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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Caracterización molecular de un brote por Klebsiella pneumoniae productora de CTX-M-12 en la unidad de cuidado intensivo neonatal de un hospital colombiano]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Molecular characterization of an outbreak caused by CTX-M-12-producing Klebsiella pneumoniae in a Colombian hospital´s neonatal intensive care unit]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction. Molecular characterisation of Klebsiella pneumoniae strains is a tool that assits in the reduction of the disemination of drug resistance and the control of nosocomial infections that are caused by this pathogen. Objective. Molecular description of an outbreak of nosocomial infection caused by Klebsiella pneumoniae in a neonatal intensive care unit in a tertiary level hospital in Bogotá. Methods: Eleven Klebsiella pneumoniae isolates were analysed. Production of Extended Spectrum Beta-Lactamases was verified by agar diffusion tests. Isoelectric points of the enzymes were determined by isoelectric focusing. The blaCTX-M-12 gene was detected by PCR and pulsed field gel electrophoresis genotyping was done. Results. All the isolates were Extended Spectrum Beta-Lactamase producers. Pulsed field gel electrophoresis and BOX-PCR genotyping grouped two isolates from hospital objects and eight infection-causing isolates into a single epidemic clone. The isolate from a thermometer was not grouped into the epidemic clone and showed a different resistance pattern. Isoelectric focusing revealed simultaneous beta-lactamase production having different isoelectric points. PCR amplification revealed the presence of the blaCTX-M-12 gene in the 11 isolates studied. Conclusion. This is the first report of a molecularly characterised outbreak of CTX-M-12-producing Klebsiella pneumoniae from Colombia. The results of this study provide additional evidence of the global dissemination of CTX-M ESBL and the need for epidemiological follow-up in our hospitals.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <B><FONT FACE="Arial" SIZE=4>    <P ALIGN="CENTER">Caracterizaci&oacute;n molecular de un brote por <I>Klebsiella pneumoniae</I> productora de CTX-M-12 en la unidad de cuidado intensivo neonatal de un hospital colombiano</P> </B></FONT><FONT FACE="Arial">    <P ALIGN="CENTER">Jos&eacute; Ram&oacute;n Mantilla<SUP> 1</SUP>, Mar&iacute;a Teresa Reguero<SUP> 1</SUP>, Elsa Beatriz Gonz&aacute;lez<SUP> 1</SUP>, Ibonne Ayde Garc&iacute;a<SUP> 1</SUP>, Aura Luc&iacute;a Leal<SUP> 2</SUP>, Paula Andrea Espinal<SUP> 3</SUP>, Celia Alpuche<SUP> 4</SUP>, Ismael Alberto Valderrama<SUP> 5</SUP>, Martha Isabel  Garz&oacute;n<SUP> 5</SUP>, Narda Mar&iacute;a Olarte<SUP> 5</P>     <P ALIGN="JUSTIFY">1</SUP> Grupo de Epidemiolog&iacute;a Molecular, Instituto de Biotecnolog&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute; D.C., Colombia.</P> <SUP>    <P ALIGN="JUSTIFY">2</SUP> Departamento de Microbiolog&iacute;a, Facultad de Medicina, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute; D.C., Colombia. </P> <SUP>    <P ALIGN="JUSTIFY">3</SUP> Universidad del Sin&uacute;, Monter&iacute;a, Colombia. </P> <SUP>    <P ALIGN="JUSTIFY">4</SUP> Facultad de Medicina, Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico, M&eacute;xico D. F., M&eacute;xico.</P> <SUP>    <P ALIGN="JUSTIFY">5</SUP> Empresa Social del Estado (ESE) Hospital El Tunal, Bogot&aacute; D.C., Colombia.</P>     <P ALIGN="JUSTIFY">El trabajo fue realizado en el Laboratorio de Epidemiolog&iacute;a Molecular, Instituto de Biotecnolog&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia.</P> <B>    <P>Introducci&oacute;n. </B>La caracterizaci&oacute;n molecular de cepas de <I>Klebsiella pneumoniae </I>es una herramienta que contribuye a disminuir la diseminaci&oacute;n de la resistencia y al control de las infecciones nosocomiales causadas por este pat&oacute;geno.</P> <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Objetivo.</B> Describir molecularmente un brote de infecci&oacute;n nosocomial por <I>Klebsiella pneumoniae</I> en la Unidad de Cuidado Intensivo Neonatal de un hospital de tercer nivel de Bogot&aacute;. </P> <B>    <P>Materiales y m&eacute;todos. </B>Se analizaron once aislamientos. Se verific&oacute; la producci&oacute;n de beta-lactamasas de espectro extendido mediante pruebas de difusi&oacute;n en agar. Se determinaron los puntos isoel&eacute;ctricos de las betalactamasas mediante isoelectroenfoque. Se detect&oacute; el gen <I>bla</I>CTX-M-12 por PCR y se realiz&oacute; genotipificaci&oacute;n mediante BOX- PCR y electroforesis en gel con campos pulsados (PFGE).</P> <B>    <P>Resultados. </B>Los aislamientos fueron productores de beta-lactamasas de espectro extendido. La genotipificaci&oacute;n por PFGE y por BOX-PCR, agrup&oacute; a dos aislamientos provenientes de objetos hospitalarios y a los ocho aislamientos causantes de infecci&oacute;n en un grupo clonal epid&eacute;mico. El aislamiento proveniente de un term&oacute;metro no fue agrupado en el grupo clonal epid&eacute;mico y mostr&oacute; un patr&oacute;n de resistencia diferente. Se observ&oacute; la producci&oacute;n simult&aacute;nea de beta-lactamasas con diferentes puntos isoel&eacute;ctricos. La PCR revel&oacute; el gen <I>bla</I>CTX-M-12 en los 11 aislamientos estudiados. </P> <B>    <P>Conclusi&oacute;n:</B> Este es el primer informe en Colombia de un brote por <I>Klebsiella pneumoniae</I> productora de CTX-M-12, caracterizado molecularmente. Este estudio da evidencia adicional de la diseminaci&oacute;n global de BLEE de tipo CTX-M y alerta sobre la necesidad de actividades especificas de prevenci&oacute;n para cortar la cadena de transmisi&oacute;n y del seguimiento de tipo epidemiol&oacute;gico en nuestros centros hospitalarios.</P> <B>    <P>Palabras clave:</B> <I>Klebsiella pneumoniae,</I> beta-Lactamasas, infecci&oacute;n hospitalaria, Resistencia a Antibi&oacute;ticos, Cefalosporinas, Tipificaci&oacute;n Bacteriana.</P> <B>    <P>Molecular characterization of an outbreak caused by CTX-M-12-producing <I>Klebsiella pneumoniae</I> in a Colombian hospital´s neonatal intensive care unit</P>     <P>Introduction. </B>Molecular characterisation of <I>Klebsiella pneumoniae</I> strains is a tool that assits in the reduction of the disemination of drug resistance and the control of nosocomial infections that are caused by this pathogen. </P> <B>    <P>Objective.</B> Molecular description of an outbreak of nosocomial infection caused by <I>Klebsiella pneumoniae</I> in a neonatal intensive care unit in a tertiary level hospital in Bogot&aacute;.</P> <B>    <P>Methods:</B> Eleven <I>Klebsiella pneumoniae</I> isolates were analysed. Production of Extended Spectrum Beta-Lactamases was verified by agar diffusion tests. Isoelectric points of the enzymes were determined by isoelectric focusing. The <I>bla</I>CTX-M-12 gene was detected by PCR and pulsed field gel electrophoresis genotyping was done.</P> <B>    <P>Results. </B>All the isolates were Extended Spectrum Beta-Lactamase producers. Pulsed field gel electrophoresis and BOX-PCR genotyping grouped two isolates from hospital objects and eight infection-causing isolates into a single epidemic clone. The isolate from a thermometer was not grouped into the epidemic clone and showed a different resistance pattern. Isoelectric focusing revealed simultaneous beta-lactamase production having different isoelectric points. PCR amplification revealed the presence of the <I>bla</I>CTX-M-12 gene in the 11 isolates studied. </P> <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Conclusion. </B>This is the first report of a molecularly characterised outbreak of CTX-M-12-producing <I>Klebsiella pneumoniae</I> from Colombia. The results of this study provide additional evidence of the global dissemination of CTX-M ESBL and the need for epidemiological follow-up in our hospitals.</P> <B>    <P>Key words: </B><I>Klebsiella pneumoniae,</I> beta-Lactamases, Cross Infection, Drug Resistance, Cephalosporins, Bacterial Typing Techniques.</P>     <P>Algunos de los resultados del presente art&iacute;culo fueron presentados en la modalidad de p&oacute;ster en el <I>FIS 2005 Annual Meeting</I> (Federation of Infection Societies - Cardiff 7 - 9 de noviembre de 2005)</P>     <P>Los avances tecnol&oacute;gicos que han permitido la atenci&oacute;n de reci&eacute;n nacidos de peso y edad gestacional cada vez menores han traido consigo un aumento en el riesgo de infecciones nosocomiales. Entre los agentes causales de este tipo de patolog&iacute;as se encuentra <I>Klebsiella pneumoniae</I>, pat&oacute;geno que se asocia con altas tasas de morbilidad y mortalidad en pacientes pedi&aacute;tricos (1). Esta bacteria produce con frecuencia betalactamasas del tipo TEM o SHV (2,3); sin embargo, en los &uacute;ltimos a&ntilde;os se ha informado la producci&oacute;n por <I>K. pneumoniae</I> de cefotaximasas (CTX-M). Las enzimas CTX-M son una nueva familia de betalactamasas de espectro extendido (BLEE) que muestran mayor actividad hidrol&iacute;tica frente a cefotaxima y aztreonam que frente a ceftazidima (4).</P>     <P>Este art&iacute;culo describe un brote de infecci&oacute;n nosocomial causado por <I>K. pneumoniae</I> con fenotipo de cefotaximasas en una unidad de cuidado intensivo neonatal de un hospital de tercer nivel de Bogot&aacute;. Con el fin de generar informaci&oacute;n &uacute;til en la formulaci&oacute;n de estrategias de prevenci&oacute;n y control de infecciones intrahospitalarias se caracterizaron molecularmente los aislamientos de <I>K. pneumoniae</I> asociados al brote.</P> <B>    <P>Materiales y m&eacute;todos</P> <I>    <P>Descripci&oacute;n del brote</P> </B></I>    <P>En una unidad de cuidado intensivo neonatal (UCIN) dotada con 24 camas en un hospital de tercer nivel de complejidad se present&oacute; una sospecha de brote de sepsis de origen nosocomial entre la &uacute;ltima semana de enero y la primera semana de marzo de 2001. Se identificaron 11 pacientes con deterioro cl&iacute;nico y paracl&iacute;nico de tipo infeccioso con distermia, leucocitosis y trombocitopenia. Sus edades oscilaban entre uno y 25 d&iacute;as de nacido. La edad gestacional al nacimiento vari&oacute; entre 29 y 40 semanas; el 50% de los pacientes ten&iacute;a menos de 35 semanas y peso inferior a 1.600 g. En ocho de ellos se aisl&oacute; en hemocultivo <I>K. pneumoniae </I>con potencial productor de BLEE. Ante esta situaci&oacute;n, el comit&eacute; de vigilancia epidemiol&oacute;gica del hospital tom&oacute; medidas inmediatas con el fin de cortar la cadena de transmisi&oacute;n del agente causal, modificar los factores de riesgo y aplicar la intervenci&oacute;n terap&eacute;utica adecuada. La estrategia se bas&oacute; en el reforzamiento del lavado de manos y la adopci&oacute;n de precauciones de aislamiento; se restringi&oacute; el uso de cefalosporinas de tercera y cuarta generaci&oacute;n, y se realiz&oacute; educaci&oacute;n intensificada global y por competencias en el &aacute;rea. Adem&aacute;s, se tomaron muestras de elementos (term&oacute;metro, careta y pesa beb&eacute;s) potencialmente involucrados en la transmisi&oacute;n del pat&oacute;geno identificado (</FONT><A HREF="#cuadro1">cuadro 1</A><FONT FACE="Arial">). </P>     <P><A NAME="cuadro1"></A></P> </FONT>    <P ALIGN="CENTER"><IMG SRC="/img/revistas/bio/v26n3/3a10t1.gif"></P> <B><I><FONT FACE="Arial">    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Aislamientos bacterianos</P> </B></I>    <P>Se estudiaron 11 aislamientos de <I>K. pneumoniae</I> provenientes de ocho pacientes diferentes y de tres fuentes inanimadas (</FONT><A HREF="#cuadro1">cuadro 1</A><FONT FACE="Arial">), los cuales fueron identificados en el laboratorio del hospital por el sistema automatizado MicroScan y confirmados con el sistema comercial API 20E (BioM&eacute;rieux).</P> <B><I>    <P>Pruebas de susceptibilidad</P> </B></I>    <P>La susceptibilidad antimicrobiana se determin&oacute; por la t&eacute;cnica de difusi&oacute;n en agar seg&uacute;n las recomendaciones del CLSI (Clinical and Laboratory Standards Institute - antes NCCLS), con discos de amikacina, gentamicina, ciprofloxacina, piperacilina/tazobactam, imipenem, cefepima, cefotaxima, ceftriaxona, ceftazidima y aztreonam (Oxoid). Para confirmar la producci&oacute;n de BLEE se utiliz&oacute; la t&eacute;cnica de disco combinado (5) con discos de cefotaxima y ceftazidima solos y en combinaci&oacute;n con &aacute;cido clavul&aacute;nico (Oxoid). Se emplearon como control negativo<I> Escherichia coli</I> ATCC 25922 y como control positivo <I>Klebsiella pneumoniae</I> ATCC 700603 (productora de BLEE).</P> <B><I>    <P>An&aacute;lisis de betalactamasas por isoelectroenfoque </P> </B></I>    <P>Los valores de los puntos isoel&eacute;ctricos (pI) de las betalactamasas presentes en extractos obtenidos por sonicaci&oacute;n se determinaron por isoelectro-enfoque (IEF) en el Phast System (Pharmacia) sobre geles de poliacrilamida con rangos de pH entre 3,5 y 10 y se compararon con betalactamasas de pI conocidos (5,4 &amp;#091;TEM-1&amp;#093;, 7,0 &amp;#091;SHV3&amp;#093;, 7,6 &amp;#091;SHV-1&amp;#093;, 7,8 &amp;#091;SHV-7&amp;#093;, 8,2 &amp;#091;SHV-5&amp;#093; y 9,0 &amp;#091;TLA-1&amp;#093;), las cuales fueron amablemente suministradas por la doctora Celia Alpuche de la Facultad de Medicina de la Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico.</P> <B><I>    <P>Detecci&oacute;n por PCR de genes que codifican para cefotaximasas (CTX-M) y an&aacute;lisis de secuencia</P> </B></I>    <P>Para la detecci&oacute;n de genes <I>bla</I>CTX-M se utilizaron condiciones e iniciadores de amplificaci&oacute;n previamente descritos: CTX-MA y CTX-MB para genes de grupo CTX-M-1 (6); Toho-1A y Toho-1B para el grupo CTX-M-2 (7), y C1 y C2 para el grupo CTX-M-9 (8). La secuenciaci&oacute;n directa de los productos de PCR se realiz&oacute; en un secuenciador autom&aacute;tico ABI Prism 3700 (Perkin-Elmer/Applied Biosystems). Posteriormente se realizaron alineamientos comparativos con secuencias de cefotaximasas informadas en el GenBank con la ayuda del software Clustal W versi&oacute;n 1.81.</P> <B><I>    <P>Genotipificaci&oacute;n </P> </B></I>    <P>La tipificaci&oacute;n mediante BOX-PCR se realiz&oacute; con el iniciador BOXA1R 5’-TACGGCAAGGCGACG CTGACG en las condiciones de amplificaci&oacute;n previamente descritas (9). Los productos amplificados se evaluaron mediante electroforesis en geles de agarosa al 2% con <I>buffer </I>TBE 0,5 X durante 3 horas a 4,6 V/cm. Con el fin de verificar los resultados de la tipificaci&oacute;n con BOX-PCR se utiliz&oacute; el procedimiento de PFGE siguiendo la metodolog&iacute;a descrita por Miranda (10). Se digiri&oacute; con la enzima <I>Xba</I>I (10 U/mcl) (Gibco BRL) durante 18 horas. Los fragmentos generados se separaron en gel de agarosa PFGE (Bio-Rad) al 1% y <I>buffer</I> TBE 1X en el equipo para campos pulsados CHEF-DR III (Bio-Rad) con pulsos de 5 a 60 segundos por 20 horas a 200 voltios. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Los patrones electrofor&eacute;ticos registrados en el Gel-Doc System de Bio-Rad se analizaron con el software NTSYSpc versi&oacute;n 2.0. Se gener&oacute; una matriz de similitud basada en la presencia y ausencia de bandas y luego se cre&oacute; un dendrograma mediante el algoritmo UPGMA (<I>Unweighted Pair Group Method with Arithmetic Averages</I>). Los resultados se interpretaron de acuerdo con los criterios de Tenover y Malathum (11,12).</P> <B>    <P>Resultados</P> </B>    <P>Con base en los criterios de CLSI, todos los aislamientos fueron potenciales productores de betalactamasas con un perfil de resistencia a cefotaxima, ceftriaxona y aztreonam, pero sensibilidad a ceftazidima. El aislamiento proveniente de un term&oacute;metro fue tambi&eacute;n resistente a este &uacute;ltimo antibi&oacute;tico y a piperacilina/tazobactam, cefepima y amikacina. La presencia de betalactamasas de espectro extendido se confirm&oacute; en todos los casos. Los perfiles de sus-ceptibilidad antimicrobiana revelaron que todos los aislamientos fueron sensibles a gentamicina, ciprofloxacina e imipenem, 10 de 11 a piperacilina/tazobactam y a cefepima, y 6 de 11 a amikacina.</P>     <P>En el an&aacute;lisis por isoelectroenfoque, la muestra proveniente del term&oacute;metro produjo tres betalactamasas con puntos isoel&eacute;ctricos 5,4, 7,4 y 8,2. Los dem&aacute;s aislamientos expresaron dos betalactamasas adicionales con pI 7,6 y 8,9 y ausencia de la betalactamasa con pI 8,2 (</FONT><A HREF="#cuadro1">cuadro 1</A><FONT FACE="Arial">).</P>     <P>La PCR con iniciadores para el grupo CTX-M 1 produjo un fragmento de 550 pb en todos los aislamientos. Con los otros iniciadores no se observaron productos de amplificaci&oacute;n. </P>     <P>El alineamiento de las secuencias amplificadas de los 11 aislamientos de <I>K. pneumoniae </I>mostr&oacute; 100% de similitud entre ellas y con la secuencia de nucle&oacute;tidos entre las posiciones 213 y 747 del gen <I>bla</I>CTX-M-12 (n&uacute;mero de acceso en el Gen Bank AF305837) (13). </P>     <P>Diez de los once aislamientos estudiados conformaron un grupo estrechamente relacionado gen&eacute;ticamente (grupo clonal epid&eacute;mico), como se observa en las </FONT><A HREF="#figura1">figuras 1</A><FONT FACE="Arial"> y </FONT><A HREF="#figura2">figura 2</A><FONT FACE="Arial">.</P>     <P><A NAME="figura1"></A></P> </FONT>    <P ALIGN="CENTER"><IMG SRC="/img/revistas/bio/v26n3/3a10i1.jpg"></P>     <P><A NAME="figura2"></A></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="CENTER"><IMG SRC="/img/revistas/bio/v26n3/3a10i2.jpg"></P> <FONT FACE="Arial">    <P>La agrupaci&oacute;n resultante por BOX-PCR fue similar a la obtenida mediante PFGE.</P>     <P>Ninguno de los procedimientos de genotipificaci&oacute;n estableci&oacute; relaci&oacute;n gen&eacute;tica entre el aislamiento proveniente del term&oacute;metro y el grupo clonal epid&eacute;mico (</FONT><A HREF="#figura1">figuras 1</A><FONT FACE="Arial"> y </FONT><A HREF="#figura 2">figura 2</A><FONT FACE="Arial">).</P> <B>    <P>Discusi&oacute;n</P> </B>    <P>En las ultimas dos d&eacute;cadas la emergencia y diseminaci&oacute;n de <I>K. pneumoniae </I>productora de BLEE ha convertido a este pat&oacute;geno en un reto tanto para el manejo de antimicrobianos como para la prevenci&oacute;n y el control de las infecciones nosocomiales (1).</P>     <P>Dadas sus caracter&iacute;sticas inmunol&oacute;gicas, los neonatos son susceptibles a adquirir enferme-dades infecciosas de origen intrahospitalario por pat&oacute;genos como <I>K. pneumoniae, </I>el cual posee la capacidad de diseminarse r&aacute;pidamente, causando brotes de infecci&oacute;n nosocomial (1).</P>     <P>Mediante t&eacute;cnicas moleculares, este trabajo confirm&oacute; la presencia de un brote de infecci&oacute;n nosocomial causado por un clon de <I>K. pneumoniae </I>productora de BLEE y el an&aacute;lisis microbiol&oacute;gico retrospectivo de los aislamientos puso en evidencia la posible presencia de cefotaximasas, enzimas que se han asociado con brotes epid&eacute;micos (13,14). El primer informe de cefo-taximasas del grupo CTX-M-1 en Colombia se dio a conocer en el VI Congreso de Enfermedades Infecciosas (Cartagena-2003). Posteriormente se inform&oacute; sobre la detecci&oacute;n del gen <I>bla</I>CTX-M en uno de siete aislamientos cl&iacute;nicos de <I>K. pneumoniae </I>productores de cefotaximasas del grupo CTX-M-1 (15). En otro trabajo realizado por nuestro grupo se detectaron cefotaximasas del mismo tipo en aislamientos de <I>K. pneumoniae </I>obtenidos de pacientes con infecci&oacute;n intrahospitalaria de cuatro centros hospitalarios de tercer nivel de Bogot&aacute;, resultado que sugiere una posible diseminaci&oacute;n de cefotaximasas del grupo CTX-M-1 en nuestro medio (Mantilla JR, Valenzuela EM, Gonz&aacute;lez EB, M&eacute;ndez AM, Leal AL, Sierra P, <I>et al</I>. Alta preva-lencia de cefotaximasas del grupo CTX-M-1 en <I>Enterobacteriaceae </I>asociadas con infecci&oacute;n intrahospitalaria en Bogot&aacute;. Resumen de trabajo presentado en el IV Encuentro Nacional de Investigaci&oacute;n en Enfermedades Infecciosas. Infectio<I> </I>2004; 8:143).</P>     <P>La enzima CTX-M-12 descrita en el 2001 en Kenia fue aislada de una cepa de<I> K. pneumoniae </I>causante de brote infeccioso en UCIN (13). La presencia de esta cefotaximasa en nuestro medio puede ser producto de la diseminaci&oacute;n global del mismo gen (3), o puede provenir de un gen ancestral diferente como se ha demostrado para otras enzimas del grupo CTX-M-1 (14). La proliferaci&oacute;n de estas enzimas en <I>Enterobacteria-ceae</I> puede tener importantes implicaciones para el dise&ntilde;o de esquemas de tratamiento eficaces, as&iacute; como para los laboratorios de microbiolog&iacute;a de los centros hospitalarios, ya que deben tener la capacidad de ofrecer resultados espec&iacute;ficos con el fin de tomar medidas de control oportunas que eviten brotes epid&eacute;micos. </P>     <P>La detecci&oacute;n por PCR de genes <I>bla</I>CTX, fue concordante con el fenotipo de cepas productoras de cefotaximasas. El aislamiento proveniente de un term&oacute;metro mostr&oacute; un perfil de resistencia diferente al grupo clonal epid&eacute;mico, y a pesar de que este term&oacute;metro fue utilizado en la UCIN, el aislamiento obtenido de este elemento no fue agrupado por los sistemas de tipificaci&oacute;n en el grupo clonal epid&eacute;mico; este resultado demuestra la importancia de utilizar la genotipificaci&oacute;n para conocer espec&iacute;ficamente las fuentes y factores de diseminaci&oacute;n. El uso de PFGE permiti&oacute; verificar el agrupamiento obtenido por BOX-PCR. Se podr&iacute;a sugerir el uso de BOX-PCR para este fin, ya que esta t&eacute;cnica es de m&aacute;s f&aacute;cil acceso para los laboratorios de los centros hospitalarios.</P>     <P>Los resultados de la tipificaci&oacute;n permitieron confirmar la careta y la pesa beb&eacute;s como posibles fuentes de diseminaci&oacute;n asociadas al brote. La recuperaci&oacute;n de aislamientos a partir de este tipo de elementos en el estudio de brotes demuestra el papel que &eacute;stos juegan en la infecci&oacute;n cruzada y, por tanto, permite orientar las medidas para la prevenci&oacute;n y el control (16). </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>En conclusi&oacute;n, este es el primer informe en Colombia en el que se caracteriza molecularmente un brote de infecci&oacute;n intrahospitalaria causado por <I>K. pneumoniae</I> productora de CTX-M-12. La importancia de este tipo de estudios radica en la generaci&oacute;n de informaci&oacute;n &uacute;til para estudiar y confirmar la presencia de brotes; adicionalmente, aportan evidencia en apoyo del establecimiento y continuidad de las acciones de prevenci&oacute;n orientadas a cortar la cadena de la transmisi&oacute;n y diseminaci&oacute;n de microorganismos agresivos que aumentan la morbilidad y la mortalidad de los pacientes, principalmente de aqu&eacute;llos m&aacute;s susceptibles como los neonatos.</P> <B>    <P>Agradecimientos</P> </B>    <P>Los autores expresan su agradecimiento a la Universidad Nacional de Colombia, al Instituto Colombiano para el Desarrollo de la Ciencia y la Tecnolog&iacute;a Francisco Jos&eacute; de Caldas, Colciencias y al Hospital El Tunal ESE.</P> <B>    <P>Conflicto de intereses</P> </B>    <P>Los autores declaran que no existen relaciones econ&oacute;micas ni personales de ninguna &iacute;ndole que pudieran influenciar su juicio respecto a los resultados de la presente investigaci&oacute;n. Todos los autores tuvieron acceso irrestricto a los datos y no exisiti&oacute; participaci&oacute;n de agentes externos en el dise&ntilde;o del estudio, ni en la recopilaci&oacute;n, an&aacute;lisis e interpretaci&oacute;n de la informaci&oacute;n. </P> <B>    <P>Financiaci&oacute;n</P> </B>    <P>Este trabajo fue financiado por la Universidad Nacional de Colombia y por el Instituto Colombiano para el Desarrollo de la Ciencia y la Tecnolog&iacute;a Francisco Jos&eacute; de Caldas, Colciencias, c&oacute;digo 1101-04-12675.</P> </FONT><FONT FACE="Arial" SIZE=1>    <P>Correspondencia:</P>     <P>Jos&eacute; Ram&oacute;n Mantilla Anaya, Instituto de Biotecnolog&iacute;a, Edificio Manuel Anc&iacute;zar, Universidad Nacional de Colombia,</P>     <P>avenida 30 No. 45 - 03, Bogot&aacute;, D. C.</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Tel&eacute;fono: 3165000 ext 16965, fax: 3165415</P> </FONT>    <P><A HREF="mailto:jrmantillaa@unal.edu.co">jrmantillaa@unal.edu.co</A></P> <FONT FACE="Arial" SIZE=1>    <P>Recibido: 13/12/05; aceptado: 13/06/06</P> </FONT><B><FONT FACE="Arial">    <P>Referencias</P>  </B>    <!-- ref --><P>1.<B>&#9;Silva J, Gatica R, Aguilar C, Becerra Z, Garza-Ramos U, Velazquez M, <I>et al</I>. </B>Outbreak of infection with extended-spectrum beta-lactamase-producing <I>Klebsiella pneumoniae</I> in a Mexican hospital. J Clin Microbiol  2001; 39: 3193-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-4157200600030001000001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>2.<B>&#9;Medeiros AA.</B> Evolution and dissemination of beta-lactamases accelerated by generations of beta-lactam antibiotics. Clin Infect Dis  1997; 24 (suppl. 1): S19-45.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-4157200600030001000002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>3.<B>&#9;Paterson DL, Hujer KM, Hujer AM, Yeiser B, Bonomo MD, Rice LB, <I>et al</I>. </B>Extended-spectrum beta-lactamases in <I>Klebsiella pneumoniae</I> bloodstream isolates from seven countries: dominance and widespread prevalence of SHV- and CTX-M-type beta-lactamases. Antimicrob Agents Chemother  2003; 47: 3554-60.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-4157200600030001000003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>4.<B>&#9;Tzouvelekis LS, Tzelepi E, Tassios PT, Legakis NJ.</B> CTX-M-type beta-lactamases: an emerging group of extended-spectrum enzymes. Int J Antimicrob Agents 2000; 14: 137-42.<B> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-4157200600030001000004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>5.<B>&#9;National Committee for Clinical Laboratory Standards. </B>Performance standards for antimicrobial susceptibility testing. Eleventh Informational Supplement. NCCLS approved standard M100-S11. Wayne, PA: National Committee for Clinical Laboratory Standards; 2002.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-4157200600030001000005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>6.<B>&#9;Bonnet R, Sampaio JL, Labia R, De Champs C, Sirot D, Chanal C, <I>et al</I>. </B>A novel CTX-M beta-lactamase (CTX-M-8) in cefotaxime-resistant <I>Enterobacteriaceae</I> isolated in Brazil. Antimicrob Agents Chemother  2000; 44: 1936-42.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-4157200600030001000006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>7.<B>&#9;Yagi T, Kurokawa H, Senda K, Ichiyama S, Ito H, Ohsuka S, <I>et al.</B></I> Nosocomial spread of cephem-resistant <I>Escherichia coli </I>strains carrying multiple Toho-1 like beta-lactamase genes. Antimicrob Agents Chemother 1997; 41: 2606-11.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-4157200600030001000007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>8.<B>&#9;Chanawong A, M’Zali  FH, Heritage J, Xiong JH, Hawkey PM.</B> Three cefotaximases, CTX-M-9, CTX-M-13, and CTX-M-14, among <I>Enterobacteriaceae</I> in the People’s Republic of China. Antimicrob Agents Chemother  2002; 46: 630-7.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-4157200600030001000008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>9.<B>&#9;Mantilla JR, Garc&iacute;a I, Espinal PA, Valenzuela  EM. </B>Estandarizaci&oacute;n y evaluaci&oacute;n de tres sistemas de rep-PCR para la tipificaci&oacute;n de <I>Klebsiella</I> <I>pneumoniae</I>. Revista Colombiana de Ciencias Qu&iacute;mico-Farmac&eacute;uticas 2004; 33: 48-58.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-4157200600030001000009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>10.&#9;<B>Miranda G, Kelly C, Sol&oacute;rzano F, Leanos B, Coria R, Patterson JE.</B> Use of pulsed-field gel electrophoresis typing to study an outbreak of infection due to <I>Serratia marcescens</I> in a neonatal intensive care unit. J Clin Microbiol  1996; 34: 3138-41.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-4157200600030001000010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>11.<B>&#9;Tenover FC, Arbeit  RD, Goering RV, Mickelsen PA, Murray BE, Persing DH, <I>et al</I>. </B>Interpreting chromosomal DNA restriction patterns produced by pulsed-field gel electrophoresis: criteria for bacterial strain typing. J Clin Microbiol  1995; 33: 2233-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-4157200600030001000011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>12.<B><I>&#9;</I>Malathum K, Singh KV, Weinstock  GM, Murray  BE.</B> Repetitive sequence-based PCR versus pulsed-field gel electrophoresis for typing of <I>Enterococcus faecalis</I> at the subspecies level. J Clin Microbiol  1998; 36: 211-5. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-4157200600030001000012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>13.<B>&#9;Kariuki S, Corkill JE, Revathi G, Musoke R, Hart CA.</B> Molecular characterization of a novel plasmid-encoded cefotaximase (CTX-M-12) found in clinical <I>Klebsiella pneumoniae</I> isolates from Kenya. Antimicrob Agents Chemother 2001; 45: 2141-3.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-4157200600030001000013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>14.&#9;<B>Baraniak A, Sadowy E, Hryniewicz W, Gniadkowski M.</B> Two different extended-spectrum beta-lactamases (ESBLs) in one of the first ESBL-producing <I>Salmonella</I> isolates in Poland. J Clin Microbiol 2002; 40: 1095-7.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-4157200600030001000014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>15.<B>&#9;Villegas MV, Correa A, Perez F, Zuluaga T, Radice M, Gutkind G, <I>et al</I>.</B> CTX-M-12 beta-lactamase in a <I>Klebsiella pneumoniae</I> clinical isolate in Colombia.</FONT><FONT FACE="Arial" COLOR="#008080"> </FONT><FONT FACE="Arial">Antimicrob Agents Chemother  2004; 48: 629-31.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-4157200600030001000015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>16.<B>&#9;Pe&ntilde;a C, Pujol M, Ardanuy C, Ricart  A, Pallares R, Li&ntilde;ares  J, <I>et al</I>. </B>Epidemiology and successful control of a large outbreak due to <I>Klebsiella pneumoniae</I> producing extended-spectrum beta-lactamases<B>. </B>Antimicrob Agents Chemother  1998; 42: 53-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-4157200600030001000016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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<surname><![CDATA[Silva]]></surname>
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