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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Implicaciones fisiológicas de la osmorregulación en plantas]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Physiological implications of osmoregulation in plants]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad de Cundinamarca, sede Fusagasugá Universidad de Ciencias Aplicadas y Ambientales (UDCA) ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Under natural conditions, the plants are exposed to changing environmental conditions that determine complex respuests that influence in the growth, development and productivity of the crops. The conditions of drought and salinity in the soils are the greater causes of stress in the crops and cause lost economic in the world agriculture. The drought as the salinity are osmotic stress that inhibits the growth and cause interferences at metabolic level. The recognition of the biochemical and physiologic mechanisms involved in the osmoregulation involved in the osmotic stress allows to implement new strategies for the handling and improvement of the cultivations under conditions of stress hidric and saline. Different mechanisms are recognized through which the plants manage to adapt and to tolerate the changes in the water potential, between which stand: the water transport by acuaporins, the estomatic closing, the synthesis of compatible osmolites, the ión transport through selective systems of sodium and potassium and those not selective located in the biological membranes and the etrution and compartimentalization of sodium. The osmoregulation confers to the plants the capacity to tolerate conditions of drought and high salinity, with the expression of adaptative mechanisms that avoid the reduction of the photosynthesis, alterations in the allocation photoasimilates and losses in yield, facts that have significant transcendency in the normal physiology of the plant and in the productivity of the crops. The present review has as central objective, to report the discoveries more recent envelope the smorregulation process in exposed cultivated plants to stress by water deficit and by salinity in the soils.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[ajuste osmótico]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p align="RIGHT"><font size="2" face="verdana"><b>FISIOLOG&Iacute;A DE CULTIVOS</b></font></p>     <p align="RIGHT">&nbsp;</p>     <p align="CENTER"><font size="4" face="verdana"><b>Implicaciones fisiol&oacute;gicas de la osmorregulaci&oacute;n en plantas</b></font></p>     <p align="CENTER"><font size="4" face="verdana"><b>  <font size="3">Physiological implications of osmoregulation in plants</font></b></font></p>     <center>   <font face="verdana" size="2">   </font> </center> <font face="verdana" size="2">     <p>&nbsp;</p>     <p> <b>Loyla Rodr&iacute;guez-P&eacute;rez<SUP>1</sup></b></p>     <p><sup><b>1</b></sup> Profesora, Universidad de Cundinamarca, sede Fusagasug&aacute; y Universidad de Ciencias Aplicadas y Ambientales (UDCA), Bogot&aacute;. e-mail: <a href="mailto: loylarp@yahoo.com">loylarp@yahoo.com</a></p>     <p>&nbsp;</p> <hr size="1">     <p><b>Resumen: </b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En condiciones naturales, las plantas est&aacute;n   expuestas a condiciones ambientales cambiantes   que determinan respuestas complejas que influyen   en el crecimiento, desarrollo y productividad de los   cultivos. Las condiciones de sequ&iacute;a y salinidad en los   suelos son las mayores causas de estr&eacute;s en los cultivos   y ocasionan p&eacute;rdidas econ&oacute;micas en la agricultura   mundial. Tanto la sequ&iacute;a como la salinidad resultan   en estr&eacute;s osm&oacute;tico, que inhibe el crecimiento y causa   perturbaciones a nivel metab&oacute;lico. El reconocimiento   de los mecanismos bioqu&iacute;micos y fisiol&oacute;gicos involucrados   en la osmorregulaci&oacute;n ante estr&eacute;s osm&oacute;tico   permite implementar nuevas estrategias para el manejo   y mejoramiento de los cultivos en condiciones   de estr&eacute;s h&iacute;drico y salino. El transporte de agua por   acuaporinas, el cierre estom&aacute;tico, la s&iacute;ntesis de osmolitos   compatibles, el transporte de iones a trav&eacute;s de sistemas   selectivos de sodio y potasio y los no selectivos   localizados en las membranas biol&oacute;gicas y la etrusi&oacute;n   y ompartimentalizaci&oacute;n de sodio, son mecanismos   reconocidos en las plantas para adaptarse y tolerar   cambios en el potencial h&iacute;drico. La osmorregulaci&oacute;n   da a las plantas capacidad para tolerar condiciones de   escasez de agua y salinidad elevada, con la expresi&oacute;n   de mecanismos adaptativos que evitan disminuci&oacute;n   de la fotos&iacute;ntesis, alteraciones en la traslocaci&oacute;n y distribuci&oacute;n   de fotoasimilados y p&eacute;rdidas en rendimiento,   hechos significativos en el funcionamiento normal   de la planta y en la productividad de los cultivos. Este   art&iacute;culo tiene como objetivo revisar los hallazgos m&aacute;s   recientes sobre el proceso de osmorregulaci&oacute;n en   plantas cultivadas expuestas a estr&eacute;s por d&eacute;ficit h&iacute;drico y por salinidad en el suelo.</p>     <p>  <b>Palabras claves adicionales:</b> ajuste osm&oacute;tico,   estr&eacute;s, salinidad, sequ&iacute;a.</p>     <p>&nbsp;</p> <hr size="1">     <p> <b>Abstract:</b> </p>     <p>Under natural conditions, the plants are   exposed to changing environmental conditions that   determine complex respuests that influence in the   growth, development and productivity of the crops.   The conditions of drought and salinity in the soils are   the greater causes of stress in the crops and cause lost   economic in the world agriculture. The drought as the   salinity are osmotic stress that inhibits the growth and   cause interferences at metabolic level. The recognition   of the biochemical and physiologic mechanisms   involved in the osmoregulation involved in the osmotic   stress allows to implement new strategies for the   handling and improvement of the cultivations under   conditions of stress hidric and saline. Different mechanisms   are recognized through which the plants manage   to adapt and to tolerate the changes in the water   potential, between which stand: the water transport   by acuaporins, the estomatic closing, the synthesis of   compatible osmolites, the i&oacute;n transport through selective   systems of sodium and potassium and those not   selective located in the biological membranes and the   etrution and compartimentalization of sodium. The   osmoregulation confers to the plants the capacity to   tolerate conditions of drought and high salinity, with   the expression of adaptative mechanisms that avoid   the reduction of the photosynthesis, alterations in the   allocation photoasimilates and losses in yield, facts   that have significant transcendency in the normal   physiology of the plant and in the productivity of the   crops. The present review has as central objective, to   report the discoveries more recent envelope the smorregulation   process in exposed cultivated plants to   stress by water deficit and by salinity in the soils.</p>     <p>  <b>Additional keyword:</b> osmotic adjustment, stress,   salinity, drought.</p>     <p>&nbsp;</p> <hr size="1"> </font>     <p><font size="3" face="verdana"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>     <p><font size="2" face="verdana">  LA DISTRIBUCI&Oacute;N DE LAS PLANTAS sobre la tierra depende   de la presencia e intensidad de diversos factores bi&oacute;ticos   y abi&oacute;ticos. En condiciones naturales, las plantas   se encuentran continuamente sometidas a situaciones   ambientales cambiantes, lo que trae como consecuencia   una serie de est&iacute;mulos que influyen en el desarrollo   y productividad de los cultivos. Entre los factores que   generan estr&eacute;s se incluyen principalmente aqu&eacute;llos   provenientes de: la acci&oacute;n de organismos vivos y de   alguna actividad antropog&eacute;nica; las variaciones en las   condiciones ambientales, tales como temperaturas altas   o bajas; la salinidad excesiva; la escasez o el exceso   de agua; los cambios en la intensidad de la luz y la carencia   de nutrientes; estos aspectos afectan en mayor   o menor escala la vida de las plantas (Cushman, 2001;   Chynnusamyy et al, 2005).</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">  Las condiciones de sequ&iacute;a y salinidad en el suelo son   factores que limitan la productividad de los cultivos en   el mundo. Levitt (1980) define el estr&eacute;s ambiental como   un cambio en las condiciones del medio que reduce el   crecimiento. Los estreses ambientales provocan en las   plantas respuestas complejas y constituyen un problema   fundamental para la agricultura, ya que influyen sobre   la supervivencia y la productividad de los cultivos.   Las respuestas vegetales se manifiestan a nivel celular,   tisular u org&aacute;nico y afectan los procesos bioqu&iacute;micos,   fisiol&oacute;gicos y del desarrollo (Larcher, 2003). Son caracteres   de variaci&oacute;n continua controlados por un importante   n&uacute;mero de genes, cuya expresi&oacute;n es inducida bajo   condiciones de estr&eacute;s abi&oacute;tico, los cuales codifican prote&iacute;nas   funcionales y prote&iacute;nas regulatorias espec&iacute;ficas.   Entre prote&iacute;nas funcionales se destacan: las prote&iacute;nas de   membrana, las proteinasas, los factores de protecci&oacute;n o   macromol&eacute;culas(chaperonasyprote&iacute;nasabundantesen   la embriog&eacute;nesis tard&iacute;a), las prote&iacute;nas reguladoras de la   s&iacute;ntesis de compuestos osmoprotectores y las enzimas   desintoxicantes. En las prote&iacute;nas regulatodas se incluyen:   los factores de transcripci&oacute;n, las prote&iacute;nas reguladoras   cinasas, las fosfatasas y las fosfolipasas (Shinozaki   y Yamaguchi, 1997).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="verdana">  La agricultura es la principal consumidora de agua   en el mundo y uno de los factores m&aacute;s limitantes para   el futuro. Las reservas de agua en el planeta han ido   disminuyendo con el creciente aumento de la poblaci&oacute;n   y de las pr&aacute;cticas agr&iacute;colas (IFPRI, 2005). Debido a que   la agricultura consume 70% del agua utilizada por el   hombre, es importante ahorrar este recurso, implementando   t&eacute;cnicas agr&iacute;colas que tiendan a reducir su consumo.   La disponibilidad de agua es uno de los factores   cruciales que modula el crecimiento de las plantas; en el   estr&eacute;s h&iacute;drico incluye tanto la sequ&iacute;a como la salinidad,   factores importantes para la agricultura, ya que impiden   a los cultivos desarrollar su potencial gen&eacute;tico (Zhu, 2002; Zhu, 2003).</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">  El presente art&iacute;culo tiene como objetivo central hacer   una revisi&oacute;n sobre los hallazgos m&aacute;s recientes sobre   el proceso de osmorregulaci&oacute;n en plantas cultivadas   expuestas a estr&eacute;s por d&eacute;ficit h&iacute;drico y por salinidad   en el suelo.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="verdana">  <font size="3"><b>Importancia del agua en las plantas</b></font></font></p>     <p><font size="2" face="verdana">  El agua es el componente predominante de los organismos   y, por tal raz&oacute;n, interviene en la regulaci&oacute;n de   los procesos biol&oacute;gicos. Es importante para las plantas   por el papel crucial que cumple en los procesos fisiol&oacute;gicos   y por la gran cantidad que requieren (Steudle,   2000; Andreev, 2001). El agua comprende 80% a 90%   de la biomasa de tejidos vegetales, presente en varias   formas: como constituyente del protoplasma; como   agua de hidrataci&oacute;n asociada con iones, disolviendo   sustancias org&aacute;nicas y macromol&eacute;culas, llenando espacios   entre estructuras finas del protoplasma y la pared   celular, almacenada en las vacuolas y, finalmente,   como agua intersticial, que act&uacute;a como medio transportador   en los espacios intercelulares y en los tejidos   de conducci&oacute;n del xilema y el floema (Larcher, 2003;   Zyalalov, 2004).</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">  Por su polaridad, el agua act&uacute;a como solvente universal,   disolviendo gran cantidad de iones y metabolitos   org&aacute;nicos polares, como az&uacute;cares, amino&aacute;cidos y prote&iacute;nas,   compuestos cr&iacute;ticos para el metabolismo. A nivel   de la planta completa, el agua es el medio que transporta   carbohidratos, nutrientes y fitohormonas indispensables   para el metabolismo vegetal. En condiciones de   alta concentraci&oacute;n de solutos, las c&eacute;lulas ejercen presi&oacute;n   de turgencia contra las paredes celulares, lo que soporta   el crecimiento celular. Cuando las c&eacute;lulas pierden turgencia,   no llevan a cabo el alargamiento y expansi&oacute;n y,   si esto ocurre por periodos largos de tiempo, la planta se deshidrata y muere (Zyalalov, 2004).</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">  El uso eficiente de agua por las plantas terrestres favorece   el balance energ&eacute;tico de la hoja, ya que el agua   evaporada desde las c&eacute;lulas del mes&oacute;filo enfr&iacute;a las superficies   foliares (Larcher, 2003; Zyalalov, 2004). La corriente transpiratoria tambi&eacute;n favorece el transporte de   nutrientes inorg&aacute;nicos procedentes del suelo y el transporte   de solutos org&aacute;nicos, amino&aacute;cidos y fitohormonas   desde la ra&iacute;z a los &oacute;rganos en transpiraci&oacute;n, aunque se   destaca que el transporte por el xilema tambi&eacute;n ocurre   en ausencia de transpiraci&oacute;n (Larcher, 2003; Zyalalov, 2004; Canny, 2001; Steudle, 2000; Andreev, 2001).</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="verdana"><b> Potencial h&iacute;drico</b></font></p>     <p><font size="2" face="verdana">  La &oacute;smosis es un proceso central en todos los seres vivos,   que transporta el agua por el simplasto de las plantas   para mantener su contenido a nivel celular. El estado del   agua en los suelos, las plantas y la atm&oacute;sfera es descrito   en t&eacute;rminos de potencial h&iacute;drico (<b>&Psi;</b>) y consta de varios   componentes importantes para las c&eacute;lulas y sus alrededores:   el potencial osm&oacute;tico (<b>&Psi;</b><sub>s</sub>) est&aacute; determinado por   la concentraci&oacute;n de sustancias osm&oacute;ticamente activas;   el potencial m&aacute;trico (<b>&Psi;</b><sub>m</sub>) registra la capacidad de adsorci&oacute;n   de las matrices celulares; el potencial de presi&oacute;n   registra (<b>&Psi;</b><sub>p</sub>) las presiones en exceso que act&uacute;an sobre un   sistema y el potencial gravitacional (<b>&Psi;</b><sub>g</sub>) es consecuencia   de las diferencias de altura con el nivel de referencia    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   (Larcher, 2003). En dos compartimientos de diferente   potencial h&iacute;drico separados por una membrana semipermeable,   el agua se mueve desde el compartimiento   de un alto potencial h&iacute;drico hacia el de bajo potencial   h&iacute;drico. Las diferencias en potencial h&iacute;drico ofrecen la   posibilidad de ocurrencia de un proceso que permite   mantener la homeostasis celular, ya sea por transporte   de agua y otras sustancias entre c&eacute;lulas, tejidos y &oacute;rganos   (iones, carbohidratos, amino&aacute;cidos, etc.) a favor de   gradientes de potencial h&iacute;drico (Zyalalov, 2004; Canny,    <br>   2001; Steudle, 2000; Andreev, 2001).</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="verdana">  <b><font size="3">Mecanismos de osmorregulaci&oacute;n y transporte de agua</font></b></font></p>     <p><font size="2" face="verdana">  El movimiento de agua en tejidos vegetales es de importancia   crucial para el crecimiento de la planta y   ocurre b&aacute;sicamente a trav&eacute;s de tres rutas: el apoplasto,   el simplasto y la ruta transcelular. Esta &uacute;ltima es definida como el transporte de agua a trav&eacute;s de cada c&eacute;lula,   a trav&eacute;s del plasmalema y tonoplasto de cada c&eacute;lula   sin involucrar plasmodesmos (Zyalalov, 2004; Steudle,   2000). Las ra&iacute;ces de la mayor&iacute;a de angiospermas poseen   endodermis, tejido con una estructura impermeable al   agua, que es la banda de Caspary ubicada en las paredes   radiales de las c&eacute;lulas. El c&oacute;rtex es permeable al   agua y &eacute;sta puede moverse por el apoplasto y el simplasto   hasta llegar a la endodermis, donde se mueve simpl&aacute;sticamente   en ra&iacute;ces j&oacute;venes y apopl&aacute;sticamente en   ra&iacute;ces adultas. En el c&oacute;rtex y la estela, las c&eacute;lulas est&aacute;n   conectadas por plasmodesmos y el movimiento de agua   puede ser v&iacute;a el simplasto, el apoplasto, transcelular o   por una combinaci&oacute;n de estas rutas (Zyalalov, 2004;   Canny, 2001; Steudle, 2000).</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">  Para sobrevivir y desarrollarse de forma normal, las   plantas perciben constantemente cambios en el ambiente   circundante y responden a trav&eacute;s de una variedad de   mecanismos moleculares. Los procesos por los cuales las   c&eacute;lulas vegetales son sensibles a modificaciones extracelulares   son de importancia crucial para la supervivencia   vegetal y, en consecuencia, para el mantenimiento de la   vida animal. Uno de los estreses abi&oacute;ticos m&aacute;s importantes   para la productividad de los cultivos se relaciona con   la deshidrataci&oacute;n vegetal bajo niveles de alta salinidad,   sequ&iacute;a y condiciones de baja temperatura. Cada uno de   estos factores genera estr&eacute;s hiperosm&oacute;tico, caracterizado   por el incremento en la concentraci&oacute;n de solutos en    <br>   la c&eacute;lula y el descenso en la presi&oacute;n de turgencia por   p&eacute;rdida de agua (Zyalalov, 2004). La deshidrataci&oacute;n de   las c&eacute;lulas induce la bios&iacute;ntesis, la descompartimentalizaci&oacute;n   y el transporte de la fitohormona &aacute;cido abs&iacute;cico   (ABA), que induce el cierre de los estomas para reducir la   transpiraci&oacute;n (Zhu, 2003). El uso de componentes comunes   y v&iacute;as de respuesta vegetal relacionadas con estreses   permite a las plantas responder parcialmente a un   rango de condiciones adversas despu&eacute;s de ser expuestas   a un tipo de estr&eacute;s espec&iacute;fico (Boudsocq, 2005; Zyalalov,   2004; Canny, 2001; Steudle, 2000; Andreev, 2001).</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">  Aun cuando la irrigaci&oacute;n no est&eacute; disponible, el conocimiento   de las relaciones h&iacute;dricas puede contribuir al   dise&ntilde;o y propuesta de estrategias de manejo de cultivos,   en los que la esistencia a la sequ&iacute;a pueda ser un rasgo   importante para seleccionar. Este conocimiento tambi&eacute;n   provee elementos para el manejo de los cultivos   y asegura que el estr&eacute;s h&iacute;drico sea minimizado en fases   cr&iacute;ticas del crecimiento (Cushman, 2001).</font></p>     <p><font size="2" face="verdana"> Cada vez que el contenido de agua cambia durante la   hidrataci&oacute;n o la deshidrataci&oacute;n, o cuando el contenido   de solutos se incrementa o disminuye, ocurren cambios   en la concentraci&oacute;n de solutos en el citosol bajo el control   regulatorio de la c&eacute;lula. La respuesta pasiva es definida   como ajuste osm&oacute;tico y la respuesta completa es denominada   osmorregulaci&oacute;n. Inicialmente, se pens&oacute; que el   ajuste osm&oacute;tico ocurr&iacute;a tan s&oacute;lo en plantas sometidas a   altas salinidades, pero despu&eacute;s se estudiaron casos en los que las plantas crec&iacute;an en suelos secos y se realizaron muchos trabajos para determinar el efecto del estr&eacute;s h&iacute;drico sobre el crecimiento vegetal (Cushman, 2001; Zyalalov, 2004; Steudle, 2000; Andreev, 2001).</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">  El ajuste osm&oacute;tico proporciona un medio de mantenimiento   del contenido de agua en la c&eacute;lula, importante   para la actividad celular (Aharon et al., 2003; Javot et   al., 2003; Bartels y Ramanjalu, 2005). Debido a que la   p&eacute;rdida de agua puede incrementar la concentraci&oacute;n   de solutos en la c&eacute;lula, las mol&eacute;culas que regulan el metabolismo   pueden ser afectadas. As&iacute;, algunos iones inorg&aacute;nicos,   tales como potasio, calcio, magnesio y cloro,   no pueden ser metabolizados o incorporados dentro de   la estructura celular y se acumulan en situaciones de   deshidrataci&oacute;n (Zyalalov, 2004; Canny, 2001; Steudle,   2000; Andreev, 2001). Ya que estos iones juegan papeles   de regulaci&oacute;n de enzimas, la actividad enzim&aacute;tica puede   verse afectada; de esta forma, las enzimas que requieran   K<sup>+</sup> pueden ser afectadas si la concentraci&oacute;n de este   i&oacute;n se incrementa. Adem&aacute;s de los efectos de la p&eacute;rdida   de agua sobre su concentraci&oacute;n, las plantas expuestas a   altas salinidades externas presentan un problema extra   de altas concentraciones de NaCl, y muchas enzimas se   ver&aacute;n inhibidas por altas concentraciones de sal, aun en   plantas hal&oacute;fitas (Zyalalov, 2004; Canny, 2001; Steudle,   2000; Andreev, 2001).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="verdana"><b>  Acuaporinas y mantenimiento de la turgencia</b></font></p>     <p><font size="3" face="verdana"><b>  </b></font><font size="2" face="verdana">Las acuaporinas (AQP) son canales por los que se transporta   agua en las c&eacute;lulas vegetales y juegan un papel   din&aacute;mico en el mantenimiento de la homeostasis celular   bajo condiciones que requieren modificaciones en el   flujo de agua. Puede requerirse cambios en el suministro y la asignaci&oacute;n de agua para restablecer las alteraciones en el potencial osm&oacute;tico celular y, por lo tanto, es posible que la actividad de las AQP sea crucial (Uehlein et al., 2003; Maurel et al., 2002). Est&iacute;mulos ambientales como la sequ&iacute;a y la salinidad inducen incrementos en los niveles de &aacute;cido absc&iacute;cico (ABA), asociado a la percepci&oacute;n del estr&eacute;s osm&oacute;tico en el tonoplasto y en la membrana plasm&aacute;tica (Maurel et al., 2002).</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">Evidencias recientes soportan el papel de las AQP en el mantenimiento de las relaciones h&iacute;dricas y proveen informaci&oacute;n sobre su funci&oacute;n en la tolerancia al estr&eacute;s por sequ&iacute;a (Aharon et al., 2003; Javot et al., 2003; Bartels y Ramanjalu, 2005). El estr&eacute;s h&iacute;drico y el estr&eacute;s salino requieren cambios en el flujo de agua para permitir a las c&eacute;lulas y a los tejidos adaptarse a esta situaci&oacute;n. La tasa de flujo del agua dentro y fuera de las c&eacute;lulas est&aacute; determinada por el gradiente de potencial h&iacute;drico, que act&uacute;a como fuerza de conducci&oacute;n para el transporte. Las prote&iacute;nas AQP facilitan la osmosis por formaci&oacute;n de canales, como alternativa de difusi&oacute;n de agua a trav&eacute;s de la membrana celular, incrementando la permeabilidad de &eacute;sta (Tyerman et al., 2002).</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">De acuerdo a su secuencia prote&iacute;nica y localizaci&oacute;n en   la membrana celular, las AQP pueden ser clasificadas en   cuatro superfamilias:prote&iacute;nas intr&iacute;nsecas de la membrana   plasm&aacute;tica (PIP), prote&iacute;nas intr&iacute;nsecas del tonoplasto   (TIP,siglas en ingl&eacute;s de <i>tonoplast intrinsic proteins</i>),prote&iacute;nas   intr&iacute;nsecas-nodulina (NIP, siglas en ingl&eacute;s de <i>nodulin intrinsic proteins</i>) y prote&iacute;nas intr&iacute;nsecas peque&ntilde;as (SIP,siglas   en ingl&eacute;s de <i>small intrinsic proteins</i>) (Bartels y Ramanjulu, 2005; Smith-Espinosa et al., 2003, S&aacute;nchez, 2003).</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">  Las AQP est&aacute;n conformadas por seis dominios transmembrana   unidos por las asas A, B, C, D, E y F (<a href="#fig1">figura 1</a>).   Presentan segmentos intracelulares amino y carboxilo   terminal y la mayor&iacute;a son tetram&eacute;ricas, aunque algunas   pueden formar olig&oacute;meros m&aacute;s peque&ntilde;os, como la   AQP4. La permeabilidad de las AQP al agua es alta, del   orden de 3&middot;10<sup>9</sup> mol&eacute;culas de agua por segundo. La fosforilaci&oacute;n   dependiente de Ca<sup>2+</sup> causa una estimulaci&oacute;n   en su actividad (Javot y Maurel, 2002; Bartels y Ramanjulu,   2005; Smith-Espinosa et al., 2003; Tyerman et al., 2002; Hill et al., 2004; S&aacute;nchez, 2003).</font></p>     <p>    <center><a name="fig1"><img src="img/revistas/agc/v24n1/v24n1a04fig1.jpg"></a></center></p>     <p><font size="2" face="verdana">Por su localizaci&oacute;n subcelular, las acuaporinas PIP y TIP   parecen ser buenas candidatas para regular de manera   diferencial el transporte de agua en el tonoplasto y en   la membrana plasm&aacute;tica. La regulaci&oacute;n de las PIP en las   c&eacute;lulas de la ra&iacute;z juega un papel clave en el control del   suministro de agua, mientras que el papel de las TIP se relaciona   con el control del transporte de agua transcelular (Javot y Maurel, 2002; Bartels y Ramanjulu, 2005).</font></p>     <p><font size="2" face="verdana"> Es importante destacar que las AQP se expresan preferencialmente   en la elongaci&oacute;n celular. El equilibrio   eficiente del agua entre c&eacute;lulas vecinas en tejidos en   expansi&oacute;n puede ser requerido para facilitar el suministro   de agua desde los tejidos vasculares y permitir el   crecimiento inducido a favor de gradientes de potencial   h&iacute;drico (Javot y Maurel, 2002). Es interesante observar   que los tipos celulares que corresponden a puntos de   convergencia para el flujo radial de agua parecen ser   ricos en canales de agua, en particular, en el caso de las   c&eacute;lulas de la epidermis, de la endodermis y de las c&eacute;lulas   que rodean los vasos de xilema. Una membrana rica   en AQP puede ser necesaria para facilitar el flujo intenso   de agua a trav&eacute;s de estas c&eacute;lulas. Aqu&eacute;llas pueden representar   puntos cr&iacute;ticos en los que puede ejercerse un   control eficiente del suministro de agua (Javot y Maurel,   2002; Bartels y Ramanjulu, 2005; Smith-Espinosa et al., 2003; Tyerman et al., 2002; Hill et al., 2004).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><b><font size="3" face="verdana">  Compuestos osmoprotectores</font></b></p>     <p><b><font size="3" face="verdana">  </font><font size="2" face="verdana"></font></b><font size="2" face="verdana">El ajuste osm&oacute;tico mantiene el contenido celular de   agua cuando se presenta una reducci&oacute;n en el potencial   osm&oacute;tico, como consecuencia de la acumulaci&oacute;n de   solutos org&aacute;nicos en el citoplasma y en la vacuola en   situaciones de estr&eacute;s por salinidad en el suelo (Serraj   y Sinclair, 2002). Los solutos compatibles (osmolitos,   citosolutos) son metabolitos hidrof&iacute;licos, entre los que   se destacan az&uacute;cares (sacarosa y fructosa), amino&aacute;cidos   (prolina y beta&iacute;na), glicerol, manitol y otros metabolitos   de bajo peso molecular (Chen y Murata, 2002). Los   solutos compatibles no interfieren con el metabolismo   normal de las c&eacute;lulas; se acumulan en el citoplasma y en   la vacuola en altas concentraciones bajo condiciones de   estr&eacute;s osm&oacute;tico, tienen un papel primario en el mantenimiento   de la disminuci&oacute;n del potencial osm&oacute;tico en el   citosol y est&aacute;n involucrados en la estabilidad de prote&iacute;nas   y estructuras celulares (Zhu, 2003; Cushman, 2001; Bartels y Ramanjalu, 2005).</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">  En general, son varios los efectos de los solutos compatibles   en las plantas: los az&uacute;cares interact&uacute;an con las   cabezas polares de los fosfol&iacute;pidos para prevenir la fusi&oacute;n   de la membrana (Chen y Murata, 2002). Las plantas   sujetas a estr&eacute;s muestran acumulaci&oacute;n de prolina y   otros amino&aacute;cidos; el papel que juegan estos amino&aacute;cidos   es variable: pueden actuar como osmolitos en la   regulaci&oacute;n del transporte de iones y en la detoxificaci&oacute;n   de metales pesados; adem&aacute;s tienen efecto en la s&iacute;ntesis   y la actividad enzim&aacute;tica (Ray, 2002). En trigo se observa   que la actividad de glucanil kinasa (GK), prolina y   clicina beta&iacute;na se incrementa durante el estr&eacute;s y tienen   mayor actividad en los brotes que en las ra&iacute;ces (Nayyar,   2003). En plantas de ma&iacute;z se observa un incremento   considerable en la acumulaci&oacute;n de prolina; igualmente,   se presenta un incremento en la actividad de la enzima   prolina deshidrogenada (PDH), tanto en ma&iacute;z com en trigo.   Los brotes de ma&iacute;z bajo estr&eacute;s muestran potenciales   h&iacute;dricos altos y en las dos especies se presenta un incremento   en la concentraci&oacute;n de osmolitos (Ghoulam et al., 2002; Nayyar, 2003).</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">  Tambi&eacute;n, en ca&ntilde;a de az&uacute;car la acumulaci&oacute;n de prolina   aumenta en las plantas sometidas a estr&eacute;s salino,   especialmente en ra&iacute;ces y vainas foliares, siendo este incremento   mayor para el genotipo sensible, excepto en la l&aacute;mina foliar de la hoja m&aacute;s joven (Garc&iacute;a et al., 2003).</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="verdana">  <font size="3"><b>Efecto de las sales sobre las plantas y la productividad de los cultivos</b></font></font></p>     <p><font size="2" face="verdana"><font size="3"><b>  </b></font>De acuerdo con la tolerancia a las condiciones de salinidad   en el suelo, las plantas pueden ser clasificadas   en aqu&eacute;llas que requieren o toleran altas concentraciones   de sales, o hal&oacute;fitas, y las que no toleran la presencia   excesiva de sales, o glic&oacute;fitas. Existen categor&iacute;as   intermedias entre ambos grupos -pseudohal&oacute;fitas-, as&iacute;   como plantas que, sin ser hal&oacute;fitas, requieren sodio   como elemento esencial. La sensibilidad de las plantas   a las sales cambia durante el desarrollo fenol&oacute;gico, dependiendo   de la especie, el cultivar y factores ambientales (Munns, 2002).</font></p>     <p><font size="2" face="verdana"> En las &uacute;ltimas d&eacute;cadas, las investigaciones sobre los   efectos de la salinidad de los suelos en los cultivos reflejan   la importancia de este problema para la agricultura   mundial. El estr&eacute;s salino es uno de los factores ambientales   adversos que influye sobre aspectos de la fisiolog&iacute;a   de las plantas, lo que a su vez limita la productividad de   los cultivos de inter&eacute;s econ&oacute;mico. La salinidad reduce   la capacidad de las plantas para absorber agua, ocasionando   una reducci&oacute;n en el crecimiento (Munns, 2002).   Altas concentraciones de sales en la soluci&oacute;n externa de las c&eacute;lulas vegetales ocasiona varios efectos, que pueden   resumirse fundamentalmente en tres tipos: sequ&iacute;a   osm&oacute;tica, toxicidad debida a la excesiva absorci&oacute;n de   cloro y sodio y un desbalance nutricional (Trinchant et al., 2004; Karimi et al., 2005).</font></p>     <p><font size="2" face="verdana"> El estr&eacute;s osm&oacute;ticoes provocado por el bajo potencial   h&iacute;drico en el suelo y reduce los rendimientos de una   amplia variedad de cultivos en el mundo y el nivel de &aacute;cido absc&iacute;sico (ABA) se incrementa, desencadenando el   cierre estom&aacute;tico y el ajuste osm&oacute;tico, entre otras respuestas (Zhu, 2003; Taylor et al., 2000; Zhu, 2002).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="verdana">  La toxicidad debida a la excesiva absorci&oacute;n de cloro   y sodio produce clorosis marginal de la hoja y con   ello, una disminuci&oacute;n del &aacute;rea fotosint&eacute;tica, lo que determina   reducciones en la fotos&iacute;ntesis neta, como resultado   del aumento de la respiraci&oacute;n en los &oacute;rganos de   la planta. La respiraci&oacute;n de mantenimiento incrementa   los requerimientos de carbohidratos para producir la   energ&iacute;a necesaria para el transporte de iones, la compartimentalizaci&oacute;n   de iones y la reparaci&oacute;n de da&ntilde;os   celulares. Otros efectos de la toxicidad de sales son la   disminuci&oacute;n en la s&iacute;ntesis de prote&iacute;nas, disminuci&oacute;n en   la conductancia estom&aacute;tica, s&iacute;ntesis de pared celular y   expansi&oacute;n celular (Bartels y Ramanjulu, 2005; Munns,   2002). El desbalance nutricional afecta la absorci&oacute;n y el   transporte de otros nutrientes, influyendo de esta manera   sobre la disponibilidad de Zn, Fe, P, Ca, K, Mg, Mn y Cu, entre otros (Munns, 2002).</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="verdana">  <font size="3"><b>Transportadores de alta y baja afinidad para K<sup>+</sup> y Na<sup>+</sup></b></font></font></p>     <p><font size="2" face="verdana">  La homeostasis de la concentraci&oacute;n de iones intracelular   es fundamental para la fisiolog&iacute;a de las c&eacute;lulas vivas.   La regulaci&oacute;n del flujo i&oacute;nico es necesaria para que   las c&eacute;lulas mantengan baja la concentraci&oacute;n de iones   t&oacute;xicos y para la acumulaci&oacute;n de iones esenciales. Las   c&eacute;lulas vegetales emplean el transporte activo primario,   mediado por ATPasas-H<sup>+</sup>, y el transporte activo secundario,   mediado por canales y cotransportadores, para   mantener en el citosol concentraciones altas de K<sup>+</sup> y   bajas de Na<sup>+</sup>. El equilibrio intracelular de Na<sup>+</sup> y K<sup>+</sup> es   importante para las actividades de muchas enzimas citos&oacute;licas   y para mantener el potencial de membrana,   importante para el transporte de iones (Bartels y Ramanjulu, 2005; Munns, 2002).</font></p>     <p><font size="2" face="verdana"> Bajo estr&eacute;s salino, el mantenimiento de la homeostasis   de K<sup>+</sup> y Na<sup>+</sup> es de vital importancia en c&eacute;lulas   vegetales; as&iacute; mismo, es de gran importancia para la   agricultura entender c&oacute;mo las plantas toleran concentraciones   excesivas de Na<sup>+</sup> en el suelo, ya que la   salinidad de suelos causa grandes p&eacute;rdidas de rendimiento   en los cultivos (Hasegawa et al., 2000). Las   concentraciones altas de Na<sup>+</sup> en el suelo limitan el   suministro de K<sup>+</sup> a las c&eacute;lulas de la ra&iacute;z. Cuando el   Na<sup>+</sup> ingresa a las c&eacute;lulas, se acumula en niveles altos   y es t&oacute;xico para las enzimas citos&oacute;licas; por lo tanto,   este desequilibrio de Na<sup>+</sup> bajo condiciones de estr&eacute;s   salino conduce a respuestas fisiol&oacute;gicas que afectan los   proceso de divisi&oacute;n y crecimiento a nivel celular (Tester   y Davenport, 2003; Zhu, 2003; Shi et al., 2003).   En la actualidad, hay mayor comprensi&oacute;n sobre los   sistemas de transporte y mecanismos regulatorios que   median la relaci&oacute;n Na<sup>+</sup>/K<sup>+</sup> en c&eacute;lulas vegetales; &eacute;stos   corresponden a los sistemas de transporte de alta y   baja afinidad ubicados en el plasmalema y en el tonoplasto   (Demidchik et al., 2002; Zhu, 2002; Zhu, 2003).   Las prote&iacute;nas integrales de membrana act&uacute;an como   transportadoras, sufriendo un cambio corformacional   durante el transporte del i&oacute;n y operando en contra de   gradientes de concentraci&oacute;n energizados por gradientes   electroqu&iacute;micos (antiporte Na<sup>+</sup>/H<sup>+</sup>, simporte K<sup>+</sup>/   H<sup>+</sup>, simporte K<sup>+</sup>/Na<sup>+</sup>) (Berthmieau et al., 2003; Sul et   al., 2003). Un tipo de transportador de los iones Na<sup>+</sup> y   K<sup>+</sup> bien reconocido es el perteneciente a la familia de   los HKT, identificado y evaluado en <i>Arabidopsis</i> (Rus et   al., 2004; M&aacute;ser et al., 2002; Fu y Luan, 1998), arroz   (Hori&eacute; et al., 2001; Garciadeblas et al., 2003; Fukuda et al., 2004) y trigo (Laurie et al., 2002), entre otros.</font></p>     <p><font size="2" face="verdana"> El HKT, transportador de alta afinidad para K<sup>+</sup> y     descrito en <i>Arabidopsis</i>, funciona acoplado al Na<sup>+</sup> y     contribuye al suministro de este i&oacute;n en suelos salinos.     Bajo concentraciones altas de Na<sup>+</sup>, el HKT puede tener     m&aacute;s importancia fisiol&oacute;gica en el transporte de Na<sup>+</sup>     que en el de K<sup>+</sup> (Rus, et al., 2004; M&aacute;ser et al., 2002; Fu y Luan, 1998).</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">  En arroz (<i>Oryza sativa</i> cv. Nipponbare) se demostr&oacute;   que el suministro de Na<sup>+</sup> y K<sup>+</sup> est&aacute; mediado por diferentes   transportadores y que el K<sup>+</sup> se bloquea por el   transportador de Na<sup>+</sup>. La expresi&oacute;n del OsHKT1 y el   HKT4 demuestra que &eacute;stos son transportadores de alta   y baja afinidad para Na<sup>+</sup>. Los transportadores OsHKT   est&aacute;n involucrados en el transporte de Na<sup>+</sup> en arroz, y   el OsHKT1 media espec&iacute;ficamente el suministro de Na<sup>+</sup>   en las ra&iacute;ces cuando estas plantas son deficientes en K<sup>+</sup>   (Garciadeblas et al., 2003; Horie et al., 2001; Horie y Schoeder, 2004; Fukuda, 2004).</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">  En el estudio publicado por Laurie et al. (2002), el gen   que codifica la expresi&oacute;n del transportador de alta afinidad para K<sup>+</sup>, el HKT1, fue aislado de ra&iacute;ces de trigo y   se sugiere que media el transporte acoplado de H<sup>+</sup> con   alta afinidad para K<sup>+</sup>. Investigaciones posteriores mostraron   que el HKT1 es energizado a trav&eacute;s del transporte   acoplado de Na<sup>+</sup>, m&aacute;s que de H<sup>+</sup>. Este resultado sugiere   que el suministro de K<sup>+</sup> de alta afinidad en plantas es   conducido por el gradiente electroqu&iacute;mico de Na<sup>+</sup>, que   adem&aacute;s soporta la funci&oacute;n del HKT1 como transportador    <br> de K<sup>+</sup> en plantas de trigo.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="verdana"> <font size="3"><b>Canales selectivos para cationes</b></font></font></p>     <p><font size="2" face="verdana">  El genoma vegetal codifica m&uacute;ltiples canales que median   el transporte de los iones Na<sup>+</sup> y K<sup>+</sup>. Estos canales   transportan iones desde la soluci&oacute;n del suelo y secretan   los iones dentro la corriente xilem&aacute;tica. En contraste   con los transportadores, los canales i&oacute;nicos conducen   r&aacute;pidamente los iones Na<sup>+</sup> y K<sup>+</sup> (Davenport et al., 2005).   Los canales monovalentes de cationes se han clasificado   en tres grupos, dependiendo de su comportamiento   electrofisiol&oacute;gico y de la selectividad i&oacute;nica (Tyerman,   2002): los canales rectificadores de la entrada de K<sup>+</sup>   (KIR) constituyen la v&iacute;a para el suministro de K<sup>+</sup> de alta   afinidad en las ra&iacute;ces de las plantas; los canales rectificadores   de la liberaci&oacute;n de K<sup>+</sup> (KOR), presentes en   diferentes especies vegetales y tejidos, son altamente   selectivos para la liberaci&oacute;n de K<sup>+</sup> en el xilema para   transportarlo hac&iacute;a los brotes de las plantas (Gilliam   y Tester, 2005; Kohler et al., 2002) y los canales NSC,   no selectivos de cationes -o VIC, canales independientes   de voltaje-, son particularmente abundantes en el   tonoplasto de las c&eacute;lulas vegetales y tienen baja afinidad   selectiva para K<sup>+</sup> y Na<sup>+</sup>, comparada con los KIR y   los KOR (Demidchik y Tester, 2002; Schroeder y Horie,   2004; Essah et al., 2003). Los NSC se han caracterizado   en ra&iacute;ces de plantas, epidermis de la hoja y c&eacute;lulas   oclusivas, o &lsquo;guardias&rsquo;. Estudios recientes muestran que   la entrada de Na<sup>+</sup> a trav&eacute;s de los NSC es mucho m&aacute;s alta   que por los canales KIR. Estas propiedades sugieren que   en las c&eacute;lulas en las plantas los canales NSC funcionan   como la mejor v&iacute;a de transporte de Na<sup>+</sup> (Davenport et   al., 2005; Maathuis y Sander, 2001; Schroeder y Horie, 2004; Essah et al., 2003).</font></p>     <p><font size="3" face="verdana"><b>  Canales de aniones</b></font></p>     <p><font size="2" face="verdana"><b>  </b>Las c&eacute;lulas vegetales contienen canales i&oacute;nicos que regulan   la entrada de aniones desde el ambiente externo   y participan en la turgencia y la osmorregulaci&oacute;n, en los   movimientos estom&aacute;ticos y el transporte de nutrientes.   Estos canales se agrupan de acuerdo a la forma como   son activados: por despolarizaci&oacute;n de la membrana,   por hiperpolarizaci&oacute;n y por estiramiento. Los canales   ani&oacute;nicos juegan un papel importante en la regulaci&oacute;n   de los gradientes i&oacute;nicos intracelulares y se han descrito   en el plasmalema, el tonoplasto, la membrana de los   tilacoides y la membrana interna de la mitocondria. En   plantas, se identificaron dos conductancias ani&oacute;nicas   distintas en el par&eacute;nquima xilem&aacute;tico: la conductancia   ani&oacute;nica r&aacute;pida (QUAC) y la conductancia ani&oacute;nica lenta   (SLAC). La conductancia QUAC fue relacionada con el   transporte de los aniones nitrato y cloro hacia el xilema   (Kohler et al., 2002; Gilliham y Tester, 2005; De Boer y Volvok, 2003).</font></p>     <p><font size="3" face="verdana"><b> Compartimentalizaci&oacute;n y etrusi&oacute;n de Na<sup>+</sup></b></font></p>     <p><font size="2" face="verdana"><b>  </b>Existen dos mecanismos para controlar estrictamente   la concentraci&oacute;n de Na<sup>+</sup> y prevenir su exceso en el   simplasto de las c&eacute;lulas vegetales: uno permite la compartimentalizaci&oacute;n    <br>   de Na<sup>+</sup> en la vacuola mediada por   aniportes Na<sup>+</sup>/H<sup>+</sup> localizados en el tonoplasto (Hori&eacute;   y Schroender, 2004; Yokoy et al., 2002; Fukuda et al.,   2004) y el otro, el transporte de Na<sup>+</sup> hacia el apoplasto,   a trav&eacute;s de antiportes Na<sup>+</sup>/H<sup>+</sup> ubicados en la membrana   citoplasm&aacute;tica. La capacidad para evitar la toxicidad   por Na<sup>+</sup> y controlar el flujo de iones es cr&iacute;tica en las c&eacute;lulas   vegetales en condiciones de estr&eacute;s salino (Munns,   2002; Qiu et al., 2004; Qiu et al., 2002; Benito y Rodr&iacute;guez,   2003). En plantas superiores, se ha identificado un   antiporte Na<sup>+</sup>/H<sup>+</sup>, el SOS1 (siglas en ingl&eacute;s de <i>salt overly   sensitive </i>1), que juega un papel importante en la etrusi&oacute;n   de sodio desde las c&eacute;lulas epid&eacute;rmicas de la ra&iacute;z bajo   condiciones de estr&eacute;s salino. El eflujo de sodio a trav&eacute;s   del antiporte SOS1 es vital para la tolerancia a sales de   las c&eacute;lulas meristem&aacute;ticas de la ra&iacute;z y de los &aacute;pices de   brotes, ya que &eacute;stas no poseen grandes vacuolas para   compartimetalizar el sodio. El eflujo de sodio a trav&eacute;s   de SOS1 bajo estr&eacute;s salino es regulado por el complejo kinasa SOS2- SOS3.</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">  En <i>Arabidopsis</i>, por ejemplo, el estr&eacute;s salino induce   un incremento en la concentraci&oacute;n de calcio, percibido   por el SOS3, prote&iacute;na sensora de Ca<sup>+2</sup> que activa al   SOS2; a su vez, el SOS2 fosforila el antiporte SOS1 y lo   activa. Adem&aacute;s, el incremento de calcio en el citosol   bajo condiciones de estr&eacute;s salino parece estar regulado por acumulaci&oacute;n de ABA (Chinnusamy., et al 2005).</font><font size="2" face="verdana"> Por otro lado, el SOS2 tambi&eacute;n posee la capacidad de   activar el antiporte Na<sup>+</sup>/H<sup>+</sup> ubicado en el tonoplastode c&eacute;lulas adultas de la ra&iacute;z, para secuestrar sodio en    <br> la vacuolas (Chinnusamy et al., 2005).</font></p>     <p><font size="3" face="verdana"><b> Papel del ABA en la osmorregulaci&oacute;n</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="verdana"><b>  </b>El &aacute;cido absc&iacute;sico (ABA) juega un papel crucial en diferentes   aspectos de la osmorregulaci&oacute;n en casos de estr&eacute;s   h&iacute;drico y salino durante el crecimiento vegetativo. El   papel del ABA como se&ntilde;al de estr&eacute;s a larga distancia producida   en la ra&iacute;z est&aacute; bien establecido. Usualmente, este   fitorregulador es sintetizado en el citosol de las c&eacute;lulas   de la ra&iacute;z, se transporta por el apoplasto de la ra&iacute;z y   es conducido v&iacute;a xilema con la corriente transpiratoria   a los brotes (Steudle, 2000; Coursol et al., 2003; Zyalalov,   2004). La reducci&oacute;n de la transpiraci&oacute;n a trav&eacute;s   de los estomas es una respuesta crucial regulada por   ABA en plantas expuestas a estr&eacute;s. El cierre de los poros   estom&aacute;ticos en las hojas es un mecanismo por el cual   las plantas uperiores regulan el balance h&iacute;drico. Las   c&eacute;lulas oclusivas o guardias, que integran el poro estom&aacute;tico,   responden a cambios en los niveles h&iacute;dricos. El   cierre estom&aacute;tico inducido por el ABA es mediado por la   reducci&oacute;n en la presi&oacute;n de turgencia de las c&eacute;lulas guardias,   que requieren un eflujo de K<sup>+</sup> y Cl-, la remoci&oacute;n   de sacarosa y la conversi&oacute;n de &aacute;cido m&aacute;lico en malato   e H<sup>+</sup>. El ABA activa un canal de entrada de calcio, ocasionando   un incremento en la concentraci&oacute;n de Ca<sup>+2</sup>   en el citosol de las c&eacute;lulas guardias, la inhibici&oacute;n de los   canales de entrada de K<sup>+</sup> y la activaci&oacute;n de los canales   de salida de K<sup>+</sup>; todo esto conlleva un incremento   del potencial h&iacute;drico, la salida de agua y la p&eacute;rdida de   turgencia de las c&eacute;lulas guardias, lo que conduce al cierre   estom&aacute;tico (Coursol et al., 2003; Pandey y Assmann,   2004; Assmann y Wang, 2001; Inman-Barber y Smith, 2005; Zyalalov, 2004; Steudle, 2000) .</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="verdana"><b>  Conclusiones</b></font></p>     <p><font size="3" face="verdana"><b>  </b></font><font size="2" face="verdana">La comprensi&oacute;n de los mecanismos bioqu&iacute;micos y fisiol&oacute;gicos involucrados en la osmorregulaci&oacute;n que exhiben   las plantas en condiciones de estr&eacute;s h&iacute;drico y   salino plantea un desaf&iacute;o futuro de gran importancia,   teniendo en cuenta la p&eacute;rdida de tierras cultivables a   causa de la salinizaci&oacute;n y la erosi&oacute;n de suelos en todo   el mundo. Al estudiar la respuesta de las plantas frente   al estr&eacute;s ambiental, se reconocen diferentes procesos   por los cuales las plantas logran adaptarse y soportar   los cambios que ocurren en su potencial h&iacute;drico por   escasez de agua o salinidad elevada. El cierre estom&aacute;tico   evita la reducci&oacute;n del potencial h&iacute;drico e involucra   ajustes fisiol&oacute;gicos y metab&oacute;licos. La s&iacute;ntesis   de ciertos metabolitos, como mino&aacute;cidos, az&uacute;cares   solubles, polioles, poliaminas, fructanos y pigmentos   (carotenoides, antocianos, betala&iacute;nas) no interfiere en   el metabolismo celular, juega un papel determinante    <br>   en el mantenimiento de la turgencia celular. Estos   metabolitos interact&uacute;an con l&iacute;pidos y prote&iacute;nas, previniendo   posibles alteraciones de las membranas celulares   y disociando complejos proteicos e inactivaci&oacute;n de   enzimas. Las plantas expuestas a altas concentraciones   extracelulares de sales transportan iones a trav&eacute;s de los   sistemas selectivos de K<sup>+</sup> y Na<sup>+</sup> y de los no selectivos   localizados en las membranas celular y vacuolar. La   osmorregulaci&oacute;n confiere a las plantas la capacidad de   tolerar condiciones de escasez de agua y salinidad elevadas,   con la expresi&oacute;n de mecanismos adaptativos que   evitan la disminuci&oacute;n de la fotos&iacute;ntesis, las alteraciones   en la traslocaci&oacute;n y la distribuci&oacute;n de fotoasimilados y   las p&eacute;rdidas en rendimiento; hechos que tienen trascendencia   significativa en el normal funcionamiento   de la planta y en la productividad de los cultivos. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="verdana"><b>Literatura citada </b></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">Andreev, I. 2001. Functions of the vacuole in higher plants cells. Russian J. Plant Physiol. 48 (5), 777-787.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-9965200600010000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Assmann, S y X. Wang. 2001. From milliseconds to millions of   years: guard cells and environmental responses. Plant Biol. 4, 421-428.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-9965200600010000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Bartels , D y S. Ramanjulu. 2005. Drought and salt tolerance in plants. Plant Sciences 24, 23-58.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-9965200600010000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana"> Benito, B y A. Rodr&iacute;guez. 2003. Molecular cloning and characterization   of a sodium-pump ATPase of the moss Physcomitrella patens. Plant J. 36, 382-389.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-9965200600010000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  <font size="2" face="verdana">Berthomieu, P., G. Con&eacute;j&eacute;ro, A. Nublat, W. Brackenbury, C. Lambert, C. Savio, N. Uozumi, S. Oiki, K. Yamada y F. Cellier. 2003. Functional analysis of AtHKT1 in Arabidopsis shows that Na<sup>+</sup> recirculation by the phloem is crucial for salt tolerance. EMBO J. 22, 2004-2014</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-9965200600010000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Boudsocq, M y C. Lauri&egrave;re. 2005. Osmotic signaling in plants.   Multiple pathways mediated by emerging kinase families. Plant Physiol. 138, 1185-1194 .</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-9965200600010000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Canny, M. 2001. Contributions to the debate on water transport. Am. J. Bot. 88, 43-46.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-9965200600010000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Coursol, S., L. Fan, H. Le Stunff, S. Spiegel, S. Gilroy y S. Assmann.   2003. Sphingolipid signalling in Arabidopsis guard cells involves heterotrimeric G proteins. Nature 423, 651-654.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0120-9965200600010000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Cushman, J.C. 2001. Osmoregulation in plants: implications for agriculture. Am. Zool 41, 758-769.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0120-9965200600010000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Chen, T y N. Murata. 2002. Enhancement of tolerance of abiotic   stress by metabolic engineering of betaines and other compatible solutes. Plant Biol. 5, 250-257.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-9965200600010000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Chinnusamy, V., A. Jagendorf y J. Zhu. 2005. Understanding and improving salt tolerance in plants. Crop Science 45, 437-448.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-9965200600010000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Davenport, R., R. James, A. Zakrisson, M. Tester y R. Munns.   2005. Control of sodium transport in durum wheat. Plant Physiol. 137, 807-818.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0120-9965200600010000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">De Boer, A y V. Volkov. 2003. Logistics of water and salt transport   through the plant: structure and functioning of the xylem. Plant Cell Environ. 26, 87-101.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0120-9965200600010000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Demidchik, V y M. Tester. 2002. Sodium fluxes through nonselective   cation in the plasma membrane of protoplasts from Arabidopsis roots. Plant Physiol. 128, 379-387.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-9965200600010000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Essah, P., R. Davenport y M. Tester. 2003. Sodium influx and accumulation in Arabidopsis. Plant Physiol. 133, 307-318.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-9965200600010000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Fu, H y S. Luan. 1998. AtKUP1: a dual affinity transporter from Arabidopsis. Plant Cell 10, 63-73.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-9965200600010000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Fukuda, A., A. Nakamura, A. Tagiri, H. Tanaka, A. Miyao, H. Hirochika   y Y. Tanaka. 2004. Function, intracellular localization   and the importance in salt tolerance of a vacuolar Na<sup>+</sup>/H<sup>+</sup> antiporter from rice. Plant Cell Physiol. 45, 146-159.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-9965200600010000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Garc&iacute;a, M y E. Medina. 2003. Crecimiento y acumulaci&oacute;n de prolina   en dos genotipos de ca&ntilde;a de az&uacute;car sometidos a salinizaci&oacute;n con cloruro de sodio. Agronom&iacute;a Colombiana 20, 168-179.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-9965200600010000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Garciadebl&aacute;s, B., M. Senn, M. Ba&ntilde;uelos y A. Rodr&iacute;guez.   2003. Sodium transport and HKT transporters: the rice model. The Plant J. 34(6), 788-799.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-9965200600010000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Ghoulam. C., A. Foursy y K. Fares. 2002. Effects of salt stress   on growth, inorganic ions and proline accumulation in relation   to osmotic adjustment in five sugar beet cultivars. Environ. Exp. Bot. 47, 39-50.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0120-9965200600010000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Gilliham, M y M. Tester. 2005. The regulation of anion loading to the maize root xylem. Plant Physiol. 137, 819-828.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0120-9965200600010000400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Hasegawa, P., R. Bressan, A. Zhu y H. Bohnert. 2000. Plant cellular   and molecular responses to high salinity. Annu. Rev. Plant. Physiol. Plant Mol. Biol. 51, 463-499.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0120-9965200600010000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Hill, A., B. Shachar-Hill y Y. Shachar-Hill. 2004. What are aquaporines for? J. Membrane Biol. 197, 1-32.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0120-9965200600010000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Horie, T., K. Yoshida, H. Nakayama, K. Yamada, S. Oiki y A.   Shinmyo. 2001. Two types of HKT transporters with different   properties of Na<sup>+</sup> and K<sup>+</sup> transport in Oryza sativa. The Plant J. 27(2), 129-142.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0120-9965200600010000400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana"> Horie, T y J. Schroeder. 2004. Sodium transporters in plants. Diverse   genes and physiological functions . Plant Physiol. 136, 2457-2462.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0120-9965200600010000400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Iman-Barber, N. y D. Smith. 2005. Water relations in sugarcane   and response to water deficits. Field Crops Research 92(2-3), 185-202.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0120-9965200600010000400026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  IFPRI (International Food Policy and Research Institute). 2002. Global   water outlook to 2005: an impending crisis. International   Food Policy and Research Institute, Washington DC. http://ifpri.cgiar.org/media/water.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0120-9965200600010000400027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Javot, H y C. Maurel. 2002. The role of aquaporins in root water uptake. Annals of Botany 90, 301-313.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0120-9965200600010000400028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Javot, H., V. Lauvergeat, V. Santoni, F. Martin, J. G&uuml;&ccedil;l&uuml;, J. Vinh, J   Heyes, K. Franck, A. Sch&auml;ffner y D. Bouchez. 2003. Role of a   single aquaporin isoform in root water uptake. Plant Cell 15, 509-522.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0120-9965200600010000400029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Karimi, G., M. Ghorbanli, H. Heidari, R. Khavari y M. Assareh.   2005. The effects of NaCl on growth, water relations, osmolytes   and ion content in Kochia prostrate. Biologia Plantarum 49 (2), 301-304.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0120-9965200600010000400030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Kohler, B., A. Hills y M. Blatt. 2003. Control of guard cell ion channels   by hydrogen peroxide and abscisic acid indicates their action   through alternate signaling pathways. Plant Physiol. 131, 385-388</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0120-9965200600010000400031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Larcher, W. 2003. Physiological plant ecology. 4th ed. Springer, Germany. p. 231.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0120-9965200600010000400032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana"> Lauri, E., K. feeney, F. Maathuis, P. Heard, S. Brown y R. Leigh.   2002. A role for HKT1 in sodium uptake by wheat roots. The   Plant J. 32(2), 139-154. Levitt, J. 1980. Responses of plants to environmental stress. 2nd. edition. Academic Press, New York.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0120-9965200600010000400033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Maathuis, F y D. Sander. 2001. Sodium uptake in Arabidopsis roots is regulated by cyclic nucleotides. Plant Physiol. 127, 1617-1625</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0120-9965200600010000400034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  M&aacute;ser, P., B. Eckelman, R. Vaidyanathan, T. Horie, D. Fairbairn,   M. Kubo, M. Yamagami, K. Gamaguchy, M. Nishimura y A.   Uozumi. 2002. Altered shoot/root Na<sup>+</sup> distribution and bifurcating   salt sensitivity in Arabidopsis by genetic disruption of the Na<sup>+</sup> transporter AtHKT1. Febs. Lett. 531, 157-161</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0120-9965200600010000400035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Munns, R. 2002. Comparative physiology of salt and water stress. Plant Cell Environ. 25, 239-250.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0120-9965200600010000400036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Nayyar, H. 2003. Variation in osmoregulation in differentially   drought-sensitive wheat genotypes involves calcium. Biologia Plantarum 47 (4), 541-547.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0120-9965200600010000400037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">Pandey, S. y S. Assmann. 2004. The Arabidopsis putative G proteincoupled   receptor GCRI interacts with the G protein a subunit GPAI and regulates abscisic acid signalling. Plant Cell 16, 1616-1632.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0120-9965200600010000400038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Rai, V. 2002. Role of amino acids in plants responses to stresses. Biologia Plantarum 45(4), 481-487.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0120-9965200600010000400039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Rus, A., B. Lee, A. Mu&ntilde;oz, A. Sharkhuu, J. Zhu, R. Bressan y P.   Hasegawa. 2004. AtHKT1 facilitates Na<sup>+</sup> homeostasis and K<sup>+</sup> nutrition in planta. Plant Physiol. 136, 2500-2511.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0120-9965200600010000400040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Qiu, Q., Y. Guo, M. Dietrich, K. Schumaker y J. Zhu. 2002. Regulation   of SOS1, a plasma membrane Na<sup>+</sup>/H<sup>+</sup> exchanger in   Arabidopsis thaliana, by SOS2 and SOS3. Proc. Natl. Acad. Sci. 99, 8436-8441.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0120-9965200600010000400041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Qiu, Q., Y. Guo, F. Quintero, J. Pardo, K. Schumaker, y J. Zhu.   2004. Regulation of vacuolar Na<sup>+</sup>/H<sup>+</sup> exchange in Arabidopsis   thaliana by the salt-overly-sensitive (SOS) pathway. J. Biol. Chem. 279, 207-215.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0120-9965200600010000400042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  S&aacute;nchez, C. 2003. Acuaporinas: prote&iacute;nas mediadoras del transporte   de agua. Colombia M&eacute;dica 34 (4), 220-227. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0120-9965200600010000400043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">Serraj, R y T. Sinclair. 2002. Osmolyte accumulation: Can it really     help increase in crop yield under drought conditions? Plant   Cell Environ. 25, 333- 341.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0120-9965200600010000400044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Shi, H., B. Lee, S. Wu, S y J. Zhu. 2003. Overexpression of a plasma   membrane Na<sup>+</sup>/H<sup>+</sup> antiporter gene improves salt tolerance in Arabidopsis thaliana. Nat Biotechnol. 21, 81-85.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0120-9965200600010000400045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Shinozaki, K y K. Yamaguchi-Shinozaki. 1997. Gene expression   and signal transduction in water-stress response. Plant Physiol. 115, 327-334.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0120-9965200600010000400046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Smith-Espinoza, C., A. Richter, F. Salamini y D. Bartels. 2003. Dissecting   the response to dehydration and salt (NaCl) in the resurrection plant Craterostigma plantagenium. Plant Cell Environ. 26, 1307-1315.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0120-9965200600010000400047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Steudle, E. 2000. Water uptake by roots: effects of water deficit. J. Exp. Bot. 51(350), 1531-1542.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0120-9965200600010000400048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Sul, H., E. Balderas, R. Vera-Estrella, D. Golldack, F. Quigley, C.   Zhao, O. Pantoja y H. Bohnert. 2003. Expression of the cation   transporter McHKT1 in a halophyte. Plant. Mol. Biol. 52, 967-980</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S0120-9965200600010000400049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Taylor, I., A. Burbidage y A. Thompson. J. 2000. Control of abscisic synthesis. J. Exp. Bot. 51, 1563-1574.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0120-9965200600010000400050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Tester, M. y R. Davenport. 2003. Na<sup>+</sup> tolerance and Na<sup>+</sup> transport in higher plants. Annals of Botany 91, 503-527.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S0120-9965200600010000400051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Trinchant, J., A. Boscari, G. Spennato, G. van De Sype y D. Rudulier.   2004. Proline betaine accumulation and metabolism in   alfalfa plants under sodium chloride stress. Exploring its compartmentalization in nodules. Plant Physiol. 135, 1583-1594.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0120-9965200600010000400052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">Tyerman, S. 2002. Nonselective cation channels. Multiple functions and commonalities. Plant Physiol. 128, 327-328.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S0120-9965200600010000400053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Tyerman, S.D., C. Niemietz y H. Bramley. 2002. Plant aquaporins:   multifunctional water and solute channels with expanding roles. Plant Cell Environ. 25, 173-194.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0120-9965200600010000400054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Uehlein, N., C. Lovisolo, F. Siefritz y R. Kaldenhoff. 2003.   The tobacco aquaporin NtAQP1 is a membrane CO2 pore with physiological functions. Nature 425, 734-737</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S0120-9965200600010000400055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Vera-Estrella, R., B. Barkla, H. Bohnert y O. Pantoja. 2004.   Novel regulation of aquaporins during osmotic stress. Plant Physiol. 135, 2318-2329.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S0120-9965200600010000400056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Yokoi, S., F. Quintero, B. Cubero, M. Ruiz, R. Bressan, P. Hasegawa   y J. Pardo. 2002. Differential expression and function of Arabidopsis   thaliana NHX Na<sup>+</sup>/H<sup>+</sup> antiporters in the salt stress response. Plant J. 30, 529-539.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000146&pid=S0120-9965200600010000400057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Zyalalov, A. 2004. Water flows in higher plants: physiology, evolution, and system analysis. Russian J. Plant Physiol. 51(4), 547-555.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000147&pid=S0120-9965200600010000400058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Zhu, J.K. 2000. Genetic analysis of plant salt tolerance using Arabidopsis. Plant Physiol. 124, 941-948</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000148&pid=S0120-9965200600010000400059&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Zhu, J.K. 2002. Salt and drought stress signal transduction in plants. Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Molec. Biol. 53, 247-273.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S0120-9965200600010000400060&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Zhu, J.K. 2003. Salt and drought stress signal transduction in plants. Annu. Rev. Plant Biol. 53, 247-273.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000150&pid=S0120-9965200600010000400061&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">  Zhu, J.K. 2003. Regulation of ion homeostasis under salt stress.   Plant Biol. 6, 441-445.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000151&pid=S0120-9965200600010000400062&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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