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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Caracterización molecular del complejo de especies Ralstonia solanacearum en la zona bananera de Urabá]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Bayer CropsScience S.A. Investigación y Desarrollo ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Moko disease, caused by Ralstonia solanacearum, is one of the most important phytopathological problems of the banana agribusiness in Uraba (Colombia). This bacterium is featured by having high genetic plasticity, which difficults the design of control strategies. The aim of the present research was to establish the components of the R. solanacearum species complex, through the study of the genotypic features of a series of strains isolated from banana plants, weeds and soils from different plantations in Uraba. The analysis was carried out through multiple PCR and sequencing of three genomic regions (egl and fliC genes, and region 16S of 16S rDNA). The results indicate that all the studied isolates are associated to phylotype II, and most of them belong to sequevar 4. However, in the case of some strains, it was not possible to associate the PCR results with the sequevars that have been reported for race 2. Interestingly, two isolates from the department of Magdalena used as comparative controls for the bacterial population of Uraba, were found to belong to sequevar 6. These results raise important epidemiological aspects of the management of moko disease in the banana growing region of Uraba.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2"> &nbsp;     <p><b>    <center><font size="4">Caracterizaci&oacute;n molecular del complejo de especies <i>Ralstonia solanacearum</i> en la zona bananera de Urab&aacute;</font></center></b></p> &nbsp;     <p><b>    <center><font size="3">Molecular characterization of the <i>Ralstonia solanacearum</i> species   complex in the banana growing region of Uraba</font></center></b></p> &nbsp;       <p>Carolina Cardozo<sup>1</sup>, Paola Rodr&iacute;guez<sup>2</sup> y Mauricio Mar&iacute;n<sup>1, 3</sup></p>     <p>1 Laboratorio de Biolog&iacute;a Celular y Molecular, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia, Medell&iacute;n.    <br> 2 Centro de Investigaciones del Banano (Cenibanano), Augura, Medell&iacute;n; actualmente: Investigaci&oacute;n y Desarrollo, Bayer CropsScience S.A., Carepa-Antioquia (Colombia).    <br> 3 Autor de correspondencia. <a href="mailto:mamarinm@unalmed.edu.co">mamarinm@unalmed.edu.co</a></p>     <p>Fecha de recepci&oacute;n: 16 de febrero de 2009. Aceptado para publicaci&oacute;n: 2 de julio de 2009</p> <hr size="1">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>RESUMEN</b></p>     <p>La enfermedad del moko, causada por <i>Ralstonia solanacearum</i>,   es uno de los problemas fitosanitarios m&aacute;s importantes de la   agroindustria bananera de Urab&aacute;. Esta bacteria se caracteriza   por presentar una gran plasticidad gen&eacute;tica, lo cual dificulta el   dise&ntilde;o de estrategias para su control. Con el fin de determinar los   componentes del complejo de especies de <i>R. solanacearum</i> presentes   en la regi&oacute;n de Urab&aacute;, en esta investigaci&oacute;n se realiz&oacute; la caracterizaci&oacute;n   genot&iacute;pica de una poblaci&oacute;n de <i>R. solanacearum</i>   procedente de plantas de banano, arvenses y suelos de diversas   plantaciones de esta zona. La evaluaci&oacute;n se realiz&oacute; mediante   PCR m&uacute;ltiple y secuenciaci&oacute;n de tres regiones del genoma   (genes <i>egl</i>, <i>fliC</i> y regi&oacute;n 16S del ADNr). Los resultados indican   que todas las cepas bacteriales estudiadas est&aacute;n asociadas al   filotipo II, y en su mayor&iacute;a pertenecen al secuevar 4, aunque   en el caso de algunos aislamientos no fue posible su filiaci&oacute;n   con ninguno de los tres secuevares reportados para la raza 2.   Dos aislamientos obtenidos del departamento del Magdalena,   utilizados con fines comparativos, resultaron estar asociados   al secuevar 6. Los resultados de esta investigaci&oacute;n plantean   importantes aspectos epidemiol&oacute;gicos a ser tenidos en cuenta   en el manejo de la enfermedad del moko en las plantaciones de banano del Urab&aacute; antioque&ntilde;o.</p>     <p><b>Palabras clave:</b> ADNr 16S, endoglucanasa, filotipo, flagelina, moko, secuevar.</p> <hr size="1">     <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p>Moko disease, caused by <i>Ralstonia solanacearum</i>, is one of the   most important phytopathological problems of the banana   agribusiness in Uraba (Colombia). This bacterium is featured   by having high genetic plasticity, which difficults the design   of control strategies. The aim of the present research was   to establish the components of the <i>R. solanacearum</i> species   complex, through the study of the genotypic features of a   series of strains isolated from banana plants, weeds and soils   from different plantations in Uraba. The analysis was carried   out through multiple PCR and sequencing of three genomic   regions (<i>egl</i> and <i>fliC</i> genes, and region 16S of 16S rDNA). The   results indicate that all the studied isolates are associated to   phylotype II, and most of them belong to sequevar 4. However,   in the case of some strains, it was not possible to associate the   PCR results with the sequevars that have been reported for race   2. Interestingly, two isolates from the department of Magdalena   used as comparative controls for the bacterial population of   Uraba, were found to belong to sequevar 6. These results raise   important epidemiological aspects of the management of moko disease in the banana growing region of Uraba.</p>     <p><b>Key words:</b> rDNA 16S, endoglucanase, phylotype, flageline, Moko disease, sequevar.</p> <hr size="1"> &nbsp;     <p><b><font size="3">Introducci&oacute;n</font></b></p>     <p>La enfermedad del moko del pl&aacute;tano y banano causada por   <i>Ralstonia solanacearum</i> (Smith) Yabuuchi <i>et al</i>. es uno de   los problemas fitosanitarios m&aacute;s limitantes de este cultivo   en Colombia, siendo los departamentos de Antioquia (en   la regi&oacute;n de Urab&aacute;) y Quind&iacute;o las &aacute;reas m&aacute;s afectadas por   esta enfermedad (Obreg&oacute;n, 2007). <i>R. solanacearum</i> es un   fitopat&oacute;geno altamente agresivo, con una distribuci&oacute;n global   y un inusual amplio rango de hospederos de al menos   50 familias bot&aacute;nicas diferentes, incluyendo cultivos como   papa, tomate, tabaco, banano, heliconias, anturios y man&iacute;   (Hayward <i>et al</i>., 1998). En diferentes estudios se ha encontrado que <i>R. solanacearum</i> es una especie heterog&eacute;nea que debe   considerarse como un complejo, es decir, como un grupo   de aislamientos relacionados cuyos miembros individuales   pueden representar m&aacute;s que una especie (Taghavi <i>et al</i>., 1996;   Fegan y Prior, 2005). Tradicionalmente los miembros de <i>R. solanacearum</i> han sido subdivididos en cinco razas con base   en su rango de hospederos y en cinco biovares seg&uacute;n su capacidad   metab&oacute;lica para la utilizaci&oacute;n de diversas fuentes   de carbono. Una variante tropical del biovar 2 (2T o N2)   es considerada por Hayward <i>et al</i>. (1992) como un sexto   biovar. Desde el punto de vista gen&eacute;tico, la especie se ha segmentado en dos divisiones (I y II) (Cook <i>et al</i>., 1989).</p>     <p>La divisi&oacute;n I comprende representantes de los biovares 3,   4 y 5, principalmente encontrados en Asia, mientras que   la divisi&oacute;n II contiene los biovares 1, 2 y N2, de origen   americano. Esta agrupaci&oacute;n fue posteriormente confirmada   mediante an&aacute;lisis de las secuencias 16S del ADNr   (Taghavi <i>et al</i>., 1996). Por otra parte, Poussier <i>et al</i>. (2000)   demostraron la existencia de un subgrupo de aislamientos   de origen africano dentro del biovar 1. Fegan y Prior   (2005) plantean la existencia de cuatro grupos gen&eacute;ticos   denominados filotipos y correspondientes a diferentes   or&iacute;genes geogr&aacute;ficos (Asia <i>sensu lato</i>, Am&eacute;rica, Indonesia   y &Aacute;frica). Cada filotipo est&aacute; conformado por un n&uacute;mero   de secuevares, que son definidos como un grupo de cepas   con una secuencia altamente conservada dentro de una   regi&oacute;n determinada del genoma, que para el caso de <i>R. solanacearum</i> corresponde al gen endoglucanasa (<i>egl</i>). Los   secuevares incluyen un n&uacute;mero de l&iacute;neas clonales identificadas   a partir de an&aacute;lisis con marcadores moleculares tipo   AFLP o rep-PCR (Fegan y Prior, 2005).</p>     <p>Uno de los primeros an&aacute;lisis gen&eacute;ticos de los aislamientos   de <i>R. solanacearum</i> raza 2 fue realizado por Cook <i>et al</i>.   (1989), quienes mediante la utilizaci&oacute;n de RFLP encontraron   la existencia de tres genotipos definidos como MLG 24,   MLG 25 y MLG 28. Posteriormente, con el desarrollo de   los conceptos de filotipos y secuevares, se determin&oacute; que   la raza 2 de <i>R. solanacearum</i> est&aacute; asociada al filotipo II, y   que las cepas de los MLG 24, 25 y 28 correspond&iacute;an a los   secuevares 3, 4 y 6, respectivamente (Fegan, 2005). M&aacute;s   recientemente, Fegan y Prior (2006), basados en secuencias   del gen <i>egl</i>, demostraron que las cepas causantes del   moko ten&iacute;an un origen polifil&eacute;tico, con algunos genotipos   muy relacionados con aislamientos patog&eacute;nicos a tomate y   papa. A pesar de los avances en la caracterizaci&oacute;n gen&eacute;tica   de las cepas de la raza 2 de <i>R. solanacearum</i>, es necesario   continuar evaluando el grado de variabilidad de este pat&oacute;geno   en diferentes agroecosistemas, por cuanto se cree   que la diversidad de dicha raza est&aacute; subestimada (Fegan   y Prior, 2006). Esta investigaci&oacute;n se plante&oacute; con el fin de   obtener la informaci&oacute;n relacionada con los componentes   del complejo de especies de <i>R. solanacearum</i> en la zona   bananera de Urab&aacute;, como una herramienta para el apoyo   de los programas de manejo del moko de las mus&aacute;ceas en   Colombia.</p> &nbsp;       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><font size="3">Materiales y m&eacute;todos</font></b></p>     <p><b>Cepas bacteriales</b>    <br> El estudio incluy&oacute; 50 aislamientos, 33 de los cuales hacen   parte de una colecci&oacute;n de cepas bacteriales previamente establecida   por Cenibanano en plantas de banano y arvenses   asociadas al cultivo (Obreg&oacute;n, 2007), mientras que las otras   17 cepas fueron aisladas y purificadas en esta investigaci&oacute;n   a partir de cultivos de banano y suelos de la regi&oacute;n de Urab&aacute;   y el departamento del Magdalena; estas &uacute;ltimas cepas fueron   utilizadas con fines comparativos. Adicionalmente se   incluyeron como control positivo dos cepas representativas   del filotipo II prove&iacute;das por el CIAT (<a href="#tab1">Tab. 1</a>).</p>     <p>    <center><a name="tab1"><img src="img/revistas/agc/v27n2/v27n2a08tab1.GIF"></a></center></p>         <p><b>Aislamiento y purificaci&oacute;n de las   bacterias en medio de cultivo</b>    <br> Una vez detectadas las plantas de banano con sintomatolog&iacute;a   de marchitez bacterial, se procedi&oacute; a aislar la bacteria a   partir de peque&ntilde;as porciones de tejido vascular siguiendo   la metodolog&iacute;a de G&oacute;mez <i>et al</i>. (2005). Para el caso de las   muestras de suelo provenientes de los focos de la enfermedad,   se tomaron 500 g alrededor de las plantas y a una profundidad   de 5 cm. Una vez en el laboratorio se realizaron   diluciones seriadas en buffer fosfato 0,05 M a partir de 1   g de suelo, obteniendo 100 &mu;L de las diluciones 10<sup>-1</sup> y 10<sup>-3</sup>   para su siembra en medio SMSA modificado.</p>     <p><b>Confirmaci&oacute;n de la identidad de los aislamientos</b>    <br>   En todos los aislamientos utilizados en la investigaci&oacute;n se   verific&oacute; su identidad taxon&oacute;mica mediante la utilizaci&oacute;n de   los cebadores 759/760 (759: 5&#39; GTC GCC GTC AAC TCA   CTT TCC 3&#39;; 760: 5&#39; GTC GCC GTC AGC AAT GCG GAA   TCG 3&#39;) (Fegan y Prior, 2005). Para esta prueba se tom&oacute;   una lupada bacterial de cada aislamiento en 100 &mu;L de agua   destilada est&eacute;ril y se llev&oacute; a ebullici&oacute;n al ba&ntilde;o Mar&iacute;a por 5   min, utiliz&aacute;ndose 1 &mu;L en las reacciones de PCR.</p>     <p><b>Caracterizaci&oacute;n del complejo de   especies <i>R. solanacearum</i></b>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Se utiliz&oacute; la t&eacute;cnica de PCR m&uacute;ltiple para la definici&oacute;n   de filotipos con los cebadores Nmult21:1F (5&#39; CGT TGA   TGA GGC GCG CAA TTT 3&#39;), Nmult21:2F (5&#39;AAG TTA   TGG ACG GTG GAA GTC 3&#39;), Nmult23:AF (5&#39;ATT ACS   AGA GCA ATC GAA AGA TT 3&#39;), Nmult22:InF (5&#39;ATT   GCC AAG ACG AGA GAA GTA 3&#39;) y el cebador reverso   Nmult22:RR (5&#39; TCG CTT GAC CCT ATA ACG AGT A   3&#39;), siguiendo la metodolog&iacute;a descrita por Fegan y Prior   (2005). Para el diagn&oacute;stico de los secuevares causantes del   moko del banano se utilizaron los cebadores Mus20-F (5&#39;   CGG GTC GCT GAG ACG AAT ATC 3&#39;) - Mus20-R (5&#39;   GCC TTG TCC AGA ATC CGA ATG 3&#39;); Mus35-F (5&#39;   GCA GTA AAG AAA CCC GGT GTT 3&#39;) - Mus35-R (5&#39;   TCT GGC GAA AGA CGG GAT GG 3&#39;), Mus06-F (5&#39; GCT   GGC ATT GCT CCC GCT CAC 3&#39;) - Mus06-R (5&#39; TCG   CTT CCG CCA AGA CGC 3&#39;) y S128-F (5&#39;CGT TCT CCT   TGT CAG CGA TGG 3&#39;) - S128-R (5&#39; CCC GTG TGA CCC   CGA TAG C 3&#39;). Las condiciones del PCR fueron similares   a las descritas por Prior y Fegan (2005).</p>     <p>Para aquellos aislamientos en los que no fue posible la   obtenci&oacute;n de amplicones con alguno de los dos juegos   de cebadores, se variaron las condiciones del PCR y se   utilizaron dos metodolog&iacute;as adicionales de extracci&oacute;n de   ADN: kit DNeasy Plant Mini (Qiagen, CA, USA) y el m&eacute;todo convencional de SDS (Sambrook y Russell, 2001).</p>     <p><b>An&aacute;lisis de secuencias de aislamientos   de <i>R. solanacearum</i></b>    <br> Se seleccionaron diez aislamientos de diferentes hospederos   (<a href="#tab1">Tab. 1</a>) para la secuenciaci&oacute;n parcial de la regi&oacute;n 16S del   ADNr utilizando los cebadores Oli1 (5&#39;GGG GGT AGC   TTG CTA CCT GCC 3&#39;) y Y2 (5&#39;CCC ACT GCT GCC   TCC CGT AGG AGT 3&#39;) (Seal <i>et al</i>., 1993), el gen <i>egl</i> con   los cebadores Endo-F (5&#39; ATG CAT GCC GCT GGT CGC   CGC 3&#39;) y Endo-R (5` GCG TTG CCC GGC ACG AAC   ACC 3`) (Fegan <i>et al</i>., 1998) y el gen <i>fliC</i> (flagelina C) con   los cebadores Rsol_fliC-F: (5&#39; GAA CGC CAA CGG TGC   GAA CT 3&#39;) y Rsol_fliC-R (5&#39; GGC GGC CTT CAG GGA   GGT C 3&#39;) (Sehonfeld <i>et al</i>., 2003). El programa de amplificaci&oacute;n   const&oacute; de una desnaturalizaci&oacute;n inicial a 94oc por   3 min, seguida por 35 ciclos de 94&deg;C durante 2 min; 62&deg;C   para <i>fliC</i>, 64&deg;C para la regi&oacute;n 16S del ADNr o 70&deg;C para <i>egl</i>,   por 1 min; 72oc por 2 min y un periodo final de extensi&oacute;n   a 72&deg;C durante 7 min. Los productos amplificados fueron   purificados mediante el kit QIAquick PCR Purification   (Qiagen, CA, USA) para proceder a su secuenciaci&oacute;n directa   en ambas direcciones en la compa&ntilde;&iacute;a Macrogen (Corea del   Sur). Las secuencias obtenidas con cada cebador fueron editadas   mediante los programas BioEdit 6.0.6 y Chromas 1.45.   Paralelamente, se obtuvieron del GenBank secuencias de los   genes estudiados de cepas de <i>R. solanacearum</i> de diferentes   regiones del mundo y hospederos, para su alineaci&oacute;n con   las generadas en este proyecto mediante el <i>software</i> Clustal   W. La matriz de alineaci&oacute;n fue empleada para el an&aacute;lisis   filogen&eacute;tico basado en m&aacute;xima parsimonia con soporte de   <i>Bootstrap</i> (1000 permutaciones) y utilizando PAUP 4.0b.</p> &nbsp;     <p><b><font size="3">Resultados</font></b></p>     <p>Confirmaci&oacute;n de la identidad de los aislamientos   La utilizaci&oacute;n de la prueba de PCR con los cebadores   759/760 permiti&oacute; la selecci&oacute;n de los 50 aislamientos incluidos   en la investigaci&oacute;n como asociados al complejo <i>R. solanacearum</i>, al obtenerse la amplificaci&oacute;n del fragmento   esperado de 282 pb.</p>     <p><b>Caracterizaci&oacute;n del complejo de   especies <i>R. solanacearum</i></b>    <br> La realizaci&oacute;n de las reacciones de PCR m&uacute;ltiples dirigidas   a determinar los filotipos arroj&oacute; la amplificaci&oacute;n de un   fragmento de 372 pb en 47 de las cepas evaluadas (<a href="#fig1">Fig. 1</a>),   mientras que no fue posible la obtenci&oacute;n del amplic&oacute;n en   los aislamientos Col 7 (de <i>Musa</i> sp.), Col10 (de <i>Ipomoea   trifida</i>)   y Col13 (de <i>S. nigrum</i>). La ocurrencia de este amplic&oacute;n   permite asociar dichas cepas con el filotipo II y confirmar la   presencia de dicho filotipo en hospederos tan diversos como <i>Musa</i> sp., <i>Cissus sicyodes</i>, <i>Solanum nigrum</i>, <i>Desmodium</i> sp.,   <i>Piper</i> sp., <i>Portulaca oleraceae</i>, <i>Emilia sanchifolia</i>, <i>Ipomoea   trifida</i>, <i>Euphorbia hirta</i>, <i>Peperonia pellucida</i>, <i>Tripogandra   cumanenses</i>, y en cepas aisladas a partir de suelos cultivados   con banano (<a href="#tab1">Tab. 1</a>).</p>     <p>    <center><a name="fig1"><img src="img/revistas/agc/v27n2/v27n2a08fig1.JPG"></a></center></p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Con respecto a los PCR para secuevares, se logr&oacute; la amplificaci&oacute;n   de un fragmento de 351 pb en 33 aislamientos   y en la cepa de referencia RS 074 CIAT, mientras que en   los aislamientos Col94 y Col95 la banda obtenida correspondi&oacute;   a 167 pb (<a href="#fig1">Fig. 1</a>). Este resultado permite identificar   al primer grupo como cepas patog&eacute;nicas a banano del   secuevar 4, y al segundo grupo como cepas del secuevar   6. Es importante resaltar que en 15 de los aislamientos no   fue posible la amplificaci&oacute;n de ning&uacute;n fragmento, a pesar   de la modificaci&oacute;n de diferentes variables del PCR.</p>     <p><b>An&aacute;lisis de secuencias de aislamientos   de <i>R. solanacearum</i></b></p>     <p><b>Gen <i>egl</i> (endoglucanasa)</b>    <br> Para el an&aacute;lisis filogen&eacute;tico del gen <i>egl</i> se incluyeron   secuencias de 34 aislamientos, 24 del Genbank, con al   menos una cepa representativa de cada uno de los cuatro   filotipos. El alineamiento final de las secuencias incluy&oacute;   686 sitios, de los cuales 107 resultaron informativos para   el an&aacute;lisis de parsimonia (<a href="#fig2">Fig. 2A</a>). El filograma present&oacute;   cuatro clados bien definidos, que representan los cuatro   filotipos del complejo. Sin embargo el filotipo I se present&oacute;   segmentado en un grupo principal con tres cepas (JT523,   R292 y R292) y tres ramas independientes correspondientes   a las cepas GMI100, CFBP2968 y NCPPB3190, cuyo   origen corresponde a la divisi&oacute;n &quot;Asi&aacute;tica&quot;. El filotipo   II se presenta con un fuerte soporte estad&iacute;stico (99%) y   dividido en cuatro subgrupos, uno de los cuales incluye   todas las cepas secuenciadas en esta investigaci&oacute;n y procedentes   de diferentes hospederos en la regi&oacute;n de Urab&aacute;,   adem&aacute;s de una cepa obtenida de pl&aacute;tano en Colombia   (Fegan y Prior, 2005). El grupo constituyendo el filotipo   III present&oacute; un alto soporte estad&iacute;stico (99%) y estuvo   conformado por tres aislamientos procedentes de papa y   berenjena de pa&iacute;ses de &Aacute;frica, mientras que el filotipo IV   s&oacute;lo estuvo representado en el an&aacute;lisis por el aislamiento   PSI7 obtenido de tomate en Indonesia.</p>     <p>    <center><a name="fig2"><img src="img/revistas/agc/v27n2/v27n2a08fig2.GIF"></a></center></p>         <p><b>Gen <i>fliC</i> (flagelina C)</b>    <br> Para el an&aacute;lisis filogen&eacute;tico del gen <i>fliC</i> se incluyeron   secuencias de 30 aislamientos, 20 de las cuales fueron obtenidas   del Genbank, incluyendo cuatro representantes de   la especie <i>R. pickettii</i>, y dos cepas de <i>Pseudomonas putida</i>   y <i>R. eutropha</i> como grupos externos para el an&aacute;lisis (<a href="#fig2">Fig. 2</a>B). El alineamiento final de las secuencias incluy&oacute; 428   sitios, de los cuales 150 resultaron informativos. El &aacute;rbol   filogen&eacute;tico generado present&oacute; dos clados bien soportados,   que claramente separan las especies <i>R. pickettii</i> y <i>R. solanacearum</i>. En este &uacute;ltimo clado, se presentan varios   subgrupos, pero con un d&eacute;bil soporte. Estos subgrupos no   est&aacute;n diferenciados por filotipos, procedencia geogr&aacute;fica   u hospedante, aunque todos los aislamientos obtenidos en   la regi&oacute;n de Urab&aacute; se agruparon en un solo clado, con un   soporte del 86%.</p>     <p><b>Regi&oacute;n 16S del ADNr</b>    <br> Para el an&aacute;lisis filogen&eacute;tico de la regi&oacute;n 16S del ADNr se   incluyeron secuencias de 26 aislamientos, 16 de las cuales   fueron obtenidas del Genbank, dos cepas de <i>P. syzygii</i>,   una cepa de BDB y <i>Cupriavidus necator</i> (<i>R. eutropha</i>) y <i>P.   syringae</i> como grupos externos (<a href="#fig2">Fig. 2</a>C). El alineamiento   final incluy&oacute; 289 sitios, nueve de los cuales resultaron   informativos. El filograma generado present&oacute; un clado   bien soportado (93%) y claramente diferenciado de los   grupos externos. Este clado representa el complejo de   especies <i>R. solanacearum</i>, incluyendo <i>P. syzygii</i>, BDB y   <i>R. solanacearum</i> sensu stricto. En el clado se presentaron   tres subgrupos que representan el filotipo IV, el filotipo I y el filotipo II, respectivamente. Sin embargo, el bajo   grado de polimorfismo encontrado entre las secuencias   analizadas de <i>R. solanacearum</i> para esta regi&oacute;n del genoma   no permiti&oacute; generar altos soportes de <i>bootstrap</i> para   dichos grupos.</p> &nbsp;       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><font size="3">Discusi&oacute;n</font></b></p>     <p>En este estudio se realiz&oacute; una caracterizaci&oacute;n molecular de   los componentes del complejo de especies de <i>R. solanacearum</i>   a partir de una poblaci&oacute;n de 50 aislamientos procedentes   de cultivos de banano, suelos y plantas arvenses de   al menos ocho familias bot&aacute;nicas (<i>Asteraceae</i>, <i>Commelinaceae</i>,   <i>Convolvulaceae</i>, <i>Euphorbiaceae</i>, <i>Fabaceae</i>, <i>Piperaceae</i>,   <i>Portulacaceae</i> y <i>Vitaceae</i>) colectadas en la regi&oacute;n de Urab&aacute;.</p>     <p>Los resultados indican que los 50 aislamientos evaluados   est&aacute;n asociados al complejo <i>R. solanacearum</i>, tal como se   desprende de la obtenci&oacute;n de un amplic&oacute;n de 282 pb en   todas las cepas estudiadas. La secuenciaci&oacute;n de la regi&oacute;n   16S del ADNr permiti&oacute; asociar a dichos aislamientos con   la subdivisi&oacute;n 2A <i>sensu</i> (Poussier <i>et al</i>., 2000), la cual est&aacute;   conformada fundamentalmente por miembros del biovar   1, 2 y N2, aunque la definici&oacute;n original basada en an&aacute;lisis   de RFLP que indica a la divisi&oacute;n 2 como &quot;Americana&quot; y   planteada por Cook <i>et al</i>. (1989) queda desvirtuada en estos   an&aacute;lisis, al incluir indistintamente aislamientos africanos   y asi&aacute;ticos obtenidos de mus&aacute;ceas y otros hospederos en   estos continentes, lo cual reafirma la mayor resoluci&oacute;n   que ofrece el an&aacute;lisis de secuencias para plantear este tipo   de hip&oacute;tesis taxon&oacute;micas. De acuerdo con los resultados de la PCR m&uacute;ltiple con los cebadores de la serie Nmult,   todos los aislamientos corresponden al filotipo II de <i>R. solanacearum</i>, grupo que incluye adem&aacute;s los biovares 1,   2 y 2T de origen americano, la raza 3, patog&eacute;nica a papa   y con distribuci&oacute;n global, y la raza 2 conocida como el   agente causal del moko de las mus&aacute;ceas. Con respecto   a los secuevares, se encontr&oacute; que, de las 50 cepas analizadas,   33 se pueden identificar como pertenecientes al   secuevar 4 y dos al secuevar 6, mientras que en 15 cepas   no fue posible la amplificaci&oacute;n, situaci&oacute;n que sugiere la   existencia de otros secuevares dentro de la raza 2 de <i>R. solanacearum</i>. Un resultado similar fue encontrado por   Fegan y Prior (2006), quienes determinaron que las cepas   ICMP6782 e ICMP9600, obtenidas de plantas de banano   en Brasil, no se agruparon en los clados que defin&iacute;an los   secuevares 3, 4 y 6 en su estudio basado en el an&aacute;lisis de   secuencias del gen <i>egl</i>.</p>     <p>La ausencia del secuevar 3 y el bajo n&uacute;mero de aislamientos   del secuevar 6 encontrados en este trabajo fue inesperado,   por cuanto dichos secuevares se han reportado frecuentemente   en pa&iacute;ses cultivadores de banano de Centro y   Suram&eacute;rica, con los cuales existen v&iacute;nculos comerciales y   de intercambio de material de propagaci&oacute;n con las zonas   bananeras del pa&iacute;s. As&iacute; por ejemplo, el secuevar 3, previamente   definido como el MLG 24 (Cook y Sequeira, 1994) se   reporta en cultivos de banano, pl&aacute;tano y heliconia de Costa   Rica, Honduras y Panam&aacute; (Prior y Fegan, 2005), este &uacute;ltimo   pa&iacute;s, fronterizo con la regi&oacute;n de Urab&aacute;. El secuevar 6,   previamente definido como el MLG 28 (Cook y Sequeira,   1994), ha sido detectado en Honduras, Venezuela (Prior y   Fegan, 2005) y recientemente en Guatemala por S&aacute;nchez <i>et al</i>. (2008). De otra parte, todos los aislamientos definidos   como secuevar 4 (MLG25) en nuestro estudio presentaron   la banda de 167 pb que identifica a dichas cepas como putativamente   patog&eacute;nicas a <i>Musa</i> sp. (Prior y Fegan, 2005). a patogenicidad en banano de las cepas procedentes de   arvenses fue probada en un trabajo reciente realizado por   Obreg&oacute;n (2007) en plantas del clon Gran enano. De gran   inter&eacute;s result&oacute; el hecho que las especies <i>Desmodium</i> sp.,   <i>P. pellucida</i> y <i>T. cumanenses</i> no hab&iacute;an sido reportadas   como hospederos de la bacteria, y que la especie <i>C. sicyodes</i>   representa el primer registro de la familia Vitaceae como   hospedante de <i>R. solanacearum</i>. Estos hallazgos basados   en pruebas de patogenicidad y evaluaciones moleculares   ampl&iacute;an el conocimiento sobre la diversidad gen&eacute;tica de   esta bacteria en Suram&eacute;rica y refuerzan las hip&oacute;tesis de   Fegan y Prior (2006), que plantean que es posible que el   nivel de variabilidad que presenta <i>R. solanacearum</i> raza   2 sea mayor que el hasta ahora encontrado en los estudios   realizados a nivel mundial.</p>     <p>El an&aacute;lisis filogen&eacute;tico realizado con las secuencias parciales   del gen egl agrup&oacute; las cepas procedentes del Urab&aacute; con   la cepa UW070, cuya secuencia (DQ011550) fue depositada   en el Genbank por Fegan y Prior (2005) y que fue aislada   de una planta de pl&aacute;tano en Colombia. Esta cepa hab&iacute;a sido   caracterizada como perteneciente al filotipo II/secuevar 4   SFR (<i>Small</i>, <i>Fluidal</i>, <i>Round</i>), lo cual coincide con el alto   n&uacute;mero de cepas que fueron encontradas en el presente   estudio como pertenecientes a este secuevar. Este grupo se   present&oacute; asociado (con un soporte del 100%) al clado que   conten&iacute;a cepas que causan marchitamiento vascular en   heliconia (Costa Rica) y <i>Musa</i> sp. en Filipinas (Bugtok) y   Honduras (Moko), as&iacute; como con el secuevar 1 que contiene   cepas causantes de pudrici&oacute;n bacterial en papa. Adicionalmente,   estos grupos se relacionaron con las secuencias   representativas de cepas del secuevar 6 (heliconia, Hawai)   y del secuevar 5 (papa, Isla Martinica y tomate, Isla de   Guadalupe). Todo el clado presenta un soporte del 99%,   constituy&eacute;ndose en el subclado B reportado por Wicker   <i>et al</i>. (2007), y confirmado por el an&aacute;lisis de Castillo y   Greenberg (2007) con base en el an&aacute;lisis de secuencias   de cinco genes del cromosoma bacterial y tres genes del   megapl&aacute;smido.</p>        <p>Los dem&aacute;s clados que se conformaron en el an&aacute;lisis (subclado   filotipo II-A, clado filotipo III y clado filotipo IV)   tuvieron altos soportes <i>bootstrap</i> indicando su naturaleza   monofil&eacute;tica. Sin embargo esta situaci&oacute;n no ocurri&oacute; as&iacute;   para el filotipo I, que aunque en el an&aacute;lisis de m&aacute;xima parsimonia   se present&oacute; como un solo grupo, no tuvo soporte   estad&iacute;stico, y por el contrario fue dividido en al menos tres   grupos de cepas. Este resultado difiere del reportado por   Villa <i>et al</i>. (2005), quienes utilizando an&aacute;lisis de secuencias   de <i>egl</i> y <i>hrpB</i> confirmaron el car&aacute;cter monofil&eacute;tico de este   grupo de &quot;origen asi&aacute;tico&quot;. Es evidente que dicha discrepancia   se origina de las diferentes cepas utilizadas en los dos   estudios, y hace necesario que futuros estudios incluyan un   mayor n&uacute;mero de aislamientos que confirmen o rechacen   la hip&oacute;tesis del car&aacute;cter monofil&eacute;tico de dicho grupo.</p>     <p>De otra parte, el filograma generado a partir del an&aacute;lisis   de secuencias del gen <i>fliC</i> gener&oacute; dos grupos principales,   que separaron las cepas de <i>R. pickettii</i> de aquellas representantes   del complejo de especies <i>R. solanacearum</i>. Sin   embargo este an&aacute;lisis no present&oacute; el nivel de resoluci&oacute;n   necesario para diferenciar los filotipos en que se divide este   complejo, ya que algunos clados estuvieron compartidos   por aislamientos de diferentes or&iacute;genes filogen&eacute;ticos. Este   resultado sugiere que la utilidad del an&aacute;lisis de este gen debe   restringirse al empleo de cebadores espec&iacute;ficos <i>Rsol_fliC</i>   para la detecci&oacute;n de los miembros del complejo, aunque la sola prueba de PCR es insuficiente para lograr esto,   pues se ha demostrado que dichos cebadores amplifican   un fragmento de similar tama&ntilde;o en <i>P. syzigii</i>, haci&eacute;ndose   necesaria la secuenciaci&oacute;n de los fragmentos amplificados   o el uso de la t&eacute;cnica DGGE previamente reportada por   Schonfeld <i>et al</i>. (2003).</p> &nbsp;       <p><b><font size="3">Conclusiones</font></b></p>     <p>Los hallazgos de esta investigaci&oacute;n y de aquella realizada   por Obreg&oacute;n (2007) reafirman la necesidad de eliminar   completamente las plantas arvenses de los focos detectados   con la enfermedad de moko en la regi&oacute;n de Urab&aacute;, evitar al   m&aacute;ximo el transporte de suelos infestados con la bacteria   y garantizar la correcta desinfestaci&oacute;n de las herramientas   de trabajo utilizadas en las pr&aacute;cticas culturales, por cuanto   la poblaci&oacute;n de <i>R. solanacearum</i> en esta zona presenta un   alto potencial de ser patog&eacute;nica a plantas de banano. El   establecimiento de pr&aacute;cticas cuarentenarias es fundamental   para el manejo de esta enfermedad en la zona bananera de   Urab&aacute;, de manera que se evite el ingreso de nuevos genotipos   bacteriales en esta regi&oacute;n, como por ejemplo de aquellos   asociados al secuevar 6 detectados en este estudio en el   departamento del Magdalena, o de cepas de otros pa&iacute;ses,   que claramente en los an&aacute;lisis filogen&eacute;ticos de secuencias   se agruparon en clados diferentes a los ocupados por las   cepas colombianas de esta bacteria.</p>     <p><b>Agradecimientos</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Esta investigaci&oacute;n tuvo financiaci&oacute;n de Colciencias (8242-   07-16025), Augura y la Universidad Nacional de Colombia,   sede Medell&iacute;n. Los autores agradecen a M&oacute;nica Obreg&oacute;n   y a Elizabeth &Aacute;lvarez del CIAT, por proveer algunas de las   cepas utilizadas en el estudio.</p> &nbsp;       <p><b><font size="3">Literatura citada</font></b></p>     <!-- ref --><p>Castillo, J.A. y J.T. Greenberg. 2007. Evolutionary dinamics of <i>Ralstonia solanacearum</i>. Appl. Environ. Microbiol. 73, 1225-1238.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0120-9965200900020000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Cook, D., E. Barlow y L. Sequeira. 1989. Genetic diversity of   <i>Pseudomonas solanacearum</i>: detection of restriction fragment   polymorphism with DNA probes that specify virulence   and hypersensitive response. Mol. Plant Microbe Interact. 2,   113-121.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0120-9965200900020000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Cook, D. y L. Sequeira. 1994. Strain differentiation of <i>Pseudomonas solanacearum</i> by molecular genetic methods. pp. 77-93.   En: Hayward, A.C. y G.L. Hartman (eds.). Bacterial wilt: the   disease and its causative agent, <i>Pseudomonas solanacearum</i>.   CAB International, Wallingford, UK.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0120-9965200900020000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Fegan, M. 2005. Bacterial wilt diseases of banana: evolution and ecology.   pp. 379-386. En: Allen, C., P. Prior y A.C. Hayward (eds.).   Bacterial wilt: the disease and the <i>Ralstonia solanacearum</i>   species complex. APS Press, St. Paul, MN.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0120-9965200900020000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Fegan, M. y P. Prior. 2005. How complex is the &quot;<i>Ralstonia solanacearum</i>   species complex&quot;? pp. 449-461. En: Allen, C., P.   Prior y A.C. Hayward (eds.). Bacterial wilt: the disease and   the <i>Ralstonia solanacearum</i> species complex. APS Press, St.   Paul, MN.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0120-9965200900020000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Fegan, M. y P. Prior. 2006. Diverse members of the <i>Ralstonia solanacearum</i>   species complex cause bacterial wilts of banana.   Australas. Plant Pathol. 35, 93-101.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0120-9965200900020000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>G&oacute;mez, E.A., E. &Aacute;lvarez y G. Llano. 2005. Identificaci&oacute;n y caracterizaci&oacute;n   de cepas de <i>Ralstonia solanacearum</i> raza 2, agente   causante del Moko de pl&aacute;tano en Colombia. Fitopatol. Colomb.   28, 71-75.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0120-9965200900020000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Hayward, A.C., L. Sequeira, E.R. French, H.M. El-Nashar y U.   Nydegger. 1992. Tropical variant of biovar 2 of <i>Pseudomonas solanacearum</i>. Phytopathol. 82, 608.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0120-9965200900020000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Hayward, A.C., J.C. Elphinstone, D. Caffier, J. Janse, E. Stefani,   E. French y A.J. Wrigth. 1998. Round table on bacterial wilt   (brown rot) of potato. pp. 420-430. En: Prior, P., C. Allen y   J.G. Elphinstone (eds.). Bacterial wilt disease: molecular and   ecology aspects. Springer-Verlag, Berlin.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0120-9965200900020000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Obreg&oacute;n, M. 2007. Diagn&oacute;stico, hospederos y sobrevivencia de la   bacteria <i>Ralstonia solanacearum</i> en banano y aplicaciones al   control integrado de la enfermedad en la zona de Urab&aacute;. Tesis   de maestr&iacute;a. Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad   Nacional de Colombia, Medell&iacute;n.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0120-9965200900020000800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Prior, P. y M. Fegan. 2005. Diversity and molecular detection of <i>Ralstonia solanacearum</i> race 2 strains by multiplex PCR. pp. 405-414.   En: Allen, C., P. Prior y A.C. Hayward (eds.). Bacterial wilt:   the disease and the <i>Ralstonia solanacearum</i> species complex.   APS Press, St. Paul, MN.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0120-9965200900020000800011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Sambrook, J. y D.W. Russell. 2001. Molecular cloning: a laboratory   manual. 3a ed. 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Opina y M.   Hyakumachi. 2005. Phylogenetic relationships or <i>Ralstonia solanacearum</i> species complex strains from Asia and others   continents based on 16S rDNA, endoglucanase, and hrpB gene   sequences. J. Gen. Plant Pathol. 71, 39-46.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-9965200900020000800017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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