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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Prevalencia de bacterias Gram negativas portadoras del gen bla KPC en hospitales de Colombia]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: KPC enzymes are carbapenemases with a great capability to disseminate and to cause epidemics. They are frequently associated with higher mortality rates and prolonged hospital stay. In Colombia, they have been progressively reported since 2007; however, its prevalence in hospitals is not known. Objective: To estimate the prevalence of bla KPC gene in hospitals. Methods and materials: The presence of bla KPC gene and its clonality were evaluated in clinical isolates of Enterobacteriacea and Pseudomonas aeruginosa in hospitalized patients. Results: Of the 424 isolates tested during the study period, 273 met eligibility criteria, and 31.1% were positive for bla KPC gene; after clonality adjustment, positivity was 12.8%. The bla KPC gene was more frequent in Klebsiella pneumonia, followed by P. aeruginosa and other Enterobacteriacea . Although intensive care units (ICU) provided the majority of the isolates, the bla KPC pattern was not more prevalent in ICUs than in other wards. The respiratory tract was the anatomic source with the highest prevalence. No seasonality was observed associated with the frequency of isolation of microorganisms carrying bla KPC gene. Conclusion: This study revealed a high prevalence of bla KPC gene in microorganisms isolated from different hospitals in Colombia. The extraordinary ability of bla KPC gene to spread, the difficulties for its diagnosis and the limited antibiotics available for its treatment pose the urgent need to strengthen epidemiological surveillance systems, and to timely adjust institutional policies for rational use of antibiotics in order to limit its dissemination to other institutions in the country.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[bacterias Gram negativas]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p>ART&Iacute;CULO ORIGINAL</p>     <p>doi: <a href="http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v34i0.1642" target="_blank">http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v34i0.1642</a></p>     <p><font size="4">    <center><b>Prevalencia de bacterias Gram negativas portadoras del gen <i>bla </i>KPC en hospitales de Colombia</b></center></font></p>     <p>    <center>Robinson Pacheco <sup>1</sup>, Lyda Osorio <sup>1,2</sup>, Adriana M. Correa <sup>1</sup>, Mar&iacute;a Virginia Villegas <sup>1</sup></center></p>     <p><sup>1</sup> <b></b>Centro Internacional de Entrenamiento e Investigaciones M&eacute;dicas, CIDEIM, Cali, Colombia </p>     <p><sup>2</sup> <b></b>Grupo de Epidemiolog&iacute;a y Salud Poblacional, Escuela de Salud P&uacute;blica, Facultad de Salud, Universidad del Valle, Cali, Colombia </p>     <p><b>Contribuci&oacute;n de los autores: </b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Robinson Pacheco: realizaci&oacute;n del estudio, recolecci&oacute;n de la informaci&oacute;n cl&iacute;nica y epidemiol&oacute;gica, realizaci&oacute;n de los an&aacute;lisis estad&iacute;sticos y redacci&oacute;n del manuscrito. </p>     <p>Lyda Osorio: participaci&oacute;n en el dise&ntilde;o del estudio, supervisi&oacute;n de la recolecci&oacute;n de informaci&oacute;n y del an&aacute;lisis estad&iacute;stico. </p>     <p>Adriana M. Correa: coordinaci&oacute;n de las actividades de laboratorio, desarrollo de la t&eacute;cnica molecular de PFGE. </p>     <p>Mar&iacute;a Virginia Villegas: participaci&oacute;n en el dise&ntilde;o y coordinaci&oacute;n general del estudio. </p> Todos los autores participaron en la revisi&oacute;n y correcci&oacute;n del manuscrito.</p>     <p>Recibido: 05/05/13; aceptado: 17/10/13</p> <hr size="1">     <p><b>Introducci&oacute;n. </b>Las enzimas carbapenemasas de tipo KPC tienen gran capacidad de diseminaci&oacute;n, son causantes de epidemias y se asocian a mayor mortalidad y estancia hospitalaria. En Colombia se han venido reportando cada vez m&aacute;s desde 2007, pero se desconoce la prevalencia hospitalaria. </p>     <p><b>Objetivo. </b> Estimar la prevalencia hospitalaria del gen <i>bla </i>KPC . </p>     <p><b>Materiales y m&eacute;todos. </b> Se evalu&oacute; la presencia del gen <i>bla </i>KPC y su 'clonalidad' en aislamientos de enterobacterias y <i>Pseudomonas aeruginosa </i>de pacientes hospitalizados. </p>     <p><b>Resultados. </b> De los 424 aislamientos evaluados durante el periodo de estudio, 273 cumplieron con criterios de elegibilidad, 31,1 % fue positivo para el gen <i>bla </i>KPC y, al ajustar por 'clonalidad', la positividad fue de 12,8 %. El gen <i>bla </i>KPC se encontr&oacute; con mayor frecuencia en <i>Klebsiella pneumoniae </i> seguido de <i>P. aeruginosa </i>y otras enterobacterias. A pesar de que la unidad de cuidados intensivos aport&oacute; el mayor n&uacute;mero de aislamientos, no se encontr&oacute; un patr&oacute;n m&aacute;s prevalente del gen <i>bla </i>KPC en las ellas que en las otras salas. El aparato respiratorio fue el sitio anat&oacute;mico de origen con la mayor prevalencia . No se present&oacute; estacionalidad en la frecuencia de los aislamientos portadores del gen <i>bla </i>KPC. </p>     <p><b>Conclusi&oacute;n. </b> Este estudio revel&oacute; la alta prevalencia del gen <i>bla </i>KPC <i></i>en diferentes microorganismos aislados en varias instituciones hospitalarias del pa&iacute;s. La extraordinaria capacidad de propagaci&oacute;n del gen <i>bla </i>KPC <i>, </i> las dificultades del diagn&oacute;stico y la limitada disponibilidad de antibi&oacute;ticos plantean la apremiante necesidad de fortalecer los sistemas de vigilancia epidemiol&oacute;gica y ajustar oportunamente las pol&iacute;ticas institucionales de uso racional de antibi&oacute;ticos con el fin de contener su diseminaci&oacute;n a otras instituciones de salud del pa&iacute;s. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Palabras clave: </b>bacterias Gram negativas, prevalencia, farmacorresistencia bacteriana, infecci&oacute;n hospitalaria, Colombia. </p>     <p>doi: <a href="http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v34i0.1642" target="_blank">http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v34i0.1642</a> </p> <hr size="1">     <p><font size="3"><b>Prevalence of Gram-negative bacteria harboring <i>bla KPC </i>gene in Colombian hospitals </b></font></p>     <p><b>Introduction: </b> KPC enzymes are carbapenemases with a great capability to disseminate and to cause epidemics. They are frequently associated with higher mortality rates and prolonged hospital stay. In Colombia, they have been progressively reported since 2007; however, its prevalence in hospitals is not known. <b></b></p>     <p><b>Objective: </b>To estimate the prevalence of <i>bla </i>KPC gene in hospitals. <b></b></p>     <p><b>Methods and materials: </b>The presence of <i>bla </i>KPC gene and its clonality were evaluated in clinical isolates of Enterobacteriacea and <i>Pseudomonas aeruginosa </i> in hospitalized patients. </p>     <p><b>Results: </b>Of the 424 isolates tested during the study period, 273 met eligibility criteria, and 31.1% were positive for <i>bla </i>KPC gene; after clonality adjustment, positivity was 12.8%. The <i>bla </i>KPC gene was more frequent in <i>Klebsiella pneumonia, </i>followed by <i>P. aeruginosa </i>and other <i>Enterobacteriacea </i>. Although intensive care units (ICU) provided the majority of the isolates, the <i>bla </i>KPC pattern was not more prevalent in ICUs than in other wards. The respiratory tract was the anatomic source with the highest prevalence. No seasonality was observed associated with the frequency of isolation of microorganisms carrying <i>bla </i>KPC gene. </p>     <p><b>Conclusion: </b>This study revealed a high prevalence of <i>bla </i>KPC <i></i>gene in microorganisms isolated from different hospitals in Colombia. The extraordinary ability of <i>bla </i>KPC <i></i>gene to spread, the difficulties for its diagnosis and the limited antibiotics available for its treatment pose the urgent need to strengthen epidemiological surveillance systems, and to timely adjust institutional policies for rational use of antibiotics in order to limit its dissemination to other institutions in the country. </p>     <p><b>Key words: </b> Gram-negative bacteria, prevalence; drug resistance, bacterial; cross infection, Colombia. </p>     <p>doi:<a href="http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v34i0.1642" target="_blank">http://dx.doi.org/10.7705/biomedica.v34i0.1642</a> </p>  <hr size="1">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las bacterias multirresistentes causan cerca de 60 % de todas las infecciones asociadas a la atenci&oacute;n en salud en los Estados Unidos (1,2). Esta cifra es superior en los pa&iacute;ses de bajos y medianos ingresos, y su impacto cl&iacute;nico y econ&oacute;mico se magnifica en las unidades de cuidados intensivos, convirti&eacute;ndose en una amenaza para la seguridad del paciente (3). Durante la &uacute;ltima d&eacute;cada, se ha reportado a nivel mundial un aumento sostenido en el porcentaje de bacterias Gram negativas que son resistentes a todas las familias de antibi&oacute;ticos y especialmente a los carbapenem (1,4,5). Para que una bacteria Gram negativa exprese un fenotipo resistente a los carbapenem, requiere de la combinaci&oacute;n de, al menos, dos mecanismos de resistencia, siendo la m&aacute;s frecuente la producci&oacute;n de enzimas y el cierre de porinas, lo cual, adem&aacute;s, le confiere a la bacteria resistencia a otros betalact&aacute;micos (6-8). </p>     <p>Las enzimas m&aacute;s relevantes en la resistencia a los carbapenem son las betalactamasas de tipo AmpC y las carbapenemasas (7,9,10), entre las que se encuentran las KPC, enzimas principalmente codificadas por el gen <i>bla </i>KPC, el cual generalmente se localiza en pl&aacute;smidos. La localizaci&oacute;n en dicho elemento gen&eacute;tico m&oacute;vil le confiere a las bacterias portadoras la capacidad de compartir esta informaci&oacute;n gen&eacute;tica con otras especies y familias de bacterias (11), facilitando su diseminaci&oacute;n 'clonal' (12) y geogr&aacute;fica (13). </p>     <p>Las KPC hidrolizan eficientemente penicilinas, cefalosporinas, monobact&aacute;micos y, menos eficientemente, las cefamicinas y los carbapenem (14,15). Desde su primera detecci&oacute;n en <i>Klebsiella pneumoniae </i>en 1996 (16), las KPC se han reportado como causantes de epidemias dentro y fuera de Estados Unidos (17-23). En Colombia, el primer reporte de una KPC se hizo en <i>K. pneumoniae </i>en 2006 (14) y en 2007 se report&oacute; por primera vez en el mundo en <i>Pseudomonas aeruginosa </i> (17). Desde entonces y hasta el 2010, se report&oacute; en varias ciudades de Colombia; de igual manera, se ha detectado su diseminaci&oacute;n a casi todas las enterobacterias y a <i>P. aeruginosa </i>(14,17). A pesar de los m&uacute;ltiples reportes aparecidos en el pa&iacute;s, se desconoce la prevalencia de bacterias Gram negativas portadoras de KPC en las instituciones hospitalarias del pa&iacute;s. </p>     <p>Una de las razones para este desconocimiento es la limitaci&oacute;n que tienen los laboratorios de microbiolog&iacute;a para su detecci&oacute;n rutinaria, ya que estas bacterias pueden expresar fenotipos variables y mostrarse resistentes a las cefalosporinas pero sensibles a los carbapenem. </p>     <p>Para su confirmaci&oacute;n microbiol&oacute;gica se ha utilizado el test de Hodge modificado (24), que ha mostrado excelente sensibilidad y especificidad para <i>K. pneumoniae </i>, pero no para los dem&aacute;s microorganismos. Para la confirmaci&oacute;n definitiva de KPC es necesario el uso de herramientas moleculares como la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa ( <i>Polymerase Chain Reaction </i>, PCR), la cual es costosa y no est&aacute; disponible en todos los laboratorios de microbiolog&iacute;a cl&iacute;nica de los hospitales del pa&iacute;s. </p>     <p>En este estudio se determin&oacute; la prevalencia de bacterias Gram negativas portadoras del gen <i>bla </i>KPC en seis instituciones hospitalarias de alta complejidad en Colombia. El conocimiento de esta informaci&oacute;n contribuir&aacute; a tomar decisiones terap&eacute;uticas adecuadas acordes con la capacidad microbiolog&iacute;a de cada una de las instituciones participantes, y a generar conocimiento sobre la magnitud de la diseminaci&oacute;n de las KPC en el entorno hospitalario del pa&iacute;s. </p>     <p><b>Materiales y m&eacute;todos </b></p>     <p><b><i>Dise&ntilde;o y poblaci&oacute;n de estudio </i></b></p>     <p>Se realiz&oacute; un estudio observacional de corte transversal entre el 1&deg; de julio de 2009 y el 30 junio de 2010 en seis instituciones hospitalarias p&uacute;blicas y privadas de alta complejidad en cinco ciudades de Colombia. Todas las instituciones participantes contaban con un comit&eacute; de infecciones activo y con un sistema automatizado de identificaci&oacute;n microbiol&oacute;gica. </p>     <p>Se incluyeron en el estudio todos los aislamientos de <i>P. aeruginosa </i>resistentes a los carbapenem (imipenem y meropenem) y las enterobacterias resistentes al cefepime o a los carbapenem (imipenem, meropenem y ertapenem), seg&uacute;n los criterios establecidos por el <i>Clinical and Laboratory Standards Institute </i>(CLSI) de 2008 (25). Los aislamientos proven&iacute;an de pacientes de cualquier edad y sexo, sin importar la sala de hospitalizaci&oacute;n o el diagn&oacute;stico de ingreso. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se excluyeron todos los aislamientos provenientes de urgencias y consulta externa o de cualquier servicio que no fuera hospitalizaci&oacute;n, as&iacute; como aquellos en los que la identificaci&oacute;n del microorganismo en el laboratorio de referencia (CIDEIM) no coincidiera con la reportada por el laboratorio de microbiolog&iacute;a de las instituciones participantes ni con los aislamientos contaminados. </p>     <p>La confidencialidad de las instituciones se conserv&oacute; mediante un c&oacute;digo alfanum&eacute;rico. Este estudio fue aprobado por los comit&eacute;s de &eacute;tica en investigaci&oacute;n en humanos del CIDEIM, de la Universidad del Valle y de cada una de las instituciones participantes. </p>     <p><b><i>Procedimientos </i></b></p>     <p>Entre los procesos de rutina, los laboratorios de microbiolog&iacute;a de las instituciones participantes identificaron los microorganismos de inter&eacute;s que cumplieran con los criterios de elegibilidad. De cada cultivo se realiz&oacute; un repique puro en un medio de transporte con carb&oacute;n activado (AIMES); posteriormente estos medios inoculados fueron almacenados a temperatura de laboratorio (25 &deg;C) y remitidos semanalmente al CIDEIM. El embalaje y transporte se realiz&oacute; seg&uacute;n las recomendaciones de la IATA. </p>     <p>En el CIDEIM se verific&oacute; que los aislamientos cumplieran con los criterios de elegibilidad y se reconfirm&oacute; la identificaci&oacute;n de familia y especie utilizando Vitek 2 &trade; (bioMerieux, France). La confirmaci&oacute;n del perfil de sensibilidad a los antibi&oacute;ticos se realiz&oacute; por el m&eacute;todo de microdiluci&oacute;n en caldo (Sensititre panels &trade; ) (TREK Diagnostic Systems, USA). Cuando el perfil de sensibilidad reportado por el CIDEIM no coincidi&oacute; con el reportado por las instituciones, se utiliz&oacute; E-test &trade;, siguiendo las recomendaciones del fabricante (BioMerieux, France) para resolver dichas incongruencias. </p>     <p>La presencia del gen <i>bla </i>KPC se determin&oacute; por medio de PCR seg&uacute;n el protocolo de Yigit <i>, et al. </i>(16). Se prepar&oacute; una suspensi&oacute;n de una colonia en agua ultrapura y se us&oacute; 1 µ l como plantilla para la reacci&oacute;n de PCR. La reacci&oacute;n final de 25 µ l conten&iacute;a 10 pmol de cada iniciador, 10 mM de dNTP, 1,5 µ M MgCl 2, y 2,5 U de ADN polimerasa <i>taq </i>preparada en tamp&oacute;n de reacci&oacute;n 5X. Los par&aacute;metros utilizados para la reacci&oacute;n fueron: desnaturalizaci&oacute;n a 95 &deg;C por cinco minutos y 30 ciclos de desnaturalizaci&oacute;n (95 &deg;C por 1 minuto), alineaci&oacute;n (52 &deg;C por 1 minuto), extensi&oacute;n (72 &deg;C por 1 minuto). El producto de PCR fue visualizado utilizando un gel de agarosa al 1 % y el producto final (1.100 pb) con Sybr safe &trade; (Invitrogen, Life Techonxologies, USA) bajo luz UV, utilizando para ello el sistema Gel-doc &trade; (Bio-Rad Laboratories, USA). </p>     <p>La relaci&oacute;n 'clonal' de los aislamientos portadores del gen <i>bla </i>KPC se estableci&oacute; usando electroforesis de campos pulsados ( <i>Pulsed Field Gel Electro-phoresis </i>, PFGE). Para los moldes de agarosa de bajo punto de fusi&oacute;n (2 %), se utiliz&oacute; una suspensi&oacute;n celular de tamp&oacute;n CSB (100 mM Tris, 100 mM EDTA); los moldes fueron sometidos a restricci&oacute;n con <i>Xba </i>I y el ADN digerido se corri&oacute; durante dos horas en un gel de agarosa al 1 %, usando un Chef Mapper &trade; (BioRad Laboratories, USA) a 14 &ordm;C y 6 v/cm con pulsos de 2,16 s y 63,8 s por 19 horas. Para la visualizaci&oacute;n de los geles se utiliz&oacute; Sybr safe &trade; (Invitrogen, Life Techonologies, USA). </p>     <p>Para el an&aacute;lisis de los resultados obtenidos por PFGE se utiliz&oacute; el <i>software </i> Fingerprinting II &trade; (Bio-Rad Laboratories, USA) y el coeficiente de Dice para el an&aacute;lisis de similitud. Se consideraron cepas 'clonalmente' relacionadas aquellas que compart&iacute;an m&aacute;s de 75 % de similitud (26); la comparaci&oacute;n de las cepas se realiz&oacute; a trav&eacute;s del algoritmo UPGMA ( <i>Unweighted Pair Group Method </i><i>using Arithmetic </i><i>Averages </i>) (27). </p>     <p><b><i>An&aacute;lisis </i></b></p>     <p>El manejo de los datos y los an&aacute;lisis estad&iacute;sticos se realizaron con el <i>software </i> Stata 10 &trade; (Stata Corp, College Station, TX, USA). La cobertura del muestreo se determin&oacute; como el n&uacute;mero de aislamientos recibidos en el CIDEIM sobre el total de aislamientos elegibles por cada instituci&oacute;n participante seg&uacute;n los registros microbiol&oacute;gicos analizados con el <i>software </i> WHONET 5,4 (28). Este an&aacute;lisis tuvo en cuenta solo el primer aislamiento de cada paciente. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La prevalencia de microorganismos portadores del gen <i>bla </i>KPC, se calcul&oacute; como una proporci&oacute;n con su correspondiente intervalo de confianza (IC) de 95 %, utilizando como numerador el n&uacute;mero de aislamientos con resultado positivo para el gen <i>bla </i>KPC y como denominador el n&uacute;mero de aislamientos que fueron evaluados en el CIDEIM. Esta proporci&oacute;n se discrimin&oacute; por microorganismo, instituci&oacute;n, salas de hospita-lizaci&oacute;n, y en todos los casos se reportaron los resultados crudos y ajustados por 'clonalidad', tomando como un solo aislamiento a todos los integrantes del mismo clon. </p>     <p><b>Resultados </b></p>     <p>De los 618 aislamientos esperados seg&uacute;n los registros microbiol&oacute;gicos de las instituciones en WHONET (<a href="#figura1">figura 1</a>), los cuales correspond&iacute;an a 381 enterobacterias y 237 <i>P. aeruginosa, </i> se recibieron en el CIDEIM 424 (68,7 %) aislamientos, de los cuales, 242 (57 %) correspondieron a enterobacterias y 183 (43 %) a <i>P. aeruginosa. </i>El aporte de aislamientos por instituci&oacute;n oscil&oacute; entre 3,3 y 39,1 % (<a href="#cuadro1">cuadro 1</a>) con una mediana de 12,1 %; de estas, 216 (50,8 %) proven&iacute;an de las unidades de cuidados intensivos, 37 (8,7 %), de unidades de cuidados intermedios y 172 (40,4 %) de salas de hospitalizaci&oacute;n general. </p>     <p>    <center> <a name="figura1"><img src="img/revistas/bio/v34s1/v34s1a10i1.jpg"></a></center></p>      <p>    <center>   <a name="cuadro1"><img src="img/revistas/bio/v34s1/v34s1a10t1.gif"></a>     </center></p>     <p>El cumplimiento de las instituciones con el env&iacute;o de aislamientos se vio afectado por cambios en el personal del laboratorio, por el horario nocturno y festivo y por el descarte accidental de los aislamientos. Se excluy&oacute; 34,8 % (n=151) de los aislamientos recibidos: 47 (31,1 %) de <i>P. aeruginosa </i> y 104 (68,8 %) de enterobacterias, 38 (25,1 %) por ser aislamientos que se enviaron por duplicado, 36 (23,8 %) por ser aislamientos contaminados, 23 (15,2 %) por ser sensibles a los antibi&oacute;ticos marcadores, 23 (15,5 %) porque no fueron viables, 20 (13,2 %) por otras causas y 11 (7,2 %) por discrepancias en la identificaci&oacute;n de la especie o el perfil de sensibilidad. </p>      <p>Finalmente se aceptaron y procesaron 273 aislamientos cuyo fenotipo frente a los carba-penem o al cefepime vari&oacute; desde muy sensibles (=0,5 &micro;g/L: 28 aislamientos) hasta muy resistentes (=125 &micro;g/L: 14 aislamientos) (<a href="#cuadro2">cuadro 2</a>). La distribuci&oacute;n por grupo de microorganismo fue: 136 (49,8 %) de <i>P. aeruginosa </i>, 85 (31,1 %) de <i> K. pneumoniae </i> y 52 (19 %) de otras enterobacterias. <i>P. aeruginosa </i> y <i>K. pneumoniae </i>fueron los microorganismos m&aacute;s frecuentes, con excepci&oacute;n de una instituci&oacute;n que aport&oacute; un mayor n&uacute;mero de aislamientos de <i>Enterobacter. </i>Del grupo de las enterobacterias, <i>Enterobacter aerogenes </i>y <i>Morganella morganii </i>fueron los &uacute;nicos microorganismos a los cuales no se les encontr&oacute; el gen <i>bla </i>KPC <i>, </i>mientras que todos los aislamientos de <i>Serratia marcescens </i>fueron positivos para este gen <i>. </i>De los 19 aislamientos de <i>K. pneumoniae </i>portadores del gen <i>bla </i>KPC <i></i>que fueron sensibles a al cefepime (CIM=8 &micro;g/L), 11 expresaron resistencia al ertapenem (nueve aislamientos con CIM=32 &micro;g/L y dos con CIM de 8 &micro;g/L); &uacute;nicamente cinco de estos aislamientos presentaron resistencia &uacute;nica al ertapenem con CIM=32 &micro;g/L; tres presentaron resistencia concomitante al imipinem con CIM de 16 &micro;g/L; dos aislamientos al meropenem con CIM=32 &micro;g/L y un aislamiento fue resistente a los tres carbapenem con CIM=32 &micro;g/L. </p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center>   <a name="cuadro2"><img src="img/revistas/bio/v34s1/v34s1a10t2.gif"></a>     </center></p>     <p>De los 273 aislamientos, 85 fueron positivos para el gen <i>bla </i>KPC, lo que indica una prevalencia global de 31,1 % (IC 95%, 26 - 37), mientras que por instituci&oacute;n la prevalencia oscil&oacute; entre 2 % (IC 95%, 0,05 - 12) y 55 % (IC 95%, 41 - 69) (<a href="#cuadro3">cuadro 3</a>). Al realizar el an&aacute;lisis de clonalidad por grupo de microorganismo, el n&uacute;mero de aislamientos se ajust&oacute; para <i>K. pneumoniae </i>en 22 aislamientos, para otras enterobacterias en 10 aislamientos y para <i>P. aeruginosa </i>en cinco aislamientos. Los dendrogramas que muestran la 'clonalidad' por grupo de microorganismos se presentan en la <a href="#figura2">figura 2</a>. Con estos an&aacute;lisis se ajust&oacute; la prevalencia general por 'clonalidad' a 12,8 % (IC 95%, 10 - 19). </p>     <p>    <center>   <a name="cuadro3"><img src="img/revistas/bio/v34s1/v34s1a10t3.gif"></a>     </center></p> 	    <p>    <center> <a name="figura2"><img src="img/revistas/bio/v34s1/v34s1a10g1.jpg"></a></center></p>     <p>La mayor positividad (prevalencia) por microorganismo correspondi&oacute; a <i>K. pneumoniae </i> con 19,1 %, seguido de <i>P. aeruginosa </i> con 16,5 % y otras enterobacterias con 15 %. No se observ&oacute; un patr&oacute;n en la prevalencia discriminada por salas y unidades de cuidados intensivos en las instituciones participantes (<a href="#cuadro3">cuadro 3</a>). De todos los aislamientos positivos para KPC, las unidades pedi&aacute;tricas y neonatales de cuidados intensivos representaron 19 %, mientras que las unidades especializadas de cuidados intensivos aportaron 11 % y las salas de cirug&iacute;a y trauma, 8 %. </p>     <p>Los sistemas anat&oacute;micos en los que con mayor frecuencia se obtuvieron aislamientos positivos para KPC fueron el respiratorio con 11 (12,9 %) aislamientos, el sangu&iacute;neo con 14 (16,5 %), el urinario con 23 (27 %) y el gastrointestinal con 28 (32,9 %) aislamientos. En promedio, se aceptaron 23 aislamientos mensuales por instituci&oacute;n y siete en promedio resultaron positivos para el gen <i>bla </i>KPC cada mes; abril fue el mes en el que se report&oacute; el mayor n&uacute;mero de aislamientos positivos con 18, mientras que enero y septiembre presentaron el menor n&uacute;mero (<a href="#figura3">figura 3</a>).</p>     <p>    <center> <a name="figura3"><img src="img/revistas/bio/v34s1/v34s1a10g2.jpg"></a></center></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Discusi&oacute;n </b></p>     <p>Los resultados de este estudio proveen una primera estimaci&oacute;n sobre la magnitud y la distribuci&oacute;n de microorganismos portadores del gen <i>bla </i>KPC en seis hospitales colombianos de alta complejidad; adem&aacute;s, se demuestra la importancia de incorporar a los sistemas de vigilancia epidemiologia hospitalaria informaci&oacute;n molecular que les permita a las instituciones de salud hacer seguimiento a los cambios y tendencias de los mecanismos de resistencia bacteriana de mayor impacto cl&iacute;nico, con el objetivo de hacer ajustes oportunos a la pol&iacute;tica institucional de uso racional de antibi&oacute;ticos. </p>     <p>La prevalencia global de <i>bla </i>KPC fue de 31,1 % y en las instituciones oscil&oacute; entre 2 y 55 %. Con el fin de no sobrestimar dicha prevalencia por la presencia de brotes de bacterias portadoras del <i>bla </i>KPC, se ajust&oacute; por 'clonalidad'; la prevalencia global en las instituciones bajo estudio en Colombia fue superior a la reportada en 24 % por Bratu <i>, et al. </i>, en un hospital de Nueva York durante un brote de <i>K. pneumoniae, </i> ocasi&oacute;n en la cual no se evalu&oacute; la 'clonalidad' de los microorganismos (15). </p>     <p>Tanto la prevalencia global de <i>K. pneumoniae </i>(17 %) como la ajustada (8 %) ubicaron a este grupo de microorganismos como el de mayor n&uacute;mero de aislamientos positivos para el gen <i>bla </i>KPC, seguido por el de <i>P. aeruginosa, </i>cuya prevalencia global fue de 13 % y por el de las enterobacterias, cuya prevalencia ajustada fue de 1,8 %. </p>     <p>El elevado n&uacute;mero de aislamientos positivos de <i>P. aeruginosa </i> sugiere una acelerada adquisici&oacute;n del gen <i>bla </i>KPC, sobre todo si se tiene en cuenta que el primer reporte de KPC en <i>P. aeruginosa </i>en el mundo se hizo en Colombia en 2007 en un solo hospital (16) y que s&oacute;lo tres a&ntilde;os despu&eacute;s nuestro estudio lo reporta en cinco ciudades capitales, Cali, Medell&iacute;n, Barranquilla, Ibagu&eacute; y Pereira, distantes entre s&iacute;. </p>     <p>Algunos estudios moleculares previos sobre el entorno gen&eacute;tico y la ubicaci&oacute;n del gen <i>bla </i>KPC en el transpos&oacute;n Tn <i>4401 </i>demuestran que por su alta inserci&oacute;n sin blanco espec&iacute;fico en el cromosoma bacteriano, este muestra una gran diseminaci&oacute;n entre bacterias de diferente especie y familia. Adem&aacute;s, se ha informado que el Tn <i>4401 </i> se ha diseminado entre pa&iacute;ses y regiones por medio de un clon muy exitoso, el ST 258 (12). La presencia de este clon en Colombia podr&iacute;a explicar, al igual que en otras regiones del mundo, la r&aacute;pida diseminaci&oacute;n del gen <i>bla </i>KPC en las instituciones del pa&iacute;s (12,13,29). Este transpos&oacute;n est&aacute; asociado a otros mecanismos de resistencia, por lo cual las bacterias que lo poseen son resistentes a m&uacute;ltiples clases de antibi&oacute;ticos. </p>     <p>Aunque <i>Escherichia coli </i>es la bacteria m&aacute;s frecuentemente aislada en las instituciones de salud del pa&iacute;s, no fue la m&aacute;s prevalente como portadora del gen <i>bla </i>KPC en ninguna de las instituciones participantes; este hallazgo reafirma que <i>K. pneumoniae </i>tiene mayor afinidad por el transpos&oacute;n Tn <i>4401 </i>, lo cual es un factor determinante de la din&aacute;mica de diseminaci&oacute;n de las KPC. </p>     <p>En las unidades de cuidados intensivos se encuentran los pacientes con las condiciones cl&iacute;nicas m&aacute;s serias y con mayor riesgo de adquirir infecciones por bacterias multirresistentes, siendo, entonces, el servicio hospitalario con el mayor uso de antibi&oacute;ticos de amplio espectro como los carbapenem; sin embargo, y en contra de lo esperado, no se encontr&oacute; un patr&oacute;n m&aacute;s prevalente de KPC en las unidades de cuidados intensivos que en las salas de hospitalizaci&oacute;n general. </p>     <p>Este hallazgo sugiere que las bacterias Gram negativas portadoras del gen <i>bla </i>KPC podr&iacute;an encontrarse en salas de hospitalizaci&oacute;n general debido al uso de antibi&oacute;ticos de menor espectro que los carbapenem; sin embargo, se requieren estudios longitudinales sobre el uso de antibi&oacute;ticos y sobre la epidemiologia molecular del <i>bla </i>KPC para identificar la din&aacute;mica de diseminaci&oacute;n del gen en las instituciones de salud. Esto ayudar&iacute;a a entender si la diseminaci&oacute;n es un problema de presi&oacute;n selectiva frente a los antibi&oacute;ticos, o si se debe a fallas en las barreras de contacto y el lavado de manos, o a una combinaci&oacute;n de todas las anteriores. Este conocimiento ayudar&iacute;a a establecer prioridades en las acciones de control. </p>     <p>La prevalencia estimada refleja la situaci&oacute;n de seis instituciones en ciudades del pa&iacute;s, pero no es extrapolable a otras instituciones o ciudades cuyas condiciones de microbiolog&iacute;a pueden ser diferentes de acuerdo con el tipo de pacientes que reciben y el patr&oacute;n de uso de antibi&oacute;ticos. Sin embargo, los resultados indican que las KPC se diseminan r&aacute;pidamente en las instituciones de diferentes regiones del pa&iacute;s y su contenci&oacute;n debe ser una prioridad. Los criterios de inclusi&oacute;n del estudio permitieron la participaci&oacute;n y representaci&oacute;n de pacientes de ambos sexos, de todas las edades y estratos socioecon&oacute;micos, de diversas condiciones cl&iacute;nicas y de diferentes regiones de la geograf&iacute;a colombiana. Con los criterios de exclusi&oacute;n se control&oacute; el posible impacto de sobrestimar o subestimar los resultados y con la duraci&oacute;n de un a&ntilde;o se control&oacute; la estacionalidad tanto del evento bajo estudio como de los eventos asociados. La captaci&oacute;n de los aislamientos bacterianos sospechosos de portar el gen <i>bla </i>KPC a trav&eacute;s de perfiles de resistencia al cefepime o cualquier carbapenem permiti&oacute; la diversidad de aislamientos; adem&aacute;s, el estudio de la relaci&oacute;n 'clonal' de los aislamientos positivos por PFGE garantiz&oacute; que los resultados obtenidos no estuvieran influenciados por brotes hospitalarios. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La principal limitaci&oacute;n de este estudio radica en que solo se recibieron en el CIDEIM 44,8 % de los aislamientos esperados; sin embargo, no hay evidencia que demuestre que el env&iacute;o de estos aislamientos estuviera sesgado y sobrestimara o subestimara los datos de prevalencia encontrados en el estudio. </p>     <p>En conclusi&oacute;n, este estudio permiti&oacute; revelar la alta prevalencia del gen <i>bla </i>KPC <i></i>en varias instituciones hospitalarias del pa&iacute;s y en diferentes microorganismos. La extraordinaria capacidad de propagaci&oacute;n del gen <i>bla </i>KPC <i>, </i>las dificultades del diagn&oacute;stico para hacer una identificaci&oacute;n tem prana y la limitada disponibilidad de antibi&oacute;ticos plantean la apremiante necesidad de fortalecer los sistemas de vigilancia epidemiol&oacute;gica y las pol&iacute;ticas institucionales de uso racional de antibi&oacute;ticos con el fin de contener la diseminaci&oacute;n de bacterias portadoras de KPC a todas las instituciones de salud del pa&iacute;s. <b></b></p>     <p>    <center><b>Agradecimientos </b></center></p>     <p>Agradecemos a todos los integrantes de los comit&eacute;s de infecciones y de los laboratorios de microbiolog&iacute;a de las instituciones participantes por su valiosa colaboraci&oacute;n en el env&iacute;o de los aislamientos y por facilitar la informaci&oacute;n cl&iacute;nica y microbiol&oacute;gica. De igual manera, agradecemos a las bacteri&oacute;logas Elsa de la Cadena y Natalia Rosas y a las bi&oacute;logas moleculares Mar&iacute;a Fernanda Mojica y Laura Rojas por su trabajo en la identificaci&oacute;n y determinaci&oacute;n de los perfiles moleculares de los aislamientos, as&iacute; como a todo el personal del &aacute;rea de resistencia bacteriana del CIDEIM, y a Mauricio P&eacute;rez y Beatriz E. Ferro, por sus valiosos aportes en el desarrollo de este proyecto. <b></b></p>     <p>    <center><b>Conflicto de intereses </b></center></p>     <p>Mar&iacute;a Virginia Villegas recibe fondos de la industria farmac&eacute;utica para investigaci&oacute;n. Los dem&aacute;s autores declaran no tener conflicto de intereses. <b></b></p>     <p>    <center><b>Financiaci&oacute;n </b></center></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Esta investigaci&oacute;n fue financiada por el Departamento Administrativo de Ciencia, Tecnolog&iacute;a e Innovaci&oacute;n - Colciencias (contrato 566-2008), y el CIDEIM.</p>     <p>Correspondencia:    Robinson Pacheco, Centro Internacional de Entrenamiento e Investigaciones M&eacute;dicas, CIDEIM, Carrera 125 N&deg;19-225, Cali, Colombia    Tel&eacute;fono: (572) 555 2164; fax: (572) 555 2638  <a href="mailto:robinson.pacheco.73@gmail.com">robinson.pacheco.73@gmail.com</a></p>     <p>    <center><b>Referencias </b></center></p>     <!-- ref --><p>1. <b>Deshpande LM, Jones RN, Fritsche TR, Sader HS. </b>Occurrence and characterization of carbapenemase- producing Enterobacteriaceae: Report from the SENTRY Antimicrobial Surveillance Program (2000-2004). Microb Drug Resist. 2006;12:223-30. <a href="http://dx.doi.org/10.1089/mdr.2006.12.223" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1089/mdr.2006.12.223</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-4157201400050001000001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. <b>Jones RN. </b>Global epidemiology of antimicrobial resistance among community-acquired and nosocomial pathogens: A five-year summary from the SENTRY Antimicrobial Surveillance Program (1997-2001). Semin Respir Crit Care Med. 2003;24:121-34. <a href="http://dx.doi.org/1010.1055/s-2003-37923" target="_blank">http://dx.doi.org/1010.1055/s-2003-37923</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-4157201400050001000002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. <b>Walsh TR. </b>Clinically significant carbapenemases: An update. Curr Opin Infect Dis. 2008;21:367-71. <a href="http://dx.doi.org/10.1097/QCO.0b013e328303670b" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1097/QCO.0b013e328303670b</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-4157201400050001000003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. <b>Villegas MV, Blanco MG, Sifuentes-Osornio J, Rossi F. </b>Increasing prevalence of extended-spectrum-beta- lactamase among Gram-negative bacilli in Latin America-2008 update from the Study for Monitoring Antimicrobial Resistance Trends (SMART). Braz J Infect Dis. 2011;15:34-9. <a href="http://dx.doi.org/10.1590/S1413-86702011000100007" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1590/S1413-86702011000100007</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-4157201400050001000004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. <b>Brice&ntilde;o DF, Correa A, Valencia C, Torres JA, Pacheco R, Montealegre MC, <i>et al </i>. </b> Actualizaci&oacute;n de la resistencia a los antimicrobianos de bacilos Gram negativos aislados en hospitales nivel III de Colombia, a&ntilde;os 2006, 2007 y 2008. Biomedica. 2010;30:371-81.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-4157201400050001000005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>6. <b>Tafur JD, Torres JA, VIllegas MV. </b>Mecanismos de resistencia a los antibi&oacute;ticos en bacterias Gram negativas. Infectio. 2008;12:217-26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-4157201400050001000006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>7. <b>Bush K, Jacoby GA. </b>Updated functional classification of beta-lactamases. Antimicrob Agents Chemother. 2010;54: 969-76. <a href="http://dx.doi.org/10.1128/AAC.01009-09" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1128/AAC.01009-09</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-4157201400050001000007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. <b>Cuzon G, Naas T, Truong H, Villegas MV, Wisell KT, Carmeli Y, <i>et al </i>. </b> Worldwide diversity of <i>Klebsiella pneumoniae </i> that produce beta-lactamase <i>bla </i>KPC -2 gene. Emerg Infect Dis. 2010;16:1349-56. <a href="http://dx.doi.org/10.3201/eid1609.091389" target="_blank">http://dx.doi.org/10.3201/eid1609.091389</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-4157201400050001000008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. <b>Su&aacute;rez CJ, Kattan JN, Guzm&aacute;n AM, VIllegas MV. </b>Mecanismos de resistencia a carbapenems en <i>P. aeruginosa, </i><i>Acinetobacter </i> y <i>Enterobacteriaceae </i> y estrategias para su prevenci&oacute;n y control. Infectio. 2006;10:85-93.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-4157201400050001000009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>10. <b>Maya JJ, Ruiz SJ, Blanco VM, Gotuzzo E, Guzm&aacute;n-Blanco M, Labarca J, <i>et al </i>. </b>Currents status of carbapenemases in Latin America. Expert Rev Anti Infect Ther. 2013;11:657-67. <a href="http://dx.doi.org/10.1586/14787210.2013.811924" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1586/14787210.2013.811924</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-4157201400050001000010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. <b>Gootz TD, Lescoe MK, Dib-Hajj F, Dougherty BA, He W, Della-Latta P, <i>et al </i>. </b> Genetic organization of transposase regions surrounding <i>bla </i>KPC carbapenemase genes on plasmids from <i>Klebsiella </i> strains isolated in a New York City hospital. Antimicrob Agents Chemother. 2009;53:1998-2004. <a href="http://dx.doi.org/10.1128/AAC.01355-08" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1128/AAC.01355-08</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-4157201400050001000011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. <b>Naas T, Cuzon G, Villegas MV, Lartigue MF, Quinn JP, Nordmann P. </b> Genetic structures at the origin of acquisition of the beta-lactamase <i>bla </i> KPC gene. Antimicrob Agents Chemother. 2008;52:1257-63 . <a href="http://dx.doi.org/10.1128/AAC.01451-07" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1128/AAC.01451-07</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-4157201400050001000012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. <b>Kitchel B, Rasheed JK, Patel JB, Srinivasan A, Navon-Venezia S, Carmeli Y, <i>et al </i>. </b> Molecular epidemiology of KPC-producing <i>Klebsiella pneumoniae </i> isolates in the United States: Clonal expansion of multilocus sequence type 258. Antimicrob Agents Chemother. 2009;53:3365-70. <a href="http://dx.doi.org/10.1128/AAC.00126-09" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1128/AAC.00126-09</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0120-4157201400050001000013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. <b>Villegas MV, Lolans K, Correa A, Su&aacute;rez CJ, L&oacute;pez JA, Vallejo M, <i>et al </i>. </b>First detection of the plasmid-mediated class A carbapenemase KPC-2 in clinical isolates of <i>Klebsiella pneumoniae </i> from South America. Antimicrob Agents Chemother. 2006;50:2880-2. <a href="http://dx.doi.org/1010.1128/AAC.00186-06" target="_blank">http://dx.doi.org/1010.1128/AAC.00186-06</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-4157201400050001000014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. <b>Livermore DM. </b>The impact of carbapenemases on antimicrobial development and therapy. Curr Opin Investig Drugs. 2002;3:218-24.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0120-4157201400050001000015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>16. <b>Yigit H, Queenan AM, Anderson GJ, Domenech-S&aacute;nchez A, Biddle JW, Steward CD, <i>et al </i>. </b> Novel carbapenem-hydrolyzing beta-lactamase, KPC-1, from a carbapenem-resistant strain of <i>Klebsiella pneumoniae </i>. Antimicrob Agents Chemother. 2001;45:1151-61. <a href="http://dx.doi.org/10.1128/ AAC.45.4.1151-1161.2001" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1128/ AAC.45.4.1151-1161.2001</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0120-4157201400050001000016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. <b>Villegas MV, Lolans K, Correa A, Kattan JN, L&oacute;pez JA, Quinn JP. </b>First identification of <i>Pseudomonas </i><i>aeruginosa </i> isolates producing a KPC-type carbapenem-hydrolyzing beta-lactamase. Antimicrob Agents Chemother. 2007;51:1553-5. <a href="http://dx.doi.org/10.1128/AAC.01405-06" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1128/AAC.01405-06</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0120-4157201400050001000017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. <b>Bratu S, Landman D, Haag R, Recco R, Eramo A, Alam M, <i>et al </i>. </b> Rapid spread of carbapenem-resistant <i>Klebsiella pneumoniae </i> in New York City: A new threat to our antibiotic armamentarium. Arch Intern Med. 2005;27:1430-5. <a href="http://dx.doi.org/10.1001/archinte.165.12.1430" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1001/archinte.165.12.1430</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0120-4157201400050001000018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. <b>Bratu S, Mooty M, Nichani S, Landman D, Gullans C, Pettinato B, <i>et al </i>. </b> Emergence of KPC-possessing <i>Klebsiella pneumoniae </i> in Brooklyn, New York: Epidemiology and recommendations for detection. Antimicrob Agents Chemother. 2005;49:3018-20. <a href="http://dx.doi.org/10.1128/AAC.49.7.3018-3020.2005" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1128/AAC.49.7.3018-3020.2005</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0120-4157201400050001000019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. <b>Nordmann P, Cuzon G, Naas T. </b>The real threat of <i>Klebsiella pneumoniae </i> carbapenemase-producing bacteria. Lancet Infect Dis. 2009;9:228-36. <a href="http://dx.doi.org/10.1016/S1473-3099(09)70054-4" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1016/S1473-3099(09)70054-4</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0120-4157201400050001000020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. <b>Livermore DM, Hope R, Brick G, Lillie M, Reynolds R. </b> BSAC Working Parties on Resistance Surveillance. Non- susceptibility trends among <i>Enterobacteriaceae </i> from bacteraemias in the UK and Ireland, 2001-06. J Antimicrob Chemother. 2008;62 (Suppl 2):ii41-54. <a href="http://dx.doi.org/10.1093/jac/dkn351" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1093/jac/dkn351</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0120-4157201400050001000021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22. <b>Dortet L, Radu I, Gautier V, Blot F, Chachaty E, Arlet G. </b>Intercontinental travels of patients and dissemination of plasmid-mediated carbapenemase KPC-3 associated with OXA-9 and TEM-1. J Antimicrob Chemother. 2008;61:455-7. <a href="http://dx.doi.org/10.1093/jac/dkm455" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1093/jac/dkm455</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0120-4157201400050001000022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. <b>Naas T, Nordmann P, Vedel G, Poyart C. </b>Plasmid-mediated carbapenem-hydrolyzing beta-lactamase KPC in a <i>Klebsiella pneumoniae </i> isolate from France. Antimicrob Agents Chemother. 2005;49:4423-4. <a href="http://dx.doi.org/10.1128/AAC.49.10.4423-4424.2005" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1128/AAC.49.10.4423-4424.2005</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0120-4157201400050001000023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24. <b>Lee K, Kim CK, Yong D, Jeong SH, Yum JH, Seo YH, <i>et al </i>. </b> Improved performance of Modified Hodge test with Mac Conkey agar 250 for screening of carbapenemase – producing Gram-negative bacilli. J Microbiol Methods. 2010;32:149-52. <a href="http://dx.doi.org/10.1016/j.mimet.2010.08.010" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1016/j.mimet.2010.08.010</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0120-4157201400050001000024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25. <b>Clinical Laboratory Standards Institute. </b> Performance standards for antimicrobial susceptibility testing, eighteenth informational supplement. 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