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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Diferenciación genética de tres poblaciones colombianas de Triatoma dimidiata (Latreille, 1811) mediante análisis molecular del gen mitocondrial ND4]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction. Triatoma dimidiata is the second most important vector of Chagas disease in Colombia after Rhodnius prolixus. Population genetic studies are essential for the adequate design and implementation of vector control and surveillance strategies. Objective. The level of genetic variability and population differentiation was surveyed among three Colombian populations of T. dimidiata from different geographic locations and ecotopes, using ND4 mitochondrial gene. Materials and methods. Genetic comparison was made between two wild populations from La Guajira (n=10) and Santander (n=10) provinces, and one intra (n=15) and one peridomiciliary (n=5) population from the Cesar province. The polymorphism frequencies of the ND4 mitochondrial gene sequence were analyzed to deduce population structure based on the 40 samples. Results. Colombian T. dimidiata showed a high nucleotide (&pi;: 0.034) and haplotype diversity (Hd: 0.863), as well as significant population subdivision (fST: 0.761) and a low migration rate (Nm: 0.157). Genetic distances and variability differences among populations indicate distinct population subdivision amongst the three provinces. Conclusion. ND4 proved useful in elucidating the significant genetic differentiation that has occurred among T. dimidiata populations from La Guajira, Cesar and Santander. The analysis suggested a relationship between population subdivision and some eco-epidemiological attributes of this vector from the central eastern and northwestern regions of Colombia.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p>ART&Iacute;CULO ORIGINAL</p> <font face="verdana" size="2">     <p><font size="4">    <center><b>Diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica de tres poblaciones colombianas de <i>Triatoma dimidiata</i> (Latreille, 1811) mediante an&aacute;lisis molecular del gen mitocondrial <i>ND4 </i></b></center></font></p>      <p>    <center> Nelson Grisales<sup>1†</sup>, Omar Triana<sup>1</sup>, V&iacute;ctor Angulo<sup>3</sup>, Nicol&aacute;s Jaramillo<sup>1</sup>, Gabriel Parra-Henao<sup>2</sup>, Francisco Panzera<sup>4</sup>, Andr&eacute;s G&oacute;mez-Palacio<sup>1&dagger;</sup></center></p>      <p><sup> 1</sup>Grupo de Biolog&iacute;a y Control de Enfermedades Infecciosas, Sede de Investigaci&oacute;n Universitaria, Instituto de Biolog&iacute;a, Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n, Colombia</p>      <p><sup> 2</sup>Instituto Colombiano de Medicina Tropical, Universidad CES, Medell&iacute;n, Colombia</p>      <p><sup> 3</sup>Centro de Investigaciones en Enfermedades Tropicales,Universidad Industrial de Santander, Bucaramanga, Colombia</p>      <p><sup> 4</sup>Secci&oacute;n Gen&eacute;tica Evolutiva, Facultad de Ciencias, Universidad de la Rep&uacute;blica, Montevideo, Uruguay</p>      <p> † Estos autores aportaron en igual medida al trabajo.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>  El trabajo se llev&oacute; a cabo en el Grupo de Biolog&iacute;a y Control de Enfermedades Infecciosas, Sede de Investigaci&oacute;n Universitaria, Universidad de Antioquia.</p>      <p>Recibido: 15/07/09; aceptado:06/12/09 </p> <hr size="1">      <p><b>Introducci&oacute;n.</b> <i>Triatoma dimidiata </i>es el segundo vector m&aacute;s importante de la enfermedad de Chagas en Colombia, despu&eacute;s de <i>Rhodnius prolixus</i>. El conocimiento de la composici&oacute;n gen&eacute;tica y la diferenciaci&oacute;n de poblaciones es fundamental para el adecuado dise&ntilde;o e implementaci&oacute;n de estrategias de control y vigilancia vectorial.</p>      <p><b>Objetivo.</b> Determinar el nivel de variabilidad y diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica en tres poblaciones colombianas de <i>T. dimidiata </i>provenientes de distintas localidades y h&aacute;bitats, mediante el an&aacute;lisis molecular de un fragmento del gen mitocondrial <i>ND4</i>.</p>      <p><b>Materiales y m&eacute;todos.</b> Se analiz&oacute; el nivel de polimorfismo y la estructura gen&eacute;tica de dos poblaciones silvestres de los departamentos de La Guajira (n=10) y Santander (n=10), y de una poblaci&oacute;n intradomiciliaria (n=15) y peridomiciliaria (n=5) del Cesar. Para tal fin, se analizaron las secuencias de nucle&oacute;tidos de un fragmento del gen mitocondrial <i>ND4</i>.</p>      <p><b>Resultados.</b> <i>T. dimidiata </i>en Colombia demostr&oacute; tener gran diversidad gen&eacute;tica, tanto a nivel de nucle&oacute;tidos (&pi;: 0,034) como de haplotipo (Hd: 0,863), adem&aacute;s de una significativa estructuraci&oacute;n de poblaci&oacute;n (f<sub>ST</sub>: 0,761) con un bajo n&uacute;mero de migrantes (<i>Nm</i>: 0,157). Las distancias gen&eacute;ticas y las diferencias en los niveles de variabilidad gen&eacute;tica entre las tres poblaciones fueron coherentes con una posible subdivisi&oacute;n de poblaci&oacute;n.</p>      <p><b>Conclusi&oacute;n.</b> Este trabajo demostr&oacute; diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica entre las poblaciones de <i>T. dimidiata </i>de La Guajira, Cesar y Santander. Se sugiere una posible relaci&oacute;n entre tal subdivisi&oacute;n y algunas caracter&iacute;sticas eco-epidemiol&oacute;gicas que posee <i>T. dimidiata</i> en el centro-oriente y en el norte de Colombia. Finalmente, este trabajo describe, por primera vez, la utilidad del <i>ND4</i> como un marcador molecular para el estudio de poblaciones naturales de <i>T. dimidiata</i>. </p>      <p><b>Palabras clave:</b> enfermedad de Chagas, <i>Triatoma</i>, Triatominae, gen&eacute;tica de poblaci&oacute;n, polimorfismo gen&eacute;tico, NADH deshidrogenasa.</p> <hr size="1">  <font size="3">     <p><b>Genetic differentiation of three Colombian populations of <i>Triatoma dimidiata </i>(Heteroptera: Reduviidae) by <i>ND4</i> mitochondrial gene molecular analysis </b></p></font>      <p><b>Introduction.</b> <i>Triatoma dimidiata</i> is the second most important vector of Chagas disease in Colombia after <i>Rhodnius prolixus</i>. Population genetic studies are essential for the adequate design and implementation of vector control and surveillance strategies. </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Objective.</b> The level of genetic variability and population differentiation was surveyed among three Colombian populations of <i>T. dimidiata </i>from different geographic locations and ecotopes, using <i>ND4 </i>mitochondrial gene. </p>      <p><b>Materials and methods.</b> Genetic comparison was made between two wild populations from La Guajira (n=10) and Santander (n=10) provinces, and one intra (n=15) and one peridomiciliary (n=5) population from the Cesar province. The polymorphism frequencies of the <i>ND4</i> mitochondrial gene sequence were analyzed to deduce population structure based on the 40 samples. </p>      <p><b>Results. </b>Colombian <i>T. dimidiata </i>showed a high nucleotide (&pi;: 0.034) and haplotype diversity (Hd: 0.863), as well as significant population subdivision (f<sub>ST</sub>: 0.761) and a low migration rate (<i>Nm</i>: 0.157). Genetic distances and variability differences among populations indicate distinct population subdivision amongst the three provinces<i>. </i></p>      <p><b>Conclusion.</b> <i>ND4</i> proved useful in elucidating the significant genetic differentiation that has occurred among <i>T. dimidiata</i> populations from La Guajira, Cesar and Santander. The analysis suggested a relationship between population subdivision and some eco-epidemiological attributes of this vector from the central eastern and northwestern regions of Colombia. </p>      <p><b>Key words:</b> Chagas disease, <i>Triatoma</i>, Triatominae; genetics, population; polymorphism, genetics; NADH dehydrogenase. </p> <hr size="1">      <p>La enfermedad de Chagas es una parasitosis que afecta, aproximadamente, 15 millones de personas en Latinoam&eacute;rica, con 28 millones en riesgo de contraer la infecci&oacute;n (1). El agente etiol&oacute;gico de esta enfermedad, <i>Trypanosoma cruzi</i>, es transmitido al humano, principalmente, por las heces de insectos hemat&oacute;fagos de la subfamilia Triatominae (Hemiptera: Reduviidae).<i> Triatoma dimidiata</i> es una especie de amplia distribuci&oacute;n geogr&aacute;fica, que va desde M&eacute;xico, e incluye a Centroam&eacute;rica, Ecuador, Per&uacute; y Colombia, y se considera el vector principal de <i>T. cruzi</i> en M&eacute;xico y en varios pa&iacute;ses de Centroam&eacute;rica (2). En Colombia es el segundo vector m&aacute;s importante despu&eacute;s de <i>Rhodnius prolixus</i>, debido a sus frecuentes eventos de intrusi&oacute;n domiciliaria y su incidencia en la transmisi&oacute;n de <i>T. cruzi</i> al hombre (1,2)<i>.</i></p>      <p>En Colombia, <i>T. dimidiata</i> tiene una amplia distribuci&oacute;n y est&aacute; presente en 15 de los 32 departamentos, y ocupa una amplia diversidad de h&aacute;bitats, incluso en una misma regi&oacute;n se puede hallar de manera simult&aacute;nea en ec&oacute;topos silvestres, peridom&eacute;sticos y dom&eacute;sticos (3-6).</p>      <p>En la costa norte de Colombia, este vector ocupa, principalmente, ec&oacute;topos silvestres, concretamente en palmas de la especie <i>Attalea butyracea, </i>y en esta regi&oacute;n presenta bajos niveles de colonizaci&oacute;n a las viviendas (5,7). Por el contrario, en los departamentos de la regi&oacute;n andina, como Santander y Boyac&aacute;, <i>T. dimidiata </i>representa un alto riesgo epidemiol&oacute;gico, por encontrarse colonizando ambientes dom&eacute;sticos, peridom&eacute;sticos y silvestres, simult&aacute;neamente (5,6).</p>      <p>A pesar de estos antecedentes, es poco lo que se conoce sobre la estructura gen&eacute;tica de las poblaciones de <i>T. dimidiata</i> en Colombia. Los estudios moleculares con marcadores nucleares, que usan RAPD (<i>Random Amplification of Polymorphic DNA</i>) (4) y el segundo espaciador interg&eacute;nico ribos&oacute;mico (ITS-2) (3), indican altos niveles de flujo g&eacute;nico entre las poblaciones dom&eacute;sticas, peridom&eacute;sticas y silvestres del municipio de Boavita, Boyac&aacute;.</p>      <p>Adem&aacute;s, el an&aacute;lisis del gen <i>ITS-2 </i>sugiere que las poblaciones colombianas pertenecen, junto con las de Panam&aacute;, a un mismo haplogrupo (denominado <i>T. dimidiata capitata</i>) (8,9). Este haplogrupo difiere significativamente con respecto a <i>T. dimidiata </i>de M&eacute;xico y Centroam&eacute;rica (Guatemala, Honduras, Nicaragua y Costa Rica) (8,9). Estos trabajos demostraron que las cinco poblaciones continentales de Colombia presentan cinco haplotipos de <i>ITS-2</i>, con una gran diversidad haplot&iacute;pica (Hd: 0,686±0,065), pero con una muy baja diversidad de nucle&oacute;tidos (&pi;: 0,003 ± 0,002) entre ellos (8). Tales valores indican que en Colombia el vector presenta una gran variabilidad gen&eacute;tica, pero que el bajo nivel de diversidad molecular del <i>ITS-2</i> limita la determinaci&oacute;n de los posibles niveles de diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica de la poblaci&oacute;n (8). Por tal raz&oacute;n, Bargues <i>et al</i>. (8) resaltan la necesidad de implementar un estudio de poblaciones con un mayor n&uacute;mero de individuos de cada poblaci&oacute;n, as&iacute; como la aplicaci&oacute;n de un nuevo marcador molecular con mayor nivel de variaci&oacute;n, tal y como podr&iacute;an ser los marcadores de tipo mitocondrial.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Teniendo en cuenta estos antecedentes, y dada la importancia epidemiol&oacute;gica de <i>T. dimidiata</i> en Colombia, consideramos que es necesario ampliar el conocimiento de la composici&oacute;n gen&eacute;tica, el nivel de subdivisi&oacute;n y las din&aacute;micas de las poblaciones, mediante la implementaci&oacute;n de nuevos marcadores moleculares.</p>      <p>Uno de los marcadores moleculares mitocondriales que se ha destacado por su alto nivel polim&oacute;rfico y que lo hace apropiado para los estudios de gen&eacute;tica de poblaciones en insectos de importancia m&eacute;dica, es el gen de la subunidad 4 de la NADH deshidrogenasa (<i>ND4</i>) (10-12). Aunque existen m&aacute;s de 30 secuencias de <i>ND4</i> depositadas en el <i>GenBank</i>, no existen estudios de poblaciones en triatominos con este marcador. </p>      <p>El presente trabajo pretendi&oacute; determinar el nivel de variabilidad y diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica de tres poblaciones naturales<i> </i>de <i>T. dimidiata </i>de Colombia,<i> </i>mediante el an&aacute;lisis de un fragmento de 563 nucle&oacute;tidos del gen mitocondrial <i>ND4</i> en individuos capturados en palmas, rocas y &aacute;reas de influencia humana, como domicilios y peridomicilios.</p>      <p><b>Materiales y m&eacute;todos </b></p>      <p><b><i>Insectos </i></b></p>      <p>Todos los individuos utilizados en este trabajo se identificaron morfol&oacute;gicamente como <i>T. dimidiata </i>(Latreille, 1811), seg&uacute;n la clave taxon&oacute;mica de referencia para triatominos (13). Se emplearon 40 individuos, 10 capturados en el departamento de La Guajira, 10 en el departamento de Santander y 20 en el departamento del Cesar. Los individuos silvestres de Santander fueron capturados en afloramientos de rocas, mientras los de La Guajira, en palmas <i>A. butyracea. </i>El n&uacute;mero de ejemplares, su origen geogr&aacute;fico y el ec&oacute;topo de procedencia se muestran en el <a href="#cuadro1">cuadro 1</a>.</p>      <p>    <center><a name="cuadro1"><img src="img/revistas/bio/v30n2/2a08t1.gif"></a></center></p>      <p><b><i>Extracci&oacute;n de ADN, amplificaci&oacute;n y secuenciamiento del ND4 </i></b></p>      <p>El ADN de cada insecto se extrajo de las patas, seg&uacute;n Collins <i>et al</i>. (14). La reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR) y el secuenciamiento del <i>ND4</i> se realizaron seg&uacute;n Lyman <i>et al</i>. (15), utilizando el iniciador ND4-F (5’- TCAACATGAGCCCTTGGAAG-3’) y ND4-R (5’- TAATTCGTTGTCATGGTAATG-3’). Las secuencias de nucle&oacute;tidos obtenidas se alinearon en <i>ClustalX</i> 1.81 (16), con un ajuste manual requerido usando el programa<i> BioEdit,</i> versi&oacute;n 7.0.9.0 (17). La primera posici&oacute;n del fragmento de 563pb del <i>ND4</i> amplificado correspondi&oacute; a la posici&oacute;n 8765 en el genoma mitocondrial de <i>T. dimidiata </i>(c&oacute;digo de acceso, <i>GenBank</i> Nº AF301594) (18).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><i>Descripci&oacute;n y variabilidad del ND4 </i></b></p>      <p>Para cada poblaci&oacute;n se estim&oacute; la composici&oacute;n nucleot&iacute;dica promedio (porcentaje de adenina-timina), el n&uacute;mero de sitios polim&oacute;rficos, el n&uacute;mero de sitios &uacute;nicos (<i>singleton sites</i>), el n&uacute;mero promedio de diferencias nucleot&iacute;dicas y el n&uacute;mero promedio de sustituciones de nucle&oacute;tidos (transiciones y transversiones: ts/tv), utilizando los programas Mega 4.1 (19) y DnaSP 4.5 (20) (<a href="#cuadro1">cuadro 1</a>).</p>      <p>Se evaluaron dos estimadores de variabilidad gen&eacute;tica: el &iacute;ndice de polimorfismo de nucle&oacute;tidos (q) y el &iacute;ndice de diversidad nucleot&iacute;dica (&pi;) (21), usando el programa DnaSP 4.5 (20). La asignaci&oacute;n del n&uacute;mero de haplotipos (h) y el c&aacute;lculo de la diversidad haplot&iacute;pica (Hd) (21), se llevaron a cabo usando los programas DAMBE 5.0.45 (22) y DnaSP 4.5 (20), respectivamente. La estimaci&oacute;n de la distancia gen&eacute;tica est&aacute;ndar (<i>d</i>) (distancias gen&eacute;ticas dentro y entre poblaciones) se estim&oacute; mediante el modelo de Tamura-Nei (TrN) (23), usando el programa Mega 4.1 (19). Finalmente, para establecer conexiones en red (<i>median joining networks</i>) entre los haplotipos de las poblaciones, se us&oacute; el programa Network 4.5.1.0 (<a href="http://www.fluxus-engineering.com">http://www.fluxus-engineering.com</a>).</p>      <p><b><i>Diferenciaci&oacute;n de poblaciones </i></b></p>      <p>El an&aacute;lisis jer&aacute;rquico de varianza molecular (AMOVA) (24) se utiliz&oacute; para probar la estructura de las poblaciones de <i>T. dimidiata </i>mediante el programa <i>GenA1Ex</i> 6.0 (25). El c&aacute;lculo de la significancia (5%) fue inferido a partir de las comparaciones por pares de los valores obtenidos de 1.000 permutaciones del estimador &theta;<sub>ST</sub> (an&aacute;logo del F<sub>ST</sub>). Los valores del estimador &theta;<sub>ST</sub> de 0 a 0,05 indican poca diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica, de 0,05 a 0,15 una diferenciaci&oacute;n moderada, de 0,15 a 0,25 una alta diferenciaci&oacute;n, y los valores de m&aacute;s de 0,25 representan una diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica muy alta (26). El n&uacute;mero promedio de haplotipos migrantes por generaci&oacute;n (<i>Nm</i>) entre las poblaciones se calcul&oacute; utilizando el &theta;<sub>ST</sub> como un an&aacute;logo del F<sub>ST </sub>en la ecuaci&oacute;n <i>Nm </i>= {(1/&theta;<sub>ST</sub>)-1}/2 (27) mediante el programa <i>GenA1Ex</i> 6.0 (25).</p>      <p><b>Resultados </b></p>      <p>Todos los insectos amplificaron una banda de 614pb, correspondiente a 51 nucle&oacute;tidos del gen <i>ND4L</i> y 563 del gen <i>ND4</i>. Las secuencias obtenidas del <i>ND4</i> no mostraron inserciones, deleciones o codones de parada, que es lo esperado para genes codificantes mitocondriales. Todas las secuencias mostraron un alto porcentaje de adenina-timina, con variaci&oacute;n entre 1,1% y 1,5% en las poblaciones analizadas (<a href="#cuadro1">cuadro 1</a>). </p>      <p>El porcentaje de sitios polim&oacute;rficos del <i>ND4</i> fue de 15,27%. Las secuencias de los individuos de Santander mostraron el mayor porcentaje de sitios polim&oacute;rficos (S) (10,48%), seguido de Cesar (4,97%) y La Guajira (0,53%) (<a href="#cuadro1">cuadro 1</a> y <a href="#figura1">figura 1</a>). El n&uacute;mero de mutaciones &uacute;nicas (Su) y el promedio de cambios nucleot&iacute;dicos (k) observado, fue comparativamente mayor en Santander, que en Cesar y La Guajira (<a href="#cuadro1">cuadro 1</a> y <a href="#figura1">figura 1</a>). </p>      <p>    <center><a name="figura1"><img src="img/revistas/bio/v30n2/2a08i1.jpg"></a></center></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Como era de esperarse en los organismos muy relacionados, el &iacute;ndice promedio de sustituci&oacute;n de nucle&oacute;tidos para <i>T. dimidiata </i>reflej&oacute; una fuerte desviaci&oacute;n hacia los cambios transicionales con respecto a los de transversi&oacute;n (ts/tv= 2,8) (<a href="#cuadro1">cuadro 1</a>). El 74% de los cambios de nucle&oacute;tidos observados en la secuencia del gen <i>ND4</i> analizada corresponden a transiciones. </p>      <p>Los valores estimados para el &iacute;ndice de polimorfismo (q) y de diversidad nucleot&iacute;dica (&pi;) se muestran en el <a href="#cuadro1">cuadro 1</a>. Ambos &iacute;ndices mostraron ser comparativamente mayores en la poblaci&oacute;n de Santander que en la de La Guajira y el Cesar, los cuales mostraron un nivel similar de polimorfismo entre s&iacute;, pero diferente diversidad en nucle&oacute;tidos (<a href="#cuadro1">cuadro 1</a>).</p>      <p>Como era de esperarse para los marcadores mitocondriales con alto nivel de polimorfismo, se encontr&oacute; un gran n&uacute;mero de haplotipos (h) en <i>T. dimidiata </i>con una gran diversidad haplot&iacute;pica (Hd) (<a href="#cuadro1">cuadro 1</a>). Todas las poblaciones mostraron haplotipos diferentes entre ellas, con excepci&oacute;n de un individuo de Santander que mostr&oacute; un haplotipo similar al de algunos individuos de Cesar (v&eacute;an  se las secuencias de Santander 02 en la <a href="#figura2">figura 1</a> y <a href="#figura2">figura 2</a>). </p>      <p>    <center><a name="figura2"><img src="img/revistas/bio/v30n2/2a08i2.jpg"></a></center></p>      <p>De forma similar a lo observado a nivel de nucle&oacute;tidos, la diversidad de haplotipos de la poblaci&oacute;n de Santander fue significativamente mayor que la del Cesar y La Guajira, los cuales mostraron niveles similares entre s&iacute; (<a href="#cuadro1">cuadro 1</a>). </p>      <p>La distancia gen&eacute;tica (TrN) promedio entre todos los individuos de <i>T. dimidiata </i>estudiados fue de <i>d</i>=0,036. La distancia estimada entre poblaciones sugiere una divergencia entre la poblaci&oacute;n de Santander y la de La Guajira y el Cesar de 5,5% y 5,4%, respectivamente, y entre La Guajira y el Cesar, una divergencia del 4,5%. La distancia estimada dentro de la poblaci&oacute;n de Santander (<i>d=0,032</i>) muestra un grado de divergencia, al menos, cinco veces mayor que la observada en Cesar <i>(d</i>=0,006) y alrededor de 16 veces la de La Guajira (<i>d</i>=0,002). La red de haplotipos muestra la agrupaci&oacute;n de los individuos de las tres poblaciones que se corresponde con la distribuci&oacute;n geogr&aacute;fica de las localidades de origen (<a href="#figura2">figura 2</a>). No se observ&oacute; ninguna diferenciaci&oacute;n entre los ec&oacute;topos de origen en la red haplot&iacute;pica (<a href="#figura2">figura 2</a>).</p>      <p>El AMOVA mostr&oacute; que la variabilidad gen&eacute;tica existente entre las tres poblaciones es, aproximadamente, tres veces mayor que la observada dentro de ellas (<a href="#cuadro2">cuadro 2</a>). El AMOVA permiti&oacute; identificar una alta estructuraci&oacute;n de haplotipos entre las poblaciones, con un bajo n&uacute;mero de haplotipos migrantes por generaci&oacute;n (<a href="#cuadro2">cuadro 2</a>). Igualmente, la comparaci&oacute;n pareada de los valores del F<i><sub>ST </sub></i>y la estimaci&oacute;n del <i>Nm </i>entre las poblaciones, mostr&oacute; en todos los casos un nivel de estructuraci&oacute;n significativo y un restringido flujo de haplotipos migrantes, siendo particularmente mayor entre La Guajira y Cesar (F<i><sub>ST</sub></i>=0,889; <i>Nm=</i>0,062), que entre La Guajira y Santander (F<i><sub>ST</sub></i>=0,683; <i>Nm=</i>0,232) y que entre Cesar y Santander (F<i><sub>ST</sub></i>=0,696; <i>Nm=</i>0,218).</p>      <p>    <center><a name="cuadro2"><img src="img/revistas/bio/v30n2/2a08t2.gif"></a></center></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Discusi&oacute;n </b></p>      <p>La variabilidad gen&eacute;tica de <i>T. dimidiata</i> en Colombia se analiz&oacute; inicialmente con <i>ITS-2</i>, incluyendo 30 individuos pertenecientes a poblaciones del centro-oriente y del norte del pa&iacute;s (8). Dicho trabajo mostr&oacute; valores de diversidad de haplotipos (Hd=0,686) y de nucle&oacute;tidos (&pi;=0,003) muy inferiores a los detectados por nosotros con <i>ND4</i> (Hd=0,863; &pi;=0,034). </p>      <p>Sin embargo, estos resultados eran de esperarse debido a que los genes mitocondriales poseen importantes diferencias con respecto a los nucleares, tales como tasas de mutaci&oacute;n, herencia matrilineal y copias &uacute;nicas, que pueden influir en la divergencia gen&eacute;tica observada. Los valores de diversidad indican claramente que el gen mitocondrial <i>ND4</i> es un marcador muy apropiado para el an&aacute;lisis de la gen&eacute;tica de poblaci&oacute;n de <i>T. dimidiata</i> en Colombia. Si tomamos en cuenta otros genes mitocondriales, la diversidad gen&eacute;tica observada con el <i>ND4</i> demostr&oacute; ser similar a la reportada para el citocromo B en<i> T. rubida</i> (Hd=0,913; &pi;=0,033), especie filogen&eacute;ticamente muy cercana a <i>T. dimidiata </i>y la cual presenta una compleja estructura de la metapoblaci&oacute;n (28).</p>      <p>Por otra parte, y al igual que lo reportado para el <i>ITS-2</i> (8), el an&aacute;lisis molecular de las secuencias de <i>ND4</i> sugiere que tal variabilidad no es homog&eacute;nea entre las poblaciones colombianas, ya que las del centro-oriente parecen presentar mayor diversidad g&eacute;nica que las de la regi&oacute;n norte, lo cual permite, por tanto, determinar una clara estructuraci&oacute;n de poblaci&oacute;n.</p>      <p>Todos los &iacute;ndices de variabilidad gen&eacute;tica estimados mostraron que la poblaci&oacute;n de La Guajira posee un menor grado de ella que la de Cesar y la de Santander (<a href="#cuadro2">cuadro 2</a>). Esta diferencia gen&eacute;tica dentro de la poblaci&oacute;n podr&iacute;a relacionarse eventualmente con caracter&iacute;sticas ecol&oacute;gicas y geogr&aacute;ficas particulares de cada regi&oacute;n. El alto nivel de variabilidad mostrada en la poblaci&oacute;n de Santander podr&iacute;a tener relaci&oacute;n con la alta heterogeneidad ecol&oacute;gica observada en la regi&oacute;n, en donde los individuos silvestres (que ocupan formaciones rocosas) y peridom&eacute;sticos muestran una recurrente tendencia a la domiciliaci&oacute;n (3,4,6). </p>      <p>En el mismo sentido, el bajo grado de variabilidad de la poblaci&oacute;n de La Guajira, podr&iacute;a deberse, quiz&aacute;, al estricto h&aacute;bitat arb&oacute;reo (palmas) que ocupa <i>T. dimidiata</i> en esta regi&oacute;n de la vertiente norte de la Sierra Nevada de Santa Marta. Las diferencias gen&eacute;ticas observadas entre los individuos silvestres provenientes de afloramientos rocosos y los de palmas, sugiere que el origen ecol&oacute;gico de estos individuos podr&iacute;a jugar un papel preponderante en la subdivisi&oacute;n de poblaciones de <i>T. dimidiata </i>en Colombia.</p>      <p>Como se mencion&oacute; anteriormente, hasta el momento se han rese&ntilde;ado pocos casos de colonizaci&oacute;n de <i>T. dimidiata</i> en viviendas en la regi&oacute;n norte de Colombia (5), pero &eacute;stos han sido transitorios (7). En este trabajo se incluyeron 15 individuos adultos recolectados en el intradomicilio y cinco en el peridomicilio de la localidad de Seynimin, ubicada en la vertiente sur-oriental de la Sierra Nevada de Santa Marta del departamento de Cesar. El an&aacute;lisis de estos ejemplares mostr&oacute; una falta de diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica entre los individuos del intradomicilio y los del peridomicilio, lo que indicar&iacute;a un proceso sostenible de dispersi&oacute;n entre ambos ec&oacute;topos.</p>      <p>Consideramos que es indispensable realizar m&aacute;s an&aacute;lisis sobre las tasas de migraci&oacute;n entre las zonas y los ec&oacute;topos, para definir claramente la diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica y la capacidad de movilidad de <i>T. dimidiata</i> en Colombia. Igualmente, resaltamos la necesidad de realizar mayores acercamientos eco-epidemiol&oacute;gicos a <i>T. dimidiata</i>,<i> </i>a fin de dise&ntilde;ar estrategias apropiadas de intervenci&oacute;n. </p>      <p>Otra caracter&iacute;stica importante de la poblaci&oacute;n de Cesar es que, a pesar de ubicarse geogr&aacute;ficamente m&aacute;s cerca a la localidad de G&uacute;make (Dibulla, La Guajira) que a la de Chorreras (Capitanejo, Santander), los niveles de diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica son suficientemente altos como para sugerir un origen de colonizaci&oacute;n distinto al de las poblaciones silvestres arb&oacute;reas de G&uacute;make.</p>      <p>En conclusi&oacute;n, los datos obtenidos en este trabajo describen, por primera vez, una subdivisi&oacute;n de poblaciones de <i>T. dimidiata </i>en<i> </i>Colombia, mediante la utilizaci&oacute;n del gen mitocondrial <i>ND4</i>. El entendimiento de la variabilidad biol&oacute;gica de este vector en el pa&iacute;s es importante para poder proponer estrategias de control y vigilancia entomol&oacute;gica m&aacute;s focalizadas y efectivas. Por tal raz&oacute;n, se sugiere continuar con el an&aacute;lisis del gen mitocondrial <i>ND4,</i> incluyendo nuevas poblaciones, tanto en la regi&oacute;n norte como la del centro-oriente de Colombia.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las secuencias del <i>ND4</i> usadas en este trabajo se encuentran disponibles en el <i>GenBank </i>con c&oacute;digos de acceso GQ202151 - GQ202190.<b> </b></p>      <p><b>Conflicto de intereses </b></p>      <p>Todos los autores de este trabajo declaramos que no existe conflicto de intereses.</p>      <p><b>Financiaci&oacute;n </b></p>      <p>Este trabajo se realiz&oacute; con el apoyo econ&oacute;mico del CODI-Universidad de Antioquia (proyecto SIU- 21135), del Fondo para la Investigaci&oacute;n y la Tecnolog&iacute;a del Banco de la Rep&uacute;blica (proyecto  2.233) y de Colciencias (proyectos 111545921460 y 3256-04-18067).</p>      <p>Correspondencia: Andrés Gómez-Palacio, Grupo de Biología y Control de Enfermedades Infecciosas, Laboratorio 620, Sede de Investigación Universitaria, Universidad de Antioquia, Calle 62 # 52-59, Medellín, Colombia. Fax: (+574) 2196520 <a href="mailto:amgomezpa@gmail.com">amgomezpa@gmail.com</a></p>      <p>     <center><b>Referencias </b></center></p>      <!-- ref --><p>1.<b>   Guhl F, Lazdins-Held J.</b> Grupo de trabajo cient&iacute;fico sobre la enfermedad de Chagas, Geneva: Special Programme for Research and Training in Tropical Diseases; 2007. p. 5-31.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-4157201000020000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2.<b>   Dorn P, Monroy C, Curtis A.</b> <i>Triatoma dimidiata</i> (Latreille, 1811): A review of its diversity across its geographic range and the relationship among populations. Inf Gen Evol. 2007;7:343-52.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-4157201000020000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3.   <b>Bargues MD, Guhl F, Mas-Coma S.</b> Genetic characterization of domestic, peridomestic and sylvatic <i>Triatoma dimidiata</i> populations from Colombia by ribosomal DNA ITS-2 sequence analyses. Acta Trop. 2002;83:149.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-4157201000020000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4.   <b>Ram&iacute;rez C, Jaramillo C, Delgado P, Pinto N, Aguilera G, Guhl F.</b> Genetic structure of sylvatic, peridomestic and domestic populations of <i>Triatoma dimidiata </i>(Hemiptera: Reduviidae) from an endemic zone of Boyac&aacute;, Colombia. Acta Trop. 2005;93:23-9. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-4157201000020000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5.   <b>Guhl F, Aguilera G, Pinto N, Vergara D.</b> Actualizaci&oacute;n de la distribuci&oacute;n geogr&aacute;fica y ecoepidemiolog&iacute;a de la fauna de triatominos (Reduviidae: Triatominae) en Colombia<i>. </i>Biom&eacute;dica. 2007;27(Suppl.1):143-62. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-4157201000020000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6.   <b>Angulo VM.</b> Ensayo de estrategias de control y vigilancia de <i>Triatoma dimidiata</i> en Colombia. En: Guhl F, editor. Memorias del Primer Taller Internacional sobre Control de la Enfermedad de Chagas. Bogot&aacute;, D.C; Universidad de los Andes: 2005. p. 91-102. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-4157201000020000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7.   <b>Parra-Henao G, Angulo V, Jaramillo N, Restrepo M.</b> Triatominos (Hemiptera: Reduviidae) de La Sierra Nevada de Santa Marta, Colombia. Aspectos epidemiol&oacute;gicos, entomol&oacute;gicos y de distribuci&oacute;n. CES Med. 2009;23:17-26. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-4157201000020000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8.   <b>Bargues MD, Klisiowicz D, Gonz&aacute;lez-Candelas F, Ramsey JM, Monroy C, <i>et al</i>.</b> Phylogeography and genetic variation of <i>Triatoma dimidiata</i>, the main Chagas disease vector in Central America, and its position within the genus <i>Triatoma</i>. PLoS Negl Trop Dis. 2008;2:e233. doi:10.1371/journal.pntd.0000233.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-4157201000020000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9.   <b>Dorn PL, Calder&oacute;n C, Melgar S, Moguel B, Solorzano E.</b> Two distinct <i>Triatoma dimidiata</i> (Latreille, 1811) taxa are found in sympatry in Guatemala and Mexico. PLoS Negl Trop Dis. 2009;3:e393. doi:10.1371/journal.pntd.0000393.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-4157201000020000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. <b>Gorrochotegui-Escalante N, De Lourdes M, Fern&aacute;ndez-Salas I, Beaty B, Black W.</b> Genetic isolation by distance among <i>Aedes aegypti </i>populations along the northeastern coast of Mexico. Am J Trop Med Hyg.<i> </i>2000;62:200-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-4157201000020000800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. <b>Uribe S, Lehmann T, Rowton E, V&eacute;lez I, Porter C.</b> Speciation and population structure in the morphospecies <i>Lutzomyia longipalpis </i>(Lutz &amp; Neiva) as derived from the mitochondrial <i>ND4</i> gene. Mol Phylogen Evol. 2001;18:84-93.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-4157201000020000800011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. <b>Depaquit J, Lienard E, Verzeaux-Griffon A, Fert&eacute; H, Bounamous A, Gantier JC, <i>et al</i>.</b> Molecular homogeneity in diverse geographical populations of <i>Phlebotomus papatasi </i>(Diptera: Psychodidae) inferred from <i>ND4</i> mtDNA and ITS2 rDNA epidemiological consequences. Inf Gen Evol. 2008;8:159-70.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-4157201000020000800012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. <b>Lent H, Wygodzinsky P.</b> Revision of the Triatominae (Hemiptera, Reduviidae) and their significance as vectors of Chagas disease. Bull Am Mus Nat His. 1979;163:123-520.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-4157201000020000800013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14.<b> Collins FH, M&eacute;ndez MA, Rasmussen MO, Mehaffey PC, Besansky NJ, Finnerty V.</b> A ribosomal RNA gene probe differentiates member species of the <i>Anopheles gambiae</i> complex. 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Nucleic Acids Res.<i> </i>1997;25:4876-82. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-4157201000020000800016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17.<b> Hall T.</b> BioEdit: a user-mendly biological sequences alignment editor and analysis program for Windows 95/98/NT. Nucleic Acids Symp Ser. 1999;41:95-8. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-4157201000020000800017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18.<b> Dotson E, Beard C.</b> Sequence and organization of the mitochondrial genome of the Chagas disease vector, <i>Triatoma dimidiata. </i>Insect Mol Biol. 2001;10:205-15. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-4157201000020000800018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19.<b> Tamura K, Dudley J, Nei M, Kumar S. </b>MEGA4: Molecular evolutionary genetics analysis (MEGA) software version 4.0. Mol Biol Evol. 2007;24:1596-9. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-4157201000020000800019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20.<b> Rozas J, S&aacute;nchez-DelBarrio J, Messeguer X, Rozas R.</b> DnaSP v 4.5, DNA polymorphism analyses by the coalescent and other methods. Bioinformatics. 2003;19:2496-7. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-4157201000020000800020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21.<b> Nei M.</b> Molecular evolutionary genetics. New York: Columbia University Press; 1987. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-4157201000020000800021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22. <b>Xia X, Xie Z</b>. DAMBE: Data analysis in molecular biology and evolution. J Hered. 2001;92:371-3. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-4157201000020000800022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23.<b> Tamura K, Nei M.</b> Estimation of the number of nucleotide substitutions in the control region of mitochondrial DNA in humans and chimpanzees. Mol Biol Evol. 1993;10:512-26. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-4157201000020000800023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24.<b> Excoffier L, Smouse PE, Quattro JM.</b> Analysis of molecular variance inferred from metric distances among DNA haplotypes: application to human mitochondrial DNA restriction data. Genetics. 1992;131:479-91. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-4157201000020000800024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25.<b> Peakall R, Smouse P.</b> GENALEX 6: genetic analysis in Excel, population genetic software for teaching and research. Mol Ecol Notes. 2006;6:288-95. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-4157201000020000800025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26. <b>Wright S.</b> Evolution and the Genetics of Populations, vol. 4, Variability within and among natural populations. Chicago, IL: University of Chicago Press. 1978. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-4157201000020000800026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27. <b>Frankham R, Briscoe D, Ballou J.</b> Introduction to conservation genetics. New York: Cambridge University Press; 2002.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-4157201000020000800027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28.<b> Pfeiler E, Bitler B, Ramsey J, Palacios-Cardiel C, Markow T.</b> Genetic variation, population structure, and phylogenetic relationships of <i>Triatoma rubida </i>and <i>T. recurva </i>(Hemiptera: Reduviidae: Triatominae) from the Sonoran desert, insects vectors of the Chagas’ Disease parasite <i>Trypanosoma cruzi</i>. Mol Phyl Evol. 2006;41:209-21.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-4157201000020000800028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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