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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[El adipocito en el laboratorio: historia, perspectivas y reporte de experiencia]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: The human adipose tissue is composed of different cell types. It has been subject of several studies in the past years due to its role on diverse functions. Methods: A search in the PubMed, Scielo, Science direct and Google Scholars databases was performed and the authors experience was reported. Results: The first model used was rodent fat, which allowed a better comprehension on carbohydrate and fatty acid metabolism and enhanced research in adipocyte cell biology in addition with histological studies and mature adipocyte isolation. Afterwards, learning about precursor cell (pre-adipocytes) promoted the isolation of murine 3T3-L1 cell line. In Latin America research has been conducted using cell lines and adipocyte precursor mesenchymal stem cells to describe effects of hormones and perform DNA sequencing. In Colombia, studies in 3T3-L1 cell line aimed to stablish the effects of different compounds on these cells. In the Cell Physiology Laboratory of the Universidad Tecnológica de Pereira, sample collection process has shown difficulties because the source was human tissue; nevertheless isolation and cell culture protocols were standardized throughout the last six years of experimentation. Pre-adipocytes and mature adipocytes were isolated to study the effects of hormones, perform electrophysiological characterization and study calcium physiology. Conclusions: This is a relevant research field since these cells have important systemic metabolic functions and they have a clear relationship with high-prevalence pathologies such as obesity and the metabolic syndrome.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="Verdana" size="2">     <p align="center"><font size="4"><b>El adipocito en el laboratorio: historia,    perspectivas y reporte de experiencia</b></font></p>      <P align="center"><font size="3"><b><I>The adipocyte in the laboratory: history, perspectives and report of experience </I></b></font></p>      <P align="center">JULIO C&Eacute;SAR S&Aacute;NCHEZ<Sup>1</Sup>, C&Eacute;SAR RAM&Oacute;N ROMERO<Sup>2</Sup>, CRISTHIAN DAVID ARROYAVE<Sup>2</Sup>, DIANA MARCELA D&Iacute;AZ<Sup>2</Sup>, ANDR&Eacute;S FELIPE QUIROZ<Sup>2</Sup>, JUAN FELIPE QUINTERO<Sup>2 </Sup></P>      <p><Sup>1 </Sup>Facultad Ciencias de la Salud, Director Grupo de Fisiolog&iacute;a Celular y Aplicada. Universidad Tecnol&oacute;gica de Pereira. Pereira, Colombia, <a href="mailto:jcsanchez@utp.edu.co">jcsanchez@utp.edu.co</a>    <br>  <Sup>2 </Sup>Facultad Ciencias de la Salud, Grupo de Fisiolog&iacute;a celular y aplicada. Universidad Tecnol&oacute;gica de Pereira Semillero de Fisiolog&iacute;a Aplicada y Neurociencias (SEFAN). Pereira, Colombia,</p>      <p>Forma de citar: S&aacute;nchez JC, Romero CR, Arroyave CD, D&iacute;az DM, Quiroz AF, Quintero JF.    El adipocito en el laboratorio: historia, perspectivas y reporte de experiencia. Rev CES Med 2015;29(2): 271-282 </p>          <p><B>Recibido en:</B> febrero 4 de 2015. <B>Revisado en: </B>septiembre 3 de 2015.<B> Aceptado en:</B> septiembre 9 de 2015 </p>  <hr>      <p><B>RESUMEN </b></p>     <p><i><b>Introducci&oacute;n</b>: el tejido adiposo humano est&aacute; compuesto por diferentes tipos celulares, y ha sido objeto de m&uacute;ltiples estudios en los &uacute;ltimos a&ntilde;os debido a su acci&oacute;n en diversas funciones. </I></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><B><I>M&eacute;todos:</I></B><I> se realiz&oacute; una b&uacute;squeda bilbiogr&aacute;fica en PubMed, Scielo, Science Direct and Google Scholars y se reporta la experiencia de los autores. </I></p>      <p><B><I>Resultados: </I></B><I>los primeros modelos de estudio fueron con tejido de roedores, y permitieron la comprensi&oacute;n del metabolismo de carbohidratos y &aacute;cidos grasos y facilitaron el estudio de la biolog&iacute;a del adipocito, junto a estudios histol&oacute;gicos y el aislamiento de adipocitos maduros. Posteriormente se realizaron estudios con c&eacute;lulas precursoras (preadipocitos) que propiciaron el aislamiento de la l&iacute;nea celular 3T3-1L murina. En Latinoam&eacute;rica, se han realizado diversos estudios con l&iacute;neas celulares y con c&eacute;lulas madre mesenquimales precursoras de adipocitos para estudiar el efecto de hormonas y otras sustancias y para genotipificaci&oacute;n. En Colombia se han realizado estudios con adipocitos 3T3-L1 para determinar los efectos de medicamentos y sustancias en estas c&eacute;lulas. </I></p>       <p><I>En el laboratorio de Fisiolog&iacute;a Celular de la Universidad Tecnol&oacute;gica de Pereira el proceso de obtenci&oacute;n de muestras ha evidenciado dificultades por tratarse de tejido humano, pero el protocolo de aislamiento y cultivo pudo ser estandarizado a lo largo de seis a&ntilde;os de experimentaci&oacute;n; se aislaron preadipocitos y adipocitos maduros que permitieron estudiar los efectos de hormonas, realizar caracterizaci&oacute;n electrofisiol&oacute;gica y estudiar la fisiolog&iacute;a del calcio. </I></p>      <p><B><I>Conclusiones: </I></B><I>este es un campo de investigaci&oacute;n muy relevante debido a la implicaci&oacute;n de este tipo celular en funciones metab&oacute;licas sist&eacute;micas y su relaci&oacute;n con patolog&iacute;as de alta prevalencia como la obesidad y el s&iacute;ndrome metab&oacute;lico. </I></p>      <p><B>PALABRAS CLAVE</b>: <I>Tejido adiposo, Adipocito, Preadipocito, T&eacute;cnicas de cultivo celular, Cultivos celulares primarios.</I></p> <hr>      <p><B>ABSTRACT </b></p>      <p><B>Introduction</b>: The human adipose tissue is composed of different cell types. It has been subject of several studies in the past years due to its role on diverse functions.</p>      <p><B>Methods</B>: A search in the PubMed, Scielo, Science direct and Google Scholars databases was performed and the authors experience was reported.</p>      <p><B>Results</B>: The first model used was rodent fat, which allowed a better comprehension on carbohydrate and fatty acid metabolism and enhanced research in adipocyte cell biology in addition with histological studies and mature adipocyte isolation. Afterwards, learning about precursor cell (pre-adipocytes) promoted the isolation of murine 3T3-L1 cell line.</p>      <p>In Latin America research has been conducted using cell lines and adipocyte precursor mesenchymal stem cells to describe effects of hormones and perform DNA sequencing. In Colombia, studies in 3T3-L1 cell line aimed to stablish the effects of different compounds on these cells. In the Cell Physiology Laboratory of the Universidad Tecnol&oacute;gica de Pereira, sample collection process has shown difficulties because the source was human tissue; nevertheless isolation and cell culture protocols were standardized throughout the last six years of experimentation. Pre-adipocytes and mature adipocytes were isolated to study the effects of hormones, perform electrophysiological characterization and study calcium physiology.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><B>Conclusions</B>: This is a relevant research field since these cells have important systemic metabolic functions and they have a clear relationship with high-prevalence pathologies such as obesity and the metabolic syndrome.</p>      <p><B>KEY WORDS</b>: <I>Adipose tissue, Adipocyte, Preadipocyte, Cell culture techniques, Primary cell cultures.</I></p> <hr>      <p><B>INTRODUCCI&Oacute;N </b></p>      <p>El tejido adiposo humano se compone de diferentes tipos celulares, tales como macr&oacute;fagos, monocitos, eritrocitos, pericitos y adipocitos; estos &uacute;ltimos son las c&eacute;lulas m&aacute;s abundantes y tienen una gran importancia en la regulaci&oacute;n del metabolismo general. La relevancia de su estudio es notable, pues son c&eacute;lulas endocrinas que intervienen en la homeostasis general y regulan m&uacute;ltiples funciones. Por esta raz&oacute;n, desde hace m&aacute;s de treinta a&ntilde;os se viene investigando a esta c&eacute;lula y los mensajeros qu&iacute;micos que produce, por medio de diversos modelos celulares obtenidos a trav&eacute;s de cultivos de diversas caracter&iacute;sticas.</p>      <p>El presente art&iacute;culo es una revisi&oacute;n de tema acerca de los m&eacute;todos experimentales que han sido utilizados para el estudio de la biolog&iacute;a de los adipocitos y el desarrollo de estos m&eacute;todos experimentales en Latinoam&eacute;rica y Colombia.</p>      <p><B>M&Eacute;TODOS </b></p>      <p>Se realiz&oacute; una b&uacute;squeda en las bases de datos <I>PubMed, Scielo, Science Direct and Google Scholars, </I>utilizando los descriptores <I>adipocito, tejido adiposo, cultivos celulares, Latinoam&eacute;rica, Colombia </I>y sus combinaciones, tanto en espa&ntilde;ol como en ingl&eacute;s. Tambi&eacute;n se realiz&oacute; la consolidaci&oacute;n de la informaci&oacute;n procedente de la experiencia del Laboratorio de Fisiolog&iacute;a Celular y Aplicada de la Universidad Tecnol&oacute;gica de Pereira en los &uacute;ltimos cinco a&ntilde;os.</p>      <p><B>RESE&Ntilde;A HIST&Oacute;RICA </b></p>      <p>El inter&eacute;s por el tejido adiposo inici&oacute; hacia la primera mitad del siglo XX, cuando se relacion&oacute; el riesgo aumentado de muerte con la obesidad en aquellas personas que ten&iacute;an una masa corporal aumentada. La primera fuente de este tejido fueron los roedores empleados en los primeros estudios que describieron su actividad metab&oacute;lica. Las muestras en fresco ayudaron a la comprensi&oacute;n de algunas funciones como la actividad metab&oacute;lica de carbohidratos y &aacute;cidos grasos, las cuales fueron el punto de partida para el estudio de la biolog&iacute;a celular del tejido adiposo (1).</p>      <p>Durante el periodo comprendido entre 1940 y 1960 se publicaron diversos estudios de tejido adiposo realizados in vitro, para describir la existencia de diferentes rutas metab&oacute;licas de los &aacute;cidos grasos; se emplearon marcadores bioqu&iacute;micos como deuterio, &aacute;cidos grasos, carbohidratos o &eacute;steres de colesterol, marcados con carbono radioactivo, en medios de cultivo con hormonas (insulina, ACTH) o enzimas (lipasas); con esto se logr&oacute; estimar la capacidad del tejido adiposo para utilizar y producir &aacute;cidos grasos (1).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En 1964 Rodbell decant&oacute; los estudios in vivo e in vitro que a la fecha se hab&iacute;an realizado y produjo el primer experimento en el cual se logr&oacute; aislar satisfactoriamente adipocitos maduros de una forma homog&eacute;nea, a trav&eacute;s de la digesti&oacute;n enzim&aacute;tica de tejido adiposo de rata, para que las c&eacute;lulas fueran liberadas y separadas de la fracci&oacute;n de estroma vascular (2).</p>      <p>De esta manera se dio inicio al estudio del rol metab&oacute;lico del adipocito y su sensibilidad a la influencia hormonal, a partir de la estimulaci&oacute;n con adrenalina, ACTH y glucag&oacute;n; adicional-mente, se realiz&oacute; la cuantificaci&oacute;n de la liberaci&oacute;n de &aacute;cidos grasos libres y de glicerol, m&eacute;todos de gran utilidad para la comprensi&oacute;n de la homeostasis metab&oacute;lica del adipocito, que pueden ser modificados de acuerdo al estudio a realizar (3).</p>      <p>Debido a la dificultad que plante&oacute; este m&eacute;todo de aislamiento, paralelo a la compresi&oacute;n de la biolog&iacute;a y la histolog&iacute;a del tejido adiposo, se dio el salto a la exploraci&oacute;n de aquellas c&eacute;lulas precursoras de adipocitos maduros, los llamados preadipocitos. Los primeros reportes de aislamiento de preadipocitos datan de 1960, cuando se logr&oacute; aislar con &eacute;xito una l&iacute;nea monoclonal de preadipocitos murinos, 3T3 L1, la cual se obtuvo de embriones de entre 17 a 19 d&iacute;as de ratones 3T3 suizos (4). A partir de ese momento continu&oacute; el desarrollo de diferentes modelos celulares que permitieron ampliar las investigaciones en adipocitos.</p>      <p><B>PROTOCOLOS UTILIZADOS Y L&Iacute;NEAS CELULARES</b></p>     <p>En el <a href="#c1">cuadro 1</a> se resumen diversas l&iacute;neas comerciales derivadas de humanos y animales. Los protocolos de mantenimiento y diferenciaci&oacute;n suelen ser est&aacute;ndar, bas&aacute;ndose principalmente en medios suplementados con insulina y corticoides, que se pueden emplear acorde a los requerimientos experimentales, pues intervienen favorablemente en la maduraci&oacute;n del adipocito al promover su metabolismo y la formaci&oacute;n de las vacuolas grasas, incrementando la actividad adipog&eacute;nica y por ende el n&uacute;mero de c&eacute;lulas maduras del cultivo (5).</p>     <p align="center"><a name="c1"></a><img src="img/revistas/cesm/v29n2/v29n2a10c1.jpg"></p>      <p>De los subtipos de adipocitos, los m&aacute;s usados en experimentaci&oacute;n han sido el blanco y el pardo, los cuales se diferencian en su localizaci&oacute;n, morfolog&iacute;a (vacuola y organelas) y funciones; estas c&eacute;lulas se pueden caracterizar por la expresi&oacute;n de marcadores como la leptina, expresada primordialmente en el adipocito blanco y la UCP1 (<I>uncoupled protein 1</I>), expresada exclusivamente en los adipocitos pardos (18). </p>       <p>Desde 1974 se ha usado la t&eacute;cnica de tinci&oacute;n con rojo de aceite para la identificaci&oacute;n y visualizaci&oacute;n de adipocitos maduros en cultivo. &Eacute;ste es un m&eacute;todo cuantitativo de caracterizaci&oacute;n morfol&oacute;gica que consiste en te&ntilde;ir las vacuolas de grasas de estas c&eacute;lulas y posteriormente cuantificar la cantidad de colorante tomado despu&eacute;s del lavado, a trav&eacute;s de la medici&oacute;n de absorbancia por m&eacute;todos convencionales. El m&eacute;todo es f&aacute;cil de implementar y es una herramienta &uacute;til en la caracterizaci&oacute;n del adipocito maduro en cultivo (4). </p>      <p>Otras l&iacute;neas que se han establecido como ob17 u ob1771 tienen un comportamiento similar a las c&eacute;lulas en el contexto de la obesidad, pues provienen de ratones modificados gen&eacute;ticamente para desarrollar esta enfermedad (8).</p>      <p>Entre las ventajas que ofrece la l&iacute;nea celular frente a la utilizaci&oacute;n de cultivos primarios est&aacute;n las mayores tasas de sobrevida y las facilidades de manejo en el laboratorio, convirti&eacute;ndose en una nueva alternativa para estudiar las caracter&iacute;sticas del adipocito (19).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En d&eacute;cadas pasadas diferentes m&eacute;todos de aislamiento y manipulaci&oacute;n g&eacute;nica, permitieron emplear l&iacute;neas celulares surgidas a partir de c&eacute;lulas totipotenciales, lo cual, adem&aacute;s, permiti&oacute; el desarrollo de linajes celulares con caracter&iacute;sticas particulares que han ampliado este campo de estudio. En Europa, en la d&eacute;cada de los ochenta, se encontr&oacute; actividad de canales i&oacute;nicos selectivos y no selectivos en adipocitos (20), abriendo las puertas a la comprensi&oacute;n del papel de estas prote&iacute;nas en la regulaci&oacute;n metab&oacute;lica e iniciando un amplio campo de trabajo: la electrofisiolog&iacute;a celular del adipocito.</p>      <p>La caracterizaci&oacute;n de transportadores de membrana en el adipocito permite avanzar en el entendimiento del desarrollo de diversas enfermedades, entre ellas el c&aacute;ncer, dado que el tejido adiposo genera un microambiente &oacute;ptimo para su desarrollo, por ser un reservorio de energ&iacute;a generador de &aacute;cidos grasos libres y productor de citocinas pro-inflamatorias, adipocinas y factores pro-angiog&eacute;nicos, lo cual facilita el desarrollo de las neoplasias y sus met&aacute;stasis (21).</p>      <p>El principal problema de la obesidad radica en su asociaci&oacute;n con enfermedades metab&oacute;licas, entre ellas la diabetes, caracterizada por resistencia a la insulina y asociada a niveles altos de leptina y resistina en sangre (22); los cultivos celulares permiten manipular, de forma aislada, los efectos que diferentes hormonas, la hipoxia y los cambios de temperatura tienen sobre el adipocito y ayudan a individualizar sus efectos (23).</p>      <p>Otras &aacute;reas biol&oacute;gicas han partido de la utilizaci&oacute;n de c&eacute;lulas madre derivadas del tejido adiposo (CMM-AD), para diferenciarlas a varios linajes celulares, entre ellos miocitos, condrocitos, hepatocitos, neuronas, c&eacute;lulas endoteliales, entre otros. Estas c&eacute;lulas tambi&eacute;n han sido utilizadas para reconstrucci&oacute;n de tejidos (24).</p>      <p><B>EXPERIENCIA EN LATINOAM&Eacute;RICA Y COLOMBIA </b></p>      <p>En Latinoam&eacute;rica es de resaltar el trabajo realizado en Brasil, donde se han cultivado adipocitos 3T3-L1 para determinar su actividad metab&oacute;lica (25) y CMM-AD para diferenciarlas a adipocitos, osteoblastos y condrocitos (26).</p>      <p>En Chile tambi&eacute;n se ha realizado aislamiento de CMM-AD para estudiar la capacidad de diferenciaci&oacute;n del mismo hacia otros linajes mesod&eacute;rmicos (27). En M&eacute;xico se ha utilizado el cultivo de adipocitos 3T3-L1 para determinar los efectos de la dopamina sobre la liberaci&oacute;n de leptina y tambi&eacute;n se han usado cultivos primarios tanto humanos como bovinos para estudios de genotipificaci&oacute;n (28). En Cuba se han realizado cultivos de CMM-AD para su caracterizaci&oacute;n fenot&iacute;pica (29); en el caso de Costa Rica se han comparado protocolos de cultivos de CMM-AD equinos para ser utilizados en regeneraci&oacute;n tisular (30).</p>      <p>A pesar de toda esta experiencia, la mayor&iacute;a de la literatura cient&iacute;fica sobre tejido adiposo procedente de Latinoam&eacute;rica se reduce a art&iacute;culos de revisi&oacute;n, lo cual evidencia la necesidad de continuar investigando respecto a este tema en nuestro medio.</p>      <p>En Colombia, la investigaci&oacute;n en adipocitos ha sido limitada, pero algunos grupos han realizado diversos estudios sobre el tejido adiposo, principalmente por medio del uso de la l&iacute;nea 3T3-L1, para la evaluaci&oacute;n de efectos de medicamentos y otras sustancias en estas c&eacute;lulas (31). En Bogot&aacute; se han estudiado las acciones lipol&iacute;ticas del resveratrol y el efecto de varios agentes sobre la diferenciaci&oacute;n del adipocito, con el prop&oacute;sito de evaluar posibles estrategias terap&eacute;uticas para enfermedades de alta prevalencia como la obesidad relacionada con diabetes mellitus tipo II e hipertensi&oacute;n arterial en el s&iacute;ndrome metab&oacute;lico (32).</p>      <p>Otros grupos han realizado cultivos celulares en los cuales se estimula la adipog&eacute;nesis, a partir de la diferenciaci&oacute;n de preadipocitos a adipocitos maduros, evidenciando la producci&oacute;n de triacilglic&eacute;ridos a trav&eacute;s de tinciones especiales y biofotometr&iacute;a, despu&eacute;s de ser colocados en medios de diferenciaci&oacute;n suplementados con rosiglitazona e insulina (33); tambi&eacute;n se ha experimentado con CMM-AD extra&iacute;das a partir de la grasa infrapatelar de Hoffa, para evaluar su potencial de diferenciaci&oacute;n a otros linajes celulares, como alternativa en la medicina regenerativa (34).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En Medell&iacute;n, usando cultivos primarios de adipocitos, se ha buscado la diferenciaci&oacute;n a c&eacute;lulas madre a partir de la exposici&oacute;n a factores osteog&eacute;nicos como dexametasona, &aacute;cido asc&oacute;rbico y &beta;-glicerol fosfato para su utilizaci&oacute;n en enfermedades osteog&eacute;nicas (35).</p>      <p>En Cali, el cultivo de adipocitos ha sido utilizado en cirug&iacute;a pl&aacute;stica con el objetivo de optimizar y estandarizar t&eacute;cnicas de lipoescultura con l&aacute;ser, observando los efectos de la luz en la morfolog&iacute;a y funcionalidad de las c&eacute;lulas (36).</p>      <p>En el Laboratorio de Fisiolog&iacute;a Celular de la Universidad Tecnol&oacute;gica de Pereira se ha desarrollado una l&iacute;nea de investigaci&oacute;n en adipocitos humanos cultivados a partir de muestras de tejido adiposo subcut&aacute;neo. En la experiencia a lo largo de los &uacute;ltimos seis a&ntilde;os se ha obtenido tejido adiposo de pacientes obesos y no obesos sometidos a diferentes procedimientos quir&uacute;rgicos, quienes han firmado un consentimiento informado para la utilizaci&oacute;n del tejido con fines de investigaci&oacute;n. Estos pacientes no presentaban diabetes mellitus, infecciones activas ni c&aacute;ncer.</p>      <p>Las muestras fueron obtenidas por los cirujanos correspondientes al inicio del procedimiento quir&uacute;rgico; se obtuvieron entre 10 y 20 gr de tejido celular subcut&aacute;neo no infiltrado con vasoconstrictores ni sometido a electrobistur&iacute;; la muestra de tejido fue inmediatamente sumergida en soluci&oacute;n salina normal (0,9 %) a temperaturas entre 2 y 4 &ordm; C y transportada al laboratorio para su procesamiento en las siguientes seis horas.</p>      <p>Con estas muestras se ha experimentado con protocolos exitosos en otros laboratorios reportados en la literatura (37-39), adapt&aacute;ndolos a las condiciones de nuestro laboratorio hasta obtener, seg&uacute;n nuestra experiencia, el m&aacute;s &uacute;til para el aislamiento de adipocitos maduros y la obtenci&oacute;n de preadipocitos y su posterior cultivo. Tambi&eacute;n se ha experimentado con el aislamiento de adipocitos maduros en fresco utilizando la t&eacute;cnica del <I>ceiling </I>(40) (<a href="#f1">figura 1</a>). Los medios utilizados y su composici&oacute;n est&aacute;n resumidos en el <a href="#c2">cuadro 2</a>. </p>     <p align="center"><a name="f1"></a><img src="img/revistas/cesm/v29n2/v29n2a10f1.jpg"></p>     <p align="center"><a name="c2"></a><img src="img/revistas/cesm/v29n2/v29n2a10c2.jpg"></p>      <p>Se ha logrado la obtenci&oacute;n de cultivos que han permitido el estudio de efectos de hormonas como leptina, insulina y factor de necrosis tu-moral. Tambi&eacute;n se han realizado estudios de caracterizaci&oacute;n electrofisiol&oacute;gica de estas c&eacute;lulas y de prote&iacute;nas involucradas en la regulaci&oacute;n del calcio (41, 42).</p>      <p>Las principales dificultades han tenido que ver con la disponibilidad de las muestras que ha venido disminuyendo en los &uacute;ltimos a&ntilde;os, ya que los abordajes quir&uacute;rgicos han cambiado a ser, en su mayor&iacute;a, de tipo laparosc&oacute;pico, y en &eacute;stos la obtenci&oacute;n de grasa presenta dificultades t&eacute;cnicas que no permiten la extracci&oacute;n de la cantidad necesaria de tejido. Tambi&eacute;n es significativo el rechazo de algunos pacientes a la extracci&oacute;n del tejido por temores o creencias infundados.</p>      <p>Es necesario resaltar que este proceso depende de la colaboraci&oacute;n de los cirujanos y el personal auxiliar de quir&oacute;fanos, condici&oacute;n que no siempre se cumple, pues existen m&uacute;ltiples situaciones propias del quehacer quir&uacute;rgico que en ocasiones impiden invertir tiempo adicional obteniendo las muestras necesarias. Estas situaciones son imposibles de prever y por tanto, no pueden ser controladas. A pesar de que se ha experimentado con la posibilidad de cultivar c&eacute;lulas obtenidas de tejido graso extra&iacute;do por liposucci&oacute;n, el cual es de m&aacute;s f&aacute;cil acceso. La experiencia con este tipo de muestras no ha sido exitosa en nuestro laboratorio, aunque otros han reportado lo contrario (35). </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><B>CONCLUSIONES </b></p>      <p>Los cultivos de adipocitos de fuentes primarias contin&uacute;an siendo un desaf&iacute;o de gran inter&eacute;s para la investigaci&oacute;n biom&eacute;dica, por ser una herramienta para el estudio del tejido adiposo. Este tejido tiene un papel fundamental en el metabolismo y la regulaci&oacute;n hormonal del organismo en condiciones fisiol&oacute;gicas o patol&oacute;gicas como obesidad, diabetes mellitus e hipertensi&oacute;n arterial; adem&aacute;s, la optimizaci&oacute;n de los procesos de cultivo de adipocitos puede ayudar significativa-mente en la b&uacute;squeda de posibles blancos terap&eacute;uticos para dichas enfermedades, que act&uacute;en sobre las diversas acciones alteradas de estas c&eacute;lulas. A pesar de las dificultades inherentes a los cultivos de adipocitos es necesario continuar en la b&uacute;squeda de m&eacute;todos de optimizaci&oacute;n de las t&eacute;cnicas de laboratorio que permitan mejorar el proceso de obtenci&oacute;n de cultivos. </p>  <hr>      <p><B>BIBLIOGRAF&Iacute;<B>A </b></b></p>      <!-- ref --><p>1. Lafontan M. Historical perspectives in fat cell biology: the fat cell as a model for the investigation of hormonal and metabolic pathways. Am J Physiol Cell Physiol. 2012;302(2):C327-59.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0120-8705201500020001000001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>2. Rodbell M. Metabolism of isolated fat cells. I. Effects of hormones on glucose metabolism and lipolysis. J Biol Chem. 1964;239:375-80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0120-8705201500020001000002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>3. Sim AW, De Vries JW, Vincent JE. Concentrations of glycerol and non-esterified fatty acids in plasma during fat mobilization. Biochemical Journal. 1964;92(3):590-3.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-8705201500020001000003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>4. Green H, Meuth M. An established pre-adipose cell line and its differentiation in culture. Cell. 1974;3(2):127-33.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-8705201500020001000004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>         <!-- ref --><p>5. Hauner H, Schmid P, Pfeiffer EF. Glucocorticoids and insulin promote the differentiation of human adipocyte precursor cells into fat cells. J Clin Endocrinol Metab. 1987;64(4):832-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-8705201500020001000005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>6. Pittas AG, Joseph NA, Greenberg AS. Adipocytokines and insulin resistance. J Clin Endocrinol Metab. 2004;89(2):447-52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0120-8705201500020001000006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>7. Green H, Kehinde O. Spontaneous heritable changes leading to increased adipose conversion in 3T3 cells. Cell. 1976;7(1):105-13.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-8705201500020001000007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>8. Negrel R, Grimaldi P, Ailhaud G. Establishment of preadipocyte clonal line from epididymal fat pad of ob/ob mouse that responds to insulin and to lipolytic hormones. Proc Natl Acad Sci U S A. 1978;75(12):6054-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-8705201500020001000008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>9. Chapman AB, Knight DM, Dieckmann BS, Ringold GM. Analysis of gene expression during differentiation of adipogenic cells in culture and hormonal control of the developmental program. J Biol Chem. 1984;259(24):15548-55.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-8705201500020001000009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>10. Pape ME, Kim K-H. Effect of tumor necrosis factor on acetyl-coenzyme a carboxylase gene expression and preadipocyte differentiation. Molecular Endocrinology. 1988;2(5):395-403.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-8705201500020001000010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>11. Darmon M, Serrero G, Rizzino A, Sato G. Isolation of myoblastic, fibro-adipogenic, and fibroblastic clonal cell lines from a common precursor and study of their requirements for growth and differentiation. Experimental Cell Research. 1981;132(2):313-27.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-8705201500020001000011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>12. Jainchill JL, Aaronson SA, Todaro GJ. Murine sarcoma and leukemia viruses: assay using clonal lines of contact-inhibited mouse cells. Journal of Virology. 1969;4(5):549-53.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-8705201500020001000012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>13. Todaro GJ, Green H. Quantitative studies of the growth of mouse embryo cells in culture  and their development into established lines. J Cell Biol. 1963;17:299-313.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-8705201500020001000013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>14. Aaronson SA, Todaro GJ. 	Development of 3T3-like lines from Balb/c mouse embryo cultures: Transformation susceptibility to SV40. Journal of Cellular Physiology. 1968;72(2):141-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-8705201500020001000014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>15. Reznikoff CA, Brankow DW, Heidelberger C. Establishment and characterization of a cloned line of C3H mouse embryo cells sensitive to postconfluence inhibition of division. Cancer Res. 1973;33(12):3231-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-8705201500020001000015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>16. Yaffe D, Saxel ORA. Serial passaging and differentiation of myogenic cells isolated from dystrophic mouse muscle. Nature. 1977;270(5639):725-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-8705201500020001000016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>17. Christian C, Nelson P, Peacock J, Nirenberg M. Synapse formation between two clonal cell lines. Science. 1977;196(4293):995-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-8705201500020001000017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>18. Rosenwald M, Wolfrum C. The origin and definition of brite versus white and classical brown adipocytes. Adipocyte. 2014;3(1):4-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-8705201500020001000018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>19. Armani A, Mammi C, Marzolla V, Calanchini M, Antelmi A, Rosano GM, et al. Cellular models for understanding adipogenesis, adipose dysfunction, and obesity. J Cell Biochem. 2010;110(3):564-72.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-8705201500020001000019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>20. Ramirez-Ponce MP, Acosta J, Bellido JA. Electrical activity in white adipose tissue of rat. Rev Esp Fisiol. 1990;46(2):133-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-8705201500020001000020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>21. Park J, Morley TS, Kim M, Clegg DJ, Scherer PE. Obesity and cancer--mechanisms underlying tumour progression and recurrence. Nat Rev Endocrinol. 2014;10(8):455-65.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-8705201500020001000021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>22. Hyvonen MT, Spalding KL. Maintenance of white adipose tissue in man. Int J Biochem Cell Biol. 2014;56c:123-32.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-8705201500020001000022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>         <!-- ref --><p>23. Trayhurn 	P. Hypoxia and adipose tissue function and dysfunction in obesity. Physiological reviews. 2013;93(1):1-21.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-8705201500020001000023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>24. Yoshimura K, Eto H, Kato H, Doi K, Aoi N. In vivo manipulation of stem cells for adipose tissue repair/reconstruction. Regen Med. 2011;6(6 Suppl):33-41.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0120-8705201500020001000024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>25. Botelho AP, Santos-Zago LF, Oliveira ACd. Effect of conjugated linoleic acid supplementation on lipoprotein lipase activity in 3T3-L1 adipocyte culture. Revista de Nutri&ccedil;&atilde;o. 2009;22:767-71.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0120-8705201500020001000025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>26. Gaiba S, Fran&ccedil;a LPd, Fran&ccedil;a JPd, Ferreira LM. Characterization of human adiposederived stem cells. Acta Cirurgica Brasileira. 2012;27:471-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0120-8705201500020001000026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>27. Meruane M, Rojas M. C&eacute;lulas troncales derivadas del tejido adiposo. International Journal of Morphology. 2010;28:879-89.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0120-8705201500020001000027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>28. Gonz&aacute;lez Gallardo A, Varela Echavarr&iacute;a A, Shimada Miyasaka A, Mora Izaguirre O. Diferenciaci&oacute;n in vitro de preadipocitos de tejido adiposo bovino. Revista Mexicana de Ciencias Pecuarias. 2012;46(2):195-204.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0120-8705201500020001000028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>29. Mac&iacute;as-Abraham C, O del Valle-P&eacute;rez L, Galv&aacute;n Cabrera JA, de la Cu&eacute;tara Bernal K, Socarr&aacute;s Ferrer BB, Hern&aacute;ndez Ram&iacute;rez P, et al. Caracterizaci&oacute;n fenot&iacute;pica de c&eacute;lulas madre mesenquimales humanas de m&eacute;dula &oacute;sea y tejido adiposo. Resultados preliminares. Revista Cubana de Hematolog&iacute;a, Inmunolog&iacute;a y Hemoterapia. 2014;30:162-70.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0120-8705201500020001000029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>30. Estrada R, Venegas P. Comparaci&oacute;n de diferentes protocolos para el cultivo de c&eacute;lulas madre mesenquimales de origen adiposo. Revista Costarricense de Ciencias M&eacute;dicas. 2007;28(1-2):21-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0120-8705201500020001000030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>31. Clavijo MA, G&oacute;mez Camargo, Doris, G&oacute;mez Alegr&iacute;a, Claudio. Adipog&eacute;nesis in vitro de c&eacute;lulas 3T3-L0000001. Revista Med. 2007;15:170-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0120-8705201500020001000031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>32. Lizcano F, Vargas D. EID1-induces brownlike adipocyte traits in white 3T3-L1 preadipocytes. Biochem Biophys Res Commun. 2010;398(2):160-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0120-8705201500020001000032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>33. Celis LG, Trujillo DV, Losada FL. Efecto de la modulaci&oacute;n del receptor nuclear PPAR &#947; en la diferenciaci&oacute;n de c&eacute;lulas de preadipocitos de fibroblastos. NOVA-Publicidad Cient&iacute;fica. 2006;4(6):42-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0120-8705201500020001000033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>34. Lizcano Losada F, Garay J, Acero E, In&eacute;s Maldonado M, Brochero J, Vargas D, et al. Aislamiento e identificaci&oacute;n de c&eacute;lulas madre adultas a partir de la grasa infrapatelar de Hoffa. Revista Cient&iacute;fica Salud Uninorte. 2010;25(2).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0120-8705201500020001000034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>35. Pineda-Molina C, Londo&ntilde;o-Pel&aacute;ez C. Obtenci&oacute;n de c&eacute;lulas madre del tejido adiposo y su potencial de diferenciaci&oacute;n osteog&eacute;nico. Revista Ingenier&iacute;a Biom&eacute;dica. 2009;3(5).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0120-8705201500020001000035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>36. Neira R, Toledo L, Arroyave J, Solarte E, Isaza C, Gutierrez O, et al. Low-level laser-assisted liposuction: the Neira 4 L technique. Clin Plast Surg. 2006;33(1):117-27.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0120-8705201500020001000036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>37. Loffler G, Feick P, Hauner H, Herberg L. An adipogenic serum factor in genetically obese rodents. FEBS letters. 1983;153(1): 179-82.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S0120-8705201500020001000037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>38. Papineau D, Gagnon A, Sorisky A. Apoptosis of human abdominal preadipocytes before and after differentiation into adipocytes in culture. Metabolism: clinical and experimental. 2003;52(8):987-92.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S0120-8705201500020001000038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>39. Maury E, Ehala-Aleksejev K, Guiot Y, Detry R, Vandenhooft A, Brichard SM. Adipokines oversecreted by omental adipose tissue in human obesity. American Journal of  Physiology Endocrinology and Metabolism. 2007;293(3):E656-65.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S0120-8705201500020001000039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>40. Zhang HH, Kumar S, Barnett AH, Eggo MC. Ceiling culture of mature human adipocytes: use in studies of adipocyte functions. J Endocrinol. 2000;164(2):119-28.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S0120-8705201500020001000040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>41. S&aacute;nchez Naranjo J, L&oacute;pez Zapata D. Intercambiador sodio-calcio y su regulaci&oacute;n por insulina en adipocitos humanos cultivados de individuos obesos y no obesos. Chile: Biological Research; 2009. p. R-211.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000146&pid=S0120-8705201500020001000041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>42. S&aacute;nchez Naranjo J, L&oacute;pez Zapata D, Pinz&oacute;n Duque O. Diferencias en la capacitancia y el potencial de membrana en adipocitos cultivados procedentes de individuos obesos y no obesos. Revista de la Asociaci&oacute;n Colombiana de Ciencias Biol&oacute;gicas; 2010. p. 235.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000148&pid=S0120-8705201500020001000042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>  </font>      ]]></body><back>
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