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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Propagación asexual de uchuva (Physalis peruviana L.) en diferentes sustratos y a distintos niveles de auxina]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Cape gooseberry, which is the most exported Colombian exotic fruit, is commercially propagated by seed, but its high genetic variability causes growth, vigor, yield and fruit quality heterogeneity. Asexual propagation by cuttings can be a viable alternative but it is necessary to ensure adequate rhyzogenesis and the formation of a strong root system. For a period of 90 days, the present study evaluated the effect of five concentrations of Indole Butyric Acid (IBA; 0, 200, 400, 600 and 800 mg L-1) and two substrates (peat moss, and a 1:1 v/v mixture of black soil and rice husks) on the rooting and growth of terminal cuttings from adult plants. The best results were observed when applying 800 mg L-1 IBA to cuttings planted in peat moss. This treatment combination determined the highest rooting percentage and the largest root length, roots fresh and dry mass, leaf number and leaf area scores.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2"> &nbsp;     <p align="right"><b>PROPAGACI&Oacute;N Y CULTIVO DE TEJIDOS</b></p> &nbsp;     <p><b>    <center><font size="4">Propagaci&oacute;n asexual de uchuva (<i>Physalis peruviana</i> L.) en   diferentes sustratos y a distintos niveles de auxina</font></center></b></p> &nbsp;       <p><b>    <center><font size="3">Asexual propagation of cape gooseberry (<i>Physalis peruviana</i> L.)   using different substrates and auxin levels</font></center></b></p> &nbsp;     <p>Nelson Hern&aacute;n Moreno<sup>1</sup>, Javier Giovanni &Aacute;lvarez-Herrera<sup>1, 3</sup>, Helber Enrique Balaguera-L&oacute;pez<sup>1</sup> y Gerhard Fischer<sup>2</sup></p>     <p>1 Grupo de Investigaciones Agr&iacute;colas, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad Pedag&oacute;gica y Tecnol&oacute;gica de Colombia (UPTC), Tunja.    <br> 2 Departamento de Agronom&iacute;a, Facultad de Agronom&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;.    <br> 3 Autor de correspondencia. <a href="mailto:jgalvarezh@gmail.com">jgalvarezh@gmail.com</a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Fecha de recepci&oacute;n: 16 de julio de 2009. Aceptado para publicaci&oacute;n: 6 de noviembre de 2009</p> <hr size="1">     <p><b>RESUMEN</b></p>     <p>La uchuva es el fruto ex&oacute;tico de mayor exportaci&oacute;n en Colombia.   Se propaga comercialmente mediante semillas, pero   presenta alta variabilidad gen&eacute;tica, lo cual determina que tanto   el crecimiento y vigor de la planta como el rendimiento y la   calidad del fruto sean igualmente heterog&eacute;neos. La propagaci&oacute;n   asexual mediante esquejes puede ser una alternativa viable,   pero se debe garantizar un buen prendimiento y la formaci&oacute;n   de un sistema radical vigoroso. Para ello, durante un periodo   de 90 d&iacute;as se evalu&oacute; el efecto de cinco concentraciones de &aacute;cido   indolbut&iacute;rico (AIB; 0, 200, 400, 600, 800 mg L<sup>-1</sup>) y dos sustratos   (mezcla de cascarilla de arroz con suelo negro en relaci&oacute;n 1:1   v/v, y turba canadiense), sobre el enraizamiento y crecimiento   de esquejes terminales de plantas adultas de uchuva. Con la   aplicaci&oacute;n de 800 mg L<sup>-1</sup> de AIB a esquejes sembrados en turba   se obtuvieron los mejores resultados, en t&eacute;rminos del porcentaje   de enraizamiento, la longitud de ra&iacute;z, la masa fresca y seca de la ra&iacute;z, el n&uacute;mero de hojas y el &aacute;rea foliar.</p>     <p><b>Palabras clave:</b> esquejes, enraizamiento, AIB, sistema radical, crecimiento inicial.</p> <hr size="1">     <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p>Cape gooseberry, which is the most exported Colombian exotic   fruit, is commercially propagated by seed, but its high genetic   variability causes growth, vigor, yield and fruit quality heterogeneity.   Asexual propagation by cuttings can be a viable alternative   but it is necessary to ensure adequate rhyzogenesis and   the formation of a strong root system. For a period of 90 days,   the present study evaluated the effect of five concentrations of   Indole Butyric Acid (IBA; 0, 200, 400, 600 and 800 mg L<sup>-1</sup>) and   two substrates (peat moss, and a 1:1 v/v mixture of black soil   and rice husks) on the rooting and growth of terminal cuttings   from adult plants. The best results were observed when applying   800 mg L<sup>-1</sup> IBA to cuttings planted in peat moss. This treatment   combination determined the highest rooting percentage and   the largest root length, roots fresh and dry mass, leaf number and leaf area scores.</p>     <p><b>Key words:</b> cuttings, rooting, IBA, root system, initial growth.</p> <hr size="1"> &nbsp;     <p><b><font size="3">Introducci&oacute;n</font></b></p>     <p>La uchuva (<i>Physalis peruviana</i> L.) se propaga comercialmente   por v&iacute;a sexual mediante semillas; no obstante, este tipo de   reproducci&oacute;n origina plantas con alta variabilidad gen&eacute;tica.   Sandhu <i>et al</i>. (1989) mencionan que uchuvas propagadas   por semillas var&iacute;an en crecimiento, vigor, rendimiento y   calidad del fruto. Seg&uacute;n Angarita y Santana (1997), <i>P. peruviana</i>,   por ser una planta al&oacute;gama y de propagaci&oacute;n sexual,   muestra gran variabilidad fenot&iacute;pica en la poblaci&oacute;n, por lo   que en las plantas obtenidas, el crecimiento, la calidad de los   frutos y la productividad son muy variables. De este modo,   la propagaci&oacute;n asexual mediante esquejes se convierte en   una alternativa viable con el prop&oacute;sito de obtener material   homog&eacute;neo de cultivares con caracter&iacute;sticas deseables en la producci&oacute;n. Klinac (1986) encontr&oacute; que plantas de uchuva   propagadas mediante esquejes son m&aacute;s precoces y presentan   frutos de mayor tama&ntilde;o. Por su parte Griesbach (1992)   menciona que las estacas son un m&eacute;todo importante para   la multiplicaci&oacute;n de variedades sobresalientes en la uchuva.</p>     <p>Sin embargo, L&oacute;pez <i>et al</i>. (2008) reportan que en Colombia   los estudios dedicados a la propagaci&oacute;n de la uchuva son   poco conocidos. As&iacute; mismo, las investigaciones se deben   enfocar en asegurar un alto porcentaje de enraizamiento   que genere plantas de uchuva con alto vigor, mediante   t&eacute;cnicas como la aplicaci&oacute;n de fitohormonas y sustratos   apropiados de propagaci&oacute;n.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La propagaci&oacute;n de esquejes es un m&eacute;todo muy utilizado   en diversos cultivos, teniendo en cuenta que a pesar de su   delicadeza, las estacas de tallo son de enraizamiento f&aacute;cil   y r&aacute;pido (Campana y Ochoa, 2007). En muchas especies   herb&aacute;ceas y semile&ntilde;osas, los esquejes de la parte apical han   mostrado un mejor enraizamiento que los de otras partes   de la planta (Da Silva y Mendes, 2004; L&oacute;pez <i>et al</i>., 2008.).   Su viabilidad depende de la capacidad de formaci&oacute;n de   ra&iacute;ces, calidad del sistema radicular formado y posterior   desarrollo de la planta en el &aacute;rea de producci&oacute;n (Fachinello <i>et al</i>., 1994).</p>     <p>Para el enraizamiento es necesario un balance hormonal   entre promotores e inhibidores de iniciaci&oacute;n radicular (Pasqual   <i>et al</i>., 2001), lo cual se puede lograr con la aplicaci&oacute;n   ex&oacute;gena de promotores como &aacute;cido indolbut&iacute;rico (AIB) que   elevan la concentraci&oacute;n de auxinas en el tejido (Hinojosa,   2000), en este caso, del esqueje.</p>     <p>Las auxinas son importantes reguladores en la formaci&oacute;n de   ra&iacute;ces laterales (&Ouml;pik y Rolfe, 2005). As&iacute;, en la propagaci&oacute;n   por esquejes, las auxinas son esenciales para la formaci&oacute;n   de ra&iacute;ces adventicias, sobre todo en su fase juvenil, por lo   que tratamientos con auxinas pueden aumentar la tasa de   iniciaci&oacute;n radical y el n&uacute;mero y la masa de ra&iacute;ces formadas   (Hackett, 1988).</p>     <p>El AIB es la auxina m&aacute;s utilizada para promover el enraizamiento,   principalmente porque no es t&oacute;xico, en un   amplio rango de concentraciones, para un gran n&uacute;mero de   especies, y es m&aacute;s estable qu&iacute;micamente que el &aacute;cido indol   ac&eacute;tico (AIA), al contacto con el sustrato de propagaci&oacute;n   (Hartmann <i>et al</i>., 2002). Adem&aacute;s, es una sustancia fotoestable,   de acci&oacute;n localizada y menos sensible a la degradaci&oacute;n   biol&oacute;gica en comparaci&oacute;n a las dem&aacute;s auxinas sint&eacute;ticas   (Fachinello <i>et al</i>., 1995).</p>     <p>El sustrato puede influir en la calidad de las ra&iacute;ces formadas   y en el porcentaje de enraizamiento (Fachinello <i>et al</i>.,   1994). Un buen sustrato debe estar acorde con las exigencias   de nutrientes, agua y aire de la especie por enraizar, y   as&iacute; garantizar un buen soporte a las plantas, suministrar   humedad y aireaci&oacute;n adecuadas, ser de bajo costo, f&aacute;cil   obtenci&oacute;n y que no libere sustancias t&oacute;xicas (Hartmann   <i>et al</i>., 2002).</p>     <p>Por lo anterior, el objetivo de esta investigaci&oacute;n fue evaluar   el efecto del &aacute;cido indolbut&iacute;rico en el enraizamiento de estacas   apicales de uchuva sembradas en dos sustratos, con el   fin de implementar la propagaci&oacute;n asexual de esta especie   como alternativa para aumentar la precocidad, producci&oacute;n   y calidad de los frutos del ecotipo Colombia.</p> &nbsp;       <p><b><font size="3">Materiales y m&eacute;todos</font></b></p>     <p>El experimento se realiz&oacute; en la casa de mallas de la Facultad   de Ciencias Agropecuarias de la Universidad Pedag&oacute;gica y   Tecnol&oacute;gica de Colombia, en la ciudad de Tunja (Boyac&aacute;),   que se encuentra a una altura de 2.690 msnm. Durante el   experimento se present&oacute; una humedad relativa del 75% y   una temperatura promedio de 18&deg;C.</p>     <p>Se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o completamente al azar con un factorial   de 5 x 2, para un total de 10 tratamientos. El primer factor   correspondi&oacute; a la aplicaci&oacute;n de auxinas (&aacute;cido indol 3-but&iacute;rico,   AIB) en diferentes concentraciones (0, 200, 400, 600, 800 mg L<sup>-1</sup>) y el segundo factor fue turba canadiense y la   mezcla de cascarilla de arroz con suelo negro (relaci&oacute;n 1:1   en volumen), cuyas propiedades fisicoqu&iacute;micas se reportan   en la <a href="#Tab. 1">Tab. 1</a>. Se utilizaron seis repeticiones por tratamiento,   cada una compuesta por 10 esquejes de uchuva.</p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="Tab. 1"><img src="img/revistas/agc/v27n3/v27n3a07tab1.GIF"></a></center></p>       <p>Se emplearon esquejes de 25 cm de longitud tomados de   la parte apical de plantas adultas del ecotipo Colombia   con alto vigor y de aproximadamente 13 meses de edad,   de la finca Las Violetas, vereda Bosigas Norte, del municipio   de Sotaquir&aacute; (Boyac&aacute;). A los esquejes se les dej&oacute; un   par de hojas, ya que desde las hojas se traslocan auxinas   y carbohidratos hasta la base de las estacas (Hartmann   y Kester, 1998), siendo la presencia de yemas y de hojas   en las estacas de tallo determinantes para la rizog&eacute;nesis   (Campana y Ochoa, 2007). Los esquejes fueron sometidos   a inmersi&oacute;n en las soluciones de auxinas durante 5 min   y luego fueron sembrados en bolsas de polietileno con   capacidad para 2 L de sustrato.</p>     <p>Las variables de respuesta medidas al cabo de 90 d despu&eacute;s   de la siembra (dds) fueron: porcentaje de enraizamiento,   expresado como el cociente entre los esquejes enraizados y   los esquejes sembrados multiplicado por 100; masa fresca   de ra&iacute;z (mediante balanza electr&oacute;nica de precisi&oacute;n 0,01);   masa seca de ra&iacute;z (se secaron en mufla a 85&deg;C durante 48   h); longitud de ra&iacute;z (se midi&oacute; la longitud de la ra&iacute;z m&aacute;s   larga mediante flex&oacute;metro); &aacute;rea foliar (medidor de &aacute;rea   foliar LI-COR 3000A (LI-COR, Lincoln, NE). Los datos   fueron sometidos a un an&aacute;lisis de varianza y a prueba de   comparaci&oacute;n de promedios de Tukey al 5%. Los an&aacute;lisis   se realizaron con el software estad&iacute;stico SAS&reg; v. 8.1e (SAS   Institute Inc., Cary, NC).</p> &nbsp;       <p><b><font size="3">Resultados y discusi&oacute;n</font></b></p>     <p>El enraizamiento de esquejes de uchuva present&oacute; diferencias   significativas entre tratamientos. Se observ&oacute; un   mayor prendimiento con la inmersi&oacute;n de los esquejes en   600 y 800 mg L<sup>-1</sup> de AIB y posteriormente sembrados en   el sustrato turba (<a href="#Tab. 2">Tab. 2</a>). Respecto al factor auxinas, hubo   un aumento lineal del prendimiento de esquejes a medida   que se increment&oacute; la concentraci&oacute;n de AIB (<i>P</i>&le;0,01) (<a href="#Fig. 1">Fig.   1</a>). Entre sustratos, la turba tuvo mejor comportamiento   que el sustrato mezcla, aunque sin diferencias estad&iacute;sticas   (<a href="#Tab. 3">Tab. 3</a>). Los tratamientos sin aplicaci&oacute;n de auxinas no   promovieron la emisi&oacute;n de ra&iacute;ces (<a href="#Tab. 2">Tab. 2</a>), confirmando   que las auxinas son las principales fitohormonas promotoras   de la formaci&oacute;n de ra&iacute;ces adventicias en muchas   especies (Campana y Ochoa, 2007).</p>     <p>    <center><a name="Tab. 2"><img src="img/revistas/agc/v27n3/v27n3a07tab2.GIF"></a></center></p>     <p>    <center><a name="Fig. 1"><img src="img/revistas/agc/v27n3/v27n3a07fig1.GIF"></a></center></p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="Tab. 3"><img src="img/revistas/agc/v27n3/v27n3a07tab3.GIF"></a></center></p>     <p>En la propagaci&oacute;n por esquejes solo es necesario que se forme   un nuevo sistema de ra&iacute;ces adventicias, ya que existe un   sistema caulinar en potencia y una yema (L&oacute;pez <i>et al</i>., 2008).   Seg&uacute;n Hartmann <i>et al</i>. (2002), la capacidad para regenerar   la estructura entera de la planta depende de dos caracter&iacute;sticas:   la primera es la totipotencia celular y la segunda es   la desdiferenciaci&oacute;n celular. Aunque la iniciaci&oacute;n de ra&iacute;ces   no requiere la producci&oacute;n actual de fotoasimilados, s&iacute; necesita   de las reservas almacenadas y de una acumulaci&oacute;n   de hormonas de enraizamiento, transportadas de forma   bas&iacute;peta (Ryugo, 1993), por lo cual se deduce que las estacas   de uchuva presentaron baja cantidad de auxinas end&oacute;genas,   y que sin la aplicaci&oacute;n ex&oacute;gena no se genera emisi&oacute;n de ra&iacute;ces   adventicias. Adem&aacute;s, considerables concentraciones de   AIB generan muy buena respuesta en las ra&iacute;ces de uchuva,   pues seg&uacute;n Davies (2004), las auxinas cumplen importante funci&oacute;n sobre la promoci&oacute;n de ra&iacute;ces.</p>     <p>En vista de que no se formaron ra&iacute;ces sin la aplicaci&oacute;n del   promotor, se puede clasificar la uchuva seg&uacute;n su capacidad   de enraizamiento en el grupo de las plantas en el que se   presenta suficiencia de cofactores, pero la auxina es limitante,   manifestando una fuerte respuesta a la aplicaci&oacute;n del regulador (Hartmann <i>et al</i>., 2002).</p>     <p>En estacas de agraz (<i>Vaccinium meridionales</i>) con las   auxinas AIA, AIB y ANA, se estableci&oacute; que el AIB y el AIA   aumentaron la viabilidad de las estacas, obteniendo con   200 mg L<sup>-1</sup> de AIB el mayor porcentaje de enraizamiento   despu&eacute;s de dos meses (Castrill&oacute;n <i>et al</i>., 2008). Resultados   diferentes a los encontrados en uchuva reportaron Lemes   <i>et al</i>. (2001) en esquejes de romero, en los cuales concentraciones   de 0, 50 y 100 mg L<sup>-1</sup> de AIA, AIB y ANA no mostraron respuesta a estos reguladores de crecimiento.</p>     <p>En la <a href="#Fig. 2">Fig. 2</a> se observa que hubo un incremento lineal de la   longitud de ra&iacute;z conforme la concentraci&oacute;n de AIB aument&oacute;   (<i>P</i>&le;0,01). Los sustratos generaron una respuesta estad&iacute;sticamente   similar en el crecimiento de la ra&iacute;z, a pesar de esto,   la turba fue levemente superior (<a href="#Tab. 3">Tab. 3</a>). En tratamientos   se presentaron diferencias significativas; con la inmersi&oacute;n   de los esquejes en 800 mg L<sup>-1</sup> de AIB y la siembra en turba se obtuvo la mayor longitud de ra&iacute;z principal (<a href="#Tab. 2">Tab. 2</a>).</p>     <p>    <center><a name="Fig. 2"><img src="img/revistas/agc/v27n3/v27n3a07fig2.GIF"></a></center></p>     <p>Santelices (2007) encontr&oacute; mayor enraizamiento en estacas   de Nothofagus glauca a medida que aument&oacute; la concentraci&oacute;n   de AIB de 0,5 a 1,5%; sin embargo, no se apreci&oacute; un   efecto claro de la auxina en la longitud de las ra&iacute;ces. Este &uacute;ltimo resultado difiere con lo encontrado para uchuva.</p>     <p>De otro lado, Sandhu <i>et al</i>. (1989) utilizaron esquejes de   uchuva de dos a cinco yemas, con aplicaci&oacute;n de auxinas, y   midieron que la mayor longitud de ra&iacute;z a los tres meses fue   de 6,52 cm con una concentraci&oacute;n de 250 mg L<sup>-1</sup> de AIB   frente al testigo (m&aacute;ximo 5,18 cm), valores similares a los   encontrados en este experimento para 200 mg L<sup>-1</sup> de AIB;   sin embargo, los esquejes de uchuva siguen respondiendo   de forma lineal a mayores aplicaciones de AIB alcanzando valores cercanos a 35 cm con 800 mg L<sup>-1</sup> de AIB (<a href="#Fig. 2">Fig. 2</a>).</p>     <p>De otra parte, L&oacute;pez <i>et al</i>. (2008) encontraron que se   obtiene mayor longitud de ra&iacute;z con esquejes de uchuva   procedentes del tercio superior, respecto a los procedentes   del tercio medio o bajo, sin aplicaci&oacute;n de fitohormonas,   pero la longitud de ra&iacute;z encontrada fue inferior a 4 cm.   Pese a lo observado, se puede inferir que la aplicaci&oacute;n de   AIB es una pr&aacute;ctica adecuada para generar la emisi&oacute;n de   ra&iacute;ces y aumentar su longitud. Debido a esto, se resalta la   importancia de la aplicaci&oacute;n ex&oacute;gena de las auxinas sobre   el crecimiento y desarrollo vegetal, con la estimulaci&oacute;n   del enraizamiento adventicio de estacas, lo cual ha sido   constatado por Hartmann <i>et al</i>. (2002).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El efecto que causa la aplicaci&oacute;n de auxinas en la formaci&oacute;n   de un sistema radical es mayor cuando los esquejes   de uchuva son sembrados en el sustrato turba, pues este   le proporciona una mayor aireaci&oacute;n a las ra&iacute;ces para que   aumenten su crecimiento; adem&aacute;s, la captaci&oacute;n de agua y   nutrientes es mayor y el crecimiento de toda la planta se   ve favorecido, lo que conlleva a la formaci&oacute;n de nuevos   tejidos y a la bios&iacute;ntesis de auxinas que van a promover   mayor crecimiento de las plantas de uchuva. Seg&uacute;n Taiz y   Zeiger (2006), las auxinas se sintetizan en los meristemos;   de all&iacute; que la acci&oacute;n conjunta del sustrato turba y el AIB   generar&aacute; un mayor sistema radicular. Resultados similares   fueron hallados por Westervelt (2003) en la propagaci&oacute;n de   esquejes de romero con los mejores resultados en cuanto   a la masa seca cuando se utiliz&oacute; la turba como sustrato.</p>     <p>Sin embargo, los resultados encontrados en otros estudios   son diversos, pues al evaluar el efecto de los sustratos arena,   suelo y cascarilla de arroz y la mezcla de los anteriores en   la propagaci&oacute;n de uchuva mediante esquejes, L&oacute;pez <i>et al</i>.   (2008) observaron diferencias estad&iacute;sticas en la longitud de   ra&iacute;z, donde el sustrato arena permiti&oacute; el mayor crecimiento   de &eacute;sta. En otro estudio, donde se evalu&oacute; la propagaci&oacute;n   asexual de gulupa (<i>Passiflora edulis</i> Sims.), Forero y Becerra   (2008) encontraron diferencias entre sustratos, siendo   suelo:cascarilla de arroz (1:1 v/v) el mejor sustrato.</p>     <p>La acumulaci&oacute;n de masa fresca y seca de ra&iacute;ces de esquejes   de uchuva aument&oacute; con la aplicaci&oacute;n de AIB (P&le;0,01)   (<a href="#Fig. 3">Fig. 3</a>), comportamiento representado con una funci&oacute;n   lineal, que demuestra que con las mayores dosis de AIB,   la acumulaci&oacute;n de masa es mayor. La turba fue el sustrato   m&aacute;s favorable al generar mayor ganancia de masa fresca   y seca (<a href="#Tab. 3">Tab. 3</a>). Los tratamientos presentaron diferencias   significativas (P&le;0,01), tanto en la masa fresca como en la   seca; el mejor efecto se debi&oacute; al tratamiento de turba y 800   mg L<sup>-1</sup> de AIB (<a href="#Tab. 2">Tab. 2</a>).</p>     <p>    <center><a name="Fig. 3"><img src="img/revistas/agc/v27n3/v27n3a07fig3.GIF"></a></center></p>       <p>Una mayor acumulaci&oacute;n de masa fresca en la ra&iacute;ces depende,   entre otros factores, de un sistema radical de gran   tama&ntilde;o (mayor n&uacute;mero y longitud de ra&iacute;ces) capaz de   acumular reservas y agua en mayor proporci&oacute;n, respuesta   encontrada con el sustrato turba y la aplicaci&oacute;n de 800   mg L<sup>-1</sup> de AIB. Con un mayor contenido de auxinas en las   plantas de uchuva se aumenta la elongaci&oacute;n celular, la cual   se da porque las auxinas acidifican la pared celular, lo que   genera la p&eacute;rdida de rigidez por acci&oacute;n de las expansinas,   prote&iacute;nas que provocan la distensi&oacute;n de las paredes celulares   por debilitamiento de los puentes de hidr&oacute;geno entre   los polisac&aacute;ridos y los componentes de la pared celular;   posteriormente la c&eacute;lula se expande por la entrada de agua   (Taiz y Zeiger, 2006), lo cual se traduce en mayor contenido h&iacute;drico de la planta y tambi&eacute;n en mayor masa fresca.</p>     <p>Seg&uacute;n Hartmann <i>et al</i>. (2002), las auxinas son consideradas   las sustancias m&aacute;s importantes en el proceso de enraizamiento   de estacas. Entre las principales funciones biol&oacute;gicas   se destaca el crecimiento de &oacute;rganos, principalmente   ra&iacute;ces por divisi&oacute;n y elongaci&oacute;n celular. Por esta raz&oacute;n, con   la aplicaci&oacute;n de AIB hubo mayor acumulaci&oacute;n de masa   seca de ra&iacute;ces en los esquejes de uchuva; adem&aacute;s, esta respuesta   es a&uacute;n mayor con la utilizaci&oacute;n del sustrato turba,   porque este garantiza que las propiedades fisicoqu&iacute;micas   (nutrientes, agua y aire) sean favorables para un desarrollo   radical adecuado.</p>     <p>En la propagaci&oacute;n asexual de uchuva estudiada por L&oacute;pez <i>et al</i>. (2008) no se encontraron diferencias significativas entre   los sustratos para la masa fresca de ra&iacute;z; sin embargo, el   sustrato arena:suelo:cascarilla (1:1:1 v/v/v) permiti&oacute; mayor   acumulaci&oacute;n de masa fresca frente a los sustratos arena y   la mezcla de suelo:cascarilla (1:1 v/v). De otra parte, en la   propagaci&oacute;n sexual de pino bajo seis sustratos, se determin&oacute;   que con los sustratos a base de turba se logr&oacute; una mayor   masa fresca total, masa seca de la parte radical y masa seca   de las ra&iacute;ces secundarias, pero su combinaci&oacute;n con vermiculita gener&oacute; plantas m&aacute;s vigorosas (Olivo y Buduba, 2006).</p>     <p>En la propagaci&oacute;n de plantas de romero por esquejes, la   turba fue un medio favorable para la producci&oacute;n de masa   fresca, lo que atribuyeron &Aacute;lvarez-Herrera <i>et al</i>. (2007) a   un alto contenido inicial de nutrientes, alta retenci&oacute;n de   humedad y una adecuada aireaci&oacute;n y porosidad de este sustrato, lo que concuerda con lo encontrado para uchuva.</p>     <p>Respecto a la formaci&oacute;n de masa de ra&iacute;ces, Zietemann y   Roberto (2007) hallaron en estacas enraizadas de guayaba &#39;Paluma&#39; y &#39;S&eacute;culo XXI&#39; mayor masa seca radical con la aplicaci&oacute;n de 800 mg L<sup>-1</sup> de AIB respecto a dosis menores. Igual tendencia observaron Castillo <i>et al</i>. (2005) en el enraizamiento de estacas de <i>Malpighia glabra</i>, aunque la mayor masa seca radical se logr&oacute; con 2.800 mg L<sup>-1</sup> de AIB, mientras que en acodos de <i>Murraya paniculata</i> se obtuvo mayor masa seca, fresca y longitud total de ra&iacute;ces con solo 4 mg L<sup>-1</sup> de AIB, lo que ratifica la importancia biol&oacute;gica de la aplicaci&oacute;n ex&oacute;gena de AIB en la propagaci&oacute;n asexual de diferentes especies, aunque los requerimientos sean distintos.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La turba ejerci&oacute; mayor acumulaci&oacute;n de fotoasimilados y,   por ende, mayor masa fresca y seca en las ra&iacute;ces debido a   que este sustrato presenta un efecto estimulador sobre el   crecimiento y desarrollo vegetal, lo cual, seg&uacute;n Abad <i>et al</i>.   (2004), fue atribuido a la presencia de activadores del crecimiento.   Adem&aacute;s, la turba genera buenos resultados gracias   a sus caracter&iacute;sticas f&iacute;sicas, tales como alta porosidad, gran   aireaci&oacute;n y alta retenci&oacute;n de humedad, lo que favorece la emisi&oacute;n de ra&iacute;ces.</p>     <p>La mezcla de suelo y cascarilla de arroz mostr&oacute; menor   respuesta debido posiblemente a que el suelo utilizado tuvo   una baja concentraci&oacute;n de nutrientes necesarios para el   crecimiento de ra&iacute;ces, como por ejemplo P y Ca y un pH &aacute;cido que limita la disponibilidad de estos elementos (<a href="#Tab. 1">Tab. 1</a>). Adem&aacute;s, las propiedades f&iacute;sicas no son adecuadas, ya que al ser un suelo disturbado, su estructura es incipiente, y, por tanto, la aireaci&oacute;n, la retenci&oacute;n y el movimiento del agua son limitados. As&iacute; mismo, la cascarilla de arroz, aunque favorece la aireaci&oacute;n, no retiene la humedad necesaria para el enraizamiento y crecimiento de las plantas de uchuva.</p>     <p>Se presentaron diferencias altamente significativas entre   tratamientos y entre factores de forma independiente respecto   al &aacute;rea foliar y n&uacute;mero de hojas. Se obtuvo mayor   respuesta en los dos casos con la aplicaci&oacute;n de 800 mg L<sup>-1</sup>   de AIB y la siembra en turba (<a href="#Tab. 2">Tab. 2</a>). As&iacute; mismo, el &aacute;rea   foliar y n&uacute;mero de hojas se increment&oacute; de manera lineal   en funci&oacute;n del contenido de auxinas (<a href="#Fig. 4">Fig. 4</a>). El sustrato   turba se encarg&oacute; de producir plantas de uchuva con mayor   follaje, dado tanto por la cantidad de hojas como por el &aacute;rea   foliar (<a href="#Tab. 3">Tab. 3</a>), lo que resalta la importancia de la presencia   de ra&iacute;ces en la formaci&oacute;n de nuevas hojas (Campana y Ochoa, 2007).</p>     <p>    <center><a name="Fig. 4"><img src="img/revistas/agc/v27n3/v27n3a07fig4.GIF"></a></center></p>     <p>Se encontraron resultados opuestos con la aplicaci&oacute;n de   AIB en Ficus carica, donde 2.000 mg L<sup>-1</sup> de AIB generaron   menor n&uacute;mero de hojas respecto al testigo sin aplicaci&oacute;n   (Pio <i>et al</i>., 2006). Esto indica que las especies presentan   diferentes contenidos end&oacute;genos de auxinas, lo que hace que los requerimientos ex&oacute;genos de AIB var&iacute;en.</p>     <p>La mayor cantidad de &aacute;rea foliar se debi&oacute; directamente a   la formaci&oacute;n de un mayor n&uacute;mero de hojas. No obstante,   la mayor presencia de hojas fue producto de un elevado   crecimiento del tallo con m&aacute;s cantidad de entrenudos que   permiti&oacute; la generaci&oacute;n de un alto n&uacute;mero de hojas, procesos   que fueron favorecidos tanto por la acci&oacute;n de las concentraciones m&aacute;s altas de AIB como por el sustrato turba.</p>     <p>Tambi&eacute;n en la obtenci&oacute;n de pl&aacute;ntulas de papaya, Gil y   Miranda (2007) obtuvieron el mayor desarrollo foliar en el   sustrato turba, debido a que ofreci&oacute; caracter&iacute;sticas f&iacute;sicas y qu&iacute;micas que permitieron un buen desarrollo de las ra&iacute;ces.</p>     <p>De otra parte, con el sustrato de mezcla, posiblemente se   restringi&oacute; el crecimiento de la ra&iacute;z de las plantas de uchuva,   lo cual pudo generar acumulaci&oacute;n de carbohidratos   en las hojas, resultando en una respuesta inhibitoria de   la fotos&iacute;ntesis (Schaffer <i>et al</i>., 1996) y en una menor &aacute;rea   foliar. Adem&aacute;s, al incrementarse el &aacute;rea foliar, se present&oacute;   aumento en la transpiraci&oacute;n y en la posibilidad de que los   esquejes se deshidraten; tambi&eacute;n se incrementa la respiraci&oacute;n   de mantenimiento. De esta manera, se necesita m&aacute;s   eficiencia de los sistemas fotosint&eacute;tico y radical para enviar   los fotoasimilados y nutrientes hacia los vertederos (Schaffer   <i>et al</i>., 1996), procesos que pueden ser m&aacute;s eficientes en las uchuvas propagadas en el sustrato turba.</p> &nbsp;     <p><b><font size="3">Conclusiones</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La aplicaci&oacute;n del &aacute;cido indol 3-but&iacute;rico favorece la propagaci&oacute;n asexual de uchuva mediante esquejes.</p>     <p>A medida que la concentraci&oacute;n de AIB aumenta hasta 800   mg L<sup>-1</sup>, se incrementa la rizog&eacute;nesis, expresada en porcentaje   de enraizamiento, longitud, masa fresca y seca de la   ra&iacute;z, lo que, a su vez, fomenta el crecimiento del tallo con   una inserci&oacute;n de un mayor n&uacute;mero de hojas y formaci&oacute;n   de &aacute;rea foliar.</p>     <p>El mejor sustrato de propagaci&oacute;n para los esquejes de   uchuva fue la turba; adem&aacute;s, este optimiza el efecto de las auxinas.</p> &nbsp;     <p><b><font size="3">Literatura citada</font></b></p>     <!-- ref --><p>Abad, M., P. Noguera y C. Carri&oacute;n. 2004. Los sustratos en los cultivos   sin suelo. pp. 13-158. En: Urrestarazu, M. (ed.). Tratado de cultivos sin suelo. Ediciones Mundi-Prensa, Madrid.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0120-9965200900030000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&Aacute;lvarez-Herrera, J.G., S.L. Rodr&iacute;guez y E. Chac&oacute;n. 2007. Efecto de   diferentes tama&ntilde;os de esqueje y sustratos en la propagaci&oacute;n   del romero (<i>Rosmarinus officinalis</i> L.). Agron. Colomb. 25(2),   224-230.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0120-9965200900030000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Angarita, A. y G. Santana. 1997. Regeneraci&oacute;n adventicia de somaclonales   en uchuva (<i>Physalis peruviana</i>). Agron. Colomb. 14(1), 59-65.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0120-9965200900030000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Angulo, R. 2005. Uchuva. El cultivo. Universidad Jorge Tadeo Lozano, Bogot&aacute;.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0120-9965200900030000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Campana, B.M.R. y M.J. Ochoa. 2007. Propagaci&oacute;n vegetativa o   ag&aacute;mica de especies frutales. pp. 133-197. En: Sozzi, G.O. (ed.). &Aacute;rboles frutales. Ecofisiolog&iacute;a, cultivo y aprovechamiento. Editorial Facultad de Agronom&iacute;a, Universidad de Buenos Aires, Buenos Aires.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0120-9965200900030000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Castillo, M., Y.H. de Fr&eacute;itez y N. Hern&aacute;ndez de Bernal. 2005. Efecto   de la auxina AIB en la propagaci&oacute;n de azahar de la India   (<i>Murraya paniculata</i> (L. Jack)) por acodo a&eacute;reo. Bioagro 17(2),   123-126.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0120-9965200900030000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Castrill&oacute;n, J.C., E. Carvajal, G. Ligarreto y S. Magnitskiy. 2008.   El efecto de auxinas sobre el enraizamiento de las estacas de   agraz (<i>Vaccinium meridionale</i> Swartz) en diferentes sustratos. Agron. Colomb. 26(1), 16-22.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0120-9965200900030000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Da Silva, J.A.A. y F. Mendes P. 2004. Enraizamiento de estacas herb&aacute;ceas   de nespereira (<i>Eriobotrya japonica</i> Lindl.). Rev. Bras. Frutic. 26(2), 369-371.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0120-9965200900030000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Davies, P. 2004. Plants hormones. Kluwer Academic Publishers, New York, NY.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0120-9965200900030000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Fachinello, J.C., A. Hoffmann y J.C. Nachtigal. 1994. Propaga&ccedil;&atilde;o de plantas frut&iacute;feras de clima temperado. Ufpel, Pelotas, Brasil.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0120-9965200900030000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Fachinello, J.C., A. Hoffmann, J.C. Nachtigal, E. Kersten y G.R. Fortes.   1995. Propaga&ccedil;&atilde;o de plantas frut&iacute;feras de clima temperado. 2a ed. Ufpel, Pelotas, Brasil.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0120-9965200900030000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Forero, C. y N. Becerra. 2008. Propagaci&oacute;n de gulupa (<i>Passiflora   edulis</i> Sims.) por estacas. Trabajo de grado. Facultad de Agronom&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0120-9965200900030000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Gil, A. y D. Miranda. 2007. Efecto de cinco sustratos sobre &iacute;ndices   de crecimiento de plantas de papaya (<i>Carica papaya</i> L.) bajo invernadero. Rev. Colomb. Cienc. Hort. 1(2), 142-153.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0120-9965200900030000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Griesbach, J. 1992. A guide to propagation and cultivation of fruittrees   in Kenya. Schriftenreihe der GTZ No. 230. Technical Cooperation - Federal Republic of Germany, Eschborn, Alemania.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0120-9965200900030000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Hackett, W.P. 1988. Donor plant maturation and adventitious root   formation. pp. 11-28. En: Davis, T.D., B.E. Hassing y N. Sankhla   (eds.). Aventitious root formation in cuttings. Advances in Plant Sciences Series. Dioscorides Press, Portland, OR.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0120-9965200900030000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Hartmann, H. y D. Kester. 1998. Propagaci&oacute;n de plantas, principios y pr&aacute;cticas. Compa&ntilde;ia Editorial Continental, M&eacute;xico D.F.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0120-9965200900030000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Hartmann, H.T., D.E. Kester, F.T. Davies, Jr. y R.L. Geneve. 2002.   Plant propagation: principles and practices. 7a ed. Prentice Hall, Saddle River, NJ.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0120-9965200900030000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Hinojosa, G.F. 2000. Auxinas. pp. 15-54. En: Cid, L.P.B. (ed.) Introdu&ccedil;&atilde;o aos horm&ocirc;nios vegetais. Embrapa, Bras&iacute;lia DF.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0120-9965200900030000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Klinac, D.J. 1986. Cape gooseberry (<i>Physalis peruviana</i>) production system. New Zeal. J. Exp. Agr. 14, 525-430.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0120-9965200900030000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Lemes, C., C. Rodr&iacute;guez y L. Acosta. 2001. Multiplicaci&oacute;n vegetativa   de <i>Rosmarinus officinalis</i> L. (romero). Rev. Cubana Plant Med. 6(3), 79-82.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0120-9965200900030000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>L&oacute;pez, F.J., N.R. Gu&iacute;o, G. Fischer y D.Miranda. 2008. Propagaci&oacute;n   de uchuva (<i>Physalis peruviana</i> L.) mediante diferentes tipos   de esquejes y sustratos. 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Cambridge   University Press, Cambridge, UK.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0120-9965200900030000700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Pasqual, M., N.N.J. Chalfun, J.D. Ramos, M.R. do Vale y C.R. de   Silva. 2001. Fruticultura comercial: propaga&ccedil;&atilde;o de plantas frut&iacute;feras. UFLA/Faepe, Lavras, Brasil.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0120-9965200900030000700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Pio R., J.D., N.N.J. Ramos, T.A. Chalfun, V. Gontijo, E.P.Mendon&ccedil;a   y E.A. Carrijo. 2006. 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Rhizogenesis   of shoot cuttings of raspberry (<i>Physalis peruviana</i> L.). Indian J. Hort. 46(3), 376-378.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0120-9965200900030000700027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Santelices, R. 2007. Efecto del &aacute;cido indolbut&iacute;rico (AIB) y de la presencia   de hojas en el arraigamiento de estacas de <i>Nothofagus   glauca</i> (Phil.) Krasser cosechadas en dos &eacute;pocas diferentes. Ecol. Austral 17, 151-158.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0120-9965200900030000700028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Schaffer, B.C., C. Searle, A.W. Whiley y R.J. Nissen. 1996. Effects   of atmospheric CO<sub>2</sub> enrichment and root restriction on leaf   gas exchange and growth of banana (<i>Musa</i>). Physiol. Plant. 97, 685-693.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0120-9965200900030000700029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Taiz, L. y E. Zeiger. 2006. Plant physiology. 4a ed. Sinauer Associates Publishers, Sunderland, MA.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0120-9965200900030000700030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Westervelt, P. 2003. Effect of growing medium and irrigation rate   on growth of <i>Rosmarinus officinalis</i>. Tesis de maestr&iacute;a. Faculty   of the Virginia Polytechnic Institute and State University, Blacksburg, VA.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0120-9965200900030000700031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Zietemann, C. y S.R. Roberto. 2007. Efeito de diferentes substratos e &eacute;pocas de coleta no enraizamento de estacas herb&aacute;ceas de goiabeira, cvs. Paluma e S&eacute;culo XXI. Rev. Bras. Frutic. 29(1), 31-36.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0120-9965200900030000700032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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