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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[ACTIVIDAD ANTIPLASMODIAL DE ALCALOIDES APORFÍNICOS DE Rollinia pittieri Y Pseudomalmea boyacana (ANNONACEAE)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In the course of from ethnobotanical or chemotaxonomical studies on biologically active substances with antiparasitic effects from Anonaceae colombian plants, substantial antiplasmodial activity was observed from the ethyl acetate extract of the stem of Rollinia pittieri and Pseudomalmea boyacana (Annonaceae), the alkaloids isolated from these were studied. Of the alkaloids, liriodenine exhibited the highest activity against chloroquine sensitive and chloroquine resistant strains of Plasmodium falciparum (CI50 = 8.0-10.0 &micro;g/ml). In addition, inhibition of ß-hematin formation (Ifß-h) by isolated compounds was evaluated (Ifß-h). O-methylmoschatoline and melosmine showed inhibition percentage >96% at 2 mg/ml. Some degree of cytotoxic to U-937 cells activity was observed by oxoporphine alkaloids.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <b>ACTIVIDAD ANTIPLASMODIAL DE ALCALOIDES APORF&Iacute;NICOS DE <i>Rollinia pittieri</i>  Y <i>Pseudomalmea boyacana </i>(ANNONACEAE) </b>      <p>Edison J. OSORIO D<sup>1</sup>. , Guillermo L. MONTOYA P.<sup>1</sup>, Katalina MU&Ntilde;OZ D.<sup>1</sup>    y Gabriel J. ARANGO A.<sup>1</sup>*    <br>   <sup>1</sup> Grupo de Investigaci&oacute;n en Sustancias Bioactivas (GISB).    Facultad de Qu&iacute;mica Farmac&eacute;utica. Corporaci&oacute;n de Patolog&iacute;as    Tropicales. Universidad de Antioquia. A.A. 1226. Medell&iacute;n-Colombia.    <br> * Autor a quien se debe dirigir la correspondencia: <a href="mailto:gjarango@quimbaya.udea.edu.co">gjarango@quimbaya.udea.edu.co</a></p>     <p>Recibido: Enero 26 de 2006 Aceptado: Marzo 30 de 2006</p>     <p><b>RESUMEN</b></p>     <p>En el desarrollo de estudios etnobot&aacute;nicos o quimiotaxon&oacute;micos    en b&uacute;squeda de sustancias biol&oacute;gicamente activas con efectos antiparasitarios    a partir de plantas colombianas de la familia Annonaceae, fue observada la actividad    antiplasmodial sustancial para los extractos de acetato de etilo de tallos de    <i>Rollinia pittieri</i> y <i>Pseudomalmea boyacana</i> (Annonaceae), los alcaloides    aislados a partir de &eacute;stas fueron estudiados. De los compuestos, liriodenina    present&oacute; la mayor actividad contra las cepas de <i>Plasmodium falciparum</i>    sensible y resistente a cloroquina (CI<sub>50</sub> = 8.0-10,0 &micro;g/ml).    Igualmente fue evaluada la capacidad de inhibici&oacute;n de la formaci&oacute;n    de la &szlig;-hematina (If&szlig;-h) a los metabolitos aislados. O-metilmoschatolina    y melosmina presentaron porcentajes de inhibici&oacute;n mayor del 96% cuando    fueron evaluados a una concentraci&oacute;n de 2 mg/ml. Alg&uacute;n grado de    actividad citot&oacute;xica fue observada en todos los alcaloides oxoaporf&iacute;nicos    aislados contra c&eacute;lulas U-937.    <br>   <b>Palabras clave:</b> actividad antiplasmodial, Annonaceae, plantas colombianas    y alcaloides aporf&iacute;nicos.</p>     <p><b>ANTIPLASMODIAL ACTIVITY OF APORPHINE ALKALOIDS FROM <i>Rollinia pittieri</i> AND <i>Pseudomalmea boyacana</i> (ANNONACEAE)</b></p>     <p><b>ABSTRACT</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>In the course of from ethnobotanical or chemotaxonomical studies on biologically    active substances with antiparasitic effects from Anonaceae colombian plants,    substantial antiplasmodial activity was observed from the ethyl acetate extract    of the stem of <i>Rollinia pittieri</i> and <i>Pseudomalmea boyacana</i> (Annonaceae),    the alkaloids isolated from these were studied. Of the alkaloids, liriodenine    exhibited the highest activity against chloroquine sensitive and chloroquine    resistant strains of <i>Plasmodium falciparum</i> (CI<sub>50</sub> = 8.0-10.0    &micro;g/ml). In addition, inhibition of &szlig;-hematin formation (If&szlig;-h)    by isolated compounds was evaluated (If&szlig;-h). O-methylmoschatoline and    melosmine showed inhibition percentage &gt;96% at 2 mg/ml. Some degree of cytotoxic    to U-937 cells activity was observed by oxoporphine alkaloids.    <br>   <b>Keywords:</b> antiplasmodial activity, Annonaceae, colombian plants and aporphine    alkaloids.</p>     <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>     <p>La malaria es una enfermedad producida por par&aacute;sitos del g&eacute;nero    <i>Plasmodium</i>. Seg&uacute;n c&aacute;lculos de la Organizaci&oacute;n Mundial    de la Salud (OMS), anualmente ocurren entre 300 y 500 millones de casos cl&iacute;nicos    de la enfermedad, de los cuales 1,5 a 2,7 millones son mortales; adem&aacute;s;    2.400 millones de personas viven en regiones de alto riesgo para su transmisi&oacute;n,    lo que hace de esta enfermedad la principal causa de morbilidad y mortalidad    en 90 pa&iacute;ses ubicados en las regiones tropicales y subtropicales del    mundo, especialmente al sur del Sahara en &Aacute;frica, el sudeste de Asia    y Latinoam&eacute;rica (1).</p>     <p>El tratamiento de la malaria se ha realizado con diversos medicamentos que    act&uacute;an sobre estadios eritroc&iacute;ticos del par&aacute;sito, entre    los que se encuentran la quinina, un alcaloide aislado a partir de especies    del g&eacute;nero <i>Cinchona</i> (Rubiaceae) y otros derivados sint&eacute;ticos    desarrollados posteriormente como mefloquina y cloroquina (2). El descubrimiento    reciente m&aacute;s importante es la artemisinina, una sesquiterpen lactona    obtenida de <i>Artemisia annua</i> (Asteraceae) y el desarrollo de sus derivados,    el artemether y el artesunato, medicamentos de r&aacute;pida acci&oacute;n y    efectivos contra cepas de <i>P. falciparum</i> resistentes a m&uacute;ltiples    medicamentos (3). Sin embargo, la actividad de la artemisinina y sus derivados    se ve afectada por su baja solubilidad y pobre biodisponibilidad. Adem&aacute;s,    aunque los derivados presentan una mejor absorci&oacute;n, r&aacute;pida acci&oacute;n    y mayor efectividad contra <i>P. falciparum</i> multirresistente, ocasionan    citotoxicidad y acarrean efectos adversos importantes (4,5). No obstante, el    tratamiento de la malaria contin&uacute;a como uno de los mayores retos para    los programas de control debido al fen&oacute;meno de resistencia del par&aacute;sito    contra los medicamentos, que ha llevado a la necesidad de desarrollar nuevos    compuestos antimal&aacute;ricos que permitan mejorar el control de la enfermedad.</p>     <p>En un tamizaje preliminar (6), los extractos de acetato de etilo de tallos    de <i>Rollinia pittieri</i> Saff. y <i>Pseudomalmea boyacana</i> (J.F. Macbr.)    Chatrou., presentaron actividad antiplasmodial <i>in vitro</i> a concentraciones    de 8 &micro;g/ml contra cepas de <i>Plasmodium falciparum</i> sensibles (F32)    y resistentes (W2) a la cloroquina. Adem&aacute;s, ambas especies de plantas    presentaron el mayor &iacute;ndice de selectividad cuando fue comparada la actividad    antiparasitaria contra la actividad citot&oacute;xica sobre c&eacute;lulas U-937.  </p>     <p>El prop&oacute;sito del presente trabajo fue profundizar en el estudio de estas    plantas y dirigir la b&uacute;squeda hacia las mol&eacute;culas responsables    de la actividad biol&oacute;gica. En el trabajo se describe el aislamiento biodirigido    por actividad de cinco alcaloides a partir de tallos de <i>R. pittieri</i> y    <i>P. boyacana</i> y la actividad biol&oacute;gica in vitro de estos compuestos    contra dos cepas de <i>P. falciparum</i>. Igualmente fue evaluada la capacidad    de inhibici&oacute;n de la formaci&oacute;n de la &szlig;-hematina, sustancia    sint&eacute;tica e id&eacute;ntica a la hemozo&iacute;na (pigmento mal&aacute;rico).    Una de las hip&oacute;tesis mayormente aceptadas es que la cloroquina y otros    antimal&aacute;ricos quinol&iacute;nicos act&uacute;an inhibiendo la formaci&oacute;n    de la hemozo&iacute;na; por lo tanto, este proceso permanece como blanco atractivo    para la b&uacute;squeda de nuevos compuestos antimal&aacute;ricos (7). Tambi&eacute;n    es reportada la actividad citot&oacute;xica de los cinco compuestos contra c&eacute;lulas    U-937.</p>     <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></p>     <p><b>Material vegetal</b></p>     <p>Las especies <i>R. pittieri</i> y <i>P. boyacana</i> fueron colectadas desde    su h&aacute;bitat natural en el corregimiento de Lomas Aisladas, Municipio de    Turbo (Antioquia, Colombia). Las muestras de herbario fueron determinadas por    M.Sc. Fernando Alzate (A 1072 y A 1039, respectivamente) y depositadas en el    Herbario de la Universidad de Antioquia (HUA), Medell&iacute;n-Colombia.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Extracci&oacute;n y aislamiento</b></p>     <p>El material vegetal seco y molido de <i>R. pittieri</i> (2,7 kg) y <i>P. boyacana</i>    (3,1 kg) fue desengrasado con n-hexano durante un per&iacute;odo de 2,5 d&iacute;as.    Una vez comprobada la actividad antiparasitaria de la fracci&oacute;n alcaloidal    de <i>R. pittieri</i> (2,8 g) se aislaron dos compuestos, O-metilmoschatolina    [1] y melosmina [2]. La fracci&oacute;n alcaloidal de <i>P. boyacana</i> (3,1    g) se someti&oacute; a fraccionamiento por cromatograf&iacute;a en gel (Sephadex    LH-20). El proceso dio como resultado el aislamiento de liriodenina [3], atherospermidina    [4] e isomoschatolina [5]. La caracterizaci&oacute;n estructural de los diferentes    compuestos se realiz&oacute; por RMN (mono &#150; H<sup>1</sup> y C<sup>13</sup>&#150;y bidimensional    &#150; COSY, NOESY, HMQC, HMBC-), EM, UV e IR, junto a diversas determinaciones    f&iacute;sicas.</p>     <p><b>Actividad antiplasmodial <i>in vitro</i></b></p>     <p>La actividad antiplasmodial se realiz&oacute; por el m&eacute;todo de cultivo    continuo <i>in vitro</i> desarrollado por Trager y Jensen (8). De acuerdo con    esta t&eacute;cnica, las formas parasitarias de <i>P. falciparum</i> cepa F32    sensible a la cloroquina y cepa W2 resistente a la cloroquina, fueron cultivadas    en medio RPMI 1640, suplementado con suero humano al 10 % y un hematocrito del    4 % (Grupo sangu&iacute;neo O, Rh+) a 37&ordm;C en atm&oacute;sfera modificada.    Los extractos fueron disueltos en DMSO y la cloroquina en agua destilada est&eacute;ril    para luego ser diluidos con el mismo medio obteni&eacute;ndose las concentraciones    requeridas (0,10; 1,0 y 10,0 &micro;g/ml). Los cultivos fueron sincronizados    con una parasitemia y un hematocrito del 1 y 2 % respectivamente, estos fueron    dispensados en un volumen de 100 &micro;l en placas de 96 pozos por duplicado,    se adicionaron 100 &micro;l de los extractos, y finalmente fueron incubados    a 37&ordm;C durante 48 horas. Pasado este tiempo de incubaci&oacute;n se elimin&oacute;    completamente la fase superior del cultivo, para realizar un frotis del sedimento    de cada pozo, fijando luego con metanol y realizando la tinci&oacute;n con Giemsa.    Estas placas fueron observadas en el microscopio con lente de inmersi&oacute;n    100x, contando gl&oacute;bulos rojos no infectados (GRL) y gl&oacute;bulos rojos    infectados (GRI), para obtener el porcentaje (%) de Inhibici&oacute;n calculado    mediante la f&oacute;rmula 1:</p>     <p>%Inhibicion=((GRL-GRI)/GRL)*100</p>     <p>El c&aacute;lculo para hallar la Concentraci&oacute;n Inhibitoria del 50 %    en la maduraci&oacute;n de los esquizontes (CI<sub>50</sub>), se realiz&oacute; con un    m&eacute;todo gr&aacute;fico mediante el programa Cricket Graph 1.3, consider&aacute;ndose    como activos aquellos que presentaron una CI<sub>50</sub> menor a 10 &micro;g/ml.</p>     <p><b>Inhibici&oacute;n de la formaci&oacute;n de la &szlig;-hematina</b></p>     <p>Para el ensayo de inhibici&oacute;n de la formaci&oacute;n de la &szlig;-hematina    se utiliz&oacute; el m&eacute;todo de Baelmans y colaboradores (9) con algunas    modificaciones. En resumen, la s&iacute;ntesis de la &szlig;-hematina fue realizada    con una mezcla de 100 &micro;l de hemina 6,5 mM reci&eacute;n preparada disuelta    en una soluci&oacute;n de NaOH 0,2 N, 50 &micro;l de &aacute;cido ac&eacute;tico    glacial 17,4 M, 50 &micro;l de agua destilada y 200 &micro;l de tamp&oacute;n    acetato de sodio trihidratado 3 M, pH, final aproximadamente 4,0. Se incub&oacute;    por 1h a 60&ordm;C. Posteriormente fue centrifugada a 12.000 rpm durante 10    min; luego de descartar el sobrenadante, el precipitado se lav&oacute; 3 veces    con 200 &micro;l de DMSO para remover la hemina no reaccionante. El s&oacute;lido    &szlig;-hematina obtenido fue disuelto en una soluci&oacute;n de NaOH 0,1N,    de la cual se tom&oacute; una al&iacute;cuota para la lectura espectrofotom&eacute;trica    a 386 nm y correspondi&oacute; al 100% de &szlig;-hematina sintetizada. La formaci&oacute;n    de &szlig;-hematina se monitore&oacute; por espectroscopia IR-TF. Para la evaluaci&oacute;n    de la actividad inhibitoria de los extractos, los 50 &micro;l de agua destilada    fueron remplazados por una soluci&oacute;n del extracto correspondiente a una    concentraci&oacute;n final de 2,5 mg/ml y con la lectura espectrofotom&eacute;trica    fue calculado el porcentaje de inhibici&oacute;n mediante la f&oacute;rmula    2:</p>     <p>%Inhibici&oacute;n=100*(1-(Ab<sub>muestra</sub>/Ab<sub>control</sub>))</p>     <p>donde Ab<sub>muestra</sub> y Ab<sub>control</sub> son la absorbancia de la    &szlig;-hematina con y sin el uso de extractos, respectivamente. El difosfato    de cloroquina (CQ) fue utilizado como control positivo y su actividad inhibitoria    fue expresada en t&eacute;rminos de CI<sub>50</sub>, es decir, la concentraci&oacute;n    de CQ necesaria para la inhibici&oacute;n del 50% de la formaci&oacute;n de    &szlig;-hematina, y se calcul&oacute; mediante el paquete estad&iacute;stico    GraphPad Prism&reg; demo, Versi&oacute;n 4,00 para Windows, (GraphPad software,    Inc, San Diego CA 2003). Los ensayos fueron realizados por triplicado.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Ensayo de citotoxicidad</b></p>     <p>La actividad citot&oacute;xica de los compuestos fue evaluada en c&eacute;lulas    promonoc&iacute;ticas humanas U-937. Para estimar la concentraci&oacute;n letal    50 (LC<sub>50</sub>), fue utilizado el microm&eacute;todo enzim&aacute;tico 3-(4,5-dimethyithiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium    bromide (MTT) (10). Fueron usadas como controles c&eacute;lulas cultivadas en    ausencia de tratamiento pero mantenidas bajo las mismas condiciones. Dos experimentos    independientes, por triplicado, fueron desarrollados para la determinaci&oacute;n    de la citotoxicidad de cada compuesto. Los resultados son expresados como CL<sub>50</sub>    y calculados mediante el programa de an&aacute;lisis Probit.</p>     <p><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></p>     <p>El aislamiento biodirigido por actividad de los extractos de acetato de etilo    de tallos de <i>R. pittier</i>i y <i>P. bayacana</i> permiti&oacute; la caracterizaci&oacute;n    de cuatro alcaloides oxoaporf&iacute;nicos O-metilmoschatolina [1] (11-14),    liriodenina [3] (11-13,15-17) atherospermidina [4] (18-19) e isomoschatolina    [5] (17) y un alcaloide de n&uacute;cleo 7,7-dimetilaporf&iacute;nico, melosmina    [2] (11,20). La identificaci&oacute;n estructural de los compuestos 1-5 (v&eacute;ase    <a href="#f1">figura 1</a>) fue realizada comparando los datos espectrosc&oacute;picos    (UV, IR, EM, RMN H-1 y C13) y f&iacute;sicos con los reportados en la literatura.    Copias de los espectros originales se pueden obtener del autor.</p>     <p><img src="/img/revistas/vitae/v13n1/1a07f01.JPG" width="573" height="189"><a name="f1"></a></p>     <p>La actividad antiplasmodial <i>in vitro</i> (valores de % de inhibici&oacute;n    y CI<sub>50</sub>) de los compuestos aislados a partir de <i>R. pittieri</i>    y <i>P. boyacana</i> puede verse en la <a href="#t1">tabla 1</a>. A partir de    los resultados obtenidos en este estudio, no fue posible determinar relaciones    de estructura- actividad para los compuestos ensayados. No obstante, es interesante    observar que liriodenina present&oacute; la mayor actividad contra las cepas    de <i>P. falciparum</i> tanto sensible como resistente a cloroquina (CI<sub>50</sub>    = 8,0-10,0 &micro;g/ml). La actividad antiparasitaria de [3] estuvo en concordancia    con previos reportes (21-23). Sin embargo, el compuesto y todos los alcaloides    oxoaporf&iacute;nicos ensayados presentaron alg&uacute;n grado de citotoxicidad.    Liriodenina ha sido reportado como responsable de la actividad acaricida, antimicrobiana    y antimic&oacute;tica de un n&uacute;mero importante de plantas (24-27) y presenta    propiedades anticancer&iacute;genas, citot&oacute;xicas y antivirales por inhibici&oacute;n    de la topoisomerasa II (28-31). Seg&uacute;n nuestro conocimiento, &eacute;ste    es el primer reporte de actividad antiplasmodial para los compuestos [2] y [4].</p>     <p><img src="/img/revistas/vitae/v13n1/1a07t01.JPG" width="576" height="315"><a name="t1"></a></p>     <p>Igualmente fue evaluada la capacidad de inhibici&oacute;n de la formaci&oacute;n    de &szlig;-hematina (If&szlig;-h) (v&eacute;ase <a href="#t1">tabla 1</a>).    La relevancia de evaluar dicha actividad se basa en la siguiente observaci&oacute;n:    durante su ciclo intraeritroc&iacute;tico, el par&aacute;sito de la malaria    degrada una gran cantidad de hemoglobina presente en el citoplasma de la c&eacute;lula    hospedera (entre 60-80%) (32). Durante el proceso de proteolisis de hemoglobina    en su vacuola digestiva &aacute;cida, se produce heme (Ferriprotoporfirina IX),    un compuesto potencialmente t&oacute;xico para el par&aacute;sito (33). El par&aacute;sito    carece de heme oxigenasa, enzima que dispone del compuesto en otras especies,    entonces lo detoxifica, en parte por su incorporaci&oacute;n en una sustancia    cristalina, inerte e insoluble denominada hemozo&iacute;na (o pigmento mal&aacute;rico)    (34), y el resto por procesos de degradaci&oacute;n peroxidativos (33). Esta    funci&oacute;n especializada hace de la vacuola digestiva un blanco atractivo    para la b&uacute;squeda de nuevos compuestos antimal&aacute;ricos; un compuesto    capaz de inhibir la formaci&oacute;n de hemozo&iacute;na podr&iacute;a ser potencialmente    letal para el par&aacute;sito. Para muchas sustancias, la habilidad de inhibir    est&aacute; formaci&oacute;n esta directamente relacionada con su potencia antimal&aacute;rica    (35,36).</p>     <p>Una sustancia similar a la hemozo&iacute;na, la &szlig;-hematina, puede ser    formada<i> in vitro</i> a partir de una soluci&oacute;n de hemina (hidroxi-ferriprotoporfirina    IX) bajo ciertas condiciones de pH, temperatura y concentraci&oacute;n de sales,    que simulan el ambiente de la vacuola digestiva (37,38). La &szlig;-hematina    sint&eacute;tica es espectrofotom&eacute;trica y qu&iacute;micamente id&eacute;ntica    a la hemozo&iacute;na; adem&aacute;s, conserva las propiedades de solubilidad    de la sustancia nativa (39), siendo &uacute;til en el estudio y dise&ntilde;o    de nuevos agentes terap&eacute;uticos. La metodolog&iacute;a aplicada para la    formaci&oacute;n de &szlig;-hematina se monitore&oacute; por espectroscop&iacute;a    de IR-TF, en donde se distingue inequ&iacute;vocamente hemina de &szlig;-hematina.    El espectro IR de &szlig;-hematina mostr&oacute; bandas a 1.662 y 1.209 cm<sup>-1</sup>,    caracter&iacute;sticas de la uni&oacute;n hierro-carboxilato (40), las cuales    no est&aacute;n presentes en el espectro IR de la hemina (datos no mostrados).</p>     <p>Los compuestos [1] y [2] presentaron la mayor actividad If&szlig;-h cuando    fueron evaluados a una concentraci&oacute;n de 2 mg/ml. A pesar de ello, no    se observ&oacute; una correlaci&oacute;n importante con la actividad antiplasmodial.    Esto puede explicarse por factores relacionados con la incapacidad de los principios    activos de alcanzar el sitio de formaci&oacute;n de la hemozo&iacute;na y de    acumularse en la vacuola digestiva &aacute;cida del par&aacute;sito a concentraciones    efectivas durante el ensayo<i> in vitro</i>. Por su parte, liriodenina no present&oacute;    actividad If&szlig;-h, estableciendo que la actividad antiplasmodial observada    no obedece a la inhibici&oacute;n de la formaci&oacute;n de hemozo&iacute;na;    sin embargo, &eacute;sta fue la m&aacute;s alta alcanzada para aquellos compuestos    aislados de <i>P. boyacana</i>.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Ninguno de los compuestos evaluados present&oacute; actividad antiplasmodial    comparable con la droga est&aacute;ndar (cloroquina); no obstante; la baja toxicidad    mostrada por algunos de ellos, particularmente compuestos no oxoaporf&iacute;nicos,    ofrece estructuras promisorias. Es razonable concluir que los alcaloides aporf&iacute;nicos,    aislados a partir de los tallos de <i>R. pittieri</i> y <i>P. boyacana</i> son    responsables de su actividad antiplasmodial, en especial, compuestos como melosmina    y liriodenina; sin embargo, es posible tambi&eacute;n pensar en procesos de    sinergismo debido a la potente actividad de los extractos. Finalmente, es importante    mencionar que otros alcaloides aporf&iacute;nicos han mostrado potente actividad    antiprotozoaria <i>in vitro</i> (41) e <i>in vivo</i> (42): de esta forma, algunos    de los alcaloides aislados en este trabajo podr&iacute;an ser considerados como    mol&eacute;culas bases para el desarrollo de f&aacute;rmacos antiparasitarios.</p>     <p>Desde el punto de vista quimiotaxon&oacute;mico, se establece que liriodenina,    atherospermidina e isomoschatolina son reportados por primera vez en tallos    de <i>P. boyacana</i>. Es la primera vez que se reporta un metabolito aislado    a partir del g&eacute;nero <i>Pseudomalmea</i>. Por su parte, los compuestos    O-metilmoschatolina y melosmina, son reportados por primera vez en tallos de    <i>R. pittieri</i>; adem&aacute;s, es la primera vez que se reporta un alcaloide    de n&uacute;cleo 7,7-dimetilaporfinoide en el g&eacute;nero <i>Rollinia</i>.</p>     <p><b>AGRADECIMIENTOS</b></p>     <p>Este trabajo fue financiado por COLCIENCIAS (Contrato No. RC 108-2003) y CODI-Universidad    de Antioquia (Acta No. CPT 0313). Igualmente agradecemos a la Dra. Grace Ruiz,    del Instituto de Investigaciones F&aacute;rmaco Bioqu&iacute;micas de la Universidad    Mayor de San Andr&eacute;s (La Paz-Bolivia) por la realizaci&oacute;n de los    ensayos antiparasitarios.</p>     <p><b>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</b></p>     <!-- ref --><p>1. WHO Expert Committee on Malaria (2000) &#147;Technical Report Series, Twentieth    Report&#148;. World Health Organization, Geneva.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000048&pid=S0121-4004200600010000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   2. Marshall, E. (2000) Drugs. Reinventing an ancient cure for malaria. Science.    290 (5491) : 437-439.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000049&pid=S0121-4004200600010000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   3. Wright, C.W. (2004) Trease and Evans Pharmacognosy. WC Evans and WB Saunders    (Ed) Edinburgh. pp. 407&#150;413.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000050&pid=S0121-4004200600010000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   4. Beekman, A., Barentsen, A., Woerdenbag, H. (1997) Stereochemistry dependent    cytotoxicity of some artemisinin derivates. J Nat Prod. 60 (4) : 325-330.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000051&pid=S0121-4004200600010000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   5. Galal, A., Ahmad, M., El-Feraly, F., <i>et al</i>. (1996) Preparation and    characterization of a new artemisinin-derived dimer. J Nat Prod. 59 (10) : 917-920.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000052&pid=S0121-4004200600010000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   6. Osorio, E., Arango, G., Garc&iacute;a, E., <i>et al</i>. (2005) Actividad    antiplasm&oacute;dica <i>in vitr</i>o e inhibici&oacute;n de la formaci&oacute;n    de la &szlig;-Hematina de plantas colombianas de la familia Annonaceae. Acta    Farm Bonaerense. 24 (4) : 527-532.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000053&pid=S0121-4004200600010000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   7. Egan, T.J. (2004) Haemozoin formation as a target for the rational design    of new antimalarials. Drug Des Review. 1 (1) : 93-110.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000054&pid=S0121-4004200600010000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   8. Trager, W., Jensen, J.B. (1976) Human malaria in continuous culture. Science.    193 (4254) : 673-675.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000055&pid=S0121-4004200600010000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   9. Baelmans, R., Deharo, E., Bourdy, G., <i>et al</i>. (2000) A search for natural    bioactive compounds in Bolivia through a multidisciplinary approach. Part IV.    Is a new haem polymerisation inhibition test pertinent for the detection of    antimalarial natural products?. J Ethnopharmacol. 73 (1-2) : 271-275.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000056&pid=S0121-4004200600010000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   10. Weniger, B., Robledo, S., Arango, G.J., <i>et al</i>. (2001) Antiprotozoal    activities of Colombian plants. J Ethnopharmacol. 78 (2-3) : 193&#150;200.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000057&pid=S0121-4004200600010000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   11. Guinaudeau, H., Leboeuf, M., Cav&eacute;, A. (1983) Aporphinoid alkaloids,    III. J Nat Prod. 46 (6) : 761-835.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000058&pid=S0121-4004200600010000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   12. Harrigan, G.G., Leslie, A.A., Kingston, D.G.I. (1994) Isolation of bioactive    and other oxoaporphine alkaloids from two annonaceous plants, <i>Xylopia aethiopica</i>    and <i>Miliusa</i> CF. <i>banacea</i>. J Nat Prod. 57 (1) : 68-73.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0121-4004200600010000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   13. Kithsiri, E.M., Hatanaka, Y., Kikuchi, T., <i>et al</i>. (1996) A dioxoaporphine    and other alkaloids of two annonaceous plants of Sri Lanka. Phytochemistry.    42 (6) : 1703-1706.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000060&pid=S0121-4004200600010000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   14. Mahmood, K., Chan, K.C., Park, M.H., <i>et al</i>. (1986) An aporphinoid    alkaloid from <i>Pseuduvaria macrophylla</i>. Phytochemistry. 25 (6) : 1509-1510.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0121-4004200600010000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   15. Brash, R.M., Sneden, A.T. (1983) Oxoaporphine alkaloids from <i>Rollinia    sericea</i>. J Nat Prod. 46 (3) : 437-437.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S0121-4004200600010000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   16. Dabrah, T.T., Sneden, A.T. (1983) Oxoaporphine alkaloids from <i>Rollinia    papilionella</i>. J Nat Prod. 46 (3) : 436-436.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0121-4004200600010000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   17. Guinaudeau, H., Leboeuf, M., Cav&eacute;, A. (1975) Aporphinoid alkaloids.    Lloydia. 38 (4) : 275-338.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0121-4004200600010000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   18. Cortes, D., Torrero, M.Y., D&#146;ocon M.P., <i>et al</i>. (1990) Norstephalagine    et atherospermidine, deux aporphines D&#146; <i>Artabotrys mazngayz </i>relaxantes    du muscle lisse. J Nat Prod. 53 (2) : 503-508.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0121-4004200600010000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   19. Kithsiri, E.M., Leslie, A.A., Kingston, D.G., <i>et al</i>. (1995) Artabotrine:    a novel bioactive alkaloid from <i>Arttiotrys zeylanicus</i>. Tetrahedron. 51    (29) : 7877-7882.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0121-4004200600010000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   20. Zabel, V., Watson, H. (1982) Melosmine and melosmidine, 7,7-dimethyltetrahydroaporphine    alkaloids from <i>Guatteria melosma</i>. J Nat Prod. 45 (1) : 94-101.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0121-4004200600010000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   21. Camacho, M.R., Kirby, G.C., Warhurst, D.C., <i>et al</i>. (2000) Oxoaporphine    alkaloids and quinones from <i>Stephania dinklagei</i> and evaluation of their    antiprotozoal activities. Planta Med. 66 (5) : 478-480.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0121-4004200600010000700021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   22. Mbah, J.A., Tane, P., Ngadjui, B.T., <i>et al</i>. (2004) Antiplasmodial    agents from the leaves of <i>Glossocalyx brevipes</i>. Planta Med. 70 (5) :    437-440.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0121-4004200600010000700022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   23. Waechter, A.I., Cav&eacute;, A., Hocquemiller, R., <i>et al</i>. (1999)    Antiprotozoal activity of aporphine alkaloids isolated from <i>Unonopsis buchtienii    </i>(Annonaceae). Phytother Res. 13 (2) : 175&#150;177.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0121-4004200600010000700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   24. Akendengue, B., Ngou-Milama, E., Bourobou, H.B., <i>et al</i>. (2003) Acaricidal    activity of <i>Uvaria versicolor</i> and <i>Uvaria klaineana</i> (Annonaceae).    Phytother Res. 17 (4) : 364-367.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0121-4004200600010000700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   25. Khan, M.R., Kihara, M., Omoloso, A.D. (2002) Antimicrobial activity of <i>Michelia    champaca</i>. Fitoterapia. 73 (7-8) : 744&#150;748.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0121-4004200600010000700025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   26. Nissanka, A.P., Karunaratne, V., Ratnayake, B.M., <i>et al</i>. (2001) Antimicrobial    alkaloids from <i>Zanthoxylum tetraspermum </i>and <i>caudatum</i>. Phytochemistry.    56 (8) : 857-861.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0121-4004200600010000700026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   27. Zhang, Z., ElSohly, H.N., Jacob, M.R., <i>et al</i>. (2002) New sesquiterpenoids    from the Root of <i>Guatteria multivenia</i>. J Nat Prod. 65 (6) : 856-859.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0121-4004200600010000700027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   28. Goren, A.C., Zhou, B.N., Kingston, D.G. (2003) Cytotoxic and DNA damaging    activity of some aporphine alkaloids from <i>Stephania dinklagei</i>. Planta    Med. 69 (9) : 867-868.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0121-4004200600010000700028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   29. Hsieh, T.J., Liu, T.Z., Chern, C.L., <i>et al</i>. (2005) Liriodenine inhibits    the proliferation of human hepatoma cell lines by blocking cell cycle progression    and nitric oxide-mediated activation of p53 expression. Food Chem Toxicol. 43    (7) : 1117&#150;1126.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0121-4004200600010000700029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   30. Woo, S.H., Reynolds, M.C., Sun, N.J., <i>et al</i>. (1997) Inhibition of    topoisomerase II by liriodenine. Biochem Pharmacol. 54 (4) : 467-473.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0121-4004200600010000700030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   31. Woo, S.H., Sun, N.J., Cassady, J.M., <i>et al</i>. (1999) Topoisomerase    II inhibition by aporphine alkaloids. Biochem Pharmacol. 57 (10) : 1141&#150;1145.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0121-4004200600010000700031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   32. Francis, S., Sullivan, D., Goldberg, D. (1997) Hemoglobin metabolism in    the malaria parasite Plasmodium falciparum. Annu Rev Microbiol. 51 (1) : 97-123.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0121-4004200600010000700032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   33. Loria, P., Miller, S., Foley, M., <i>et al</i>. (1999) Inhibition of the    peroxidative degradation of haem as the basis of action of chloroquine and other    quinoline antimalarials. Biochem J. 339 (pt2) : 363-370.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0121-4004200600010000700033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   34. Goldberg, D., Slater, A (1992) The pathway of hemoglobin degradation in    malaria parasites. Parasitol Today. 8 (8) : 280&#150;283.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0121-4004200600010000700034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   35. Dorn, A., Vippagunta, S.R, Matile, H, <i>et al</i>. (1998) An assessment    of drug-haematin binding as a mechanism for inhibition of haematin polymerisation    by quinoline antimalarials. 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Likhitwitayawuid, K., Dej-adisai, S., Jongbunprasert, V., <i>et al</i>.    (1999). Antimalarials from <i>Stephania venosa</i>, <i>Prismatomeris sessilifora</i>,    <i>Diospyros montana </i>and <i>Murraya siamensis</i>. Planta Med. 65 (8) :    754-758.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0121-4004200600010000700041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   42. Mu&ntilde;oz, V., Sauvain, M., Mellinedo, P., <i>et al</i>. (1999) Antimalarial    activity and cytotoxicity of (-)-roemrefidine isolated from the stem bark of    <i>Sparattanthelium amazonum</i>. Planta Med. 65 (5) : 448-449.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0121-4004200600010000700042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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