, entre ellas dos muestras de teniosis intestinal por <I>T. saginata</I>, cuatro de <I>Toxoplasma gondii</I>, 15 de <I>Strongyloides stercoralis</I>, una de <I>Dirofilaria sp</I>., dos muestras de parasitosis intestinales m&uacute;ltiples (uncinariosis, entamebosis, estrongiloidosis y giardiosis), dos de <I>Onchocerca volvulus</I>, una de <I>Brucella</I> sp., una de <I>Plasmodium</I> sp. y 15 de <I>Entamoeba histolytica</I>.</P>     <P>Este proyecto fue aprobado por el Comit&eacute; de &Eacute;tica del ICMT, pues cumpl&iacute;a con las normas establecidas por el Ministerio de Salud de Colombia en lo referente a la investigaci&oacute;n con personas y animales (Resoluci&oacute;n No 008430 de 1993). De acuerdo con esta resoluci&oacute;n, la investigaci&oacute;n se consider&oacute; de riesgo m&iacute;nimo. Se obtuvo consentimiento informado por escrito de todas las personas que participaron en la investigaci&oacute;n.</P>     <P>Todas las muestras se analizaron con las dos pruebas referenciadas (EP y EITB).</P> <B>    <P>Desarrollo del EP</P> </B>    <P>Los ant&iacute;genos se obtuvieron a partir de cisticercos de <I>T. solium</I> disecados del tejido muscular de dos cerdos infectados naturalmente y procedentes del departamento de Antioquia, Colombia. Luego de ser extra&iacute;dos, los cisticercos fueron lavados con soluci&oacute;n amortiguadora de fosfatos (PBS) pH 7,2 fr&iacute;a y se pesaron secos en papel de filtro dando un peso total de 150gr. Posteriormente fueron almacenados a -80°C hasta el d&iacute;a de su procesamiento.</P> <H4>Protocolo para obtenci&oacute;n del ant&iacute;geno crudo</H4>     <P>Se utiliz&oacute; la metodolog&iacute;a descrita por Grogl <I>et al</I>. (11) que, en t&eacute;rminos generales, consisti&oacute; en el lavado de los cisticercos con PBS fr&iacute;o al que se le agregaron 2 mM de fenilmetilsulfonilfluoruro (PMSF) como inhibidor enzim&aacute;tico. Despu&eacute;s, se homogenizaron los cisticercos a 0°C durante 100 ciclos en un homogenizador de tejidos TEKMAR Cincinnati Ultra-Turrax </FONT><FONT FACE="TT140DO00">&reg; </FONT><FONT FACE="Arial">TR-10 Power Control. El material obtenido fue sometido a rompimiento con ultrasonido en hielo por 6 ciclos de 3 minutos, cada uno a 20 kHz, con 30 segundos de intervalo de enfriamiento, en un sonicador Sonifier</FONT><FONT FACE="TT140DO00">&reg; </FONT><FONT FACE="Arial">modelo 200. El producto resultante fue centrifugado a 25.000 g durante una hora a 4°C y el sobrenadante fue dializado contra agua bidestilada est&eacute;ril y fr&iacute;a durante una noche, tras lo cual se hizo una medici&oacute;n preliminar de prote&iacute;nas por el m&eacute;todo de Bradford (12). El extracto antig&eacute;nico fue distribuido en al&iacute;cuotas y almacenado a - 80°C hasta su uso. Este ant&iacute;geno fue utilizado en la realizaci&oacute;n del EP.</P> <B>    <P>Desarrollo del EP</P> </B>    <P>El EP se efectu&oacute; siguiendo las consideraciones de Cardona y Agudelo (13). Para unir el ant&iacute;geno, se utiliz&oacute; como fase papel de nitrocelulosa (Bio- Rad Laboratories, Cat No 162-0117, Richmond CA, USA); esta se prehumedeci&oacute; en <I>buffer</I> salino fosfato (DPBS, D-5773,Sigma, St. Louis, MO, USA). Una vez pretratada, la membrana se coloc&oacute; en un aparato Bio Dot Microfiltration Apparatus marca Bio Rad Laboratories (Richmond CA, USA, referencia 170-6545). La membrana se humedeci&oacute; nuevamente con 100 uL por pozo de PBS y se hizo vac&iacute;o para drenar los pozos, luego se fij&oacute; el ant&iacute;geno a una concentraci&oacute;n de 3 ug/ml en 100ul por pozo de soluci&oacute;n amortiguadora de carbonatobicarbonato, pH 9,6. Este paso de fijaci&oacute;n del ant&iacute;geno a la membrana se llev&oacute; a cabo durante 2 horas. &Eacute;sta, y las dem&aacute;s incubaciones, se realizaron a temperatura ambiente y con agitaci&oacute;n constante en un agitador rotatorio. </P>     <P>Posteriormente, se procedi&oacute; a bloquear los sitios donde el ant&iacute;geno no se hab&iacute;a unido para evitar uniones inespec&iacute;ficas, utilizando una soluci&oacute;n de PBS y alb&uacute;mina s&eacute;rica bovina al 1% (BSA, Sigma, St. Louis, MO, USA) y polioxietilensorbitanomonolaurato Tween</FONT><FONT FACE="TT140DO00">&reg; </FONT><FONT FACE="Arial">20 (Merck, Schuchardt, 8011) al 0,05%. Este proceso se llev&oacute; a cabo durante una hora.</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Luego se procedi&oacute; a realizar tres lavados consecutivos con PBS-Tween</FONT><FONT FACE="TT140DO00">&reg; </FONT><FONT FACE="Arial">20 al 0,05%, despu&eacute;s de los cuales se adicionaron las muestras a ser evaluadas a las diferentes concentraciones determinadas en la estandarizaci&oacute;n, cuidando de que hubiera pozos blanco, muestras negativas y muestras positivas en cada lote procesado, con el prop&oacute;sito de realizar el control de calidad de la prueba. La concentraci&oacute;n para las muestras de suero y plasma fue de 1:50 y para LCR de 1:10, y el tiempo de incubaci&oacute;n fue de una hora.</P>     <P>Despu&eacute;s de realizar un nuevo lavado con la soluci&oacute;n ya se&ntilde;alada, se adicion&oacute; el conjugado previamente titulado de anti-inmunoglobulina G anti-humana marcada con peroxidasa (A-8792, Sigma St. Louis, MO, USA), a una concentraci&oacute;n de 1:2000 con 100 ul por pozo y durante una hora. Al cabo de este tiempo, y despu&eacute;s de un extensivo lavado, se procedi&oacute; a revelar la reacci&oacute;n con la soluci&oacute;n crom&oacute;gena 4-cloro-1-naftol (Immunopure Rockford, Illinois, USA. No 34010) y per&oacute;xido de hidr&oacute;geno (H</FONT><SUB><FONT FACE="Arial" SIZE=1>2</SUB></FONT><FONT FACE="Arial">O</FONT><SUB><FONT FACE="Arial" SIZE=1>2</SUB></FONT><FONT FACE="Arial"> Ultrex</FONT><FONT FACE="TT140DO00">&reg; </FONT><FONT FACE="Arial">Ultrapure, JT Baker, Phillipsburg, NJ, USA). La soluci&oacute;n se dej&oacute; reaccionar por espacio de 20 minutos, al cabo de los cuales la reacci&oacute;n se par&oacute; con agua destilada y se quit&oacute; la membrana del equipo. Esta membrana se dej&oacute; en lavado en agua destilada y en agitaci&oacute;n antes de proceder a secarla, para as&iacute; leer los pozos positivos o negativos de cada membrana.</P>     <P>La lectura se determin&oacute; de acuerdo al cambio de color presentado tanto en las muestras bajo evaluaci&oacute;n como en los controles negativos, en los positivos y en los pozos blanco que determinaron la coloraci&oacute;n de fondo de la prueba.</P> <B>    <P>Protocolo para la obtenci&oacute;n del extracto antig&eacute;nico de glicoprote&iacute;nas</P> </B>    <P>En el caso de la EITB, los ant&iacute;genos se obtuvieron en el Laboratorio de Teniosis y Cisticercosis de la UNAM de M&eacute;xico y consistieron en 7 glicoprote&iacute;nas semipurificadas, GP50, GP42-39, GP24, GP21, GP18, GP14 y GP13 (las letras GP indican la naturaleza glicoproteica de estos ant&iacute;genos y el n&uacute;mero denota su peso molecular en kd), de acuerdo a lo descrito por Tsang et al. (7). El protocolo se sigui&oacute; con algunas modificaciones, entre las que se cuenta la no utilizaci&oacute;n de m&eacute;todo de deslipidizaci&oacute;n alguno para la preparaci&oacute;n de las glicoprote&iacute;nas. En resumen, estas glicoprote&iacute;nas se obtuvieron por cromatograf&iacute;a de afinidad luego de su paso por una columna de lectina de lenteja-sefarosa</FONT><FONT FACE="TT140DO00">&reg;</FONT><FONT FACE="Arial">. Una vez purificados los ant&iacute;genos, y luego de haber determinado su concentraci&oacute;n proteica por el m&eacute;todo de Bradford (12), se les distribuy&oacute; en al&iacute;cuotas y se les almacen&oacute; a -80°C hasta su uso en la ejecuci&oacute;n del EITB, seg&uacute;n procedimiento descrito por Tsang <I>et al</I>. (7).</P> <B>    <P>Desarrollo del EITB</P> </B>    <P>En t&eacute;rminos generales, la t&eacute;cnica se realiz&oacute; utilizando minigeles en gradiente de 5% a 15% de soluci&oacute;n de poliacrilamida (Bio Rad Laboratories, Richmond CA, USA, referencia 161- 0146), y anti-inmunoglobulina G anti- humana (A-8792, Sigma St. Louis, MO, USA) marcada con peroxidasa como conjugado. Posteriormente, con el fin de revelar las reacciones ant&iacute;genoanticuerpo producidas frente a los sueros, se emple&oacute; como reveladores el sistema per&oacute;xido de hidr&oacute;geno/3,3´ diaminobenzidina (H2 O2/DAB, Aldrich Chemical Company, Inc. Milwaukee, WI, USA), o en otros casos, el sistema per&oacute;xido de hidr&oacute;geno/3,3´, 5,5´ tetrametilbenzidina (H</FONT><SUB><FONT FACE="Arial" SIZE=1>2</SUB></FONT><FONT FACE="Arial">O</FONT><SUB><FONT FACE="Arial" SIZE=1>2</SUB></FONT><FONT FACE="Arial"> /TMB, Kirkegaard &amp; Perry Laboratories, Gaithersburg, MA, USA). El criterio de positividad se determin&oacute;, seg&uacute;n lo recomendado, por la reacci&oacute;n de los sueros con al menos una de las 7 fracciones antig&eacute;nicas (GP 50, 42-39, 24, 21, 18, 14 y 13). Las muestras que reaccionaron con m&aacute;s de tres bandas diagn&oacute;sticas fueron utilizadas para conformar el grupo de positivos con el que se realiz&oacute; la validaci&oacute;n de la prueba de EP.</P> <B>    <P>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</P> </B>    <P>El an&aacute;lisis estad&iacute;stico se realiz&oacute; con base en el registro de los datos en una tabla de doble entrada, utilizando el programa EPIDAT 3.0 (SERGAS, Xunta de Galicia, OPS, OMS) (14). Con base en esto se calcularon la sensibilidad, la especificidad y los valores pron&oacute;sticos positivo y negativo de la prueba con sus intervalos de confianza de 95%. Se tom&oacute; como prueba de oro el EITB para hacer los c&aacute;lculos de sensibilidad y especificidad.</P> <B>    <P>Resultados</P> </B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Se estudiaron 933 muestras de suero, plasma o LCR de pacientes con cisticercosis, controles sanos, individuos con otras parasitosis o pertenecientes a un estudio de seroprevalencia de cisticercosis. En el </FONT><A HREF="#cuadro1">cuadro 1</A><FONT FACE="Arial"> se relacionan los resultados de sensibilidad y especificidad y los valores predictivos positivos y negativos obtenidos para el EP comparado con el EITB, y seg&uacute;n la muestra utilizada para realizar la prueba.</P>     <P><A NAME="cuadro1"></A></P> </FONT>    <P ALIGN="CENTER"><IMG SRC="/img/revistas/bio/v25n4/4a08t1.gif"></P> <FONT FACE="Arial">    <P>Despu&eacute;s de determinar los par&aacute;metros de sensibilidad y especificidad del EP para el diagn&oacute;stico de la cisticercosis en los grupos de estudio establecidos, se evalu&oacute; la utilidad de la prueba para determinar la seroprevalencia de cisticercosis en una poblaci&oacute;n end&eacute;mica colombiana en la que 1,81% (12/663) de las personas present&oacute; anticuerpos para <I>T. solium</I> con la EITB. El EP present&oacute; una sensibilidad de 58,3% (IC95%: 54,0% a 62,6%) y una especificidad de 100% (IC95%: 99,9% a 100,0%) con un valor diagn&oacute;stico positivo de 100% (IC95%: 92,9% a 100,0%) y un valor diagn&oacute;stico negativo de 99,2% (IC 95%: 99,2% a 99,3%).</P> <B>    <P>Discusi&oacute;n</P> </B>    <P>El amplio espectro de los s&iacute;ntomas de la cisticercosis hace dif&iacute;cil realizar un diagn&oacute;stico con base &uacute;nicamente en la presentaci&oacute;n cl&iacute;nica; de ah&iacute; que los m&eacute;todos imaginol&oacute;gicos e inmunodiagn&oacute;sticos sean un complemento &uacute;til (15,16).</P>     <P>A pesar de la utilidad diagn&oacute;stica de la TC y la RM, su uso rutinario es limitado debido al alto costo de los equipos, lo cual determina que su disponibilidad sea escasa y que no se puedan aplicar a estudios epidemiol&oacute;gicos en &aacute;reas end&eacute;micas (6,15,17). Los m&eacute;todos inmunodiagn&oacute;sticos para detectar anticuerpos en suero y LCR, disponibles para el diagn&oacute;stico de cisticercosis, se usan para confirmar hallazgos de TC y RM.</P>     <P>Recientemente, diversos grupos de investigadores han realizado estudios con el fin de mejorar los m&eacute;todos inmunodiagn&oacute;sticos disponibles. Hasta hace unos a&ntilde;os, en nuestro medio la prueba m&aacute;s empleada era la ELISA, reemplazada despu&eacute;s por el EITB, que tiene una sensibilidad de hasta 98% y de especificidad de 100% (7) cuando los pacientes presentan m&aacute;s de un quiste.</P>     <P>En este estudio se estandariz&oacute; y se evalu&oacute; la prueba de EP utilizando par&aacute;metros semejantes a los reportados por otros investigadores en diferentes regiones del mundo (18-22). Cabe anotar que esta investigaci&oacute;n registra el mayor n&uacute;mero de muestras procesadas (933), ofrece comparaci&oacute;n estad&iacute;stica entre diferentes muestras diagn&oacute;sticas y eval&uacute;a la prueba no s&oacute;lo a nivel de grupos de estudio predeterminados sino tambi&eacute;n a nivel de un grupo de poblaci&oacute;n general.</P>     <P>Los diferentes estudios que han empleado el EP como prueba inmunodiagn&oacute;stica para cisticercosis han encontrado valores de sensibilidad y especificidad que var&iacute;an aproximadamente entre 50% y 100% (18-22). Las diferencias de sensibilidad y especificidad reportadas frente a las obtenidas en este estudio pueden deberse a las diversas t&eacute;cnicas de preparaci&oacute;n del ant&iacute;geno, a las condiciones de ejecuci&oacute;n propias de las pruebas, as&iacute; como a la variabilidad existente en la composici&oacute;n antig&eacute;nica de <I>T. solium</I> y cisticercos obtenidos de diferentes fuentes de una misma regi&oacute;n o de regiones diferentes de un mismo pa&iacute;s, hecho documentado por varios autores (23-26).</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>La m&aacute;s alta sensibilidad se obtuvo cuando se utiliz&oacute; el suero sangu&iacute;neo como muestra para la realizaci&oacute;n del EP (91,1%), con la ventaja adicional de que es un procedimiento invasivo de m&iacute;nimo riesgo para su obtenci&oacute;n, lo que no sucede con el LCR, que es un procedimiento invasivo de mayor riesgo y con el que, adem&aacute;s, se obtuvo la mas baja sensibilidad (52,2%).</P>     <P>La sensibilidad y especificidad obtenidas para el EP realizado con suero (91,11% y 100%), y su alto valor pron&oacute;stico positivo (100%) en el estudio de seroprevalencia, ofrecen una combinaci&oacute;n ideal por ser una prueba diagn&oacute;stica de f&aacute;cil ejecuci&oacute;n y bajo costo en muestras de f&aacute;cil obtenci&oacute;n. </P>     <P>Las condiciones de ejecuci&oacute;n de la prueba son aplicables a cualquier laboratorio de &aacute;reas end&eacute;micas, proporcionando un instrumento &uacute;til de diagn&oacute;stico para los laboratorios que carezcan de equipo o personal entrenado. Por su f&aacute;cil implementaci&oacute;n y la estabilidad de los reactivos utilizados, constituye el m&eacute;todo de elecci&oacute;n para fines de vigilancia epidemiol&oacute;gica y para la evaluaci&oacute;n de programas de vigilancia y control de la teniosis-cisticercosis.</P>     <P>Si se compara la estimaci&oacute;n de la prevalencia de la cisticercosis con el EITB (1,8%) con la que se obtiene por medio del EP (1.05%), se encuentra que la prevalencia de la enfermedad se subestima en 45%. Esto es de esperarse debido a que los niveles de anticuerpos obtenidos en estudios poblacionales son bajos, pero las dificultades t&eacute;cnicas de otras pruebas diagn&oacute;sticas como el EITB, y la mayor invasividad de los procedimientos para la obtenci&oacute;n de las muestras, hacen del EP una prueba &uacute;til para el estudio epidemiol&oacute;gicos de campo.</P>     <P>Los resultados obtenidos para el EP realizado en suero de pacientes con cisticercosis la convierten en una prueba por la que deber&iacute;a optarse en los laboratorios cl&iacute;nicos de las instituciones de salud de baja complejidad que no cuentan con la infraestructura necesaria para la realizaci&oacute;n del EITB ni los equipos de im&aacute;genes necesarios para el estudio de pacientes con diagn&oacute;stico presuntivo de neurocisticercosis.</P>     <P>Es necesario emprender nuevos estudios que permitan validar la prueba con extractos antig&eacute;nicos semipurificados o purificados, recombinantes o sint&eacute;ticos, para as&iacute; mejorar los niveles de sensibilidad obtenidos, tal como lo reportan otros investigadores (27-30). Un estudio (31) que compara el EP con el EITB usando un ant&iacute;geno purificado para <I>Parastrongylus cantonensis</I>, concluye que las pruebas son comparables en sus niveles de sensibilidad y especificidad.</P>     <P>El EP validado con fuentes antig&eacute;nicas obtenidas en Colombia constituye una herramienta diagn&oacute;stica &uacute;til y promisoria para la realizaci&oacute;n de estudios de cisticercosis en las &aacute;reas end&eacute;micas, que pueden servir de base a futuros estudios sobre control de la enfermedad.</P> <B>    <P>Conflicto de intereses</P> </B>    <P>No existe conflicto de intereses.</P> <B>    <P>Financiaci&oacute;n</P> </B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Esta investigaci&oacute;n fue financiada en parte por el Ministerio de Salud de Colombia y por la Direcci&oacute;n Seccional de Salud de Antioquia.</P>     <P>Correspondencia:</P>     <P>Piedad Agudelo-Fl&oacute;rez</P>     <P>Carrera 43A No 52 Sur-99</P>     <P>Sabaneta, Antioquia, Colombia. A.A. 52162</P>     <P>Tel&eacute;fono 57-4-3053500 ext 314</P>     <P>Fax 57-4-3014258</P> </FONT>    <P><A HREF="mailto:pagudelo@ces.edu.co">pagudelo@ces.edu.co</A></P> <FONT FACE="Arial">    <P>Recibido:12/05/05; aceptado: 19/08/05</P> <B>    <P>Referencias</P> </B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P>1. <B>Botero D, Restrepo M. </B>Cisticercosis. En: Parasitosis humanas. 4a ed. Medell&iacute;n: CIB editores; 2003.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-4157200500040000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>2. <B>Schantz PM, Wilkins PP, Tsang VCW. </B>Immigrants, imaging, immunoblots: the emergence of neurocysticercosis as a significant public health problem. En: Scheld WM, Craig WA, Hughes JM, editors. Emerging Infections. Washington, D.C.: American Public Health Association 1998. p.213-42.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-4157200500040000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>3. <B>Sciutto E, Fragoso G, Fleury A, Laclette JP, Sotelo J, Aluja A et al. </B><I>Taenia solium</I> disease in humans and pigs: an ancient parasitosis disease rooted in developing countries and emerging as a major health problem of global dimensions. Microbes Infect 2000;2: 1875-90.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-4157200500040000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>4. <B>Garc&iacute;a HH, Gonz&aacute;lez AE, Evans CA, Gilman RH, Cysticercosis Working Group in Per&uacute;. </B><I>Taenia solium</I> cisticercosis. Lancet 2003;362:547-56.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-4157200500040000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>5. <B>Schantz PM. </B><I>Taenia solium</I> cysticercosis/taeniosis is a potentially eradicable disease: developing a strategy for action and obstacles to overcome. En: Garc&iacute;a HH, Mart&iacute;nez SM, editors. <I>Taenia solium</I>: Taeniasis/ Cysticercosis. Second edition. Lima: Ed. Universo; 1999. p.215-17.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-4157200500040000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>6. <B>D&iacute;az JF, Verastegui M, Gilman RH, Tsang VC, Pilcher JB, Gallo C et al. </B>Immunodiagnosis of human cysticercosis ( <I>Taenia solium</I>): a field comparison of an antibody-enzyme-linked-immunosorbent assay (ELISA), an antigen-ELISA, and an enzyme-linkedimmuno- electrotransfer-blot (EITB) assay in Per&uacute;. Am J Trop Med Hyg 1992;46:610-5.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-4157200500040000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>7. <B>Tsang VC, Brand JA, Boyer AE. </B>An enzyme-linked immunoelectrotransfer blot assay and glycoprotein antigens for diagnosing of human cysticercosis ( Taenia solium). J Infect Dis 1989;159:50-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-4157200500040000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>8. <B>Palacio LG, Jim&eacute;nez I, Garc&iacute;a HH, Jim&eacute;nez ME, S&aacute;nchez JL, Noh J et al. </B>Neurocysticercosis in persons with epilepsy in Medell&iacute;n, Colombia. Epilepsia 1998;39:1334-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-4157200500040000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>9. <B>Garc&iacute;a HH, Gonz&aacute;lez AE, Gilman RH, Palacios LG, Jim&eacute;nez I, Rodr&iacute;guez S et al. </B>Short report: transient antibody response in <I>Taenia solium</I> infection in field conditions - a major contribution to high seroprevalence. Am J Trop Med Hyg 2001;65:31-2.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-4157200500040000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>10. <B>Agudelo Fl&oacute;rez P, Palacio LG. </B>Prevalencia de anticuerpos para <I>Taenia solium</I> en humanos y cerdos en una zona end&eacute;mica colombiana. Rev Neurol 2003; 36:706-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-4157200500040000800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>11. <B>Grogl M, Estrada JJ, Macdonald G, Kunhn RE. </B>Antigen-antibody analyses in neurocysticercosis. J Parasitol 1985;71:433-42.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-4157200500040000800011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>12. <B>Bradford MM. </B>A rapid and sensitive method for the quantification of microgram quantities of protein utilizing principle of protein dye binding. Anal Biochem 1976; 72:248-54.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-4157200500040000800012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>13. <B>Cardona-Castro N, Agudelo-Florez P. </B>Immunoenzymatic dot-blot test for the diagnosis of enteric fever caused by Salmonella typhi in an endemic area. Clin Microbiol Infect 1998;4:64-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-4157200500040000800013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>14. <B>Riegelman RK, Hirsch RP. </B>C&oacute;mo estudiar un estudio y probar una prueba: lectura cr&iacute;tica de la literatura m&eacute;dica. Publicaci&oacute;n Cient&iacute;fica 531. 2ª edici&oacute;n. Washington, D.C.: Organizaci&oacute;n Panamericana de la Salud; 1992. p.260.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-4157200500040000800014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>15. <B>Garc&iacute;a HH, Herrera G, Gilman RH, Tsang VC, Pilcher JB, D&iacute;az JF et al. </B>Discrepancies between cerebral computed tomography and western blot in the diagnosis of neurocysticercosis. Am J Trop Med Hyg 1994;50: 152-57.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-4157200500040000800015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>16. <B>Flisser A, Plancarte A, Avila G. </B>Application of diagnostic methods for cysticercosis and taeniosis to epidemiological studies. En: Garcia HH, Mart&iacute;nez SM, editors. <I>Taenia solium</I>: taeniasis/cysticercosis. Second edition. Lima: Ed. Universo; 1999. p.40-52. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-4157200500040000800016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>17. <B>Feldman M, Plancarte A, Sandoval M, Wilson M, Flisser A. </B>Comparison of two assays (EIA and EITB) and two samples (saliva and serum) for the diagnosis of neurocysticercosis. 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