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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Distribución de genes codificadores de &beta;-lactamasas de espectro extendido en aislamientos de Klebsiella pneumoniae de hospitales de Bogotá, D.C., Colombia]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction. Extended spectrum &beta;-lactamases (ESBL) are the most widely distributed enzymes in Enterobacteriaceae of Latin America and are key enzymes in resistance to antibiotics in common use. However, in Colombia, little information is available concerning the identity of genes coding for these enzymes in Klebsiella pneumoniae. Objective. The bla genes were identified in K. pneumoniae isolated from hospitals in Bogotá D.C., Colombia. Materials and methods. One hundred seventy-seven isolates of ESBL producers were collected from 10 hospitals in Bogota between 2003 and 2005. Antibiotic susceptibility was determined by disk diffusion, and the number of &beta;-lactamases in each isolate was assessed by isoelectric focusing. blaCTX-M, blaSHVand blaTEM were identified by PCR and subsequent sequencing. Results. Besides, the resitenance to third generation cephalosporins, 44.7 % and 49.7 % were resistant to amikacyn and thrimetoprim-sulaphametoxazole respectively. Lower resistance rates to other antibiotics were observed as well. An average of three &beta;-lactamases were detected by isoelectric focusing, and the genes blaCTX-M-12 (56.0%) and blaSHV-12 (33.3%) were the most prevalent. blaSHV-5 (11.8%), blaCTX-M-1-1 (4.0%), blaSHV-27 (2.8%), blaSHV-2 (2.8%), blaCTX-M-1-2 (1.7%) and blaCTX-M-1-15 (0.6%) were present in smaller percentages. In addition, three genes were identified that coded for narrow spectrum &beta;-lactamases. Conclusion. Eleven bla genes were identified, eight of which were ESBL-coding. The diversity of the bla genes suggested a continuing exposure of K. pneumoniae to strong antibiotic pressures in Bogota hospitals.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p>ART&Iacute;CULO ORIGINAL</p> <font face="verdana" size="2">      <p><font size="4">     <center><b>Distribuci&oacute;n de genes codificadores de &beta;-lactamasas de   espectro extendido en aislamientos de <i>Klebsiella pneumoniae</i> de   hospitales de Bogot&aacute;, D.C., Colombia</b></center></font></p>     <p>    <center>Ingrid Yamile Pulido, Jos&eacute;   Ram&oacute;n Mantilla, Emilia Mar&iacute;a Valenzuela, Mar&iacute;a Teresa Reguero, Elsa Beatriz   Gonzalez</center></p>     <p>    <center>Laboratorio de Epidemiolog&iacute;a   Molecular, Instituto de Biotecnolog&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia,   Bogot&aacute;, D.C., Colombia</center></p>     <p>Recibido: 18/08/09; aceptado:07/09/10</p> <hr size=1>     <p><b>Introducci&oacute;n.</b> Las beta-lactamasas de espectro extendido son las   enzimas de <i>Enterobacteriaceae</i> de mayor distribuci&oacute;n en Latinoam&eacute;rica. No   obstante, en Colombia existe poca informaci&oacute;n sobre la identidad de los genes   codificadores de estas enzimas en <i>Klebsiella pneumoniae</i>.</p>     <p><b>Objetivo.</b> Identificar genes <i>bla</i> presentes en <i>K. pneumoniae</i> procedentes de hospitales de Bogot&aacute;, D.C., Colombia.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Materiales y m&eacute;todos.</b> Se recolectaron 177 aislamientos productores de   beta-lactamasas de espectro extendido de 10 hospitales de Bogot&aacute;, entre 2003 y   2005. Se determin&oacute; su sensibilidad antibi&oacute;tica por difusi&oacute;n en disco y el   n&uacute;mero de beta-lactamasas presentes por isoelectroenfoque. Se identificaron los   genes<i> bla</i><sub>CTX-M</sub>, <i>bla</i><sub>SHV</sub> y <i>bla</i><sub>TEM</sub>,   mediante PCR y posterior secuenciaci&oacute;n.</p>     <p><b>Resultados.</b> Adem&aacute;s de la resistencia a las cefalosporinas de tercera   generaci&oacute;n, el 44,7 % y el 49,7 % fueron resistentes a la gentamicina y al   trimetoprim-sulfametoxazol, respectivamente. Se observaron porcentaje de   resistencia m&aacute;s bajos con otros antibi&oacute;ticos. En promedio, se detectaron por   aislamiento tres beta-lactamasas, y los genes <i>bla</i><sub>CTX-M-12</sub> (56%) y <i>bla</i><sub>SHV-12</sub> (33,3%) fueron los m&aacute;s prevalentes. Adem&aacute;s,   se identificaron <i>bla</i><sub>SHV-5</sub> (11,8%), <i>bla</i><sub>CTX-M-1</sub>-1   (4%), <i>bla</i><sub>SHV</sub>-27 (2,8%),<i> bla</i>SHV-2 (2,8%), <i>bla</i><sub>CTX-M-1</sub>-2   (1,7%) y <i>bla</i><sub>CTX-M-1</sub>-15 (0,6%). Adem&aacute;s, en nuestros   aislamientos se identificaron tres genes codificadores de beta-lactamasas de   espectro ampliado.</p>     <p><b>Conclusi&oacute;n.</b> Se identificaron once genes <i>bla</i>, de los cuales,   ocho eran codificadores de beta-lactamasas de espectro extendido. La diversidad   encontrada de los genes <i>bla</i> sugiere la continua exposici&oacute;n de <i>K.     pneumoniae</i> a fuertes presiones antibi&oacute;ticas, como las observadas en   nuestros hospitales.</p>     <p><b>Palabras clave:</b> <i>Klebsiella pneumoniae,</i> beta-lactamasas,   farmacorresistencia bacteriana, an&aacute;lisis de secuencia de ADN, epidemiolog&iacute;a   molecular, Colombia.</p> <hr size=1>      <p><font size="3"><b>Distribution of extended   spectrum &beta;</b><b>-lactamases-codifying     genes in <i>Klebsiella pneumoniae </i>isolates from hospitals of Bogota, D.C.,     Colombia</b></font></p>     <p><b>Introduction.</b> Extended spectrum &beta;-lactamases (ESBL) are the most   widely distributed enzymes in Enterobacteriaceae of Latin America and are key   enzymes in resistance to antibiotics in common use. However, in Colombia,   little information is available concerning the identity of genes coding for   these enzymes in <i>Klebsiella pneumoniae</i>.</p>     <p><b>Objective. </b>The bla genes were identified in <i>K.   pneumoniae</i> isolated from hospitals in Bogot&aacute; D.C., Colombia. </p>     <p><b>Materials and methods.</b> One hundred seventy-seven isolates   of ESBL producers were collected from 10 hospitals in Bogota between 2003 and   2005. Antibiotic susceptibility was determined by disk diffusion, and the   number of &beta;-lactamases   in each isolate was assessed by isoelectric focusing. <i>bla</i><sub>CTX-M</sub>,<i> bla</i><sub>SHV</sub>and<i> bla</i><sub>TEM</sub> were identified by PCR and   subsequent sequencing.</p>     <p><b>Results.</b> Besides, the resitenance to third generation   cephalosporins, 44.7 % and 49.7 % were resistant to amikacyn and   thrimetoprim-sulaphametoxazole respectively. Lower resistance rates to other   antibiotics were observed as well. An average of three &beta;-lactamases were detected by   isoelectric focusing, and the genes <i>bla</i><sub>CTX-M-12</sub> (56.0%) and <i>bla</i><sub>SHV-12</sub> (33.3%) were the most prevalent. <i>bla</i><sub>SHV-5</sub> (11.8%), <i>bla</i><sub>CTX-M-1</sub>-1   (4.0%), <i>bla</i><sub>SHV-27</sub> (2.8%), <i>bla</i><sub>SHV-2</sub> (2.8%), <i>bla</i><sub>CTX-M-1</sub>-2   (1.7%) and <i>bla</i><sub>CTX-M-1</sub>-15 (0.6%) were present in smaller   percentages. In addition, three genes were identified that coded for narrow   spectrum &beta;-lactamases.</p>     <p><b>Conclusion.</b> Eleven <i>bla</i> genes were   identified, eight of which were ESBL-coding. The diversity of the <i>bla</i> genes suggested a continuing exposure of <i>K. pneumoniae</i> to strong   antibiotic pressures in Bogota hospitals.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Key words</b>: <i>Klebsiella pneumoniae;</i> beta-lactamases; drug   resistance<i>,</i> bacterial; sequence analysis, DNA; molecular epidemiology;   Colombia.</p> <hr size=1>     <p>El uso masivo e indiscriminado de antibi&oacute;ticos en los hospitales ha   conducido a la selecci&oacute;n y permanencia de microorganismos multirresisµltentes   de dif&iacute;cil erradicaci&oacute;n. La producci&oacute;n de beta-lactamasas es el principal   mecanismo de resistencia exhibido por miembros de la familia <i>Enterobacteriaceae</i> y, particularmente, en <i>Klebsiella</i> <i>pneumoniae</i>, uno de los   pat&oacute;genos hospitalarios m&aacute;s com&uacute;nmente asociados con la producci&oacute;n de estas   enzimas (1,2).</p>     <p>La localizaci&oacute;n de los genes codificadores de beta-lactamasas de espectro   extendido y de otros genes de resistencia a antibi&oacute;ticos no beta-lact&aacute;micos en   pl&aacute;smidos transferibles, ha permitido su diseminaci&oacute;n entre diferentes especies   de enterobacterias. En la actualidad, es com&uacute;n encontrar microorganismos   resistentes a varios grupos de antibi&oacute;ticos que incluyen no s&oacute;lo   beta-lact&aacute;micos, sino tambi&eacute;n aminogluc&oacute;sidos, quinolonas y sulfonamidas (3-5).   Con este panorama, las opciones terap&eacute;uticas para el tratamiento de las   infecciones causadas por estos microorganismos son cada vez m&aacute;s limitadas (6).</p>     <p>En Latinoam&eacute;rica, el fenotipo de beta-lactamasas de espectro extendido en   enterobacterias se encuentra con una gran frecuencia, en comparaci&oacute;n con otras   &aacute;reas geogr&aacute;ficas (7). En Colombia, desde 1997, los estudios de vigilancia de   la resistencia a beta-lact&aacute;micos han reportado la existencia de <i>K.     pneumoniae</i> resistente a cefalosporinas de tercera generaci&oacute;n por producci&oacute;n   de beta-lactamasas de espectro extendido (8,9). Otros estudios m&aacute;s recientes en   el pa&iacute;s han descrito, en esta especie, la presencia de los genes codificadores   de beta-lactamasas de espectro extendido derivadas de las familias SHV y CTX-M   (10-12). Sin embargo, existe poca informaci&oacute;n significativa sobre la identidad   y distribuci&oacute;n de estos genes en aislamientos de <i>K. pneumoniae</i> obtenidos   de pacientes internados en centros hospitalarios del pa&iacute;s.</p>     <p>La contribuci&oacute;n de este estudio fue establecer la diversidad de genes <i>bla</i> codificadores de beta-lactamasas de espectro extendido en aislamientos de <i>K.   pneumoniae </i>obtenidos de 2003 a 2005, de pacientes de 10 hospitales de   tercer nivel de complejidad de Bogot&aacute;. Todos los aislamientos fueron   productores de beta-lactamasas de espectro extendido y causantes en su mayor&iacute;a   de infecciones intrahospitalarias.</p>     <p><b>Materiales y m&eacute;todos</b></p>     <p>Se analizaron 177 aislamientos no clonales recolecµltados durante los a&ntilde;os   2003, 2004 y 2005, de <i>K. pneumoniae</i> de 10 hospitales de Bogot&aacute;. Todos   los aislamientos fueron nuevamente identificados mediante el sistema API&reg;   (Biomerieux, Hazelwood, MO) y se les hizo la prueba confirmatoria de   beta-lactamasas de espectro extendido recomendada por el <i>Clinical and     Laboratory Standards Institute</i> (CLSI) (13). Las cepas <i>Escherichia coli </i>ATCC25922   y<i> K. pneumoniae </i>ATCC 700603fueron utilizadas como referencia en los   ensayos de sensibilidad antibi&oacute;tica<i>.</i></p>     <p><b><i>Ensayos de sensibilidad</i></b></p>     <p>La sensibilidad a diferentes antibi&oacute;ticos se determin&oacute; por el m&eacute;todo de   difusi&oacute;n en agar, de acuerdo con los par&aacute;metros establecidos por el CLSI (13)   en todos los aislamientos evaluados. Se utilizaron discos de: amikacina (30   µg), aztreonam (30µg), cefotaxima (30µg), cefepime(30µg), ceftazidima (30 µg),   ceftriaxona (30µg), ciprofloxacina (5µg), gentamicina (10µg), imipenem (10µg),   piperacilinaµltazobactam (100/10µg) y trimetoprim- sulfametoxazol   (1,25/23,75µg) (Oxoid&reg;). </p>     <p><b><i>Determinaci&oacute;n de puntos isoel&eacute;ctricos</i></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El ensayo de isoelectroenfoque anal&iacute;tico se hizo con extractos celulares   obtenidos por sonicaci&oacute;n de 30 ml de cultivos de 18 horas en caldo LB. Se   utiliz&oacute; el sistema mini-IEF cell&reg; modelo 111(BioRad), con geles de poliacrilamida   (25 % T, 3% C) y bajo las recomendaciones del fabricante. Como puntos   isoel&eacute;ctricos de referencia se incluyeron extractos celulares de cepas   bacterianas que expresaban diferentes beta-lactamasas (TEM-1: 5,4; TEM-10: 5,6;   SHV-7: 7,6; SHV-5: 8,2 y CTX-M12: 8,9) y el marcador visible est&aacute;ndar-IEF&reg;   (BioRad). La actividad de las beta-lactamasas enfocadas se revel&oacute; por el m&eacute;todo   iodom&eacute;trico con ampicilina (500µg/ml) como sustrato (14).</p>     <p><b><i>Detecci&oacute;n de genes</i> <i>bla</i></b></p>     <p>Los genes codificadores de enzimas de beta-lactamasas de espectro extendido   de los tipos SHV, TEM y CTX-M (grupos 1, 2, 8 y 9) se detectaron en los   aislamientos de estudio por la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR). Para   ello, se utilizaron los iniciadores OS-5 y OS-6 (15) para la detecci&oacute;n de genes <i>bla</i><sub>SHV</sub> y los iniciadores J y E (16) para los genes <i>bla</i><sub>TEM</sub>.   En la detecci&oacute;n de genes <i>bla</i><sub>CTX-M</sub>, se utilizaron los   iniciadores CTX-MA y CTX-MB para el grupo 1 (17), los iniciadores TOHO1A y   TOHO1B para el grupo 2 (18) y los C1 y C2 para el grupo 9 (19). Para la   detecci&oacute;n de los genes <i>bla</i><sub>CTX-M-1</sub> del grupo 8 se utilizaron   los iniciadores CTX-M-8-F y CTX-M-8-R (20). Se realizaron mezclas de reacci&oacute;n   con concentraciones de 0,2 mM de dNTPs, 1,5 mM de MgCl2, 1µM cada iniciador y   0,04 U/µl unidades de <i>Taq</i>DNA polimerasa (Invitrogen&reg;).</p>     <p>El ADN molde se obtuvo de colonias bacterianas frescas sometidas a   calentamiento hasta ebullici&oacute;n durante 10 minutos. La amplificaci&oacute;n se hizo   bajo condiciones estandarizadas (95&deg;C por 5 minutos, 30 ciclos de 95&deg;C por un   minuto, 57&deg;C por un minuto, 72&deg;C por un minuto y una extensi&oacute;n final a 72&deg;C por   5 minutos) (termociclador iCycler&reg; de Bio-Rad). Los amplificados se analizaron   en geles de agarosa al 1 %, te&ntilde;idos con bromuro de etidio (0,5µg/ml) en   soluci&oacute;n tamp&oacute;n TBE 0,5X. Se utiliz&oacute; como referencia de tama&ntilde;os, el marcador   DNA 100pb ladder (Invitrogen&reg;).</p>     <p><b><i>Secuenciaci&oacute;n y an&aacute;lisis computacional de las secuencias</i></b></p>     <p>Los productos de la amplificaci&oacute;n obtenidos se purificaron y secuenciaron en   ambas cadenas, utilizando los iniciadores antes descritos y con equipos de   secuenciaci&oacute;n automatizados (servicio de secuenciaci&oacute;n Macrogen, Corea   ABI3730XL de Applied Biosystems). Las secuencias obtenidas se compararon con la   ayuda de la herramienta BLAST, con las secuencias de ADN almacenadas en bases p&uacute;blicas   de datos (disponible en: <a href="mailto:http://www.ncbi.nlm.nih.gov/" target="_blank">http://www.ncbi.nlm.nih.gov/</a>).</p>     <p><b>Resultados</b></p>     <p><b><i>Ensayos de sensibilidad</i></b></p>     <p>Los antibiogramas mostraron que 154 de los 177 aislamientos (87 %) eran   resistentes a cefotaxima y a ceftriaxona. Ciento nueve aislamientos (61,5 %)   present&oacute; resistencia a ceftazidima y 66 de los 177 aislamientos fueron   resistentes a aztreonam (37,2 %). Se observ&oacute; resistencia al cefepime en 28,8 %   de los aislamientos. Los resultados obtenidos para la combinaci&oacute;n   antibi&oacute;tico-inhibidor (piperacilina/tazobactam) indicaron un 25,3 % de   aislamientos resistentes. Para otros antibi&oacute;ticos, se encontraron 84 (47,4 %)   aislamientos resistentes a amikacina y 88 (49,7 %) resistentes a   trimetoprim/sulfametoxazol. Se detect&oacute; resistencia simult&aacute;nea a ciprofloxacina   (11,3 %) y gentamicina (22 %) se detect&oacute; en los aislamientos estudiados. Todos   los aislamientos fueron sensibles a imipenem.</p>     <p><b><i>Puntos isoel&eacute;ctricos</i></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se detectaron puntos isoel&eacute;ctricos de 5,4, 6,8, 7,0, 7,6, 8,0, 8,2 y mayor   de 8,7. En promedio, se encontraron tres puntos isoel&eacute;ctricos para cada   aislamiento en diferentes combinaciones. El perfil dominante present&oacute; las   beta-lactamasas con puntos isoel&eacute;ctricos de 5,4, 7,6 y mayor de 8,7. El punto   isoel&eacute;ctrico que se detect&oacute; con mayor frecuencia fue 5,4 en 128 aislamientos,   seguido por el mayor de 8,7 en 107; el punto 7,6 se detect&oacute; en 85 aislamientos   y el punto 8,2 en 79. En menor proporci&oacute;n, se detectaron los puntos 7,0, 6,8 y   8,0 en 14, 5 y 3 aislamientos, respectivamente (<a href="#cuadro1">cuadro 1</a>).</p>     <p><b><i>Detecci&oacute;n de genes bla</i></b></p>     <p>Los resultados de amplificaci&oacute;n para los genes <i>bla</i><sub>CTX-M-1</sub> fueron positivos para los genes del grupo 1, y se obtuvieron amplificados en   107 de los 177 aislamientos y para el grupo 2, en 3 aislamientos de los totales   del estudio. En 170 de los 177 aislamientos totales (96 %) se detectaron los   genes <i>bla</i><sub>SHV</sub> y en 128 de los 177 (75,7 %), del tipo <i>bla</i><sub>TEM</sub>.   Se hallaron combinaciones con los tres tipos de genes en 92 (52 %) de los 177   aislamientos, con <i>bla</i><sub>CTX-M-1</sub> y <i>bla</i><sub>TEM</sub> en 7   aislamientos (4 %) y con los genes <i>bla</i><sub>CTX-M-1</sub> y <i>bla</i><sub>SHV</sub> en 11 (5,6 %) de ellos. En 29 (14,7 %) aislamientos se detectaron los genes <i>bla</i><sub>SHV</sub> y <i>bla</i><sub>TEM</sub>, y en 38 de los 177 (21,5 %) se detectaron   &uacute;nicamente los genes <i>bla</i><sub>SHV</sub> (<a href="#cuadro1">cuadro 1</a>).</p>      <p align="center"><img src="img/revistas/bio/v31n1/1a03t1.gif"></p>      <p><b><i>Secuenciaci&oacute;n y an&aacute;lisis computacional de las secuencias</i></b></p>     <p>El an&aacute;lisis de las secuencias de los productos de amplificaci&oacute;n obtenidos de   aislamientos seleccionados para los genes <i>bla</i><sub>CTX-M-1</sub>, revel&oacute;   100 % de similitud en ambas cadenas con la secuencias codificadoras de las   enzimas CTX-M-12 (100/177; 56,5 %), CTX-M-1(7/177; 4 %), CTX-M-2( 3/177; 1,7 %)   y CTX-M15 (1/177; 0,5 %). De igual manera, las secuencias obtenidas a partir de   los amplificados de genes <i>bla</i><sub>SHV</sub>presentaron 100 % de   similitud con las secuencias codificadoras de las enzimas SHV-12 (59/177; 33,3   %), SHV-5 (21/177; 11,8 %), SHV-2 (5/177; 2,8 %), SHV-27(5/177; 2,8 %),   SHV-11(3/177; 1,7 %) y SHV-1 (77/177; 43,5 %); las secuencias amplificadas del   gen <i>bla</i><sub>TEM</sub> en todos los casos correspondieron con aquellas de   los genes codificadores de las enzimas TEM-1 y sus variantes (TEM-1B y TEM-1E).</p>     <p><b>Discusi&oacute;n</b></p>     <p><i>Klebsiella pneumoniae</i> es uno de los pat&oacute;genos hospitalarios m&aacute;s   asociados no s&oacute;lo con infecciones respiratorias, sino tambien, con infecciones   de las v&iacute;as urinarias, septicemias e infecciones de heridas, entre otras   (21-24). La acentuada resistencia a cefalosporinas de espectro extendido   encontrada en este microorganismo, limitan cada vez m&aacute;s el uso de estos   antibi&oacute;ticos en infecciones causadas por estos g&eacute;rmenes.</p>     <p>Los resultados observados para los puntos iso-el&eacute;ctricos y los genes   codificadores detectados mediante PCR de las enzimas beta-lactamasas, son   concordantes entre s&iacute; y con los resultados de secuenciaci&oacute;n. As&iacute;, en los   aislamientos en los cuales se detectaron los genes <i>bla</i><sub>CTX-M-1</sub>,   se detect&oacute; la producci&oacute;n de enzimas con puntos isoel&eacute;ctricos de 8,2 y mayor de   8,7 propios de las beta-lactamasas de espectro extendido CTX-M-2, CTX-M-1,   CTX-M-12 y CTX-M-15. La enzima CTX-M-12, fue la predominante en los   aislamientos estudiados de <i>K. pneumoniae</i>.</p>     <p>Esta beta-lactamasa se report&oacute; por primera vez en Kenia, en el 2003, y en   Colombia, en el 2004 (25,26). Otras enzimas de esta familia han sido reportadas   en aislamientos de enterobacterias previamente (10). En menor proporci&oacute;n, se   encontraron los genes de resistencia para las beta-lactamasas de espectro   extendido SHV-12, SHV-5, SHV-2 y SHV- 27, esta &uacute;ltima reportada por primera vez   en el pa&iacute;s en esta investigaci&oacute;n y que, a diferencia de las otras SHV detectadas,   presenta una mayor actividad hidrol&iacute;tica sobre la cefotaxima (27). No se   detect&oacute; un gen que pudiera ser asociado con el punto isoel&eacute;ctrico de 7,0.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La diversidad de genes encontrada en este estudio se asemeja a las   observadas en pa&iacute;ses asi&aacute;ticos y contrasta con las presentes en Estados Unidos   y Europa, que reflejan, posiblemente, ambientes con presiones antibi&oacute;ticas   diferentes (19).</p>     <p>Al igual que otros reportados, este estudio encontr&oacute; que miembros de la   familia <i>Enterobacteriaceae</i>,y espec&iacute;ficamente en <i>K. pneumoniae</i>,   presentan la capacidad de acumular varias enzimas hidrol&iacute;ticas de   beta-lact&aacute;micos como estrategia adicional de resistencia, lo que les permite   cubrir un rango amplio de antibi&oacute;ticos, desde las penicilinas y cefalosporinas   de primera y segunda generaci&oacute;n (sustrato de las beta-lactamasas de espectro   ampliado), hasta las cefalosporinas de tercera y cuarta generaci&oacute;n y   monobact&aacute;micos (sustrato de las beta-lactamasas de espectro extendido) (28,29).   As&iacute;, los diferentes genes encontrados podr&iacute;an explican la gran frecuencia de   microorganismos resistentes a las cefalosporinas evaluadas. A lo anterior se le   suman los porcentajes de resistencia a ciprofloxacina, gentamicina, amikacina y   trimetoprim-sulfametoxazol que evidencian el potencial de las bacterias   estudiadas para adquirir y expresar resistencia hacia otros grupos de   antibi&oacute;ticos y la cada vez m&aacute;s limitada disposici&oacute;n de antibi&oacute;ticos eficaces   para tratar las infecciones causadas por estos microorganismos (29).</p>     <p>La frecuencia con la que se detect&oacute; la enzima TEM-1 en los aislamientos,   corresponde con lo ya se&ntilde;alado para otros miembros de la familia <i>Enterobacteriaceae</i> (30) y sugiere, tal como se ha se&ntilde;alado previamente, la facilidad de estos   microorganismos para adquirir enzimas con actividad de espectro extendido   derivadas de la SHV-1, m&aacute;s que la presentaci&oacute;n de mutaciones que originen   variantes derivadas de la TEM-1 con actividad sobre las cefalosporinas de   tercera generaci&oacute;n (31).</p>     <p>Este estudio estableci&oacute; la identidad y distribuci&oacute;n de los genes codificadores   de beta-lactamasas presentes en aislamientos de <i>K. pneumoniae</i> de 10   hospitales de Bogot&aacute;. Dichas bacterias presentaron diferentes combinaciones de   enzimas que les confieren espectros diversos de hidr&oacute;lisis hacia los diferentes   antibi&oacute;ticos disponibles. Las resistencias observadas a otros antibi&oacute;ticos no   beta-lact&aacute;micos enfatizan la importancia en las medidas de vigilancia y   seguimiento que deben implementarse en los hospitales y el establecimiento de   prograµlmas de control de antibi&oacute;ticos, que permitan frenar la diseminaci&oacute;n de   estos microorganismos multirresistentes.</p>     <p><b>Agradecimientos</b></p>     <p>Los autores agradecen la colaboraci&oacute;n a los integrantes del Laboratorio de   Microbiolog&iacute;a de la Universidad de Buenos Aires, por brindar capacitaµlci&oacute;n en   t&eacute;cnicas moleculares, a la Secretar&iacute;a Distrital de Salud y a los laboratorios   de bacteriolog&iacute;a de los hospitales participantes y al Departamento   Administrativo de Ciencia, Tecnolog&iacute;a e Innovaci&oacute;n, Colciencias, y la Direcci&oacute;n   de Investigaci&oacute;n de la Universidad Nacional de Colombia sede Bogot&aacute;, entidades   responsables de la totalidad de la financiaci&oacute;n del estudio.</p>     <p><b>Conflicto de intereses</b></p>     <p>Los autores declaran que no existen relaciones econ&oacute;micas ni personales de &iacute;ndole   alguna que pudieran influenciar su juicio respecto a los resultados de la   presente investigaci&oacute;n. Todos los autores tuvieron acceso irrestricto a los   datos y no exisiti&oacute; participaci&oacute;n de agentes externos en el dise&ntilde;o del estudio,   ni en la recopilaci&oacute;n, an&aacute;lisis e interpretaci&oacute;n de la informaci&oacute;n.</p>     <p><b>Financiaci&oacute;n</b></p>     <p>Este trabajo fue financiado en su totalidad con fondos provenientes del   Departamento Administrativo de Ciencia, Tecnolog&iacute;a e Innovaci&oacute;n, Colciencias   (c&oacute;digo 1101-04-16483 CT 414-2004) y la Direcci&oacute;n de Investigaci&oacute;n de la   Universidad Nacional de Colombia, sede Bogot&aacute;.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Correspondencia: Elsa Beatriz Gonz&aacute;lez, Laboratorio de Epidemiolog&iacute;a   Molecular, Instituto de Biotecnolog&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia, Ciudad   Universitaria, Bogot&aacute;, D.C., Colombia.    <br>   Tel&eacute;fono: (571) 316 5000,   extensi&oacute;n: 16965.    <br>   <a href="mailto:ebgonzalezm@unal.edu.co">ebgonzalezm@unal.edu.co</a></p>     <p><b>Referencias</b></p>     <!-- ref --><p>1. <b>Mart&iacute;nez JL, Baquero   F.</b> Interactions among strategies associated with bacterial infection:   Pathogenicity, epidemicity and antibiotic resistance. Clin Microbiol Rev.   2002;4:647-79.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0120-4157201100010000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. <b>Bonnet R</b>. Growing   group of extended-spectrum beta-lactamases: The CTX-M enzymes. Antimicrob Agents Chemother<i>.</i> 2004; 48: 1-14.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0120-4157201100010000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. <b>Pagani L, Dell'Amico E, Migliavacca R, D'Andrea MM, Giacobone E,   Amicosante G, <i>et al</i>.</b> Multiple   CTX-M-type extended-spectrum &beta;-lactamases in nosocomial isolates of <i>Enterobacteriaceae</i> from a   hospital in Northern Italy. J Clin Microbiol. 2003;41:4264-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-4157201100010000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. <b>Van't veen A, van der   Zee A, Nelson J, Speelberg B, Kluytmans JA, Buiting AG.</b> Outbreak of   infection with a multiresistant <i>Klebsiella pneumoniae</i> strain associated   with contaminated roll boards in operating rooms. J Clin Microbiol.   2005;43:4961-7.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-4157201100010000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. <b>Ben-Hamouda T, Foulon   T, Ben-Cheikn-Masmoudi A, Fendri C, Belhadj O, Ben Mahrez K.</b> Molecular   epidemiology of an outbreak of multiresistant <i>Klebsiella pneumoniae</i> in a   Tunisian neonatal ward. J Med Microbiol. 2003;52:427-33.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-4157201100010000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. <b>Podschun R, Ullmann   U.</b> <i>Klebsiella </i>spp. as nosocomial pathogens: Epidemiology, taxonomy,   typing methods, and pathogenicity factors. Clin Microbiol Rev. 1998;11:589-603.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-4157201100010000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Winokur PL, Canton R,   Casellas JM, Legakis N. Variations in the prevalence of strains expressing an   extended-spectrum beta-lactamase   phenotype and characterization of isolates from Europe, the Americas, and the   Western Pacific region. Clin Infect Dis. 2001; 32 (Suppl. 2): S94-103.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-4157201100010000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. <b>The Colombian   Resistance Antimicrobial Group, Jones RN, Salazar JC, Pfaller MA, Doern GV.</b> Multicenter evaluation of antimicrobial resistance to six broad-spectrum beta-lactams in Colombia using the Etest   method. Diagn Microbiol Infect Dis. 1997; 29: 265-72.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-4157201100010000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. <b>The Colombian   Antimicrobial Resistance Study Group, Pfaller MA, Jones RN, Doern GV, Salazar   JC.</b> Multicenter evaluation of antimicrobial resistance to six   broad-spectrum beta-lactams in Colombia: Comparison of data from 1997 and 1998   using the Etest method. Diagn Microbiol Infect Dis. 1999;35:235-41.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-4157201100010000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. <b>Valenzuela E, Mantilla J, Reguero M, Gonz&aacute;lez E, Pulido I, Llerena I, <i>et al</i>. </b>Detection of   CTX-M-1, CTX-M-15, and CTX-M-2 in clinical isolates of <i>Enterobacteriaceae</i> in Bogot&aacute;, Colombia. J Clin Microbiol. 2005;44:1919-20.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0120-4157201100010000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. <b>Espinal P, Mantilla J, Saavedra C, Leal A, Alpuche C, Valenzuela E.</b> Epidemiolog&iacute;a molecular de la infecci&oacute;n nosocomial por <i>Klebsiella pneumoniae</i> productora de beta-lactamasas de espectro extendido. Biom&eacute;dica. 2004;24:252-61.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-4157201100010000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. <b>Villegas M, Correa A, P&eacute;rez F, Miranda MC, Zuluaga T, Quinn JP, <i>et   al</i>.</b> Prevalence and   characterization of extended-spectrum &beta;-lactamases in <i>Klebsiella pneumoniae </i>and<i> Escherichia coli </i>isolates from Colombian hospitals. Diagn Microbiol Infect   Dis. 2004;49:217-22.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-4157201100010000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. <b>Clinical and   Laboratory Standards Institute.</b> Performance standards for antimicrobial   susceptibillity testing. Sixteenth Informational supplement. CLSI document   M-100-S16 (ISBN 1-56238-588-7). Wayne: Clinical and Laboratory Standards   Institute; 2006.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-4157201100010000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. <b>Jarlier V, Nicolas   MH, Fournier G, Philippon A.</b> Extended broad-spectrum beta-lactamases conferring transferable   resistance to newer beta-lactams agents in<i>Enterobacteriaceae</i>: Hospital prevalence and   susceptibility patterns. Rev Infect Dis. 1988; 10: 867-78.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-4157201100010000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. <b>Cao V, Lambert T,   Quynh Nhu D, Loan HK, Hoang N, Arlet G, <i>et al</i>.</b> Distribution of   extended-spectrun beta-lactamases   in clinical isolates of<i> Enterobacteriaceae</i> in Vietnam. Antimicrob Agents   Chemother<i>.</i> 2002; 46: 3739-43.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-4157201100010000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. <b>Neuwirth C, Madec S,   Siebor E.</b> TEM-89 beta-lactamase produced by <i>Proteus mirabilis</i> clinical isolate: New   complex mutant (CMT 3) with mutations in both TEM-59 (IRT-17) and TEM-3.   Antimicrob Agents Chemother. 2001; 45: 3591-4.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-4157201100010000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. <b>Bonnet R, Dutour J,   Sampaio M, Chanal C, Sirot D, Labia R, <i>et al</i>.</b> Novel cefotaxime   (CTX-M-16) with increase catalytic efficiency due to substitution Asp-240-Gli.   Antimicrob Agents Chemother. 2001; 45: 2269-75.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-4157201100010000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. <b>Nagano N, Shibata N,   Saitou Y, Nagano Y, Arakawa Y.</b> Nosocomial outbreak infections by <i>Proteus     mirabilis</i> that produces extended-spectrum CTX-M-2 type beta-lactamase. J Clin Microbiol. 2003;   41: 5530-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-4157201100010000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. <b>Chanawong A, M'Zali   FH, Heritage J, Xiong J, Hawkey PM.</b> Three cefotaximases, CTX-M-9, CTX-M-13,   and CTX-M-14, among <i>Enterobacteriaceae</i> in the People's Republic of   China. Antimicrob Agents Chemother.2002;46:630-7.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-4157201100010000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. <b>Shibata N, Kurokawa   H, Doi  Y, Yagi T, Yamane K, Wachino J, <i>et     al</i>. </b>PCR classification of CTX-M-type beta-lactamase genes identified in clinically   isolated gram-negative bacilli in Japan<b>. Antimicrob Agents Chemother. 2006;     50: 791-5.</b>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-4157201100010000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. <b>Bouza E, San Juan R,   Mu&ntilde;oz P, Voss A, Kluytmans J.</b> A European perspective on nosocomial urinary   tract infections II. Report on incidence, clinical characteristics and outcome   (ESGNI-004study). Clin Microbiol Infect. 2001;7:532-42.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-4157201100010000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22. <b>Kil K, Darouiche RO,   Hull RA, Mansouri MD, Musher DM.</b> Identification of a <i>Klebsiella     pneumoniae </i>strain associated with nosocomial urinary tract infection. J   Clin Microbiol<i>. </i>1997;35:2370-4.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-4157201100010000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. <b>Suljagic V, Cobeljic   M, Jankovic S, Mirovic V, Markovic-Denic L, Romic P, <i>et al</i></b>.   Nosocomial bloodstream infections in ICU and non-ICU patients. Am J Infect   Control. 2005;33:333-40.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-4157201100010000300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24. <b>Biedenbach DJ, Moet   GJ, Jones RN.</b> Ocurrence and antimicrobial resistance pattern comparisons   among bloodstream infection isolates from the SENTRY Antimicrobial Surveillance   Program (1997- 2002). Diag Microbiol Infect Dis. 2004;50:59-69.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-4157201100010000300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25. <b>Kariuki S, Corkill   J, Revathi G, Musoke R, Hart CA.</b> Molecular characterization of a novel   plasmid-encoded-cefotaximase (CTX-M-12) found in clinical <i>Klebsiella     pneumoniae</i> isolates from Kenya, Antimicrob Agents Chemother.   2001;45:2141-3.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-4157201100010000300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26. <b>Villegas MV, Correa   A, P&eacute;rez F, Zuluaga T, Radice M, Gutkind G, <i>et al</i>. </b>CTX-M-12 beta-lactamase in a <i>Klebsiella     pneumoniae</i> isolate in Colombia. Antimicrob Agents Chemother.       2004; 48: 629-31.</b>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-4157201100010000300026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><b>27. Corkill JE, Cuevas   LE, Gurgel RQ, Greensill  J, Hart CA. </b>SHV-27, a novel   cefotaxime-hydrolyzing beta-lactamase, identified in <i>Klebsiella pneumoniae</i>isolates from a   Brazilian hospital. J Antimicrob Chemother. 2001; 47: 463-5.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-4157201100010000300027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28. <b>Segatore B, Setacci   D, Perilli M, Franchino L, Franceschini N, Agnifili A, <i>et al</i>. </b>Antimicrobial susceptibility of   clinical isolates of <i>Enterobacteriaceae</i>producing complex beta-lactamase patterns including   extended-spectrum enzymes. Int J Antimicrob Agents. 2004; 23: 480-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-4157201100010000300028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>29. <b>Xiong Z, Zhu D, Wang F,   Zhang Y, Okamoto R, Inoue M.</b> A<i> Klebsiella pneumoniae</i> producing three   kinds of class A beta-lactamases   encoded by one single plasmid isolated from a patient in Huashan Hospital,   Shanghai, China. Int J Antimicrob Agents. 2004;23:262-7.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-4157201100010000300029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>30. <b>Bradford PA. </b>Extended-spectrum beta-lactamases in the 21st century:   Characterization, epidemiology and detection of this important resistance   threat. Clin Microbiol Rev. 2001; 14: 933-51.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-4157201100010000300030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>31. <b>Siu LK, Lu P, Hsueh   P, Lin FM, Chang S, Luh K, <i>et al</i>. </b>Bacteremia due to   extended-spectrum beta-lactamase-producing <i>Escherichia coli</i> and<i> Klebsiella pneumoniae</i> in a pediatric   oncology ward: Clinical features and identification of different plasmids   carrying both SHV-5 and TEM-1 genes. J Clin Microbiol. 1999; 37: 4020-7.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-4157201100010000300031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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