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<article-id pub-id-type="doi">10.7705/biomedica.v33i1.619</article-id>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Especies de Anopheles presentes en el departamento del Putumayo y su infección natural con Plasmodium]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: Putumayo is considered an endemic region for malaria transmission, mainly due to Plasmodium vivax. The vectors in this region are Anopheles darlingi , which has been found only in the municipality of Puerto Leguízamo, and An. rangeli and An. oswaldoi s.l. , which were recently incriminated as vectors in Puerto Asís. Objective: The purpose of this study was to determine the role of An. benarrochi B in malaria transmission in Putumayo, given that it is the most abundant species biting humans. Materials and methods: Collections of immature and adult stages of Anopheles spp. were made between 2006 and 2008 in the municipalities of Puerto Leguízamo and Puerto Asís in Putumayo, and sequences of internal transcribed spacer 2 ( ITS-2 ) of ribosomal DNA and the mitochondrial gene COI were obtained to confirm the morphological determinations. ELISA was carried out for P. vivax and P. falciparum infectivity. Results: A total of 6,238 specimens were identified, distributed in 11 species: An. albitarsis s.l. (1.83%), An. benarrochi B (72.35%), An. braziliensis (0.05%), An. costai (0.06%), An. darlingi (19.37%), An. mattogrossensis (0.08%), An. neomaculipalpus (0.13%), An. oswaldoi s.l. (0.64%), An. punctimacula (0.03%), An. rangeli (5.12%), and An. triannulatus s.l. (0.34%). A total of 5,038 adults were assessed by ELISA and 5 were found positive for P. vivax 210 and VK 247, all belonging to An. benarrochi B. Conclusion: The results suggest that An. benarrochi B plays a role in the transmission of P. vivax in Putumayo due to its high human contact and natural infection with Plasmodium sp.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">      <p>PRESENTACI&Oacute;N DE CASO</p>     <p>doi: <a href="http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v33i1.619">http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v33i1.619</a></p>      <p><font size="4">    <center><b>Especies de <i>Anopheles </i> presentes en el departamento del Putumayo y su infecci&oacute;n natural con <i>Plasmodium </i></b></center></font></p>      <p>    <center>Lorena I. Orjuela <sup>1</sup>, Manuela Herrera <sup>1</sup>, Holmes Erazo <sup>2</sup>, Martha L. Qui&ntilde;ones <sup>1</sup></center></p>     <p><sup>1</sup>Departamento de Salud P&uacute;blica, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;, D.C., Colombia </p>     <p><sup>2</sup>Departamento Administrativo de Salud de Putumayo, DASALUD, Mocoa, Colombia</p>      <p>Trabajo realizado en el Laboratorio de Entomolog&iacute;a M&eacute;dica, Departamento de Salud P&uacute;blica, Facultad de Medicina, Universidad Nacional de Colombia.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Contribuci&oacute;n de los autores: </b></p>     <p>Lorena I. Orjuela particip&oacute; en el trabajo de laboratorio, an&aacute;lisis de datos, revisi&oacute;n de resultados y elaboraci&oacute;n del manuscrito.</p>     <p>Manuela Herrera hizo la secuenciaci&oacute;n de <i>ITS-2 </i> y <i>COI </i>de los espec&iacute;menes.</p>     <p>Holmes Erazo recolect&oacute; los espec&iacute;menes en campo, y apoy&oacute; la clasificaci&oacute;n en series e isofamilias.</p>     <p>Martha L. Qui&ntilde;ones orient&oacute; el trabajo en campo y laboratorio, particip&oacute; en el an&aacute;lisis de datos, en la revisi&oacute;n de resultados y en la elaboraci&oacute;n del manuscrito.</p>      <p>Recibido: 24/02/12; aceptado:26/09/12</p> <hr size="1">      <p><b>Introducci&oacute;n. </b> El departamento del Putumayo es una regi&oacute;n end&eacute;mica para malaria, o paludismo, causada principalmente por <i>Plasmodium vivax </i>. Los vectores en esta regi&oacute;n incluyen <i>Anopheles darlingi </i>, el cual se ha encontrado solamente en el municipio de Puerto Legu&iacute;zamo, y recientemente se incriminaron como vectores en Puerto As&iacute;s a las especies <i>An. rangeli </i> y <i>An. oswaldoi </i>.</p>     <p><b>Objetivo. </b> El prop&oacute;sito del trabajo fue determinar el papel de <i>An. benarrochi </i> B en la transmisi&oacute;n de malaria en este departamento, ya que se reporta como la especie m&aacute;s abundante que pica a los humanos.</p>     <p><b>Materiales y m&eacute;todos. </b> Se recolectaron larvas y adultos de <i>Anopheles </i>spp. entre el 2006 y el 2008 en los municipios Puerto Legu&iacute;zamo y Puerto As&iacute;s, y se obtuvieron secuencias del gen <i>ITS-2 </i> y del gen mitocondrial <i>COI </i> para confirmar las determinaciones taxon&oacute;micas por morfolog&iacute;a. Se practic&oacute; la prueba ELISA para establecer la infecci&oacute;n por <i>P. vivax </i>y <i> P. falciparum. </i></p>     <p><b>Resultados. </b>Se identificaron 6.238 individuos correspondientes a 11 especies: <i>An. albitarsis </i><i>s.l. </i> (1,83 %), <i>An. benarrochi </i> B (72,35 %), <i>An. braziliensis </i> (0,05 %), <i>An. costai </i> (0,06 %), <i>An. darlingi </i> (19,37 %), <i>An. mattogrossensis </i> (0,08 %), <i>An. neomaculipalpus </i> (0,13 %), <i>An. oswaldoi s.l. </i> (0,64 %), <i>An. punctimacula </i> (0,03 %), <i>An. rangeli </i> (5,12 %) y <i>An. triannulatus </i><i>s.l. </i> (0,34 %). Se evaluaron 5.038 adultos por ELISA y 5 se encontraron positivos para <i>P. vivax </i> 210 y VK 247, todos pertenecientes a la especie <i>An. benarrochi </i> B.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Conclusi&oacute;n. </b> Los resultados sugieren que <i>An. benarrochi </i> B juega un papel en la transmisi&oacute;n de <i>P. vivax </i> en el departamento de Putumayo, dada su alta atracci&oacute;n por los humanos y su infecci&oacute;n natural con <i>Plasmodium </i>spp.</p>     <p><b>Palabras clave: </b> malaria, paludismo insectos vectores, <i>Anopheles </i>, Colombia </p>      <p>doi: <a href="http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v33i1.619">http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v33i1.619</a></p>  <hr size="1">     <p><font size="3"><b><i>Anopheles </i></b><b> species present in the department of Putumayo and their natural infectivity with <i>Plasmodium</i></b></font></p>     <p><b>Introduction: </b> Putumayo is considered an endemic region for malaria transmission, mainly due to <i>Plasmodium vivax. </i> The vectors in this region are <i>Anopheles darlingi </i>, which has been found only in the municipality of Puerto Legu&iacute;zamo, and <i>An. rangeli </i> and <i>An. oswaldoi s.l. </i>, <i></i>which were recently incriminated as vectors in Puerto As&iacute;s.&nbsp; </p>     <p><b>Objective: </b>The purpose of this study was to determine the role of <i>An. benarrochi </i>B in malaria transmission in Putumayo, given that it is the most abundant species biting humans.</p>     <p><b>Materials and methods: </b> Collections of immature and adult stages of <i>Anopheles </i> spp. were made between 2006 and 2008 in the municipalities of Puerto Legu&iacute;zamo and Puerto As&iacute;s in Putumayo, and sequences of internal transcribed spacer 2 ( <i>ITS-2 </i>) of ribosomal DNA and the mitochondrial gene <i>COI </i>were obtained to confirm the morphological determinations. ELISA was carried out for <i>P. vivax </i> and <i>P. falciparum </i> infectivity.</p>     <p><b>Results: </b>A total of 6,238 specimens were identified, distributed in 11 species: <i>An. albitarsis s.l. </i> (1.83%), <i>An. benarrochi </i> B (72.35%), <i>An. braziliensis </i> (0.05%), <i>An. costai </i> (0.06%), <i>An. darlingi </i> (19.37%), <i>An. mattogrossensis </i> (0.08%), <i>An. neomaculipalpus </i> (0.13%), <i>An. oswaldoi s.l. </i> (0.64%), <i>An. punctimacula </i> (0.03%), <i>An. rangeli </i> (5.12%), and <i>An. triannulatus s.l. </i> (0.34%). A total of 5,038 adults were assessed by ELISA and 5 were found positive for <i>P. vivax </i> 210 and VK 247, all belonging to <i>An. benarrochi </i> B.&nbsp; </p>     <p><b>Conclusion: </b> The results suggest that <i>An. benarrochi </i> B plays a role in the transmission of <i>P. vivax </i> in Putumayo due to its high human contact and natural infection with <i>Plasmodium </i>sp.</p>     <p><b>Key words: </b> malaria, insect vectors, <i>Anopheles </i>, Colombia </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>doi: <a href="http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v33i1.619">http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v33i1.619</a></p> <hr size="1">      <p>En Colombia anualmente se han registrado en promedio 140.000 casos de malaria, o paludismo, en la &uacute;ltima d&eacute;cada (1), 70 % de los cuales son causados por <i>Plasmodium vivax </i>y el resto casi exclusivamente por <i>P. falciparum </i> (2).</p>     <p>En el departamento de Putumayo se registra anualmente un promedio de 3.800 casos de malaria, y <i>P. vivax </i> es la especie predominante con 95,70 %. Los municipios Puerto As&iacute;s y Puerto Legu&iacute;zamo aportan el 50 % de los casos del departamento, siendo el primero el de mayor reporte, con un promedio de 610 casos al a&ntilde;o en la &uacute;ltima d&eacute;cada. En este municipio, el 98,4 % de los casos los causa <i>P. vivax </i> y, solamente el 1,6 %, <i>P. falciparum </i>, mientras que en Puerto Legu&iacute;zamo se reporta un n&uacute;mero mayor de casos por <i>P. falciparum </i>(12 %) (3).</p>     <p>El &iacute;ndice parasitario anual del departamento present&oacute; un incremento importante entre los a&ntilde;os 2000 y 2007, con cifras que est&aacute;n entre 1,76 y 8,27. En este mismo per&iacute;odo, los &iacute;ndices parasitarios anuales en los municipios de Puerto Legu&iacute;zamo y Puerto As&iacute;s oscilaron entre 0,13 a 43,06 y 0,11 a 21,4, respectivamente. De acuerdo con estos datos, en el 2007, cuando se desarroll&oacute; la mayor parte del presente trabajo, los dos municipios se catalogaron como &aacute;reas de alto riesgo (4).</p>     <p>Un estudio anterior para determinar las especies de <i>Anopheles </i> presentes en el departamento de Putumayo, incluy&oacute; colecciones de estadios inmaduros y adultos de los municipios Puerto As&iacute;s, San Miguel y Puerto Legu&iacute;zamo (5). Los resultados de las identificaciones por morfolog&iacute;a de todos los estadios asociados, reportaron la presencia de 14 especies de <i>Anopheles </i>, entre las que se encontraron, de mayor a menor proporci&oacute;n, las siguientes que picaban a los humanos: una nueva especie designada como <i>An. benarrochi </i> B, por describir (6), <i>An. rangeli </i> Gabaldon, Cova Garcia &amp; L&oacute;pez, <i>An. oswaldoi </i>Peryassu, <i>An. triannulatus </i> Neiva &amp; Pinto, <i>An. costai </i> Fonseca &amp; Ramos, <i>An. braziliensis </i> Chagas, <i>An. marajoara </i> Galvao &amp; Damasceno, <i>An. apicimacula </i> Dyar &amp; Knab, <i>An. strodei </i> Root, <i>An. peryassui </i> Dyar &amp; Knab, <i>An. darlingi </i> Root, <i>An. punctimacula </i> Dyar &amp; Knab, <i>An. neomaculipalpus </i> Curry y <i>An. mattogrossensis </i> Lutz &amp; Neiva.</p>     <p>De estas especies solo <i>An. darlingi </i> se considera vector principal de malaria para el pa&iacute;s (7). <i>Anopheles darlingi </i> se encontr&oacute; &uacute;nicamente en Puerto Legu&iacute;zamo, en los l&iacute;mites entre los departamentos de Putumayo y Amazonas, donde es considerada la especie responsable de mantener la transmisi&oacute;n de paludismo (5). Qui&ntilde;ones, <i>et al. </i> (5), evaluaron por ELISA 29 individuos pertenecientes a esta especie, pero ninguno result&oacute; positivo para la prote&iacute;na del circumsporozo&iacute;to de <i>Plasmodium </i>spp., posiblemente por el escaso n&uacute;mero de espec&iacute;menes probados. Adem&aacute;s, en ese estudio se evaluaron 413 espec&iacute;menes identificados como <i>An. rangeli </i> y 362 como <i>An. oswaldoi s.l. </i>, de los cuales, 36 fueron positivos a la variante 210 de <i>P. vivax </i> (35 <i>An. rangeli </i> y 1 <i>An. oswaldoi </i>), para un porcentaje de positivos de 8,19 % y 4,35 %, respectivamente. Debido a estos resultados, las especies <i>An. rangeli </i> y <i>An. oswaldoi s.l. </i> fueron incriminadas como vectores naturales de malaria humana en Putumayo (5).</p>     <p>Durante ese mismo estudio, la especie que pica a los humanos recolectada en mayor proporci&oacute;n (66,10 %) fue <i>An. benarrochi </i> B. Sin embargo, ninguno de estos espec&iacute;menes se encontr&oacute; positivo para <i>P. falciparum </i> o <i>P. vivax </i> por ELISA. Estos resultados contrastan con los obtenidos en Per&uacute; por Flores, <i>et al. </i> (8), donde <i>An. benarrochi </i><i>s.l. </i> se encontr&oacute; naturalmente infectado con <i>P. falciparum </i> y <i>P. vivax </i> en un estudio en el que se evaluaron 62.941 espec&iacute;menes pertenecientes a esta especie. De acuerdo con los reportes de Qui&ntilde;ones, <i>et al. </i> (5), y Fern&aacute;ndez, <i>et al. </i> (9), <i>An. benarrochi </i> B encontrado en Putumayo es morfol&oacute;gicamente similar a los individuos identificados como <i>An. benarrochi </i><i>s.l </i>. en Per&uacute; y que son considerados vectores en los estados de Loreto y Ucayali en l&iacute;mites con Putumayo.</p>     <p>Otras especies, como <i>An. oswaldoi </i>, <i>An. punctimacula </i>, <i>An. neomaculipalpus </i>, <i>An. triannulatus </i> y <i>An. marajoara </i>, tambi&eacute;n registradas para el departamento, se han encontrado naturalmente infectadas con especies de <i>Plasmodium </i> (5, 8,10-15) y, en algunos casos, se han involucrado en la transmisi&oacute;n del paludismo en el pa&iacute;s o en los pa&iacute;ses que comparten frontera con Colombia, como Per&uacute;, Venezuela y Brasil. La importancia de estas especies en la transmisi&oacute;n de malaria en los municipios de Puerto Legu&iacute;zamo y Puerto As&iacute;s del departamento de Putumayo, no se conoce.</p>     <p>Varias de las especies reportadas en el Putumayo pertenecen al subg&eacute;nero <i>Nyssorhynchus </i>. Este subg&eacute;nero contiene la mayor&iacute;a de las especies de <i>Anopheles </i> incriminadas como vectores en Latinoam&eacute;rica y es el subg&eacute;nero que m&aacute;s dificultades presenta para la determinaci&oacute;n taxon&oacute;mica cuando se utiliza la morfolog&iacute;a de las hembras adultas (16), estadio que se recolecta normalmente durante la vigilancia epidemiol&oacute;gica regular que realizan las secretar&iacute;as de salud. Adem&aacute;s, varias de estas especies son miembros de complejos de especies, como es el caso de <i>An. oswaldoi </i> (Ruiz F, Herrera M, Sallum M, Motoki M, Wilkerson R, Ponsonby D, <i>et al </i>. (2008) Molecular systematics of the Oswaldoi Complex (Anopheles: Nyssorhynchus) in South America. In: The 16th European Society for Vector Ecology Conference, 25 - 28 March 2008, Fitzwilliam College, Cambridge) <i>An. marajoara </i> (17) y <i>An. triannulatus </i> (18), lo cual dificulta a&uacute;n m&aacute;s su determinaci&oacute;n taxon&oacute;mica.</p>     <p>U n ejemplo que ilustra el problema de la identificaci&oacute;n por morfolog&iacute;a de las hembras adultas en el departamento de Putumayo es el de <i>An. benarrochi </i> B. Esta especie fue err&oacute;neamente identificada como <i>An. evansae </i> Bretes y, posiblemente, como <i>An. oswaldoi </i> (19-21), debido a la variabilidad morfol&oacute;gica que presenta en caracter&iacute;sticas normalmente usadas en la diferenciaci&oacute;n de estas especies (16,22-24). La identidad de la especie <i>An. benarrochi </i> pudo esclarecerse principalmente con la morfolog&iacute;a de los huevos (21) y la morfolog&iacute;a del <i>aedeago </i> de los machos, y se describi&oacute; como una variante morfol&oacute;gica de <i>An. benarrochi </i> (19). Posteriormente, con base en la morfolog&iacute;a de los genitales masculinos y con el an&aacute;lisis de secuencias de la regi&oacute;n <i>ITS-2 </i> y <i>COI </i>, se identific&oacute; como una especie diferente, denominada <i>An. benarrochi </i> B (6).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Estas dificultades para la determinaci&oacute;n taxon&oacute;mica de especies de <i>Anopheles </i>, al utilizar adultos hembra, obstaculizan los estudios sobre su biolog&iacute;a y papel como vectores, informaci&oacute;n &uacute;til para la implementaci&oacute;n de la vigilancia entomol&oacute;gica y la selecci&oacute;n de estrategias de control efectivas y su evaluaci&oacute;n, por lo que se hace necesario esclarecer la identidad de las especies de <i>Anopheles </i> presentes, as&iacute; como su papel como vectores en un &aacute;rea determinada.</p>     <p>El prop&oacute;sito del trabajo fue determinar el papel de <i>An. benarrochi </i> B en la transmisi&oacute;n de malaria en este departamento, ya que se reporta como la especie de mayor abundancia que pica a los humanos.</p>     <p><b>Materiales y m&eacute;todos </b></p>     <p>Los municipios seleccionados para la recolecci&oacute;n de mosquitos fueron Puerto Legu&iacute;zamo, en las localidades La Quebradita (74&deg;40&acute;40.5&acute;&acute;W - 0&deg;19&acute;2.4&acute;&acute;N), La Concepci&oacute;n (75&deg;51&acute;2&acute;&acute;W - 08&deg;11&acute;04&acute;&acute;N), Puntales (74&deg;29&acute;21.5&acute;&acute;W - 0&deg;27&acute;12.1&acute;&acute;N) y El Tablero (75&deg;56&acute;38.7&acute;&acute;W - 0&deg;13&acute;4.4&acute;&acute;N), y Puerto As&iacute;s, en la localidad La Manuela (76&deg;32&acute;2&acute;&acute;W - 0&deg;20&acute;2&acute;&acute;N). Los espec&iacute;menes fueron recolectados por funcionarios del Grupo de Entomolog&iacute;a del Departamento Administrativo de Salud, DASALUD (Putumayo), entre noviembre de 2006 y abril de 2008. Se capturaron estadios inmaduros y de adultos de <i>Anopheles </i>spp.</p>     <p>Se hizo una b&uacute;squeda en las horas de la ma&ntilde;ana, de criaderos existentes alrededor de las viviendas. En cada uno de ellos se recolectaron larvas de tercer y cuarto estadio, siguiendo el m&eacute;todo del cuchar&oacute;n mediante 10 &quot;cucharonadas&quot; por cada metro cuadrado de superficie, seg&uacute;n la metodolog&iacute;a de la Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud (OMS) (25).</p>     <p>Las larvas se mantuvieron vivas individualmente hasta que completaron su desarrollo hasta adulto; de esta forma, se obtuvieron la exuvia de la larva, la pupa y el adulto del mismo ejemplar. Las exuvias se preservaron en viales de 0,5 ml con alcohol al 70 % y los adultos se empacaron en el mismo tipo de vial con la tapa perforada, un ejemplar por vial, y estos, en bolsas de cierre herm&eacute;tico con s&iacute;lica gel. Este material se transport&oacute; al Laboratorio de Entomolog&iacute;a M&eacute;dica de la Facultad de Medicina de la Universidad Nacional de Colombia, sede Bogot&aacute;, donde se hicieron los montajes de las pieles de los inmaduros, y de las alas y patas de las hembras, siguiendo la metodolog&iacute;a propuesta por Gonz&aacute;lez y Carrejo (24).</p>     <p>Los mosquitos adultos hembra se recolectaron sobre humanos con aspiradores bucales, en el peridomicilio y el intradomicilio, entre las 18:00 y las 21:00 y, en algunos casos (cuando la situaci&oacute;n de orden p&uacute;blico lo permiti&oacute;), entre las 18:00 y las 06:00. En cada una de las casas trabajaron simult&aacute;neamente cuatro personas, dos en el intradomicilio y dos en el peridomicilio. Los recolectores cambiaban de sitio cada hora, para equilibrar el posible sesgo debido a diferencias en atracci&oacute;n y habilidad del personal para las capturas. Cada sitio de muestreo se visit&oacute; durante dos a seis d&iacute;as, seg&uacute;n las actividades regulares de vigilancia en malaria por parte de los funcionarios de entomolog&iacute;a del departamento.</p>     <p>Los mosquitos se guardaron individualmente en viales Eppendorf de 0,5 ml con la tapa perforada y se almacenaron en bolsas con s&iacute;lica gel, separados seg&uacute;n la hora de recolecci&oacute;n, la fecha y el sitio de captura. Adem&aacute;s, se recolectaron mosquitos del rededor del ganado vacuno en pastoreo, entre las 20:00 y 22:00, durante una semana en agosto de 2007, en dos viviendas de la localidad La Manuela del municipio de Puerto As&iacute;s. Estos ejemplares se procesaron de la misma forma que los provenientes de recolecciones con atrayente humano.</p>     <p>Los mosquitos adultos hembra y los ejemplares procedentes de formas inmaduras, junto con sus estadios asociados, se identificaron usando las claves taxon&oacute;micas de Faran (16), Faran y Linthicum (22), Su&aacute;rez, <i>et al. </i> (23), y Gonz&aacute;lez y Carrejo (24).</p>     <p>Una muestra de cada especie se seleccion&oacute; para secuenciar la regi&oacute;n del segundo espaciador transcrito interno ( <i>ITS-2 </i>) del genoma nuclear, el cual se amplific&oacute; usando los cebadores dirigidos contra una secuencia conservada de los genes <i>5.8S </i> y <i>28S </i> descritos por Li y Wilkerson (17), y el gen mitocondrial citocromo oxidasa I ( <i>COI </i>), usando dos conjuntos de cebadores conservados descritos por Lehr, <i>et al. </i> (26). En algunos casos, las muestras proven&iacute;an de familias establecidas en el laboratorio y determinadas por morfolog&iacute;a de todos los estadios asociados; en otros, proven&iacute;an de las recolecciones hechas con atrayente humano e identificadas por la morfolog&iacute;a de las hembras adultas.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>A los mosquitos adultos secos, se les extrajo el ADN con el kit de extracci&oacute;n de <i>DNAeasy </i>™ <i> Blood and Tissue Kit </i> de Qiagen. Para la amplificaci&oacute;n por PCR del <i>ITS-2 </i> y de <i> COI </i> se siguieron la metodolog&iacute;as propuestas por Ruiz, <i>et al. </i> (6), y por Lehr, <i>et al. </i> (26), respectivamente. Los productos se visualizaron en un gel de agarosa al 1 %. Los productos se secuenciaron en ambas direcciones usando los dos inciadores ( <i>primers </i>), directo e inverso. La secuenciaci&oacute;n se hizo en el <i>Wadsworth Center Molecular Genetics </i> del <i>New York </i><i>Health Department. </i> Las secuencias se revisaron y editaron con el programa Sequencher 3.0 ™ (Gene Codes Corp., Ann Arbor, MI, USA), se alinearon y se logr&oacute; el consenso entre la secuencia directa y la inversa.</p>     <p>Una vez editadas las secuencias, se compararon con las disponibles en el banco de secuencias <i>GenBank </i>, utilizando BLASTN(<a href="http://blast.ncbi.nlm.nih.gov" target="_blank">http://blast.ncbi.nlm.nih.gov</a>), disponible en l&iacute;nea en el NCBI ( <i>National Center for Biotechnology Information </i>), con el fin de esclarecer las identificaciones morfol&oacute;gicas, con base en los porcentajes de identidad.</p>     <p><b><i>PCR-RFLP: </i></b> los mosquitos adultos hembra identificados morfol&oacute;gicamente como <i>An. benarrochi </i> B o <i>An. oswaldoi </i>, fueron procesados por PCR-RFLP para el espaciador transcrito interg&eacute;nico 2 ( <i>ITS-2 </i>), siguiendo la metodolog&iacute;a propuesta por Ruiz, <i>et al. </i>(6). Para la RFLP se utiliz&oacute; la enzima Hae III (Promega ™ ) como endonucleasa de restricci&oacute;n, la cual permiti&oacute; diferenciar <i>An. benarrochi </i> B de <i>An. oswaldoi </i>, obteniendo un patr&oacute;n de bandas caracter&iacute;stico para cada una de las especies. El sitio de corte de esta enzima es 5&acute;...GG/CC...3&acute; y 3&acute;...CC/GG...5&acute;.</p>     <p>La determinaci&oacute;n de la infecci&oacute;n natural con <i>Plasmodium </i> spp. se hizo usando la t&eacute;cnica inmunol&oacute;gica ELISA propuesta por Wirtz, <i>et al. </i> (27-29), siguiendo la metodolog&iacute;a est&aacute;ndar del protocolo de estuches de ELISA, distribuidos por los <i>Centers for Disease Control and Prevention </i> (CDC), utilizando los anticuerpos monoclonales de <i>P. vivax </i>, VK210 y VK 247, y de <i>P. falciparum </i>.</p>     <p>A cada mosquito identificado se le separ&oacute; cuidadosamente la cabeza y el t&oacute;rax del abdomen, para evitar la posibilidad de obtener falsos positivos por presentar ooquistes en el est&oacute;mago. Similarmente, se removieron las alas y las patas, tratando de evitar la detecci&oacute;n de la prote&iacute;na del circumsporozo&iacute;to circulante en la hemolinfa y para disponer de estas partes en la identificaci&oacute;n de la especie por morfolog&iacute;a y m&eacute;todos moleculares. Todos los mosquitos, excepto los identificados como <i>An. darlingi </i>, fueron examinados individualmente mediante ELISA; <i>An. darlingi </i> fue examinado en grupos de cinco o menos mosquitos. Los grupos consistieron en mosquitos recolectados en la misma fecha y a la misma hora, en el mismo sitio de captura. Los resultados se leyeron en un lector de ELISA con filtro de 405 nm, despu&eacute;s de 30 minutos o una hora. Como punto de corte se us&oacute; el doble del promedio de los negativos, el cual ha sido encontrado como el m&aacute;s confiable en evaluaciones de campo (30). Los individuos positivos en una primera ELISA, se confirmaron en una segunda ELISA.</p>     <p>El estudio fue aprobado por el Comit&eacute; de &Eacute;tica de la Facultad de Medicina de la Universidad Nacional de Colombia. Se obtuvo consentimiento informado por escrito de los participantes en la metodolog&iacute;a propuesta para la recolecci&oacute;n de mosquitos sobre atrayente humano. Las personas involucradas fueron t&eacute;cnicos con experiencia del Grupo de Entomolog&iacute;a de DASALUD, Putumayo, quienes participaron voluntariamente en el estudio y quienes previamente conoc&iacute;an el protocolo de la Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud para las recolecciones de mosquitos <i>Anopheles </i>.</p>     <p><b>Resultados </b></p>     <p><b><i>Determinaci&oacute;n taxon&oacute;mica de las especies </i></b></p>     <p>Se encontraron tres criaderos permanentes y naturales, uno en la localidad La Concepci&oacute;n, Puerto Legu&iacute;zamo, y dos en La Manuela, Puerto As&iacute;s, en julio y agosto de 2007. Los tres criaderos fueron expuestos al sol y con vegetaci&oacute;n emergente. Se realizaron 246 series a partir de las larvas recolectadas en estos criaderos y se identificaron cuatro especies: <i>An. rangeli </i> (n=105), <i>An. triannulatus s.l. </i> (n=72), <i>An. albitarsis s.l </i>. (n=60) y <i>An. braziliensis </i> (n=9).</p>     <p>En las capturas de mosquitos adultos se identificaron 11 especies en 6.238 hembras adultas recolectadas. Del total de hembras adultas, 5.770 fueron recolectadas con atrayente humano y, 468, en reposo animal. La especie de <i>Anopheles </i> m&aacute;s frecuente en las recolecciones con atrayente humano fue <i>An. benarrochi </i> B (4.470 individuos, que corresponden al 77,47 % del total de mosquitos identificados), seguida por <i>An. darlingi </i> con 1.208 (20,94 %). Otras especies determinadas en menor proporci&oacute;n fueron <i>An. rangeli </i> (0,31 %), <i>An. albitarsis s.l. </i> (0,43 %), <i>An. oswaldoi s.l. </i> (0,40 %), <i>An. triannulatus s.l. </i> (0,17 %), <i>An. neomaculipalpus </i> (0,09 %), <i>An. mattogrossensis </i> (0,09 %), <i>An. costai </i> (0,07 %) y <i>An. punctimacula </i> (0,03 %). En el <a href="#cuadro1">cuadro 1</a> se presenta el total de <i>Anopheles </i> recolectados por localidad y por sitio de captura, en cada uno de los municipios muestreados.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center> <a name="cuadro1"><img src="img/revistas/bio/v33n1/v33n1a06t1.gif"></a></center></p>      <p>En abrigo animal, las especies recolectadas en mayor proporci&oacute;n fueron <i>An. rangeli </i> (64,53 %), <i>An. albitarsis s.l. </i> (19,02 %) y <i>An. benarrochi </i> B (9,19 %), y en menor proporci&oacute;n, se encontraron <i>An. triannulatus </i><i>s.l. </i>, <i>An. braziliensis </i>, <i>An. neomaculipalpus </i>y <i>An. oswaldoi s.l. </i>, aportando tan solo el 7,26 % (<a href="#cuadro2">cuadro 2</a>).</p>     <p>    <center> <a name="cuadro2"><img src="img/revistas/bio/v33n1/v33n1a06t2.gif"></a></center></p>      <p>La especie <i>An. benarrochi </i>B se evidenci&oacute; como muy antropof&iacute;lica, adem&aacute;s de ser tanto endof&aacute;gica como exof&aacute;gica, a diferencia de las especies <i>An. rangeli </i> y <i>An. albitarsis s.l. </i>, las cuales mostraron un acentuado comportamiento zoof&iacute;lico.</p>     <p>Se obtuvieron 54 familias a partir de 200 hembras que se recolectaron en La Manuela, Puerto As&iacute;s, las cuales fueron determinadas taxon&oacute;micamente por morfolog&iacute;a de huevos, de larvas y de adultos hembra. De acuerdo con las determinaciones, se logr&oacute; el establecimiento de 27 familias de <i>An. benarrochi </i> B, 14 familias de <i>An. rangeli </i>, 7 familias de <i>An. albitarsis s.l. </i>, 3 familias de <i>An. triannulatus s.l. </i> y 1 familia de <i>An. oswaldoi s.l. </i></p>     <p>Se obtuvieron secuencias para los dos marcadores ( <i>ITS-2 </i> y <i>COI </i>) de 33 espec&iacute;menes: 18 <i>An. benarrochi </i>B, 3 <i>An. albitarsis s.l. </i>, 3 <i>An. rangeli </i>, 3 <i>An. triannulatus s.l. </i>, 2 <i>An. punctimacula </i>, 1 <i>An. costai </i>, 2 <i>An. neomaculipalpus </i>, y 1 <i> An. mattogrossensis </i>. De un especimen se obtuvo solamente secuencia de <i>ITS-2 </i>: 1 <i>An. oswaldoi s.l. </i>, y de 19 espec&iacute;menes de <i>An. darlingi </i> se obtuvieron solamente secuencias de <i>COI </i>. Las secuencias provinieron de espec&iacute;menes obtenidos a partir de isofamilias y de las recolecciones en campo, determinados preliminarmente por las caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas.</p>     <p>Las secuencias de <i>ITS-2 </i> y <i>COI </i> obtenidas a partir de los espec&iacute;menes, fueron incluidas en el <i>GenBank </i> con los n&uacute;meros de acceso que se presentan a continuaci&oacute;n. Para ITS-2, fueron: <i>An. benarrochi </i>B (JX198285 - JX198302), <i>An. albitarsis s.l. </i> (JX198279 - JX198281), <i>An. rangeli ( </i>JX198282 - JX198284), <i>An. triannulatus s.l. </i> (JX198276 - JX198278), <i>An. punctimacula </i> (JX198303 - JX198304), <i>An. costai </i> (JX198308), <i>An. neomaculipalpus </i> (KX198305 - JX198306), <i>An. oswaldoi s.l. </i> (JX198309) y <i> An. mattogrossensis </i> (JX198307). Para COI, fueron: <i>An. benarrochi </i>B (JX205097 - JX205110), <i>An. albitarsis s.l. </i>(JX205114 - JX205116), <i>An. rangeli </i> (JX205117 - JX205120), <i>An. triannulatus s.l. </i> (JX205111 - JX205113), <i>An. punctimacula </i> (JX205122 - JX205123), <i>An. costai </i> (JX205127 - JX205128), <i>An. neomaculipalpus </i> (JX205124 - JX205125), <i>An. mattogrossensis </i>(JX205126) y <i>An. darlingi </i>(JX435780 - JX435797). Las determinaciones preliminares se confirmaron con las comparaciones de las secuencias del <i>GenBank </i>, a excepci&oacute;n de las especies <i>An. punctimacula </i> y <i>An. neomaculipalpus </i>, para las cuales no hab&iacute;a secuencias disponibles para comparar. Los resultados se presentan en el <a href="#cuadro3">cuadro 3</a>.</p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center> <a name="cuadro3"><img src="img/revistas/bio/v33n1/v33n1a06t3.gif"></a></center></p>      <p>Un total de 1.067 individuos identificados como <i>An. benarrochi </i> B o <i>An. oswaldoi </i><i>s.l </i>., recolectados en las diferentes &aacute;reas y periodos de muestreo, se procesaron por PCR-RFLP del <i>ITS-2 </i> del ADN ribos&oacute;mico. En 1.045 de los individuos se observaron las bandas esperadas para la especie <i>An. benarrochi </i> B (365, 137 y 38 pb). El patr&oacute;n de corte esperado para <i>An. oswaldoi s.l. </i> (493 y 38 pb) solo se evidenci&oacute; en 22 de las muestras.</p>     <p><b><i>Determinaci&oacute;n de la capacidad infecciosa natural de Plasmodium </i></b></p>     <p>Se examinaron 5.038 espec&iacute;menes por ELISA. El n&uacute;mero de espec&iacute;menes por especie en los cuales se detect&oacute; la prote&iacute;na del circumsporozo&iacute;to se presenta en el <a href="#cuadro4">cuadro 4</a>. <i>Anopheles benarrochi </i> B fue la &uacute;nica especie encontrada naturalmente infectada con <i>P. vivax </i> 210 y VK 247. Los cinco individuos se recolectaron en el municipio de Puerto Legu&iacute;zamo, en las localidades La Concepci&oacute;n y El Tablero, a las 18:00 en el intradomicilio y en el peridomicilio. Los espec&iacute;menes de las dem&aacute;s especies, incluyendo aquellas con antecedentes vectoriales, como <i>An. darlingi </i>, <i>An. rangeli </i>, <i>An. albitarsis s.l. </i>, <i>An. oswaldoi s.l. </i>y <i>An. punctimacula </i>, fueron negativos para la prote&iacute;na del circumsporozo&iacute;to.</p>     <p>    <center> <a name="cuadro4"><img src="img/revistas/bio/v33n1/v33n1a06t4.gif"></a></center></p>     <p><b>Discusi&oacute;n </b></p>     <p>Durante el desarrollo de este trabajo se encontraron 11 especies de <i>Anopheles </i> ( <i>An. albitarsis s.l. </i>, <i>An. benarrochi </i> B, <i>An. braziliensis </i>, <i>An. costai </i>, <i>An. darlingi </i>, <i>An. mattogrossensis </i>, <i>An. neomaculipalpus </i>, <i> An. oswaldoi s.l. </i>, <i>An. punctimacula </i>, <i>An. rangeli </i> y <i>An. triannulatus s.l. </i>) en los municipios de Puerto As&iacute;s y Puerto Legu&iacute;zamo, departamento del Putumayo. La especie m&aacute;s abundante recolectada con atrayente humano en todos los periodos de estudio fue <i>An. benarrochi </i> B. Esta especie, pese a su abundancia picando humanos, no se recolect&oacute; en ninguno de los h&aacute;bitats larvarios identificados cerca de las casas, posiblemente por el escaso n&uacute;mero de criaderos encontrados o porque los criaderos de esta especie est&aacute;n lejos de las viviendas y en lugares m&aacute;s sombreados. El escaso n&uacute;mero de criaderos muestreados no permite hacer inferencias. De acuerdo con este trabajo y con los desarrollados anteriormente por Qui&ntilde;ones, <i>et al. </i>(5), las caracter&iacute;sticas de los criaderos de <i>An. benarrochi </i> B hasta el momento no se conocen. Su descripci&oacute;n es necesaria para conocer aspectos de su biolog&iacute;a importantes en la toma de decisiones en t&eacute;rminos de alternativas para control vectorial.</p>     <p><i>Anopheles rangeli </i> represent&oacute; aproximadamente el 62 % de los individuos recolectados en reposo animal; por el contrario, en recolecciones con atrayente humano, solo represent&oacute; el 0,31 % del total, lo que demuestra un acentuado comportamiento zoof&iacute;lico y concuerda con lo reportado por Faran (16), quien la describi&oacute; como una especie que se recolecta principalmente sobre caballos y ganado.</p>     <p><i>Anopheles darlingi </i>, reconocido vector de paludismo en el pa&iacute;s, solo se encontr&oacute; en el municipio de Puerto Legu&iacute;zamo, en las localidades La Quebradita y Puntales. Estos resultados est&aacute;n de acuerdo con la distribuci&oacute;n reportada para esta especie en trabajos desarrollados anteriormente en el departamento del Putumayo, los cuales la restringen a los l&iacute;mites con el Amazonas y la responsabilizan de mantener el principal foco de transmisi&oacute;n de <i>P. falciparum </i> (5).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se confirm&oacute; la identidad de las especies al compararlas con las secuencias de <i>ITS-2 </i> del ADNr y el gen <i>COI </i> del ADNmt disponibles en el <i>GenBank </i>. Esto demuestra la utilidad de esta metodolog&iacute;a, la cual, en conjunto con la observaci&oacute;n de caracteres morfol&oacute;gicos de los estadios asociados de huevo, larva, pupa y adulto, se constituyen en una herramienta &uacute;til que permite la determinaci&oacute;n de especies pertenecientes a complejos, siendo particularmente relevante en estudios de incriminaci&oacute;n de vectores de malaria, donde es necesaria una correcta determinaci&oacute;n de los espec&iacute;menes. Sin embargo, a&uacute;n varios de los complejos est&aacute;n por ser resueltos, como es el caso del complejo <i>An. albitarsis s.l. </i>, <i>An. oswaldoi s.l. y </i>, <i>An. triannulatus s.l. </i>, y de otras especies no se encontraron secuencias disponibles en el <i>GenBank </i> para hacer comparaciones, como fueron <i>An. punctimacula </i> y <i>An. neomaculipalpus </i>. Las determinaciones taxon&oacute;micas para estas especies se basaron en la morfolog&iacute;a de los estados asociados y de las hembras adultas, y se aportaron las secuencias al <i>GenBank </i> lo que facilitar&aacute; trabajos futuros.</p>     <p>Las secuencias de <i>ITS-2 </i> asociadas a isofamilias de <i>An. benarrochi </i> B mostraron un 100 % de identidad con las secuencias sometidas por Ruiz, <i>et al. </i>, 2005, para este mismo departamento. Las evidencias morfol&oacute;gicas, moleculares y de comportamiento, discutidas por Ruiz, <i>et al. </i> (6), y acumuladas durante los trabajos desarrollados anteriormente en el Putumayo, sustentan la necesidad de describir la especie que hasta ahora se ha venido denominando <i>An. benarrochi </i>B. Sallum, <i>et al. </i> (31), discute la necesidad de establecer la definici&oacute;n morfol&oacute;gica y molecular de las especies del complejo <i>An. benarrochi </i><i>s.l. </i> para resolver el estatus taxon&oacute;mico de las poblaciones encontradas en Brasil, Per&uacute; y Colombia, dado que se han encontrado diferencias en la morfolog&iacute;a de los genitales de los machos y en el <i>ITS-2 </i> del ADNr de <i>An. benarrochi </i> de Acrelandia, Acre, Brasil, con las de Putumayo sometidas por Ruiz, <i>et al. </i> (6).</p>     <p>Con relaci&oacute;n al complejo <i>An. oswaldoi s.l. </i>, Ruiz, <i>et al. </i>(Ruiz F, Herrera M, Sallum M, Motoki M, Wilkerson R, Ponsonby D, <i>et al </i>. Molecular systematics of the Oswaldoi Complex (Anopheles: Nyssorhynchus) in South America. In: The 16th European Society for Vector Ecology Conference, March 25-28, 2008, Fitzwilliam College, Cambridge) diferenciaron cuatro especies, a saber, <i>An. oswaldoi s.s </i>., y <i>An. oswaldoi </i> A, B y C, con base en la morfolog&iacute;a de los genitales de los machos y en secuencias de ITS-2 y COI, y propusieron su distribuci&oacute;n as&iacute;: en Brasil, <i>An. oswaldoi </i><i>s.s </i>., A y B; en Colombia, <i>An. oswaldoi </i>A, B y C; en Ecuador, <i>An. oswaldoi </i> B y C; en Per&uacute;, <i>An. oswaldoi </i> C; y en Trinidad y Venezuela, <i>An. oswaldoi </i>B. Infortunadamente, las secuencias de estos espec&iacute;menes a&uacute;n no est&aacute;n disponibles en el <i>GenBank </i>, por lo que no fue posible comparar las secuencias de los espec&iacute;menes obtenidas en este trabajo. Al comparar estas secuencias con las del <i>GenBank </i>, correspondientes a la descripci&oacute;n reiterada de <i>An. oswaldoi s.s. </i>de muestras provenientes de Espirito Santo y S&atilde;o Paulo (Brasil) (n&uacute;meros de acceso EF457228-EF457239), se demuestra una identidad del 97 %, lo cual sugiere que la especie de <i>An. oswaldoi s.l. </i> presente en el Putumayo es probablemente otra de este complejo.</p>     <p>Para el complejo <i>An.albitarsis s.l. </i>, se han descrito seis especies: <i>An. albitarsis </i>Lynch-Arrib&aacute;lzaga, <i>An. deaneorum </i> Rosa-Freitas , <i>An. marajoara </i>Galv&atilde;o y Damasceno, <i>An. oryzalimnetes </i> Wilkerson y Motoki, <i>An. janconnae </i> Wilkerson y Sallum y <i>An. albitarsis </i>F (32), de las cuales, en Colombia se han reportado <i>An. marajoara </i>, <i>An. albitarsis </i> F (33); y, recientemente, Guti&eacute;rrez, <i>et al. </i> (32), al analizar espec&iacute;menes de la Costa Caribe de Colombia, describi&oacute; un linaje cercano a <i>An. janconnae </i>. Las secuencias de Putumayo presentaron una homolog&iacute;a del 99 % con <i>An. marajoara </i>, tanto por <i>ITS-2 </i> como por <i>COI </i>. Sin embargo, mostraron tambi&eacute;n una gran homolog&iacute;a con <i>An. albitarsis </i> F. Debido a la complejidad que presenta la discriminaci&oacute;n de las especies de este complejo y a la necesidad de realizar estudios m&aacute;s completos y a mayor escala que involucren las especies a lo largo de su distribuci&oacute;n en Latinoam&eacute;rica, la identidad de la especie presente en Putumayo no es clara y se clasifica como <i>An. albitarsis s.l. </i></p>     <p>En este trabajo, la especie <i>An. benarrochi </i> B se encontr&oacute; naturalmente infectada mediante la prote&iacute;na del circumsporozo&iacute;to de <i>P. vivax </i> (VK 210 y VK 247), con una tasa de infecci&oacute;n total de 0,13 %, dos de ellos infectados con <i>P. vivax </i> 210 y tres con <i>P. vivax </i>247. Esta tasa de infecci&oacute;n es m&aacute;s baja que la reportada para especies consideradas vectores primarios, como <i>An. darlingi </i> (entre 0,98 % y 2,1 %) (8,34), lo cual podr&iacute;a explicar por qu&eacute; <i>An. benarrochi </i> B no se hab&iacute;a encontrado infectada en los anteriores estudios en el departamento, y es comparable con la obtenida para esta misma especie en los estados de Loreto y Ucayali (Per&uacute;) (0,14 % en 6.323 grupos de mosquitos evaluados), donde cumple un importante papel en la transmisi&oacute;n del paludismo (8). Que esta especie haya sido encontrada naturalmente infectada &uacute;nicamente con par&aacute;sitos de <i>P. vivax </i>, no es sorprendente, dado que en los &uacute;ltimos siete a&ntilde;os los casos de malaria reportados por el departamento se deben principalmente a esta especie de <i>Plasmodium </i>, y particularmente para el a&ntilde;o 2007, durante el cual se recolect&oacute; el mayor n&uacute;mero de espec&iacute;menes de <i>Anopheles </i> aqu&iacute; evaluados, el 97,20 % de los casos diagnosticados fueron causados por <i>P. vivax </i>. Adem&aacute;s, estos resultados tambi&eacute;n podr&iacute;an sugerir que la longevidad de esta especie no es suficiente como para soportar el desarrollo de <i>P. falciparum </i>.</p>     <p>Los cinco <i>An. benarrochi </i> B positivos fueron recolectados en agosto en tres d&iacute;as diferentes, tanto en el intradomicilio como en el peridomicilio, entre las 18:00 y las 19:00, periodo en que los habitantes de la zona est&aacute;n afuera de sus casas. En los estudios de Qui&ntilde;ones, <i>et al. </i> (5), el pico de actividad de esta especie se estableci&oacute; entre las 18:00 y las 24:00. Estos resultados tienen implicaciones importantes para el control de la malaria en esta regi&oacute;n y, dada la abundancia de esta especie y su asociaci&oacute;n con los humanos, se puede recomendar la implementaci&oacute;n de m&eacute;todos de protecci&oacute;n personal, tales como el uso de repelentes y de toldillos para disminuir el contacto entre los humanos y el vector.</p>     <p>En el muestreo en La Quebradita, Puerto Legu&iacute;zamo, la especie m&aacute;s abundante fue <i>An. darlingi </i>, reconocida como vector primario en el pa&iacute;s (15,35) y la cual ha sido encontrada naturalmente infectada con esporozo&iacute;tos de <i>P. falciparum </i>, <i>P. vivax </i> 210 y <i>P. vivax </i> 247 a lo largo y ancho de la Amazonia, con tasas de infecci&oacute;n que var&iacute;an entre 2,7 y 22,4 % (8,15,33,36-38). En este estudio, <i>An. darlingi </i> no se encontr&oacute; naturalmente infectada con ninguna de las especies de <i>Plasmodium </i> evaluadas, resultado similar al obtenido en estudios previos de infecci&oacute;n natural en el departamento (5). Sin embargo, cabe destacar que los individuos que se evaluaron solo correspond&iacute;an a los recolectados durante un mes.</p>     <p>Los resultados del presente trabajo sugieren que la nueva especie, hasta ahora designada como <i>An. benarrochi </i> B, puede jugar un papel importante en la transmisi&oacute;n de malaria en el departamento del Putumayo, dada su gran antropofilia y a que se encontr&oacute; naturalmente infectada con <i>P. vivax </i>. Estos hallazgos se suman a los obtenidos por Qui&ntilde;ones, <i>et al. </i> (5), quienes incriminan a <i>An. oswaldoi s.l. </i> y a <i>An. rangeli </i> como vectores en el departamento, demostrando la heterogeneidad que los vectores de malaria pueden exhibir en una regi&oacute;n en particular. Se requieren estudios posteriores que permitan describir y saber m&aacute;s de la biolog&iacute;a de este nuevo vector de malaria en Colombia, como son los tipos de criaderos, el estado de vulnerabilidad ante los insecticidas y su capacidad vectorial, informaci&oacute;n que ser&aacute; de utilidad para la selecci&oacute;n y evaluaci&oacute;n entomol&oacute;gica de las medidas de control de malaria por parte de la secretar&iacute;a de salud del Putumayo.</p>     <p>    <center><b>Agradecimientos </b></center></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>A los funcionarios de la Direcci&oacute;n Administrativa de Salud de Putumayo (DASALUD), por la colaboraci&oacute;n para el trabajo de campo, particularmente a Ignacio Palacios y al Grupo de Entomolog&iacute;a; a las comunidades de los municipios de Puerto As&iacute;s y Puerto Legu&iacute;zamo, por permitir el ingreso a sus casas durante el muestreo; a Lucas A. Alcal&aacute;, por el apoyo en el procesamiento de las muestras en el laboratorio; a Robert Wirtz, por la donaci&oacute;n de los anticuerpos monoclonales para el desarrollo de la t&eacute;cnica ELISA para determinar la infecci&oacute;n natural en mosquitos por par&aacute;sitos del g&eacute;nero <i>Plasmodium </i>spp.; y a Jan Conn, por el apoyo con la secuencias de los espec&iacute;menes.</p>     <p>    <center><b>Conflicto de intereses </b></center></p>     <p>Los autores manifestamos no tener conflictos de intereses en esta publicaci&oacute;n.</p>     <p>    <center><b>Financiaci&oacute;n </b></center></p>     <p>Este proyecto fue financiado por Colciencias, c&oacute;digo 110134319196.</p>     <p>Correspondencia: Sonia Isabel Cuervo, Grupo de Infectolog&iacute;a, Instituto Nacional de Cancerolog&iacute;a, Empresa Social del Estado, Avenida calle 1&ordf; N&deg; 9-85, Bogot&aacute;, D.C., Colombia, Tel&eacute;fono: (051) 334 1111, extensi&oacute;n 5558 <a href="mailto:scuervo@cancer.gov.co">scuervo@cancer.gov.co</a> y <a href="mailto:sicuervom@unal.edu.co">sicuervom@unal.edu.co</a> </p>      <p>    <center><b>Referencias </b></center></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>1. <b>World Health Organization. </b> World Malaria Report 2010. Ginebra: World Health Organization; 2010. p. 1-204.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-4157201300010000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>2. <b>Padilla-Rodr&iacute;guez JC, Uribe G&Aacute;, Ara&uacute;jo RM, Narv&aacute;ez PC, Valencia SH. </b>Epidemiology and control of malaria in Colombia. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2011;106(Suppl.1):114-22. <a href="http://dx.doi.org/10.1590/S0074-02762011000900015" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1590/S0074-02762011000900015</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-4157201300010000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. <b>Pe&ntilde;a MY, Revelo D, Ord&oacute;&ntilde;ez LJ, L&oacute;pez MC, Aguilera G. </b> Comportamiento epidemiol&oacute;gico de malaria en el departamento de Putumayo. Fecha de consulta: 14 de junio de 2012. Disponible en: <a href="http://www.orasconhu.org/documentos/Anexo%2014y%20COL%20M&amp;E%202009.pdf" target="_blank">http://www.orasconhu.org/documentos/Anexo%2014y%20COL%20M&amp;E%202009.pdf</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-4157201300010000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>4. <b>Departamento Administrativo de Salud Putumayo. </b> Informe casos de malaria por localidad, periodo y grupos de edad 2000-2007. Mocoa: DASALUD Putumayo; 2007. p. 1-32.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-4157201300010000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>5. <b>Qui&ntilde;ones ML, Ruiz F, Calle DA, Harbach RE, Erazo HF, Linton YM. </b>Incrimination of <i>Anopheles (Nyssorhynchus) rangeli </i> and <i>An. (Nys.) oswaldoi </i> as natural vectors of <i>Plasmodium vivax </i> in Southern Colombia. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2006;101:617-23. <a href="http://dx.doi.org/10.1590/S0074-02762006000600007" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1590/S0074-02762006000600007</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-4157201300010000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. <b>Ruiz F, Qui&ntilde;ones ML, Erazo HF, Calle DA, Alzate JF, Linton YM. </b>Molecular differentiation of <i>Anopheles (Nyssorhynchus) benarrochi </i> and <i>An. oswaldoi </i> from Southern Colombia. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2005;100:155-60. <a href="http://dx.doi.org/10.1590/S0074-02762005000200008" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1590/S0074-02762005000200008</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-4157201300010000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. <b>Olano V, Brochero H, S&aacute;enz R, Qui&ntilde;ones M, Molina J. </b> Mapas preliminares de la distribuci&oacute;n de <i>Anopheles </i>vectores de malaria en Colombia. Biom&eacute;dica. 2001;21:402-83.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0120-4157201300010000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>8. <b>Florez C, Fern&aacute;ndez R, Escobedo KS, Vela Q, Schoeler GB. </b>Natural <i>Plasmodium </i>infections in <i>Anopheles darlingi </i> and <i>Anopheles benarrochi </i> (Diptera: Culicidae) from Eastern Peru. J Med Entomol. 2004;41:489-94. <a href="http://dx.doi.org/10.1603/0022-2585-41.3.489" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1603/0022-2585-41.3.489</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0120-4157201300010000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. <b>Fern&aacute;ndez LR, Schoeler G, Stancil J. </b> Presencia de <i>Anopheles (Nyssorhynchus) benarrochi </i> en &aacute;reas de selva con transmisi&oacute;n mal&aacute;rica. Rev Peru Med Exp Salud P&uacute;blica. 2004;21:217-22.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0120-4157201300010000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>10. <b>Branquinho MS, Ara&uacute;jo MS, Natal D, Marelli MT, Rocha RM, Taveira FA, <i>et al. </i></b><i>Anopheles oswaldoi </i> a potential malaria vector in Acre, Brazil. Trans R Soc Trop Med Hyg. 1996;90:233.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0120-4157201300010000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>11. <b>Hayes J, Calder&oacute;n G, Falcon R, Zambrano V. </b> Newly incriminated <i>Anopheles </i> vectors of human malaria parasites in Junin Department, Peru. J Am Mosq Control Assoc. 1987;33:418-22.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0120-4157201300010000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>12. <b>Rubio-Palis Y, Curtis CF. </b> Biting and resting behaviour of anophelines in western Venezuela and implications for control of malaria transmission. Med Vet Entomol. 1992;6:375-81.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0120-4157201300010000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>13. <b>Povoa MM, Wirtz RA, Lacerda RNL, Miles MA, Warhust D. </b> Malaria vectors in the municipality of Serra do Navio, state of Amap&aacute;, Amazon Region, Brazil. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2001;96:179-84. <a href="http://dx.doi.org/10.1590/S0074-02762001000200008" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1590/S0074-02762001000200008</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0120-4157201300010000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. <b>Moreno JE, Rubio-Palis Y, P&aacute;ez E, Perez E, S&aacute;nchez V, Vaccari E. </b><i>Anopheles (Anopheles) neomaculipalpus </i>: A new malaria vector in the Amazon basin?. Med Vet Entomol. 2005;19:329-32. <a href="http://dx.doi.org/10.1111/j.1365-2915.2005.00572.x" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1111/j.1365-2915.2005.00572.x</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0120-4157201300010000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. <b>Herrera S, Su&aacute;rez M, S&aacute;nchez G, Qui&ntilde;ones M, Herrera M. </b> Uso de la t&eacute;cnica inmunoradiom&eacute;trica (IRMA) en <i>Anopheles </i> de Colombia para la identificaci&oacute;n de esporozo&iacute;tos de <i>Plasmodium </i>. Colombia M&eacute;dica. 1987;18:57-60.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0120-4157201300010000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>16. <b>Faran ME. </b> A revision of the <i>Albimanus </i> section of the subgenus <i>Nyssorhynchus </i> of <i>Anopheles </i>. Contrib Am Entomol Inst. 1980;15:1-125.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0120-4157201300010000600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>17. <b>Li C, Wilkerson RC. </b> Identification of <i>Anopheles (Nyssorhynchus) albitarsis </i> complex species (Diptera: Culicidae) using rDNA internal transcribed spacer 2-based polymerase chain reaction primes. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2005;100:495-500. <a href="http://dx.doi.org/10.1590/S0074-02762005000500009">http://dx.doi.org/10.1590/S0074-02762005000500009</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0120-4157201300010000600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. <b>Silva Do Nascimento TF, Wilkerson RC, Lourenco-De-Oliveira R, Monteiro FA. </b>Molecular confirmation of the specific status of <i>Anopheles halophylus </i> (Diptera: Culicidae) and evidence of a new criptic species within <i>An. triannulatus </i> in central Brazil. J Med Entomol. 2006;43:455-9. <a href="http://dx.doi.org/10.1603/0022-2585(2006)43[455: MCOTSS]2.0.CO;2" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1603/0022-2585(2006)43[455: MCOTSS]2.0.CO;2</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0120-4157201300010000600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. <b>Qui&ntilde;ones ML, Harbach RE, Calle DA, Ruiz JF, Erazo HF, Linton YM. </b> Variante morfol&oacute;gica de adultos hembra de <i>Anopheles benarrochi </i> (Diptera: Culicidae) en Putumayo, Colombia. Biom&eacute;dica. 2001;21:351-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0120-4157201300010000600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>20. <b>Calle DA, Qui&ntilde;ones ML, Erazo H, Jaramillo N. </b> Morphometric discrimination of females of five species of <i>Anopheles </i> of the subgenus <i>Nyssorhynchus </i> from Southern and Northwest Colombia. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2002;97:1191-5. <a href="http://dx.doi.org/10.1590/S0074-02762002000800021" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1590/S0074-02762002000800021</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0120-4157201300010000600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. <b>Estrada D, Qui&ntilde;ones ML, Sierra D, Calle D, Ruiz F, Erazo H, <i>et al. </i></b> Utilidad de la morfolog&iacute;a de los huevos como un m&eacute;todo indirecto para identificar <i>Anopheles benarrochi </i> Gabaldon, Cova Garc&iacute;a &amp; Lopez, <i>Anopheles oswaldoi </i> (Peryassu) y <i>Anopheles rangeli </i> Gabaldon, Cova Garc&iacute;a &amp; Lopez, (Diptera:Culicidae) en Putumayo, Colombia. Biom&eacute;dica. 2003;23:388-95.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0120-4157201300010000600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>22. <b>Faran ME, Linthicum KJ. </b> A handbook of the Amazonian species of <i>Anopheles </i>( <i>Nyssorhynchus </i>) (Diptera, culicidae). Mosq Syst. 1981;13:1-81.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0120-4157201300010000600022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>23. <b>Su&aacute;rez MF, Qui&ntilde;ones ML, Fleming GA, Robayo M. </b> Gu&iacute;a introductoria a la morfolog&iacute;a de <i>Anopheles </i> y clave para determinaci&oacute;n de las principales especies de Colombia, DCD. Bogot&aacute;, D.C.: Ministerio de Salud; 1987. p. 43.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S0120-4157201300010000600023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>24. <b>Gonz&aacute;lez R, Carrejo N. </b> Introducci&oacute;n al estudio taxon&oacute;mico de <i>Anopheles </i>de Colombia – Claves taxon&oacute;micas y notas de distribuci&oacute;n. Cali: Universidad del Valle; 2007. p. 63.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S0120-4157201300010000600024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>25. <b>World Health Organization. </b> Manual on practical entomology in malaria. Geneva: WHO; 1975.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S0120-4157201300010000600025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>26. <b>Lehr MA, Kilpatrick CW, Wilkerson RC, Conn JE. </b> Cryptic species in the <i>Anopheles </i>( <i>Nyssorhynchus </i>) <i> albitarsis </i> (Diptera: Culicidae) complex: Incongruence between random amplified polymorphic DNA-polymerase chain reaction identification and analysis of mitochondrial DNA COI gene sequences. 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