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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Expresión de marcadores en células dendríticas de pacientes chagásicos crónicos estimuladas con la proteína KMP-11 y el péptido K1 de Trypanosoma cruzi]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Expression of markers on dendritic cells from chronic chagasic patients stimulated with the KMP-11 protein and the K1 peptide from Trypanosoma cruzi]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction. The kinetoplastid membrane protein 11, KMP-11, from Trypanosoma cruzi elicits humoral and cellular immunity in mice that protects them from infection against further parasite challenge. Objective. To characterize the expression of surface markers on dendritic cells from chronic chagasic patients and healthy individuals, in response to the KMP-11 protein from Trypanosoma cruzi and its N-terminal peptide K1. Materials and methods. Monocyte-derived dendritic cells from seven chronic chagasic patients and seven healthy individuals were stimulated with the KMP-11 protein and the K1 peptide. Seven days after culturing, the CD83, CD86, and HLA-DR membrane expression as well as the production of cytokines were evaluated by flow cytometry. Results. Neither KMP-11 protein nor K1 peptide elicited the expression of the maturation marker CD83 on dendritic cells of patients or healthy control individuals. Dendritic cells from chronic chagasic patients exposed to K1 and LPS at the same time presented a significant reduction in CD86 and CD83 membrane expression in contrast to the cells exposed to LPS alone, whereas dendritic cells from healthy individuals did not show this behavior. The secretion of interleukin-12 was decreased in the cultures of dendritic cells from chronic chagasic patients but not from healthy controls. Conclusions. KMP-11 protein does not affect the maturation of dendritic cells, but in the presence of LPS the K1 peptide leads to a decreased expression of CD86 and CD83 as well as interleukin-12 production, This phenomenon may be associated with an impaired T cell stimulation.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[enfermedad de Chagas]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[   <B><FONT FACE="Arial" SIZE=4>    <P ALIGN="CENTER">Expresi&oacute;n de marcadores en c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas de pacientes chag&aacute;sicos cr&oacute;nicos estimuladas con la prote&iacute;na KMP-11 y el p&eacute;ptido K1 de <I>Trypanosoma cruzi</P> </B></I></FONT><FONT FACE="Arial">    <P ALIGN="CENTER">Sandra Paola Santander <SUP>1</SUP>+, Adriana Cu&eacute;llar <SUP>2</SUP>+, Mar&iacute;a del Carmen Thomas <SUP>3</SUP> Fanny Guzm&aacute;n <SUP>4</SUP>, Alberto G&oacute;mez <SUP>5</SUP>, Manuel Carlos L&oacute;pez <SUP>3</SUP>, Concepci&oacute;n Puerta <SUP>1</P>     <P>1</SUP>Laboratorio de Parasitolog&iacute;a Molecular, Departamento de Microbiolog&iacute;a, Facultad de Ciencias, Pontificia Universidad Javeriana, Bogot&aacute;, D.C., Colombia.</P> <SUP>    <P>2</SUP>Laboratorio de Inmunobiolog&iacute;a y Biolog&iacute;a Celular, Departamento de Microbiolog&iacute;a, Facultad de Ciencias, Pontificia Universidad Javeriana, Bogot&aacute;, D.C., Colombia.</P> <SUP>    <P>3</SUP>Departamento de Biolog&iacute;a Molecular, Instituto de Parasitolog&iacute;a y Biomedicina L&oacute;pez Neyra, CSIC, Granada, Espa&ntilde;a.</P> <SUP>    <P>4</SUP>Facultad de Medicina, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;, D.C., Colombia.</P>     <P>5Instituto de Gen&eacute;tica Humana, Facultad de Medicina, Pontificia Universidad Javeriana, Bogot&aacute;, D.C., Colombia.</P>     <P>+ Autores con participaci&oacute;n equivalente en el trabajo.</P>     <P>Recibido: 19/08/05; aceptado: 27/12/05</P> <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Introducci&oacute;n. </B>La prote&iacute;na de membrana 11 de kinetopl&aacute;stidos, KMP-11, de <I>Trypanosoma cruzi</I> induce inmunidad humoral y celular en ratones capaz de conferir protecci&oacute;n frente al reto con el par&aacute;sito.<I> </P> </I><B>    <P>Objetivo. </B>Determinar la expresi&oacute;n de marcadores de maduraci&oacute;n en las c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas de pacientes chag&aacute;sicos cr&oacute;nicos e individuos sanos, estimuladas con la prote&iacute;na KMP-11 y su p&eacute;ptido amino terminal K1. </P> <B>    <P>Materiales y m&eacute;todos.</B> Monocitos de siete pacientes chag&aacute;sicos y siete individuos sanos fueron diferenciados a c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas y estimulados con la prote&iacute;na KMP-11 y el p&eacute;ptido K1, determin&aacute;ndose por citometr&iacute;a de flujo y tras 7 d&iacute;as de cultivo, la expresi&oacute;n de los marcadores de superficie CD83, CD86 y HLA-DR y la producci&oacute;n de citocinas. </P> <B>    <P>Resultados. </B>La prote&iacute;na KMP-11 y el p&eacute;ptido K1 no indujeron la expresi&oacute;n del marcador de maduraci&oacute;n CD83 en las c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas de pacientes y controles. La exposici&oacute;n de c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas de pacientes chag&aacute;sicos de forma simult&aacute;nea al p&eacute;ptido K1 y LPS mostr&oacute; una disminuci&oacute;n de la expresi&oacute;n de CD86 y CD83 con relaci&oacute;n a la estimulaci&oacute;n con LPS s&oacute;lo, a diferencia de las c&eacute;lulas de controles sanos. Tambi&eacute;n se evidenci&oacute; una disminuci&oacute;n en la producci&oacute;n de interleucina-12 en las c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas de pacientes en relaci&oacute;n a las de los controles.</P> <B>    <P>Conclusiones.</B> La prote&iacute;na KMP-11 no tiene un efecto significativo sobre la maduraci&oacute;n de las c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas, pero su p&eacute;ptido K1 en presencia de LPS induce una disminuci&oacute;n en la expresi&oacute;n de CD86 y CD83 y en la producci&oacute;n de la interleucina-12 que podr&iacute;a modular la respuesta inmune <I>in vivo</I> y en particular la estimulaci&oacute;n de los linfocitos T.</P> <B>    <P>Palabras clave:</B> enfermedad de Chagas,<I> </I>interleucina-12, <I>Trypanosoma cruzi</P> </I><B>    <P>Expression of markers on dendritic cells from chronic chagasic patients stimulated with the KMP-11 protein and the K1 peptide from <I>Trypanosoma cruzi</P> </I>    <P>Introduction. </B>The kinetoplastid membrane protein 11, KMP-11, from <I>Trypanosoma cruzi</I> elicits humoral and cellular immunity in mice that protects them from infection against further parasite challenge. </P> <B>    <P>Objective.</B> To characterize the expression of surface markers on dendritic cells from chronic chagasic patients and healthy individuals, in response to the KMP-11 protein from <I>Trypanosoma cruzi</I> and its N-terminal peptide K1.</P> <B>    <P>Materials and methods.</B> Monocyte-derived dendritic cells from seven chronic chagasic patients and seven healthy individuals were stimulated with the KMP-11 protein and the K1 peptide. Seven days after culturing, the CD83, CD86, and HLA-DR membrane expression as well as the production of cytokines were evaluated by flow cytometry. </P> <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Results</B>. Neither KMP-11 protein nor K1 peptide elicited the expression of the maturation marker CD83 on dendritic cells of patients or healthy control individuals. Dendritic cells from chronic chagasic patients exposed to K1 and LPS at the same time presented a significant reduction in CD86 and CD83 membrane expression in contrast to the cells exposed to LPS alone, whereas dendritic cells from healthy individuals did not show this behavior. The secretion of interleukin-12 was decreased in the cultures of dendritic cells from chronic chagasic patients but not from healthy controls.</P> <B>    <P>Conclusions. </B>KMP-11 protein does not affect the maturation of dendritic cells, but in the presence of LPS the K1 peptide leads to a decreased expression of CD86 and CD83 as well as interleukin-12 production, This phenomenon may be associated with an impaired T cell stimulation.</P> <B>    <P>Key words:</B> Chagas disease, Interleukin-12, <I>Trypanosoma cruzi</P> </I>    <P>Las c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas estimulan linfocitos T maduros que no han tenido contacto con el ant&iacute;geno gracias a la alta expresi&oacute;n de mol&eacute;culas del complejo mayor de histocompatibilidad, mol&eacute;culas coestimuladoras como CD80 y CD86 y mol&eacute;culas de adhesi&oacute;n como ICAM-1 e ICAM-3 (1). En la periferia, las c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas se especializan para capturar ant&iacute;genos por endocitosis mediada por receptor o macro-pinocitosis, y una vez activadas por ant&iacute;genos, migran a los &oacute;rganos linfoides proximales (2). Durante esta migraci&oacute;n pierden capacidad fagoc&iacute;tica y aumentan la expresi&oacute;n de las mol&eacute;culas relacionadas con la presentaci&oacute;n antig&eacute;nica, proceso conocido como maduraci&oacute;n. Una vez en los &oacute;rganos linfoides, las c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas maduras tienen un papel importante en la instrucci&oacute;n de las c&eacute;lulas T para definir su polarizaci&oacute;n hacia una respuesta Th1 o Th2 (3).</P> <I>    <P>Trypanosoma cruzi</I> es un par&aacute;sito protozoo hemoflagelado, agente causal de la enfermedad de Chagas, entidad que afecta a 18 millones de personas en 15 pa&iacute;ses end&eacute;micos, con una incidencia anual de 200.000 nuevos casos (4). En Colombia, se estima que hay cerca de 700.000 personas infectadas, un 23% de la poblaci&oacute;n en riesgo de contraer la enfermedad y entre 30 y 40 mil nuevos casos anuales (5). </P>     <P>La mayor&iacute;a de humanos infectados por este par&aacute;sito sobreviven a la fase aguda inicial, pero algunos desarrollan enfermedad cr&oacute;nica, lo cual indica que la respuesta generada en estos individuos no es capaz de controlar la infecci&oacute;n, permitiendo la supervivencia del par&aacute;sito en los tejidos y dando lugar al desarrollo de lesiones focales inflamatorias, caracter&iacute;sticas de la fase cr&oacute;nica de la enfermedad (6).</P>     <P>Varias l&iacute;neas de evidencia sugieren que la funci&oacute;n de las c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas es alterada por <I>T. cruzi.</I> Es as&iacute; como c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas derivadas de monocitos pueden ser infectadas por el par&aacute;sito, permitiendo su multiplicaci&oacute;n intracelular con consecuencias funcionales en c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas inmaduras y alteraci&oacute;n de su maduraci&oacute;n inducida por el lipopolisac&aacute;rido (LPS) (7). Estas alteraciones funcionales incluyen disminuci&oacute;n de la producci&oacute;n de la interleucina-12 (IL-12), factor de necrosis tumoral a (TNF</FONT><FONT FACE=Symbol>a</FONT><FONT FACE="Arial">) y de la expresi&oacute;n de mol&eacute;culas de superficie tales como HLA-DR y CD40. Tambi&eacute;n se ha visto que c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas infectadas con <I>T. cruzi</I> tienen poca capacidad para presentar p&eacute;ptidos antig&eacute;nicos a c&eacute;lulas T CD8+ y, por lo tanto, inducen bajos niveles de interfer&oacute;n gamma (IFN</FONT><FONT FACE=Symbol>g</FONT><FONT FACE="Arial"> ), efecto probablemente relacionado con la disminuci&oacute;n en la expresi&oacute;n de mol&eacute;culas de clase I del sistema mayor de histocompatibilidad (8).</P>     <P>Aunque diferentes ant&iacute;genos del par&aacute;sito han sido caracterizados y examinados para estudiar su capacidad de estimulaci&oacute;n de respuesta inmune, son pocos los que han demostrado capacidad para inducir respuesta protectora (9-11). As&iacute;, la prote&iacute;na 11 de membrana de los cinetopl&aacute;stidos, KMP-11, fusionada a la prote&iacute;na de choque t&eacute;rmico HSP70 del par&aacute;sito, induce tanto inmunidad humoral como celular en ratones y tambi&eacute;n es capaz de proteger a los animales inmunizados frente a un posterior reto con el par&aacute;sito (9,12). Adicionalmente, el p&eacute;ptido correspondiente a los amino&aacute;cidos 4 a 12 de la regi&oacute;n N-terminal de la prote&iacute;na KMP-11 de <I>T. cruzi</I>, denominado K1, es un ep&iacute;tope inmuno-dominante en la inducci&oacute;n de respuesta citot&oacute;xica de c&eacute;lulas T CD8+ de ratones inmunizados con la prote&iacute;na de fusi&oacute;n KMP-11/HSP70 (9). As&iacute; mismo, estudios recientes en pacientes chag&aacute;sicos demuestran que el p&eacute;ptido K1 no s&oacute;lo es reconocido y procesado de manera natural durante la infecci&oacute;n, sino que induce la producci&oacute;n de IFNg por parte de linfocitos T CD8+, los cuales presentan, adem&aacute;s, actividad citot&oacute;xica (13). </P>     <P>Teniendo en cuenta la importancia de las c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas en la inducci&oacute;n de respuesta inmune y el papel de la prote&iacute;na KMP-11 en la inducci&oacute;n de inmunidad protectora en los modelos estudiados, en el presente estudio se evalu&oacute; el potencial para inducir la maduraci&oacute;n <I>in vitro</I> de c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas derivadas de monocitos de pacientes chag&aacute;sicos cr&oacute;nicos por parte de la prote&iacute;na KMP-11 y el p&eacute;ptido K1 de <I>T. cruzi.</I> </P> <B>    <P>Materiales y m&eacute;todos</P> <I>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Poblaci&oacute;n en estudio</P> </B></I>    <P>Se seleccionaron siete pacientes con cardiomiopat&iacute;a chag&aacute;sica cr&oacute;nica, con edades comprendidas entre 35 y 85 a&ntilde;os, que acudieron a la consulta de Cardiolog&iacute;a del Hospital San Ignacio, Bogot&aacute;, Colombia. Dichos pacientes presentaron historia cl&iacute;nica, ex&aacute;menes de diagn&oacute;stico cl&iacute;nico (electrocardiograma), prueba tamiz (Chagatek&reg;) y pruebas confirmatorias (inmunofluorescencia indirecta y ELISA) compatibles con la enfermedad. Con el fin de comparar los resultados obtenidos, se incluyeron siete individuos controles sanos del mismo grupo de edad, que acudieron voluntariamente al Hospital San Ignacio, cuyas pruebas serol&oacute;gicas para <I>T. cruzi</I> fueron negativas y el examen cl&iacute;nico, normal. El presente estudio fue evaluado y aprobado por el Comit&eacute; de &Eacute;tica de la Facultad de Ciencias de la Pontificia Universidad Javeriana.</P> <B><I>    <P>S&iacute;ntesis del p&eacute;ptido K1 y obtenci&oacute;n de la prote&iacute;na KMP-11</P> </B></I>    <P>El p&eacute;ptido sint&eacute;tico K1 (TLEEFSAKL) de la prote&iacute;na KMP-114-12 (9) fue sintetizado en fase s&oacute;lida y purificado mediante cromatograf&iacute;a l&iacute;quida de alta presi&oacute;n (HPLC) (14). La prote&iacute;na recombinante KMP-11 se obtuvo de acuerdo con lo reportado previamente (15). Brevemente, el ADN correspondiente a la regi&oacute;n codificante de la prote&iacute;na fue digerido con las enzimas MscI y RsaI, subclonado en el vector de expresi&oacute;n pQE31 y expresado en c&eacute;lulas de <I>Escherichia coli.</P> <B>    <P>Obtenci&oacute;n de c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas derivadas de monocitos e inducci&oacute;n del proceso de maduraci&oacute;n</P> </B></I>    <P>A partir de 40 ml de sangre anticoagulada con heparina se obtuvieron c&eacute;lulas mononucleares de sangre perif&eacute;rica (CMSP) por gradientes de densidad con Ficoll-Hypaque (Sigma, St Louis, MO). Los monocitos fueron separados con anticuerpos monoclonales anti-CD14 (BD Pharmingen) acoplados a perlas magn&eacute;ticas utilizando el sistema de MiniMaCs (Miltenyi Biotech GMBH, Bergisch, Gladbach, Germany). Las c&eacute;lulas obtenidas fueron lavadas en medio base RPMI 1640 (Invitrogen, Life Tecnologies, Carlsbad, CA) suplementado con 2% de suero fetal bovino (SFB, Sigma, St Louis, MO). La viabilidad y el n&uacute;mero de las c&eacute;lulas se evaluaron por medio de coloraci&oacute;n con azul de trip&aacute;n y conteo celular en c&aacute;mara de Newbauer, respectivamente. La pureza de la poblaci&oacute;n se evalu&oacute; por citometr&iacute;a de flujo utilizando el anticuerpo anti-CD14.PE (BD Pharmingen). Las c&eacute;lulas CD14+ as&iacute; obtenidas fueron diferenciadas a c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas inmaduras mediante incubaci&oacute;n en medio RPMI 1640 completo (antibi&oacute;ticos, amino&aacute;cidos no esenciales, piruvato de sodio y 10% de SFB) en placas de 48 pozos a una densidad de 5x105 por ml en presencia de 1.000 U/ml de IL-4 y 50 ng/ml de GM-CSF (R&amp;D system) durante 5 d&iacute;as de cultivo, verific&aacute;ndose su morfolog&iacute;a por microscop&iacute;a de luz. En el d&iacute;a 5 se adicionaron 6 µg/ml de KMP-11 en presencia o ausencia de 10 µg/ml de polimixina B durante 48 horas. Por otra parte, 10 µg/ml del p&eacute;ptido K1 fueron adicionados en presencia o ausencia de 1 µg/ml de LPS durante 48 horas. Cada ensayo se realiz&oacute; por duplicado. Como control positivo de maduraci&oacute;n se utiliz&oacute; 1 µg/ml de LPS. Como control negativo, se cultivaron las c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas inmaduras sin est&iacute;mulo de maduraci&oacute;n durante 7 d&iacute;as. La presencia de marcadores de c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas maduras se evalu&oacute; por citometr&iacute;a de flujo (16). Todos los reactivos fueron probados para la presencia de LPS mediante la prueba de amebocitos de <I>Lymulus spp.</I> (Bio Whittaker).</P> <B><I>    <P>Determinaci&oacute;n de marcadores celulares por citometr&iacute;a de flujo</P> </B></I>    <P>Los marcadores para c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas se evaluaron con anticuerpos anti CD14-APC, CD83-FITC, CD86-PE y HLA-DR-PerCP (BD Biosciences). La obtenci&oacute;n de los datos se realiz&oacute; usando un cit&oacute;metro de flujo FACSCalibur (BD Immunocyto-metry Systems). Los an&aacute;lisis se realizaron con el programa Cell Quest. </P> <B><I>    <P>Determinaci&oacute;n de la producci&oacute;n de citocinas</P> </B></I>    <P>La cuantificaci&oacute;n de citocinas en los sobrenadantes de cultivo de las c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas se realiz&oacute; el d&iacute;a 7 con un estuche comercial de Cytometric Bead Array (CBA, BD Biosciences), en el cual se utilizan perlas de diferentes intensidades de fluorescencia en FL3, cubiertas con anticuerpos de captura fluorescentes en FL2 para IL-8, IL-1b, IL-6, IL-10, TNF</FONT><FONT FACE=Symbol>a</FONT><FONT FACE="Arial"> e IL- 12p70. El c&aacute;lculo de la con-centraci&oacute;n se realiz&oacute; utilizando patrones de las diferentes citocinas en concentraciones conocidas. La obtenci&oacute;n de los datos se realiz&oacute; usando un cit&oacute;metro de flujo FACSCalibur (BD Immunocy-tometry Systems). Para la adquisici&oacute;n y an&aacute;lisis de los datos, se utiliz&oacute; el programa Cell Quest.</P> <B><I>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>An&aacute;lisis de los resultados</P> </B></I>    <P>Los resultados se muestran como el promedio y el error est&aacute;ndar de la media. Para establecer diferencias significativas, se utiliz&oacute; la prueba no param&eacute;trica U de Mann-Withney con un nivel de significaci&oacute;n de 0,05. </P> <B>    <P>Resultados</P> </B>    <P>El aislamiento de monocitos de sangre perif&eacute;rica por selecci&oacute;n positiva permiti&oacute; obtener poblaciones de c&eacute;lulas CD14+ con purezas mayores al 92%. Con el fin de evaluar el efecto de la prote&iacute;na KMP-11 y el p&eacute;ptido K1 sobre la expresi&oacute;n de marcadores de c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas de pacientes con Chagas y controles sanos, se utilizaron c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas diferenciadas a partir de monocitos de sangre perif&eacute;rica (c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas inmaduras), las cuales fueron expuestas a la prote&iacute;na KMP-11 en presencia o ausencia de polimixina B o al p&eacute;ptido K1 en presencia o ausencia de LPS. Aunque la prueba para detecci&oacute;n de LPS en todos los reactivos utilizados fue negativa, se utiliz&oacute; polimixina B en los cultivos expuestos a la prote&iacute;na KMP-11 como inhibidor de la actividad de la endotoxina que pudiera estar presente en niveles no detectables por la prueba de amebocitos de <I>Lymulus spp.</I>, con sensibilidad de 0,1 UE/ml.</P>     <P>En todos los casos, la adici&oacute;n de IL-4 y GM-CSF a los monocitos de sangre perif&eacute;rica indujo la p&eacute;rdida en la expresi&oacute;n de la mol&eacute;cula CD14, lo cual indica que los monocitos se diferenciaron a c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas (datos no mostrados). Estas c&eacute;lulas expresaron CD86 y HLA-DR y la exposici&oacute;n al est&iacute;mulo de maduraci&oacute;n (LPS) indujo un aumento en su expresi&oacute;n, as&iacute; como la expresi&oacute;n del marcador de maduraci&oacute;n CD83, sin diferencia entre pacientes y controles sanos (</FONT><A HREF="#figura1">figura 1</A><FONT FACE="Arial">).</P>     <P><A NAME="figura1"></A></P> </FONT>    <P ALIGN="CENTER"><IMG SRC="/img/revistas/bio/v27s1/1sa03g1.jpg"></P> <B><I><FONT FACE="Arial">    <P ALIGN="JUSTIFY">Expresi&oacute;n de marcadores de c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas expuestas a la prote&iacute;na KMP-11</P> </B></I>    <P>La exposici&oacute;n de c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas inmaduras de pacientes a la prote&iacute;na KMP-11 de <I>T. cruzi</I> indujo una disminuci&oacute;n no significativa del marcador de coestimulaci&oacute;n CD86 en comparaci&oacute;n con los controles sanos (</FONT><A HREF="#figura2">figura 2</A><FONT FACE="Arial">A). En cuanto a la expresi&oacute;n de HLA-DR, no se observaron diferencias de expresi&oacute;n tras la adici&oacute;n de la prote&iacute;na KMP-11 en las c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas inmaduras procedentes de pacientes chag&aacute;sicos ni en las procedentes de controles sanos (</FONT><A HREF="#figura2">figura 2</A><FONT FACE="Arial">A). La adici&oacute;n de polimixina B no origin&oacute; modificaci&oacute;n alguna del patr&oacute;n de expresi&oacute;n observado. La adici&oacute;n de la prote&iacute;na KMP-11 a c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas inmaduras no indujo la expresi&oacute;n del marcador de maduraci&oacute;n CD83.</P>     <P><A NAME="figura2"></A></P> </FONT>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="CENTER"><IMG SRC="/img/revistas/bio/v27s1/1sa03g2.jpg"></P> <B><I><FONT FACE="Arial">    <P>Expresi&oacute;n de marcadores de c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas expuestas al p&eacute;ptido K1</P> </B></I>    <P>Al igual que lo observado para la prote&iacute;na KMP-11, la adici&oacute;n del p&eacute;ptido K1 a c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas de pacientes chag&aacute;sicos y controles sanos no indujo la expresi&oacute;n del marcador de maduraci&oacute;n CD83. La adici&oacute;n del p&eacute;ptido K1 a c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas inmaduras indujo en las c&eacute;lulas de los pacientes chag&aacute;sicos un incremento estad&iacute;stica-mente no significativo en la expresi&oacute;n de CD86 y HLA-DR comparado con los niveles observados en controles sanos (</FONT><A HREF="#figura2">figura 2</A><FONT FACE="Arial">B). </P>     <P>Con el prop&oacute;sito de evaluar el efecto del p&eacute;ptido K1 en la maduraci&oacute;n de c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas inducida por la adici&oacute;n de LPS, se expusieron c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas inmaduras simult&aacute;neamente al p&eacute;ptido K1 y a LPS en el d&iacute;a 5 de cultivo. Los resultados obtenidos mostraron que la adici&oacute;n del p&eacute;ptido K1 dio lugar a una disminuci&oacute;n estad&iacute;sticamente significativa en la expresi&oacute;n de las mol&eacute;culas CD86 (<I>p</I> = 0,004) y CD83 (<I>p </I>= 0,003) frente a la que mostraron las c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas incubadas &uacute;nicamente con LPS (</FONT><A HREF="#figura3">figura</A><FONT FACE="Arial"> 3A y </FONT><A HREF="#figura3">figura 3</A><FONT FACE="Arial">B). Sin embargo, los resultados obtenidos no mostraron diferencias en la expresi&oacute;n de HLA-DR en las c&eacute;lulas de pacientes o individuos sanos incubadas con K1 y LPS con respecto a lo observado en c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas expuestas &uacute;nicamente a LPS (</FONT><A HREF="#figura3">figura 3</A><FONT FACE="Arial">C).</P> <B><I>    <P><A NAME="figura3"></A></P> </B></I></FONT>    <P ALIGN="CENTER"><IMG SRC="/img/revistas/bio/v27s1/1sa03g3.jpg"></P> <B><I><FONT FACE="Arial">    <P>Determinaci&oacute;n de las citocinas secretadas por las c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas</P> </B></I>    <P>Con el fin de evaluar la actividad funcional de las c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas frente a los diferentes est&iacute;mulos, se procedi&oacute; a cuantificar la producci&oacute;n de varias citocinas (IL-1b, TNF-</FONT><FONT FACE=Symbol>a</FONT><FONT FACE="Arial"> , IL-6, IL-8, IL-10 e IL-12) en el sobrenadante de los cultivos. Al comparar las c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas de pacientes y controles en presencia de LPS con o sin el p&eacute;ptido K1, no se observaron diferencias significativas en la producci&oacute;n de citocinas. Sin embargo, los resultados mostraron un descenso estad&iacute;stica-mente significativo (<I>p</I> = 0,02) en la secreci&oacute;n de IL-12 por parte de las c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas de pacientes chag&aacute;sicos expuestas al p&eacute;ptido K1 y LPS comparado con las c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas de controles sanos igualmente tratadas (</FONT><A HREF="#figura4">figura 4</A><FONT FACE="Arial">A). Adem&aacute;s, se observ&oacute; un aumento estad&iacute;stica-mente no significativo en la secreci&oacute;n de IL-10 por parte de las mencionadas c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas de los pacientes chag&aacute;sicos en comparaci&oacute;n a los niveles observados en las c&eacute;lulas de controles sanos (</FONT><A HREF="#figura4">figura 4B</A><FONT FACE="Arial">). No se observaron diferencias en los niveles de las citocinas IL-1b, TNF-</FONT><FONT FACE=Symbol>a</FONT><FONT FACE="Arial"> , IL-6 e IL-8 de las c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas de pacientes chag&aacute;sicos <I>versus</I> las de controles sanos tratadas ambas con K1 y LPS (datos no mostrados). </P> <B>    <P><A NAME="figura4"></A></P> </B></FONT>    <P ALIGN="CENTER"><IMG SRC="/img/revistas/bio/v27s1/1sa03g4.jpg"></P> <B><FONT FACE="Arial">    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Discusi&oacute;n</P> </B>    <P>Las c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas regulan la respuesta inmune local y sist&eacute;mica mediante la expresi&oacute;n de mol&eacute;culas en su superficie y de mol&eacute;culas secretadas que generan se&ntilde;ales que influencian el crecimiento, la muerte y la diferenciaci&oacute;n de la c&eacute;lula T (17,18). Las c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas tienen la capacidad de inducir la polarizaci&oacute;n de la respuesta linfoide hacia Th1 o Th2, dependiendo del patr&oacute;n de mol&eacute;culas que expresen o secreten. Por ejemplo, la secreci&oacute;n de IL-12 por c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas induce la generaci&oacute;n de c&eacute;lulas T de tipo Th1 (19,20). </P>     <P>Adem&aacute;s de su papel inductor de la respuesta linfoide, recientemente han surgido algunas l&iacute;neas de evidencia que sugieren que las c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas pueden tener un papel regulador en la inducci&oacute;n de tolerancia perif&eacute;rica. Es as&iacute; como se ha mostrado que c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas en estado inmaduro o semimaduro pueden inducir la activaci&oacute;n de c&eacute;lulas T reguladoras (21). </P>     <P>En el caso de la respuesta inmune a agentes infecciosos es de particular inter&eacute;s el hecho de que algunos pat&oacute;genos pueden inducir la generaci&oacute;n de c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas reguladoras que inhiben la inducci&oacute;n de respuesta inmune efectiva, lo cual se relaciona con estrategias de evasi&oacute;n de la respuesta inmune por estos agentes y explica en parte la cronicidad de algunas enfermedades infecciosas (22,23). </P>     <P>Los estudios sobre la interacci&oacute;n de las c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas y <I>T. cruzi</I> muestran que el par&aacute;sito puede infectar dichas c&eacute;lulas y multiplicarse en su interior alterando el programa de maduraci&oacute;n de la c&eacute;lula dendr&iacute;tica mediante la inhibici&oacute;n de la producci&oacute;n de citocinas, disminuci&oacute;n de mol&eacute;culas coestimuladoras (7), disminuci&oacute;n de la expresi&oacute;n de mol&eacute;culas de clase I y, por lo tanto, alteraci&oacute;n de la capacidad para presentar p&eacute;ptidos antig&eacute;nicos a linfocitos T CD8+ (8). Algunas mol&eacute;culas, como los glicoinositolfosfol&iacute;pidos (GIPL), han sido relacionadas con esta hiporreactividad inmune del par&aacute;sito (24). Sin embargo, otras mol&eacute;culas como la prote&iacute;na Tc52, que es una oxidorreductasa necesaria para la supervivencia y la virulencia del par&aacute;sito, induce maduraci&oacute;n de c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas derivadas de monocitos y protege ratones <I>in vivo</I> frente a una infecci&oacute;n letal con <I>T. cruzi</I> (25), lo cual indica que aunque la infecci&oacute;n de la c&eacute;lula dendr&iacute;tica por <I>T. cruzi</I> altera su actividad en t&eacute;rminos de estimulaci&oacute;n de c&eacute;lulas T, algunas mol&eacute;culas derivadas de &eacute;ste podr&iacute;an considerarse como buenos candidatos para la generaci&oacute;n de vacunas espec&iacute;ficas contra el par&aacute;sito.</P>     <P>La prote&iacute;na 11 de membrana de cinetopl&aacute;stidos (KMP-11) fue descrita en <I>Leishmania donovani</I> asociada al lipofosfoglicano (LPG) (26), localizada en el bolsillo flagelar y asociada al citoesqueleto; esta prote&iacute;na se considera una estructura cr&iacute;tica para la movilidad del par&aacute;sito y para su uni&oacute;n a la c&eacute;lula hospedera (27,28). La presencia de la KMP-11 ha sido demostrada en varias especies de leishmanias y tripanosomas, y no ha sido descrita en otros organismos diferentes a los cineto-pl&aacute;stidos, lo cual respalda el concepto de un rol espec&iacute;fico en estos par&aacute;sitos (28).</P>     <P>Con base en los estudios que demuestran la importancia de la prote&iacute;na KMP-11 y de su p&eacute;ptido K1 en la respuesta inmune frente a la infecci&oacute;n (9,12,13,15), en este trabajo se evalu&oacute; la expresi&oacute;n de marcadores de maduraci&oacute;n en c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas derivadas de monocitos de pacientes chag&aacute;sicos cr&oacute;nicos e individuos sanos estimuladas con la prote&iacute;na KMP-11 y el p&eacute;ptido K1 de<I> T. cruzi</I>. Vale la pena anotar que estudios preliminares realizados por nuestro grupo indican que el p&eacute;ptido K1 induce una respuesta inmune humoral espec&iacute;fica en pacientes infectados independientemente de su tipo de HLA (29), a pesar de haber sido reportado como un ep&iacute;tope restringido al HLA-A*0201 en trabajos previos (9,13). </P>     <P>Los resultados obtenidos en este estudio muestran que si bien la prote&iacute;na KMP-11 no induce la maduraci&oacute;n de c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas, su p&eacute;ptido amino terminal K1 en presencia de LPS se asocia con una menor expresi&oacute;n de los marcadores CD83 y CD86 en las c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas de los pacientes. Por otra parte, la respuesta <I>in vitro</I> frente al p&eacute;ptido K1 en presencia de LPS muestra niveles significativamente inferiores en la producci&oacute;n de IL-12 por las c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas de los pacientes. Estos resultados sugieren que K1 en presencia de LPS tiene un efecto en el programa de maduraci&oacute;n de las c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas que es caracter&iacute;stico de pacientes chag&aacute;sicos, el cual podr&iacute;a afectar la estimulaci&oacute;n de los linfocitos T, as&iacute; como tambi&eacute;n interferir con la polarizaci&oacute;n hacia una respuesta Th1, la cual se ha visto que es crucial para el control de la infecci&oacute;n por <I>T. cruzi,</I> al menos en los modelos murinos (30-32). </P>     <P>Una posible explicaci&oacute;n a esta disminuci&oacute;n en la expresi&oacute;n de marcadores de membrana podr&iacute;a deberse a un efecto t&oacute;xico de la prote&iacute;na o del p&eacute;ptido sobre las c&eacute;lulas. Sin embargo, el hecho de encontrar disminuci&oacute;n en la expresi&oacute;n de las mol&eacute;culas mencionadas en las c&eacute;lulas de los pacientes chag&aacute;sicos y no en las de los controles sanos parece indicar que &eacute;ste no es el caso. Adem&aacute;s, el efecto de K1 y LPS se observa para la expresi&oacute;n de CD86 y CD83, mientras que la expresi&oacute;n de HLA-DR no se ve afectada. </P>     <P>Si bien el papel de ant&iacute;genos espec&iacute;ficos parasitarios en la maduraci&oacute;n de c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas murinas ha sido descrito previamente, como es el caso de la prote&iacute;na HSP70 de <I>T. cruzi</I> (33), este es el primer reporte que involucra a un p&eacute;ptido sint&eacute;tico derivado de una prote&iacute;na del par&aacute;sito en esta modulaci&oacute;n. El mecanismo molecular mediante el cual K1 ejerce su acci&oacute;n es desconocido; sin embargo, llama la atenci&oacute;n que otros p&eacute;ptidos derivados de pat&oacute;genos tales como el p&eacute;ptido sint&eacute;tico T20 del virus de inmunodeficiencia adquirida 1 (HIV-1) y el p&eacute;ptido Hp(2-20) de <I>Helicobacter pylori</I> inhiben la producci&oacute;n de IL-12 por parte de monocitos humanos (34,35). Se ha visto que estos p&eacute;ptidos son agonistas de la familia de receptores FPR (<I>formyl peptide receptor</I>) (36-38). As&iacute; mismo, el p&eacute;ptido sint&eacute;tico WKYMVm, agonista de FPR y FPRL2, inhibe tanto la maduraci&oacute;n de c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas humanas como la producci&oacute;n de IL-12 de las mismas (35). Adicionalmente, tambi&eacute;n se ha encontrado que el LPS es capaz de aumentar la expresi&oacute;n de FPR y FPRL1 en macr&oacute;fagos y neutr&oacute;filos de ratones (39). Por lo tanto, es de especial inter&eacute;s investigar si K1 en presencia de LPS, es capaz de interactuar con estos receptores, desencadenando una disminuci&oacute;n en la producci&oacute;n de IL-12. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>El hecho de que el efecto de K1 en presencia de LPS s&oacute;lo se observe en pacientes infectados y no en individuos sanos llama la atenci&oacute;n por cuanto las c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas hacen parte de la respuesta inmune innata y sugiere que de alguna manera el contacto previo con el par&aacute;sito o algunas de sus mol&eacute;culas alterar&iacute;a el programa de maduraci&oacute;n de tales c&eacute;lulas.</P>     <P>Por otra parte, es posible que la diferencia en el comportamiento del p&eacute;ptido K1 en presencia de LPS y de la prote&iacute;na KMP-11 se deba esencialmente a la diferencia estructural y antig&eacute;nica entre las dos mol&eacute;culas, lo que conllevar&iacute;a a la activaci&oacute;n de distintas v&iacute;as de la respuesta inmune. </P>     <P>Queda por determinar si el sistema de estimulaci&oacute;n descrito en este trabajo es reprodu-cible en pacientes infectados asintom&aacute;ticos para poder llegar a conclusiones sobre el papel del p&eacute;ptido K1 en la modulaci&oacute;n de la respuesta inmune espec&iacute;fica <I>in vivo.</P> </I><B>    <P>Conflicto de intereses</P> </B>    <P>Los autores manifestamos expresamente que durante la realizaci&oacute;n del presente trabajo no existi&oacute; conflicto de inter&eacute;s alguno que pudiera afectar los resultados obtenidos.</P> <B>    <P>Agradecimientos</P> </B>    <P>Los autores expresan su agradecimiento a Miguel Vacca del Hospital Universitario San Ignacio, PUJB, a Rub&eacute;n Santiago Nicholls, a Marleny Montilla y Astrid C. Fl&oacute;rez del Laboratorio de Parasitolog&iacute;a del Instituto Nacional de Salud y a Marcela Mercado del Grupo de Enfermedades Infecciosas, PUJB, por su colaboraci&oacute;n en la evaluaci&oacute;n cl&iacute;nica de los pacientes y la realizaci&oacute;n de las pruebas de laboratorio IFI, ELISA y Chagatek&reg;, respectivamente. </P> <B>    <P>Financiaci&oacute;n</P> </B>    <P>Este estudio fue financiado por la Vicerrectoria Acad&eacute;mica de la Pontificia Universidad Javeriana. Registro de proyecto 1767.</P>     <P>Correspondencia:</BR>     ]]></body>
<body><![CDATA[<BR>Concepci&oacute;n Puerta     <BR> Tel.: (+571) 3208320 ext 4024, Fax (571) 3208320, ext 4021</FONT><A HREF="mailto:Cpuerta@javeriana.edu.co">Cpuerta@javeriana.edu.co</A></P> <B><FONT FACE="Arial">    <P>Referencias</P> </B>    <!-- ref --><P>1.<B>Revy P, Sosperda M, Barbour B, Trautmann A.</B> Functional antigen-independent synapses formed between T cells and dendritic cells. Nat Immunol 2001;2:925-31.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-4157200700050000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>2.<B>Russo V, Tanzarella S, Dalerba P, Rigatti D, Rovere P, Villa A, <I>et al.</I> </B>Dendritic cells acquire the MAGE-3 human tumor antigen from apoptotic cells and induce a class I restricted T cell response. Proc Natl Acad Sci USA 2000;97:2185-90.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-4157200700050000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>3.<B>Lanzavecchia A, Sallusto F.</B> The instructive role of dendritic cells on T cell responses: lineages, plasticity and kinetics. Curr Opin Immunol 2001;13:291-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-4157200700050000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>4.<B>World Health Organization. </B>Control of Chagas disease. Second report of the WHO Expert Committee, Technical Report 2002, Series 905. Geneva: WHO; 2002. p.39-40.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-4157200700050000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>5.<B>Moncayo A.</B> Chagas disease: current epidemiological trends after the interruption of vectorial and transfusional transmission in the Southern Cone countries.<B> </B>Mem Inst Oswaldo Cruz 2003;98:577-91.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-4157200700050000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>6.<B>Tanowitz HB, Kirchhoff LV, Simon D, Morris SA, Weiss LM, Wittner M</B>. Chagas’ disease. Clin Microbiol Rev 1992;5:400-19.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-4157200700050000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>7.<B>Van Overtvelt L, Vanderheyde N, Verhasselt V, Ismaili J, De Vos L, Goldman M, <I>et al.</I> </B><I>Trypanosoma cruzi</I> infects human dendritic cells and prevents their maturation: inhibition of cytokines, HLA-DR, and costimulatory molecules. Infect Immun 1999;67:4033-40.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-4157200700050000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>8.<B>Van Overtvelt L, Andrieu M, Verhasselt V, Connan F, Choppin J, Vercruysse V, <I>et al.</I> </B><I>Trypanosoma cruzi</I> down-regulates lipopolysaccharide-induced MHC class I on human dendritic cells and impairs antigen presentation to specific CD8(+) T lymphocytes. Int Immunol 2002;14:1135-44.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-4157200700050000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>9.<B>Mara&ntilde;on C, Thomas MC, Planelles L, Lopez MC.</B> The immunization of A2/K(b) transgenic mice with the KMP-11-HSP70 fusion protein induces CTL response against human cells expressing <I>t</I>he<I> T. cruzi</I> KMP-11 antigen: Identification of A2-restricted epitopes. Mol Immunol 2001;38:279-87.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-4157200700050000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>10.<B>Rodrigues MM, Ribeirao M, Pereira-Chioccola V, Renia L, Costa F.</B> Predominance of CD4 Th1 and CD8 Tc1 cells revealed by characterization of the cellular immune response generated by immunization with a DNA vaccine containing a <I>Trypanosoma cruzi</I> gene. 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Infect Immun 2002;70:3736-43.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-4157200700050000300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>25.<B>Ouaissi A, Guilvard E, Delneste Y, Caron G, Magistrelli G, Herbault N, <I>et al.</I> </B>The <I>Trypanosoma cruzi</I> Tc52-released protein induces human dendritic cell maturation, signals via toll-like receptor 2, and confers protection against lethal infection. 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